JPS62181296A - 抗8:c抗体の分離法 - Google Patents
抗8:c抗体の分離法Info
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- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
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- A61M1/36—Other treatment of blood in a by-pass of the natural circulatory system, e.g. temperature adaptation, irradiation ; Extra-corporeal blood circuits
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
発明の背景
本発明は、血漿のような液体中に存在する抗I:C抗体
の分離方法に関する。さらに詳しくは本発明は、凝固第
vl:o因子の特異抗体(すなわちA型血友病患者の血
漿中に存在する抗糧:C抗体)の選択的精製に使用可能
な、不溶性ポリマー又はコポリマー支持体に関する。′
5′なわち何度も輸血をうけたA型血友病患者では一般
的に、輸血された第■:0因子の凝固活性を中和する抗
■:C抗体が形成される。この抗体が存在すると重症に
なる。さらにA型血友病患者の出血な止めるためには、
普通血漿の交換が必要であり、この後直ちに通常のホメ
オスタシスを得るために直ちに第vl:C因子が注射さ
れる。患者の病状の程度によりこの治療はしばしば長期
間続ける必要がある。この患者血漿の必須成分を所期の
レベルで維持することが困離な状態においては、重大な
問題である。 さらに輸血回数が増加するにつれて、肝炎ウィルスやI
、AV/HTL’Vウィルスによる感染の危険が増加す
る。 さらにここ数年間、適当な支持体上に障害要素を吸着さ
せて血漿を直接精製することを目的とする研究が行われ
ている。B型血友病の場合は第■因子特異抗体(すなわ
ち抗■抗体)を、アガロースの共有結合したプロティン
Aにルンン(Nilsson)ら、Blood 、第5
8巻、AI(1981年7月)、p38−44に記載】
に吸着させてこの精製を行うことが可能である。プロテ
ィンAは免疫グロブリンのIPCF!i5分と反応し、
セファロースと結合している場合免疫グロブリン()′
4f単離するための(従って抗第■因子を単離するため
の)免疫吸着剤として使用可能である。しかしこうして
処理した血漿の総免疫グロブリン含量は本来の値の11
5以下であり、これが若干の問題となる。 さらに最近の研究の目的は所期の抗体、Wに血友病患者
の血液中に存在する抗体を選択的に分離できる免疫吸着
剤を得ることである。 抗%1[:C抗体についてはこれまでの研究では抗体な
定置的に分離できていない。従って抗橿:C抗体の固定
されたクロマトグラフィーデルによる選択的吸着を利用
してごの分離を行うことが考えられている。しかし抗V
11:C抗体は急速にその抗原活性を失うため、この方
法は実施不可能である。 ここ数年例えば血液のある成分に対し特別の親和性を与
えることを可能にするような、適当な固定化化合物の結
合した不活性の支持体な使用することについて研究が続
けられている。例えばフランス国特許83/10773
(1983年6月29日、シーイーニー(C!、El、
A、)が申請)は、トロンビンの分離と精製にこの型の
ポリマーを便うことを例示している。この場合支持体に
トロンビンに対する親和性を与えるために、アルギニン
、ニトロアルギニン又はそれらの誘導体(例えばメチル
エステル)がポリマー又はコポリマーに固定されてbる
。 発明の要約 本発明を1A型血友病患者の血液の血漿精製に用い得る
ものと同じ型の支持体(この方法により抗51:C抗体
を他の免疫グロブリンから選択的に分離可能なためンを
用いる、液体中の抗■:C抗体の分離方法に関する。 従って本発明は液体中に存在する抗[:Q抗体の分離方
法において: a)鎖の中に置換可能な官能基を有し、少なくともその
一部は式−(SO3)XM (式中Mは液体と反応しな
い金属であり、Xは金属Mの結合価を表わす)。 及び/又は式−SO2Y及び/又は−COY (式中Y
はアルギニン以外の −アミノ酸の、又はアルギニン以
外のα−アミノ酸誘導体のアミノ基から水素原子を除く
ことにより得られるラデイカルを表わす〕(これらは抗
[:(:!抗体に対する親和性と。 他の免疫グロブリンに比較して抗■:C抗体に対して選
択性を■する)により11換されたポリマー又はコポリ
マーより成る個体支持体に、その液体を接触させ、そし
て b)抗W:C抗体の吸着された支持体から液体を分離す
ることより成る、上記分離方法に関する。 他の免疫グロブリンに比較して抗vl:c抗体に対して
親和性及び選択性の良好な吸着剤を得るために、ラデイ
カルYは好ましくは式: %式% (式中、R″は −アミノ酸の側鎖であり、R2は水素
原子又は例えば1−5個の炭素原子な有するアルキル基
であり、基R1はC!OOH,NH2%OHそしてSR
基から選ばれる少なくとも1つの官能基を表わす)に一
致する。 使用可能な基Yの例としては、グルタミン酸、とVロキ
シプロリン、アラニン、フェニルアラニン、スレオニン
及びリジンより得られるものがある。好ましくは基Yは
グルタミン酸、とVロキシプロリン、スレオニン又はリ
シンからの基である。 本発明によれば、基Yの前駆体である −アミノ酸が数
個のアミノ基を含有する場合、このα−アミノ酸又ヲ工
その誘導体(ここから水素原子を除いて基Yを虫取する
)のアミン基はα位に存在するアミノ基である。 本発明によれば、−SO2Y、 −(so3)xM及ヒ
/又は−COYは炭化水素化鎖又は基(例えばCOY基
の場合はペプチド鎖)ff介してポリマーに結合できる
。 本発明によれば、使用可能なポリマー及びコポリマーは
、鎖にそってクロロスルホン酸と反応できる[1換可能
な基を有する個体物質である。このようなポリマーの例
としては架橋したポリスチレン、セルロースエステル、
セルロースエーテル、ポリビニルアセテート、ポリビニ
ルクロリド、ボリオインゾレン及びポリブタジェンがあ
る。又スチレンのコポリマー、ビニルアセテートのコポ
リマー、ビニルクロリドのコポリマー、インダノンのコ
ポリマー及びブタジェンのコポリマーも使用可能である
。又コポリマーとb5単語は塩基性ポリマーにビニルモ
ノマーを結合させて得られるコポリマー(例えばクロロ
スルホン化耐性ポリマーにスチレンを結合させて得られ
るスチレンコポリマー)=r4意味する。この場合クロ
ロスルホン化耐性塩基性ポリマーは、ポリオレフィン、
フッ素化ポリマー及びポリビニルクロリドから選ばれる
。 好ましくハ、スチレン又はスチレンコポリマーを用いる
。この場合ポリマー又はコポリマーに結合した基は2種
類であり、1つは式−SO2(式中Yは前記した意味を
有する)であり、他の1つは式−(SO3)x[(式中
Mは液体と反応しなか金属であり、Xは金属M(これは
普通ナトリウムである)の結合1曲である)である。 本発明は又カルボキシメチル化可能なポリマー及びコポ
リマー(例えばポリデキストランのような多糖)にも適
用される。 塩基性ポリマーがスチレン又はスチレンコポリマーであ
る本発明の支持体は、クロロスルホン酸との反応により
ポリマー又はコポリマーをクロロスルホン化する第一段
階と、ポリマー又はコポリマーに結合した一SO201
基の少なくとも一部−SO2Y基に変える第2段階より
成る工程により得られる。 ポリスチレンを使用する場合はクロロスルホン化反応は
以下の反応に従う: この反応はニトロメタンの結合した塩素化溶媒(例えば
ニトロメタンの結合したジクooメタン]より成る有機
浴媒中で実施することが有効である。 第2段階ではり0c1スルホニル21i −SO201
k’!、式: %式% (式中HAはα−アミノ酸の側鎖を、R2は水素原子又
はアルキルラデイカルを表わす)に一致する対応するα
−アミノ酸と反応させることによりY基に変換される。 この反応は下記の反応式に対応する: 図 − ロー悶 ■ 国 寓 口 この反応は、R2が水素原子である場合は周囲温度で水
−ジオキサン混合液中で実施され R2がアルキルラデ
イカルである場合は周囲温度より少し高い温度でジクロ
ロメタン中で実施される。 ポリスチレンの場合は反応の最後に下記の式の基が得ら
れる: Rよ の数は特に反応条件に依存する。良好な結果な得るため
にをヱ、−8O2Y又は−COY基に置換されるスチレ
ン基の数は10−30%であることが好ましい。 式−COYの基を有するポリマー又はコポリマーより成
る本発明の個体支持体は、カルポキシメチル化の第1段
階、適当なアミン又はベンゾルクロリ−を固定する第2
段階、ラデイカルYの得られるアミノ酸を固定する第3
段階そして第4のスルホ化段階より成る工程により得ら
れる。 この場合ポリマーは多糖(例えばポリデキストラン)で
もよく、塩基性ポリマーに結合する基は式−COYのみ
でなく、式CH2C!0NHR’−8O3R5(式中R
4は置換されている又は置換されていなりアルキル、ア
リール、又はアルキルアリールラデイカルな表わし%R
5は水素原子、又は液体と反応しないナトリウムのよう
な金属を表わす)でもよ^。 クロロスルホン化耐性ポリマーにスチレンを結合させて
得られるスチレンコポリマー支持体を使用する場合は、
イオン化光線を照射して結合させることが好ましい。こ
の場合クロロスルホン化耐性ポリマーをスチレン浴液に
入れて酸素ft言まな1/h空気中で、例えばコバルト
60を照射することも可能である。 この粉末の結合tは、溶液のスチレン濃度、溶媒の種類
、拡散時間、総照射奮そして照射速度を変えることによ
り、調節できる。照射後普通結合生成物ケ、例えばスチ
レンで次にアルコールで洗滌し、次に乾燥させる。 この結合粉末の調製方法は、粉末の表面にスチレンを結
合させ、適当な基を固定してから、抗■:C抗体に対す
る良好な親和性及び選択性を付与できるため、特に有効
である。 本発明の方8−は、血漿(特にA型血友病患者の血漿)
より取る液体の処理に特に夏用できる。この場合、こり
種の型の患者の血液の生体外精製に本発明の方法を使用
することが可能である。
の分離方法に関する。さらに詳しくは本発明は、凝固第
vl:o因子の特異抗体(すなわちA型血友病患者の血
漿中に存在する抗糧:C抗体)の選択的精製に使用可能
な、不溶性ポリマー又はコポリマー支持体に関する。′
5′なわち何度も輸血をうけたA型血友病患者では一般
的に、輸血された第■:0因子の凝固活性を中和する抗
■:C抗体が形成される。この抗体が存在すると重症に
なる。さらにA型血友病患者の出血な止めるためには、
普通血漿の交換が必要であり、この後直ちに通常のホメ
オスタシスを得るために直ちに第vl:C因子が注射さ
れる。患者の病状の程度によりこの治療はしばしば長期
間続ける必要がある。この患者血漿の必須成分を所期の
レベルで維持することが困離な状態においては、重大な
問題である。 さらに輸血回数が増加するにつれて、肝炎ウィルスやI
、AV/HTL’Vウィルスによる感染の危険が増加す
る。 さらにここ数年間、適当な支持体上に障害要素を吸着さ
せて血漿を直接精製することを目的とする研究が行われ
ている。B型血友病の場合は第■因子特異抗体(すなわ
ち抗■抗体)を、アガロースの共有結合したプロティン
Aにルンン(Nilsson)ら、Blood 、第5
8巻、AI(1981年7月)、p38−44に記載】
に吸着させてこの精製を行うことが可能である。プロテ
ィンAは免疫グロブリンのIPCF!i5分と反応し、
セファロースと結合している場合免疫グロブリン()′
4f単離するための(従って抗第■因子を単離するため
の)免疫吸着剤として使用可能である。しかしこうして
処理した血漿の総免疫グロブリン含量は本来の値の11
5以下であり、これが若干の問題となる。 さらに最近の研究の目的は所期の抗体、Wに血友病患者
の血液中に存在する抗体を選択的に分離できる免疫吸着
剤を得ることである。 抗%1[:C抗体についてはこれまでの研究では抗体な
定置的に分離できていない。従って抗橿:C抗体の固定
されたクロマトグラフィーデルによる選択的吸着を利用
してごの分離を行うことが考えられている。しかし抗V
11:C抗体は急速にその抗原活性を失うため、この方
法は実施不可能である。 ここ数年例えば血液のある成分に対し特別の親和性を与
えることを可能にするような、適当な固定化化合物の結
合した不活性の支持体な使用することについて研究が続
けられている。例えばフランス国特許83/10773
(1983年6月29日、シーイーニー(C!、El、
A、)が申請)は、トロンビンの分離と精製にこの型の
ポリマーを便うことを例示している。この場合支持体に
トロンビンに対する親和性を与えるために、アルギニン
、ニトロアルギニン又はそれらの誘導体(例えばメチル
エステル)がポリマー又はコポリマーに固定されてbる
。 発明の要約 本発明を1A型血友病患者の血液の血漿精製に用い得る
ものと同じ型の支持体(この方法により抗51:C抗体
を他の免疫グロブリンから選択的に分離可能なためンを
用いる、液体中の抗■:C抗体の分離方法に関する。 従って本発明は液体中に存在する抗[:Q抗体の分離方
法において: a)鎖の中に置換可能な官能基を有し、少なくともその
一部は式−(SO3)XM (式中Mは液体と反応しな
い金属であり、Xは金属Mの結合価を表わす)。 及び/又は式−SO2Y及び/又は−COY (式中Y
はアルギニン以外の −アミノ酸の、又はアルギニン以
外のα−アミノ酸誘導体のアミノ基から水素原子を除く
ことにより得られるラデイカルを表わす〕(これらは抗
[:(:!抗体に対する親和性と。 他の免疫グロブリンに比較して抗■:C抗体に対して選
択性を■する)により11換されたポリマー又はコポリ
マーより成る個体支持体に、その液体を接触させ、そし
て b)抗W:C抗体の吸着された支持体から液体を分離す
ることより成る、上記分離方法に関する。 他の免疫グロブリンに比較して抗vl:c抗体に対して
親和性及び選択性の良好な吸着剤を得るために、ラデイ
カルYは好ましくは式: %式% (式中、R″は −アミノ酸の側鎖であり、R2は水素
原子又は例えば1−5個の炭素原子な有するアルキル基
であり、基R1はC!OOH,NH2%OHそしてSR
基から選ばれる少なくとも1つの官能基を表わす)に一
致する。 使用可能な基Yの例としては、グルタミン酸、とVロキ
シプロリン、アラニン、フェニルアラニン、スレオニン
及びリジンより得られるものがある。好ましくは基Yは
グルタミン酸、とVロキシプロリン、スレオニン又はリ
シンからの基である。 本発明によれば、基Yの前駆体である −アミノ酸が数
個のアミノ基を含有する場合、このα−アミノ酸又ヲ工
その誘導体(ここから水素原子を除いて基Yを虫取する
)のアミン基はα位に存在するアミノ基である。 本発明によれば、−SO2Y、 −(so3)xM及ヒ
/又は−COYは炭化水素化鎖又は基(例えばCOY基
の場合はペプチド鎖)ff介してポリマーに結合できる
。 本発明によれば、使用可能なポリマー及びコポリマーは
、鎖にそってクロロスルホン酸と反応できる[1換可能
な基を有する個体物質である。このようなポリマーの例
としては架橋したポリスチレン、セルロースエステル、
セルロースエーテル、ポリビニルアセテート、ポリビニ
ルクロリド、ボリオインゾレン及びポリブタジェンがあ
る。又スチレンのコポリマー、ビニルアセテートのコポ
リマー、ビニルクロリドのコポリマー、インダノンのコ
ポリマー及びブタジェンのコポリマーも使用可能である
。又コポリマーとb5単語は塩基性ポリマーにビニルモ
ノマーを結合させて得られるコポリマー(例えばクロロ
スルホン化耐性ポリマーにスチレンを結合させて得られ
るスチレンコポリマー)=r4意味する。この場合クロ
ロスルホン化耐性塩基性ポリマーは、ポリオレフィン、
フッ素化ポリマー及びポリビニルクロリドから選ばれる
。 好ましくハ、スチレン又はスチレンコポリマーを用いる
。この場合ポリマー又はコポリマーに結合した基は2種
類であり、1つは式−SO2(式中Yは前記した意味を
有する)であり、他の1つは式−(SO3)x[(式中
Mは液体と反応しなか金属であり、Xは金属M(これは
普通ナトリウムである)の結合1曲である)である。 本発明は又カルボキシメチル化可能なポリマー及びコポ
リマー(例えばポリデキストランのような多糖)にも適
用される。 塩基性ポリマーがスチレン又はスチレンコポリマーであ
る本発明の支持体は、クロロスルホン酸との反応により
ポリマー又はコポリマーをクロロスルホン化する第一段
階と、ポリマー又はコポリマーに結合した一SO201
基の少なくとも一部−SO2Y基に変える第2段階より
成る工程により得られる。 ポリスチレンを使用する場合はクロロスルホン化反応は
以下の反応に従う: この反応はニトロメタンの結合した塩素化溶媒(例えば
ニトロメタンの結合したジクooメタン]より成る有機
浴媒中で実施することが有効である。 第2段階ではり0c1スルホニル21i −SO201
k’!、式: %式% (式中HAはα−アミノ酸の側鎖を、R2は水素原子又
はアルキルラデイカルを表わす)に一致する対応するα
−アミノ酸と反応させることによりY基に変換される。 この反応は下記の反応式に対応する: 図 − ロー悶 ■ 国 寓 口 この反応は、R2が水素原子である場合は周囲温度で水
−ジオキサン混合液中で実施され R2がアルキルラデ
イカルである場合は周囲温度より少し高い温度でジクロ
ロメタン中で実施される。 ポリスチレンの場合は反応の最後に下記の式の基が得ら
れる: Rよ の数は特に反応条件に依存する。良好な結果な得るため
にをヱ、−8O2Y又は−COY基に置換されるスチレ
ン基の数は10−30%であることが好ましい。 式−COYの基を有するポリマー又はコポリマーより成
る本発明の個体支持体は、カルポキシメチル化の第1段
階、適当なアミン又はベンゾルクロリ−を固定する第2
段階、ラデイカルYの得られるアミノ酸を固定する第3
段階そして第4のスルホ化段階より成る工程により得ら
れる。 この場合ポリマーは多糖(例えばポリデキストラン)で
もよく、塩基性ポリマーに結合する基は式−COYのみ
でなく、式CH2C!0NHR’−8O3R5(式中R
4は置換されている又は置換されていなりアルキル、ア
リール、又はアルキルアリールラデイカルな表わし%R
5は水素原子、又は液体と反応しないナトリウムのよう
な金属を表わす)でもよ^。 クロロスルホン化耐性ポリマーにスチレンを結合させて
得られるスチレンコポリマー支持体を使用する場合は、
イオン化光線を照射して結合させることが好ましい。こ
の場合クロロスルホン化耐性ポリマーをスチレン浴液に
入れて酸素ft言まな1/h空気中で、例えばコバルト
60を照射することも可能である。 この粉末の結合tは、溶液のスチレン濃度、溶媒の種類
、拡散時間、総照射奮そして照射速度を変えることによ
り、調節できる。照射後普通結合生成物ケ、例えばスチ
レンで次にアルコールで洗滌し、次に乾燥させる。 この結合粉末の調製方法は、粉末の表面にスチレンを結
合させ、適当な基を固定してから、抗■:C抗体に対す
る良好な親和性及び選択性を付与できるため、特に有効
である。 本発明の方8−は、血漿(特にA型血友病患者の血漿)
より取る液体の処理に特に夏用できる。この場合、こり
種の型の患者の血液の生体外精製に本発明の方法を使用
することが可能である。
以下本発明な非限定的態様と図面に関して詳細に記載す
る。図中: 第1図は、部分トロンボプラスチン時間(PTT )に
基づき、試料の抗糧:O抗体譲度を定量を可能にする標
準曲線を示す。 第2図及び第3図は、異なる支持体上の免疫グロブリン
と抗■:0抗体の吸着等温式を示す。 第4図は、本発明の方法を実施するためのカラム血漿精
製器の茸である。 第5図は、又別の血漿精製器の図である。 発明の詳細な説明 実施例1 : −5o2G1uと一8O3NA基を有す
るポリスチレン支持体の調製 a)クロロスルホン化ポリスチレンの調製粒径I D−
70μmの架橋したポリスチレンボールの18gを、1
44 Q mlのジクロロメタン中で周囲温度で5時間
膨潤させ、次に270 mlのジクロロメタンと227
mlのクロロスルホン酸の混合液を加える。この懸濁
液な周囲温度で25分攪拌し、原料樹脂を濾過した後、
これ?ジクロロメタンーゾキサン混合液中で注意深く洗
滌し、次に50゛Cで真空乾燥する。 次に以下の方法でクロロスルホン! (−SO201)
の濃度を定量する。200qのりaaスルホン化ポリス
チレンな40m1のIMNa□H中で還流しながら24
時間加水分解する。酸性化した後、放出さ江たC1−イ
オンを、銀指示電極な用いて0.1M O) AgNO
s溶液中で滴定する。 b)クロロスルホン基へのグルタミン酸の固定水とジオ
キサン(3:2)の混合液より成る溶媒中でグルタミン
酸を溶解させるため4Mのソーダを添加して−を9/1
0に調整してグルタミン酸溶液を調製する。次にあらか
じめ得たクロロスルホン化ポリスチレ710gを添加し
、2Mグ)ソーダを加えてpHff最初の9−10に維
持する。PHが一定の場合反応が完了する。次にポリマ
ーを濾過し、まず十分量の水で、矢に10”−2M17
)ソーダ、そして水で洗滌した後、真空中で乾1#!す
る。 矢に窒素の元素分析からポリマー中の一8O2G1uの
含量?定置する。又あらかじめ求めたクロロスルホン基
の言置と一8O2G1u基の言置からSO3Naの言量
を求める。こうして得られた結果を表に示す。 実施例2から8 : −8O2Ala、 −8O2Ph
eAla、 −8O20HPro。 −8O2Threo、 −8O2Y (Yはグルタミン
酸メチルから得られるラディカルを表わf)、−8O2
P r O又は−8O2L78基を胃するポリスチレン
支持体の調製実施例1a)で得られた様なりロロスルホ
ン化ポリスチレンを使用し、ここに実施PI 1 b
)と向様の方法をm9てアミノ酸又をヱ対応するアミノ
酸誘導体、すなわちアラニン(実施例2)、フェニルア
ラニン(実MfJ3)、ヒーロキシプロリン(実施例4
)、スレオニン(実施例5)、グルタミツ酸メチル(実
施例6)、プロリン(実mflJ7)又はリジン(実施
例8)を固定させる。前記した様にこうして得られる支
持体の−SO2Y及び−5o3N&基の含量を測定する
。結果な表に示す。 実施例9:本例では血友病患者の血漿中に存在する抗l
:C抗体を吸着するだめの、実施例1−8の支持体の使
用法を示す。 a)支持体の馴化と洗滌 血液中の蛋白に反応する可能性のある不純物な完全に除
去するために、実施例1−8の支持体をまず馴化させる
。次に支持体i11.5 Mの塩化ナトリウム、そして
1.0Mのクエン酸ナトリウム溶液で順番に洗滌する。 次にこの支持体をミカエリス緩衝液(F87.5 )中
で平衡化させ、濾過し、水で数回洗滌し真空中で乾燥さ
せる。この粒子をすりつぶすと、水中で膨潤させた粒子
の平均径(TAB型定量顕微鏡で測定)は5−10μm
の範囲にある。 b)試料の調製 まず血清試料を調製する:1つは抗■:C抗体を有する
血友病患者の血液から、そして他の1つは15人の普通
の対照患者から調製する。血[は3.8%のクエン酸三
ナトリウム溶液(クエン酸浴液1部に対して血液9部)
中に採取し、−70°Gで保存する。 次に血漿中の抗vm : a抗体の抗体価が640ベセ
スダ(Bethesda )単Q / mlである血友
病患者の血漿の免疫グロブリンな単離する。このために
血友病患者の血漿の繊維素を除いた後リン酸緩衝液(0
,005M、 M=6.5 )中で4℃で一晩透析する
。 得られた血清をDwhz 52セルロースカラムにかけ
、免疫グロブリンGを含有する画分を集め濃縮する。次
にこれを0.15 MのNaC1で十分に透析する。血
友病患者の免疫グロブリンの最終調製液(工gGa)は
、ペセスダ(BethesdeJ単tl、/v工gGO
)抗糧:C抗体活性な有している。 カスパー(0,K、 KA8PKR)らがベセスダ(B
ethesda)会議で記載した方法(”A more
uniformmeasurement of fa
ctor [1nhit)itors”、スロンボ・ヂ
アス11ヘモA/ (Thromb、Diath、 H
aemorrh、 )第34巻、869頁、1975年
)に従い抗■:C抗体濃度な測定する。この方法では抗
%’If:O抗体な含有する血漿濃縮液又は工gGの調
製物Q、1mlを、正常血漿l mlと37℃で2時間
インキュベートする。次にこの混合液の第1因子の凝血
促進活性な測定し、ミカエリス緩衝液と正常血漿をイン
キュベートさせた対照試験官の活性と比較する。 第糧因子の凝血促進作用は、第糧因子欠損ヒト血漿を基
質とし、前記した方法で調製した正常血漿ケスタンダー
ト(1σ/m1)として用いて、トロンボプラスチ7時
間(PTT)に基づき測定する。 2時間のインキュベーションで凝血促進活性の50%な
不活性化する電を1抗VIII:C抗体単位とする。従
ってペセスダ(Bethesda)単位で表示した抗v
ii:a抗体鏝度は、2時間のインキユバ−ジョンの間
に■:Cの065uを不活性化する対照血漿又は工gG
調製物の希釈率の逆数を測定することにより求められる
。 C)吸着試験 これらの試験は植々の濃度の50μmの工gGHを、実
施例1から7の支持体のうちの1つの懸濁液(支持体1
ml当たり2−10q)と、又はミカエリス緩衝液とイ
ンキュベートすることにより実施する。60分経過後工
gGatftむ混合液を遠心分離し、以下の方法に従い
上澄液の工g、a及び/又は抗vl:C抗体濃度を一1
1定する:1) 工CLプレート(工CLサイエンチフ
ィツク(Founta in Valley、カリフォ
ルニア州)が販売している)を用いて放射免疫拡散法に
より1g06度を測定する。測定すべき1gGm度によ
り低濃度又は極低濃度キットを使用する。測定に際して
1枚のプレートの上に工gG濃度が既知の2棟類のスタ
ンダード(それぞれ0.15と6η/m1)と、1g(
)Hな富有する4個の上澄液を処理した。又再現性なよ
くするため5.0μmの上澄液が各位置に正確に添加で
きるマイクロピペットを使用する。 さらに結果の偏りをなく丁ため、吸着前後の工gG濃度
に対応する試料を隣り合う2つの位置に置く。 2)部分トロンざプラスチン時間(PTT)と抗■:C
抗体濃度を関係づける標準曲線な用いて抗vl:C抗体
定量測定を行う。この標準曲線は抗VIII:C抗体濃
度が0−2ベセスダ(Bethescla )単(q
/ ml(IgGu調展物を希釈して得られる)の工g
GH調製物から得られる。標準曲線を得るために、抗■
:C抗体を含有する希釈率の異なる工gG希釈液を、ま
ず正常血漿と57°Cで2時間インキュベートシ2次に
1/10希釈して、この混合液の0.1m1p3.1m
lの血友病患者の血漿及び10分間活性化したケファリ
ンQ、i mlとインキュベートする。次に3.1ml
のaac12を添7JDした恢部分トロンボプラスチン
時間(PTT)を測定する。 抗vi : a抗体濃度が上昇すると丁ぐPTTが上昇
する。得られた結果は第1図に示す。この図は。 抗橿:C抗体濃度(07m1)の関数としてのPTT
(秒)の標準曲線を示す。 標準曲線を作成した後、上澄液について部分トロンボプ
ラスチン時間を測定し、標準曲線と希釈率から抗v1
: a抗体濃度を求める。 これらの方法により、吸着前の試料の最初の工gGと抗
vm : c抗体の濃度、及び吸着支持体に接触した後
の試料の工gGと抗V膳:C抗体の残存濃度を求めるこ
とができる。 jなわちミカエリス緩衝液と接触させた試料の工gGと
抗yl:c抗体濃度は、試料の最初のIgG及び抗vm
: c抗体濃度を2で割ったものに対応する。吸着支
持体に接触させた試料の工gGと抗VIII:C抗体濃
度は残存する工gG及び抗vi : c抗体濃度に対応
する。従ってここから異なる支持体に吸着された工gG
と抗[:O抗体級度を求めることができる。 第2図と第6図は、実施列1.2及び7の支持体に対応
する工gGと抗vm : a抗体の吸着等温線である。 曲線1は工gGの吸着に対応し、横軸には吸着前のIg
Gak度(■/ml)、そして縦軸には支持体に吸着さ
れた工gG濃度(〜/m1)がプロットしである。曲線
2は抗■:C抗体の等温吸着に対応し、横軸には吸着前
の抗vl:C抗体濃度(σ/ ml ) 、そして縦軸
には支持体に吸着された抗yl:a抗体濃度(07m1
)がプロットしである。工gGHσ、)具体的な活性を
考慮した目盛りにより2つの紋着線を直接比較すること
ができる。 これらの曲線に基づき、抗VI:(3抗体に対する吸着
等温線(2)の傾きと工gGに対する吸着等温線(1)
の関係を示jS1の値、及びこの2つの等温線間のプラ
トー状態での吸着値の関係を示j 82の値が求められ
る。支持体の抗vl: a抗体に対する選択性がゼロの
場合、この2つの吸着等温線はかさなり、Slと82は
1に近くなる。しかし選択性が高い場合は、Slと82
は高い値となる。 添付した表には、吸着試験中に得られたSl及び/又は
S2の値を、実施例1−8の支持体に変換しである。実
施例4.1.5及び8の支持体でそれぞれクロロスルホ
ン化ポリスチレンへのヒドロキシゾロリン、グルタミン
酸、スレオニン及びリジンの固定に対応して最も良い選
択性が得られている。実施例1の支持体の場合、抗%1
1:O抗体の60%が吸着され、xgGの吸51Fはわ
ずか16%であるという、良好な選択性が得られている
。実施例2及び3についても良好な結果が得られて藝る
。 しかし実施例6の場合81の匝は1より小さく、抗vl
:C抗体が選択的に吸着されないため良好な選択性は得
られていない。 すなわちグルタミン酸メチルは選択性は悪いが、グルタ
ミン酸は非常に良い選択性を有している。 これはYのラデイカルR1が11!注官能基の場合に良
好な結果が得られることを示している。同様にプロリン
で得られた結果はヒドロキシプロリンで得られた結果よ
りも悪く、これはプロリンのラデイカルR1がOH基で
あるためである。 すなわち固定されたアミノ酸の性質は結束乞大きく左右
する。 実施N 10 ニー5o3Na基のみを固定したポリス
チレン支持体 実施例1のように4m当駄/gの一8O2C1基を含む
クロロスルホン化ポリスチレンを調製した後、2 M
NaOHンーダソーを用いて60℃でり(2CZ、Cル
ホン基を加水分解した。クロロスルホン化したこの粉末
をソーダ溶液に24時間浸し、全ての−SO2C1基’
f−8O3Na基に変換サセタ。 こうしてv4襄した支持体を馴化させ実施例9a)のよ
うに洗滌し、実施例9と同じ条件で血友病、患者の血漿
中に存在する抗■:C抗体の吸着試験を行った。 実施例9と同じ条件で得られた吸着等温式に基づき、8
1.とS2の値を求めると、51=5.2で82=2.
7である。従ってこの支持体も抗■二C抗体の選択的a
*V実施するのに興味深い性質を有して論る。 本発明の支持体は第4図と第5図に示す精製器中で血漿
の精製用に使用できる。 血漿の連続的精製を示す第4図から明らかなように、精
製器は、本発明の吸着支持体を含むカラム1、精製すべ
き血液から血漿を分離するだめの細胞分離機3、そして
一方で(3で)処理されるべき血液の分離された細胞が
導入され、他方では精製された血漿が導入される捕集器
5より構成される。 この装置ではポンプ9と圧力測定手段11ケ備えた最初
のパイプTを用すて患者の血液8−′細胞分離機3に導
入し、ここで細胞はパイプ13により捕集器5に排出さ
れ、一方血漿はポンプ17を備えたパイプ15に導かれ
て、本発明の吸着支持体を含有するカラム1に入る。カ
ラム1を出ると精製血漿は、圧力測定手段21ff備え
たパイプ19により捕集器5に排出され、この捕集器は
又こσ)ように復元した血液の泡を防ぐための安全装置
となる。圧力測定手段25を荷するパイプ23により、
復元血液は患者の循環系に排出される。従って装置に血
液な導入するためのパイプ7と循環系に血液を戻丁ため
のパイプ23は患者の静脈に接続されている。 第5図に示す血漿を精製するための精製器では、患者血
液が装置に連続的に移動してくる間、g製は断続的に実
施される。第4図の精製器g) fqとんどの成分が出
ておりこれらは同様の意味を有している。この場合、細
胞分離機3からの血漿は、本発明の吸着支持体な含有す
る容器31と32中で断続的に精製される。この場合ポ
ンプ1Tで循環される血漿は回路から抽出され抽出弁1
8により容器31に導入される。容器31で精製された
後、血漿は再びパイプ16によりポンプ17の上流に導
入されるが、この開弁14は閉じたままである。 本発明の支持体は又第糧:C因子の精製に用いることも
できろ。この場合、支持体にまず抗vl:C抗体な富有
する血漿を接触させて抗体を吸着させる。次にこの抗体
が結合した支持体に、第vl:C因子を含有する液体を
接触させることにより、第1:C因子の精製に使用でき
る。
る。図中: 第1図は、部分トロンボプラスチン時間(PTT )に
基づき、試料の抗糧:O抗体譲度を定量を可能にする標
準曲線を示す。 第2図及び第3図は、異なる支持体上の免疫グロブリン
と抗■:0抗体の吸着等温式を示す。 第4図は、本発明の方法を実施するためのカラム血漿精
製器の茸である。 第5図は、又別の血漿精製器の図である。 発明の詳細な説明 実施例1 : −5o2G1uと一8O3NA基を有す
るポリスチレン支持体の調製 a)クロロスルホン化ポリスチレンの調製粒径I D−
70μmの架橋したポリスチレンボールの18gを、1
44 Q mlのジクロロメタン中で周囲温度で5時間
膨潤させ、次に270 mlのジクロロメタンと227
mlのクロロスルホン酸の混合液を加える。この懸濁
液な周囲温度で25分攪拌し、原料樹脂を濾過した後、
これ?ジクロロメタンーゾキサン混合液中で注意深く洗
滌し、次に50゛Cで真空乾燥する。 次に以下の方法でクロロスルホン! (−SO201)
の濃度を定量する。200qのりaaスルホン化ポリス
チレンな40m1のIMNa□H中で還流しながら24
時間加水分解する。酸性化した後、放出さ江たC1−イ
オンを、銀指示電極な用いて0.1M O) AgNO
s溶液中で滴定する。 b)クロロスルホン基へのグルタミン酸の固定水とジオ
キサン(3:2)の混合液より成る溶媒中でグルタミン
酸を溶解させるため4Mのソーダを添加して−を9/1
0に調整してグルタミン酸溶液を調製する。次にあらか
じめ得たクロロスルホン化ポリスチレ710gを添加し
、2Mグ)ソーダを加えてpHff最初の9−10に維
持する。PHが一定の場合反応が完了する。次にポリマ
ーを濾過し、まず十分量の水で、矢に10”−2M17
)ソーダ、そして水で洗滌した後、真空中で乾1#!す
る。 矢に窒素の元素分析からポリマー中の一8O2G1uの
含量?定置する。又あらかじめ求めたクロロスルホン基
の言置と一8O2G1u基の言置からSO3Naの言量
を求める。こうして得られた結果を表に示す。 実施例2から8 : −8O2Ala、 −8O2Ph
eAla、 −8O20HPro。 −8O2Threo、 −8O2Y (Yはグルタミン
酸メチルから得られるラディカルを表わf)、−8O2
P r O又は−8O2L78基を胃するポリスチレン
支持体の調製実施例1a)で得られた様なりロロスルホ
ン化ポリスチレンを使用し、ここに実施PI 1 b
)と向様の方法をm9てアミノ酸又をヱ対応するアミノ
酸誘導体、すなわちアラニン(実施例2)、フェニルア
ラニン(実MfJ3)、ヒーロキシプロリン(実施例4
)、スレオニン(実施例5)、グルタミツ酸メチル(実
施例6)、プロリン(実mflJ7)又はリジン(実施
例8)を固定させる。前記した様にこうして得られる支
持体の−SO2Y及び−5o3N&基の含量を測定する
。結果な表に示す。 実施例9:本例では血友病患者の血漿中に存在する抗l
:C抗体を吸着するだめの、実施例1−8の支持体の使
用法を示す。 a)支持体の馴化と洗滌 血液中の蛋白に反応する可能性のある不純物な完全に除
去するために、実施例1−8の支持体をまず馴化させる
。次に支持体i11.5 Mの塩化ナトリウム、そして
1.0Mのクエン酸ナトリウム溶液で順番に洗滌する。 次にこの支持体をミカエリス緩衝液(F87.5 )中
で平衡化させ、濾過し、水で数回洗滌し真空中で乾燥さ
せる。この粒子をすりつぶすと、水中で膨潤させた粒子
の平均径(TAB型定量顕微鏡で測定)は5−10μm
の範囲にある。 b)試料の調製 まず血清試料を調製する:1つは抗■:C抗体を有する
血友病患者の血液から、そして他の1つは15人の普通
の対照患者から調製する。血[は3.8%のクエン酸三
ナトリウム溶液(クエン酸浴液1部に対して血液9部)
中に採取し、−70°Gで保存する。 次に血漿中の抗vm : a抗体の抗体価が640ベセ
スダ(Bethesda )単Q / mlである血友
病患者の血漿の免疫グロブリンな単離する。このために
血友病患者の血漿の繊維素を除いた後リン酸緩衝液(0
,005M、 M=6.5 )中で4℃で一晩透析する
。 得られた血清をDwhz 52セルロースカラムにかけ
、免疫グロブリンGを含有する画分を集め濃縮する。次
にこれを0.15 MのNaC1で十分に透析する。血
友病患者の免疫グロブリンの最終調製液(工gGa)は
、ペセスダ(BethesdeJ単tl、/v工gGO
)抗糧:C抗体活性な有している。 カスパー(0,K、 KA8PKR)らがベセスダ(B
ethesda)会議で記載した方法(”A more
uniformmeasurement of fa
ctor [1nhit)itors”、スロンボ・ヂ
アス11ヘモA/ (Thromb、Diath、 H
aemorrh、 )第34巻、869頁、1975年
)に従い抗■:C抗体濃度な測定する。この方法では抗
%’If:O抗体な含有する血漿濃縮液又は工gGの調
製物Q、1mlを、正常血漿l mlと37℃で2時間
インキュベートする。次にこの混合液の第1因子の凝血
促進活性な測定し、ミカエリス緩衝液と正常血漿をイン
キュベートさせた対照試験官の活性と比較する。 第糧因子の凝血促進作用は、第糧因子欠損ヒト血漿を基
質とし、前記した方法で調製した正常血漿ケスタンダー
ト(1σ/m1)として用いて、トロンボプラスチ7時
間(PTT)に基づき測定する。 2時間のインキュベーションで凝血促進活性の50%な
不活性化する電を1抗VIII:C抗体単位とする。従
ってペセスダ(Bethesda)単位で表示した抗v
ii:a抗体鏝度は、2時間のインキユバ−ジョンの間
に■:Cの065uを不活性化する対照血漿又は工gG
調製物の希釈率の逆数を測定することにより求められる
。 C)吸着試験 これらの試験は植々の濃度の50μmの工gGHを、実
施例1から7の支持体のうちの1つの懸濁液(支持体1
ml当たり2−10q)と、又はミカエリス緩衝液とイ
ンキュベートすることにより実施する。60分経過後工
gGatftむ混合液を遠心分離し、以下の方法に従い
上澄液の工g、a及び/又は抗vl:C抗体濃度を一1
1定する:1) 工CLプレート(工CLサイエンチフ
ィツク(Founta in Valley、カリフォ
ルニア州)が販売している)を用いて放射免疫拡散法に
より1g06度を測定する。測定すべき1gGm度によ
り低濃度又は極低濃度キットを使用する。測定に際して
1枚のプレートの上に工gG濃度が既知の2棟類のスタ
ンダード(それぞれ0.15と6η/m1)と、1g(
)Hな富有する4個の上澄液を処理した。又再現性なよ
くするため5.0μmの上澄液が各位置に正確に添加で
きるマイクロピペットを使用する。 さらに結果の偏りをなく丁ため、吸着前後の工gG濃度
に対応する試料を隣り合う2つの位置に置く。 2)部分トロンざプラスチン時間(PTT)と抗■:C
抗体濃度を関係づける標準曲線な用いて抗vl:C抗体
定量測定を行う。この標準曲線は抗VIII:C抗体濃
度が0−2ベセスダ(Bethescla )単(q
/ ml(IgGu調展物を希釈して得られる)の工g
GH調製物から得られる。標準曲線を得るために、抗■
:C抗体を含有する希釈率の異なる工gG希釈液を、ま
ず正常血漿と57°Cで2時間インキュベートシ2次に
1/10希釈して、この混合液の0.1m1p3.1m
lの血友病患者の血漿及び10分間活性化したケファリ
ンQ、i mlとインキュベートする。次に3.1ml
のaac12を添7JDした恢部分トロンボプラスチン
時間(PTT)を測定する。 抗vi : a抗体濃度が上昇すると丁ぐPTTが上昇
する。得られた結果は第1図に示す。この図は。 抗橿:C抗体濃度(07m1)の関数としてのPTT
(秒)の標準曲線を示す。 標準曲線を作成した後、上澄液について部分トロンボプ
ラスチン時間を測定し、標準曲線と希釈率から抗v1
: a抗体濃度を求める。 これらの方法により、吸着前の試料の最初の工gGと抗
vm : c抗体の濃度、及び吸着支持体に接触した後
の試料の工gGと抗V膳:C抗体の残存濃度を求めるこ
とができる。 jなわちミカエリス緩衝液と接触させた試料の工gGと
抗yl:c抗体濃度は、試料の最初のIgG及び抗vm
: c抗体濃度を2で割ったものに対応する。吸着支
持体に接触させた試料の工gGと抗VIII:C抗体濃
度は残存する工gG及び抗vi : c抗体濃度に対応
する。従ってここから異なる支持体に吸着された工gG
と抗[:O抗体級度を求めることができる。 第2図と第6図は、実施列1.2及び7の支持体に対応
する工gGと抗vm : a抗体の吸着等温線である。 曲線1は工gGの吸着に対応し、横軸には吸着前のIg
Gak度(■/ml)、そして縦軸には支持体に吸着さ
れた工gG濃度(〜/m1)がプロットしである。曲線
2は抗■:C抗体の等温吸着に対応し、横軸には吸着前
の抗vl:C抗体濃度(σ/ ml ) 、そして縦軸
には支持体に吸着された抗yl:a抗体濃度(07m1
)がプロットしである。工gGHσ、)具体的な活性を
考慮した目盛りにより2つの紋着線を直接比較すること
ができる。 これらの曲線に基づき、抗VI:(3抗体に対する吸着
等温線(2)の傾きと工gGに対する吸着等温線(1)
の関係を示jS1の値、及びこの2つの等温線間のプラ
トー状態での吸着値の関係を示j 82の値が求められ
る。支持体の抗vl: a抗体に対する選択性がゼロの
場合、この2つの吸着等温線はかさなり、Slと82は
1に近くなる。しかし選択性が高い場合は、Slと82
は高い値となる。 添付した表には、吸着試験中に得られたSl及び/又は
S2の値を、実施例1−8の支持体に変換しである。実
施例4.1.5及び8の支持体でそれぞれクロロスルホ
ン化ポリスチレンへのヒドロキシゾロリン、グルタミン
酸、スレオニン及びリジンの固定に対応して最も良い選
択性が得られている。実施例1の支持体の場合、抗%1
1:O抗体の60%が吸着され、xgGの吸51Fはわ
ずか16%であるという、良好な選択性が得られている
。実施例2及び3についても良好な結果が得られて藝る
。 しかし実施例6の場合81の匝は1より小さく、抗vl
:C抗体が選択的に吸着されないため良好な選択性は得
られていない。 すなわちグルタミン酸メチルは選択性は悪いが、グルタ
ミン酸は非常に良い選択性を有している。 これはYのラデイカルR1が11!注官能基の場合に良
好な結果が得られることを示している。同様にプロリン
で得られた結果はヒドロキシプロリンで得られた結果よ
りも悪く、これはプロリンのラデイカルR1がOH基で
あるためである。 すなわち固定されたアミノ酸の性質は結束乞大きく左右
する。 実施N 10 ニー5o3Na基のみを固定したポリス
チレン支持体 実施例1のように4m当駄/gの一8O2C1基を含む
クロロスルホン化ポリスチレンを調製した後、2 M
NaOHンーダソーを用いて60℃でり(2CZ、Cル
ホン基を加水分解した。クロロスルホン化したこの粉末
をソーダ溶液に24時間浸し、全ての−SO2C1基’
f−8O3Na基に変換サセタ。 こうしてv4襄した支持体を馴化させ実施例9a)のよ
うに洗滌し、実施例9と同じ条件で血友病、患者の血漿
中に存在する抗■:C抗体の吸着試験を行った。 実施例9と同じ条件で得られた吸着等温式に基づき、8
1.とS2の値を求めると、51=5.2で82=2.
7である。従ってこの支持体も抗■二C抗体の選択的a
*V実施するのに興味深い性質を有して論る。 本発明の支持体は第4図と第5図に示す精製器中で血漿
の精製用に使用できる。 血漿の連続的精製を示す第4図から明らかなように、精
製器は、本発明の吸着支持体を含むカラム1、精製すべ
き血液から血漿を分離するだめの細胞分離機3、そして
一方で(3で)処理されるべき血液の分離された細胞が
導入され、他方では精製された血漿が導入される捕集器
5より構成される。 この装置ではポンプ9と圧力測定手段11ケ備えた最初
のパイプTを用すて患者の血液8−′細胞分離機3に導
入し、ここで細胞はパイプ13により捕集器5に排出さ
れ、一方血漿はポンプ17を備えたパイプ15に導かれ
て、本発明の吸着支持体を含有するカラム1に入る。カ
ラム1を出ると精製血漿は、圧力測定手段21ff備え
たパイプ19により捕集器5に排出され、この捕集器は
又こσ)ように復元した血液の泡を防ぐための安全装置
となる。圧力測定手段25を荷するパイプ23により、
復元血液は患者の循環系に排出される。従って装置に血
液な導入するためのパイプ7と循環系に血液を戻丁ため
のパイプ23は患者の静脈に接続されている。 第5図に示す血漿を精製するための精製器では、患者血
液が装置に連続的に移動してくる間、g製は断続的に実
施される。第4図の精製器g) fqとんどの成分が出
ておりこれらは同様の意味を有している。この場合、細
胞分離機3からの血漿は、本発明の吸着支持体な含有す
る容器31と32中で断続的に精製される。この場合ポ
ンプ1Tで循環される血漿は回路から抽出され抽出弁1
8により容器31に導入される。容器31で精製された
後、血漿は再びパイプ16によりポンプ17の上流に導
入されるが、この開弁14は閉じたままである。 本発明の支持体は又第糧:C因子の精製に用いることも
できろ。この場合、支持体にまず抗vl:C抗体な富有
する血漿を接触させて抗体を吸着させる。次にこの抗体
が結合した支持体に、第vl:C因子を含有する液体を
接触させることにより、第1:C因子の精製に使用でき
る。
第1図は、部分トロンざプラスチン時間(PTT )に
基づき、試料の抗vm : a抗体濃度な定置するだめ
の標準曲線な示す。 第2図及び第6図は、異なる支持体上の免疫グロブリン
と抗v11:C抗体の吸着等温式を示す。 第4図は、本発明の方法?実施するだめのカラム血漿N
製器の図である。 第5図は、文例の血漿精製器の図である。
基づき、試料の抗vm : a抗体濃度な定置するだめ
の標準曲線な示す。 第2図及び第6図は、異なる支持体上の免疫グロブリン
と抗v11:C抗体の吸着等温式を示す。 第4図は、本発明の方法?実施するだめのカラム血漿N
製器の図である。 第5図は、文例の血漿精製器の図である。
Claims (13)
- (1)液体中に存在する抗VIII:C抗体の分離方法にお
いて: a)鎖の中に置換可能な官能基を有し、少なくともその
一部は式−(SO_3)XM(式中、Mは液体と反応し
ない金属であり、Xは金属Mの結合価を表わす)、及び
/又は式−SO_2Y及び/又は−COY(式中、Yは
アルギニン以外の−アミノ酸の、又はアルギニン以外の
α−アミノ酸誘導体のアミノ基から水素原子を除くこと
により得られる基を表わす〕(これらは抗VIII:C抗体
に対する新和性と、他の免疫グロブリンに比較して抗V
III:C抗体に対して選択性を有する)により置換され
たポリマー又はコポリマーより成る固体支持体に、その
液体を接触させ、そして b)抗VIII:C抗体を吸着させた支持体から液体を分離
することより成る、上記分離方法。 - (2)基Yは式: ▲数式、化学式、表等があります▼ (式中、R^1はα−アミノ酸の側鎖を表わし、R^2
は水素原子又はアルキル基を表わし、基R^1は官能基
COOH、NH_2、OH及びSHから選ばれる官能基
の1つである)である、特許請求の範囲第1項に記載の
方法。 - (3)基Yはグルタミン酸のアミノ基から水素原子を除
くことにより得られる、特許請求の範囲第1項記載の方
法。 - (4)基Yはヒドロキシプロリンのアミノ基から水素原
子を除くことにより得られる、特許請求の範囲第1項に
記載の方法。 - (5)基Yはスレオニンのアミノ基から水素原子を除く
ことにより得られる、特許請求の範囲第1項に記載の方
法。 - (6)基Yをエアラニン、フェニルアラニン及びリジン
から選ばれるアミノ酸のアミノ基から水素原子を除くこ
とにより得られる、特許請求の範囲第1項に記載の方法
。 - (7)支持体は、式−SO_2Y(式中、Yは特許請求
の範囲第1項から第6項までのいずれか1項に記載の意
味を有する)と式−(SO_3)XM(式中、Mは液体
と反応しない金属であり、Xは金属Mの結合価を表わす
)の基が結合したポリスチレン又はスチレンコポリマー
より構成される、特許請求の範囲第1項から第6項まで
のいずれか1項に記載の方法。 - (8)スチレンコポリマーは、スチレンの結合したクロ
ロスルホン化耐性ポリマーにより構成される、特許請求
の範囲第7項に記載の方法。 - (9)クロロスルホン化耐性ポリマーは、ポリオレフィ
ン、フッ素化ポリマー及びポリビニルクロリドより選ば
れる、特許請求の範囲第8項に記載の方法。 - (10)支持体は、式−COY(式中、Yは特許請求の
範囲第1項から第6項までのいずれか1項に記載の意味
を有する)、及び式CH_2CONHR^4−SO_3
R^5(式中、R^4は置換されている又は置換されて
いないアルキル、アリール、又はアルキルアリールを表
わし、R^5を水素原子又は、液体と反応しない金属を
表わす)の結合した多糖により構成される、特許請求の
範囲第1項から第6項までのいずれか1項に記載の方法
。 - (11)多糖はポリデキストランである、特許請求の範
囲第10項に記載の方法。 - (12)液体は血漿である、特許請求の範囲第1項から
第11項までのいずれか1項に記載の方法。 - (13)特許請求の範囲第1項から第12項までのいず
れか1項に記載の方法の、A型血友病患者の血液の生体
外精製への応用。
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---|---|---|---|---|
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FR2816621A1 (fr) * | 2000-11-13 | 2002-05-17 | Bioracs | Resines de polystyrene fonctionnalise par des groupements methyl ester de la l-tyrosine et leurs applications |
US8571014B2 (en) * | 2010-03-02 | 2013-10-29 | Vitesse Semiconductor Corporation | Distributed packet-based timestamp engine |
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FR2548193B1 (fr) * | 1983-06-29 | 1985-10-18 | Commissariat Energie Atomique | Produit constitue par un polymere ou un copolymere comportant dans sa chaine des groupes presentant une affinite vis-a-vis de la thrombine, son procede de preparation et son utilisation pour la separation et la purification de la thrombine |
US4569967A (en) * | 1983-10-24 | 1986-02-11 | The Salk Institute For Biological Studies | Synthesis of N-substituted peptide amides |
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-
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- 1986-05-27 EP EP86401115A patent/EP0203865B1/fr not_active Expired - Lifetime
- 1986-05-30 JP JP61125580A patent/JPH0720983B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 1986-05-30 ES ES555555A patent/ES8705123A1/es not_active Expired
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1997045402A1 (fr) * | 1996-05-24 | 1997-12-04 | Ono Pharmaceutical Co., Ltd. | Derives de phenylsulfonamide |
EP0915086A4 (en) * | 1996-05-24 | 2001-01-17 | Ono Pharmaceutical Co | PHENYLSULFONAMIDE DERIVATIVES |
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Publication number | Publication date |
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ES555555A0 (es) | 1987-04-16 |
ES8705123A1 (es) | 1987-04-16 |
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FR2582815B1 (fr) | 1989-04-07 |
EP0203865B1 (fr) | 1992-03-25 |
DE3684510D1 (de) | 1992-04-30 |
FR2582815A1 (fr) | 1986-12-05 |
JPH0720983B2 (ja) | 1995-03-08 |
CA1288046C (en) | 1991-08-27 |
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