JPS62138188A - パ−オキシダ−ゼおよびその製造法 - Google Patents
パ−オキシダ−ゼおよびその製造法Info
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- JPS62138188A JPS62138188A JP27945385A JP27945385A JPS62138188A JP S62138188 A JPS62138188 A JP S62138188A JP 27945385 A JP27945385 A JP 27945385A JP 27945385 A JP27945385 A JP 27945385A JP S62138188 A JPS62138188 A JP S62138188A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
パーオキシダーゼは、過酸化水素などの存在干て有機化
合物を酸化」−る酵素であり、酵素反応が鋭敏なことか
ら、臨床検査用試薬や化学分(17用試・す3.3Sら
(、冒よモノクロナール抗体と結合させた特5°4的ム
゛R;j’(物質の検出用試薬、あるい!J: rJ゛
機化金化合物化反応を・行なう]\イオリアクターなど
に使用される11’i、要な酵素てある。 土ノニ、酵
素免疫試験法におiする標識酵素と1−2てち使用さイ
1ている。 本発明は、植物組織培谷法を参り用したパーオキシダー
ゼの製造法に関するt)のである3、
合物を酸化」−る酵素であり、酵素反応が鋭敏なことか
ら、臨床検査用試薬や化学分(17用試・す3.3Sら
(、冒よモノクロナール抗体と結合させた特5°4的ム
゛R;j’(物質の検出用試薬、あるい!J: rJ゛
機化金化合物化反応を・行なう]\イオリアクターなど
に使用される11’i、要な酵素てある。 土ノニ、酵
素免疫試験法におiする標識酵素と1−2てち使用さイ
1ている。 本発明は、植物組織培谷法を参り用したパーオキシダー
ゼの製造法に関するt)のである3、
従来、旧訳の如き試薬等に使用されるパーオキシダーゼ
としては、その給椋としてi、+7ら1フサビダイコン
が用いられ、通常に栽培された該植物体から抽出するこ
とにより製造されていた。 また、ル1!ネレ−ノサ
ピダイコンか通常の農業的栽培法によると、天候、地域
、収穫、時期等によりその生産性及び品質が不安定にな
り、多量生産のためには広い農地を必要とするという問
題点があったが、これを解消するため、ワサビダイコン
属に属する植物を起源とし、この組織片を組織培養して
得た培養物からパーオキシダーゼを採取4゛る方法(特
開昭59、−、28473号)も知られている。
としては、その給椋としてi、+7ら1フサビダイコン
が用いられ、通常に栽培された該植物体から抽出するこ
とにより製造されていた。 また、ル1!ネレ−ノサ
ピダイコンか通常の農業的栽培法によると、天候、地域
、収穫、時期等によりその生産性及び品質が不安定にな
り、多量生産のためには広い農地を必要とするという問
題点があったが、これを解消するため、ワサビダイコン
属に属する植物を起源とし、この組織片を組織培養して
得た培養物からパーオキシダーゼを採取4゛る方法(特
開昭59、−、28473号)も知られている。
パーオキシダーゼはワサビダイコン、ダイコン、カブな
ど植物界に広く存在するが、工業的生産には、パーオキ
シダーゼ含晴が高いことから専らワサビダイコンを使用
し、これに依存している。 本発明者らは、ワサビダイコン以外の植物体から高収率
でパーオキシダーゼを生産する方法を提供することを目
的とするものであり、しかも、天候・地域・収穫・時期
等に左右され4ゞ、栽培のための広い農地を必要とせず
、人為的に管理された条件下で、生産性及び品質が常に
安定的に生産されるパーオキシダーゼ及びその製造法を
提供オろことを目的と一4′るちのである5、
ど植物界に広く存在するが、工業的生産には、パーオキ
シダーゼ含晴が高いことから専らワサビダイコンを使用
し、これに依存している。 本発明者らは、ワサビダイコン以外の植物体から高収率
でパーオキシダーゼを生産する方法を提供することを目
的とするものであり、しかも、天候・地域・収穫・時期
等に左右され4ゞ、栽培のための広い農地を必要とせず
、人為的に管理された条件下で、生産性及び品質が常に
安定的に生産されるパーオキシダーゼ及びその製造法を
提供オろことを目的と一4′るちのである5、
【問題点
を解決4゛ろ八めの丁・没】 本発明者らは、植物体のパーオキシダーゼ生産効率を改
善するため、植物体の組織j11または細胞からカルス
(無定形細胞塊)を誘導し、カルスを培養−4゛ろこと
によって生産されるパーオキシダーゼに9いて研究を行
ったところ、多種の植物体のうち、ヨ・”J 41゛イ
(益菜、学名;lp。 moea aquaLica Forsk)の植物体組
織片または細胞から誘導したカルスが、培養によ−、て
パーオキシダーゼを高率で生産することを1)シい出(
−7、本発明を完成するに〒−)たものである。 すなわち、本発明は、ヨウサイ(4菜、学名;Tpom
□ea aquatiea Forsk)の植物体から
分離1.た組織片または細胞を栄養培地に培養し、得ら
れた培養物からバーオギンダーゼを採取することを特徴
とするパーオキシダーゼの製造法であり、また、ヨウサ
イ(維菜)の植物体から分離した組織片または細胞を栄
養培地に培養し、得られた培養物から採取されるパーオ
キシダーゼである。 本発明で用いられるヨウサイ(#l菜、学名; Ipo
moeaaquatica Forsk)は、ヒルガオ
科に属4″ろ植物であり、アザガオナ、竹葉菜などども
呼ばれ、英名をウォーター・コンポルプラス(Wate
r−Convolvulus)という1−例えば、「食
用植物図説J(1970,6,15)、女子栄養大学出
版部、p、117]。 呼ばれている。 専ら、東南アジア諸国(特にタイ国)
や中国においてl]常の食用に供されている野菜の一種
であるが、この植物体にパーオキシダーゼ活性を有する
酵素が含まれていることは、従来、全く知られていなか
った。 4一 本発明者らは、更にこのヨウサイの芽ばえ植物体につい
ても研究を進めたところ、茎部、条部にはパーオキシダ
ーゼ活性は認められなかったが、根部に微ti1のパー
オキシダーゼ活性が認められ、ま人−ヨウサイの植物体
の各部位から誘導して得たカルスには強))なパーオキ
シダーゼ活性を有する酵素が含(了されていることを発
見j、た3、本発明は、かかる新発見に11(、づくち
のである。 本発明で述べろ組織片または細胞を栄養培地に培養し得
られた培養物とは、以下に述べるように、植物体の組培
地成分の混合物を示すものである。 本発明において、ヨウサイの植物体からカルスを誘導す
るには、通常の植物組織培養法によ−)で実施−4゛る
こと 1ができる。 例えば栄養培地としては、1表
1−1に示した組成の培地を使用することができる。 植物ホルモンとしては、インドール酢酸、インドール酪
酸、ナフタレン酢酸、2.4ジクロロフエノキシ酢酸な
どが適宜利用される1、 」[た、−’、l゛、r l
・カイ、〕−ンとしては、カイネチン、ペンヂルアデー
ンなとが使用できる。 また、これらの植物ホルモンやサイ)・カイエンの組合
わせによって、増殖ヤ1をもったカルスを誘導するごと
ができる。 増殖性のカルスの培養には、[−表 1]
に示した組成の培地で6.1;いか、史に増殖性を改善
−・1゛るためには、ジャカイモ抽出液、麦牛抽出液、
酵母抽出液、カゼイン加水分解物などの天然イー+’[
栄負隙を添加−4゛ろことか有効である。 主人二る炭
素源と1−2では、ブドウ糖、ソー1糖などが用いられ
、窒素源にはアンモニア態窒累、硝酸態窒素が植物細胞
に、1:り効率的に吸収される。 培養温度は20〜3
5℃で操作できるが、好ましくは28〜32°Cてあ培
養してiすたカルス等の培養物から、酵素の抽出には、
機械的、あるいは超音波によって細胞を破砕し、水溶液
として抽出することで回収される。 抽出液からの酵素
の精製は、通常の生化学研究で用いられている手段、す
なわち、陰イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾過ク
ロマトグラフィー、等電点電気泳動クロマトグラフィー
などの組合わせによって行うことがiiJ能である。 次に、本発明の方法を工程を追って説明する。 a、無菌的な状態で成育した植物体芽ばえの調製。 75%エタノール水溶液に数秒浸漬したヨウサイの種子
を、殺菌水で洗浄し、ペトリディッンコ中の殺菌水に−
・夜浸漬して水を吸収させる。 この処理により、種子
は膨潤し、発芽が迅速に行なわれるようになる。 つい
で種子を01%ベンザルコニウムクロライド(市販の殺
菌剤)液に2分間浸漬して、種子に4=1着している微
生物を殺菌する。 ごれを殺菌水でよく洗浄j、への」
C1史に1%次+111塩累酸すトリウムに081%の
界面活性剤ツイーン20を加えた殺菌剤液によ−て30
分間処理12、種r−を完全に殺菌する。 あらかじめ、ふた(=1広[−1ヒンし1表・1]の組
成の培地に0.8%寒天を加えて殺菌調製した寒天培地
を作成しておき、無菌的操作によ−)て、殺菌処理をし
たヨウサイの種子を播種する9、 こA1を28℃の恒
温室で蛍光灯のもとて1週間放置4゛るごとによ−)で
、無菌的にヨウサイの飼ばえを調製することができる。 b、植物由来のカルスの誘導 表1に示した組成の培地に、植物ポル佇ンとして、ナフ
タレン酊I酸I XIF”M、サイ!・カイエンと17
で、ペンデル)′アニンlXl0−’ た培地をべl・リディソンコに分注1〜て固化し2、こ
れに無菌的に;J.’J製し1人Z R −、’t 4
1°イの牛ばえの切断片を移殖したのち、温度28°C
の恒温室において暗所で培養を行う。 1週間から1
0日後に、植物切片の切り口より、細胞が増殖し、カル
スを形成する。 このカルスを、適宜、同じ組成の培地
に継代ずれば、カルスを大きく育てることが可能である
。 C,カルスの増殖培養 誘導したカルスを[表・l]に示した組成の培地にナフ
タレン酢酸lXl0−5〜I X to−’M、ペンデ
ルアデニンlX10”−5〜IxlO−6M、寒天0.
8%を含む培地に移植し、暗所にて、温度25〜32℃
、好ましくは、28℃で培養を行うことによって、カル
スの増殖培養ができる。 d、パーオキノダーゼ含有カルスの調製カルスの増殖培
養を行ったのら、更に培養を継続すると、カルスの増殖
は次第に低下すると共に、カルスは淡い褐色のやや固い
細胞集塊に分化する。 このようにして分化した細胞集塊中に(」、パーオキシ
ダーゼの活性が生成している。 e、パーオキシダーゼの分析 淡い褐色の細胞集塊をブレンダーなどによって機械的に
破砕したの1″)、石英砂と共に磨砕する。 これを5
0mMリン酸緩衝液(111116,7)によって抽出
したのち遠心分離法によ−)で細胞抽出液を採取オろ。 パーオキシダーゼ活性の測定法は、常法[例えば、山
田原2編著「植物細胞培養マユ5アルJ、(1984,
10,1)講談社、 p、85]により行うことができ
る。 研究用試薬として市販されているパーオキシダー
ゼ標品(ノグマ社製)を標べ「(とじて、濃度を算出す
る。 f、パーオキソダーゼの単離精製 培養して得た細胞集塊をブレンダーで破砕したのち、石
英砂と共に磨砕し、50mMリン酸緩衝液(pH6゜7
)により抽出する。 これを硫安塩析法により80%硫
安沈澱分画を遠心分離法により調製する。 少量の水に
溶解し、50mMリン酸緩衝液に対して透析して脱塩す
る。 これを陰イオン交換樹脂を用いたクロマトグラフ
ィーにかけてパーオキシダーゼの活性分画を採取し、更
に濃縮した後に、ゲル濾過クロマトグラフィーにより精
製を行い、パーオキシダーゼ活性の濃縮された分画を取
得する。 これらの操作は、酵素や蛋白質の精製の常法
に、につで行うことができる。 以」二の如くして、ヨウサイの芽ばえ植物体の各部位か
ら誘導・培養されたカルスについて、採取された各パー
オキシダーゼ(POと略記)含有量を1表・2]に示す
。 以下に、実施例を挙げて本発明を具体的に説明するが、
この実施例、および−1−述の説明「a〜1′」らは単
なる例示であって、本発明を限定4−るものでiJ:
j*:い。
を解決4゛ろ八めの丁・没】 本発明者らは、植物体のパーオキシダーゼ生産効率を改
善するため、植物体の組織j11または細胞からカルス
(無定形細胞塊)を誘導し、カルスを培養−4゛ろこと
によって生産されるパーオキシダーゼに9いて研究を行
ったところ、多種の植物体のうち、ヨ・”J 41゛イ
(益菜、学名;lp。 moea aquaLica Forsk)の植物体組
織片または細胞から誘導したカルスが、培養によ−、て
パーオキシダーゼを高率で生産することを1)シい出(
−7、本発明を完成するに〒−)たものである。 すなわち、本発明は、ヨウサイ(4菜、学名;Tpom
□ea aquatiea Forsk)の植物体から
分離1.た組織片または細胞を栄養培地に培養し、得ら
れた培養物からバーオギンダーゼを採取することを特徴
とするパーオキシダーゼの製造法であり、また、ヨウサ
イ(維菜)の植物体から分離した組織片または細胞を栄
養培地に培養し、得られた培養物から採取されるパーオ
キシダーゼである。 本発明で用いられるヨウサイ(#l菜、学名; Ipo
moeaaquatica Forsk)は、ヒルガオ
科に属4″ろ植物であり、アザガオナ、竹葉菜などども
呼ばれ、英名をウォーター・コンポルプラス(Wate
r−Convolvulus)という1−例えば、「食
用植物図説J(1970,6,15)、女子栄養大学出
版部、p、117]。 呼ばれている。 専ら、東南アジア諸国(特にタイ国)
や中国においてl]常の食用に供されている野菜の一種
であるが、この植物体にパーオキシダーゼ活性を有する
酵素が含まれていることは、従来、全く知られていなか
った。 4一 本発明者らは、更にこのヨウサイの芽ばえ植物体につい
ても研究を進めたところ、茎部、条部にはパーオキシダ
ーゼ活性は認められなかったが、根部に微ti1のパー
オキシダーゼ活性が認められ、ま人−ヨウサイの植物体
の各部位から誘導して得たカルスには強))なパーオキ
シダーゼ活性を有する酵素が含(了されていることを発
見j、た3、本発明は、かかる新発見に11(、づくち
のである。 本発明で述べろ組織片または細胞を栄養培地に培養し得
られた培養物とは、以下に述べるように、植物体の組培
地成分の混合物を示すものである。 本発明において、ヨウサイの植物体からカルスを誘導す
るには、通常の植物組織培養法によ−)で実施−4゛る
こと 1ができる。 例えば栄養培地としては、1表
1−1に示した組成の培地を使用することができる。 植物ホルモンとしては、インドール酢酸、インドール酪
酸、ナフタレン酢酸、2.4ジクロロフエノキシ酢酸な
どが適宜利用される1、 」[た、−’、l゛、r l
・カイ、〕−ンとしては、カイネチン、ペンヂルアデー
ンなとが使用できる。 また、これらの植物ホルモンやサイ)・カイエンの組合
わせによって、増殖ヤ1をもったカルスを誘導するごと
ができる。 増殖性のカルスの培養には、[−表 1]
に示した組成の培地で6.1;いか、史に増殖性を改善
−・1゛るためには、ジャカイモ抽出液、麦牛抽出液、
酵母抽出液、カゼイン加水分解物などの天然イー+’[
栄負隙を添加−4゛ろことか有効である。 主人二る炭
素源と1−2では、ブドウ糖、ソー1糖などが用いられ
、窒素源にはアンモニア態窒累、硝酸態窒素が植物細胞
に、1:り効率的に吸収される。 培養温度は20〜3
5℃で操作できるが、好ましくは28〜32°Cてあ培
養してiすたカルス等の培養物から、酵素の抽出には、
機械的、あるいは超音波によって細胞を破砕し、水溶液
として抽出することで回収される。 抽出液からの酵素
の精製は、通常の生化学研究で用いられている手段、す
なわち、陰イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾過ク
ロマトグラフィー、等電点電気泳動クロマトグラフィー
などの組合わせによって行うことがiiJ能である。 次に、本発明の方法を工程を追って説明する。 a、無菌的な状態で成育した植物体芽ばえの調製。 75%エタノール水溶液に数秒浸漬したヨウサイの種子
を、殺菌水で洗浄し、ペトリディッンコ中の殺菌水に−
・夜浸漬して水を吸収させる。 この処理により、種子
は膨潤し、発芽が迅速に行なわれるようになる。 つい
で種子を01%ベンザルコニウムクロライド(市販の殺
菌剤)液に2分間浸漬して、種子に4=1着している微
生物を殺菌する。 ごれを殺菌水でよく洗浄j、への」
C1史に1%次+111塩累酸すトリウムに081%の
界面活性剤ツイーン20を加えた殺菌剤液によ−て30
分間処理12、種r−を完全に殺菌する。 あらかじめ、ふた(=1広[−1ヒンし1表・1]の組
成の培地に0.8%寒天を加えて殺菌調製した寒天培地
を作成しておき、無菌的操作によ−)て、殺菌処理をし
たヨウサイの種子を播種する9、 こA1を28℃の恒
温室で蛍光灯のもとて1週間放置4゛るごとによ−)で
、無菌的にヨウサイの飼ばえを調製することができる。 b、植物由来のカルスの誘導 表1に示した組成の培地に、植物ポル佇ンとして、ナフ
タレン酊I酸I XIF”M、サイ!・カイエンと17
で、ペンデル)′アニンlXl0−’ た培地をべl・リディソンコに分注1〜て固化し2、こ
れに無菌的に;J.’J製し1人Z R −、’t 4
1°イの牛ばえの切断片を移殖したのち、温度28°C
の恒温室において暗所で培養を行う。 1週間から1
0日後に、植物切片の切り口より、細胞が増殖し、カル
スを形成する。 このカルスを、適宜、同じ組成の培地
に継代ずれば、カルスを大きく育てることが可能である
。 C,カルスの増殖培養 誘導したカルスを[表・l]に示した組成の培地にナフ
タレン酢酸lXl0−5〜I X to−’M、ペンデ
ルアデニンlX10”−5〜IxlO−6M、寒天0.
8%を含む培地に移植し、暗所にて、温度25〜32℃
、好ましくは、28℃で培養を行うことによって、カル
スの増殖培養ができる。 d、パーオキノダーゼ含有カルスの調製カルスの増殖培
養を行ったのら、更に培養を継続すると、カルスの増殖
は次第に低下すると共に、カルスは淡い褐色のやや固い
細胞集塊に分化する。 このようにして分化した細胞集塊中に(」、パーオキシ
ダーゼの活性が生成している。 e、パーオキシダーゼの分析 淡い褐色の細胞集塊をブレンダーなどによって機械的に
破砕したの1″)、石英砂と共に磨砕する。 これを5
0mMリン酸緩衝液(111116,7)によって抽出
したのち遠心分離法によ−)で細胞抽出液を採取オろ。 パーオキシダーゼ活性の測定法は、常法[例えば、山
田原2編著「植物細胞培養マユ5アルJ、(1984,
10,1)講談社、 p、85]により行うことができ
る。 研究用試薬として市販されているパーオキシダー
ゼ標品(ノグマ社製)を標べ「(とじて、濃度を算出す
る。 f、パーオキソダーゼの単離精製 培養して得た細胞集塊をブレンダーで破砕したのち、石
英砂と共に磨砕し、50mMリン酸緩衝液(pH6゜7
)により抽出する。 これを硫安塩析法により80%硫
安沈澱分画を遠心分離法により調製する。 少量の水に
溶解し、50mMリン酸緩衝液に対して透析して脱塩す
る。 これを陰イオン交換樹脂を用いたクロマトグラフ
ィーにかけてパーオキシダーゼの活性分画を採取し、更
に濃縮した後に、ゲル濾過クロマトグラフィーにより精
製を行い、パーオキシダーゼ活性の濃縮された分画を取
得する。 これらの操作は、酵素や蛋白質の精製の常法
に、につで行うことができる。 以」二の如くして、ヨウサイの芽ばえ植物体の各部位か
ら誘導・培養されたカルスについて、採取された各パー
オキシダーゼ(POと略記)含有量を1表・2]に示す
。 以下に、実施例を挙げて本発明を具体的に説明するが、
この実施例、および−1−述の説明「a〜1′」らは単
なる例示であって、本発明を限定4−るものでiJ:
j*:い。
実施例1゜
前年度に採取したヨウサイの種子10個を用意した。
75%エタノール液に数秒間浸漬したのち、殺菌した蒸
留水で2回水洗いした。 別に用きした01%ベンザル
コニウムクロライド液(IJ゛糟化学産業株式会社製品
)に2分間浸tδした。 殺菌した水で3回水洗いした
のち、1%次亜塩素酸すトリウム(和光純薬製)、0.
1%ツイーン20(和光純薬製)を含む殺菌剤液に30
分間浸漬し、更に、種子を殺菌水で3回洗浄した。 3
0cm夕の広[]ビンに「表・I」の組成の培地に08
%寒天を加えた培地を調製し、120℃15分殺菌した
のち、冷却して固化させた。 これに、前記の殺菌し
た種子10個を播種したのち28°Cの恒温室で20ワ
ツトの蛍光灯の光のもとて7日間培養したところ、長さ
5〜3cmの才ばえ8本が得られた。 [表 1]に示した組成の培地を1,2ρ調製した。
これを6等分し、それぞれの2001に0,8%寒天
と、[表31に示した実験条件のナフタレン酢酸、ヘン
デルアデニンを添加したのら、]20℃15分間殺閑1
jこ。殺菌かいうちに、それぞれの培地を、直径10c
mのガラス製ペトリディッンコに6枚に3077(!充
分注し、固化させた。 1.述の如くして予め調製し
たヨウサイの芽ばえを無菌操作によって、5〜7xaの
切片に切断し、こわを6種類の寒天培地の−にに移植し
た。 28℃に維持(、へ恒温室の暗所に10F1間置
いて、植物切片からのカルスの誘導を行−3た結果、[
表・3コの結果を得た。 予め、1表 四の組成の培地にベンジルアデニンをIX
10−5M、ナフタレン酢酸をl x 10−’M、
寒天を0.8%を含む培地20h+(7を殺菌;1ll
J製し、直径10cmのガラス製ぺ)・リディッンコに
分注同化させた。 これに、1−述の如くして誘導した
カルス5個([表・3]大実験号C)を各1ケ宛、ペト
リディッシコの培地に移植乙だ。 28℃の恒温室の暗
所にて14 (’]間培養を行なった。 最初の7日間
はカルスの増殖が観察されたが、次第にカルスは淡い褐
色の細胞集塊に分化した。 14日後に5個のカルスを
秤量した。 カルスを乳ばちに取り、1gの石英砂を加
えて5分間磨砕したのち、50mMリン酸緩衝液(p+
161)を5屑ρ加えてパーオキシダーゼを抽出した。 これを3,0004(11定した結果、「表・4]の
結果を得た。 −L述の如くして、調製したパーオギンダーゼ含(J゛
の抽出液15mQ(パーオキソグーゼIa19.4朽)
を80%硫安塩折した後g、ooo回転/分で沈澱を回
収した3、 5m17の蒸留水に溶解したのら、5.
0mMのリン酸緩衝液に対して30時間の透析を4°(
jにおいて行った。 r・め準備j−た陰イオン交換
樹脂(1)EAEセファロースCI、−6B、ファルマ
シア社製)のカラノ・(長さ30cm)に吸首さUだの
ち、50mMリン酸バッファーを用いる食塩濃度勾配溶
出法によって溶出した。 パーオギンダーゼ活性を分析
15、活性を含む分画を集め21m1jを得た。 ごの
液中にはパーオキシダーゼが15.1mg含まれていた
。
留水で2回水洗いした。 別に用きした01%ベンザル
コニウムクロライド液(IJ゛糟化学産業株式会社製品
)に2分間浸tδした。 殺菌した水で3回水洗いした
のち、1%次亜塩素酸すトリウム(和光純薬製)、0.
1%ツイーン20(和光純薬製)を含む殺菌剤液に30
分間浸漬し、更に、種子を殺菌水で3回洗浄した。 3
0cm夕の広[]ビンに「表・I」の組成の培地に08
%寒天を加えた培地を調製し、120℃15分殺菌した
のち、冷却して固化させた。 これに、前記の殺菌し
た種子10個を播種したのち28°Cの恒温室で20ワ
ツトの蛍光灯の光のもとて7日間培養したところ、長さ
5〜3cmの才ばえ8本が得られた。 [表 1]に示した組成の培地を1,2ρ調製した。
これを6等分し、それぞれの2001に0,8%寒天
と、[表31に示した実験条件のナフタレン酢酸、ヘン
デルアデニンを添加したのら、]20℃15分間殺閑1
jこ。殺菌かいうちに、それぞれの培地を、直径10c
mのガラス製ペトリディッンコに6枚に3077(!充
分注し、固化させた。 1.述の如くして予め調製し
たヨウサイの芽ばえを無菌操作によって、5〜7xaの
切片に切断し、こわを6種類の寒天培地の−にに移植し
た。 28℃に維持(、へ恒温室の暗所に10F1間置
いて、植物切片からのカルスの誘導を行−3た結果、[
表・3コの結果を得た。 予め、1表 四の組成の培地にベンジルアデニンをIX
10−5M、ナフタレン酢酸をl x 10−’M、
寒天を0.8%を含む培地20h+(7を殺菌;1ll
J製し、直径10cmのガラス製ぺ)・リディッンコに
分注同化させた。 これに、1−述の如くして誘導した
カルス5個([表・3]大実験号C)を各1ケ宛、ペト
リディッシコの培地に移植乙だ。 28℃の恒温室の暗
所にて14 (’]間培養を行なった。 最初の7日間
はカルスの増殖が観察されたが、次第にカルスは淡い褐
色の細胞集塊に分化した。 14日後に5個のカルスを
秤量した。 カルスを乳ばちに取り、1gの石英砂を加
えて5分間磨砕したのち、50mMリン酸緩衝液(p+
161)を5屑ρ加えてパーオキシダーゼを抽出した。 これを3,0004(11定した結果、「表・4]の
結果を得た。 −L述の如くして、調製したパーオギンダーゼ含(J゛
の抽出液15mQ(パーオキソグーゼIa19.4朽)
を80%硫安塩折した後g、ooo回転/分で沈澱を回
収した3、 5m17の蒸留水に溶解したのら、5.
0mMのリン酸緩衝液に対して30時間の透析を4°(
jにおいて行った。 r・め準備j−た陰イオン交換
樹脂(1)EAEセファロースCI、−6B、ファルマ
シア社製)のカラノ・(長さ30cm)に吸首さUだの
ち、50mMリン酸バッファーを用いる食塩濃度勾配溶
出法によって溶出した。 パーオギンダーゼ活性を分析
15、活性を含む分画を集め21m1jを得た。 ごの
液中にはパーオキシダーゼが15.1mg含まれていた
。
本発明によれば、非特異的パーオキシダーゼの大川生産
において、従来は(1j、らワザヒダイ:Iンに依存し
ていたのに対し、ワザヒダイコン以外の植物体から高収
率でパ−オキシダーゼを生産することができる。 し
かも、人為的に誘導・培養したカルス培養物から採取す
るので、天候・栽培地域・収穫・時期等に左右されず、
栽培のための広い農地を必要とせず、生産性及び品質が
常に一定の均質なパーオキソダーゼを得ることができる
。
において、従来は(1j、らワザヒダイ:Iンに依存し
ていたのに対し、ワザヒダイコン以外の植物体から高収
率でパ−オキシダーゼを生産することができる。 し
かも、人為的に誘導・培養したカルス培養物から採取す
るので、天候・栽培地域・収穫・時期等に左右されず、
栽培のための広い農地を必要とせず、生産性及び品質が
常に一定の均質なパーオキソダーゼを得ることができる
。
Claims (2)
- (1)ヨウサイ(■菜、学名;Ipomoea aqu
atica Forsk)の植物体から分離した組織片
または細胞を栄養培地に培養し、得られた培養物から採
取されるパーオキシダーゼ。 - (2)ヨウサイ(■菜、学名;Ipomoea aqu
atica Forsk)の植物体から分離した組織片
または細胞を栄養培地に培養し、得られた培養物からパ
ーオキシダーゼを採取することを特徴とするパーオキシ
ダーゼの製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP27945385A JPS62138188A (ja) | 1985-12-12 | 1985-12-12 | パ−オキシダ−ゼおよびその製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP27945385A JPS62138188A (ja) | 1985-12-12 | 1985-12-12 | パ−オキシダ−ゼおよびその製造法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS62138188A true JPS62138188A (ja) | 1987-06-20 |
Family
ID=17611275
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP27945385A Pending JPS62138188A (ja) | 1985-12-12 | 1985-12-12 | パ−オキシダ−ゼおよびその製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS62138188A (ja) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB2278347A (en) * | 1993-05-25 | 1994-11-30 | Son Ui Sung | Medicinal fluid composition for trees |
US5728550A (en) * | 1990-01-15 | 1998-03-17 | Phytera, Inc. | Peroxidase production |
WO2005116196A2 (en) | 2004-05-25 | 2005-12-08 | Council Of Scientific And Industrial Research | Production of peroxidase from plant cell and callus cultures |
CN106718894A (zh) * | 2016-12-06 | 2017-05-31 | 重庆市农业科学院 | 一种水藤菜组培快繁系统 |
-
1985
- 1985-12-12 JP JP27945385A patent/JPS62138188A/ja active Pending
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5728550A (en) * | 1990-01-15 | 1998-03-17 | Phytera, Inc. | Peroxidase production |
GB2278347A (en) * | 1993-05-25 | 1994-11-30 | Son Ui Sung | Medicinal fluid composition for trees |
WO2005116196A2 (en) | 2004-05-25 | 2005-12-08 | Council Of Scientific And Industrial Research | Production of peroxidase from plant cell and callus cultures |
EP2039763A1 (en) | 2004-05-25 | 2009-03-25 | Council Of Scientific And Industrial Research | Production of peroxidase from plant cell and callus cultures |
CN106718894A (zh) * | 2016-12-06 | 2017-05-31 | 重庆市农业科学院 | 一种水藤菜组培快繁系统 |
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