JPS6119498A - 多糖類を酵素により変換する方法 - Google Patents
多糖類を酵素により変換する方法Info
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- JPS6119498A JPS6119498A JP60120734A JP12073485A JPS6119498A JP S6119498 A JPS6119498 A JP S6119498A JP 60120734 A JP60120734 A JP 60120734A JP 12073485 A JP12073485 A JP 12073485A JP S6119498 A JPS6119498 A JP S6119498A
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- C12P19/14—Preparation of compounds containing saccharide radicals produced by the action of a carbohydrase (EC 3.2.x), e.g. by alpha-amylase, e.g. by cellulase, hemicellulase
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は酵素による変換方法、特にα−アミラーゼ活性
を示す酵素による澱粉または部分的に加水分解した澱粉
のような多糖類の酵素的変換方法に関する。
を示す酵素による澱粉または部分的に加水分解した澱粉
のような多糖類の酵素的変換方法に関する。
アミラーゼはカルボヒドラーゼの重要なグループでアシ
、広い工業的な用途をもつ。アミラーゼは澱粉化合物中
のα−D−グルコシド結合を加水分解する能力によって
特徴づけられ、そして商業的なアミラーゼの主な販路は
澱粉の加工技術における販路である。かなりの分子量の
多糖類である澱粉はα−アミラーゼにより加水分解され
て10箇までの単糖類単位を含有するより低い分子量の
多糖類を生産することができる。
、広い工業的な用途をもつ。アミラーゼは澱粉化合物中
のα−D−グルコシド結合を加水分解する能力によって
特徴づけられ、そして商業的なアミラーゼの主な販路は
澱粉の加工技術における販路である。かなりの分子量の
多糖類である澱粉はα−アミラーゼにより加水分解され
て10箇までの単糖類単位を含有するより低い分子量の
多糖類を生産することができる。
このような酵素は、澱粉分子を分解することによって澱
粉懸濁液または濃い澱粉ペーストを液体の形に変えるの
で、″液化型“酵素と呼ばれる。
粉懸濁液または濃い澱粉ペーストを液体の形に変えるの
で、″液化型“酵素と呼ばれる。
他のアミラーゼは異なる加水分解操作を触媒する。例え
ばβ−アミラーゼは澱粉、グリコーゲン、またはデキス
トリン分子の非還元性末端における加水分解を触媒して
マルトース分子を分離するが、ゲルコアミラー、ゼは同
じ多糖類またオリゴ糖類の非還元性末端からのグルコー
スの分離を触媒する。
ばβ−アミラーゼは澱粉、グリコーゲン、またはデキス
トリン分子の非還元性末端における加水分解を触媒して
マルトース分子を分離するが、ゲルコアミラー、ゼは同
じ多糖類またオリゴ糖類の非還元性末端からのグルコー
スの分離を触媒する。
α−アミラーゼ活性を示す酵素は各種のシ自然の資源か
ら、例えばかび、菌類、細菌から得られる。そして異な
る微生物からの酵素は、α−アミラーゼによって一般に
触媒される加水分解反応を触媒することができるが、し
ばしば彼等が作用する条件、特に温度およびpHの条件
において異なシ、そして工業”的な実施においては、こ
のような差異が重要である。
ら、例えばかび、菌類、細菌から得られる。そして異な
る微生物からの酵素は、α−アミラーゼによって一般に
触媒される加水分解反応を触媒することができるが、し
ばしば彼等が作用する条件、特に温度およびpHの条件
において異なシ、そして工業”的な実施においては、こ
のような差異が重要である。
本発明者等のヨーロッパ特許出願
81800578.2明細書には、本発明者等は、なか
んずく遺伝子工学で得られる微生物よりアミラーゼ活性
をもつ酵素を□製造する方法を記載した。
んずく遺伝子工学で得られる微生物よりアミラーゼ活性
をもつ酵素を□製造する方法を記載した。
この特許出願には、遺伝子工学で得られる微生物にアミ
ラーゼ活性を示す種々の酵素をコードした遺伝子を供与
する多数の微生物が記載されている。ヨーロッパ特許出
願81800578.2に明らかにされているこのよう
な供与体微生物の1つがバチルス参メガテリウム(Ba
cillusmegaterium)であるが、この微
生物から製造される酵素は、上記ヨーロッパ特許出願の
方法により製造されることができるように記載されたア
ミラーゼ活性をもつ他の酵素から選び出される性質をも
つものとして記載されていない。しかし久から、本発明
者等は、今やα−アミラーゼ活性をもつバチルス−メガ
テリウムからの酵素が若干の工業的適用において該酵素
を特に有用にさせる性質をもつことを発見した。
ラーゼ活性を示す種々の酵素をコードした遺伝子を供与
する多数の微生物が記載されている。ヨーロッパ特許出
願81800578.2に明らかにされているこのよう
な供与体微生物の1つがバチルス参メガテリウム(Ba
cillusmegaterium)であるが、この微
生物から製造される酵素は、上記ヨーロッパ特許出願の
方法により製造されることができるように記載されたア
ミラーゼ活性をもつ他の酵素から選び出される性質をも
つものとして記載されていない。しかし久から、本発明
者等は、今やα−アミラーゼ活性をもつバチルス−メガ
テリウムからの酵素が若干の工業的適用において該酵素
を特に有用にさせる性質をもつことを発見した。
それ故に、本発明は多糖類を、4.5〜8の範囲のpH
で、バチルス・メガテリウムから得られるα−アミラー
ゼ活性を示す酵素と接触させることを特徴とする、酵素
により多糖類を単糖類または1つあるいはそれ以上のよ
シ低い分子量の多糖類に変換する方法である。
で、バチルス・メガテリウムから得られるα−アミラー
ゼ活性を示す酵素と接触させることを特徴とする、酵素
により多糖類を単糖類または1つあるいはそれ以上のよ
シ低い分子量の多糖類に変換する方法である。
NCIB No、 11568の呼称のもとに寄託され
ているバチルス・メガテリウムが好ましい。
ているバチルス・メガテリウムが好ましい。
本発明方法で用いられる酵素は異なる組成の多糖類の変
換を触媒することができる。かくして、その第1の商業
的利用は澱粉また部分的澱粉加水分解物の単糖類または
より低い分子量の多糖類への変換における利用であるが
、この酵素はまたプルランの変換を触媒し、その生成物
は殆ど全くトリサツカライドであるパノースである。α
−アミラーゼ活性を示す他の酵素と違って、このバチル
ス・メガテリウム酵素はまたサイクロデキストリンの加
水分解を触媒し、最後には主としてデキストロース、マ
ルトース、およびマルトトリオースからなる生成物を生
成する。
換を触媒することができる。かくして、その第1の商業
的利用は澱粉また部分的澱粉加水分解物の単糖類または
より低い分子量の多糖類への変換における利用であるが
、この酵素はまたプルランの変換を触媒し、その生成物
は殆ど全くトリサツカライドであるパノースである。α
−アミラーゼ活性を示す他の酵素と違って、このバチル
ス・メガテリウム酵素はまたサイクロデキストリンの加
水分解を触媒し、最後には主としてデキストロース、マ
ルトース、およびマルトトリオースからなる生成物を生
成する。
澱粉工業に用いられるとき、このバチルス・メガテリウ
ムからのアミラーゼ活性を示す酵素は、通常のα−アミ
ラーゼで触媒される加水分解反応において、例えば液化
澱粉の製造において作用させるだめに用いることができ
る。しかしながら、との酵素の特に意義のある利用は、
デキストロースシラップが澱粉または澱粉加水分解物か
ら製造される方法−この加水分解反応はグルコアミラー
ゼにより触媒される−における利用である。なぜならば
、本発明者等は、バチルス・メガテリウム酵素およびグ
ルコアミラーゼが同じ時間に同じ媒質中で一緒に用いる
ことができるというように反応条件を選ぶことができる
ことを発見したからである。特に、バチルス・メガテリ
ウムα−アミラーゼ活性酵素は、供給原料がマルトデキ
ス) IJンまたは液化澱粉であシ、加水分解酵素がグ
ルコアミラーゼである通常の糖化反応に次の予期しない
利点をもって添加することができる。
ムからのアミラーゼ活性を示す酵素は、通常のα−アミ
ラーゼで触媒される加水分解反応において、例えば液化
澱粉の製造において作用させるだめに用いることができ
る。しかしながら、との酵素の特に意義のある利用は、
デキストロースシラップが澱粉または澱粉加水分解物か
ら製造される方法−この加水分解反応はグルコアミラー
ゼにより触媒される−における利用である。なぜならば
、本発明者等は、バチルス・メガテリウム酵素およびグ
ルコアミラーゼが同じ時間に同じ媒質中で一緒に用いる
ことができるというように反応条件を選ぶことができる
ことを発見したからである。特に、バチルス・メガテリ
ウムα−アミラーゼ活性酵素は、供給原料がマルトデキ
ス) IJンまたは液化澱粉であシ、加水分解酵素がグ
ルコアミラーゼである通常の糖化反応に次の予期しない
利点をもって添加することができる。
(a) 所定量のグルコアミラーゼに対しては、糖化
時間が減少され、あるいは所定の糖化時間に対しては、
使用するグルコアミラーゼの量が減少される。
時間が減少され、あるいは所定の糖化時間に対しては、
使用するグルコアミラーゼの量が減少される。
(b) 同じデキストロース濃度をもつ生成物を得る
ために、加工供給原料におけるよシ高い濃度の溶解した
固体を用いることができる(10重量%壕で多く)。そ
の代シにまたはそれに付随して、標準のプラント供給原
料またはわずかに増加した溶解した固体をもつ供給原料
から、増加したデキストロース濃度(0,5〜1重量%
増加した)およびオリゴマーの低下した濃度(DPll
は0.2重量%に減少される。ここに、DPは゛ゝゝデ
キストロースポリマー“ を表わし、そしてゝn”はポ
リマーの中のデキストロース単位の数である)をもつ生
成物を製造することができる。 。
ために、加工供給原料におけるよシ高い濃度の溶解した
固体を用いることができる(10重量%壕で多く)。そ
の代シにまたはそれに付随して、標準のプラント供給原
料またはわずかに増加した溶解した固体をもつ供給原料
から、増加したデキストロース濃度(0,5〜1重量%
増加した)およびオリゴマーの低下した濃度(DPll
は0.2重量%に減少される。ここに、DPは゛ゝゝデ
キストロースポリマー“ を表わし、そしてゝn”はポ
リマーの中のデキストロース単位の数である)をもつ生
成物を製造することができる。 。
(C) 後記するよりな゛アルコール混濁” が減少
される。′アルコール混濁“は糖化生成物中の低重合体
成分の含量を示す。
される。′アルコール混濁“は糖化生成物中の低重合体
成分の含量を示す。
ゲルコアミラ〜ゼおよびバチルス−メガテリウム酵素が
一緒に用いられる方法は、好適には40〜65℃の範囲
、もつと好適には55〜60℃の範囲の温度で実施され
る。pHは、好適には4.5〜5.5、もつと好適には
約5である。
一緒に用いられる方法は、好適には40〜65℃の範囲
、もつと好適には55〜60℃の範囲の温度で実施され
る。pHは、好適には4.5〜5.5、もつと好適には
約5である。
一般に、pHが低いほど低い温度が用いられ、そして逆
もまた同じである。マルトデキストリン供給原料は20
〜40重量%の溶解した固体、特に25〜85重量%の
溶解した固体を含有することができる。使用されるグル
コアミラーゼの量は乾燥物質を基準にして適切には0.
05〜0.40重量%、好適には0,10〜0.20重
量%であり、そしてバチルス・メガテリウム酵素は好適
には0.02〜10.0単位/g乾燥物質、もつと好適
には0.1〜2.0単位/g乾燥物質である。得られた
生成物は、96重量%以上のデキストロース、好適には
97重量%以上のデキストロース、もつと好適には97
.5重量%以上のデスストロースを含有することができ
る。
もまた同じである。マルトデキストリン供給原料は20
〜40重量%の溶解した固体、特に25〜85重量%の
溶解した固体を含有することができる。使用されるグル
コアミラーゼの量は乾燥物質を基準にして適切には0.
05〜0.40重量%、好適には0,10〜0.20重
量%であり、そしてバチルス・メガテリウム酵素は好適
には0.02〜10.0単位/g乾燥物質、もつと好適
には0.1〜2.0単位/g乾燥物質である。得られた
生成物は、96重量%以上のデキストロース、好適には
97重量%以上のデキストロース、もつと好適には97
.5重量%以上のデスストロースを含有することができ
る。
単位7g乾燥物質でバチルス・メガテリウムのアミラー
ゼ活性酵素濃度を表わすことは酵素工業において通例の
ことであシ、そして酵素試料が例えばその純度などによ
り異なる活性を示すかもしれないので必要である。所定
の試料の活性は、市販されて手に入れることのできる試
験キットを用い、・そして注意深く調整された条件のも
とに酵素゛により遊離される染料の強さの光学的評価に
基づくファデパス(PHADEBAS )テストにより
測定される。酵素の活性が完全に未知の場合には、試料
を最初に水で希釈しである範囲の希釈物をつ<シ、つい
でこの希釈物を下記する方法によって試験して試験条件
下に定量測定に対し適当な範囲において染料の光学密度
を与える希釈を見い出す。つぎに試験がこの濃度でブラ
ンク試料との比較において繰返される。
ゼ活性酵素濃度を表わすことは酵素工業において通例の
ことであシ、そして酵素試料が例えばその純度などによ
り異なる活性を示すかもしれないので必要である。所定
の試料の活性は、市販されて手に入れることのできる試
験キットを用い、・そして注意深く調整された条件のも
とに酵素゛により遊離される染料の強さの光学的評価に
基づくファデパス(PHADEBAS )テストにより
測定される。酵素の活性が完全に未知の場合には、試料
を最初に水で希釈しである範囲の希釈物をつ<シ、つい
でこの希釈物を下記する方法によって試験して試験条件
下に定量測定に対し適当な範囲において染料の光学密度
を与える希釈を見い出す。つぎに試験がこの濃度でブラ
ンク試料との比較において繰返される。
詳細には、希釈した酵素試料200μlが試験管中に置
かれ、4mlの緩衝液と混合される°。ブランクは20
0μlの脱イオン水と4mlの緩衝液からなる。緩衝液
はpH5に調整された酢酸ナトリウム(20m−M)お
よび塩化カルシウム(2mM)よりなる。
かれ、4mlの緩衝液と混合される°。ブランクは20
0μlの脱イオン水と4mlの緩衝液からなる。緩衝液
はpH5に調整された酢酸ナトリウム(20m−M)お
よび塩化カルシウム(2mM)よりなる。
つぎに各試料にファデバス(PHADEBAS)錠剤が
添加され、試料は10秒間攪拌された水浴中に置かれ、
55℃で15分間保持される。ファデバス錠剤は染料と
緩衝液を含有し、2つの緩衝液系の作用により試験溶液
は6.8という最終pHになる。
添加され、試料は10秒間攪拌された水浴中に置かれ、
55℃で15分間保持される。ファデバス錠剤は染料と
緩衝液を含有し、2つの緩衝液系の作用により試験溶液
は6.8という最終pHになる。
15分後に、0.5モル水酸化ナトリウム1rnlを添
加するこのにより反応が停止され、試料は攪拌され、つ
いブ°約1500gで5分間遠心分離されるかまたは濾
過される。つぎに試料の吸光度がl am光路のキュベ
ツトを用い脱イオン水と対照して620nmで測定され
る。ブランクの吸光度が試験下の試料から引き去られ、
そしてファデバス標準曲線から単位/lでアミラーゼ活
性単位が測定される。ついで単位/lでの値が単位7g
乾燥物質に変換される。
加するこのにより反応が停止され、試料は攪拌され、つ
いブ°約1500gで5分間遠心分離されるかまたは濾
過される。つぎに試料の吸光度がl am光路のキュベ
ツトを用い脱イオン水と対照して620nmで測定され
る。ブランクの吸光度が試験下の試料から引き去られ、
そしてファデバス標準曲線から単位/lでアミラーゼ活
性単位が測定される。ついで単位/lでの値が単位7g
乾燥物質に変換される。
高テキストロースシラツブの製造におけるバチルス・メ
ガテリウム酵素の適用は勿論、この酵素はまたこのよう
なシラツブが得られるならばそのシラツブの品質の改良
に用いられることもてきる。特に、このようなシラツブ
のゝゝアルコール混濁“が、グルコアミラーゼ/バチル
ス・メガテリウム酵素を組合せて用いる方法に対し上述
したpHおよび温度条件下に、この酵素と接触させるこ
とにより減少されることができる。
ガテリウム酵素の適用は勿論、この酵素はまたこのよう
なシラツブが得られるならばそのシラツブの品質の改良
に用いられることもてきる。特に、このようなシラツブ
のゝゝアルコール混濁“が、グルコアミラーゼ/バチル
ス・メガテリウム酵素を組合せて用いる方法に対し上述
したpHおよび温度条件下に、この酵素と接触させるこ
とにより減少されることができる。
コノ゛アルコール混濁“は、その後のイオン交換体での
処理で゛全く除去されるようなレベルにまで減少される
ことができる。
処理で゛全く除去されるようなレベルにまで減少される
ことができる。
次に例を示して本発明をさらに詳しく説明する。
例に用いた装置はす了モスタソト制御の水浴中の振盪フ
レーム上に乗せられた一系列の500m1エルレンマイ
ヤーフラスコカラナった。
レーム上に乗せられた一系列の500m1エルレンマイ
ヤーフラスコカラナった。
一般(、供給原料は一定のpHを一定するために緩衝液
として0.02モル酢酸ナトリウムを含有する5 00
mj?のマルトデキストリノ溶液からなった。
として0.02モル酢酸ナトリウムを含有する5 00
mj?のマルトデキストリノ溶液からなった。
この溶液はまた!あたり80mg Ca” (塩化カル
今シウムの形で)を含有した。初めのpH調整
は酢酸でなされ、そして反応を開始するために酵素が添
加された。反応のpHは溶液のpHを計器で1日2回測
定し、そしてpHが低下した場合は水酸イけl]リウム
を添加することに゛より制御された。
今シウムの形で)を含有した。初めのpH調整
は酢酸でなされ、そして反応を開始するために酵素が添
加された。反応のpHは溶液のpHを計器で1日2回測
定し、そしてpHが低下した場合は水酸イけl]リウム
を添加することに゛より制御された。
また100m/の試料が24時間ごとに取り出され、3
0分間沸騰することにより酵素が失活され、そしてこの
酵素が失活した溶液は濾過された。
0分間沸騰することにより酵素が失活され、そしてこの
酵素が失活した溶液は濾過された。
ついで濾過した試料のデキストロース含景が高圧液体ク
ロマトグラフィーにより測定され、そして適当な場合に
はアルコール混濁テストが実施された。
ロマトグラフィーにより測定され、そして適当な場合に
はアルコール混濁テストが実施された。
゛ゝアルコール混濁“は次のようにして測定された。
(a) 0.91gの溶解した固体(屈折計により測定
したとき)が存在するような試料を100m1のフラス
コに入れる、 (b) 全水分存在量が3.89gであるように脱イ
オン水を添加する、 (c) 99.8%純度のエタノール21mtlを添
加する、 (d) 還流下に攪拌しながら9〜lO分間沸騰させ
る、 (e) 流水下に冷却する、そして (f) 4cmセル中で578ナノメートルで光学密
度を測定する。
したとき)が存在するような試料を100m1のフラス
コに入れる、 (b) 全水分存在量が3.89gであるように脱イ
オン水を添加する、 (c) 99.8%純度のエタノール21mtlを添
加する、 (d) 還流下に攪拌しながら9〜lO分間沸騰させ
る、 (e) 流水下に冷却する、そして (f) 4cmセル中で578ナノメートルで光学密
度を測定する。
例中で用いたグルコアミラーゼは、マイルスーカリ・ヘ
ミ−(Miles−Kali Chemie) から
得られる0PTIDEX L 15’0(OPTIDE
Xは商標である)であった。
ミ−(Miles−Kali Chemie) から
得られる0PTIDEX L 15’0(OPTIDE
Xは商標である)であった。
例1
供給原料は25重量%の溶解した固体を含有し、そして
温度が55℃に維持された。グルコアミラーゼだけでの
加水分解がこの反応に対し通常のpHである4、2で実
施された。バチルス−メガテリウム酵素が添加されたと
き、pHは5.0に上昇された。下記の第1表は48時
間後に得られた生成物のデキストロース含量を示す。
温度が55℃に維持された。グルコアミラーゼだけでの
加水分解がこの反応に対し通常のpHである4、2で実
施された。バチルス−メガテリウム酵素が添加されたと
き、pHは5.0に上昇された。下記の第1表は48時
間後に得られた生成物のデキストロース含量を示す。
第1表
例2
位/gであった。その結果を第2表に示す。
15 96 97.925
48 94.025
96 97.085 48
91.685 96
95.7例3 溶液は25重量%の溶解した固体を含有し、pHは5で
、そしてバチルスφメガテリウム酵素の濃度は1.5単
位/gであった。72時間後の結果は第8表に示すとお
シであった。
48 94.025
96 97.085 48
91.685 96
95.7例3 溶液は25重量%の溶解した固体を含有し、pHは5で
、そしてバチルスφメガテリウム酵素の濃度は1.5単
位/gであった。72時間後の結果は第8表に示すとお
シであった。
第3表
0.10 97.2
0.08 96.9
0.05 98.1
例4
この系列の実験に2ける緩衝液は0,1モル酢酸ナトリ
ウムで、グルコアミラーゼの濃度は0.15重量%、そ
してバチルス・メガテリウム酵素は1.5単位/gであ
った。48時間後の結果を下記第4表に示す。
ウムで、グルコアミラーゼの濃度は0.15重量%、そ
してバチルス・メガテリウム酵素は1.5単位/gであ
った。48時間後の結果を下記第4表に示す。
第4表
4.6 96.0
4.8 96.6
5.0 96.8
5.2 96.4
5.4 96.1
例5
この結果は下記第5表に示すとおシである。
第5表
例6
反応溶液は15%の溶解した固体を含有し、そしてバチ
ルス・メガテリウム酵素の変化した量の存在において6
0℃でpH6に維持された。
ルス・メガテリウム酵素の変化した量の存在において6
0℃でpH6に維持された。
240時間後の結果を下記第6表に示す。
第6表
15 44.8
80 T’1.7
グルコアミラーゼとの組み合せにおいて市販反応条件は
、供給原料溶液が32重量%の溶解した固体を含有した
という以外は例1におけると同様であった。96時間後
の結果は第7表に示すとおりであり、そしてこの結果は
、市販のα−アミラー゛ゼは、バチルス番メガテリウム
から得だα−アミラーゼ活性酵素と異なり、96時間後
でさえ、グルコアミラーゼによる加水分解に改良を与え
ないことを示す。
、供給原料溶液が32重量%の溶解した固体を含有した
という以外は例1におけると同様であった。96時間後
の結果は第7表に示すとおりであり、そしてこの結果は
、市販のα−アミラー゛ゼは、バチルス番メガテリウム
から得だα−アミラーゼ活性酵素と異なり、96時間後
でさえ、グルコアミラーゼによる加水分解に改良を与え
ないことを示す。
例8
グルコアミラーゼ触媒による加水分解でつくられたデキ
ストロースシラップの試料は95.8重 1量%のデ
キストロースを含有し、そして1.550のアルコール
混濁をもった。
ストロースシラップの試料は95.8重 1量%のデ
キストロースを含有し、そして1.550のアルコール
混濁をもった。
この試料を2つに分け、そしてこれを55℃でpH5,
0において、(a)バチルス・メガゾリウムNCIB
No、 11568のα−アミラーゼ活性酵素、および
(b)市販の手に入れることができるα−アミラーゼで
処理した。この処理の結果を第8表に示す。
0において、(a)バチルス・メガゾリウムNCIB
No、 11568のα−アミラーゼ活性酵素、および
(b)市販の手に入れることができるα−アミラーゼで
処理した。この処理の結果を第8表に示す。
7g
(注)u/g一単位/g
例9
5重量%の溶解した固体を含有するプルラン容液が、5
0単位/gのバチルス・メガテリウムNCIB No、
11568のα−アミラーゼ活性酵素で55℃でpH
5,6において24時間処理された。
0単位/gのバチルス・メガテリウムNCIB No、
11568のα−アミラーゼ活性酵素で55℃でpH
5,6において24時間処理された。
4 24時間の終シにプルランは98
重量%のパノースに変換された。
重量%のパノースに変換された。
Claims (11)
- (1)多糖類を、4.5〜8.0の範囲のpHで、バチ
ルス・メガテリウム(Bacillus megate
rium)から得られるα−アミラーゼ活性を示す酵素
と接触させることを特徴とする、酵素により多糖類を単
糖類または1つあるいはそれ以上のより低い分子量の多
糖類に変換する方法。 - (2)バチルス・メガテリウムがバチルス・メガテリウ
ムNCIB No.11568であることを特徴とする
特許請求の範囲第1項記載の方法。 - (3)多糖類が澱粉、部分的澱粉加水分解物、プルラン
またはサイクロデキストリンであることを特徴とする特
許請求の範囲第1項または第2項記載の方法。 - (4)バチルス・メガテリウムの酵素が、澱粉または澱
粉加水分解物からデキストロースシラップをつくるため
に、グルコアミラーゼと一緒に使用されることを特徴と
する、特許請求の範囲第1項〜第3項のいずれかに記載
の方法。 - (5)澱粉加水分解物がマルトデキストリンまたは液化
澱粉であることを特徴とする特許請求の範囲第4項記載
の方法。 - (6)温度が40〜65℃、好適には55〜60℃であ
ることを特徴とする特許請求の範囲第4項または第5項
記載の方法。 - (7)pHが4.5〜5.5、好適には5.0であるこ
とを特徴とする特許請求の範囲第4項〜第6項のいずれ
かに記載の方法。 - (8)マルトデキストリンが20〜40重量%、好適に
は25〜35重量%の溶解した固体を含有することを特
徴とする特許請求の範囲第5項記載の方法。 - (9)使用するグルコアミラーゼの量が乾燥物質を基準
として0.05〜0.40重量%、好適には0.10〜
0.20重量%であることを特徴とする特許請求の範囲
第4項〜第8項のいずれかに記載の方法。 - (10)使用するバチルス・メガテリウムから得られる
酵素の量が0.02〜10.0単位/g乾燥物質、好適
には0.1〜2.0単位/g乾燥物質であることを特徴
とする特許請求の範囲第1項〜第9項のいずれかに記載
の方法。 - (11)バチルス・メガテリウムの酵素がアルコール混
濁を示すデキストロースシラップと接触され、アルコー
ル混濁が減少されることを特徴とする特許請求の範囲第
1項または第2項記載の方法。
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JPH0644873B2 JPH0644873B2 (ja) | 1994-06-15 |
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1985
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- 1985-07-30 CN CN85104505A patent/CN85104505A/zh active Pending
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---|---|---|---|---|
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