JPS60214888A - ポリ−d(−)−3−ヒドロキシ酪酸のバイオテクノロジ−による製造方法 - Google Patents
ポリ−d(−)−3−ヒドロキシ酪酸のバイオテクノロジ−による製造方法Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は微生物を二つの分離し、連続する発酵段階で連
続的に培養して細菌菌体中でPHBの高い収益率及び改
良された蓄積によりボIJ ])(−)−]!s−ヒド
ロキシ酪酸PUB)をバイオテクノロジーにより製造す
る方法に関するものである。
続的に培養して細菌菌体中でPHBの高い収益率及び改
良された蓄積によりボIJ ])(−)−]!s−ヒド
ロキシ酪酸PUB)をバイオテクノロジーにより製造す
る方法に関するものである。
従来から原核性質の微生物の多数はPHBをエネルギー
及び炭素に関する貯蔵物質として細胞内部に蓄積するこ
とができることは公知である。
及び炭素に関する貯蔵物質として細胞内部に蓄積するこ
とができることは公知である。
微生物の細胞から単離されたPHBは有効な物理的性質
を有する熱可塑性ポリエステルである。
を有する熱可塑性ポリエステルである。
この性質は今日たとえばポリエチレン又はポリスチロー
ルが使用される目的と同一の目的にポリエステルを使用
するのに期待されるものである。しかしこの今日慣用の
ポリマーに比してPHEはバイオテクノロジー法で入手
で巻、更に生物学的方法で再び分解することもできると
いう利点憂有する。
ルが使用される目的と同一の目的にポリエステルを使用
するのに期待されるものである。しかしこの今日慣用の
ポリマーに比してPHEはバイオテクノロジー法で入手
で巻、更に生物学的方法で再び分解することもできると
いう利点憂有する。
PHB−貯蔵微生物の通気培養が栄養媒体の特異的組成
によって、好ましくは細胞分裂及び増殖の方向に又は細
胞内のPUB−貯蔵の方向に進むとともすでに公知であ
る。微生物の細胞中でのPHBの蓄積は公知方法に於て
栄養媒体中で炭素源の濃度がその他の、増殖に必要な栄
養素、たとえば窒素及びリンの供給量に比して大きく、
微生物の培養がたとえばアンモニウムを制限した増殖条
件下で行われる時に得られる。
によって、好ましくは細胞分裂及び増殖の方向に又は細
胞内のPUB−貯蔵の方向に進むとともすでに公知であ
る。微生物の細胞中でのPHBの蓄積は公知方法に於て
栄養媒体中で炭素源の濃度がその他の、増殖に必要な栄
養素、たとえば窒素及びリンの供給量に比して大きく、
微生物の培養がたとえばアンモニウムを制限した増殖条
件下で行われる時に得られる。
この認識に基づ(PHBの二段階製造法はたとえばヨー
ロッパ特許第15669号明細書中に記載されている。
ロッパ特許第15669号明細書中に記載されている。
この方法でMethylobactθriumOrga
nophilium属の微生物を先ず窒素及びリンの完
全かつ十分な供給も含めて栄養素の無制限な供給に於て
微生物母集団が培養液体11あたり好ましくは菌体20
〜25gの濃度に達するまで培養する。その際この増殖
層中に細胞内PHB−蓄積が生じない。次いで第二発酵
段階で培養媒体の窒素−及び(又は)リン−供給の完全
な中止は再生産及び菌増殖の停止を生せしめる。
nophilium属の微生物を先ず窒素及びリンの完
全かつ十分な供給も含めて栄養素の無制限な供給に於て
微生物母集団が培養液体11あたり好ましくは菌体20
〜25gの濃度に達するまで培養する。その際この増殖
層中に細胞内PHB−蓄積が生じない。次いで第二発酵
段階で培養媒体の窒素−及び(又は)リン−供給の完全
な中止は再生産及び菌増殖の停止を生せしめる。
この場合この層中に初めて細胞内PHB−蓄積が生じる
。ヨーロッパ特許第15S69号明細書中の記載によれ
ばこの方法で細胞乾燥重量精々25〜47重量%のPH
B−含有量を有する菌体が得られる。
。ヨーロッパ特許第15S69号明細書中の記載によれ
ばこの方法で細胞乾燥重量精々25〜47重量%のPH
B−含有量を有する菌体が得られる。
ヨーロッパ特許第46544号明細書中にこれに対する
改良されたPHBの製造に関する発酵法が記載されてい
る。これはAlcaligenesθutrophue
11の微生物の連続通気培養に基づいている。その記
載によればこの方法で微生物母集団の調節されメζ増殖
及び同時に細胞内PHB −蓄積が次のことによって得
るととがで縫る。すなわちヨーロッパ特許第1566.
9号明細書の方法と反対に増殖に主要な栄養素及び微量
物質の供給、特に窒素の供給を培養の開始から制限する
ことによる。
改良されたPHBの製造に関する発酵法が記載されてい
る。これはAlcaligenesθutrophue
11の微生物の連続通気培養に基づいている。その記
載によればこの方法で微生物母集団の調節されメζ増殖
及び同時に細胞内PHB −蓄積が次のことによって得
るととがで縫る。すなわちヨーロッパ特許第1566.
9号明細書の方法と反対に増殖に主要な栄養素及び微量
物質の供給、特に窒素の供給を培養の開始から制限する
ことによる。
処理変法として先ず制限された栄養素供給下ですでに2
5重1.%PHBに増加した微生物を含有する培養液体
を第二発酵段階へ移行させ、そこで50〜80重量%P
HBに増加させることも予め考慮される。この場合各々
の栄養素成分−千の濃度はす、でに第一段階で増殖の抑
制のために制限されるーを第二段階で栄養溶液にもはや
全く添加しない。というのは貯蔵層中で増殖はもはや全
く望まれないからである。
5重1.%PHBに増加した微生物を含有する培養液体
を第二発酵段階へ移行させ、そこで50〜80重量%P
HBに増加させることも予め考慮される。この場合各々
の栄養素成分−千の濃度はす、でに第一段階で増殖の抑
制のために制限されるーを第二段階で栄養溶液にもはや
全く添加しない。というのは貯蔵層中で増殖はもはや全
く望まれないからである。
ヨーロッパ特許第46344号明細書の方法によれば栄
養媒体中での炭素源の改良された利用及びPHBの改良
された貯蔵が得られるが、増殖に必要な栄養素の供給に
よって特異的な増殖速度及びPHB−形成速度は明らか
に減少するという欠点が認められる。
養媒体中での炭素源の改良された利用及びPHBの改良
された貯蔵が得られるが、増殖に必要な栄養素の供給に
よって特異的な増殖速度及びPHB−形成速度は明らか
に減少するという欠点が認められる。
この方法に於けるその他の欠点はAlcaligene
日eutrophus種の場合、発酵に対する最適温度
範囲が比較的に低く存在することにある。しだがって微
生物を強い冷却下50〜34℃で培養しなければならな
い。この温度範囲で増殖及びPHB−貯蔵は高められた
温度で培養することができる微生物−これは比較的大き
い温度公差を有する−に於て培養されるよりもゆっくり
進行する。
日eutrophus種の場合、発酵に対する最適温度
範囲が比較的に低く存在することにある。しだがって微
生物を強い冷却下50〜34℃で培養しなければならな
い。この温度範囲で増殖及びPHB−貯蔵は高められた
温度で培養することができる微生物−これは比較的大き
い温度公差を有する−に於て培養されるよりもゆっくり
進行する。
したがって前記理由から公知方法の場合PHB−製造の
経済性は満足なPI(B−貯蔵量を有する菌体の培養に
不可欠である発酵槽中での長い滞留時間によって妨害さ
れる。
経済性は満足なPI(B−貯蔵量を有する菌体の培養に
不可欠である発酵槽中での長い滞留時間によって妨害さ
れる。
炭化水素のうちの炭素源としてヨーロッパ特許第46.
544号明細書による方法の場合第一にフルクトースが
使用され、特異的にA1caligθneseutro
phue H16株から由来する変異株を使用する場合
のみ栄養素源としてグルコースに変えるととができる。
544号明細書による方法の場合第一にフルクトースが
使用され、特異的にA1caligθneseutro
phue H16株から由来する変異株を使用する場合
のみ栄養素源としてグルコースに変えるととができる。
親株からの変異株の培養及び淘汰は操作に経費がかかる
という事情の他に、この変異株の使用によってP H4
3を経済的に製造す1 るととができる使用可能な栄養素源の供給が著しく増加
しない。というのは多量に使用される三糖類−−−−こ
れはグルコースに対する主供給物として使用するー、た
とえば糖蜜中に又は工業的製造された砂糖溶液中に含有
されるショ糖がA1ca’1iBenes eutro
phus H16から由来する変異株に対しても使用す
ることができないからである0 A1ca’ligone8eutrophusの他にヨ
ーロッパ特許第46.544号明細書中に更にAlca
ligenee鵬のその他の1重、たとえばAIC,f
aeca’li日、 Alc。
という事情の他に、この変異株の使用によってP H4
3を経済的に製造す1 るととができる使用可能な栄養素源の供給が著しく増加
しない。というのは多量に使用される三糖類−−−−こ
れはグルコースに対する主供給物として使用するー、た
とえば糖蜜中に又は工業的製造された砂糖溶液中に含有
されるショ糖がA1ca’1iBenes eutro
phus H16から由来する変異株に対しても使用す
ることができないからである0 A1ca’ligone8eutrophusの他にヨ
ーロッパ特許第46.544号明細書中に更にAlca
ligenee鵬のその他の1重、たとえばAIC,f
aeca’li日、 Alc。
ruhland、ii、 Alc、 1atue、 A
le、 aquamarinueもPHB−貯蔵に対し
て使用できるものとして述べられているが、この種に対
して培養−及び蓄積条件に関する詳細な記載は全くなく
、発明の実施法は発明の詳細な説明及び実施例中にAl
caligenes田λtrophu、nの株を用いて
しか開示されていない。
le、 aquamarinueもPHB−貯蔵に対し
て使用できるものとして述べられているが、この種に対
して培養−及び蓄積条件に関する詳細な記載は全くなく
、発明の実施法は発明の詳細な説明及び実施例中にAl
caligenes田λtrophu、nの株を用いて
しか開示されていない。
これに対して本発明の課題は少ない炭素源の利用上微生
物の菌体中でPHBの高収益率及び改良された蓄積でも
ってPHBのバイオテクノロジーによる経済的な二段階
連続発酵製造方法を枡供することにある。この方法に於
ては公知方法に付随する欠点は回避される。
物の菌体中でPHBの高収益率及び改良された蓄積でも
ってPHBのバイオテクノロジーによる経済的な二段階
連続発酵製造方法を枡供することにある。この方法に於
ては公知方法に付随する欠点は回避される。
今や、この課題を解消するにあたシ、
Alcaligenee 1atue種の菌株及びその
変異株を36〜42℃の温度範囲で二段階発酵法で従来
PHBの発酵製造に於て知られていない条件下で培養し
た場合、微生物母集団の極めて急速な増殖が同時の有効
なPHB−貯蔵と共に発酵槽中での比較的短い滞留時間
で得られ、微生物の使用されうる炭素源の性質に対する
依存性を著しく除去することができることは驚ろくべき
ことである。
変異株を36〜42℃の温度範囲で二段階発酵法で従来
PHBの発酵製造に於て知られていない条件下で培養し
た場合、微生物母集団の極めて急速な増殖が同時の有効
なPHB−貯蔵と共に発酵槽中での比較的短い滞留時間
で得られ、微生物の使用されうる炭素源の性質に対する
依存性を著しく除去することができることは驚ろくべき
ことである。
従来技術に反して最適な、無制限の栄養素供給−これは
窒素及びリンの完全かつ十分な供給を含めて−によって
微生物母集団の再製造及び急速な増殖を促進し、その際
驚くべきことに培養を制限された増殖条件下で行うこと
なく同時に有効なπ111胞内FIB−貯蔵を生じるこ
とはPHHに対するこの新しい製造方法の著しく顕著な
特色である。
窒素及びリンの完全かつ十分な供給を含めて−によって
微生物母集団の再製造及び急速な増殖を促進し、その際
驚くべきことに培養を制限された増殖条件下で行うこと
なく同時に有効なπ111胞内FIB−貯蔵を生じるこ
とはPHHに対するこの新しい製造方法の著しく顕著な
特色である。
本発明は微生物を連続的に2つの分離し、連続した培養
段階で無制限の栄養素供給に於て培養し、しかも第二段
階で培養を栄養媒体中で第一段階に比してより少ない溶
存酸素含有量に於て続ける場合、この条件下でPHB−
製造を特に多産方法で実施し、栄養媒体中での炭素源の
良好な利用が得られうろことを見い出した。
段階で無制限の栄養素供給に於て培養し、しかも第二段
階で培養を栄養媒体中で第一段階に比してより少ない溶
存酸素含有量に於て続ける場合、この条件下でPHB−
製造を特に多産方法で実施し、栄養媒体中での炭素源の
良好な利用が得られうろことを見い出した。
この方法で発酵槽中で比較的短い滞留時間内で従来技術
によるPHB−蓄積に比して著しく改良された蓄積を有
する菌体を生じる。それによってPHBの製造及び単静
は従来可能である方法に比してよシ経済的方法でう寸く
ゆく。
によるPHB−蓄積に比して著しく改良された蓄積を有
する菌体を生じる。それによってPHBの製造及び単静
は従来可能である方法に比してよシ経済的方法でう寸く
ゆく。
したがって本発明の対象は同化しうる炭素、窒素及びリ
ンの源並びに微生物の増殖に必要な有機又は無機の倣量
栄養素の供給物を含有する水性栄養媒体中でAlcal
igenee属の微生物を通気培養してポリ−D(→−
6−ヒドロキシ酪酸(PHB)を製造するにあたり、A
lcaligenee 1atusの菌株又はこの微生
物から由来するPHB−貯蔵変異株を完全なかつ微生物
の増殖に最適な栄養素の供給と同時に制限されていない
増殖条件下36ないし42℃の温度範囲で2つの分離し
かつ連続する発酵段階で無菌条件下に連続的に培養し、
その際第一段階で空気に対する飽和値20〜50%の溶
存酸素含有量で培養され九P)IB −含有微生物母集
団を培養溶液と共に連続的に第二発酵段階に移し、そこ
で培養を空気に対する飽和値8〜15%の溶存酸素含有
量で続け、その際に得られた菌体からPHBを常法で抽
出して得ることを特徴とする、前記PHBのバイオテク
ノロジーによる製造法である。
ンの源並びに微生物の増殖に必要な有機又は無機の倣量
栄養素の供給物を含有する水性栄養媒体中でAlcal
igenee属の微生物を通気培養してポリ−D(→−
6−ヒドロキシ酪酸(PHB)を製造するにあたり、A
lcaligenee 1atusの菌株又はこの微生
物から由来するPHB−貯蔵変異株を完全なかつ微生物
の増殖に最適な栄養素の供給と同時に制限されていない
増殖条件下36ないし42℃の温度範囲で2つの分離し
かつ連続する発酵段階で無菌条件下に連続的に培養し、
その際第一段階で空気に対する飽和値20〜50%の溶
存酸素含有量で培養され九P)IB −含有微生物母集
団を培養溶液と共に連続的に第二発酵段階に移し、そこ
で培養を空気に対する飽和値8〜15%の溶存酸素含有
量で続け、その際に得られた菌体からPHBを常法で抽
出して得ることを特徴とする、前記PHBのバイオテク
ノロジーによる製造法である。
この方法を実施するためにAlcaligenee 1
atueのすべて公知の菌株、たとえば菌株DSM(D
eutscheElammlung von Mikr
oorganiemen )A 1122 、 DsM
/Vh1123又はDSMA1124が適する。
atueのすべて公知の菌株、たとえば菌株DSM(D
eutscheElammlung von Mikr
oorganiemen )A 1122 、 DsM
/Vh1123又はDSMA1124が適する。
この菌株の形態学的性質はPa1leroni等による
文献、工nt、Journ、 of Sy、stema
tic13acteriology 2B 、第416
−428頁、(197B)中に記載され、培養コレクシ
ョンのカタログ、たとえばAmerican Type
Cu1tuxe Co11ection(八T(jc
)に収録されている。DEIM−ナンバーによって同定
される微生物の培養試料は微生物に対するドイツコレク
ションによって当栗者に自由に入手でへる(バイオテク
ノロジー研究協会、ゲッチンゲン、MBH、ステークハ
イム、西ドイツ)。
文献、工nt、Journ、 of Sy、stema
tic13acteriology 2B 、第416
−428頁、(197B)中に記載され、培養コレクシ
ョンのカタログ、たとえばAmerican Type
Cu1tuxe Co11ection(八T(jc
)に収録されている。DEIM−ナンバーによって同定
される微生物の培養試料は微生物に対するドイツコレク
ションによって当栗者に自由に入手でへる(バイオテク
ノロジー研究協会、ゲッチンゲン、MBH、ステークハ
イム、西ドイツ)。
本発明による方法の実施に関して常法で親株から得られ
る菌株Alcaligenθe 1atueのPHB
−貯蔵変異株も適する。
る菌株Alcaligenθe 1atueのPHB
−貯蔵変異株も適する。
菌株Alcaligenes 1atuBは経済的PH
B−製造に有利な性質を有するので、一般に増殖及びP
HB−貯蔵のだめに炭素源の広い範囲を使用することか
で西る。炭素源としてたとえば炭化水素、たとえばD−
グルコース、を−宍茫チーホD−フルクトース、ラクト
ース、マルトース、ショ糖、でんぷん、糖蜜、ベタイン
、グリーンシロップ、ヒトロール、繊維素加水分解物;
有機酸又はそのエステル及び塩、たとえばグAコン酸、
2−ケト−グルコン酸、ギ酸、酢酸、5酪酸、イソ酪酸
、L−マロン酸、D−(→−酒石酸、アコニット酸、イ
タコン酸、m−ヒドロキシ安息香酸、p−ヒドロキシ安
息香酸、ゲンチシン酸、プロトカテキュ酸及びマンデル
酸;アルコール、たとえばn−プロパツール、イソプロ
パツール、2,3−ブチレングリコール、プロピレング
リコール、グリセリン;アぽ)酸、たとえばβ−アラニ
ン、L−アラニン、L−セリン、L−スレオニン、L−
ロイシン、L−シトルリン、L−オルニチン、L−アミ
ノブチラード、L−アスパルタート、L−アスパラギン
、L−グルp−r−ト、L−プロリン、ヒプラート、サ
ルコシン及びクレアチン;あるいは更にアミン、たとえ
ばプチルアミシが挙げられる。
B−製造に有利な性質を有するので、一般に増殖及びP
HB−貯蔵のだめに炭素源の広い範囲を使用することか
で西る。炭素源としてたとえば炭化水素、たとえばD−
グルコース、を−宍茫チーホD−フルクトース、ラクト
ース、マルトース、ショ糖、でんぷん、糖蜜、ベタイン
、グリーンシロップ、ヒトロール、繊維素加水分解物;
有機酸又はそのエステル及び塩、たとえばグAコン酸、
2−ケト−グルコン酸、ギ酸、酢酸、5酪酸、イソ酪酸
、L−マロン酸、D−(→−酒石酸、アコニット酸、イ
タコン酸、m−ヒドロキシ安息香酸、p−ヒドロキシ安
息香酸、ゲンチシン酸、プロトカテキュ酸及びマンデル
酸;アルコール、たとえばn−プロパツール、イソプロ
パツール、2,3−ブチレングリコール、プロピレング
リコール、グリセリン;アぽ)酸、たとえばβ−アラニ
ン、L−アラニン、L−セリン、L−スレオニン、L−
ロイシン、L−シトルリン、L−オルニチン、L−アミ
ノブチラード、L−アスパルタート、L−アスパラギン
、L−グルp−r−ト、L−プロリン、ヒプラート、サ
ルコシン及びクレアチン;あるいは更にアミン、たとえ
ばプチルアミシが挙げられる。
しかし通性無機自己栄養微生物としてのその性質に従っ
て菌株Alcaligenes 1atusは、水素と
酸素との混合物の形で二酸化炭素を唯一の炭素源として
供給する場合、一般に従来性え上げられている炭素源の
共に二酸化炭素を使用することもでへる。
て菌株Alcaligenes 1atusは、水素と
酸素との混合物の形で二酸化炭素を唯一の炭素源として
供給する場合、一般に従来性え上げられている炭素源の
共に二酸化炭素を使用することもでへる。
PHBのバイオテクノロジーによる製造法の経済性は栄
養物質中の炭素源の価格に極めて著しく依存するので、
本発明による発酵法に於て大とができるからである。
養物質中の炭素源の価格に極めて著しく依存するので、
本発明による発酵法に於て大とができるからである。
容易に入手できる三糖類の優れた利用可能性は栄養物質
の使用可能性及びBIB−製造の経済性を顧慮して本発
明による方法の驚くべきかつ有利な特色である。好まし
い実施形態で微生物に産業用砂糖溶液、たとえばグリー
ンシロップ又は砂糖収得の廃棄物、たとえばテンサイ糖
密中に含有されるショ糖を炭素源として供給する。
の使用可能性及びBIB−製造の経済性を顧慮して本発
明による方法の驚くべきかつ有利な特色である。好まし
い実施形態で微生物に産業用砂糖溶液、たとえばグリー
ンシロップ又は砂糖収得の廃棄物、たとえばテンサイ糖
密中に含有されるショ糖を炭素源として供給する。
この際再び菌株Alcaligenee 1atue
D日M A112!+をショ糖で培養することは高いP
HB−生成物形成速度のゆえに特に有利である。
D日M A112!+をショ糖で培養することは高いP
HB−生成物形成速度のゆえに特に有利である。
微生物に分子中に同時に窒素を有する様な同化しうる炭
素化合物の群から供給した場合、炭素−及び窒素要求は
同一の源からおぎなうことがでらる。窒素源としてAl
caligenen 1tue −菌株のうち更にアン
モニア、アンモニウム塩、たとえば塩化アンモニウム又
は硫酸アンモニウム及び硝酸塩を利用する。更に不可欠
な窒素要求は産業用及び生物学的廃水の窒素含有量によ
って著しくおぎなうとともできる。
素化合物の群から供給した場合、炭素−及び窒素要求は
同一の源からおぎなうことがでらる。窒素源としてAl
caligenen 1tue −菌株のうち更にアン
モニア、アンモニウム塩、たとえば塩化アンモニウム又
は硫酸アンモニウム及び硝酸塩を利用する。更に不可欠
な窒素要求は産業用及び生物学的廃水の窒素含有量によ
って著しくおぎなうとともできる。
その他のその鉱物性成分に関する栄養溶液の組成はリン
を、たとえばリン酸水素ナトリウム又はリン酸水素カリ
ウムの形で、マグネシウムを、たとえば硫酸マグネシウ
ムとして、カルシウムを、たとえば塩化カルシウム及び
鉄をたとえば塩化鉄(lI)、硫酸鉄又はクエン酸アン
モニウム鉄(I)の形で包含する。増殖に必要なその他
の微量鉱物を栄養媒体に好ましくは微量要素溶液の形で
加えることができる。これはたとえば次の組成を有する
: ZnS O< −7R20100”fi’/ 11Mn
C4,4H2050’97/ 7!H,Bo、 5 o
amg/ 1 CoC112・/;lI20 20 Un9/g011
804.5H2010rP9/ /Nip/!2.6H
3020m9/l NaMoO4,2H2030m9/ 1本発明による方
法の実施にあたり、先ず1又は数種の前培養をたとえば
液状栄養媒体中で製造し、次いで製造発酵槽中で予め潤
製された前記組成の栄養溶液に十分に増殖した前培養を
約1:5〜1:15の割合で植菌する様にして行うのが
好ましい。
を、たとえばリン酸水素ナトリウム又はリン酸水素カリ
ウムの形で、マグネシウムを、たとえば硫酸マグネシウ
ムとして、カルシウムを、たとえば塩化カルシウム及び
鉄をたとえば塩化鉄(lI)、硫酸鉄又はクエン酸アン
モニウム鉄(I)の形で包含する。増殖に必要なその他
の微量鉱物を栄養媒体に好ましくは微量要素溶液の形で
加えることができる。これはたとえば次の組成を有する
: ZnS O< −7R20100”fi’/ 11Mn
C4,4H2050’97/ 7!H,Bo、 5 o
amg/ 1 CoC112・/;lI20 20 Un9/g011
804.5H2010rP9/ /Nip/!2.6H
3020m9/l NaMoO4,2H2030m9/ 1本発明による方
法の実施にあたり、先ず1又は数種の前培養をたとえば
液状栄養媒体中で製造し、次いで製造発酵槽中で予め潤
製された前記組成の栄養溶液に十分に増殖した前培養を
約1:5〜1:15の割合で植菌する様にして行うのが
好ましい。
培養の全期間の間、消費される栄養物質の補充によって
炭素、窒素及びリンに対する源並びにすべての微量栄養
素に対する源を細菌増殖に最適な濃度に保つ仁とが考慮
される。本発明に於ける最適な栄養素供給とは発酵の全
期間にわたって完全な栄養素供給のすべての成分を培養
状態に於て増殖条件は制限されず、微生物は増殖に必要
な栄養素、たとえば窒素又はリンの供給に於て不足もな
くかつ制限もうけない様な濃度で含有する培養媒体中で
の微牛物培巷のことである。
炭素、窒素及びリンに対する源並びにすべての微量栄養
素に対する源を細菌増殖に最適な濃度に保つ仁とが考慮
される。本発明に於ける最適な栄養素供給とは発酵の全
期間にわたって完全な栄養素供給のすべての成分を培養
状態に於て増殖条件は制限されず、微生物は増殖に必要
な栄養素、たとえば窒素又はリンの供給に於て不足もな
くかつ制限もうけない様な濃度で含有する培養媒体中で
の微牛物培巷のことである。
細菌増殖に対する窒素の最適供給は”ManOmθtr
iCTechniques”、 Umbreit W、
W、、 Burr−1e Roll、 。
iCTechniques”、 Umbreit W、
W、、 Burr−1e Roll、 。
8tauffer ;f、B、、 Burges出版社
、ミネアポリス、ナメリカ(1964)に記載されたW
arburgの方法に従ってWarburg呼吸マスク
で測定する。
、ミネアポリス、ナメリカ(1964)に記載されたW
arburgの方法に従ってWarburg呼吸マスク
で測定する。
Alcaligenes 1atue菌株に対して最適
な窒素供給は増殖に対して制限された条件を調えること
なく一般に培養媒体中で全発酵期間の間に培養液体11
あたシ窒素濃度少なくとも45m97eに対して少なく
とも200p9の硫酸アンモニウム濃度が存在する時に
行われる。この際第一発酵段階で約50〜7 o o
my/eの窒素濃度が特に好ましい。
な窒素供給は増殖に対して制限された条件を調えること
なく一般に培養媒体中で全発酵期間の間に培養液体11
あたシ窒素濃度少なくとも45m97eに対して少なく
とも200p9の硫酸アンモニウム濃度が存在する時に
行われる。この際第一発酵段階で約50〜7 o o
my/eの窒素濃度が特に好ましい。
最適なリン供給に関して少なくとも500m97eのリ
ン濃度が好ましい。この場合更に600m971〜1.
2f/lの濃度の維持が特に好ましい。
ン濃度が好ましい。この場合更に600m971〜1.
2f/lの濃度の維持が特に好ましい。
炭素源として最適な栄養溶液はたとえば培養媒体1ノあ
たりシヨ糖1.5〜aogを含有する。
たりシヨ糖1.5〜aogを含有する。
この場合第一発酵段階でショ糖4〜10 f/lの−囲
がIrイに好オしい。
がIrイに好オしい。
本発明による生作下でA1ca]、igener+ 1
atu8菌株の培養にあたり驚くべきことに栄養素の制
限に依存して、たとえば車床の供給によって著l−いP
HB貯蔵が生じるのではなく、増殖に伺随する極めて
効果的なPHB−貯蔵が微生物に有効な増殖8 fl:
’F−完全な栄養素供給に於て観、察される。
atu8菌株の培養にあたり驚くべきことに栄養素の制
限に依存して、たとえば車床の供給によって著l−いP
HB貯蔵が生じるのではなく、増殖に伺随する極めて
効果的なPHB−貯蔵が微生物に有効な増殖8 fl:
’F−完全な栄養素供給に於て観、察される。
無制限の栄養素供給に於ける増殖に(−1随するPHB
−貯蔵は判異的な増り〕α速度も、PHB−生成物形成
速度も栄養素不足によって減少せず、したがって改良さ
れだPHB−蓄積を有する菌体の比較的大きい濃度は制
限された栄養素供給下に操作する公知方法に比して著し
く短い発酵時間内に得ることができるという利点を有す
る。
−貯蔵は判異的な増り〕α速度も、PHB−生成物形成
速度も栄養素不足によって減少せず、したがって改良さ
れだPHB−蓄積を有する菌体の比較的大きい濃度は制
限された栄養素供給下に操作する公知方法に比して著し
く短い発酵時間内に得ることができるという利点を有す
る。
この高い増殖−及び生成物形成−速度に基づき本発明に
よる方法の場合第一発酵段階で70重量%より多い細胞
乾燥軍属のPHB−貯蔵に於てたとえばo、3oh”〜
(、It 1 h ’の希釈割合りが得られ、第二段階
で依然として0.28 h ’〜r]、33.h の希
釈割合りが得られる。
よる方法の場合第一発酵段階で70重量%より多い細胞
乾燥軍属のPHB−貯蔵に於てたとえばo、3oh”〜
(、It 1 h ’の希釈割合りが得られ、第二段階
で依然として0.28 h ’〜r]、33.h の希
釈割合りが得られる。
F 発酵槽への添加又は流出h)
及びディメンション/h−”/を有スる。)栄養溶液を
第一発酵段階で、好ましくは連続供給法で好ましくは発
酵釜である発酵槽中で発酵槽の最大処理容量が得られる
まで加える。最大処理容量の達成後、処理を連続的に更
に続ける。この場合培養液に一方では一定の流れで新ら
たな栄養溶液を供給し、他方では発酵槽から供給量と等
量の形成されたPHB−含有徽生物母集団を有する栄養
溶液を取シ除き、第二発酵槽に移す。
第一発酵段階で、好ましくは連続供給法で好ましくは発
酵釜である発酵槽中で発酵槽の最大処理容量が得られる
まで加える。最大処理容量の達成後、処理を連続的に更
に続ける。この場合培養液に一方では一定の流れで新ら
たな栄養溶液を供給し、他方では発酵槽から供給量と等
量の形成されたPHB−含有徽生物母集団を有する栄養
溶液を取シ除き、第二発酵槽に移す。
培養は通気条件下、たとえば酸素−又は空気供給下で行
われる。この際溶存酸素含有量を時間単位あたり導入さ
れる空気−又は酸素量の変化によって空気に関して25
〜50%飽和値の範囲に維持する。妨害されない増殖及
びPHB −蓄積の促進のために無菌の空気を撹拌され
た培養媒体中に加える。撹拌回転数の変化によって溶存
酸素含有量を所望の範囲に維持するとともできる。
われる。この際溶存酸素含有量を時間単位あたり導入さ
れる空気−又は酸素量の変化によって空気に関して25
〜50%飽和値の範囲に維持する。妨害されない増殖及
びPHB −蓄積の促進のために無菌の空気を撹拌され
た培養媒体中に加える。撹拌回転数の変化によって溶存
酸素含有量を所望の範囲に維持するとともできる。
前記条件下で微生物母集団を第一発酵槽中で無菌の四−
重置状態の達成後、培養液体11あたり細菌の乾燥体約
15〜25.9の濃度に少なくとも60重量%のPHB
−含有量で保つ様に希釈割合を選択するのが好ましい。
重置状態の達成後、培養液体11あたり細菌の乾燥体約
15〜25.9の濃度に少なくとも60重量%のPHB
−含有量で保つ様に希釈割合を選択するのが好ましい。
この場合少なくとも70重月%のPHB含有量が処理の
紅済的実施に特に増刊である。
紅済的実施に特に増刊である。
/″
://。
/ ・
第二発酵槽は八−と同一の形であることができ、撹拌釜
として形成することができる。第二発酵槽中の希釈割合
は一般に第一段階に於けるよシも少ないので、連続処理
の維持のために第二段階に於ける微生物の培養を比較的
大きい発酵槽中で続けなければならない。その処理′8
量は第−及び第二段階で種々の希釈割合及び付加的な栄
養素供給を考慮する様にして測定する。
として形成することができる。第二発酵槽中の希釈割合
は一般に第一段階に於けるよシも少ないので、連続処理
の維持のために第二段階に於ける微生物の培養を比較的
大きい発酵槽中で続けなければならない。その処理′8
量は第−及び第二段階で種々の希釈割合及び付加的な栄
養素供給を考慮する様にして測定する。
供給によシ第−発酵槽から得られる栄養素の残存濃度を
新らたな栄養素の添加によって第二段階でも最適なかつ
完全な栄養素供給を保証する様な程度に連続的に補充す
る。この操作によって増殖層を発酵の全期間維持し、細
胞内Pl(B−貯蔵が増殖に付随して高い速度で行われ
る。
新らたな栄養素の添加によって第二段階でも最適なかつ
完全な栄養素供給を保証する様な程度に連続的に補充す
る。この操作によって増殖層を発酵の全期間維持し、細
胞内Pl(B−貯蔵が増殖に付随して高い速度で行われ
る。
更に増殖条件下で篤くべきことに貯蔵細胞の相対的増加
が第二発酵段階で観察されるので、栄養溶液からの菌体
の分離を比較的簡単に実施する。それによって菌体をた
とえば簡単ない過によって良好に分離することができ、
経費のかかる装置、たとえば分離処理のための遠心分離
機の調達を省くことができる。
が第二発酵段階で観察されるので、栄養溶液からの菌体
の分離を比較的簡単に実施する。それによって菌体をた
とえば簡単ない過によって良好に分離することができ、
経費のかかる装置、たとえば分離処理のための遠心分離
機の調達を省くことができる。
第二発酵段階で微生物母集団の最大指数増殖の時点はす
でに越えているので、栄養素濃度を上記の最適な栄養素
供給にii8載された範囲の下限にf(II持し、使用
された栄養素のできるかぎシの良好な利用を生じるのが
有利である。
でに越えているので、栄養素濃度を上記の最適な栄養素
供給にii8載された範囲の下限にf(II持し、使用
された栄養素のできるかぎシの良好な利用を生じるのが
有利である。
したがって栄養媒体の組成及び新らたな栄養素の供給を
第二発r!γ段階で培養液体中の炭素源の丞;j度が培
養液体1tあたシショ糖約1.5gの値に達する様に制
限する。この場合1.5g〜2.59のと1度が特に好
ましい。窒素濃度は培養液体11あたシ少なくとも45
り、好ましくはほぼ50〜60ワである。
第二発r!γ段階で培養液体中の炭素源の丞;j度が培
養液体1tあたシショ糖約1.5gの値に達する様に制
限する。この場合1.5g〜2.59のと1度が特に好
ましい。窒素濃度は培養液体11あたシ少なくとも45
り、好ましくはほぼ50〜60ワである。
栄養溶液の溶存酸素含有量を第二発酵段階で空気に対す
る飽和値8〜15%、好ましくは8〜10%に下げる。
る飽和値8〜15%、好ましくは8〜10%に下げる。
溶存酸素含有量の減少は一方では酸素輸送に対するコス
トを減少し、同時に栄養媒体中の炭素源をより良好に利
用することができるという利点を有する。したがって特
に栄養素のよシ良好な利用が重要である。なぜならばそ
れによって流出物中の炭素物質の残存n度を発酵の終了
後著しく減少することができるからである。
トを減少し、同時に栄養媒体中の炭素源をより良好に利
用することができるという利点を有する。したがって特
に栄養素のよシ良好な利用が重要である。なぜならばそ
れによって流出物中の炭素物質の残存n度を発酵の終了
後著しく減少することができるからである。
本発ツJによる方法の条件下で微生物は細胞中のPHB
−含有量を細胞乾燥重量約84%まで増加することがで
きる。処理の実質上の実施に於て第二発酵段階で希釈割
合を微生物母集団が培養液体11あたり細胞乾燥重量1
5〜35gの6度に細胞乾燥重量70〜80重景%、重
量しくは75〜80重量%のPHB−含有量で増加する
様に調製するのが好ましい。
−含有量を細胞乾燥重量約84%まで増加することがで
きる。処理の実質上の実施に於て第二発酵段階で希釈割
合を微生物母集団が培養液体11あたり細胞乾燥重量1
5〜35gの6度に細胞乾燥重量70〜80重景%、重
量しくは75〜80重量%のPHB−含有量で増加する
様に調製するのが好ましい。
Alcaligeneg 1atus菌株はAlcal
igenesθutrophus種に反して篤くべきこ
とに熱公差体である。この高められた熱公差は発酵に対
する最適温度範囲が36〜42℃であることを示す。
igenesθutrophus種に反して篤くべきこ
とに熱公差体である。この高められた熱公差は発酵に対
する最適温度範囲が36〜42℃であることを示す。
この際37〜39℃の温度が好ましい。この湿度範囲で
の培養は増殖及びPUB−貯蔵の促進作用の他に発酵中
の冷却コストを著しく減少することができるという利点
を有する。比較的短い滞留時間と共に高められた温度で
培養するととによる冷却コストの節約は/lをに重要で
ある。というのは冷却コストは一般に発酵槽の作業に於
て生じるエネルギーコストの半分であるからである。
の培養は増殖及びPUB−貯蔵の促進作用の他に発酵中
の冷却コストを著しく減少することができるという利点
を有する。比較的短い滞留時間と共に高められた温度で
培養するととによる冷却コストの節約は/lをに重要で
ある。というのは冷却コストは一般に発酵槽の作業に於
て生じるエネルギーコストの半分であるからである。
栄丁で浴液のpu h!’−を糸゛V内溶液、たとえば
リン酸堪縛丙清17X又tよ水性塩基、たとえば水酸化
−カリウム又は−ナトリウム溶液の連続的添加によって
有利に6.5〜7.5の値に、好ましくは6.8〜7.
2の値に−Hjj、’4 :ij’くする。
リン酸堪縛丙清17X又tよ水性塩基、たとえば水酸化
−カリウム又は−ナトリウム溶液の連続的添加によって
有利に6.5〜7.5の値に、好ましくは6.8〜7.
2の値に−Hjj、’4 :ij’くする。
前記条件下で処理の連続作業を1すられた菌体の組成に
於て又は収益率に於て変化が生じることなく数週間((
fj持することができる。
於て又は収益率に於て変化が生じることなく数週間((
fj持することができる。
炭素源として炭化水素を使用する場合、本発明による方
法で収益率Y xA= 0.42〜0.46が2つの処
理段階で得られる。う゛なわち使用される炭化水素1g
あたすPHB−含有菌体の形で0.42〜0.469細
胞乾燥重量が得られる。
法で収益率Y xA= 0.42〜0.46が2つの処
理段階で得られる。う゛なわち使用される炭化水素1g
あたすPHB−含有菌体の形で0.42〜0.469細
胞乾燥重量が得られる。
第二発酵槽への供給量に応じて、PHBを蓄積した微生
物母集団を有する培養溶液を取り出し、菌体をjYt常
の分離法によって、たとえばデカンテーション又は遠心
公邸、好ましくはvi過によって分離し、それからPU
Bが常法で抽出によって、たとえは米国特許第4,10
1,533号明細書の方法に従ってイ↓)られる。
物母集団を有する培養溶液を取り出し、菌体をjYt常
の分離法によって、たとえばデカンテーション又は遠心
公邸、好ましくはvi過によって分離し、それからPU
Bが常法で抽出によって、たとえは米国特許第4,10
1,533号明細書の方法に従ってイ↓)られる。
菌体を除去した栄養溶液は一般にほんの少量の栄養素濃
度を有する。 ゛ 菌体を除去した栄養溶液を残存する栄養素の利用のため
に、循環により第一発酵4119中に回収し、最適な栄
養素濃度を得るために新らたな栄養溶液を加え、次の培
養に使用することができる。
度を有する。 ゛ 菌体を除去した栄養溶液を残存する栄養素の利用のため
に、循環により第一発酵4119中に回収し、最適な栄
養素濃度を得るために新らたな栄養溶液を加え、次の培
養に使用することができる。
、次の例によって本発明を詳A11lに説明する。
例
151の処理容量を有する無菌の発酵槽中に(NH4)
2So41 、s !/l及びシー1糖15v′tの含
有量を有する栄養媒体(1) 10 tを予め存在させ
、これにAlcaligenes 1atus DSM
161123の十分に増殖した前培養1tを植菌する
。
2So41 、s !/l及びシー1糖15v′tの含
有量を有する栄養媒体(1) 10 tを予め存在させ
、これにAlcaligenes 1atus DSM
161123の十分に増殖した前培養1tを植菌する
。
媒体(11は次の組成を有する:
)Ia2HPO4,2H20: 4.5 VtKH2P
O41,5g/1 Mf EIO4,7H20: 0.2 Vtcaaz2
.2H200,02g/を 微)■溶液 °2mら/l Fe Ill −NH4−シトラード : o、osg
/を微量溶液は次の組成を有する: ZuSO4,7H20100Q/1 Mnct2.4H2o −301ny/lH,Bo、
300弔t 00C!Z2.6H20・ 200)71cuco4.
5H,,0: 10 ”f/lN1p12.6H20−
20mf/l HaMoO4−2H20: 501rg/Z溶存酸素含
有量を撹拌回転数及び通気割合の変化によって空気に対
する飽和値28〜30%の範囲に保つ。処理温度ll″
ll:37℃である。発酵の間栄養溶液のpH−値を自
動滴定機によって10%無菌の水性NaOH−溶液を用
いて7.0で一定に保つ。
O41,5g/1 Mf EIO4,7H20: 0.2 Vtcaaz2
.2H200,02g/を 微)■溶液 °2mら/l Fe Ill −NH4−シトラード : o、osg
/を微量溶液は次の組成を有する: ZuSO4,7H20100Q/1 Mnct2.4H2o −301ny/lH,Bo、
300弔t 00C!Z2.6H20・ 200)71cuco4.
5H,,0: 10 ”f/lN1p12.6H20−
20mf/l HaMoO4−2H20: 501rg/Z溶存酸素含
有量を撹拌回転数及び通気割合の変化によって空気に対
する飽和値28〜30%の範囲に保つ。処理温度ll″
ll:37℃である。発酵の間栄養溶液のpH−値を自
動滴定機によって10%無菌の水性NaOH−溶液を用
いて7.0で一定に保つ。
培養が更に経過するにつれて、栄養物質を連続供給法に
よ多消費速度及び希釈に適合した新らたな栄養溶液の供
給によって一定に維持する。
よ多消費速度及び希釈に適合した新らたな栄養溶液の供
給によって一定に維持する。
新らたな溶液は濃度300ルlを有するショ糖溶液、濃
度200 g/lを有する(Nn4)2so4−溶液及
び新らたな媒体(1)から成る。
度200 g/lを有する(Nn4)2so4−溶液及
び新らたな媒体(1)から成る。
反応容器の最大処理容量に達した時、培養液に一方では
一定の流れで新らたな栄養溶液を供給し、他方では供給
量と等量の栄養溶液を取シ出し、連続した流れで処理容
量251を有する第二発酵槽へ移す。新らたに培養され
た栄養液はショ糖を40 Illの濃度で(NH4)、
、Bo4を4.6f/lの濃度で及び新らたな媒体(1
)を上記組成で含有する。この方法で2〜6時間後、無
菌の同一重量状態がl得られる。この場合第一発酵段階
に於ける培養液はPHB含有量71重月−%を有する乾
燥菌体16.5ψを含有する。
一定の流れで新らたな栄養溶液を供給し、他方では供給
量と等量の栄養溶液を取シ出し、連続した流れで処理容
量251を有する第二発酵槽へ移す。新らたに培養され
た栄養液はショ糖を40 Illの濃度で(NH4)、
、Bo4を4.6f/lの濃度で及び新らたな媒体(1
)を上記組成で含有する。この方法で2〜6時間後、無
菌の同一重量状態がl得られる。この場合第一発酵段階
に於ける培養液はPHB含有量71重月−%を有する乾
燥菌体16.5ψを含有する。
第二発酵槽への溢流はまだ0.45 Illの(NH4
)2SO4−残存濃度及び約4.1 Illのショ糖−
残存濃度を有する。同一重量状態で新らたな栄養媒体6
.01/hを供給する。これは希釈割合D=0.4h
”−1に相当する。
)2SO4−残存濃度及び約4.1 Illのショ糖−
残存濃度を有する。同一重量状態で新らたな栄養媒体6
.01/hを供給する。これは希釈割合D=0.4h
”−1に相当する。
257!の最大処理容量を有する第二発酵槽中で温度及
びpH−値を第一発酵槽に於けると同様に調製し一定に
保つ。これに反して通気割合及び撹拌回転数の変化によ
って溶存酸素濃度が空気に対する飽和値8〜10%に減
少する。付加的に第一発酵段階からの供給のために、第
二発酵槽に硫酸アンモン26−64ψ及び2661の濃
度を有するショ糖を含有する無菌の水性栄養溶液L51
! (1時間あたり)を供給し、上記二つの物質の濃度
をこの層中でも制限しない。
びpH−値を第一発酵槽に於けると同様に調製し一定に
保つ。これに反して通気割合及び撹拌回転数の変化によ
って溶存酸素濃度が空気に対する飽和値8〜10%に減
少する。付加的に第一発酵段階からの供給のために、第
二発酵槽に硫酸アンモン26−64ψ及び2661の濃
度を有するショ糖を含有する無菌の水性栄養溶液L51
! (1時間あたり)を供給し、上記二つの物質の濃度
をこの層中でも制限しない。
この操作によって増殖層を全培養の間維持する。
このΦ件下で第二発酵段階の出口に一定のPHB−割合
79重貸%を有する乾燥菌体35.5g(11あたり)
を含有する培養液が得られる。
79重貸%を有する乾燥菌体35.5g(11あたり)
を含有する培養液が得られる。
この第二段階で希釈割合D = Oj Oh−1が得ら
れる。とれは1時間あたり7.51の全流量に相当す゛
る。
れる。とれは1時間あたり7.51の全流量に相当す゛
る。
連続発酵を収益率YX/8 = 0.46又は菌体の組
成に関して変化が生じることなく5週間の期間にわたっ
て問題なく維持することができる。
成に関して変化が生じることなく5週間の期間にわたっ
て問題なく維持することができる。
次の表置中にAlcaligenes 1atue 1
4株])8MA1125を用いてPHBの連続二段階製
造に於ける処理条件を示す。
4株])8MA1125を用いてPHBの連続二段階製
造に於ける処理条件を示す。
表1
段階1 段階2
処理容量 151 251
撹拌機 横板 横板
湿 度 37℃ 37℃
pH−値 7,0 7.0
02−濃度 28−30% 8−10%(%空気飽和)
希釈割合D O,4h ’ 0.3h ’炭素源 ショ
糖 ショ糖 ショ糖濃度 (補給して) 40vμ − 窒素源 (NH4)2804(NH4)2804濃度(
NH4)2s04 (補給して) 4.6t/l − ショ糖残存f%IJ:C4,1りIt 2.1 f/を
残存一度(N H4) 2004 0.45 f/Z
O,085f/Zシヨ糖消費量 35.91 − (NH4)2So4−鎖式−F、) 4.15 t/l
−生産性菌体 99 f/h 266.4 t/h生
産性PJ(B 70.4 f/h 210.46f/f
YX+シヨ糖 0,46f/f O,46f/9Yx、
(NH4)2So43.914 3.98f/f(N
H4)2S04−γ農11“+4 26,64 f/を
分流発酵槽 2 (1,54/h) ショ糖−濃度 236成 分流発酵槽 2 (1,5tA) 菌体濃度(補給して)13゜2 t/を代理人江崎光好 代理人 江 崎 光 史
糖 ショ糖 ショ糖濃度 (補給して) 40vμ − 窒素源 (NH4)2804(NH4)2804濃度(
NH4)2s04 (補給して) 4.6t/l − ショ糖残存f%IJ:C4,1りIt 2.1 f/を
残存一度(N H4) 2004 0.45 f/Z
O,085f/Zシヨ糖消費量 35.91 − (NH4)2So4−鎖式−F、) 4.15 t/l
−生産性菌体 99 f/h 266.4 t/h生
産性PJ(B 70.4 f/h 210.46f/f
YX+シヨ糖 0,46f/f O,46f/9Yx、
(NH4)2So43.914 3.98f/f(N
H4)2S04−γ農11“+4 26,64 f/を
分流発酵槽 2 (1,54/h) ショ糖−濃度 236成 分流発酵槽 2 (1,5tA) 菌体濃度(補給して)13゜2 t/を代理人江崎光好 代理人 江 崎 光 史
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 (1) 同化しうる炭素、窒素及びリンの源並びに微生
物の増殖に必要な有機又は無機の微量栄養素の供給物を
含有する水性栄養媒体中でAlcaligenee属の
微生物を通気培養してポリ−D(−)i−ヒドロキシ酪
酸(PHB )を製造するにあたりAlcaligen
ee 1atueの菌株又はこの微生物から由来するP
HB−貯蔵変異株を完全なかつ微生物の増殖に最適な栄
養素の供給と同時に制限されていない増殖条件下36な
いし42℃の温度範囲で2つの分離しかつ連続する発酵
段階で無菌条件下に連続的に培養し、その際第一段階で
空気に対する飽和値25〜50%の溶存酸素含有量で培
養されたPHB−含有微生物母集団を培養溶液と共に連
続的に第二発酵段階に移し、そこで培養を空気に対する
飽和値8〜15%の溶存酸素含有量で続け、その際に得
られた菌体からPHBを常法で抽出して得ることを特徴
とする、前記PHBのバイオテクノロジーによる製造法
。 (2) Alcaligenee 1atue DSM
A 1122 、DSM、41123又はDEIMA
1124の菌株を使用することよりなる特許請求の範囲
第1項記載の方法。 (3)炭素源としてショ糖を使用するととよりなる特許
請求の範囲第1項又は第2項記載の方法。 (4) 菌株Alcaligenes 1atue D
SM A1123を唯一の炭素源としてショ糖を用いて
培養することよりなる特許請求の範囲第1項ないし第5
項のいずれかに記載した方法。 (5)培養液体11あたシ炭素源としてシヨ糖1.5〜
40gを含有する栄養媒体中で培養を実施することより
なる特許請求の範囲第1項ないし第4項のいずれかに記
載した方法。 (6)発酵の全時間、培養液体11あだり少なくとも4
5ダの窒素を含有する栄養媒体中で培養を実施すること
よりなる特許請求の範囲第1項ないし第5項のいずれか
に記載した方法。 (7)培養液体11あたり第一発酵段階で炭素源として
ショ糖4〜10F!及び窒素50−420〜及び第二発
酵段階で炭素源としてシ田糖1.5〜2.5g及び窒素
50〜60m9を含有する栄養媒体中で培養を実施する
ことよりなる特許請求の範囲第1項ないし第6項のいず
れかに記載した方法。 (8)培養液体11あたり少なくとも500m9のリン
を含有する栄養媒体中で培養を実施する(9)第一発酵
段階で培養液体11あたり細菌の乾燥体15〜25gの
濃度を有する微生物母集団を少なくとも70重重量のP
UB−含有量で培養することよりなる特許請求の範囲第
1項ないし第8項のいずれかに記載した方法。 (10) 培養を第二発酵段階で空気に対する飽和値8
−10%の溶存酸素含有量に於て実施することよりなる
特許請求の範囲第1項ないし第9項のいずれかに記載し
た方法。 (11)第二発酵段階で菌体のPHB−含有量を細胞乾
燥重量75−8g重i%に増加することよりなる特許請
求の範囲第1項ないし第10項のいずれかに記載した方
法。 (12)培養を37〜39℃の温度で実施することより
なる特許請求の範囲第1項ないし第11項のいずれかに
記載した方法。 (13) 6 、8〜7.2のpH−値で培養を実施す
ることよりなる特許請求の範囲第1項ないし第12項の
いずれかに記載した方法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE3343551.0 | 1983-12-01 | ||
DE19833343551 DE3343551A1 (de) | 1983-12-01 | 1983-12-01 | Verfahren zur biotechnologischen herstellung von poly-d(-)-3-hydroxybuttersaeure |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS60214888A true JPS60214888A (ja) | 1985-10-28 |
JPH0579313B2 JPH0579313B2 (ja) | 1993-11-02 |
Family
ID=6215817
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Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP59252067A Granted JPS60214888A (ja) | 1983-12-01 | 1984-11-30 | ポリ−d(−)−3−ヒドロキシ酪酸のバイオテクノロジ−による製造方法 |
Country Status (9)
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---|---|
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EP (1) | EP0144017B1 (ja) |
JP (1) | JPS60214888A (ja) |
KR (1) | KR910008625B1 (ja) |
AT (1) | ATE32234T1 (ja) |
AU (1) | AU573653B2 (ja) |
CA (1) | CA1236415A (ja) |
DE (2) | DE3343551A1 (ja) |
ZA (1) | ZA849326B (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4876331A (en) * | 1987-08-18 | 1989-10-24 | Mitsubishi Kasei Corporation | Copolyester and process for producing the same |
JPH09500157A (ja) * | 1993-07-14 | 1997-01-07 | ゼネカ・リミテッド | 接着法 |
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---|---|---|---|---|
DE3343576A1 (de) * | 1983-12-01 | 1985-06-13 | Lentia GmbH Chem. u. pharm. Erzeugnisse - Industriebedarf, 8000 München | Verfahren zur biotechnologischen herstellung von poly-d(-)-3-hydroxybuttersaeure |
GB8513310D0 (en) * | 1985-05-28 | 1985-07-03 | Ici Plc | Copolymer production |
AT390068B (de) * | 1988-07-07 | 1990-03-12 | Danubia Petrochemie | Extraktionsmittel fuer poly-d(-)-3-hydroxybuttersaeure |
US5518907A (en) * | 1989-06-07 | 1996-05-21 | Center For Innovative Technology | Cloning and expression in Escherichia coli of the Alcaligenes eutrophus H16 poly-beta-hydroxybutyrate biosynthetic pathway |
US5334520A (en) * | 1990-05-25 | 1994-08-02 | Center For Innovative Technology | Production of poly-beta-hydroxybutyrate in transformed escherichia coli |
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US5225227A (en) * | 1990-11-21 | 1993-07-06 | Manssur Yalpani | Polyhydroxyalkanoate flavor delivery system |
US5229158A (en) * | 1990-11-21 | 1993-07-20 | Manssur Yalpani | Polyhydroxyalkanoate cream substitutes |
ATA258390A (de) * | 1990-12-19 | 1997-08-15 | Danubia Petrochem Polymere | Mischung aus vorwiegend einem polyhydroxyalkanoat und einer verbindung, die mindestens zwei reaktive gruppen wie säure- und/oder alkoholgruppen enthält und ein durch schmelzen der mischung hergestelltes polymerisat |
NL9201803A (nl) * | 1992-10-16 | 1994-05-16 | Inst Voor Agrotech Onderzoek | PHB-producerend microorganisme, werkwijze voor het verkrijgen van een PHB-producerend microorganisme, werkwijze voor het produceren van PHB en werkwijze voor het verwijderen van glycerol uit een glycerol bevattend medium. |
JP3524495B2 (ja) | 1998-01-19 | 2004-05-10 | エルジ ケミカル リミテッド | アルカリゲネスラタス由来のポリヒドロキシアルカノエート生合成関連遺伝子 |
MXPA00009561A (es) * | 1998-03-30 | 2002-08-06 | Metabolix Inc | Cepas microbianas y procesos para la fabricacion de biomateriales. |
DE19910143C2 (de) * | 1999-02-26 | 2001-03-15 | Saechsisches Inst Fuer Angewan | Verfahren zur kontinuierlichen biotechnischen Herstellung von Poly-beta-hydroxybuttersäure |
US8507253B2 (en) | 2002-05-13 | 2013-08-13 | Algae Systems, LLC | Photobioreactor cell culture systems, methods for preconditioning photosynthetic organisms, and cultures of photosynthetic organisms produced thereby |
US8110395B2 (en) | 2006-07-10 | 2012-02-07 | Algae Systems, LLC | Photobioreactor systems and methods for treating CO2-enriched gas and producing biomass |
EP2152848A2 (en) | 2007-04-27 | 2010-02-17 | Greenfuel Technologies Corporation | Photobioreactor systems positioned on bodies of water |
CN114769296B (zh) * | 2022-05-20 | 2024-02-09 | 中国环境科学研究院 | 一种利用有机废物发酵液培养产pha颗粒污泥的方法及系统 |
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---|---|---|---|---|
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DE3063405D1 (en) * | 1979-02-21 | 1983-07-07 | Ici Plc | Microbiological process for the production of poly (beta-hydroxybutyric acid) and micro-organisms for use therein |
DE3171017D1 (en) * | 1980-08-19 | 1985-07-25 | Ici Plc | Fermentation process |
GB8311677D0 (en) * | 1983-04-28 | 1983-06-02 | Ici Plc | Extraction process |
DE3343576A1 (de) * | 1983-12-01 | 1985-06-13 | Lentia GmbH Chem. u. pharm. Erzeugnisse - Industriebedarf, 8000 München | Verfahren zur biotechnologischen herstellung von poly-d(-)-3-hydroxybuttersaeure |
-
1983
- 1983-12-01 DE DE19833343551 patent/DE3343551A1/de not_active Withdrawn
-
1984
- 1984-11-14 AT AT84113701T patent/ATE32234T1/de not_active IP Right Cessation
- 1984-11-14 EP EP84113701A patent/EP0144017B1/de not_active Expired
- 1984-11-14 DE DE8484113701T patent/DE3469038D1/de not_active Expired
- 1984-11-23 US US06/675,969 patent/US4786598A/en not_active Expired - Fee Related
- 1984-11-27 AU AU35937/84A patent/AU573653B2/en not_active Ceased
- 1984-11-28 CA CA000468855A patent/CA1236415A/en not_active Expired
- 1984-11-29 ZA ZA849326A patent/ZA849326B/xx unknown
- 1984-11-30 JP JP59252067A patent/JPS60214888A/ja active Granted
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