JPS60173470A - 低密度のリポ蛋白質を測定する方法及び試薬 - Google Patents
低密度のリポ蛋白質を測定する方法及び試薬Info
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- JPS60173470A JPS60173470A JP59223130A JP22313084A JPS60173470A JP S60173470 A JPS60173470 A JP S60173470A JP 59223130 A JP59223130 A JP 59223130A JP 22313084 A JP22313084 A JP 22313084A JP S60173470 A JPS60173470 A JP S60173470A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明は、低密度のリボ蛋白質(LDL )を測定する
方法及び試薬に関する。
方法及び試薬に関する。
従来の技術
LDL−フラクション(低密度のリボ蛋白質)(β−リ
ボ蛋白質フラクションとも呼ばれる)の測定は、リビド
の物質代謝障害の差別診断に重要性を有する。
ボ蛋白質フラクションとも呼ばれる)の測定は、リビド
の物質代謝障害の差別診断に重要性を有する。
過コレステリン血症及び過トリグリセリド面症によって
、アテローム性動脈硬化症及び心ぞう硬塞の発生が促進
される。それ故、血清中のコレステリン及びトリグリセ
リドの測定は、臨床化学上の日常の実験室で最も屡々行
われる試験に所属する。
、アテローム性動脈硬化症及び心ぞう硬塞の発生が促進
される。それ故、血清中のコレステリン及びトリグリセ
リドの測定は、臨床化学上の日常の実験室で最も屡々行
われる試験に所属する。
脂肪の物質代謝に対する多くの検査は、トリグリセリド
及びコレステリンの含量の変化を測定するだけではなく
、リボ蛋白質の根底となる病理学的変位も測定する場合
K、個々の冠状弱〔ミュンヘナー・メディチニツシエ・
ボッヘンシュリフト(MOnchener Mediz
inische Wochen −5chrift )
121巻(1979年、1639頁〕。
及びコレステリンの含量の変化を測定するだけではなく
、リボ蛋白質の根底となる病理学的変位も測定する場合
K、個々の冠状弱〔ミュンヘナー・メディチニツシエ・
ボッヘンシュリフト(MOnchener Mediz
inische Wochen −5chrift )
121巻(1979年、1639頁〕。
公知血漿リボ蛋白質は種々の高成分の蛋白質(アポリボ
蛋白質)、ホスホリボF、コレステリン及びトリグリセ
リ17 全含有する。これらは、その挙動(異なる密度
)に基づいて分析用の超遠心分離機で及びその移動速度
に基づいてゲルの電気泳動で牛つの異なる群に分けるこ
とができる: 乳μ2脂粒 ブリーβ−リボ蛋白質二VLDL(著しい低密度のリボ
蛋白質) β−リボ蛋白質−LDI・(低密度のリボ蛋白質)α−
IJ 7f’蛋白質−HDL (尚密度のリボ蛋白質)
リボ蛋白質の作用の試験に、J:す、リボ蛋白質中のL
DLは決定的なアテローム成分であり、血液中でそれが
増加する場合には冠状心そう病の増大した危険が存在す
ることが判明した。この秋態の早期の発見及び処置は極
めて重要である。
蛋白質)、ホスホリボF、コレステリン及びトリグリセ
リ17 全含有する。これらは、その挙動(異なる密度
)に基づいて分析用の超遠心分離機で及びその移動速度
に基づいてゲルの電気泳動で牛つの異なる群に分けるこ
とができる: 乳μ2脂粒 ブリーβ−リボ蛋白質二VLDL(著しい低密度のリボ
蛋白質) β−リボ蛋白質−LDI・(低密度のリボ蛋白質)α−
IJ 7f’蛋白質−HDL (尚密度のリボ蛋白質)
リボ蛋白質の作用の試験に、J:す、リボ蛋白質中のL
DLは決定的なアテローム成分であり、血液中でそれが
増加する場合には冠状心そう病の増大した危険が存在す
ることが判明した。この秋態の早期の発見及び処置は極
めて重要である。
萌細書の浄書(内容に変更なし)
それ故、血清及び血漿中のLDL−濃度を定量的に測定
する実際的方法の必要が存在す。
する実際的方法の必要が存在す。
従来LDL−コレステリン値を測定するためには主とし
て3つの方法が使用されたが、これらは欠点を有する: (1) 超遠心分離 こ[有]方法は日常の実験室には不適当である。
て3つの方法が使用されたが、これらは欠点を有する: (1) 超遠心分離 こ[有]方法は日常の実験室には不適当である。
それというのもこのためには特別の装置を必要とし、そ
の実施は超遠心分離で極めて慎重な操作技術及び著しく
長い時間(数日間の遠心分離)を要する。それ故、従来
この分析法は学術数学用の実験室に保留されたのに過き
ない。
の実施は超遠心分離で極めて慎重な操作技術及び著しく
長い時間(数日間の遠心分離)を要する。それ故、従来
この分析法は学術数学用の実験室に保留されたのに過き
ない。
(2) 続くポリアニオンの沈殿にょろりボ蛋白質バン
ドの視覚化を有する電気泳動による分離及びコレステリ
ン値の混濁単位の換算。
ドの視覚化を有する電気泳動による分離及びコレステリ
ン値の混濁単位の換算。
しかしながらこの方法は時間がかかり、特別の電気泳動
装置並びに測定するための密度計を必要とする〔ラボラ
トワル・メディカル(Labo−ratoire Me
dical )第1巻(1977年)、第145頁〕。
装置並びに測定するための密度計を必要とする〔ラボラ
トワル・メディカル(Labo−ratoire Me
dical )第1巻(1977年)、第145頁〕。
明!mff1の浄鶏(内容に変更なし)(3) フリー
デ、Sルド(Friedewald )の式によるLD
L−コレステリン値の測定〔クリニカル・ケ ミ ス
ト リ − (C11nical Chemistry
) fM L’8巻(1972年)、第499頁〕。
デ、Sルド(Friedewald )の式によるLD
L−コレステリン値の測定〔クリニカル・ケ ミ ス
ト リ − (C11nical Chemistry
) fM L’8巻(1972年)、第499頁〕。
フリーデパルド(Friedewald ) の式によ
りLDL−コレステリン値を計算するためには、3つの
・ξラメータの測定が必要である°試料のコレステリン
値、HDL−コレステリン値及びトリグリセリド値。そ
れ故この方法は全く実際的ではない。更にこの式は、乳
摩脂粒を含壕ない試料及びトリグリセリ1値400 m
9/di以下を有する試料にあてはするのに過ぎない。
りLDL−コレステリン値を計算するためには、3つの
・ξラメータの測定が必要である°試料のコレステリン
値、HDL−コレステリン値及びトリグリセリド値。そ
れ故この方法は全く実際的ではない。更にこの式は、乳
摩脂粒を含壕ない試料及びトリグリセリ1値400 m
9/di以下を有する試料にあてはするのに過ぎない。
(4) 沈殿反応
LDLをレクチンを用いて沈殿させる方法は、ドイツ公
開特許明細書第2857710号に記載されている。し
かしながらこの方法では、LDL−コレステリンの値は
沈殿物を再び溶解した後に初めてか又は沈殿前後のコレ
ステリン値の差異によって測定することができるのに過
ぎない。これは著しい欠点である。
開特許明細書第2857710号に記載されている。し
かしながらこの方法では、LDL−コレステリンの値は
沈殿物を再び溶解した後に初めてか又は沈殿前後のコレ
ステリン値の差異によって測定することができるのに過
ぎない。これは著しい欠点である。
I、DLが沈殿の上澄み中に存在するリボ蛋白質の沈殿
法は、ドイツ特許明細書第2600664号に記載され
ている。しかしこの方法は、日常の測定法としての使用
には実際に使用することができない。それというのもリ
ボ蛋白質の沈殿には、2丁和が必要だからである(2つ
の異なる因子−ポリエチレンイミン及びカチオン交換剤
の添加は、間にある培養用をともなう)。
法は、ドイツ特許明細書第2600664号に記載され
ている。しかしこの方法は、日常の測定法としての使用
には実際に使用することができない。それというのもリ
ボ蛋白質の沈殿には、2丁和が必要だからである(2つ
の異なる因子−ポリエチレンイミン及びカチオン交換剤
の添加は、間にある培養用をともなう)。
発明が解決しようとする問題点
それ故、LDL −IJボ蛋白質を測定するために、大
きい確実性及び分離性を有する簡単な方法及び試薬によ
る必要が存在する。ドイツ特許願P3215310.4
によれば、この問題は体液中の低密度のリボ蛋白質(L
DL )を測定する方法によって解決される。この方法
は、検査すべき試料に高密度のリボ蛋白質(HDL )
−抗体を添加し、形成した不溶物を分離し、上澄みでL
DL又はその成分を測定することを特徴とする特に過リ
ピド血症の、即ちVLDLを多く含む血清で免疫沈殿物
の形成を促進し、免疫錯体をなお簡単で完全に遠心分離
によって除くことができる場合に好ましいことが判明し
た。
きい確実性及び分離性を有する簡単な方法及び試薬によ
る必要が存在する。ドイツ特許願P3215310.4
によれば、この問題は体液中の低密度のリボ蛋白質(L
DL )を測定する方法によって解決される。この方法
は、検査すべき試料に高密度のリボ蛋白質(HDL )
−抗体を添加し、形成した不溶物を分離し、上澄みでL
DL又はその成分を測定することを特徴とする特に過リ
ピド血症の、即ちVLDLを多く含む血清で免疫沈殿物
の形成を促進し、免疫錯体をなお簡単で完全に遠心分離
によって除くことができる場合に好ましいことが判明し
た。
問題点を解決するための手段
本発明によれば、この目的は抗体にポリアニオンと2価
のカチオンとからなる混合物を添加することによって解
決される。
のカチオンとからなる混合物を添加することによって解
決される。
本発明は、ポリアニオンと21ifliのカチオンとの
混合物の添加によって抗体の性質は不利に影響されない
驚異的な確認に基づく。更に従来は4e Uアミンの添
加によって、VI、DI、及び他のリボ蛋白質フラクシ
ョンの所望の沈殿だけではなく、測定すべきLDLの沈
殿も惹起されることが恐れらねていた。しかしながら、
意外なことにも約150mモル/lよりも大きい塩の濃
度で、迅速かつ完全なリボ蛋白質−抗体−錯体の集合が
、ポリアニオン及び2価のカチオンの存在によってLD
Lの共沈殿が生じないで促進され、その遠心分離性が高
められる。ポリアニオン、例えばテキストランサルフェ
ート、ヘパリン、燐タングステン酸及びポリビニルサル
フェート及び2価のカチオンの塩化物、例えば塩化カル
シウム、−マグネシウム及び−マンがンの使用が有利な
ことが判明した。デキストランサルフェートは高分子(
分子量5 X 10’〜2X10’)か又は短連釦(分
子量5000〜50000 )であってもよい。抗体が
共有結合によってデキストランサルフェート又はヘパリ
ンに結合しているのが特に好ましく、その際結合は常法
によって行われ、こうして得られた共軛根は塩化カルシ
ウム、−マグネシウム又は−マンガントー緒拠試験に使
用する。
混合物の添加によって抗体の性質は不利に影響されない
驚異的な確認に基づく。更に従来は4e Uアミンの添
加によって、VI、DI、及び他のリボ蛋白質フラクシ
ョンの所望の沈殿だけではなく、測定すべきLDLの沈
殿も惹起されることが恐れらねていた。しかしながら、
意外なことにも約150mモル/lよりも大きい塩の濃
度で、迅速かつ完全なリボ蛋白質−抗体−錯体の集合が
、ポリアニオン及び2価のカチオンの存在によってLD
Lの共沈殿が生じないで促進され、その遠心分離性が高
められる。ポリアニオン、例えばテキストランサルフェ
ート、ヘパリン、燐タングステン酸及びポリビニルサル
フェート及び2価のカチオンの塩化物、例えば塩化カル
シウム、−マグネシウム及び−マンがンの使用が有利な
ことが判明した。デキストランサルフェートは高分子(
分子量5 X 10’〜2X10’)か又は短連釦(分
子量5000〜50000 )であってもよい。抗体が
共有結合によってデキストランサルフェート又はヘパリ
ンに結合しているのが特に好ましく、その際結合は常法
によって行われ、こうして得られた共軛根は塩化カルシ
ウム、−マグネシウム又は−マンガントー緒拠試験に使
用する。
反応混合物中のボロアニオンの好ましい濃度範囲は、高
分子のデキストランザルフエ−1・では0.1〜8g/
l、短連釦のデキストランサルフェート及びヘプテンで
は1〜151/l、ポリビニルザルフェートでは0.2
〜5fl/l及び燐タングステン酸では0.6〜6 g
/lである。
分子のデキストランザルフエ−1・では0.1〜8g/
l、短連釦のデキストランサルフェート及びヘプテンで
は1〜151/l、ポリビニルザルフェートでは0.2
〜5fl/l及び燐タングステン酸では0.6〜6 g
/lである。
使用すべき2価の金属イオンの濃度は、反応混合物中で
好ましくは10〜250mモル/lである。更に反応混
合物は、好ましくは塩化ナトリウムを濃度0.1〜1モ
ル/lで含有する。使用すべき緩衝剤としては、PH範
囲約6.5〜8.5の常用の緩衝液、常えばMFB(モ
ルホリンエタンスルホン酸)、トリエタノールアミン、
MOPS(モルホリノプロパンスルホンM)、ト11ス
ー緩衝剤がこれに該当する。
好ましくは10〜250mモル/lである。更に反応混
合物は、好ましくは塩化ナトリウムを濃度0.1〜1モ
ル/lで含有する。使用すべき緩衝剤としては、PH範
囲約6.5〜8.5の常用の緩衝液、常えばMFB(モ
ルホリンエタンスルホン酸)、トリエタノールアミン、
MOPS(モルホリノプロパンスルホンM)、ト11ス
ー緩衝剤がこれに該当する。
抗体は、γ−グロブリン1〜”InOmy/mlに相応
する濃度で存在する。
する濃度で存在する。
試薬の上澄み中に残留するLT’)L−フラクションは
、常法によって測定することができろ。好ましくはこの
中に含まれた結合コレステリンの測定は、公知方法を使
用して行なう。このようにして測定は、例えばアルコー
ル性苛性カリでのけん化及びリーベルマン・プルチャー
F(Liebermann−Burchard )によ
る化学的測定によって行なうことができる。しかしなが
ら好ましくは酵素による測定を、コレステリンオキシダ
ーゼ及ヒコレステリンエステルを分離する酵素及び酵素
系、殊にコレステリンエステラーゼを使用して行なう。
、常法によって測定することができろ。好ましくはこの
中に含まれた結合コレステリンの測定は、公知方法を使
用して行なう。このようにして測定は、例えばアルコー
ル性苛性カリでのけん化及びリーベルマン・プルチャー
F(Liebermann−Burchard )によ
る化学的測定によって行なうことができる。しかしなが
ら好ましくは酵素による測定を、コレステリンオキシダ
ーゼ及ヒコレステリンエステルを分離する酵素及び酵素
系、殊にコレステリンエステラーゼを使用して行なう。
最後の方法を使用する場合には、消費した酸素、生成し
たコレステノン又は最も好ましくは生成したH2O2を
公知方法によって徂I定することができる。結合したコ
レステリンの測定は公知であるので、この点で詳説する
ことは不必要である。しかしながら本発明方法の範囲内
では、VTJDTJ及び乳魔脂粒のフラクションを除去
して、コレステノン又はH2O2の光学的測定が色反応
の範囲でさまたげられる。
たコレステノン又は最も好ましくは生成したH2O2を
公知方法によって徂I定することができる。結合したコ
レステリンの測定は公知であるので、この点で詳説する
ことは不必要である。しかしながら本発明方法の範囲内
では、VTJDTJ及び乳魔脂粒のフラクションを除去
して、コレステノン又はH2O2の光学的測定が色反応
の範囲でさまたげられる。
混濁の生成を阻止する。それ故この方法は、特に比色に
よるコレステリンの測定法と連結するのが適当である。
よるコレステリンの測定法と連結するのが適当である。
しかしながら、LDL−フラクション中に含まれたコレ
ステリン又は仙のLDL−成分、例えばアポリボ蛋白質
B、ホスホリピド及びトリグリセリげの代りにLDL−
フラクションそれ自体を測定することもでき、その際同
じようにして公知方法を使用することができる。例えば
比濁法による測定又はドイツ公開特許明細書第6007
764号に記載の混濁法による計1定が挙げられる。
ステリン又は仙のLDL−成分、例えばアポリボ蛋白質
B、ホスホリピド及びトリグリセリげの代りにLDL−
フラクションそれ自体を測定することもでき、その際同
じようにして公知方法を使用することができる。例えば
比濁法による測定又はドイツ公開特許明細書第6007
764号に記載の混濁法による計1定が挙げられる。
1(DL−抗体は、本発明の範囲内では好ましくは税脂
HDL−抗血清の形か又はこれから精製したHDL−抗
体フラクションの形で使用する。HDL−抗体フラグメ
ント、例えばFab −、Fab2−及びFab’−フ
ラグメントを使用することもできる。同じようにしてH
T)Lのアポリボ蛋白質A、C又は/及びEに対する抗
体又はそのシラグメントを使用することができる。ポ後
に、モノクロナルHDL−抗体を使用することもできる
。
HDL−抗血清の形か又はこれから精製したHDL−抗
体フラクションの形で使用する。HDL−抗体フラグメ
ント、例えばFab −、Fab2−及びFab’−フ
ラグメントを使用することもできる。同じようにしてH
T)Lのアポリボ蛋白質A、C又は/及びEに対する抗
体又はそのシラグメントを使用することができる。ポ後
に、モノクロナルHDL−抗体を使用することもできる
。
本発明によって使用した抗体の製造は、免疫原として純
粋のHDL又は前記アポリボ蛋白質の1種を用いて行な
う。このようにして得られた抗血清はエーロゾルで処理
して脱すピドする;場合により続いて硫酸アンモニウム
の分別によってr−グロブリン−フラクションを単離す
る。
粋のHDL又は前記アポリボ蛋白質の1種を用いて行な
う。このようにして得られた抗血清はエーロゾルで処理
して脱すピドする;場合により続いて硫酸アンモニウム
の分別によってr−グロブリン−フラクションを単離す
る。
抗体を得るためには、通常使用される動物を使用するこ
とができる。好ましくは羊及び家うさぎを使用する。し
かしながら抗体を得るためには、既に挙げた動物又は比
較される生物の外に細胞培養物を使用することもできる
。
とができる。好ましくは羊及び家うさぎを使用する。し
かしながら抗体を得るためには、既に挙げた動物又は比
較される生物の外に細胞培養物を使用することもできる
。
HDL−抗体の添加で生成した免疫集合体の分離は、同
じようにして常法で行なうことができる。
じようにして常法で行なうことができる。
溶解したHDL−抗体を使用するJ+M 会には、分離
は好ましくは遠心分離によって行なう。担体に結合1.
た固守T−IT’lT、−抗体を使用する場合には、免
疫集合体は緊密な同相、例えば抗体が被榎された固体か
ら液相を簡単に分肉(lすることによって分離すること
ができる。アポリボ蛋白質と共に免疫原として得られた
抗体を使用する場合には、好ましくは免疫原として使用
したアポリポ蛋白質がリピド被覆物を有するものを使用
する。
は好ましくは遠心分離によって行なう。担体に結合1.
た固守T−IT’lT、−抗体を使用する場合には、免
疫集合体は緊密な同相、例えば抗体が被榎された固体か
ら液相を簡単に分肉(lすることによって分離すること
ができる。アポリボ蛋白質と共に免疫原として得られた
抗体を使用する場合には、好ましくは免疫原として使用
したアポリポ蛋白質がリピド被覆物を有するものを使用
する。
これは、例えばアポリボ蛋白質の常用の脱すピド及び絖
〈分別の後に、選んだアポリボ蛋白質A−1C−又は/
及びE−フラクションを再びリビド化して得ることがで
きる。しかし好ましくは免疫原としでは、精製した完全
なHDL−フラクションを使用する。精製は、好ましく
は公知方法で超遠心分離での単離によって行なう。
〈分別の後に、選んだアポリボ蛋白質A−1C−又は/
及びE−フラクションを再びリビド化して得ることがで
きる。しかし好ましくは免疫原としでは、精製した完全
なHDL−フラクションを使用する。精製は、好ましく
は公知方法で超遠心分離での単離によって行なう。
付加的に場合により更に精製は、例えば固定コンカナバ
リン(Concanavalin ) Aにより親和ク
ロマトグラフィー又は電気泳動の方法によって行なうこ
とができる。これらの方法は公知であり、詳説は不必要
である。
リン(Concanavalin ) Aにより親和ク
ロマトグラフィー又は電気泳動の方法によって行なうこ
とができる。これらの方法は公知であり、詳説は不必要
である。
本発明のもう1つの課題は、体液のLDL−フラクショ
ンを測定する試薬であり、これはHDL−抗体を含有す
ることを特徴とする。好ましい実施形式では本発明によ
る試薬は、既に挙げたHDL−抗体又は前記方法で詳説
したフラグメント又は抗体又はHDL−成分のフラグメ
ントと共に、なおコレステリンを測定する試薬を含有す
る。
ンを測定する試薬であり、これはHDL−抗体を含有す
ることを特徴とする。好ましい実施形式では本発明によ
る試薬は、既に挙げたHDL−抗体又は前記方法で詳説
したフラグメント又は抗体又はHDL−成分のフラグメ
ントと共に、なおコレステリンを測定する試薬を含有す
る。
前棟の好ましい試薬は、コレステリンオキシダーゼ、コ
レステリンエステルを分解する酵素又は酵素系、H2O
2を測定する系及び界面活性剤を含有する。
レステリンエステルを分解する酵素又は酵素系、H2O
2を測定する系及び界面活性剤を含有する。
前記試薬の特に好ましい実施形式によれば、これは主と
してHDL−抗体、コレステリンオキシダーゼ、コレス
テリンエステラーゼ、ペルオキシダーゼ、3,4−ジク
ロルフェノール、フェノール、4−アミノツェナ・パン
、非イオン性清浄剤、アスパラギン酸マグネシウム及び
緩衝剤(pH7〜8.5)からなる。
してHDL−抗体、コレステリンオキシダーゼ、コレス
テリンエステラーゼ、ペルオキシダーゼ、3,4−ジク
ロルフェノール、フェノール、4−アミノツェナ・パン
、非イオン性清浄剤、アスパラギン酸マグネシウム及び
緩衝剤(pH7〜8.5)からなる。
本発明による試薬は、抗体を、測定液に対して好ましく
は10−7〜10−3モル/A(又は固体1k)の濃度
帥囲内で含有する。抗体は固体形(好ましくは親液化)
か又は溶液形で存在していてもよい。溶剤としては、面
清環填、緩衝剤、例えば0.01〜0.5 mのトリス
緩衝剤(P]17〜8.5)又は0.01〜0.5mの
モルホリノゾロパンスルホン酸(p)16.5〜7.5
)を、それぞれ0.15〜1mの食塩を添加して使用す
ることができる。抗体を固定形で使用する場合には、適
当な担体の例は、ポリサッカライげ、例六ばセルロース
、デキストラン、終粉及びその誘導体、珪酸塩、ポリア
ミr、コラーダン、ラテックス、酸化アルミニウム、牛
の血清了ルプミンその他である。抗体は試験容器、例え
ばプラスチフクの試薬ガラスの表面に結合して存在して
いてもよい。
は10−7〜10−3モル/A(又は固体1k)の濃度
帥囲内で含有する。抗体は固体形(好ましくは親液化)
か又は溶液形で存在していてもよい。溶剤としては、面
清環填、緩衝剤、例えば0.01〜0.5 mのトリス
緩衝剤(P]17〜8.5)又は0.01〜0.5mの
モルホリノゾロパンスルホン酸(p)16.5〜7.5
)を、それぞれ0.15〜1mの食塩を添加して使用す
ることができる。抗体を固定形で使用する場合には、適
当な担体の例は、ポリサッカライげ、例六ばセルロース
、デキストラン、終粉及びその誘導体、珪酸塩、ポリア
ミr、コラーダン、ラテックス、酸化アルミニウム、牛
の血清了ルプミンその他である。抗体は試験容器、例え
ばプラスチフクの試薬ガラスの表面に結合して存在して
いてもよい。
明線i劣6′a吉(内容に変更なし)
本発明方法の重要な利点は、単独試薬の添加後に試1か
らリポ蛋白質群−LDLを除く−を除去することができ
、続いて診断上重要なLDL −含量又はLDL−フラ
クションのコレステリン含量を、他に試料の予処理をし
ないで面接に測定に使えることである。更に好ましいの
は、試料中で混2蜀を惹起するトリグリセリドを多く含
んタリホ蛋白質群が除去されるので、快いてLDL又は
コレステリンを測定するために透明な試料をイ吏用する
ことである。
らリポ蛋白質群−LDLを除く−を除去することができ
、続いて診断上重要なLDL −含量又はLDL−フラ
クションのコレステリン含量を、他に試料の予処理をし
ないで面接に測定に使えることである。更に好ましいの
は、試料中で混2蜀を惹起するトリグリセリドを多く含
んタリホ蛋白質群が除去されるので、快いてLDL又は
コレステリンを測定するために透明な試料をイ吏用する
ことである。
実施例
例 1
(A+ 精製HDLの製造。
VLDL及びLDLを超遠心分離機で分離した後に、超
遠心分N+[i +9中のHDL−フラクション(密1
隻1080〜1.210)を単離する〔スキプスキ(V
、P、 5kipski )著:すe l’ ・コンポ
)/コン・オブ・リボプロティアyJニーイン会ノルマ
ルψアノ15・デイジ−ズド・ステーノ:ブラ]″・リ
ーズ。アンド・リボプロテインズ:クアンテイ”1:!
I−)/7)浄)11(内容に変更なし)i−ノコン・
コンホクンヨ/・アントメタJ?リズム(Lipid
composition of lipoprotei
nsinnormalanddiseasedstat
es、:BloodLipidsand Lipopr
oteins : Quantitation、 Co
mpositionand Metabolis’m
)出版ネー1:ネルノノ(NelSon)。
遠心分N+[i +9中のHDL−フラクション(密1
隻1080〜1.210)を単離する〔スキプスキ(V
、P、 5kipski )著:すe l’ ・コンポ
)/コン・オブ・リボプロティアyJニーイン会ノルマ
ルψアノ15・デイジ−ズド・ステーノ:ブラ]″・リ
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I−)/7)浄)11(内容に変更なし)i−ノコン・
コンホクンヨ/・アントメタJ?リズム(Lipid
composition of lipoprotei
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oteins : Quantitation、 Co
mpositionand Metabolis’m
)出版ネー1:ネルノノ(NelSon)。
ライレイ(Wi Iey ) 、 =−=−−ヨーク化
、]9972年471〜5δ3頁のようにして〕。続い
てフラクションをなyH2度1080〜1210て2回
沈殿又は浮遊させる。
、]9972年471〜5δ3頁のようにして〕。続い
てフラクションをなyH2度1080〜1210て2回
沈殿又は浮遊させる。
HDL−フラクションを、固定コ/カナパリノ(Con
canavalin ) A (フエブス・レター(F
ebsLetA、 ) 91巻(1974年) 174
〜1.98頁〕を介して親和クロマトグラフィーによる
か又はゲオン、にビコン、ブロック(Geon −Pe
vicon Block )の電気泳動〔マレイ(R,
W。
canavalin ) A (フエブス・レター(F
ebsLetA、 ) 91巻(1974年) 174
〜1.98頁〕を介して親和クロマトグラフィーによる
か又はゲオン、にビコン、ブロック(Geon −Pe
vicon Block )の電気泳動〔マレイ(R,
W。
Mahley )、ホルコン−’: (K、S、Hol
combe ) (1977年)、ジャーナル・オブ・
リピトリサーチ(Journal of Lipid
Re5earch ) 18巻、314〜324頁によ
る〕を用いて電気泳動に1って精製する。
combe ) (1977年)、ジャーナル・オブ・
リピトリサーチ(Journal of Lipid
Re5earch ) 18巻、314〜324頁によ
る〕を用いて電気泳動に1って精製する。
明<工j:のご、”′(−’7−で(二″−〕ない(B
) 抗血清の製造。
) 抗血清の製造。
動物の種類:羊及び家うさぎ。
(A) Kよって得られた免疫壓を用いて、次の免疫図
式を使用する: / fcl 抗−HDL−γ−グロブリン(脱すビド)の製
造。
式を使用する: / fcl 抗−HDL−γ−グロブリン(脱すビド)の製
造。
柑血清11を、エーロゾル380(デグンサ社製)15
gと室温で1時間攪拌し、続いて5000gで20分間
遠心分離する。上澄みを、最終濃度1.7モル/lが得
られるまで硫酸アンモニウムを加え、2時間攪拌する。
gと室温で1時間攪拌し、続いて5000gで20分間
遠心分離する。上澄みを、最終濃度1.7モル/lが得
られるまで硫酸アンモニウムを加え、2時間攪拌する。
20000gで60分間遠心分離した後に、沈殿物を、
燐酸塩で緩衝(pH7,4)した生理学的食塩水20Q
mlに溶解し、透析によって硫酸アンモニウムを完全に
分離する。50000.9で2時間遠心分離することに
よって、このようにして得られたγ−〃゛ロブリン−フ
ラクションから不溶の蛋白質を除去する。
燐酸塩で緩衝(pH7,4)した生理学的食塩水20Q
mlに溶解し、透析によって硫酸アンモニウムを完全に
分離する。50000.9で2時間遠心分離することに
よって、このようにして得られたγ−〃゛ロブリン−フ
ラクションから不溶の蛋白質を除去する。
例 2
デキストランサルフェート(平均分子f#5000DO
1zy/1.塩化ナトリウム0.3モル/1.塩化カル
シウム50mモル/l及び例1のようにして得られた抗
−HDL −7−グロブリン(脱すピド)15myを、
トリス/HCI緩衝斉り(pH8,0) 0.1 モル
/i!K)−かり、 タ?tR合物[1,4mlに、血
清試料30μeを添加する。室温で30分間培養後に、
1θ000.?で2分間遠心分離する。デキストランサ
ルフェート及び塩化カルシウムを除いた相応する対照試
験を、相応する条件下に平行して行なった。
1zy/1.塩化ナトリウム0.3モル/1.塩化カル
シウム50mモル/l及び例1のようにして得られた抗
−HDL −7−グロブリン(脱すピド)15myを、
トリス/HCI緩衝斉り(pH8,0) 0.1 モル
/i!K)−かり、 タ?tR合物[1,4mlに、血
清試料30μeを添加する。室温で30分間培養後に、
1θ000.?で2分間遠心分離する。デキストランサ
ルフェート及び塩化カルシウムを除いた相応する対照試
験を、相応する条件下に平行して行なった。
透明な沈殿の−F澄み300μlに、トリスー緩衝液(
pH= 7.7 ) [1,1モル/11、アスパラギ
ン酸マグネシウム0.05モル/1.アミノフェナ1戸
ン1mモル/l、7xノー/l//S m モ/l//
l。
pH= 7.7 ) [1,1モル/11、アスパラギ
ン酸マグネシウム0.05モル/1.アミノフェナ1戸
ン1mモル/l、7xノー/l//S m モ/l//
l。
3.4−ジクロルフェノール4mセル/1.HIif肪
7 /l/−y−ル& +3 り11コールエーテル0
.3%、コレステリンエステラーゼ400 U/1.
コレステリンオキシダーゼ250 U/l及びペルオキ
シダーゼ200 U/lを含有する試薬2 mlを加え
る。
7 /l/−y−ル& +3 り11コールエーテル0
.3%、コレステリンエステラーゼ400 U/1.
コレステリンオキシダーゼ250 U/l及びペルオキ
シダーゼ200 U/lを含有する試薬2 mlを加え
る。
室温で20分間培養後に、試薬の空試験値に対する試料
の吸光を測定する(試薬の空試験値は、抗血清50μl
を含有し、抗血清のコレステリン含量を考えに入れる)
。
の吸光を測定する(試薬の空試験値は、抗血清50μl
を含有し、抗血清のコレステリン含量を考えに入れる)
。
ハ、に=A B試料−△8試薬の空試験値LDL−:I
レステリ7Cm9/dlj )=894X△E次の結果
が得られた: 比較し得る結果が、デキストランサルフェート(分子量
200[]000 ) 11/11を用いて得られる。
レステリ7Cm9/dlj )=894X△E次の結果
が得られた: 比較し得る結果が、デキストランサルフェート(分子量
200[]000 ) 11/11を用いて得られる。
カルシウムイオンの代りに、マグネシウムイオン又はマ
ンガンイオンを同濃度で使用することができる。好まし
いのは、次の濃度「囲である:高分子のデキストランサ
ルフェート0.1〜BE/l、2価のカナオフ10〜2
5mモル/1.塩化ナトリウム0.2〜1モル/10蒼
対照法としては、NIH法が役立つ(VLDL及び乳棄
脂粒を超遠心分離機で分離した後に、LDLを沈殿させ
る。沈殿前後のコレステリン値の差異からLDL−コレ
ステリンの値が得られる)。
ンガンイオンを同濃度で使用することができる。好まし
いのは、次の濃度「囲である:高分子のデキストランサ
ルフェート0.1〜BE/l、2価のカナオフ10〜2
5mモル/1.塩化ナトリウム0.2〜1モル/10蒼
対照法としては、NIH法が役立つ(VLDL及び乳棄
脂粒を超遠心分離機で分離した後に、LDLを沈殿させ
る。沈殿前後のコレステリン値の差異からLDL−コレ
ステリンの値が得られる)。
マニコアル・オブφうがラトリー〇オノぐレーシコンズ
、リビドφリサーチ・クリニンクス・プログラム、リビ
ド・アンド・リボプロティン・アナリシス(Manua
l of Laboratory 0peration
s、 Lipid Eesearch C11nics
Program、 Lipid and Lipop
rotein Analysi、s ) DHFW出版
、A65〜628゜ 例 3 短連鎖のデキストランサルフェート(平均分子量500
0)5.9/l、塩化ナトリウム0.25モル//!、
塩化fJルシウム0.15モル/ 7 、&び抗−HD
T、 −r−グロブリン(脱すピド)15mqを、トリ
ス/ HCI ffl ’lJi剤(pl]8.11
) [1,1モル/lにとかした混合物ri、、4mg
に、血清試料30μlを添加する。室温で30分間培養
後に、1noongで2分間遠心分#lt t、、上澄
み中のコレステリン並びにトリグリセリドを狙1定する
。
、リビドφリサーチ・クリニンクス・プログラム、リビ
ド・アンド・リボプロティン・アナリシス(Manua
l of Laboratory 0peration
s、 Lipid Eesearch C11nics
Program、 Lipid and Lipop
rotein Analysi、s ) DHFW出版
、A65〜628゜ 例 3 短連鎖のデキストランサルフェート(平均分子量500
0)5.9/l、塩化ナトリウム0.25モル//!、
塩化fJルシウム0.15モル/ 7 、&び抗−HD
T、 −r−グロブリン(脱すピド)15mqを、トリ
ス/ HCI ffl ’lJi剤(pl]8.11
) [1,1モル/lにとかした混合物ri、、4mg
に、血清試料30μlを添加する。室温で30分間培養
後に、1noongで2分間遠心分#lt t、、上澄
み中のコレステリン並びにトリグリセリドを狙1定する
。
相応する対照試験を、平行して相応する条件下にデキス
トランサルフェート及びカルシウムイオンを除いて行な
った。次の結果が得られた:比較し得る結果が、テ9キ
ストランザルフェート(分子部15000)0.5.9
/l、ヘパリン0.8.9 / l 又ハeリビニルサ
ルフエート11.2 g/lを用いて得られる。カルシ
ウムイオンの代りに、マグネシウムイオンyはマンガン
イオンを相応するP度で使用することもできる。好まし
い濃度範囲は、次のものである:知連釦のデキストラン
サルフェート又はヘパリン1〜159/l、ポリビニル
ザルフェート0.2〜5I/l、2価のカチオ720〜
250 mモル/l、塩化ナト1)ラム11.15〜0
.8モル/l。
トランサルフェート及びカルシウムイオンを除いて行な
った。次の結果が得られた:比較し得る結果が、テ9キ
ストランザルフェート(分子部15000)0.5.9
/l、ヘパリン0.8.9 / l 又ハeリビニルサ
ルフエート11.2 g/lを用いて得られる。カルシ
ウムイオンの代りに、マグネシウムイオンyはマンガン
イオンを相応するP度で使用することもできる。好まし
い濃度範囲は、次のものである:知連釦のデキストラン
サルフェート又はヘパリン1〜159/l、ポリビニル
ザルフェート0.2〜5I/l、2価のカチオ720〜
250 mモル/l、塩化ナト1)ラム11.15〜0
.8モル/l。
例 4
燐タングステン酸1.15fJ/l、 塩化マグネシウ
ム20mモル/l、 塩化ナトリウム0.3モル/l及
びi: −11nT、−γ−グロブリン(脱すピド)1
5mダの混合物0.4mlに、血清能′材30μlを添
加する。¥幌で60分間培云後に10000gで2分t
Ul遠11・分離シ、上澄み中のコレステリン並ひにト
リグリセリドを測定する。平行して対照試験を、デキス
トランザルフェート及び塩化カルシウムを除いて行なっ
た。次の結果が得られた: / / / 好ましい濃度範囲は、次のものである:燐タングステン
酸0.3〜69/1.マグネシウムイオン10〜200
mモル/l。
ム20mモル/l、 塩化ナトリウム0.3モル/l及
びi: −11nT、−γ−グロブリン(脱すピド)1
5mダの混合物0.4mlに、血清能′材30μlを添
加する。¥幌で60分間培云後に10000gで2分t
Ul遠11・分離シ、上澄み中のコレステリン並ひにト
リグリセリドを測定する。平行して対照試験を、デキス
トランザルフェート及び塩化カルシウムを除いて行なっ
た。次の結果が得られた: / / / 好ましい濃度範囲は、次のものである:燐タングステン
酸0.3〜69/1.マグネシウムイオン10〜200
mモル/l。
第1頁の続き
■Int、CI、’ 識別記号 庁内整理番号[株]発
明 者 シークベルト・シーク ドイツ連邦共和国・
アー く−ル・モースシュトラーセ 3 手続補正書(方式) 昭和60年 3月27日 特許庁長官殿 】 事件の表示 昭和59年特許願第223130号2
、発明の名称 低密度のリポ蛋白質を測定する方法及び試薬3 補正を
する者 事件との関係 特許出願人 名 称 ベーリノガー・マン−・イム・ゲゼル/ヤフト
・ミツト・ベノユレンクテル・ハフノング4代理人 6 補正の対象 7、補正の内界 別紙のとおり 但し明細書の浄書(内容に変更なし)
明 者 シークベルト・シーク ドイツ連邦共和国・
アー く−ル・モースシュトラーセ 3 手続補正書(方式) 昭和60年 3月27日 特許庁長官殿 】 事件の表示 昭和59年特許願第223130号2
、発明の名称 低密度のリポ蛋白質を測定する方法及び試薬3 補正を
する者 事件との関係 特許出願人 名 称 ベーリノガー・マン−・イム・ゲゼル/ヤフト
・ミツト・ベノユレンクテル・ハフノング4代理人 6 補正の対象 7、補正の内界 別紙のとおり 但し明細書の浄書(内容に変更なし)
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、 検査すべき試料に高密度のリボ蛋白質(HDL
)−抗体を添加し、形成した不溶物を分離し、上澄みで
低密度のリボ蛋白質(LDL )又はその成分を測定し
て体液中の低密度のリボ蛋白質(LDL )を測定する
方法において、抗体にポリアニオンと2価のカチオンと
からなる混合物を添加することを特徴とする低密度のリ
ボ蛋白質(LDL ”)の測定法。 2、 ポリアニオンとしてデキストランサルフェート、
ヘパリン、燐タングステン酸又はポリビニルサルフェー
ト及び2価のカチオンとしてカルシウム−、マグネシウ
ム又はマンガンイオンを特徴する特許請求の範囲第1項
記載の方法。 6、 ポリアニオンは反応混合物中に濃度0.1〜15
1/lで、2価のカチオンは濃度10〜250mモル/
lで存在する、特許請求の範囲第1項又は第2項記載の
方法。 4、反応混合物中で濃度は、高分子のデキストランサル
フェートでは0.1〜8g/1.短連錯のデキストラン
サルフェートでは1〜159/l、ヘパリンでは1〜1
59/l、ポリビニルサルフェートでは0.2〜59/
l、燐タングステン酸では0.3〜6 g/l、2価の
カチオンでは10〜250mモル/lである、特許請求
の範囲第2項又は第3項記載の方法。 5、LDL−成分としてコレステリンを測定スル、特許
請求の範囲第1項から第4項までのいずれか1項記載の
方法。 6 抗体は、脱脂HDL−抗血清の形でか又は精製抗体
フラクションとして存在する、特許請求の範囲第1項か
ら第5項までのいずれか1項記載の方法。 7 HDL−抗体のフラグメントを特徴する特許請求の
範囲第1項から第6項までのいずれか1項記載の方法。 8、 免疫原としてN製HDLと一緒に場合により再す
ビド化アポリボ蛋白質A、C又は/及びEを含有、する
抗体を特徴する特許請求の範囲第6項又は第7項記載の
方法。 9 羊又は家うさぎの抗体を特徴する特許請求の範囲第
1項から第8項までのいずれか1項記載の方法。 10 抗体は共有結合によってポリアニオンに結合して
いる、特許請求の範囲第1項から第9項までのいずれか
1項記載の方法。 11、高密度のリボ蛋白質(EDL )−抗体が、ポリ
アニオンと2価のカチオンとからなる混合物を含有する
、体液中の低密度のリボ蛋白質(工ILL )−フラク
ションを測定する試薬。 12、 HDL−抗体をクロプリン1〜I D Om9
/meに相応する濃度で、ポリアニオンを濃度0.1〜
15fi/!!で及び2価のカチオンを濃度10〜25
0mモル/lで含有する、特許請求の範囲第11項記載
の試薬。 16、コレステリンを測定する試薬を特徴する特許請求
の範囲第11項又は第12項記載の試薬。 14、コレステリンを測定するのにコレステリンオキシ
ダーゼ、コレステリンエステラーゼ解する酵素又は酵素
系、H2O2を測定する系及び界面活性剤を特徴する特
許請求の範囲第13項記載の試薬。 15 主としてHDL抗体、コレステリンオキシダーゼ
、コレステリンエステラーゼ、ペルオキシダーゼ、3.
4−ジクロルフェノール、フェノール、4−アミノツェ
ナ・戸ン、非イオン性清浄剤、アスパラギン酸マグネシ
ウム及び緩衝剤(pH7〜8゜5)からなる、特許請求
の範囲第14項記載の試薬。 16、HDT、−抗体を固定形で含有する、特許請求の
範囲第11項から第15項までのいずれか1項記載の試
薬。 1Z ポリアニオンと共有結合によって結合しているH
DL−抗体を特徴する特許請求の範囲第11項から第1
6項までのいずれか1項記載の試薬。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19833338836 DE3338836A1 (de) | 1983-10-26 | 1983-10-26 | Verfahren zur bestimmung der low density lipoproteine (ldl) und reagenz zu seiner durchfuehrung |
DE3338836.9 | 1983-10-26 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS60173470A true JPS60173470A (ja) | 1985-09-06 |
JPH0235260B2 JPH0235260B2 (ja) | 1990-08-09 |
Family
ID=6212769
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP59223130A Granted JPS60173470A (ja) | 1983-10-26 | 1984-10-25 | 低密度のリポ蛋白質を測定する方法及び試薬 |
Country Status (5)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4746605A (ja) |
EP (1) | EP0141343B1 (ja) |
JP (1) | JPS60173470A (ja) |
AT (1) | ATE34848T1 (ja) |
DE (2) | DE3338836A1 (ja) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS6264956A (ja) * | 1985-09-18 | 1987-03-24 | Teijin Ltd | 肺表面活性物質の検出方法及びそれに用いる試薬キツト |
JPS62211554A (ja) * | 1986-03-12 | 1987-09-17 | Teijin Ltd | ヒトの肺表面活性物質の測定方法 |
JPS63501037A (ja) * | 1985-09-27 | 1988-04-14 | フア−マシア・ア−・ベ− | リポタンパク質及びアポリポタンパク質の測定方法 |
Families Citing this family (37)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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DE3636851A1 (de) * | 1986-10-29 | 1988-05-11 | Boehringer Mannheim Gmbh | Verfahren und reagenz zur spezifischen bestimmung des cholesterins der hdl-fraktion |
NL8602869A (nl) * | 1986-11-12 | 1988-06-01 | Univ Utrecht | Werkwijze voor het aantonen, identificeren en/of kwantificeren van circulerende immuuncomplexen in bloedserum. |
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