JPS59151900A - 尿素窒素の測定法 - Google Patents
尿素窒素の測定法Info
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- JPS59151900A JPS59151900A JP2473083A JP2473083A JPS59151900A JP S59151900 A JPS59151900 A JP S59151900A JP 2473083 A JP2473083 A JP 2473083A JP 2473083 A JP2473083 A JP 2473083A JP S59151900 A JPS59151900 A JP S59151900A
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Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は尿素窒素の測定法に関する0更に詳細には9本
発明は尿素を含有する試料にα−ケトゲルタール酸、ニ
コチンアミドアテニンジヌクレオタイド(以下NADH
という)もしくはニコチンアミドアデニンジヌクレオタ
イドホスフェート(以下NADPHという)及びグルタ
ミン酸脱水素酵素(以下0LDHという)を作用させ1
次いでウレアーゼ及びウレアーゼ拮抗阻害剤としてのホ
ウ酸又はその塩を同時に加え試料中の尿素をウレアーゼ
で加水分解し、アンモニアの生成速度をα−ケトゲルタ
ール酸、NADHもしくはNADPH及び0LDHより
なる酵素共役系を用いてNADHもしくはNADPHの
減少速度から求め試料中の尿素窒素を定量する方法であ
る。
発明は尿素を含有する試料にα−ケトゲルタール酸、ニ
コチンアミドアテニンジヌクレオタイド(以下NADH
という)もしくはニコチンアミドアデニンジヌクレオタ
イドホスフェート(以下NADPHという)及びグルタ
ミン酸脱水素酵素(以下0LDHという)を作用させ1
次いでウレアーゼ及びウレアーゼ拮抗阻害剤としてのホ
ウ酸又はその塩を同時に加え試料中の尿素をウレアーゼ
で加水分解し、アンモニアの生成速度をα−ケトゲルタ
ール酸、NADHもしくはNADPH及び0LDHより
なる酵素共役系を用いてNADHもしくはNADPHの
減少速度から求め試料中の尿素窒素を定量する方法であ
る。
血清及び尿中の尿素窒素量は9種々の腎機能障害及び肝
実質障害時に変動することが知られており、その障害度
並びに予後の診断に関して極めて重要な意義をもつため
に、最近では共存する妨害物質の影響を受けない迅速、
正確な定置方法が望まれている。尿素窒素の従来の定量
法としては9例えば試料中の尿素をジアセチルモノオキ
シムと直接反応させ、比色定量する方法があるが2反応
の特異性、再現性が好ましくない。また、ウレアーゼで
尿素を特異的に加水分解し、生成するアンモニア量を種
々の検出方法にて定量する方法があるが、検体に共存す
るタンパク質やアンモニア及びクルタチオン等が測定値
に影響し、好ましい方法とは言い難い。一方、α−ケト
ゲルタール酸及びN A、 ]) HまたはNADPH
の存在下、 GT、DI−Iを作用させてN A D
HまたはN A D P I−Iの減少量より、アンモ
ニア量を求める方法はアンモニアに対して特異性の高い
方法であるが1反応の終末点における残存のN A D
I−IまたはN A D P I−Iの紫外部吸収を
引]]定するため。
実質障害時に変動することが知られており、その障害度
並びに予後の診断に関して極めて重要な意義をもつため
に、最近では共存する妨害物質の影響を受けない迅速、
正確な定置方法が望まれている。尿素窒素の従来の定量
法としては9例えば試料中の尿素をジアセチルモノオキ
シムと直接反応させ、比色定量する方法があるが2反応
の特異性、再現性が好ましくない。また、ウレアーゼで
尿素を特異的に加水分解し、生成するアンモニア量を種
々の検出方法にて定量する方法があるが、検体に共存す
るタンパク質やアンモニア及びクルタチオン等が測定値
に影響し、好ましい方法とは言い難い。一方、α−ケト
ゲルタール酸及びN A、 ]) HまたはNADPH
の存在下、 GT、DI−Iを作用させてN A D
HまたはN A D P I−Iの減少量より、アンモ
ニア量を求める方法はアンモニアに対して特異性の高い
方法であるが1反応の終末点における残存のN A D
I−IまたはN A D P I−Iの紫外部吸収を
引]]定するため。
試料中に共存するアンモニア量料のにごり、紫外部に吸
収を持つ種々の共存物質の影響を受け。
収を持つ種々の共存物質の影響を受け。
好ましい方法であるとは言い離く且っNADHまたはN
A D P H9度は、測定器の測定可能な吸光度限
界により制限されるため充分なN A D HまたはN
ADPHを加えられず、 測定可能な尿素窒素の濃度範
囲が狭くなる欠点がある。
A D P H9度は、測定器の測定可能な吸光度限
界により制限されるため充分なN A D HまたはN
ADPHを加えられず、 測定可能な尿素窒素の濃度範
囲が狭くなる欠点がある。
近年、臨床領域における自動分析機の急速な普及に伴い
、短時間での測定が可能であり、且つ共存物質の影響を
受けない反応速度法による尿素窒素の定量法が望まれて
いる。一般に、酵素の反応速度にて、その酵素の基質と
なる物質を定量する場合には、酵素の基質に対するKm
値が測定系における基質濃度より充分大きいことか必須
条件となる。ウレアーゼを用いた尿素窒素の定量におい
ては、正常ヒト血清中の尿素濃度は8〜9mM(尿素窒
素として8〜25 m97de )であるのに対し、ウ
レアーゼの尿素に対するKm値は数mM程度と小さいた
め、測定法としては終末点法が適当であった。一方9反
応速度法にて尿素窒素を定量する際には2反応系におけ
る尿素濃度を低くするために試料を高倍率に希釈する必
要があった。しかしながら、このような反応速度法にお
いては、検体の希釈に伴う著しい感度の低下等の種々の
問題のため、実際の日常分析に用いることは不可能であ
る。また、Km値そのものを適当な値に調節する手段さ
して、酵素(ウレアーゼ)に直接作用し酵素の基質に対
する親和性を調節する物質、即ち拮抗阻害物質を用いる
方法が報告されている(クリニカルケミストリー、 2
5巻、 1721頁、 1979年)。
、短時間での測定が可能であり、且つ共存物質の影響を
受けない反応速度法による尿素窒素の定量法が望まれて
いる。一般に、酵素の反応速度にて、その酵素の基質と
なる物質を定量する場合には、酵素の基質に対するKm
値が測定系における基質濃度より充分大きいことか必須
条件となる。ウレアーゼを用いた尿素窒素の定量におい
ては、正常ヒト血清中の尿素濃度は8〜9mM(尿素窒
素として8〜25 m97de )であるのに対し、ウ
レアーゼの尿素に対するKm値は数mM程度と小さいた
め、測定法としては終末点法が適当であった。一方9反
応速度法にて尿素窒素を定量する際には2反応系におけ
る尿素濃度を低くするために試料を高倍率に希釈する必
要があった。しかしながら、このような反応速度法にお
いては、検体の希釈に伴う著しい感度の低下等の種々の
問題のため、実際の日常分析に用いることは不可能であ
る。また、Km値そのものを適当な値に調節する手段さ
して、酵素(ウレアーゼ)に直接作用し酵素の基質に対
する親和性を調節する物質、即ち拮抗阻害物質を用いる
方法が報告されている(クリニカルケミストリー、 2
5巻、 1721頁、 1979年)。
この方法は拮抗阻害剤さしてヒドロキンウレアを用い、
ウレアーゼに作用させ尿素窒素を定量する。しかしなが
らこの方法においては阻害剤として用いるヒドロキシウ
レアは試薬として調製した後の安定性に欠け、しかもア
ンモニアや尿素を金談ない高純度な市販の標品を得るこ
とがむずかしく、さらにその作用がウレアーゼ及び基質
と混合した時1時間に依存して変化する等の問題があっ
た。しかしながら、この方法に使用可能な拮抗阻害剤と
してはヒドロキシウレアだけが見出されているに過ぎな
い。
ウレアーゼに作用させ尿素窒素を定量する。しかしなが
らこの方法においては阻害剤として用いるヒドロキシウ
レアは試薬として調製した後の安定性に欠け、しかもア
ンモニアや尿素を金談ない高純度な市販の標品を得るこ
とがむずかしく、さらにその作用がウレアーゼ及び基質
と混合した時1時間に依存して変化する等の問題があっ
た。しかしながら、この方法に使用可能な拮抗阻害剤と
してはヒドロキシウレアだけが見出されているに過ぎな
い。
そこで1本発明者らは公知方法の欠点を克服すべく鋭意
検討した結果、ウレアーゼの拮抗阻害剤としてホウ酸又
はその塩が有効であることを見出し本発明を完成した。
検討した結果、ウレアーゼの拮抗阻害剤としてホウ酸又
はその塩が有効であることを見出し本発明を完成した。
本発明を実施する場合、試料にα−ケトゲルタール酸、
NADHもしくはNADPHの存在下。
NADHもしくはNADPHの存在下。
pH7〜8範囲で0LDHを作用させることにより試料
中に共存するアンモニアが処理云きる。
中に共存するアンモニアが処理云きる。
なお、この反応は87℃で通常1〜2分あれば終了する
。
。
次に、この反応液にウレアーゼ及びホウ酸又はその塩を
同時に加え、尿素を加水分解しアンモニアの生成速度を
反応液中のα−ケトゲルタール酸、NADHまたはNA
DPH,0LDHを利用し、この酵素共役系からNAD
HまたはNADPHの減少速度を求め、尿素窒素量を求
める。
同時に加え、尿素を加水分解しアンモニアの生成速度を
反応液中のα−ケトゲルタール酸、NADHまたはNA
DPH,0LDHを利用し、この酵素共役系からNAD
HまたはNADPHの減少速度を求め、尿素窒素量を求
める。
本発明に使用されるα−ケトクルクール酸。
NADHもしくはNADPI−I、C+LDHの容量は
試料中にあらかじめ共存しているアンモニア量及び尿素
量により異なるが1例えば検体として血清25μlを使
用する時は中性〜弱アルカリ性の緩衝液2mlにα−ケ
トゲルタール酸4mp、NADPHO,+m9,0LD
H15単位程度含まれているのが好ましい。一方、ウレ
アーゼ及びホウ酸又はその塩は前記同様の緩衝液1 m
lにウレアーゼは07単位程度あれば良く、この時のホ
ウ酸本反応系に用いるホウ酸又はその塩は、ウレアーゼ
及び基質と混合した後の時間にかかわらず作用即ち阻害
率は一定であり、その阻害定数は0.2mMと小さいた
め、2mM程度のホウ酸又はその塩の存在下では、ウレ
アーゼの尿素に対するK +n値は11倍程度となる。
試料中にあらかじめ共存しているアンモニア量及び尿素
量により異なるが1例えば検体として血清25μlを使
用する時は中性〜弱アルカリ性の緩衝液2mlにα−ケ
トゲルタール酸4mp、NADPHO,+m9,0LD
H15単位程度含まれているのが好ましい。一方、ウレ
アーゼ及びホウ酸又はその塩は前記同様の緩衝液1 m
lにウレアーゼは07単位程度あれば良く、この時のホ
ウ酸本反応系に用いるホウ酸又はその塩は、ウレアーゼ
及び基質と混合した後の時間にかかわらず作用即ち阻害
率は一定であり、その阻害定数は0.2mMと小さいた
め、2mM程度のホウ酸又はその塩の存在下では、ウレ
アーゼの尿素に対するK +n値は11倍程度となる。
この事実は次の阻害剤の速度反応式の関係より明らか
である。
である。
存在しない時のKm値、CI):阻害剤濃度。
■ぐ■:阻害定数を表わす。)
なお、ホウ酸又はその塩濃度を増加させることによりK
m値を大きくすることも可能である。
m値を大きくすることも可能である。
従って高濃度の尿素を含む検体の測定においても検体を
希釈することなく、正確且つ高感度に測定するこ吉がで
きる。
希釈することなく、正確且つ高感度に測定するこ吉がで
きる。
本発明で使用するホウ酸塩はホウ酸すl−IJウム、ホ
ウ酸カリウム等が挙げられる。また、α−ケトゲルター
ル酸、NADHもしくはNADPH。
ウ酸カリウム等が挙げられる。また、α−ケトゲルター
ル酸、NADHもしくはNADPH。
G L D HはpH7〜8範囲の通常使用されている
緩衝液に溶解し一液とし、一方つレアーセ、ホウ酸又は
その塩も同様に緩衝液に溶解しておき使用すると便利で
ある。なお、緩衝液としては通常使用されているもので
あれはいずれも使用可能である。
緩衝液に溶解し一液とし、一方つレアーセ、ホウ酸又は
その塩も同様に緩衝液に溶解しておき使用すると便利で
ある。なお、緩衝液としては通常使用されているもので
あれはいずれも使用可能である。
一方、0LDHは細菌由来と動物由来とがあり、NAD
Hを使用する場合は動物由来を7N A D P Hを
使用する場合は細菌由来を選択することが必要である。
Hを使用する場合は動物由来を7N A D P Hを
使用する場合は細菌由来を選択することが必要である。
尿素を含む試料出しては例えは体液即ち血液、血清、血
漿、尿、すい液。
漿、尿、すい液。
腹こう液等、また透析液等尿素を含むものであれは使用
できる。
できる。
以上のように本発明は検体に共存するアンモニアをあら
かじめ処理するので、内因性のアンモニアの影響を受け
ない。さらにN A、 D HまたはNADPHの減少
速度として測定するため。
かじめ処理するので、内因性のアンモニアの影響を受け
ない。さらにN A、 D HまたはNADPHの減少
速度として測定するため。
測定に要する時間は短く且つ還元物質及び紫外部に吸収
をもつ検体中の共存物質等の影響はほとんど受けない。
をもつ検体中の共存物質等の影響はほとんど受けない。
その上、ウレアーゼ拮抗阻害剤であるホウ酸又はその塩
はウレアーゼ及び基質と混合しても阻害率は変ることが
なく、高濃度の尿素まで正確に定量できるため、従来法
では好ましい結果が得られなかった透析患者血清等にお
ける尿素窒素の測定に極めて有用である。
はウレアーゼ及び基質と混合しても阻害率は変ることが
なく、高濃度の尿素まで正確に定量できるため、従来法
では好ましい結果が得られなかった透析患者血清等にお
ける尿素窒素の測定に極めて有用である。
次に実施例により本発明の詳細な説明する。
実施例1
(1)試薬
反応液1
クルタミン酸脱水素酵素 750単位N A、
D P I−(、24mg α−ケトタルクール酸 219 m9トリス
(ヒドロキンメチルアミノメタン)310m9上記成分
を精製水100 mlに溶解し、最終pHが78になる
ように希塩酸にて調整する。
D P I−(、24mg α−ケトタルクール酸 219 m9トリス
(ヒドロキンメチルアミノメタン)310m9上記成分
を精製水100 mlに溶解し、最終pHが78になる
ように希塩酸にて調整する。
反応液2
ウレアーゼ 70単位ホウ酸
87即 EDi’A −2Na 111m9トリ
ス(ヒドロキシメチルアミノメタン) 810■上記成
分を精製水100m1に溶解し、最終pHが7.8にな
るように希塩酸にて調整する。
87即 EDi’A −2Na 111m9トリ
ス(ヒドロキシメチルアミノメタン) 810■上記成
分を精製水100m1に溶解し、最終pHが7.8にな
るように希塩酸にて調整する。
(2)測定操作
試鹸管に反応液1を2ml、正常ヒト血清に下記表の如
く尿素水溶液をlO対lの比率で添加混合した検体25
μlを加え、87℃8分間保温する。次に、これに反応
液2の1mlを加え87℃尾保ちながら1反応液2の添
加後1分後から840 nmにおける1分間の吸光度変
化を測定rる。別に既知濃度の検体を用いて検量線を作
成し、これを用いて尿素窒素濃度を求める。
く尿素水溶液をlO対lの比率で添加混合した検体25
μlを加え、87℃8分間保温する。次に、これに反応
液2の1mlを加え87℃尾保ちながら1反応液2の添
加後1分後から840 nmにおける1分間の吸光度変
化を測定rる。別に既知濃度の検体を用いて検量線を作
成し、これを用いて尿素窒素濃度を求める。
結果
ll
(但し、正常ヒト血清の尿素窒素値は160nθlであ
る) 以上の結果より高値の尿素窒素まで正確に測定できるこ
とか明らかである。
る) 以上の結果より高値の尿素窒素まで正確に測定できるこ
とか明らかである。
(参考)
拮抗阻害剤の存在下での反応速度式は
一般の速度式は
ここで近似的に阻害剤か存在する時の見かけのKm(直
は 実施例2゜ (1)試薬 実施例1の反応液2のホウ酸に変え、ホウ酸すI−IJ
ウム2BIn9を使用した以外は実施例1と全く同−試
薬及び濃度のものを使用した。
は 実施例2゜ (1)試薬 実施例1の反応液2のホウ酸に変え、ホウ酸すI−IJ
ウム2BIn9を使用した以外は実施例1と全く同−試
薬及び濃度のものを使用した。
(2)標準液の作成
尿素40■、80rv、120ダ、160■、n。
■を100mのメスフラスコに各々正確に秤量し加え、
標線まで蒸留水を入れ溶解し各濃度の標準液を作成する
。
標線まで蒸留水を入れ溶解し各濃度の標準液を作成する
。
(3)検量線の作成
実施例1の測定操作のうち、検体の代りに各々の標準液
25μlを使用した以外は全く同様に操作し、各々の濃
度の吸光度を求める。
25μlを使用した以外は全く同様に操作し、各々の濃
度の吸光度を求める。
結果
図に示しである如く直線性が得られた〇
拮抗阻害剤を使用した場合としない場合の各々の検量線
を示す。図中Hで印したものが拮抗阻害剤としてホウ酸
を使用した時、N−込で印したものがホウ酸ナトリウム
を使用した時。 一方、X−−Xで印したものか拮抗阻害剤を使用しない
時の各々の検量線である。 図 A’ffi 嫁 が
を示す。図中Hで印したものが拮抗阻害剤としてホウ酸
を使用した時、N−込で印したものがホウ酸ナトリウム
を使用した時。 一方、X−−Xで印したものか拮抗阻害剤を使用しない
時の各々の検量線である。 図 A’ffi 嫁 が
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 尿素を含有する試料にα−ケトクルタール酸。 ニコチンアミドアデニンジヌクレオタイドもしくはニコ
ヂンアミドアテニンジヌクレオタイドホスフェート及び
グルタミン酸脱水素酵素を作用させ2次いでウレアーゼ
及びウレアーゼ拮抗阻害剤としてのホウ酸又はその塩を
同時に加えウレアーゼで尿素をアンモニアに変換させα
−ケトグルクール酸、ニコチンアミドアテニンジヌクレ
オクイドもしくはニコチンアミトアテニンジヌクレオタ
イドホスフェートの存在ドクルクミン酸脱水素酵素で処
理しニコチンアミドアテニンジヌクレオタイドもしくは
ニコチンアミドアデニンジヌクレオタイトホヌフェ−1
・の減少速度を測定することを特徴とする尿素窒素の測
定法
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2473083A JPS59151900A (ja) | 1983-02-18 | 1983-02-18 | 尿素窒素の測定法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2473083A JPS59151900A (ja) | 1983-02-18 | 1983-02-18 | 尿素窒素の測定法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS59151900A true JPS59151900A (ja) | 1984-08-30 |
JPH0365160B2 JPH0365160B2 (ja) | 1991-10-09 |
Family
ID=12146263
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2473083A Granted JPS59151900A (ja) | 1983-02-18 | 1983-02-18 | 尿素窒素の測定法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS59151900A (ja) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0707074A1 (en) * | 1994-10-13 | 1996-04-17 | Kyowa Medex Co., Ltd. | Method for determination of urea nitrogen |
JP2002045198A (ja) * | 2000-08-02 | 2002-02-12 | Dai Ichi Pure Chem Co Ltd | 尿素窒素の測定方法及び測定用試薬 |
US7494525B2 (en) | 2005-02-22 | 2009-02-24 | Tessenderlo Kerley, Inc. | Calcium polysulfide, potassium polysulfide, calcium thiosulfate, and magnesium thiosulfate as urease inhibitors |
-
1983
- 1983-02-18 JP JP2473083A patent/JPS59151900A/ja active Granted
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0707074A1 (en) * | 1994-10-13 | 1996-04-17 | Kyowa Medex Co., Ltd. | Method for determination of urea nitrogen |
US5721111A (en) * | 1994-10-13 | 1998-02-24 | Kyowa Medex Co., Ltd. | Method for determination of urea nitrogen |
JP2002045198A (ja) * | 2000-08-02 | 2002-02-12 | Dai Ichi Pure Chem Co Ltd | 尿素窒素の測定方法及び測定用試薬 |
JP4503151B2 (ja) * | 2000-08-02 | 2010-07-14 | 積水メディカル株式会社 | 尿素窒素の測定方法及び測定用試薬 |
US7494525B2 (en) | 2005-02-22 | 2009-02-24 | Tessenderlo Kerley, Inc. | Calcium polysulfide, potassium polysulfide, calcium thiosulfate, and magnesium thiosulfate as urease inhibitors |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0365160B2 (ja) | 1991-10-09 |
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