JPS5856700A - 固定化酵素―微生物複合膜および尿素センサとこの尿素センサを使用する尿素定量法並びに尿素センサの保存法 - Google Patents
固定化酵素―微生物複合膜および尿素センサとこの尿素センサを使用する尿素定量法並びに尿素センサの保存法Info
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- JPS5856700A JPS5856700A JP56154769A JP15476981A JPS5856700A JP S5856700 A JPS5856700 A JP S5856700A JP 56154769 A JP56154769 A JP 56154769A JP 15476981 A JP15476981 A JP 15476981A JP S5856700 A JPS5856700 A JP S5856700A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、#素および微生物を利用して、尿素を電気化
学的に定量する方法に関するものである。
学的に定量する方法に関するものである。
体液中の尿素mii素#IklILは医療検査分野にお
いて。
いて。
腎機能の指標とされてきたが、近年、腎疾患の治療とし
て人工透析が広く行なわれるようになった丸め、透析治
療中に腎機能をモニタリングするための、正確、簡便か
つ迅速な尿素の定量法が強く登訪されている。
て人工透析が広く行なわれるようになった丸め、透析治
療中に腎機能をモニタリングするための、正確、簡便か
つ迅速な尿素の定量法が強く登訪されている。
初期の尿素定量法は、尿素と他の有機物を反応させ1発
色させて定量する方法であったが、Rk近ではこれに代
わるより正確な方法として、ウレアーゼを用いる#票決
が行なわれている。この方法は尿素にウレアーゼを作用
させ、アンモニアを生成させて、このアンモニアを何ら
かの方法で定量するというものである。アンモニアの定
量法としては、インドフェノール反応やネスツー反応を
利用する方法もあるが、最も広く行なわれているのは、
グルメンン酸デヒドロゲナーゼ(GL、DH)及びニコ
チンアミドアデニンジヌクレオチド(NADH)を組み
合わせた酵素複合法である。
色させて定量する方法であったが、Rk近ではこれに代
わるより正確な方法として、ウレアーゼを用いる#票決
が行なわれている。この方法は尿素にウレアーゼを作用
させ、アンモニアを生成させて、このアンモニアを何ら
かの方法で定量するというものである。アンモニアの定
量法としては、インドフェノール反応やネスツー反応を
利用する方法もあるが、最も広く行なわれているのは、
グルメンン酸デヒドロゲナーゼ(GL、DH)及びニコ
チンアミドアデニンジヌクレオチド(NADH)を組み
合わせた酵素複合法である。
この方法は、アンモニアを下式
NADH十NH4+α−ケトゲルタール酸−−−→NA
D+グルタミン酸十H20゜ の反応を利用して、NADHの消費量を比色によシ測定
する方法であるが、この方法は。
D+グルタミン酸十H20゜ の反応を利用して、NADHの消費量を比色によシ測定
する方法であるが、この方法は。
1)体液のような着色試料をそのiま使うことはできな
い。
い。
2)除蛋白を行なう必要があシ、操作が煩雑で時間がか
かる。
かる。
3ン高価な#素を使い捨てにするために経済的でない。
などの欠点がある。
これらの欠点を#PWiItする九め、酵素を固定化し
、’1M電極あるいはガラス電極を利用して゛アンモニ
アを測定する方法も試みられているが、′ガラス電極の
場合、体液中のNa イオン、にイオンの影蕃をうけ
るという欠点がある。また−電極の場合は、ガス状のア
ンモニアを測定スルので、アンモニアをガス化させるた
・め被検液をPH//以上にしなければならず、酵素反
応の至適−と異なるので1反応部分と測定部分を分離し
なければならないという欠点がある。さらに−電極を用
いるものは揮発性アミンの影響をうけやすいという欠点
もFハ実用化されるに至っていない。
、’1M電極あるいはガラス電極を利用して゛アンモニ
アを測定する方法も試みられているが、′ガラス電極の
場合、体液中のNa イオン、にイオンの影蕃をうけ
るという欠点がある。また−電極の場合は、ガス状のア
ンモニアを測定スルので、アンモニアをガス化させるた
・め被検液をPH//以上にしなければならず、酵素反
応の至適−と異なるので1反応部分と測定部分を分離し
なければならないという欠点がある。さらに−電極を用
いるものは揮発性アミンの影響をうけやすいという欠点
もFハ実用化されるに至っていない。
本発明は上記の問題および欠点を解決するためのより簡
便、正確、迅速かつ安価な尿素定量法を提供することを
一般的な目的とする。
便、正確、迅速かつ安価な尿素定量法を提供することを
一般的な目的とする。
本発明者尋は、上記目的を達成するため、尿素定量法に
ついて鋭意研究を重ねた結果、尿素を分解しアンモニヤ
を生成させる#票(ウレアーゼと、アンモニアのみを選
択的に版化する微生物系硝化菌)とを固定化した固定化
酸素−微生物複合膜を溶存酸素電極の隔膜に密着させ、
半透膜で被覆して構成した尿素センナを被検液に接触さ
せれば、それによって生ずる前記電極電流の減少量′f
t測定することによ多被検液中の尿素を正確、迅速かつ
簡便に定量しうることを突き止め喪。
ついて鋭意研究を重ねた結果、尿素を分解しアンモニヤ
を生成させる#票(ウレアーゼと、アンモニアのみを選
択的に版化する微生物系硝化菌)とを固定化した固定化
酸素−微生物複合膜を溶存酸素電極の隔膜に密着させ、
半透膜で被覆して構成した尿素センナを被検液に接触さ
せれば、それによって生ずる前記電極電流の減少量′f
t測定することによ多被検液中の尿素を正確、迅速かつ
簡便に定量しうることを突き止め喪。
したがって、本発明の主たる目的は、慣用の溶存酸素電
極における酸素電極隔膜と半透膜との間に、酵素ウレア
ーゼを固定した#素膜に硝化菌菌体を固定化し之多孔質
膜を密着させてなる固定化#素−微生物膜を前記多孔質
膜が前記隔膜に密着するよう介装し、これを前記牛透属
で被覆してなる゛尿素センチを尿素含有の被検液と接触
させ、前記酸素電極の出力電流の減少値を測定し、この
糊定飯が被検液中の2m含有量に比例することを特徴と
する尿素定量法を提供する仁とにある。
極における酸素電極隔膜と半透膜との間に、酵素ウレア
ーゼを固定した#素膜に硝化菌菌体を固定化し之多孔質
膜を密着させてなる固定化#素−微生物膜を前記多孔質
膜が前記隔膜に密着するよう介装し、これを前記牛透属
で被覆してなる゛尿素センチを尿素含有の被検液と接触
させ、前記酸素電極の出力電流の減少値を測定し、この
糊定飯が被検液中の2m含有量に比例することを特徴と
する尿素定量法を提供する仁とにある。
さらに、本発明の目的は、支持体と、支持体内11に充
填された電解液と、アノードと、カソードと、酸素電極
用隔膜と、この隔膜を覆う半透膜とからなる溶存酸素電
極において、fIi索ウレアーゼを固定化した#素膜に
硝化薗菌体瞥固定化した多孔質膜を密着させてなる固定
化酵素−黴生物禎合膜を前記酸素電極用隔膜と前記半透
膜との間に、微生物担持の前記多孔質膜側が前記電極隔
膜に密着するよう介装し、これを前記半透膜で被覆して
なる。尿素定量法に尿素センナとして使用する溶存酸素
電極を提供することである。
填された電解液と、アノードと、カソードと、酸素電極
用隔膜と、この隔膜を覆う半透膜とからなる溶存酸素電
極において、fIi索ウレアーゼを固定化した#素膜に
硝化薗菌体瞥固定化した多孔質膜を密着させてなる固定
化酵素−黴生物禎合膜を前記酸素電極用隔膜と前記半透
膜との間に、微生物担持の前記多孔質膜側が前記電極隔
膜に密着するよう介装し、これを前記半透膜で被覆して
なる。尿素定量法に尿素センナとして使用する溶存酸素
電極を提供することである。
さらに他の本発明の目的は、尿素をアンモニアと炭酸と
に分解する酵素ウレアーゼを固定化した酵素膜と、アン
モニアを資化して酸素な消費する硝化**体を固定化し
た多孔質膜とからなり、前記酵素膜と前記多孔質膜とを
密着させてなる、尿素定量法に使用する同定化#嵩−黴
生物被合膜を#!供するにある。
に分解する酵素ウレアーゼを固定化した酵素膜と、アン
モニアを資化して酸素な消費する硝化**体を固定化し
た多孔質膜とからなり、前記酵素膜と前記多孔質膜とを
密着させてなる、尿素定量法に使用する同定化#嵩−黴
生物被合膜を#!供するにある。
上記の尿素定量法において、尿素含有の試料を抗生物質
を含有する緩衝液で所定談度範8に希釈して−70また
Ht、oの被検液t−調製すれば、固定化酵素−微生物
複合膜の活性および選択性を高めうるので好適である。
を含有する緩衝液で所定談度範8に希釈して−70また
Ht、oの被検液t−調製すれば、固定化酵素−微生物
複合膜の活性および選択性を高めうるので好適である。
さらに、上記の尿素定量用溶存険素電極において、電極
を使用しない間はこれを抗生物質を含有する一10緩衝
液中に常時通気しながら浸漬保存すれば、固定化酵素−
微生物複合、膜の活性を安定化かつ長期間持続させうる
ので好適である。
を使用しない間はこれを抗生物質を含有する一10緩衝
液中に常時通気しながら浸漬保存すれば、固定化酵素−
微生物複合、膜の活性を安定化かつ長期間持続させうる
ので好適である。
本発明による方法は、以下の原理に基づくものである。
まず、尿素はウレアーゼによシ下式(1)に従ってアン
モニアと炭酸とく加水分解される。
モニアと炭酸とく加水分解される。
ζこで用い友#素ウレアーゼは尿素に特異的に作用する
ので、被検液中の他の物質からアンモニアが生成される
ことはない。生成したアンモニア祉硝化曹によシ亜硝酸
、硝酸へと酸化される。アンモニアを亜硝酸KII2化
するのはニドpソモナス(Nitorosomones
)属であり、亜硝酸を硝1[K酸化するのはニトロバ
クタ−(N1torobaator )属である。
ので、被検液中の他の物質からアンモニアが生成される
ことはない。生成したアンモニア祉硝化曹によシ亜硝酸
、硝酸へと酸化される。アンモニアを亜硝酸KII2化
するのはニドpソモナス(Nitorosomones
)属であり、亜硝酸を硝1[K酸化するのはニトロバ
クタ−(N1torobaator )属である。
−NM、+70.””シつ−v−+xx酬JHNO,+
JH20JHNO+0 ””バクター!LJHNO!
2!1 この酸化過程の進行によ〕生じる・溶存11票電極近傍
O1!素換度の減少をζめ電極の減少値として測定し、
被検液中の尿*llKを動棚する。
JH20JHNO+0 ””バクター!LJHNO!
2!1 この酸化過程の進行によ〕生じる・溶存11票電極近傍
O1!素換度の減少をζめ電極の減少値として測定し、
被検液中の尿*llKを動棚する。
この出力電流の減少値は被検液中の尿素濃度に比例する
ので、尿素を定量することができる。
ので、尿素を定量することができる。
本発明の尿素センナに用いる溶存酸素電極はボーラロ型
、ガルバニ型のいずれでもよく、−穀に市販されている
ものを用いることができる。
、ガルバニ型のいずれでもよく、−穀に市販されている
ものを用いることができる。
また、この尿素セン?における同定化#素−黴生物複合
属に用いる硝化菌は活性汚泥中の硝化層から口し、常温
にて培養しえものである。
属に用いる硝化菌は活性汚泥中の硝化層から口し、常温
にて培養しえものである。
硝化菌はアンモニアの酸化過程からエネルギーを得、炭
酸及び炭rIl塩をIie素源とする独立栄養細菌であ
る。従って培養にはアンモニウム塩。
酸及び炭rIl塩をIie素源とする独立栄養細菌であ
る。従って培養にはアンモニウム塩。
十分な空−(CO,,0,)、栄養塩、水が必要である
が、有機物は不要である。硝化菌は有機酸を自ら合成し
ているため代謝物質としての有機隼が培地中に存在して
いる。この有Ii!酸を資化する菌が混在するとアンモ
ニアに対する選択性が低下するので雑菌の止育を妨げる
条件たとえば−を1.0にするなどの方法で培養するか
、ま九社雑菌の生育を阻害する抗生物質を培地に添加す
る必要がある。また硝化菌は液体培地中で。
が、有機物は不要である。硝化菌は有機酸を自ら合成し
ているため代謝物質としての有機隼が培地中に存在して
いる。この有Ii!酸を資化する菌が混在するとアンモ
ニアに対する選択性が低下するので雑菌の止育を妨げる
条件たとえば−を1.0にするなどの方法で培養するか
、ま九社雑菌の生育を阻害する抗生物質を培地に添加す
る必要がある。また硝化菌は液体培地中で。
浮遊状態では生育が困難であるので、菌の担体として菌
の生育に無害な無機物質たとえば脚数カルシウム粉床を
添加することができる。
の生育に無害な無機物質たとえば脚数カルシウム粉床を
添加することができる。
このように培養した十分活性のある硝化菌を多孔性の薄
膜に吸着固定する。ここで使用する薄膜としては、硝化
IIを通過させず、アンモニアと識索を自由に通過させ
、か2吸着固定化に耐える強度を有する膜であればいか
なる薄膜でもよく、たとえIdiリポアフィルタなどの
多孔性膜、たとえばテフロン膜などのガス透過性膜を使
用することができる。また場合によっては。
膜に吸着固定する。ここで使用する薄膜としては、硝化
IIを通過させず、アンモニアと識索を自由に通過させ
、か2吸着固定化に耐える強度を有する膜であればいか
なる薄膜でもよく、たとえIdiリポアフィルタなどの
多孔性膜、たとえばテフロン膜などのガス透過性膜を使
用することができる。また場合によっては。
酵素を固定化した膜の一外面に菌体を直接吸着させる仁
とも可能である。なお、薄膜への゛硝化菌の固定化法は
活性が十分保持されるla!?、’尚分野で周知され九
任意の方法を用いることができる。
とも可能である。なお、薄膜への゛硝化菌の固定化法は
活性が十分保持されるla!?、’尚分野で周知され九
任意の方法を用いることができる。
さらに、上記複合膜の他方の構成lLI索である固定化
ウレアーゼ属は以下の方法に・て作成できる。
ウレアーゼ属は以下の方法に・て作成できる。
本発明で使用する酵素ウレアーゼ(E、C,よよlj)
は臨床検査用として一般に市販されている亀ので十分使
用可能である。ウレアーゼを固定化する膜は親水性かつ
尿素を自由に透過させる半透膜で、電極に執着した場合
の強度及゛び安定性が良好であれば任意のものを使用す
ることができ%九とえば塩化ビニル膜に酵素を物塩的吸
着させ九膜九とえばトIJア建ン膜をグルタルアルデヒ
ド処理し、これに#素を共有結合させて固定化し九膜、
たとえばコラーゲンと酵素を混合して成膜し死後グルメ
ルアルデヒドを用いて#素とコラーゲンを架橋した膜な
どを例として挙げることができる。なお、#素固定化用
の半透膜ならびに固定化法に関しては酵素活性が十分保
持され安定である限シ、この分野で周知の゛いかなる技
術をも用いる仁とができる。
は臨床検査用として一般に市販されている亀ので十分使
用可能である。ウレアーゼを固定化する膜は親水性かつ
尿素を自由に透過させる半透膜で、電極に執着した場合
の強度及゛び安定性が良好であれば任意のものを使用す
ることができ%九とえば塩化ビニル膜に酵素を物塩的吸
着させ九膜九とえばトIJア建ン膜をグルタルアルデヒ
ド処理し、これに#素を共有結合させて固定化し九膜、
たとえばコラーゲンと酵素を混合して成膜し死後グルメ
ルアルデヒドを用いて#素とコラーゲンを架橋した膜な
どを例として挙げることができる。なお、#素固定化用
の半透膜ならびに固定化法に関しては酵素活性が十分保
持され安定である限シ、この分野で周知の゛いかなる技
術をも用いる仁とができる。
このようにして作成した固定化#素膜を前記菌体固定化
膜の外側に密着させ、固定化酵素−微生物複合膜を調製
する。この固定化酵素−微生物複合膜の菌体側が溶存酸
素電極表面に密着するよう電極に装着し、これを半透膜
で被覆して0−リングで固定する。かくして本発明によ
る尿素センナが得られゐ。
膜の外側に密着させ、固定化酵素−微生物複合膜を調製
する。この固定化酵素−微生物複合膜の菌体側が溶存酸
素電極表面に密着するよう電極に装着し、これを半透膜
で被覆して0−リングで固定する。かくして本発明によ
る尿素センナが得られゐ。
上記のように構成した尿素センサを用いて以下のように
尿素を定量する。
尿素を定量する。
尿素セン?を尿素被検液に浸漬、接触させると、被検液
中の尿素が尿素センサの最外層の半透膜を通して複合膜
中に拡散し、尿素は#素の作、用によシアンモニアと炭
酸に分解゛される。アン−%=7は次いで硝化層に拡散
して陵化され、l1票電極近傍の掛存ll素が消費され
る。この浴存象素0減少量を電極の出力電流の減少値と
して測定する。固定化酵素と固定・化菌体の活性が尿素
の拡散量に比較して十分−ければ、測矯値と被検液の尿
lA濃度との間に所定淡度範囲中比例関係が成立するの
で、被検液中の尿素濃度を容14 K IIJ定できる
。このような比例関係′を得るには酵素活性が十分高く
、かつ安定に固定化されている必畳があり、さらに固定
化・硝化菌の活性も十分保持されなければならない。こ
の丸め被検液を緩衝液にて−7またはpHIt/C維持
し、かつ緩衝液に雑菌の生育を妨げる抗生愉質たとえば
クロロマイセチ/を含有させることで簡便に行なわれる
。なお、pH7の緩衝液は0. / M 17ン酸緩衝
液、PHtco緩衝液は0.0/Mホウ酸ナトリウム緩
衝液を用いることができる。
中の尿素が尿素センサの最外層の半透膜を通して複合膜
中に拡散し、尿素は#素の作、用によシアンモニアと炭
酸に分解゛される。アン−%=7は次いで硝化層に拡散
して陵化され、l1票電極近傍の掛存ll素が消費され
る。この浴存象素0減少量を電極の出力電流の減少値と
して測定する。固定化酵素と固定・化菌体の活性が尿素
の拡散量に比較して十分−ければ、測矯値と被検液の尿
lA濃度との間に所定淡度範囲中比例関係が成立するの
で、被検液中の尿素濃度を容14 K IIJ定できる
。このような比例関係′を得るには酵素活性が十分高く
、かつ安定に固定化されている必畳があり、さらに固定
化・硝化菌の活性も十分保持されなければならない。こ
の丸め被検液を緩衝液にて−7またはpHIt/C維持
し、かつ緩衝液に雑菌の生育を妨げる抗生愉質たとえば
クロロマイセチ/を含有させることで簡便に行なわれる
。なお、pH7の緩衝液は0. / M 17ン酸緩衝
液、PHtco緩衝液は0.0/Mホウ酸ナトリウム緩
衝液を用いることができる。
さらに、 III定を行なわない時には、雑菌の成育を
、妨げ酵素活性に悪影畳のない条件、九とえば−lクロ
ロマイセチン/all/l、 o、otMホク酸ナトリ
クム緩衝液で常時通気しながら、この中に尿素センナを
浸漬することによシ固定化酵素−微生物複合属の活性を
安定に保つことができる。
、妨げ酵素活性に悪影畳のない条件、九とえば−lクロ
ロマイセチン/all/l、 o、otMホク酸ナトリ
クム緩衝液で常時通気しながら、この中に尿素センナを
浸漬することによシ固定化酵素−微生物複合属の活性を
安定に保つことができる。
以下実施例によp本発明を説明する。
実施例/
硝化菌の培養は、下記第1表に示す組成の培jを使用し
、常法によp行った。
、常法によp行った。
ただし、培地には菌担体としてCa COB粉末を毎週
o、zgの割合で橋脚し、 i M Nm、Co、によ
シPHtに保持し友、なお、培養条件は、温度10℃、
通気量/l00m/m1ttで振とうは行なわず、固定
化にはlケ月以上培養を継続したものを用い九、このよ
うな条件で培養され、十分活性のある硝化菌を次のよう
な方法で固定化した。
o、zgの割合で橋脚し、 i M Nm、Co、によ
シPHtに保持し友、なお、培養条件は、温度10℃、
通気量/l00m/m1ttで振とうは行なわず、固定
化にはlケ月以上培養を継続したものを用い九、このよ
うな条件で培養され、十分活性のある硝化菌を次のよう
な方法で固定化した。
アセチルセルロース製メンズ2ンフイ〃り(孔径0.4
11μm東洋P紙)を吸引ビンに毎ツトし蒸留水で洗浄
する0次いで吸引によp硝化薗懸濁液乙1を流過させて
アセチルセルロース膜に菌体を吸着させ、pHI、0.
0/Mホウ酸ソーダ緩衡液10dllCて洗浄した後、
・この膜を白金電極面を十分被覆する程度の大きさに切
断する0次に、この実施例で使用した固定化酵素膜につ
いて説明する。
11μm東洋P紙)を吸引ビンに毎ツトし蒸留水で洗浄
する0次いで吸引によp硝化薗懸濁液乙1を流過させて
アセチルセルロース膜に菌体を吸着させ、pHI、0.
0/Mホウ酸ソーダ緩衡液10dllCて洗浄した後、
・この膜を白金電極面を十分被覆する程度の大きさに切
断する0次に、この実施例で使用した固定化酵素膜につ
いて説明する。
固定化に用いた膜は塩化ビニルg(三菱油化製)で、I
L水性多孔質膜である。この膜は成膜稜蒸留水中に浸漬
保存されている。これを硝化藺固定化属と同じ大きさに
切断し、111表面の水を拭き取った後吸引びん上で吸
引しながら、ウレアーゼ(メルク社製、JU/q)コ9
を膜上にのせる。ウレアーゼは膜中に含有されている水
に溶解し、膜中へと浸透する。この後5〜10分間で*
a乾燥し、膨満時の約11%に収縮する。この収縮は不
可逆で再び膨潤しても元の大きさには戻らない。従って
、!I11孔中に浸透した酵素は膜孔の収縮によ多孔外
への脱落が困難となる。このようにしてII製した固定
化酵素膜をpki7,0.1Mリン酸緩衝液中に浸漬し
、表面に吸着している酵素を洗い、上記の菌体膜のアセ
チルセルロース側に密着させて酵素−黴生物複合膜とす
る。
L水性多孔質膜である。この膜は成膜稜蒸留水中に浸漬
保存されている。これを硝化藺固定化属と同じ大きさに
切断し、111表面の水を拭き取った後吸引びん上で吸
引しながら、ウレアーゼ(メルク社製、JU/q)コ9
を膜上にのせる。ウレアーゼは膜中に含有されている水
に溶解し、膜中へと浸透する。この後5〜10分間で*
a乾燥し、膨満時の約11%に収縮する。この収縮は不
可逆で再び膨潤しても元の大きさには戻らない。従って
、!I11孔中に浸透した酵素は膜孔の収縮によ多孔外
への脱落が困難となる。このようにしてII製した固定
化酵素膜をpki7,0.1Mリン酸緩衝液中に浸漬し
、表面に吸着している酵素を洗い、上記の菌体膜のアセ
チルセルロース側に密着させて酵素−黴生物複合膜とす
る。
このように作成した複合膜を用いて構成される尿素セン
サについて添付図面によ〕説明する。
サについて添付図面によ〕説明する。
第1図は、ガルバニm溶存駿素電極を用いた尿素センナ
を示してあシ、溶存酸素電極は支持体io、そこに充填
された電解液(J(791GNaOH)12、鉛7ノー
ド/4t、白金カンード/4.及び歇素電極用隔膜/I
から構成される。この隔膜lr上に上記のように調製し
た酵素−徹生物複合属コO,ココの菌体個を密着させる
と共に酵素膜側を最外層の透析膜(8PiCTRATO
RメンプレンチニービングAJ)J参で被扱し10−リ
ングコ4で前記支持体1ot1c固定して。
を示してあシ、溶存酸素電極は支持体io、そこに充填
された電解液(J(791GNaOH)12、鉛7ノー
ド/4t、白金カンード/4.及び歇素電極用隔膜/I
から構成される。この隔膜lr上に上記のように調製し
た酵素−徹生物複合属コO,ココの菌体個を密着させる
と共に酵素膜側を最外層の透析膜(8PiCTRATO
RメンプレンチニービングAJ)J参で被扱し10−リ
ングコ4で前記支持体1ot1c固定して。
尿素竜ンサコttvs成する。
次に、本尭@O尿素センサーlを連続使用する方式につ
いて第2図によシ説明する0本発明の電極は、この連続
使用方式のみに限定さtLるものでなく、バッチ方式で
も使用しうろことは勿論である。
いて第2図によシ説明する0本発明の電極は、この連続
使用方式のみに限定さtLるものでなく、バッチ方式で
も使用しうろことは勿論である。
第一図において、ll素によル飽和されたキャリヤ液J
QをベリスメボンプJ1で測定用フローセル!+’内に
流速l畔/m illで通液し、記罎針J1のベースツ
インが一定になったことを確認した後にサンプル注入口
Jtに尿素を含有する被検液100μtを約コOμl/
m・Cの流速で注入する。なお、キャリヤ液としてpk
l?、0.1M(Qリン酸緩衝液を用いておplこれに
a1票を飽和するには。
QをベリスメボンプJ1で測定用フローセル!+’内に
流速l畔/m illで通液し、記罎針J1のベースツ
インが一定になったことを確認した後にサンプル注入口
Jtに尿素を含有する被検液100μtを約コOμl/
m・Cの流速で注入する。なお、キャリヤ液としてpk
l?、0.1M(Qリン酸緩衝液を用いておplこれに
a1票を飽和するには。
たとえば空気注入口aOよル通気させて行う仁とができ
る。サンプル注入口Jtよシ注入された被検液は、キャ
リヤ液J0によp約−0倍に希釈されて、70−セルJ
ICt流過し、その間に尿素の分解反応が開始され、電
流値は減少し。
る。サンプル注入口Jtよシ注入された被検液は、キャ
リヤ液J0によp約−0倍に希釈されて、70−セルJ
ICt流過し、その間に尿素の分解反応が開始され、電
流値は減少し。
約2分後に極小電流値が得られる。さらに通液を継続す
ると電流値線増加し、参〜Ij分螢にベース電流値に復
帰する。しかる後に新たに被検液を注入することがで龜
、連続測定ができる。
ると電流値線増加し、参〜Ij分螢にベース電流値に復
帰する。しかる後に新たに被検液を注入することがで龜
、連続測定ができる。
また予め既知濃度の尿素標準液により、尿素濃度と電流
減少値との比例関係と検量しておけば未知濃度の被検液
の尿素#11度を簡単に決定することができる。なお、
キャリヤ液J0と測定用70−セル34I−は、恒温槽
4c−で30℃に保った。
減少値との比例関係と検量しておけば未知濃度の被検液
の尿素#11度を簡単に決定することができる。なお、
キャリヤ液J0と測定用70−セル34I−は、恒温槽
4c−で30℃に保った。
この定量法で尿素!〜j Oq/dlの範囲で作成した
検量線を第3図に示す。縦軸は出力電流値をμムで示し
、横軸は尿凛績度を■/dlで示す、第3図かられかる
ように、出力電流値は尿素員度に対しj −J o I
IJiF/litの範囲で良好な直線関係を示す。
検量線を第3図に示す。縦軸は出力電流値をμムで示し
、横軸は尿凛績度を■/dlで示す、第3図かられかる
ように、出力電流値は尿素員度に対しj −J o I
IJiF/litの範囲で良好な直線関係を示す。
次に、尿素センサの至適−を知るため、キャリヤ液の−
を6.0−1.7の範囲で変え、尿゛素凝Ijコjダ/
l O標準液を注入して−と測定値の関係を調べ、結果
を第参図に示す、PH7及びPHrでは尿素センサの測
定値が実用に十分供しうる大きさとなったので、キャー
リヤ液はPH7またはPHtのいずれでも使用できる。
を6.0−1.7の範囲で変え、尿゛素凝Ijコjダ/
l O標準液を注入して−と測定値の関係を調べ、結果
を第参図に示す、PH7及びPHrでは尿素センサの測
定値が実用に十分供しうる大きさとなったので、キャー
リヤ液はPH7またはPHtのいずれでも使用できる。
さらに、尿素センナの選択性について検討し良。尿素員
度コ!Q/dlの標準液に、血中に含有されている各成
分を血中の約5倍の課度で添加した後、被検液と添加前
の2!ダ/djの標準液を用い、それぞれの測定値を比
較した。結果を下記第2表に示す。
度コ!Q/dlの標準液に、血中に含有されている各成
分を血中の約5倍の課度で添加した後、被検液と添加前
の2!ダ/djの標準液を用い、それぞれの測定値を比
較した。結果を下記第2表に示す。
菖Jil 尿素センナの選択性
(単位nム)
この結果から判るように、各種成分の添加による測定値
への影餐はほとんど認められなかつ九。
への影餐はほとんど認められなかつ九。
また、尿素センサは、わずかな活性低下はみ。
られるもののコ週間以上再使用可能であった。
実施例コ
この実施例は、#索をコラーゲン膜に固定化する具体例
を示す。
を示す。
固定化微生物膜は実施例1と同様にして作成し。
固定化酵素膜はコラーゲンに#素を゛固定化して用いた
。ここで用いた酵素固定化コラーゲン膜は以下のように
作成した。
。ここで用いた酵素固定化コラーゲン膜は以下のように
作成した。
十分精製したコラーゲン0.1gbIIIIIに酵素を
0、0 J %になるように添加し、攪拌した後ガラス
板上に展開した。これを1℃、で10時間風乾燥した後
、0.1−グルメルアルデヒドで4通し、a、1M、P
H7のりン駿緩trilにて洗浄し九゛、この固定化酵
素膜と固定化微生物膜とを用いヤ、。
0、0 J %になるように添加し、攪拌した後ガラス
板上に展開した。これを1℃、で10時間風乾燥した後
、0.1−グルメルアルデヒドで4通し、a、1M、P
H7のりン駿緩trilにて洗浄し九゛、この固定化酵
素膜と固定化微生物膜とを用いヤ、。
実施例1と同様に尿素センナを構成し九。このセンナを
用い、バッチ式で尿素の定量を行なつ九、バッチ式での
捌定法を嬉!図で説明する。
用い、バッチ式で尿素の定量を行なつ九、バッチ式での
捌定法を嬉!図で説明する。
尿素センサコtを−7の0. / M 9・ン酸緩衡液
#参中に浸漬した。前記リン酸緩衡液参参は空気注入日
参4よシ空気を通気することにより、酸素を飽和させる
ことができる。!グネチツクスl−ラ参1によp攪拌を
行ない、尿素センサコrKta絖した記鍮計10により
、ベース電流値が安定になつ九ことを確認した後、サン
プル注入口Iコより被検液を注入した。被検原線前記り
ン酸緩衝液≠lで20倍に希釈される。被検液の注入後
電極電流値は減少しはじめ、数分後に定常状態に達する
。この定常電流値と被検液注入前のベース電流値との差
金測定値とし。
#参中に浸漬した。前記リン酸緩衡液参参は空気注入日
参4よシ空気を通気することにより、酸素を飽和させる
ことができる。!グネチツクスl−ラ参1によp攪拌を
行ない、尿素センサコrKta絖した記鍮計10により
、ベース電流値が安定になつ九ことを確認した後、サン
プル注入口Iコより被検液を注入した。被検原線前記り
ン酸緩衝液≠lで20倍に希釈される。被検液の注入後
電極電流値は減少しはじめ、数分後に定常状態に達する
。この定常電流値と被検液注入前のベース電流値との差
金測定値とし。
被検液の尿素濃度と対応させる。なお、このシステムは
恒温槽j4’により常時J0℃に保持した。
恒温槽j4’により常時J0℃に保持した。
この尿素定量法で定量し大尿素濃度と比色法(ジアセチ
ルモノオキシム法)で定量した尿素1l11tLの相関
関係を#I4図に示す、縦軸には尿素センナで定量した
尿素濃度、横軸にはジアセチルモノオキシム法で定量し
九尿素111度をダ/d/で示す、相関係数は0.27
であL比色法の測定値と4jL好な一致が認められた。
ルモノオキシム法)で定量した尿素1l11tLの相関
関係を#I4図に示す、縦軸には尿素センナで定量した
尿素濃度、横軸にはジアセチルモノオキシム法で定量し
九尿素111度をダ/d/で示す、相関係数は0.27
であL比色法の測定値と4jL好な一致が認められた。
上記本発@によれば、以下に列記する効果および利点が
得られる。
得られる。
1)アンモニアを特異的に資化する微生物、硝化菌とウ
レアーゼを組み合わせた丸め、尿素七ンtとしての選択
性が高まる。
レアーゼを組み合わせた丸め、尿素七ンtとしての選択
性が高まる。
2)#素を固定化して用いたため、定量が安価に行なえ
る。
る。
5)酵素−微生物複金属を溶存酸素電極に装着し、溶存
酸素電極の電流値tllJ定する方法をとったことによ
p、簡便に定量が行なえる。
酸素電極の電流値tllJ定する方法をとったことによ
p、簡便に定量が行なえる。
4)抗生物質を含有する緩衝液で被検液の希釈を行う仁
とによp、感度が脆くかつ安定な尿素センサが得られる
。
とによp、感度が脆くかつ安定な尿素センサが得られる
。
5)尿素センサを使用しない時、抗生物質を含有するp
i(t 、 1. jの緩衝液中に常時通気″して保存
することによル、長期間安定でかつ連続使用可能な尿素
センナが得られる。
i(t 、 1. jの緩衝液中に常時通気″して保存
することによル、長期間安定でかつ連続使用可能な尿素
センナが得られる。
なお5本発明は、血清、R中の尿素濃度を定量するばか
プでなく全血を用いて測定することも可能であL tた
測定後のセンサの洗浄、測定値の記憶装置などを備える
ことによル自動計欄用にも応用で畷ることが了解されよ
う。
プでなく全血を用いて測定することも可能であL tた
測定後のセンサの洗浄、測定値の記憶装置などを備える
ことによル自動計欄用にも応用で畷ることが了解されよ
う。
纂1図は本発明の尿素センナの正面断面図。
第J図は尿素センサを用いた尿素定量連続使用掬定法に
よる尿素濃度と出力電流の関係を示すグラフ、第参図は
連続測定法におけるキャリヤ液の−と出力電流値との関
係を示すグラフ、第3図はX*センサを用いるパッチ法
のシステム管示すプpツク図、#It図紘メツチ法にお
ける尿素定量値と比色法(シアチルモノオキシム法)K
よる尿素定量値の相関関係を示すグラフである。 io川用持体 lコ…電解液 14I−・・・鉛アノード l≦・・・白金カソー
ドコ弘・・・透析膜 コ4・・・O−リング
コt・・・尿素センサ JO−・・キャリヤ液J、
2・・・ボンダ#・・・70−セルJ4・・・記録計
Jf・・・サンプル注入口重・・・空気注入口
#1・・・恒温檜杯・・・緩衝液 4c
6・・・空気注入口jコ・・・サンプル注入口 !ダ・
・・恒温槽特許出願人 富士電機製造株式、傘社同
弁理士 門 奈 清 FIG、2 FIG、3 尿素 m%1 FIG、4 H FIG、5 0 FIG、6
よる尿素濃度と出力電流の関係を示すグラフ、第参図は
連続測定法におけるキャリヤ液の−と出力電流値との関
係を示すグラフ、第3図はX*センサを用いるパッチ法
のシステム管示すプpツク図、#It図紘メツチ法にお
ける尿素定量値と比色法(シアチルモノオキシム法)K
よる尿素定量値の相関関係を示すグラフである。 io川用持体 lコ…電解液 14I−・・・鉛アノード l≦・・・白金カソー
ドコ弘・・・透析膜 コ4・・・O−リング
コt・・・尿素センサ JO−・・キャリヤ液J、
2・・・ボンダ#・・・70−セルJ4・・・記録計
Jf・・・サンプル注入口重・・・空気注入口
#1・・・恒温檜杯・・・緩衝液 4c
6・・・空気注入口jコ・・・サンプル注入口 !ダ・
・・恒温槽特許出願人 富士電機製造株式、傘社同
弁理士 門 奈 清 FIG、2 FIG、3 尿素 m%1 FIG、4 H FIG、5 0 FIG、6
Claims (5)
- (1) 尿素をアン4ニアと炭酸とに分解する酵素ウ
レアーゼを固定化した酵素膜と、アンモニアを資化して
酸素を消費する硝化薗菌体を固定化し九多孔質属とから
なシ、前記酵素膜と前記多゛孔質属とを密着させてなる
。尿素定量法に11!期する固定化酵素−黴生物複合膜
。 - (2)支持体と、支持体内部に充填され九電解液と、ア
ノードと、カソードと、酸素電極用隔膜と。 この隔膜を覆う半透膜とからなる溶存酸素電極において
、#素つレアーゼを固定化した酵素膜K11l化曹曹体
を同定化し九多孔質膜を密着させてなる固定化酵素−徹
生物砿合属を、前記酸素電極用隔膜と前記半透膜との間
に、微生物担持O前記多孔質真情が前記電極隔膜に密着
するよう介装し、これを前記半透膜で被覆してなる、尿
素定量法に尿素センナとして使用する溶存酸素電極。 - (3) 慣用の溶存酸素電極における酸素電極隔膜と
半透膜とO関に、#素つレアーゼを固定した酵素膜に硝
化曹菌体を固定化した多孔質膜を密着させてなる固定化
酵素−微生物膜を、前記多孔質膜が前記隔膜に密着する
よう介装し、これを前記半透膜で被扱してなる尿素セン
ナを尿素含有の被検液と接触させ、前記酸素電極の出力
電流の減少値を測定し、この測定値が被検液中の尿素含
有量に比例することを特徴とする尿素定量法。 - (4) 特許請求の範囲第3項記載の尿素定量法Kt
iPいて、尿素含有の試料を抗生物質を含有する緩衡液
で所定a度範1!IK希釈して−?:0tた杜−1,0
の被検液を調製し、ヒれを用いて同定化酵素−黴生物複
合属の活性および選択性を高めることを%l[とする尿
素定量法。 - (5)支持体と、支持体内部に充填された電解液と。 アノードと、カソードと、酸素電極用隔膜と、この隔膜
を楓う半透膜とからなり、酵素ウレアーゼを固定化した
#素膜に硝化菌菌体を固定化した多孔質膜を密着させて
なる固定化W#素−微生物複合属を、前記酸素電極用隔
膜と前記半透膜との間に、微生物担持の前記多孔質膜側
が前記電極隔膜に密着するよう介装し、これを前記半透
膜で被覆してなる尿素定量法に尿素センナとして使用す
る溶存Wk素電極を保存するに際し、前記電極を使用し
ない間、抗生物質を含有するPH1の緩衝液中に常時通
気しながら浸漬保′存し。 それによp固定化酵素−徹先物複合膜の活性を安定化か
つ長期間持続させることを特徴とする電極の保存法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP56154769A JPS5856700A (ja) | 1981-10-01 | 1981-10-01 | 固定化酵素―微生物複合膜および尿素センサとこの尿素センサを使用する尿素定量法並びに尿素センサの保存法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP56154769A JPS5856700A (ja) | 1981-10-01 | 1981-10-01 | 固定化酵素―微生物複合膜および尿素センサとこの尿素センサを使用する尿素定量法並びに尿素センサの保存法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS5856700A true JPS5856700A (ja) | 1983-04-04 |
JPH0221543B2 JPH0221543B2 (ja) | 1990-05-15 |
Family
ID=15591484
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP56154769A Granted JPS5856700A (ja) | 1981-10-01 | 1981-10-01 | 固定化酵素―微生物複合膜および尿素センサとこの尿素センサを使用する尿素定量法並びに尿素センサの保存法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS5856700A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN111020004A (zh) * | 2019-12-28 | 2020-04-17 | 哈尔滨工业大学 | 一种具有Janus结构人工细胞模型的尿素传感器的制备方法 |
-
1981
- 1981-10-01 JP JP56154769A patent/JPS5856700A/ja active Granted
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN111020004A (zh) * | 2019-12-28 | 2020-04-17 | 哈尔滨工业大学 | 一种具有Janus结构人工细胞模型的尿素传感器的制备方法 |
CN111020004B (zh) * | 2019-12-28 | 2022-09-30 | 哈尔滨工业大学 | 一种具有Janus结构人工细胞模型的尿素传感器的制备方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0221543B2 (ja) | 1990-05-15 |
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