JPH11512290A - Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有し、高温及び低温において雄性不稔性である細胞質雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 本発明は、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有する細胞質雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物を包含する。この植物は高温においても不稔性に留まる。本発明のＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物は従来の育種技術で作出可能である。このような本発明の植物を用いて異なる種類のＢｒａｓｓｉｃａ属種を、従来の育種技術の使用によってかまたはプロトプラスト融合によって作出し得る。

Description

【発明の詳細な説明】Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有し、高温及び低温において雄性不稔性である細 胞質雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物 発明の分野 本発明は、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有し、高温及び低温において雄性不 稔性であり、かつ優れた雌性稔性を示す細胞質雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏ ｌｅｒａｃｅａ植物に係わる。発明の背景及び概要 植物及び食用作物の生産性を高める努力において、植物育種者は通常、丈が高 い、成長が早い、収穫量が多いなどといった幾つかの望ましい特性を具えた栽培 品種を開発する。この開発を可能にする方法の一つでは、植物に望ましい特性を 導入（ｉｎｆｕｓｅ）して優れた植物系統を作製する。その後、優れた系統同士 を組み合わせて、望ましい特性を具えたＦ₁雑種を形成する。このような優れた 雑種は多くの方法で開発可能である。 優れた雑種を作出する一般的な方法の一つでは、雑種形成したい植物の一つに 雄性不稔性を適用する。雄性不稔性 系統は、育種者が植物の花における他家受精を制御することによってより経済的 に雑種種子を作製することを可能にする。他家受精の制御は雌親の自家受精を防 止することによって行ない得る。自家受精は植物を雄性不稔性とすることによっ て排除する。植物が雄性不稔性であれば、受精のための花粉は製造され得ない。 雄性不稔性となった植物が得られたら、これと、所望の特性を具えた遺伝子提供 植物との雑種を形成する。 雄性不稔性を実現する一方法では細胞質雄性不稔性を利用する。目下のところ 、細胞質雄性不稔性（ＣＭＳ）を制御する遺伝因子は細胞質、特にミトコンドリ アＤＮＡの遺伝子中に見出されると考えられる。 Ｂｒａｓｓｉｃａ属種において最も普通に認められる細胞質雄性不稔性に、 １）Ｒａｐｈａｎｕｓ ｓａｔｉｖｕｓのＯｇｕｒａ雄性不稔性細胞質、 ２）Ｂｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓのＰｏｌｉｍａ雄性不稔性細胞質、及び ３）Ｂｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓのＮａｐ雄性不稔性細胞質 の三つが有る。 Ｂｒａｓｓｉｃａ属では、細胞質雄性不稔性は交雑によって伝達可能である。 雌親（卵）が細胞質に寄与するので、ＣＭＳ雌との交雑によってＣＭＳ後代を作 出できる。しかし、核遺伝子は異型接合性である。従って、核形質に関して同型 接合性であるＣＭＳ系統育種のためには６〜８世代の「戻し交雑」が必要である 。代替案として、細胞質雄性不稔性系統をプロトプラスト融合によって作製する ことも可能である。プロトプラスト融合では、商業的に望ましい特性を具えた植 物から得たプロトプラストをＣＭＳ系統のプロトプラストと組み合わせる。ＣＭ Ｓ系統の核物質（ｎｕｃｌｅａｒ ｍａｔｅｒｉａｌ）は融合前に除去または不 活性化し、それによって前記系統からは細胞質しか提供されないようにする。得 られる細胞質雑種はＣＭＳ細胞質を有し、雄性不稔性である。例えば米国特許第 ５，２５４，８０２号には、Ｏｇｕｒａ ＣＭＳ細胞質を有するＢ． ｏｌｅｒ ａｃｅａ植物が開示されている。この植物はプロトプラスト融合によって得られ た。 冬型セイヨウアブラナ（ｏｉｌ ｓｅｅｄ ｒａｐｅ；Ｂｒａｓｓｉｃａ ｎ ａｐｕｓ）などの変種をＣＭＳとす るのにＰｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質が用いられている（Ｂａｒｓｂｙ等， Ｐｌ ａｎｔ Ｓｃｉｅｎｃｅ ５３，ｐｐ．２４３−２４８， １９８７参照）。し かし、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質による細胞質雄性不稔性発現に伴う重大な問 題点の一つに、Ｐｏｌｉｍａ細胞質は環境条件の影響を受けるということが有る 。Ｚ． Ｆａｎ等， Ｃａｎ． Ｊ． Ｐｌａｎｔ Ｓｃｉ． ６６， ｐｐ． ２２１−２２７， １９８５参照。更に言えば、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を 有する雄性不稔性植物は野外で高温下に稔性となることが知られている。上掲誌 、及びＴ． Ｄ．Ｆｕ， Ｅｎｃａｒｐｉａ Ｃｒｕｃｉｆｅｒｅａ Ｎｅｗｓ ｌｅｔｔｅｒ ６， ｐｐ．６−７， １９８１も参照されたい。 本発明は、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有するＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒ ａｃｅａ植物であって、高温及び低温において雄性不稔性に留まり、かつ優れた 雌性稔性を示すものを包含する。本発明のＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ 植物は従来の育種方法で作出可能である。その後更に交雑もしくは戻し交雑また はプロトプラスト融合を行なうことによって、異なる種類のＢｒａｓｓｉｃａ属 種を 開発し得る。 本発明のＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物を従来の育種技術によって 得るべく、Ｂｒａｓｓｉｃａ ｃａｍｐｅｓｔｒｉｓ栽培品種８７１１０とＢｒ ａｓｓｉｃａｏｌｅｒａｃｅａ栽培品種８７１０１とを種間交雑した。この交雑 から得られた種子を回収して播き、再生させる。得られた植物はＢｒａｓｓｉｃ ａ ｎａｐｕｓであり、一倍体の染色体組を有する。このＢｒａｓｓｉｃａ ｎ ａｐｕｓの保有染色体数（ｃｈｒｏｍｏｓｏｍａｌ ｃｏｎｔｅｎｔ）は、該植 物をコルヒチンで処理することによって倍加させなければならない。 Ｂｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓ栽培品種８７１１８をＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌ ｅｒａｃｅａ栽培品種８７１０１と交雑することによって第二の種間交雑を行な う。この交雑から得られた種子を回収して播き、再生させる。上段に述べた交雑 の場合同様、得られた植物はＢｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓであり、一倍体の染 色体組を有する。この植物をコルヒチンで処理し、それによってその保有染色体 数を倍加させる。 第二の種間交雑の結果として得られたＢｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓ植物を次に、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有する雄性不稔性のＢｒ ａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓ栽培品種８７１０２と交雑する。この交雑の結果得ら れた種子を回収して播き、再生させる。再生した植物はＢｒａｓｓｉｃａ ｎａ ｐｕｓであり、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有する。 続いて、上述のようにして得られた植物を、第一の種間交雑の結果として得ら れたＢｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓ植物と交雑する。この交雑の結果得られた種 子を回収して播き、再生させる。再生した植物はＢｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓ であり、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有し、雄性不稔性である。 次に、上述のようにして得られた植物を正常なＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａ ｃｅａと交雑する。この交雑の結果として長角果が生じるので、これを回収して 種子について調べる。種子を胚救済のために回収し、なぜなら上記のような種間 雑種形成の結果生じる胚は典型的には成熟せずに退化するが、胚救済技術を用い れば種間雑種植物を作出することができるからである。得られたＦ₁植物は雌親 のＢｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓに由来するＰｏｌｉｍａ Ｃ ＭＳ細胞質を有するが、核ＤＮＡの内容（ｎｕｃｌｅａｒ ＤＮＡ ｃｏｎｔｅ ｎｔ）はＢｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓ（ｎ＝１９）とＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌ ｅｒａｃｅａ（ｎ＝９）との組み合わせである。 次に、上述のようにして得られた植物をＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ と戻し交雑する。再び長角果が生じ、これを回収して種子について調べる。種子 を胚救済のために回収する。救済した胚を、上段に述べた交雑の場合と同様にし て再生させる。得られた植物は、染色体数に関しては中間であり、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有する。この植物の核ＤＮＡの内容はＢｒａｓｓｉｃａ ｎａ ｐｕｓとＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａとの組み合わせである。 次に、上述のようにして得られた植物をＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ と戻し交雑する。再び長角果が生じ、これを回収して種子について調べる。種子 を播く。得られた植物は、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有する雄性不稔性Ｂｒ ａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａである。 場合によっては、上記雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物を 更に交雑または戻し交雑して異なる 種類のＢｒａｓｓｉｃａ属種を作出することも可能である。その場合も長角果が 生じるので、これを回収して種子について調べる。種子を播く。得られる植物は 、Ｐｏｌｉｍａ細胞質を有する雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ である。 異なる種類のＢｒａｓｓｉｃａ属種はプロトプラスト融合によっても作出可能 である。Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質と、不活性化された核とを有する雄性不稔 性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａから得たプロトプラストを、商業的に望 ましい特性を具えたＢｒａｓｓｉｃａ属種のプロトプラストと融合させる。融合 後、同種（ａｌｌｏｇｅｎｉｃ）細胞を再生させてＣＭＳ Ｂｒａｓｓｉｃａ属 植物を得る。得られた植物は雄性不稔性で、Ｐｏｌｉｍａ細胞質を有する。再生 したＣＭＳ Ｂｒａｓｓｉｃａ属植物はＰｏｌｉｍａ細胞質を有し、商業的に望 ましい特性を具えた他のＢｒａｓｓｉｃａ属種との交雑に用いることができる。図面の簡単な説明 図１は、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ供与体、Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ ９０４００５−１、及びＣＭＳ特 性の受容体として用いたＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ育種系統の核ＤＮ Ａを含有するエンドヌクレアーゼ消化物中のＢｇｌＩ消化ＤＮＡとプローブＥ５ との様々なハイブリダイゼーションパターンを示す説明図である。レーン１にλ ファージＨｉｎｄIII消化ＤＮＡ断片（ＭＷ標準）を示す。レーン２及び３には Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ ９０４００５− １ ＤＮＡを示す。レーン４及び５にはＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ受 容体系統Ｋ１４を示す。レーン６及び７にはＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅ ａ受容体系統ＤＥ７０を示す。 図２は、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ植物のミトコンドリアＤＮＡ及び受容体育種系 統植物由来のミトコンドリアＤＮＡを含有するエンドヌクレアーゼ消化物中のＢ ｇｌII消化ＤＮＡとプローブＣＭＳ ＢＲＡＳ ４との様々なハイブリダイゼー ションパターンを示す説明図である。レーン８及び１８にλファージＨｉｎｄII I消化ＤＮＡ断片を示す。レーン１〜７にはＰｏｌｉｍａ ＣＭＳ Ｂｒａｓｓ ｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ ９０４００５−１ ＤＮＡを示す。レーン９〜１７ にはＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ受 容体系統Ｋ１４を示す。レーン１９〜２４にはＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃ ｅａ受容体系統ＤＥ７０を示す。発明の詳細な説明 Ｐｏｌｉｍａ細胞質を有する細胞質雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓ 植物は「漏出」することが知られている。漏出性は、この植物が或る一定の温度 条件下にその不稔性を喪失する傾向を有することを意味する。例えば、Ｐｏｌｉ ｍａ細胞質を有するＣＭＳ Ｂｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓ植物は高温下には部 分的にしか不稔性でないことが諸研究により判明している。Ｚ． Ｆａｎ等， Ｃａｎ． Ｊ． Ｐｌａｎｔ Ｓｃｉ． ６６， ｐｐ．２２１−２２７， １ ９８５を参照されたい。 本発明は、Ｐｏｌｉｍａ細胞質を有するＣＭＳ Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒ ａｃｅａ植物を包含する。この植物は高温及び低温において雄性不稔性であり、 かつ優れた雌性稔性を示す。この植物に対して更に交雑及び戻し交雑またはプロ トプラスト融合を用いることにより、異なる種類のＣＭＳ Ｂｒａｓｓｉｃａ属 種を開発することも可能である。 育種プログラム 従来の育種技術を用いて、本発明のＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物 を開発した。本発明者はここに、本発明のＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ 植物の創出に用いた育種プログラムを説明する。育種プログラムは、登録番号８ ７１１０のＢｒａｓｓｉｃａ ｃａｍｐｅｓｔｒｉｓ（別名： Ｂｒａｓｓｉｃ ａ ｒａｐａ）（ｎ＝１０）と、登録番号８７１０１のＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌ ｅｒａｃｅａ（ｎ＝１９）との種間交雑を行なうことによって開始した。登録番 号８７１１０はＣｅｎｔｒｅ ｆｏｒ Ｐｌａｎｔ Ｒｅｓｅａｒｃｈ（ＣＰＲ Ｏ）， Ｐ．Ｏ．Ｂｏｘ １６， ６７００ ＡＡ， Ｗａｇｅｎｉｎｇｅｎ， Ｔｈｅ Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓから登録番号ＩＶＴ ８６００７ ｐａａｒ ３ＭＳとして入手し、この植物は遺伝的に雄性不稔性であった。８７１１０は ブダペスト条約下にＡｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅ ｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）， １２３０１ Ｐａｒｋｌａｗｎ Ｄｒｉｖｅ， Ｒ ｏｃｋｖｉｌｌｅ， Ｍａｒｙｌａｎｄ， ２０８５２に寄託されている。８７ １１０は１９９５年８月２３日付で寄託され、ＡＴＣＣ受託番号第９７２４６号 を付与された。登録番号８７１０１は、 ｔｈｅ Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｐａｔｈｏｌｏｇｙ， １ ６３０ Ｌｉｎｄｅｎ Ｄｒｉｖｅ， Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｗｉｓｃ ｏｎｓｉｎ， Ｍａｄｉｓｏｎ， ＷｉｓｃｏｎｓｉｎのＣｒｕｃｉｆｅｒ Ｇ ｅｎｅｔｉｃｓ Ｃｏｏｐｅｒａｔｉｖｅ（ＣｒＧＣ）からＣｒＧＣ ＃３−３ （Ｃｃｃ）として入手可能な急速成長（ｒａｐｉｄ ｃｙｃｌｉｎｇ）Ｂｒａｓ ｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａである。交雑後、長角果（種子）が生じた。長角果 を回収して種子について調べ、播種する。得られた植物は一倍体のＢｒａｓｓｉ ｃａ ｎａｐｕｓ（ａｃ； ｎ＝１９）であった。この植物を、コルヒチン処理 を施すことによりその染色体を倍加させて二倍体（ａａｃｃ； ２ｎ＝３８）と した。このようにして得られた植物は、ａａｃｃゲノムを有する「人工的な」Ｂ ｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓであった。この植物に番号８７１１６を付した。 ８７１１０と同じ特性を有する第二のＢｒａｓｓｉｃａ ｃａｍｐｅｓｔｒｉ ｓ ８７１１８も８７１０１と交雑した。８７１１８はＣＰＲＯからＩＶＴ ８ ６０１７ ｐａａｒ ３ＭＳとして入手した。８７１１８はブダペスト条 約下にＡｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ ＡＴＣＣ）， １２３０１ Ｐａｒｋｌａｗｎ Ｄｒｉｖｅ， Ｒｏｃｋｖｉｌ ｌｅ， Ｍａｒｙｌａｎｄ， ２０８５２に寄託されている。８７１１８は１９ ９５年８月２３日付で寄託され、ＡＴＣＣ受託番号第９７２４７号を付与された 。上段に述べた交雑の場合同様、種子を回収して播いた。得られた植物にコルヒ チン処理を施し、それによって染色体を倍加させた。このようにして得られた植 物は、ａａｃｃゲノムを有する「人工的な」Ｂｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓであ った。この植物に番号８７１１９を付した。 次に、番号８７１１９の植物を、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有する雄性不 稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓ（ａａｃｃ； 番号８７１０２）と交雑した 。８７１０２はＣｒｕｃｉｆｅｒ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ Ｃｏｏｐｅｒａｔｉｖｅ からＣｒＧＣ ＃５−４（ＡＣｌａａｃｃ）として入手可能な、「Ｐｏｌｉｍａ 」ＣＭＳ細胞質を有する急速成長Ｂｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓである。長角果 が生じ、これを回収して種子について調べた。種子を播き、得られた植物に番号 ８８１０２を付した。この植物はＢｒａ ｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓであり、ａａｃｃゲノムと、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞 質とを有した。 次に、８７１１６と８８１０２との交雑を行なった。長角果が生じ、これを回 収して種子について調べた。種子を播いた。得られた植物はＢｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓ（ａａｃｃ）であり、これに番号８８１２５を付した。Ｂｒａｓｓｉ ｃａ ｎａｐｕｓ（ａａｃｃ）は、Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ（ｎ＝ ９； ｃｃゲノム）とＢｒａｓｓｉｃａ ｒａｐａ（ｎ＝１０； ａａゲノム） とに由来する複二倍体種である。８８１２５は、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を 有する雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓ（ａａｃｃ）である。 ８８１２５（ａａｃｃ）と、正常な雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａ ｃｅａ（ｃｃ）のブロッコリー植物との種間交雑を行なった。この交雑に任意の 雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物を用い得ることは、当業者 には認識されよう。長角果が生じた。この長角果を回収して種子について調べた 。種子が存在した場合は（１個以上の）胚を救済した。前記胚を救済したのは、 上記のような種間雑種形成の結果生じる胚は典型的には成熟せず に退化するが、胚を救済すれば種間雑種植物を作出することができるからである 。 胚の救済は、胚を長角果から取り出すことを含む。このような救済は胚が可能 なかぎり大きくなってから行なうことが好ましい。通常、交雑から１８〜１９日 後が胚救済の好機である。しかし、肝の救済を上記時点以前に、または種皮が未 だ硬化しない間であれば上記時点以後にも行ない得ることは、当業者には認識さ れよう。 胚の救済では、最初に長角果を１０％次亜塩素酸塩（ｈｙｐｏｃｈｌｏｒａｔ ｅ）（次亜塩素酸ナトリウムまたはカリウムなど）溶液中で約２０分間消毒し、 ２．５分及び１０分経過時点で滅菌水で３回濯ぐ。 次に、長角果を長手方向に切断する。幼若種子を取り出し、顕微鏡下に種子か ら胚を取る。得られた胚を、実施例１１に述べるＢＬＫＣ培地などの、成長を促 進する適当な培地上に載置する。培地は成長を促進するものであればいずれを用 いてもよい。４５００ルックスの光を１日に１６時間照射しながら、胚を２０℃ で少なくとも２週間成長させる。発根後、実生を可能なかぎり速やかに土に植え る。 得られたＦ₁植物に番号８８１３２−１から８８１３２ −８４までを付した。これらの植物は雌親のＢｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓ植物 に由来するＰｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有したが、核ＤＮＡの内容はＢｒａｓ ｓｉｃａ ｎａｐｕｓ（ｎ＝１９）とＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ（ｎ ＝９）との組み合わせであった。実質的に、得られた植物は混合ゲノムを有した 。そのゲノムが混合体であるために、前記植物は雄性不稔性であり、かつ部分的 に雌性不稔性であった。得られた植物が雄性不稔性であったのは、雌親（卵）の Ｂｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓ ８８１２５に由来するＰｏｌｉｍａ ＣＭＳ細 胞質を有したからである。 表現型選択を用いて８８１３２−１〜８４の中から、ほぼ正常なＤＮＡ内容を 有する植物（ａａｃｃまたはｃｃ）を選択した。表現型選択によって、育種者が Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ（ｃｃゲノム）に最も類似する植物を選択 することが可能となる。異常なＤＮＡ内容を有する植物は正常なＤＮＡ内容を有 する植物と見た目に相違する。選択した植物を正常なＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅ ｒａｃｅａ（ｃｃ）のブロッコリーまたはカリフラワーと戻し交雑した（ＢＣ１ ）。しかし、任意のＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａを用い得ることは当業者には認識されよう。交雑後、再び胚を 救済した。発生した植物に番号８９０１５〜８９０４０及び８９０４６〜８９０ ５６を付した。これらの植物は、染色体数に関しては中間であり、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有した。これらの植物の場合も、核ＤＮＡの内容はＢｒａｓｓ ｉｃａ ｎａｐｕｓとＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａとの組み合わせであ った。得られた植物は雄性不稔性であり（Ｐｌｉｍａ ＣＭＳ）、かつ部分的に 雌性不稔性であった（染色体数）。 表現型選択を用いて８９０１５〜８９０４０及び８９０４６〜８９０５６の中 から、ほぼ正常なＤＮＡ内容を有する植物を選択した。選択した植物を正常なＢ ｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ（ｃｃ）のブロッコリーまたはカリフラワー と戻し交雑した（ＢＣ２）。しかし、任意のＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅ ａを用い得ることは当業者には認識されよう。この場合も長角果が生じたが、幾 分かの種子は胚の救済を必要としなかった。それらの種子を回収して播いた。こ の交雑の結果得られた植物に番号８９０７０〜８９１４１を付した。これらの植 物のほとんどは正常なＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａの染色体組（２ ｎ＝１８）を有し、Ｐｏｌｉｍａ細胞質を有し、雄性不稔性であった。前記植物 の花の葯及び花弁は減少した。得られた植物は高温及び低温において不稔性に留 まり、かつ正常な雌性稔性を示した。 このようにして得られた植物をブロッコリー、カリフラワー、キャベツ（ムラ サキキャベツ、シロキャベツ（ｗｈｉｔｅ ｃａｂｂａｇｅ）、チリメンキャベ ツ）、メキャベツ、コールラビー、ケール等といった他の種類のＢｒａｓｓｉｃ ａ属種と交雑してＣＭＳ系統を作製することが可能である。例えば、「Ｐｏｌｉ ｍａ」ＣＭＳ植物との戻し交雑やプロトプラスト融合によって、異なる種類のＢ ｒａｓｓｉｃａ属種を作出し得る。 後続の交雑、並びに雄性不稔性、雌性稔性及び 花形態に関する選択過程 続いて、番号８９０１５〜８９０４０、８９０４６〜８９０５６、及び８９０ ７０〜８９１４１の植物を正常なブロッコリー及び／またはカリフラワーと戻し 交雑し、野外に植えた。長角果が生じ、これを回収して種子について調べた。種 子を回収して播いた。Ｐｏｌｉｍａ不稔性植物の畝と交互にブロッコリー保持系 統の畝を配置した。「保持 系統」という語が、雄性不稔性である雌親の不稔性を保持する後代を作出する交 雑に用いられる系統を意味することは、当業者には理解される。保持系統植物は 稔性であるが、それ以外は、雄性不稔性系統から種子を得るべく上記保持系統植 物と共に、典型的には交互に帯状に配置して成長させるＣＭＳ植物と遺伝的に同 等の対応物である。成長期後、自然選択（ミツバチ／ハエ等による）を用いて、 雄性不稔性と、優れた雌性稔性と、最良の花形態、即ち優れた花弁寸法とを示す 植物を選択した。選択した植物に番号ＣＰＯ−１、−２等を付した。これらの植 物はＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａであり、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質 を有し、雄性不稔性であり、かつ優れた雌性稔性を示した。 成長期後、雄性不稔性と優れた雌性稔性とを示す、ＣＰＯ番号を付した植物を クローン化し、典型的な保持系統と共にケージに入れた。ケージ生産では、植物 の周囲にメッシュテント（防虫網）またはケージを建てる。これは野外に存在す る他の植物からの、昆虫を介しての他家受粉を防止するためである。典型的には 、植物と共にミツバチの巣箱または他の昆虫コロニーを中に入れる。生じた長角 果を回収し、種子を播いた。得られた植物は、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有し、雄性不稔性であり、かつ優れた雌性稔性を示すＢｒａｓｓ ｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａであった。 プロトプラスト融合 異なる種類のＣＭＳ Ｂｒａｓｓｉｃａ属種はプロトプラスト融合によっても 作出できる。プロトプラストは、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有する雄性不稔 性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物から取得し得る。例えば、番号８９ ０７０〜８９１１１の植物及びＣＰＯシリーズの植物などの、先に述べた育種プ ログラムによって得られるＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物を用い得る 。プロトプラスト融合は、膜を融合させる融合緩衝液即ち高ｐＨ溶液の存在下に 凝集を惹起するポリエチレングリコール（ＰＥＧ）を用いることによって実現し 得る。このような体細胞交雑は、本明細書に参考として含まれる、Ｓｕｎｄｂｅ ｒｇ等によって開示された種間雑種作出またはその改変のための条件（Ｐｌａｎ ｔ Ｓｃｉｅｎｃｅ ４３，ｐ．１５５， １９８６）下に行ない得る。しかし 、プロトプラスト融合がポリエチレングリコール（ＰＥＧ）を用いる以外の方法 でも実現可能であることは、当業者には認識されよう。例えば、本明細書に参考 として含まれるＫｏ ｏｐ等， “Ｅｌｅｃｔｒｉｃ Ｆｉｅｌｄ−Ｉｎｄｕｃｅｄ Ｆｕｓｉｏｎ ａｎｄ Ｃｅｌｌ Ｒｅｃｏｎｓｔｒｕｃｔｉｏｎ―ｗｉｔｈ Ｐｒｅｓｅｌ ｅｃｔｅｄ Ｓｉｎｇｌｅ Ｐｒｏｔｏｐｌａｓｔｓ ａｎｄ Ｓｕｂｐｒｏｔ ｏｐｌａｓｔｓ ｏｆ Ｈｉｇｈｅｒ Ｐｌａｎｔｓ，” Ｅｌｅｃｔｒｏｐｏ ｒａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｅｌｅｃｔｒｏｆｕｓｉｏｎ ｉｎ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏ ｌｏｙ ， Ｎｅｕｍａｎ等編， ｐｐ．３５５−３６５，１９８９に記載されて いる電場誘導融合技術を用いてもプロトプラストは融合させ得る。また、本明細 書に参考として含まれるＨａｕｐｔｍａｎｎ等， “Ｃａｒｒｏｔ × Ｔｏｂ ａｃｃｏ Ｓｏｍａｔｉｃ Ｃｅｌｌ Ｈｙｂｒｉｄｓ Ｓｅｌｅｃｔｅｄ ｂ ｙ Ａｍｉｎｏ Ａｃｉｄ Ａｎａｌｏｇ Ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ Ｃｏｍｐｌ ｅｍｅｎｔａｔｉｏｎ，” ６ｔｈ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｐｒｏｔｏ ｐｌａｓｔ Ｓｙｍｐｏｓｉｕｍ， Ｂａｓｅｌ， Ａｕｇｕｓｔ １２−１６ ， １９８３に開示されているように、デキストラン及びポリビニルアルコール を用いてプロトプラスト融合を実現することもできる。 プロトプラスト融合をポリエチレングリコールを用いて 実現するべきである場合には、次に述べる操作を用い得る。 プロトプラスト融合は後述する洗浄液（Ｗ５′）中で好ましく実現し、前記洗 浄液は浸透圧調節物質（ｏｓｍｏｔｉｃｕｍ）、例えばマンニトール、ソルビト ール、グルコースまたはスクロースといった炭水化物と、カリウム塩及びカルシ ウム塩とを含有する。ｐＨは５．２〜１０であり得、好ましくは５．７である。 起源の異なるプロトプラスト同士を混合して濃縮し、最終濃度を好ましくは１０⁵ 〜１０⁸原形質／ｍｌとする。 得られたプロトプラスト混合物は少なくとも１０分間静置し、それによってプ ロトプラストをペトリ皿の底に沈澱させるべきである。その後、混合物を、好ま しくは１５００〜６０００の分子量を有するポリエチレングリコール（ＰＥＧ） で処理する。通常、１８．８重量％のＰＥＧを含有する水溶液（ＰＦＳ）をＷ５ ′対ＰＦＳの体積比１０：１から１：１で用いると良好な結果が得られる。ＰＦ Ｓに浸透圧調節物質及びカルシウム塩を含有させると都合が好い。プロトプラス トは細胞の脆弱さに応じて１５〜２０分間ＰＦＳ中に存在させる。 融合は、浸透圧調節物質（例えばグルコース）をＰＦＳ より低いオスモル濃度をもたらす濃度で含有し、かつカリウム塩、ナトリウム塩 及びカルシウム塩を含有する洗浄液（Ｗ５′）でプロトプラストを、例えば３回 洗浄することによって実現させる。融合操作は１６〜２０℃、好ましくは１８℃ の温度で行なう。融合混合物中のＰＥＧの濃度は、連続する各洗浄ステップ毎に 漸次低下する（例えば実施例６参照）。各洗浄ステップには少なくとも５分を掛 け、それによってプロトプラストを媒質のより低いオスモル濃度へとゆっくり調 節し、細胞の破裂を回避するべきである。洗浄ステップ完了後、融合したプロト プラストは１０⁵〜１０⁶プロトプラスト／ｍｌとなるべきである。得られた融合 生成物は、融合しなかった親プロトプラストの存在下に、または培養物からの光 学的選択後に再生させ得る。前記光学的選択は細胞の顕微操作により、例えば本 明細書に参考として含まれるＰａｔｎａｉｋ等， Ｐｌａｎｔ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｌｅｔｔｅｒｓ ２４， ｐ．１０５，１９８２に開示された、植物ヘテロカ リオンの入手による単離及び同定のための操作に従って行ない得る。 上記選択操作を用いる場合は親プロトプラストを、例えばフルオレセインジア セテートなどの螢光性色素で染色す る。フルオレセインジアセテートを胚軸由来のプロトプラストに対して用いると 、前記プロトプラストはＵＶ光下に黄色に染まる。葉由来のプロトプラストは葉 緑体を含有し、この葉緑体はＵＶ光下に赤色の自己螢光を示す。 得られた融合生成物を、十分にバランスの取れたプロトプラスト成長用栄養素 補充物質を含有する適当な培地中で培養する。培地には微量元素及び多量元素、 ビタミン、アミノ酸、並びに少量の炭水化物、例えばグルコースなどの様々な糖 を含有させる。グルコースは、炭素源として機能すると共に浸透圧調節物質とし ても機能する。培地には、細胞分裂及び苗条再生を調節し得る植物ホルモン（オ ーキシン及びサイトカイニン）も含有させる。適当なオーキシンの例に、ナフチ ル酢酸（ＮＡＡ）、２，４−ジクロロフェノキシ酢酸（２，４−Ｄ）及びインド ール酢酸（ＩＡＡ）が含まれる。適当なサイトカイニンの例にはベンジルアミノ プリン（ＢＡＰ）、ゼアチン（Ｚｅａ）及びジベレリン酸（ＧＡ３）が含まれる 。通常、ＮＡＡ及び２，４−ＤをＢＡＰと組み合わせて用いて細胞分裂を開始さ せる。その際、オーキシン／サイトカイニンの比は大きくなければならず、例え ば１を上回らなければならない。融合処理 の２、３日後、培地のほとんどをアガロース含有培地（ＢＰ）と交換し、この培 地で融合生成物及び親プロトプラストを被覆する。 １４日後、オーキシンを全く又は実質的に殆ど含まない他の培養基を加えてオ ーキシンの濃度を稀釈する。一般に３〜４週間後に星形微小カルスが形成される 。次いで、そのような微小カルスを再分化培地に移植し、好ましくは中間再分化 培地中で培養基と再分化培地の組成及び物性の違いに適合させてから苗条形成を 開始する。苗条形成には、再分化培地中のオーキシン／サイトカイニン比を低く （例えば、１：１０以下）するのが良い。一般に、苗条の再分化には、オーキシ ンＮＡＡとサイトカイニンＺｅａ及びＢＡＰを組み合わせて用いるのが好ましい 。再分化培地ＢＲ及びＫ３は、培養基に比べ比較的栄養分の乏しい培地である。 再分化培地は、ビタミン含有量や炭素源含有量が低く、炭素源としてはスクロー スとキシロースのみで、アミノ酸を含まない。さらに再分化培地は培養基より高 い粘性を有する。再分化培地Ｂｒは固体培地であり、生長調節物質２，４−Ｄ、 ＮＡＡ及びＢＡＰを含んでおり、オーキシンとサイトカイニンの比率は１未満で ある。培地Ｋ３は、Ｚｅａ、 ＧＡ３の他に、苗条の生育を促進する硝酸銀をさらに含む。 Ｂｒ培地で２週間再分化させた後、直径約３ｍｍのカルスを低濃度のスクロー スを含むＫ３再分化培地に移植する。この段階で、苗条は２〜３週間以内に生育 する。次いで、生育した苗条を、ホルモンを加えないＢ５のような塩基性培地で 発根させる。次いで、得られた小植物の核ＤＮＡ及びミトコンドリアＤＮＡを、 それ自体公知の方法、例えば、適当な制限エンドヌクレアーゼを用いて、得られ た融合細胞のＤＮＡ消化パターンを親系のＤＮＡ消化パターンと比較することで 同定することができる。 本発明で出発物質として用いたＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａのプロト プラスト及びＰｏｌｉｍａ ＣＭＳ Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物 の不活化プロトプラストは、それ自体公知の方法を用いて対応植物細胞から得る ことができる。細胞壁を取り除いた細胞、即ちプロトプラストは、Ｇｌｉｍｅｌ ｉｕｓ，Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉａ Ｐｌａｎｔａｒｕｍ ６１（１９８４）３８ （本明細書に参照として組み込むものとする）により開示された胚軸プロトプラ ストの再分化法に従って、緑色植物材料（例えば葉材料）や、白色植物材料（例 えばもやし）から 得られる。融合細胞を光学的に選択する場合、出発物質は緑色植物から選択する のが便利であるが、白色植物材料から選択する場合には、染色して選択を容易に するのが有利である。Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃ ｅａ植物の不活化プロトプラストは、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物細胞又はプロトプラストに対応するそれ自体公知の方法 （例えば照射）により得られる。 照射による核の不活化は、ガンマ線、紫外線又はＸ線を用いて実施し得る。Ｘ 線源を用いて照射を行う場合、核の不活化は一般に、例えば１０キロラドの線量 を３〜２０分間照射することに達成される。適切なＸ線線量は、例えば、プロト プラスト集団を１００％死滅させる最少レベルのＸ線照射量を測定して決定し得 る。死滅細胞の百分率は、培養中で１０〜２０日後に形成されるコロニーの数を 計数して予測する。 上記のように、融合後、同種細胞を再分化させて、ＣＭＳ細胞質を含むＢｒａ ｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物体を作出する。その後で、これらの植物体を 他のＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物体と交雑することができ る。 本発明のＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物体は、ｉｎ ｖｉｖｏ及び ／又は交雑技法により、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳを有する他のＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅ変種を作出するための出発物質として用い得るものと理解された い。そのようなｉｎ ｖｉｖｏ及び交雑技法は熟練した育種業者には公知である 。 用いた溶液には以下が含まれる： 本発明を以下の非限定的実施例により例示する。 実施例１：種子の不稔化及び発芽 Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳを有するブロッコリ、Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃ ｅａ（以下、Ｂ．ｏｌｅｒａｃｅａ、９０４００５−１と称する）の種子を７０ ％アルコールに約１０秒間浸漬し、１．５％次亜塩素酸ナトリウム溶液中２０℃ で１０分間の不稔化を２回行う。その後、滅菌蒸留水による十分なリンスを必要 とする。３％スクロースを含みホルモンを含まないＭＳ栄養培地（表１参照）に 種子を植え込む。不稔性緑色植物を得るために、２５℃（日中） 及び２０℃（夜間）の温度で光（８，０００ルクス）下にガラスジャー中１６時 間の光周期で種子を生育させる。不稔性苗条をプラスチック容器中同一条件下に 副次培養する。プロトプラストを単離するための白色組織（例えば胚軸）を得る ために、暗所でペトリ皿中２５℃で種子を生育させる。 実施例１ａ：９０４００５−１を得る交雑 ９０４００５−１は、登録番号９０４００５の植物第１号から収穫した種子で ある。９０４００５は、ＣＭＳ Ｐｏｌｉｍａ ８９２７３１−２と正常な稔性 ブロッコリの戻し交雑である。８９２７３１−２は、登録番号８９２７３１の植 物選択第２号から収穫した種子である。これは、ＣＭＳ Ｐｏｌｉｍａ ８９０ ９４−２と正常な稔性ブロッコリの戻し交雑である。 ８９０９４−２は、登録番号８９０９４の植物選択第２号から収穫した種子で ある。これは、ＣＭＳ Ｐｏｌｉｍａ ８９０２２と正常な稔性ブロッコリの戻 し交雑である。 ８９０２２−４は、登録番号８９０２２の植物選択第４号から収穫した種子で ある。 実施例２ 実施例１と類似の手順で、Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ、栽培品種Ｄ Ｅ７０の種子を不稔化し、発芽させる。栽培品種ＤＥ７０は親系として用いられ る完全稔性の近交系カリフラワーである。しかし、プロトプラストの融合には任 意の典型的なＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物を用いてよい。 実施例３：プロトプラストの単離 実施例１の植物材料の４週齢の苗条の葉を小片に切断し、酵素溶液中２５℃で １６時間４０ｒｐｍの回転振とう盤上でインキュベートする。懸濁液をナイロン メッシュ（４０μｍ）を通して濾過し、２／３の容量のＣＰＷ １６Ｓ溶液で洗 浄し、８１７ｒｐｍで５分間遠心する。それによって、無傷のプロトプラストが 浮上する。プロトプラストを回収し、Ｗ５溶液でリンスし、７０８ｒｐｍで５分 間遠心する。融合実験に用いる前に、プロトプラストをＷ５溶液１ｍｌ当たり１ ×１０⁵プロトプラストの密度に稀釈する。 実施例４ 実施例２の植物材料の６〜８日齢の胚軸を、酵素処理中に３μｇ／ｍｌのフル オレセインジアセテートを添加することを除いて、実施例３の方法により単離す る。手作業に よる選別及び融合頻度を測定するための染色したプロトプラストを得る。 実施例５：プロトプラストの照射 新たに単離された実施例３のプロトプラストを６ｃｍペトリ皿中のＷ５溶液（ ２〜３ｍｌ）中で培養する。Ｘ線源（Ｂａｌｔｏｇｒａｐｈ ＣＥ１００）を用 い、３５００Ｇｙの線量で２０分間プロトプラストを照射する。照射後、不活化 プロトプラストをＷ５溶液で洗浄し、７０８ｒｐｍで５分間遠心する。融合実験 に用いる前に、プロトプラストをＷ５溶液１ｍｌ中１×１０⁵プロトプラストの 密度に稀釈する。 実施例６：融合手順 実施例４のプロトプラストと実施例５のプロトプラストを、Ｗ５溶液１ｍｌ当 たり１×１０⁵プロトプラストの最終濃度で１：３の比率で混合する。コーティ ングを施していない６ｃｍペトリ皿に該混合物を３滴（各１００μｌ）たらし、 プロトプラストを５〜１０分間定着させる。３滴の中心にＰＦＳ溶液３００μｌ を加えて１５分間凝集を誘導する。その後、混合物にＷ５溶液３００μｌを加え 、さらに１０分後にもう一度、さらにその５分後にもう一度該 溶液を添加する。Ｗ５培地を２倍濃縮８Ｐ溶液に取り換え、プロトプラストを２ ５℃で１〜３日間暗所で培養する。 実施例７ 実施例６の全融合混合物を２５℃で１〜３日間暗所で培養する。細胞を５４８ ｒｐｍで５分間遠心して回収し、２倍濃縮８Ｐ培地１ｍｌ当たり１×１０⁵プロ トプラストの密度に稀釈する。等容量のハンドウォームＳＰＡ培地を加え、コー ティングを施したペトリ皿中の５滴（各１００μｌ）中で細胞を培養する。さら に、支持細胞を含む５滴（各１００μｌ）を加える。２週間後、支持細胞を含む 液滴を除去し、ペトリ皿１個当たり２ｍｌのＭＡＣ培地を加える。２週間後、液 滴を固体Ｂｒ培地上に分散させる。２〜３週間後、個々のコロニーを固体Ｋ３培 地を含むペトリ皿に移植する。微小カルスを２５℃で弱光（２５００ルクス）下 に１８時間の光周期で培養する。 実施例８：融合細胞の選択及び増殖 複蛍光の存在により視覚的に認識し得る融合細胞をマイクロマニピュレーター を用いて取り出す。雑種細胞を１００μｌのアガロース液滴（１％ＳｅａＰｌａ ｑｕｅ）中１ｍｌ当たり２，０００〜５０，０００プロトプラストの密 度で培養する。支持細胞を含む液体保護培養系（Ｃｏｓｔａｒ−Ｔｒａｎｓｗｅ ｌｌ ｃｏｌ）中に液滴を移し、暗所にて２５℃でインキュベートする。２週間 後、液滴を固体Ｂｒ培地上に分散させる。微小カルスを固体Ｋ３培地に移植し、 ２５℃で弱光（２５００ルクス）下に１６時間の光周期でインキュベートする。 実施例９：植物体の再分化 直径２〜５ｍｍのサイズに生育した実施例７及び８のカルスを新鮮なＫ３培地 に移植し、２５℃で通常光（８０００ルクス）下に１６時間の光周期で培養する 。小さな苗条を１％スクロースを含みホルモンを含まないＢ５培地に移植し、同 培地で発根させる。 実施例１０：融合細胞の分子分析 （ａ）核ＤＮＡの組成 特異的ＤＮＡプローブを用い、融合細胞の核ＤＮＡの組成の特性決定を行う。 カリフラワーの核ＤＮＡ由来の８２０ｋｂｐのＢｇｌ １フラグメントを含むク ローン、プローブＥＳを、ＣＭＳ形質の受容体として用いられるＢｒａｓｓｉｃ ａ ｏｌｅｒａｃｅａ育種系、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳドナーの核ＤＮＡのエンド ヌクレアーゼ消化パターン の種々のバンドとハイブリダイズさせる（図１参照）。 （ｂ）ミトコンドリアＤＮＡの組成 カリフラワーのミトコンドリアＤＮＡ由来の１９５０ｂｐのＢｇｌ IIフラグ メントを含むクローン、ＣＭＳ Ｂｒａｓ ４ ＤＮＡを用いて特性決定を行う 。このクローンは、ＣＭＳ ＰｏｌｉｍａミトコンドリアＤＮＡの４ｋｂｐのバ ンドと、受容体育種系、例えばＤＥ７０由来のミトコンドリアＤＮＡの６ｋｂｐ のバンドを生成させた（図２参照）。 プライマー９４ＲＳＯ１及び９４ＲＳＯ２を用い、５００ｂｐのＤＮＡフラグ メントのＰＣＲ増幅により、特性決定も行う。前プライマー９４ＲＳＯ１の配列 は、５′−ＧＡＡ ＣＣＡ ＡＣＴ ＧＣＴ ＴＴＣ ＡＣＡ ＣＣＧ−３′で あり、逆プライマー９４ＲＳＯ２の配列は、５′−ＣＴＴ ＧＧＣ ＴＣＴ Ｃ ＴＧ ＣＧＡ ＡＴＧ ＴＣ−３′である。この５００ｂｐのフラグメントは、 ＣＭＳ ＰｏｌｉｍａミトコンドリアＤＮＡからは増幅するが、受容体系、例え ばＤＥ７０のミトコンドリアＤＮＡからは増幅しない。 実施例１１：胚の救済 一般に、胚は、交雑を行ってから１８〜１９日後に救済する。胚の救済には長 角果が必要である。要求される長角果は、まだ硬化していない種皮を有する出来 るだけ大きな胚を有するものである。 胚を取り出す前に、先ず、長角果を消毒しなければならない。長角果は、塩化 ナトリウム又は塩化カリウムのような１０％塩化物溶液に約２０分間浸漬して消 毒する。長角果を滅菌水中で２分、５分及び１０分間経過時点で３回リンスする 。 長角果を縦に切り開き、生育した種子を取り出し、次いで顕微鏡下に種子から 胚を分離して、胚を救済する。 胚を種子から切り出した後、胚を適当な増殖培地で培養する。胚の成長を容易 にする任意の培地を用いてよい。例えば、３％スクロース、０．４ｍｇ／ｌのチ アミン及び０．２ｍｇ／ｌのＩＤＡを含むＭＳ培地を用い得る。 実施例１２： 高温及び低温下のＣＭＳ Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物体の不稔性の維持 Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を含む細胞質雄性不稔性植物体が高温及び低温下 に不稔性を維持するか否かを確認す るために、ブロッコリの栽培品種９１５０９５、９１５１０７、９１５１００及 び９１５１４４を赤キャベツ（ムラサキキャベツ）とハイブリダイズさせ、１０ ０％の雑種性が得られるかどうかを調べた。栽培品種９１５０９５〜９１５１４ ４を赤キャベツと交雑した。これらの栽培品種の種子を正常なブロッコリ保持系 統で受粉させ、播種した場合には、実生の胚軸の色と葉の色は正常な緑色である 。これらの栽培品種を赤キャベツと交雑した場合には、雑種種子は中間形質であ り、実生は強烈なアントシアン（紫色）を示すが、近交系は緑色のままである。 ９１５０９５、９１５１０７、９１５１００及び９１５１４４の種子を蒔き、各 栽培品種からの２０本の植物を赤キャベツ植物と一緒にプラスチックで被覆した 屋外ケージ中で生育させた。ケージ温度は夏季には日中１５〜４０℃の範囲で変 化した。ケージ温度を１週間に１回記録した。９１５０９５、９１５１０７、９ １５１００及び９１５１４４から収穫した種子試料を蒔くと、得られた植物は全 て雑種であったが、これは、自殖が存在せず且つＰｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質の 漏出がないことを示している。いずれの植物も決して部分雄性不稔性とはならな かった。 ９１５０９５、９１５１０７、９１５１００及び９１５１４４を得る交雑を以 下に示す。 １つの交雑から２つ以上の矢印が出ている場合（即ち、８８１３２×ｂｃ）、 各矢印は異なるブロッコリ遺伝子型との交雑を表す。 実施例１３：雌性稔性 以下のリストは、ＣＭＳ「Ｐｏｌｉｍａ」型とブロッコリを人工交雑して得ら れた種子収量のデータである。該データは、ＣＭＳ「Ｐｏｌｉｍａ」の種子収量 がブロッコリ近交系のものより高いことを示している。これは、自己複製される 同系交配が稔性に影響を与えるからである。ブロッコリＦ₁とＣＭＳ Ｏｇｕｒａ の交雑を比 較するとさらによくわかる。結果は、ＣＭＳ Ｐｏｌｉｍａの種子収量が他の２ つの交雑型と同範囲内にあることを示している。 ブロッコリの種子収量１９９１−１９９４（人工受粉） 主として特定且つ好ましい実施態様に関連して本発明を説明したが、本発明は 、その範囲を逸脱せずに改変を行い得るものと理解されたい。以下の請求の範囲 は、一般に本発明の原理に従い且つ本発明が属する分野における公知及び慣用的 な実践の範囲内に含まれるか又は当業者には自明であるような呈示された開示か ら得られるものを含む、本発明の全ての変形、使用又は適合を包含するものとす る。

【手続補正書】 【提出日】１９９８年３月１８日 【補正内容】請求の範囲 １． Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有し、高温及び低温において不稔性である 細胞質雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物を作出する方法であ って、 ａ）Ｂｒａｓｓｉｃａ ｃａｍｐｅｓｔｒｉｓ栽培品種８７１１０をＢｒａｓｓ ｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ栽培品種８７１０１と交雑し、この交雑から得られた 種子を回収するステップ、 ｂ）前記種子を再生させて、一倍体の染色体組を有するＢｒａｓｓｉｃａ ｎａ ｐｕｓ植物を得るステップ、 ｃ）ステップｂの植物の染色体を倍加させ、それによって二倍体の染色体組を有 するＢｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓ植物を得るステップ、 ｄ）Ｂｒａｓｓｉｃａ ｃａｍｐｅｓｔｒｉｓ栽培品種８７１１８をＢｒａｓｓ ｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ栽培品種８７１０１と交雑し、この交雑から得られた 種子を回収するステップ、 ｅ）前記種子を再生させて、一倍体の染色体組を有するＢｒａｓｓｉｃａ ｎａ ｐｕｓ植物を得るステップ、 ｆ）ステップｅの植物の染色体を倍加させ、それによって 二倍体の染色体組を有するＢｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓ植物を得るステップ、 ｇ）ステップｆの植物を、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有する雄性不稔性Ｂｒ ａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓ栽培品種８７１０２と交雑し、この交雑から得られた 種子を回収するステップ、 ｈ）前記植物を再生させて、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有するＢｒａｓｓｉ ｃａ ｎａｐｕｓ植物を得るステップ、 ｉ）ステップｃの植物をステップｈの植物と交雑し、この交雑から得られた種子 を回収するステップ、 ｊ）前記植物を再生させて、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有する雄性不稔性Ｂ ｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓ植物を得るステップ、 ｋ）ステップｊの植物をＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ栽培品種と交雑し 、この交雑から得られた種子を回収するステップ、 ｌ）前記種子から胚を取り出し、この胚を再生させて、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細 胞質を有する雄性不稔性Ｆ₁植物を得るステップ、 ｍ）ステップ１で得られた植物をＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ栽培品種 と戻し交雑し、この戻し交雑から得られた種子を回収するステップ、 ｎ）前記種子から胚を取り出し、この胚を再生させて、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細 胞質を有する雄性不稔性植物を得るステップ、 ｏ）ステップｎで得られた植物をＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ栽培品種 と戻し交雑し、この戻し交雑から得られた種子を回収するステップ、及び ｐ）前記種子を再生させて、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有する雄性不稔性Ｂ ｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物を得るステップ を含む方法。 ２． ステップｐで得られた植物をＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａと交雑 するステップ、前記交雑から得られた種子を回収するステップ、及び前記種子を 再生させて、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有する雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物を得るステップをも含むことを特徴とする請求項１に記 載の方法。 ３． 植物をカリフラワー、メキャベツ、キャベツ、ケー ル、コールラビー及びブロッコリーの中から選択することを特徴とする請求項１ に記載の方法。 ４． Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有し、高温及び低温において不稔性である 細胞質雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物を作出する方法であ って、 ａ）請求項１に記載の方法に従って作出した、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有 し、高温及び低温において不稔性に留まる雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅ ｒａｃｅａから得たプロトプラストを、商業的に望ましい特性を具えたＢｒａｓ ｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａから得たプロトプラストと融合させて同種細胞を作 製するステップ、及び ｂ）得られた同種細胞を再生させて、Ｐｏｌｉｍａ細胞質を有するＣＭＳ Ｂｒ ａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物を得るステップ を含む方法。 ５． Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａをカリフラワー、メキャベツ、キャ ベツ、ケール、コールラビー及びブロッコリーの中から選択することを特徴とす る請求項４に記載の方法。 ６． Ｐｏｌｉｍａ細胞質を有する再生ＣＭＳ Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａ ｃｅａを商業的に望ましい特徴を有するＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植 物と交雑するステップを更に含むことを特徴とする請求項４に記載の方法。 ７． 請求項１に記載の方法で作出した、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有しか つ高温及び低温において不稔性である細胞質雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌ ｅｒａｃｅａ植物。 ８． 請求項４に記載の方法で作出した、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有しか つ高温及び低温において不稔性である細胞質雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌ ｅｒａｃｅａ植物。 ９． 植物がカリフラワー、メキャベツ、キャベツ、ケール、コールラビー及び ブロッコリーの中から選択されることを特徴とする請求項７または８に記載の植 物。 １０． 雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａから得たプロトプラス トが不活性化された核を含むことを特徴とする請求項４に記載の方法。 １１． 請求項７に記載の植物に生じる種子。 １２． 請求項８に記載の植物に生じる種子。

Claims (1)

1. 【特許請求の範囲】 １． Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有し、高温及び低温において不稔性である 細胞質雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａｏｌｅｒａｃｅａ植物を作出する方法であっ て、 ａ）Ｂｒａｓｓｉｃａ ｃａｍｐｅｓｔｒｉｓ栽培品種８７１１０をＢｒａｓｓ ｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ栽培品種８７１０１と交雑し、この交雑から得られた 種子を回収するステップ、 ｂ）前記種子を再生させて、一倍体の染色体組を有するＢｒａｓｓｉｃａ ｎａ ｐｕｓ植物を得るステップ、 ｃ）ステップｂの植物の染色体を倍加させ、それによって二倍体の染色体組を有 するＢｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓ植物を得るステップ、 ｄ）Ｂｒａｓｓｉｃａ ｃａｍｐｅｓｔｒｉｓ栽培品種８７１１８をＢｒａｓｓ ｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ栽培品種８７１０１と交雑し、この交雑から得られた 種子を回収するステップ、 ｅ）前記種子を再生させて、一倍体の染色体組を有するＢｒａｓｓｉｃａ ｎａ ｐｕｓ植物を得るステップ、 ｆ）ステップｅの植物の染色体を倍加させ、それによって 二倍体の染色体組を有するＢｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓ植物を得るステップ、 ｇ）ステップｆの植物を、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有する雄性不稔性Ｂｒ ａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓ栽培品種８７１０２と交雑し、この交雑から得られた 種子を回収するステップ、 ｈ）前記植物を再生させて、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有するＢｒａｓｓｉ ｃａ ｎａｐｕｓ植物を得るステップ、 ｉ）ステップｃの植物をステップｈの植物と交雑し、この交雑から得られた種子 を回収するステップ、 ｊ）前記植物を再生させて、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有する雄性不稔性Ｂ ｒａｓｓｉｃａ ｎａｐｕｓ植物を得るステップ、 ｋ）ステップｊの植物をＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ栽培品種と交雑し 、この交雑から得られた種子を回収するステップ、 ｌ）前記種子から胚を取り出し、この胚を再生させて、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細 胞質を有する雄性不稔性Ｆ₁植物を得るステップ、 ｍ）ステップｌで得られた植物をＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ栽培品種 と戻し交雑し、この戻し交雑から得られた種子を回収するステップ、 ｎ）前記種子から胚を取り出し、この胚を再生させて、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細 胞質を有する雄性不稔性植物を得るステップ、 ｐ）ステップｎで得られた植物をＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ栽培品種 と戻し交雑し、この戻し交雑から得られた種子を回収するステップ、及び ｑ）前記種子を再生させて、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有する雄性不稔性Ｂ ｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物を得るステップ を含む方法。 ２． ステップｑで得られた植物をＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａと交雑 するステップ、前記交雑から得られた種子を回収するステップ、及び前記種子を 再生させて、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有する雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物を得るステップをも含むことを特徴とする請求項１に記 載の方法。 ３． 植物をカリフラワー、メキャベツ、キャベツ、ケー ル、コールラビー及びブロッコリーの中から選択することを特徴とする請求項１ に記載の方法。 ４． Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有し、高温及び低温において不稔性である 細胞質雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物を作出する方法であ って、 ａ）請求項１に記載の方法に従って作出した、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有 し、高温及び低温において不稔性に留まる雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅ ｒａｃｅａから得たプロトプラストを融合させるステップ、及び ｂ）得られた同種細胞を再生させて、Ｐｏｌｉｍａ細胞質を有するＣＭＳ Ｂｒ ａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物を得るステップ を含む方法。 ５． Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａをカリフラワー、メキャベツ、キャ ベツ、ケール、コールラビー及びブロッコリーの中から選択することを特徴とす る請求項４に記載の方法。 ６． Ｐｏｌｉｍａ細胞質を有する再生ＣＭＳ Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａ ｃｅａを商業的に望ましい特徴を有 するＢｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ植物と交雑するステップを更に含むこ とを特徴とする請求項４に記載の方法。 ７． 請求項１に記載の方法で作出した、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有しか つ高温及び低温において不稔性である細胞質雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌ ｅｒａｃｅａ植物。 ８． 請求項４に記載の方法で作出した、Ｐｏｌｉｍａ ＣＭＳ細胞質を有しか つ高温及び低温において不稔性である細胞質雄性不稔性Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌ ｅｒａｃｅａ植物。 ９． 植物がカリフラワー、メキャベツ、キャベツ、ケール、コールラビー及び ブロッコリーの中から選択されることを特徴とする請求項７または８に記載の植 物。