JPH09504962A - ストレプトコッカスピオジェンスから誘導される組換えｄｎアーゼｂ - Google Patents

Abstract

(57)【要約】ストレプトコッカス ピオジェンス ＤＮアーゼＢの遺伝子がクローンされ、クローンされたＤＮＡを含むベクターが大腸菌の形質転換に用いられており、ストレプトコ ッカス ピオジェンスを大量に生育する必要なしに大腸 菌中でＤＮアーゼが効率的かつ迅速に生産される。この酵素は、そのアミノ末端にリーダーペプチドとともに生産される。天然に産するストレプトコッカス ピオジェ ンスＤＮアーゼＢ酵素の改善された精製方法もまた提供されている。天然に産する酵素の精製又は組換えＤＮＡ技術のいずれかによって生産される前記ＤＮアーゼＢ酵素は、抗体の生産に用いることができ、またストレプト コッカス ピオジェンスによる感染のマーカーとして血清中での抗ＤＮアーゼＢ抗体の存在を検出するための免疫化学検定にも用いられる。

Description

【発明の詳細な説明】 ストレプトコッカス ピオジェンスから誘導される組換えＤＮアーゼＢ 発明の背景 本発明は、病原菌であるストレプトコッカス ピオジェンス（Streptococcus pyogenes 、化膿連鎖球菌ともいう）から誘導される組換えＤＮアーゼＢ、その製 造方法及びその使用方法に関する。 細菌性感染の予防と治療の進歩にも拘らず、多数の細菌性病原体が診療におい て依然として重大な問題になっているとともに、深刻な、更には致命的な疾病の 原因を依然として引き起こしている。これらの病原体の１つとして化膿連鎖球菌 がある。化膿連鎖球菌により引き起こされる疾病には、連鎖球菌性咽頭炎（「ス トレプスロート」）、猩紅熱、並びに、頭部腺炎、中耳炎、乳突炎、扁桃周囲膿 瘍、髄膜炎、肺炎、肺炎、産褥期敗血症、皮膚の蜂巣炎、膿痂疹、リンパ管炎、 丹毒、急性糸球体腎炎およびリウマチ熱をはじめとする化膿性合併症がある。 かかる感染症は、特に、正常な免疫系の機能が抑制されている患者において、 病院でしばしば起こっている（院内感染）。後者のカテゴリーには、エイズの患 者、癌の免疫抑制剤または移植拒絶を阻止する免疫抑制剤を服用している患者お よぴ循環器不全の患者、例えば、糖尿病患者が含まれる。 これらの疾病は、化膿性病変を根絶し、かつ、持続する化膿性病変に対する免 疫反応により引き起こされる後遺症を防止するために、迅速かつ有効な治療を必 要としているので、かかる感染症の疑いのある患者には、化膿連鎖球菌の存在を 迅速に診断することが重要となっている。化膿連鎖球菌の診断が行なわれないと 、治療が著しく複雑になるとともに、かかる治療が不可能にもなる。 化膿連鎖球菌の検出方法を現時点では利用することができるが、これらの方法 は、特に臨床応用において欠点を有している。 化膿連鎖球菌の検査方法の中には、化膿連鎖球菌により形成されるＤＮＡ分解 酵素であるＤＮアーゼＢに対する抗体の存在を検出する方法がある。この酵素は 、感染の際に化膿連鎖球菌から排泄されるが、急性リウマチ熱および急性糸球体 腎炎に罹りつつある患者の抗体の実質的な力価の形成を開始する。 これらのリウマチ熱および糸球体腎炎に関して、ストレプトリシンＯおよびヒ アルロニダーゼに対する抗体の検出をはじめとする血清に基づく他の診断試験を 利用することができるが、ＤＮアーゼＢはグループＡベータ溶血性連鎖球菌のぼ ぼ全ての菌株の中に見出され、かつ、ＤＮアーゼＢの高力価が皮膚および咽頭の 感染症患者において見受けられるので、ＤＮアーゼＢ抗体はある種の利点を提供 する。 抗ＤＮアーゼＢ抗体の検定に関して多数の商業的に利用することができる試験 が存在するが、これらの試験は欠点を有している。上記したように、改良された 試験が強く待望されている。 商業的に利用することができる試験は、３つのカテゴリー、即ち、（１）抗体 の能力を使用して酵素活性を阻害するＤＮアーゼＢ阻害に基づく検定、（２）種 々の化膿連鎖球薗抗原に対する抗体のラテックス凝集検定および（３）比濁阻害 検定に分けられる。ＥＬＩＳＡ検定もまた、研究室において使用されているが、 以下において説明するように、日常の臨床応用に適していることは証明されてい ない。 ＤＮアーゼＢ阻害検定は著しく緩慢であり、遂行するのに、多く の場合、約４−８時間を要する。かくして、抗ＤＮアーゼＢ抗体の確認がこのよ うに迅速に必要とされる場合において、化膿連鎖球菌の存在が確認されるときに は、処理は可及的速やかに開始することができるが、酵素阻害検定は特に有用で はない。 ラテックス凝集検定は、５つの化膿連鎖球菌抗原に対する抗体を検出するよう に構成されている。しかしながら、試験結果は、ラテックス凝集検定と特定の抗 ＤＮアーゼ試験との整合性が乏しいことを示している。ある研究、即ち、アブラ イド・マイクロバイオロジィ、第２１巻、第２５７−２５９頁に掲載のジーシー ・クラインおよびダブリュエル・ジョーンズの「ストレプトザイム試験と抗スト レプトリシンＯ、抗デオキシリボヌクレアーゼＢおよび抗ヒアルロニダーゼ試験 との比較」と題する論文においては、ラテックス凝集検定において陰性であると 試験された患者８０人のうち１２人は、抗ＤＮアーゼＢ抗体に関して、実際には 陽性であった。誤った陰性結果がこのように高レベルであることは、この試験が 臨床用途には望ましくないことを示している。 比濁阻害検定は、ラテックス粒子の抗体と競合する抗ＤＮアーゼＢ抗体を含む 血清の存在下で所定量の組成ＤＮアーゼＢをもって抗ＤＮアーゼＢ抗体を被覆し たラテックス粒子の凝集の阻害に基づくものである。この検定は、米国特許第５ ，０５５，３９５号に記載されており、本明細書においては、この米国特許を引 用してその記載に代える。この検定は比較的感度が鈍い。従って、この検定は、 化膿連鎖球菌感染の初期の段階に使用するのには適しておらず、抗ＤＮアーゼＢ 抗体の正確な検出が最も重要であるのは、まさにこの時期なのである。更に、比 濁阻害検定において使用される試薬は製 造するのが困難である。 抗ＤＮアーゼＢ抗体に関するＥＬＩＳＡベースの検定が、ジャーナル・オプ・ ラボラトリー・アンド・クリニカル・メディシン、第９５巻、第２５８−２６５ 頁（１９８０年）に掲載のエムエイ・ガーバー等の「連鎖球菌ＤＮアーゼＢに対 するヒト血清における抗体の酵素結合免疫ソルベント検定」と題する論文におい て報告されている。これらの検定は、研究目的としては有効であることが立証さ れているが、商業上の用途、特に、臨床用途に規模を拡大することは実用的では ない。これは、かかる規模の拡大は、上記したように、重要な病原体である化膿 連鎖球菌のＤＮアーゼＢ酵素の生成と精製を必要とするからである。この病原性 細菌を、ＥＬＩＳＡ検定の商業化にとって十分な量の酵素を得るのに必要な量を 生育させるのに、著しく費用のかかる抑制方法が必要となるだけでなく、化膿連 鎖球菌の生育に必要な培地が著しく複雑でかつ高価となっている。これらの因子 が、抗ＤＮアーゼＢ抗体の商業規模のＥＬＩＳＡ検定の開発の重要な妨げとなっ ている。 従って、抗ＤＮアーゼＢ抗体の改良された、迅速かつ特定の検定方法が待望さ れている。かかる検定は、医院において医師が使用することができるとともに、 装置の必要性を最小限に抑えるのが好ましい。これは、ストレップスロートまた は猩紅熱のような病気を有する患者は多くの場合、入院する前にかかりつけの医 師に見てもらい、その時点でなされる化膿連鎖球菌感染の正確な診断が、患者が 入院したときにのみ行なわれるその後の診断にとって好ましいものとなるからで ある。 かかる改良された検定の発展は、多量のＤＮアーゼＢ酵素を入手 することができるかどうかによる。従って、複雑で、取扱いが面倒で、しかも高 価な阻害手段を必要とすることなく、商業規模の量の酵素がつくれるように規模 を大きくすることができる処置を使用して、化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢ酵素を製 造する方法も待望されている。概要 本発明者は、大腸菌における化膿連鎖球菌ＤアーゼＢの遣伝子をクローニング し、発現させることにより、化膿連鎖球菌を生育させることなく、ＤＮアーゼＢ 酵素を好都合にかつ効率的に生産することができた。 このクローニングにより、（ｉ）リーダーペプチドから誘導され、自然のＤＮ アーゼＢ酵素にはないアルギニン（Ｒ）残余をアミノ末端に有する、図４に示し 、以下において説明する化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢ酵素のアミノ酸シーケンスと 、（ｉｉ）リーダーペプチドの少なくとも１つの残余を任意に含む化膿連鎖球菌 ＤＮアーゼＢ酵素の機能同等物をエンコードするシーケンスとよりなる群から選 ばれるアミノ酸シーケンスをエンコードする実質上精製されたＤＮＡが得られる 。このＤＮＡは、図４の化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢシーケンスをエンコードする ＤＮＡ、化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢ酵素の機能同等物をエンコードするＤＮＡお よびリーダーペプチドをエンコードするＤＮＡ以外のＤＮＡを実質上含まない。 好ましくは、ＤＮＡは更に、化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢ酵素のアミノ末端に融 合されたリーダーペプチドをコード化するＤＮＡシーケンスを含む。 最も好ましくは、ＤＮＡは、化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢ酵素のア ミノ酸シーケンス全体とリーダーペプチドをコード化するＤＮＡを含む、図３に 示すシーケンスを有するＤＮＡである。 本発明の別の観点は、適宜の細菌宿主と適合する少なくとも１つのコントロー ルシーケンスに作動連鎖された上記ＤＮＡシーケンスを含む化膿連鎖球菌ＤＮア ーゼＢ酵素の発現ベクターにある。好ましくは、発現ベクターは、プラスミドベ クターである。多くの場合、化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢ酵素をエンコードするＤ ＮＡは、バクテリオファーゼλからの少なくとも１つのシーケンスに連鎖される 。 本発明の別の観点は、形質転換された細菌宿主細胞が、検出可能な量が発現ベ クターに組み込まれているＤＮＡによりエンコードされた化膿連鎖球菌ＤＮアー ゼＢを発現することができるように、本発明に係る発現ベクターで形質転換され 、トランスフェクションされあるいは感染された細菌宿主細胞にある。発現され た化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢは、酵素を形成する細胞全体により排泄可能であり あるいはかかる細胞によっては排泄不可能であり、しかも可溶性または不溶性形 態とすることができる。 本発明の別の観点は、図４のアミノ酸シーケンスを有し、またはかかるシーケ ンスに実質上類似するアミノ酸シーケンスを有する蛋白質からなる実質上精製さ れた化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢ酵素にある。 本発明の更に別の観点は、 （１）本発明に係る発現ベクターで形質転換された細菌宿主細胞を培養する工 程と、 （２）培養された細菌宿主細胞を使用してＤＮアーゼ酵素を発現 させる工程と、 （３）培養された細菌宿主細胞から酵素を精製する工程とを備えた、実質上精 製された連鎖球菌ＤＮアーゼＢ酵素をつくる方法にある。 本発明の別の観点は、アミノ末端がリーダーペプチドで融合された連鎖球菌Ｄ ＮアーゼＢ酵素にあり、このリーグーペブチドはシーケンスＭ−Ｎ−Ｌ−Ｌ−Ｇ −Ｓ−Ｒ−Ｒ−Ｖ−Ｆ−Ｓ−Ｋ−Ｋ−Ｃ−Ｒ−Ｌ−Ｖ−Ｋ−Ｆ−Ｓ−Ｍ−Ｖ−Ａ −Ｌ−Ｖ−Ｓ−Ａ−Ｔ−Ｍ−Ａ−Ｖ−Ｔ−Ｔ−Ｖ−Ｔ−Ｌ−Ｅ−Ｎ−Ｔ−Ａ−Ｌ −Ａ−Ｒ（配列番号：１）を有する。 本発明の更に別の観点は、図４に示すアミノ酸シーケンスを有する蛋白質の突 然変異体にある。この突然変異体においては、以下の突然変異、即ち、 （１）図４のシーケンスからの１つ以上のアミノ酸の削除、 （２）１つ以上の自然発生Ｌアミノ酸の図４のシーケンスへの挿入および （３）別の自然発生Ｌアミノ酸による図４のアミノ酸の少なくとも１つの置換 の少なくとも１つが生ずる。得られた突然変異体は、増減したＤＮアーゼＢ活性 または他の変換特性を有する。１つの好ましい変形例においでは、突然変異体は 、自然の連鎖球菌ＤＮアーゼＢ酵素のこう抗原反応性を実質上保持している。 本発明の更に別の観点は、自然の連鎖球菌ＤＮアーゼＢ遺伝子または蛋白質の 全部または一部の、別の遺伝子または蛋白質に対する翻訳または転写融合にあり 、得られた遺伝子構造は、幾つかの変換 特性を有する。これらの特性は、（１）高レベルのＲＮＡ発現、（２）高レベル の蛋白質発現、（３）第２の機能酵素、（４）ＤＮアーゼＢのアフィニティ配位 子への融合、（５）高分子量の蛋白質の生成および（６）免疫反応性の増大を含 むことができる。 本発明の更に別の観点は、連鎖球菌ＤＮアーゼＢ酵素およびアミノ末端がリー ダーペプチドと融合された連鎖球薗ＤＮアーゼＢ酵素以外の蛋白質を実質上含ま ない実質上精製された自然の化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢ酵素にある。実質上精製 された酵素は、マイトジェン活性を実質上含まない。実質上精製された酵素は、 等電点（ｐＩ）により、２つのフラクション、即ち、フラクションＩおよびフラ クションＩＩに更に精製することができる。各フラクションは、他方のフラクシ ョンを実質上含まない製剤に精製することができる。 実質上精製された自然の化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢ酵素をつくる本発明の方法 は、 （１）ジメチルアミノエチルセルロースに対する吸収とジメチルアミノエチル セルロースからの溶出とにより第１の溶出液を得る工程と、 （２）第１の溶出液をフェニルアガロースでクラマトグラフ処理することによ り第２の溶出液を得る工程と、 （３）第２の溶出液をヘバリンアガロースでクラマトグラフ処理することによ り第３の溶出液を得る工程と、 （４）第３の溶出液を等電点クロマトグラフ処理して実質上精製されたＤＮア ーゼＢ酵素を精製する工程とを含むことができる。好ましくは、この方法は更に 、実質上精製されたＤＮアーゼＢを逆相 高圧液体クロマトグラフィにより精製する工程を含む。フラクションＩおよびＩ Ｉの分離は、２つのフラクションの酵素のｐＩが異なる結果として、等電点クロ マトグラフ処理工程において行なわれる。 本発明の更に別の観点は、リーダーシーケンスの部分を含まない、化膿連鎖球 菌ＤＮアーゼＢ酵素のアミノ末端２３アミノ酸をコード化するＤＮＡシーケンス の少なくとも約１７のヌクレオチドをもってハイブリッド形成を行なう、不整合 が約３０％以下である一重鎖核酸ブローブにある。 本発明の別の観点は、ポリメラーゼ鎖反応（ＰＣＲ）、リガーゼ鎖反応（ＬＣ Ｒ）、ＲＣＲその他のＤＮＡ増幅反応のような増幅反応のプライマー剤として作 用するのに十分なサイズと特異性とを有するＤＮＡシーケンスの部分を含む。化 膿連鎖球菌ＢのＤＮＡシーケンスの同じ部分もまた、ＤＮＡ増幅なしに相同シー ケンスを検出する特定のプローブとして機能することができる。 実質上精製された化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢは、本技術分野において周知の技 術によりＤＮアーゼを特異的に結合する抗体を発生させるのに使用することがで きる。抗体は、ポリクローンまたはモノクローンとすることができる。 本発明の別の観点は、試験サンプルにおける抗化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢ抗体 を検出しおよび／または定量する方法にある。この方法は、 （１）抗化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢ抗体を含む疑いのある試験サンプルを提供 する工程と、 （２）試験サンプルにおいて抗ＤＮアーゼＢ抗体による酵素活性 の阻害がない場合に、検出することができるレベルの酵素活性を形成するのに十 分な量の本発明に係る化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢ酵素を試験サンプルに添加する 工程と、 （３）酵素検定を行なうことにより試験サンプル中のＤＮアーゼＢ酵素の活性 レベルを測定することにより、試験サンプル中の抗化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢ抗 体を検出しおよび／または測定する工程とを備える。 抗ＤＮアーゼＢ抗体を検出する別の方法は、 （１）本発明に係る化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢ酵素ラテックス粒子のような固 体支持体に結合させる工程と、 （２）抗化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢ抗体を含む疑いのある試験サンプルを、固 体支持体に結合された化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢ酵素と反応させて、抗体を酵素 、従って、固体支持体と結合させる工程と、 （３）固体支持体に結合された抗体を検出して試験サンプル中の抗体を検出お よび／または測定する工程とを含む。 この方怯は、比濁（nephelometric）、比濁（turbidimetric）、凝集またはＥ ＬＩＳＡ定量方法に使用することができる。 化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢ抗体を検出する別の方法は、 （１）ＤＮアーゼＢの緩衝溶液を調製する工程と、（２）緩衝ＤＮアーゼＢ溶 液を、抗化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢ抗体を含む疑いのある試験サンプルと反応さ せる工程と、（３）溶液における光吸収および／または光散乱の変化を観察しお よび／または測定することによりＤＮアーゼＢと抗ＤＮアーゼＢ抗体との反応を 検出する工程とを備える。 抗ＤＮアーゼＢ抗体を検出する別の方法は、毛管電気泳動である。 クローニングされたシーケンスは化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢ遺伝子と連係する プロモータを含むので、本発明の更に別の観点は、化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢ遺 伝子と最初に連係するプロモータを使用し、ＤＮアーゼＢ以外の蛋白質を発現さ せる方法にある。この方法は、 （１）化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢ遺伝子と最初に連係するプロモータを、化膿 連鎖球菌ＤＮアーゼＢ遺伝子から分離する工程と、 （２）プロモータを、ＤＮアーゼＢの遺伝子以外の化膿連鎖球菌蛋白質の構造 遺伝子と作動連鎖せる工程と、 （３）構造遺伝子によりエンコードされた蛋白質を発現させる工程とを備えて いる。 蛋白質は、化膿連鎖球菌または化膿連鎖球菌以外の原核生物において発現する ことができる。 本発明の別の観点は、転写用の出発座位と、細菌プロモータの対応する−１０ および−３５座位に相同する座位とを有する化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢと最初に 連係するプロモータシーケンスから誘導される実質上精製されたプロモータシー ケンスにある。 本発明の更に別の観点は、シーケンスＭ−Ｎ−Ｌ−Ｌ−Ｇ−Ｓ−Ｒ−Ｒ−Ｖ− Ｆ−Ｓ−Ｋ−Ｋ−Ｃ−Ｒ−Ｌ−Ｖ−Ｋ−Ｆ−Ｓ−Ｍ−Ｖ−Ａ−Ｌ−Ｖ−Ｓ−Ａ− Ｔ−Ｍ−Ａ−Ｖ−Ｔ−Ｔ−Ｖ−Ｔ−Ｌ−Ｅ−Ｎ−Ｔ−Ａ−Ｌ−Ａ−Ｒ（配列番号 ：１）を有するＤＮアーゼＢのリーダーペプチドを使用することにより、蛋白質 を原核生物において発現させることにある。この観点は、リーダーペプチドを含 む全体がクローニングされたＤＮアーゼＢのＤＮＡセグメントが大腸菌において 発現されると、蛋白質が培養基中に排泄されるという知得に基づくものである。 リーダーペプチドを使用して蛋白質を原核生物において発現させる方法は、 （１）蛋白質をコード化するＤＮＡを、蛋白質アミノ末端にあるリーダーブプ チドをコード化するＤＮＡに融合させて、融合されたＤＮＡが単一のフレームシ フトを有する組換え蛋白質をコード化する工程と、 （２）融合されたＤＮＡを原核生物に導入する工程と、 （３）回収可能な量の組換え蛋白質が生成されるように融合ＤＮＡを原核生物 において発現させる工程とを備えている。 原核生物は大腸菌、あるいはブドウ球菌、連鎖球菌またはストレプトマイシス 種のようなグラム陽性菌とすることができる。 本発明の別の観点は、化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢに特異の抗体の生成を促進す るのに十分な量の本発明に係る生成された化膿連鎖球菌ＤＮアーゼＢ酵素をほ乳 類に投与する工程を備えた化膿連鎖球菌の感染に対してほ乳類を免疫にする方法 にある。 本発明の更に別の観点は、嚢胞性繊維症の患者の嚢胞性繊維症を治療する方法 にある。この方法は、 （１）本発明に係る精製された酵素活性ＤＮアーゼＢ酵素のエアゾールを発生 させる工程と、 （２）嚢胞性繊維症の患者の肺流体粘度を低減させるのに十分な量のエアゾー ルを患者に投与する工程とを備えている。図面の簡単な説明 本発明のこれらのおよび他の特徴、観点および利点は、以下の説 明、添付請求の範囲および添付図面により一層良好に理解されるものであり、図 面において、 図１は、クローンにおけるキメラＤＮＡの領域とＤＮアーゼの遺伝子の位置を 示す、クローニングされたＤＮアーゼＢを含む領域の部分制限マップを示し、 図２は、図１のクローニングされたＤＮＡのサブクローンの位置と、サブクロ ーンにより得られるヌクレアーゼ活性の表示とを示し、 図３は、図１に示す部分制限マップを有するクローンのＤＮＡシーケンスを示 し、 図４は、アミノ末端が精製された組換えＤＮアーゼＢのシーケンス処理の結果 として測定される、図３のＤＮＡシーケンスから得られる組換えＤＮアーゼＢ蛋 白質のアミノ酸シーケンスを示し、 図５は、バクテリオファージλプロモータをＤＮアーゼＢシーケンスをコード 化するＤＮＡに融合させる構造のＤＮＡシーケンスを、構造を形成する際にＰＣ Ｒに使用されるプライマとともに示し、 図６は、ヒト抗ＤＮアーゼＢ血清による組換えＤＮアーゼＢの不活性を示すグ ラフ図であり、 図７は、クローニングされたＤＮＡの開放フレームシフトの上流側ＤＮＡシー ケンスと、大腸菌プロモータの対応するシーケンスを示し、 図８は、組換えＤＮアーゼＢ酵素を使用したヒト血清における抗ＤＮアーゼＢ 抗体の測定と連鎖球菌から得られる商業的に入手することができるＤＮアーゼＢ 酵素を使用した測定との対応を示す相関 曲線であり、 図９は、組換えＤＮアーゼＢと自然発生のＤＮアーゼＢの精製された製剤の双 方の、マイトジェン活性を実質上含まない状態を示すグラフ図であり、 図１０は、活性連鎖球菌ＤＮアーゼＢ（配列番号：１４）と同様に処理された 大腸菌のベクター発現ＤＮアーゼＢの成分である遺伝子構造のＤＮＡベクターを 、得られた蛋白質シーケンス（配列番号：１５）とともに示す。 発明の開示 ストレプトコッカス・ピオゲネス(Streptococcus pyogenes)のＤＮアーゼＢ酵 素について商業ベースで利用可能な生産源が求められているが、その要求を満た すために、我々は、Ｓ．ピオゲネスのゲノムＤＮＡからＤＮアーゼＢの遺伝子を 大腸菌［エッシェリキア・コリ(Escherichia coli.)］中でクローニングした。 これら２つの種の１８ＳリボソームＲＮＡ配列における相当量の分岐(divergenc s)に示されるように、Ｓ．ピオゲネスと大腸菌との間には進化上相当な差異があ り、また、形態学的なあるいはその他の分類学的特徴においても顕著な差異（大 腸菌はグラム陰性の桿菌であり、一方、Ｓ．ピオゲネスはグラム陽性の球菌であ る。）がある。かかる差異にも拘らず、我々は、大腸菌中でのクローン遺伝子の 発現および発現された蛋白質の活性を、発現された蛋白質の活性に依存する酵素 アッセイ法によってスクリーニングが実行し得る程度の高水準で達成した。 １．ストレプトコッカスＤＮアーゼＢ遺伝子の大腸菌中でのクローニングおよび 発現 ストレプトコッカス・ピオゲネスＤＮアーゼＢ遺伝子を大腸菌中でクローニン グし発現させるには以下の工程が必要である。これらの工程は、活性な酵素を発 現する無傷な(intact)遣伝子 のクローニングを実現するために注意深く最適化される。 (1)ゲノムＤＮＡの分離； (2)ＤＮＡクローニングのためのゲノムＤＮＡ断片の調整； (3)ＤＮＡ断片のクローニングベクターへの組み込み； (4)細菌への感染と選択；ならびに (5)発現およびスクリーニング； (6)クローンのキャラクタリゼイションとＤＮＡ配列決定 Ａ．ゲノムＤＮＡの分離 ゲノムＤＮＡは、好ましくは内在性ヌクレアーゼの活性など、ＤＮＡの劣化や 変性を招く要因を最小限にした条件下で、Ｓ．ピオゲネスから分離される。この ためには細胞の溶解および蛋白質の劣化が必要である。細胞を溶解するための好 ましい方法は、蛋白分解酵素であるアクロモペプチダーゼを加えて６５℃でイン キュベートした後、カオトロピック(chaotropic)な洗剤であるドデシル硫酸ナト リウム（ＳＤＳ）を加えてインキュベートする方法である。この方法は、ＥＤＴ Ａのようなキレート剤の存在下において行なうのが最も好ましい。あるいは、プ ロナーゼやプロテイナーゼＫのような他のプロテアーゼを細胞の溶解に用いるこ ともできる。この他の溶解方法も当分野において既知である（S.Horinouchi et al.,“A New lsolation Method of Plasmid Deoxyribonuclei c Acid From Staphylococcus aureus Using a Lytic Enzyme of Achromobacter lyticus"Agric.Biol.Chem.41:2487-2489(1977)）。 好ましくは、その後、ＤＮＡをフェノールまたはフェノール−クロロホルムを 用いて抽出し、抽出したＤＮＡをエタノールで沈殿させる。一連の抽出操作とし ては、等容量のフェノールで２回抽出した後、フェノール：クロロホルムの１： １混合物（実施例１）で１回抽出するのが適当である。抽出緩衝液にＥＤＴＡの ようなキレート剤を含有させ、ヌクレアーゼ活性を最小限に抑えるのが好ましい 。こうした手法は周知であり、例えば、D.M.Wallace"Large-and Small-Scale Ph enol Extractions,"Meth Enzymol.152:33-40(1987)およびD.M.Wallace"Precipit ation of Nucleic Acid,"Meth.Enzymol.152:41-48(1987)に記載されている。 適当なＤＮＡ源は、Ｓ．ピオゲネスATCC No.14289 株（C203S株、すなわち、C 203の非Ｍ含有変異種としても知られている。）である。しかし、ＤＮアーゼＢ 遺伝子を含むものであれば、Ｓ．ピオゲネスの他の株に対して同様の手法を用い てもよい。 好ましくは、分離されたＤＮＡは、抽出およびエタノールによる沈殿の後、Ｒ ＮアーゼＡを用いて処理し、その後、 塩化セシウム勾配中でさらに精製する。 Ｂ．クローニングのためのＤＮＡ断片の調製 分離されたゲノムＤＮＡは好ましくはクローニング前に断片化される。最も好 ましくは、ＤＮＡを注射針、最も好ましくは２５ゲージの注射針を約３００回通 して断片化を行なう。この操作により、平均サイズがおよそ６〜８ｋｂのＤＮＡ が得られる。 あるいは、上記方法ほど好ましいものではないが、Sau3AまたはMbOlのような 制限エンドヌクレアーゼによる部分的な分断化を用いてもよい。これは、例えば 、A-M.Frischauf,"Digestion of DNA:Size Fractionation,"Meth.Enzymal.152:1 83-189(1987)に記載されており、本明細書に参考のために組み入れられている。 Ｃ．ＤＮＡ断片のクローニングベクターへの組み込み 次の工程は、ＤＮＡ断片の適当なクローニングベクターへの組み込むである。 このようなクローニングベクターは、典型的には、Ｓ．ピオゲネスＤＮアーゼＢ をコードするＤＮＡ配列を、適当な細菌宿主細胞と適合可能な少なくとも 一つの制御配列にオペラチィブに結合したものである。このような制御配列には オペレーターおよびプロモーターが含まれる。適当なプロモーターには、ベクテ リオファージλpLプロモーター、ハイブリッドtrp-lacプロモーターおよびバク テリオファージＴ７プロモーターが含まれる。クローニングベクターは、好まし くは、発現のために適当なリボソーム結合サイトを含む。好ましいクローニング ベクターは、λ gtll(R.A.Young and R.W.Davis,Proc.Natl.Acad.Sci.USA80:119 4(1983))であり、これを用いれば、ベクター中に組み込まれクローンＤＮＡにオ ペラティブに結合したlacプロモーターにより発現を制御することができる。他 の適当なクローニングベクターも当分野においてよく知られており、例えば、J. Sambrook et al."Molecular Cloning.A.Laboratory Manual(第２版、Cold Sprin g Harbor Laboratory Press,Cold Spring Harbor,New York,1989)第３巻、第１ ７章"Expression of Cloned Genss in Escherichia coliに記載されており、本 明細書に参考のために組み込まれている。ファージλgtllを例にとると、ＤＮＡ はＥｃｏＲＩサイト中に挿入される。こうしたクローニングに対して、剪断され たＤＮＡは好ましく大腸菌リガーゼおよびＴ４ＤＮＡポリメラーゼを用いて修復 され、次いでＥｃｏＲＩリンカーが付加される。これらのＥｃｏＲＩで終端した 断片はＥｃｏＲＩ制限エンドヌクレアーゼにより分断(digsst)された後、λgtll の腕に結合することができる。制限エンドヌクレア ーゼは認識サイトのアデニン残基がメチラーゼによりメチル化されたＤＮＡを分 断しないため、好ましくは、上記の分断工程において、内部EcoRIサイトをEcoRI メチラーゼを用いてブロックする。 結合反応が完了した後、ファージ粒子組立てに必要な遺伝子に変異を有するバ クテリオファージλ変異種に感染した細菌から得られた抽出混合物を用いてＤＮ Ａをバクテリオファージλの頭部にin vitroでパッケージングする。パッケージ ング方法は当分野において周知であり、例えば、Sambrook et.al.の上掲書第１ 巻pp.2.95〜2.108に記載されている。 Ｄ．細菌への感染と選別 in vitroパッケージングにより組み立てられたファージ粒子は、感受性の大腸 菌を感染させるのに用いられる。特に好ましい宿主細菌細胞株はＹ１０９０（− ＰＭＣ９、すなわち、ｐＭＣ９プラスミドを欠いている。）である。適当な方法 は、0.01％のトルイジンブルーＯをカラーインジケーターとして含有するＤＮア ーゼ試験用寒天(Difco,Detroit,Michigan)のトップ寒天オーバーレイに重ねる。 これによりＤＮアーゼＢ遺伝子を発現したプラークを検出することができる。 本発明の系ではＤＮアーゼが予想外に高い水準で発現するため、クローン化さ れた遺伝子産物の検出に一般に用いられている免疫学的スクリーニングを用いず とも、得られる酵素の活性を直接検出することにより、陽性クローンの直接検出 が可能となる。 形質転換した宿主細胞を用い、実質的に純化されたストレプトコッカス・ピオ ゲネス ＤＮアーゼＢ酵素を製造する方法は、以下の工程からなる： (a)適当な発現ベクター（バクテリオファージλ誘導体でよい）により形質転 換された細菌宿主細胞を培養する工程； (b)培養された形質転換された細菌宿主細胞を用いてＤＮアーゼＢ酵素を発現 する工程； (C)培養された形質転換された細菌宿主細胞から酵素を精製する工程。 Ｅ．クローンのキャラクラリゼーシヨンおよびＤＮＡ配列決定 Ｓ．ピオゲネスＤＮアーゼＢ酵素遺伝子を含むλgtllファージ（２−６という 。）を単離し、ファージからＤＮＡ を調製する。このクローンを制限分析により分析した、結果を表１に示す。ヌク レアーゼ活性の存在を調べるためのEcoRIおよびEcoRI/SacIサブクローンの分析 結果は、ＤＮアーゼＢ酵素遺伝子の一部が内部，SacIからEcoRI領域内に位置す ることを示している。 クローンＤＮＡの配列決定は、例えば、サンガー(Sanger)によるジデオキシヌ クレオチド鎖終端法のような、標準的な手法を用いて行うことができる。配列分 析は、λgtllファージの内部において、ＤＮアーゼ活性領域と考えられる領域を 通して合成をプライミングすることにより開始することができる。このような配 列決定の結果を第３図に示す。 第３図にその配列を示したクローンＤＮＡは、冗長なオーブンリーディングフ レーム(ORF)を組み込んでいる。このORFの翻訳から導かれるアミノ酸配列を図３ および４に示す。アミノ酸４４(Gln)で開始するこのORFの５´−端部分のアミノ 酸配列は、天然に存在するＳ．ピオゲネスＤＮアーゼＢの精製物（セクションＩ Ｖ）から導かれるアミノ酸配列と合致する。 したがって、本発明は、以下のアミノ酸配列からなる群から遷択されるアミノ 酸配列をエンコードする実質的に精 製純化されたＤＮＡをも含む。 (i)図４に示すようなＳ．ピオゲネスＤＮアーゼＢ酵素、および (II)Ｓ．ピオゲネスＤＮアーゼＢ酵素の機能的等価体(fuctlonal equivalent) をエンコードする配列。 このようなＤＮＡは、Ｓ．ピオゲネスＤＮアーゼＢ酵素のアミノ末端に融合し たリーダーペプチドを除けば、図４のアミノ酸配列またはＳ．ピオゲネスＤＮア ーゼＢ酵素の機能的等価体をエンコードしないＤＮＡは、実質的に含まない。以 下に述べるように、オープンリーディングフレームから生産される翻訳生成物は リーダーペプチドを含む。 この文脈において、「機能的等価体」という用語は、Ｓ．ピオゲネスＤＮアー ゼＢ酵素に対して一般的に用いられている検定法により検出されるＤＮアーゼ活 性を有し、実質的に精製純化されたＤＮアーゼＢに対する抗体と検出可能な程度 まで相互反応する蛋白質をいう。「機能的等価体」という用語は、図４の配列と 一つまたはそれ以上のアミノ酸が保存的に置換された配列を有する蛋白質を含む （但し、それに限定されるものではない。）。このようなアミノ酸の保存的置換 には、イソロイシン(I)、バリン(V)、およびロイシン(L)を互いに他のいずかの アミノ酸と置換すること；アスパラギン酸(D)をグルタミン酸(E)に、またはその 反対に置換すること；グルタミン(Q)をアスパラギン(N)に、 またはその反対に置換すること；セリン(S)をトレオニン(T)に、またはその反対 に置換することを含む（但し、これに限定されるものではない。）。上記の置換 は「保存的」と考えられるアミノ酸置換のすべてではない。具体的なアミノ酸の 環境によっては、他の置換も「保存的」であり得る。例えば、グリシン(G)とア ラニン(A)は多くの場合に交換可能であり、アラニンとバリン(V)も同様である。 メチオニン(M)は、比較的疎水性ではあるが、多くの場合にロイシンおよびイソ ロイシンと交換可能であり、場合によってはバリンと交換可能でもある。リジン (K)とアルギニン(R)は、アミノ酸残基の重要な特徴が電荷にあり、これの２つの アミノ酸残基のｐＫの差異が重要でない場合には、互いの位置が交換可能である 。 また、本発明の範囲内には、図３の配列の一部を、十分なサイズで、特定の塩 基のハイブリダイゼイションを要求する反応において反応体として供し得る特異 性を示す程度に含むＤＮＡ配列も含む。このようなＤＮＡ配列は、ポリメラーゼ 連鎖反応(PCR)、リガーゼ連鎖反応(LCR)その他の増幅反応においてプライマーと なり得る。また、このようなＤＮＡ配列はハイブリッド化のプローブとなり得る 。好ましくは、ＤＮＡ配列は少なくとも１０塩基長、より好ましくは少なくとも ６０塩基長である。 Ｆ．バクテリオファージλｐＬプロモーターの調節下にＤＮアーゼＢを生産する 、大腸菌発現プラスミドΔ３３へのＳ．ピオゲネスＤＮアーゼＢのクローン遺伝 子の挿入 Ｓ．ピオゲネスＤＮアーゼＢのクローン遺伝子は、大腸菌発現プラスミドΔ３ ３に移入することができる。これはバクテリオファージλプロモーターｐＬの制 御の下にクローン遺伝子を発現する。Ｓ．ピオゲネスＤＮアーゼＢのクローン遺 伝子は、好ましくはＰＣＲ法を用いて発現プラスミド中に挿入し、修飾された末 端をλ２−６クローンからのＳ．ピオゲネスＤＮアーゼＢ遺伝子に結合する。以 下のヌクレオチドは、テルムス・アクアティクス(Tnermus aquaticus)ＤＮＡポ リメラーゼを用いた標準的なＰＣＲ法の操作手順にしたがい、ＰＣＲ反応のプラ イマーとして用いることができる。 これらのプライマーは、λgt11ＤＮアーゼＢクローン2-6ＤＮＡとともに増幅 のテンプレートとして用いることができる。得られる増幅産物はΔ３３発現ベク ターへの挿入に先立ち、エンドヌクレアーゼBamHIおよびSalIを用いてdigestさ れる。これによりｐＬプロモーターによって調節された翻訳的融合体が形成され る。適当な大腸菌株（C600C^+、galK^-）をＤＮＡを挿入することによって形質転換 し、プラズマを含む細菌はアンビシリンを用いた選択により選択することができ る。標準的な少量調製法、例えば、Ausubel et al."Current Protocols in Mole cular Biology"(John Wiley & New York(1987)1.6節により、これらのコロニー からＤＮＡを調製し、単離したプラスミドを適当な制限ヌクレアーゼ(Bam HIお よびSalI)を用いて切断し、プラスミドが所望の組換体断片を含んでいるかどう かを決定する。所望の構成を有するプラスミドをナリジクス酸プロトコル（J.E. Mott et al."Maximizing Gene Expression from Plasmid Vectors Containing t he λ pL Promotor.Strategies for Overproducing Transcription Termination factor ρ 、"Proc.Natl.Acad Sci.USA 82:88-92(1985)参照。その内容は本明細 書に参考のために組み入れられている。）により誘導した大腸菌宿主株に導入す る。ナリジクス酸がＤＮＡに損傷を与え、大腸菌の回復蛋白質であるrecA蛋白質 を誘導することは当分野において既知である。recA蛋白質はプロテアーゼ活性を 有し、これによりλ Cl+リプレッサーが不活性化される。この不活性化によ りｐＬプロモーターによる過剰発現がもたらされる。ｐＬプロモーターからの転 写を活性化する他の方法を用いることもできる。ナリジクス酸誘導を用いた場合 には、相当量のＤＮアーゼＢが細胞外に分泌される。 II.組み換えにより生産される酵素の特性 λ2-6ファージから組み換えにより生産された酵素は、ＤＮアーゼのアミノ末 端に融合したリーダーペプチドを含んでいる。このリーダーペプチドは以下の配 列を有する： 免疫阻書アッセイ（実施例７）は、ＤＮＡ−染料複合体を基質として用いた場 合のＤＮアーゼの能力に基づき、組換体Ｓ．ピオゲネスＤＮアーゼＢがヒト血清 中の抗ＤＮアーゼ酵素により非組換体ＤＮアーゼＢ酵素と同様に阻害されること を示している。 III．組み換えにより生産されるＤＮアーゼＢ酵素の変異体 本発明はまた、ＤＮアーゼＢ活性が変化したＳ.ピオゲネスＤＮアーゼＢ遺伝 子の変異体ないし変種を含む。これらの変異 ＤＮアーゼＢ酵素は、ヌクレアーゼ活性がより高いものでも低いものでもよい。 こうした変異体は、図４に示すアミノ酸配列において、以下に示す変異の少なく とも一つが発生している、変種の蛋白質である。 (a)図４の配列における１以上のアミノ酸の削除； (b)図４の配列における１以上の天然に存在するL-アミノ酸の挿入； (c)図４の配列における１以上の天然に存在するL-アミノ酸との置換。 このような変異ＤＮアーゼＢ遺伝子によりエンコードされる変異ＤＮアーゼＢ 蛋白質はそのヌクレアーゼ活性またはその免疫原性のいずれも利用できる。その 免疫原性を利用する場合には、好ましくは、これらの変異体は、ヌクレアーゼ活 性はすべて除去するが重要な免疫エピトープ（抗原決定基）は維持するようなア ミノ酸変化を一つ含ませ、天然のＳ．ピオゲネスＤＮアーゼＢ酵素の抗原活性を 実質的に保つようにする。かくして、変異ＤＮアーゼＢへのヒト抗体活性を変化 させることなく、大腸菌中での高水準での発現を実現することができる。このよ うな変異体あるいは変種は、当分野において周知の手法（例えば、Sambrook et al.による上掲書第１５章"Site-Directed Mutagenesis of Cloned DNA"）により 調製することができる。このような手法には、リン カー挿入突然変異生成、リンカー走査突然変異生成、ポリメラーゼ連鎖反応（Ｐ ＣＲ）法を用いオリゴヌクレオチドを介した突然変異生成、および高突然変異率 株の成育による方法が含まれる。 ヌクレアーゼ活性を利用する場合には、変異蛋白質は、典型的には、前に定義 した意味において、図４の組換体ＤＮアーゼ酵素の機能的等価体となるが、必ず しもそれに限定されるものではない。 IV.Ｓ．ピオゲネスＤＮアーゼＢ酵素のためのリーダーペプチドの利用 ＤＮアーゼＢのためのリーダーペプチドは、M-N-L-L-G-S-R-R-V-F-S-K-K-C-R- L-V-K-F-S-M-V-A-L-V-S-A-T-M-A-V-T-T-V-T-L-E-N-T-A-L-A-R（配列ＩＤNo.1） なるアミノ酸配列を有し、細菌中での組換体蛋白質の発現および製造に用いるこ とができる。リーダーペプチドを用いるための適当な方法は以下の工程からなる 。 (1)蛋白質をコードするＤＮＡを、M-N-L-L-G-S-R-R-V-F-S-K-K-C-R-L-V-K-F-S -M-V-A-L-V-S-A-T-M-A-V-T-T-V-T-L-E-N-T-A-L-A-R（配列ＩＤNo.1）なるアミノ 酸配列を有するリーダーペプチドをコードするＤＮＡに、融合ＤＮＡが単一のリ ーディングフレー ムにより蛋白質のアミノ末端にリーダーペプチドを有する組換体蛋白質を形成す るように融合する工程； (2)融合ＤＮＡを原核生物中に導入する工程；および (3)融合ＤＮＡを原核生物中で発現させ組換体蛋白質を回収可能な量で生産す る工程。 用いる細菌は大腸菌でもよいし、あるいは、スタフィロコッカス(Stasphyloco ccus)、ストレプトコッカス(Streptococcus)およびストレプトミセス(Streptomy ces)のようなグラム陽性菌でもよい。 好ましくは、組換体蛋白質は、原核生物によってその培養培地に分泌させ、培 養培地から回収する。 リーダーペプチドをコードするＤＮＡセグメントを、生産しようとする蛋白質 をコードする遺伝子に融合する方法は当分野において周知であり、平滑末端(blu nt end)連結法が含まれる。平滑末端連結法は、典型的には、Ｔ４リガーゼを用 いて行なわれ（V.Sgaramella & H.G.Khorana,"Studies on polynucleotides,CXl l,Total Synthesis of the Structural Gene for an Alanine Tranfer RNA from Yeast Enzymic Joining of the Chemically Synthesized Polydeoxynucleotide s to Form the DNA Duplex Representing Nucleotide Sequence 1 to 20,"J.Mol .Biol.72:427(1972);V.Sgaramella & S.D.Ehrlich,"Use of the T4 Polynucleot ide Ligase in the Joining of Flush- Ended DNA Segments Generated by Rest riction Endonuc leases,"Eur.J.Bichem.86:531(1978))、また、好ましくは、ポリエチレングリコ ールや塩化ヘキサミンコバルトのような濃縮化剤の存在下に行なわれる。 あるいは、適当な制限エンドヌクレアーゼ（付着端(cohesive end)を生成し、 リンカーをコードするＤＮＡをリンカーのカルボキシ末端に対応する部分で、か つ、蛋白質をコードするＤＮＡを蛋白質のアミノ末端に対応する部分で切断し得 るもの）が存在するならば、そのような制限エンドヌクレアーゼを用いて連結の ための付着端を形成することもできる。 Ｖ．Ｓ．ピオゲネスＤＮアーゼＢ酵素の精製 Ａ．天然のＳ．ピオゲネスＤＮアーゼＢの精製 本発明はまた、天然のＳ．ピオゲネスＤＮアーゼＢ酵素の改良された精製法を 含む。この方法は、市販の検定試薬中に見出されるＤＮアーゼＢ酵素のゲル電気 泳動、および天然酵素のポリアクリルアミドゲル分析における挙動との比較によ って開発されたものである。この精製法は、粗抽出物その他の酵素源を出発原料 とし、以下の工程を有する。(1)ジエチルアミノエチルセルロースへの吸着およ びこれか らの溶出により第一溶出分を得る工程；(2)第一溶出分のフェニルアガロース上 のクロマトグラフィにより第二溶出分を得る工程；(3)第二溶出分のヘパリンア ガロース上のクロマトグラフィにより第三溶出分を得る工程；(4)第三溶出分の クロマトフォーカシングにより実質的に精製純化されたＤＮアーゼＢ酵素を得る 工程。クロマトフォーカシングは、好ましくは、モノＰカラムを用いて遂行する 。好ましくは、精製されたＤＮアーゼを、Ｃ４上、0.1％のトリフルオロ酢酸水 溶液および0.08％トリフルオロ酢酸アセトニトリル溶液の勾配を設けた逆相高圧 液体クロマトグラフィによりさらに分別して、クロマトフォーカシング工程で用 いた両性電解質を除く。 精製操作により、Ｓ．ピオゲネスＤＮアーゼＢ酵素とアミノ末端にリーダーペ プチドが融合されたＳ．ピオゲネスＤＮアーゼＢ酵素以外には蛋白質を含まない 実質的に純化されたストレプトコッカス ピオゲネスＤＮアーゼＢ酵素が得られ る。この実質的に純化された蛋白質は、マイトジェン活性を実質的に含まない（ 下記実施例６参照）。 精製により、帯電電荷の異なる２種類の実質的に純化されたＤＮアーゼＢ酵素 が得られる。各分面は、実質的に他の分画や他の蛋白質を含まない。これらの分 画のうち、ｐ Ｈ8.55〜8.4でクロマトフォーカシングカラムから溶出するものをフラクション Ｉとし、ｐＨ8.22〜8.13でクロマトフォーカシングカラムから溶出するものをフ ラクションIIとする。マススペクトルから得られる分子量データ（実施例３）は 、精製された天然ＤＮアーゼＢのフラクションＩとIIの間の分子量差は、同一の アミノ酸配列において最小限の修飾のみを施した場合と一致することを示してい る。考えられる修飾は脱アミノ化である（これは、適当なｐＩシフトをもたらす であろう。）。 精製された蛋白質は配列が決定できる。フラクションＩおよびIIのいずれも、 最初の２３個のアミノ酸は以下の可読配列を示す：Q-Q-S-N-D-V-V-L-N-D-G-A-S- X-Y-L-N-E-A-L-A-（配列ＩＤ No.４）。ここでＸはトリプトファンまたはリジン を表わす。 以下に詳述するように、この配列は、遺伝子のアミノ末端アミノ酸配列をコー ドする少なくとも一つのＤＮＡとハイブリッド化する適当なプローブを設計する 手段を提供する。 Ｂ．製造された組換体Ｓ．ピオゲネスＤＮアーゼＢ酵素の精製 組換体Ｓ．ピオゲネスＤＮアーゼＢは、キメラ細胞中に高濃度で存在し、同様 な手法により精製することができる。例えば、組換体ＤＮアーゼＢは、λＤＮア ーゼＢ２−６ファージに感染させた大腸菌から得られるファージ分解物をＱ−セ ファロース（トリメチルアミノメチルアガロース）上のクロマトグラフィ、硫酸 アンモニウムによる沈殿、ヘパリンセファロース上でのクロマトグラフィ、およ びＱ−セファロース上のクロマトグラフィにより精製することができる。ｐＬプ ロモーターからＳ．ピオゲネスＤＮアーゼＢ酵素を発現する組換体プラスミドΔ ３３を用いて形質転換した大腸菌中で生産される組換体ＤＮアーゼＢは、ヘパリ ンセファロース上でのクロマトグラフィ、Ｑ−セファロース上のクロマトグラフ ィ、および逆相高圧液体クロマトグラフィにより精製することができる。他の精 製法も知られているが、当業者であれば利用可能である。 VI.クローンＤＮＡとハイブリッド可能なＤＮＡプローブの調製 本発明はまた、Ｓ．ピオゲネスＤＮアーゼＢ酵素のアミノ末端側２３個のアミ ノ酸配列をコードするＤＮＡ配列と不一致率約３０％以下でハイブリッドする一 本鎖核酸プローブの調製を含む。この核酸プローブはＲＮＡでもＤＮＡ でもよい。好ましくは、プローブがＤＮＡである場合には、標準的な緊縮(strin gent)条件、すなわち、F.Ausubel et.al.のin Current Protocols in Molecular Biology(Wlley-Interscience,New York,1990)に記載されている条件下での不一 致率が約１０％以下である。 このようなプローブとして適当な配列は、関係するアミノ酸についての腸内細 菌遺伝子のコドン用法表（表１に示す。）を用いて導くことができる。 このようなプローブの一例を以下に示す。 この配列においてＲはプリン（すなわち、ＡまたはＧ）、Ｙはピリミジン（Ｔ またはＣ）、ＳはＧまたはＣ、ＷはＡまたはＴを表わし、Ｎは通常の４つのデオ キシリボヌクレオチド（すなわち、Ａ、Ｇ、ＣおよびＴ）のいずれかを表わす。 このプローブ、および他のプローブは、ホスホトリエステルまたは亜リン酸ト リエステルによる固相ＤＮＡ合成法など（これらは例えば、"Nucieic Acids in Chemistry and Biology"(G.M.Biackburn & M.J.Gait,ecls.,IRL Press,Oxford,1 990)、ch.3,pp.106-123に開示されている。）、当分野において周知の方法によ り合成することができる。 VII. ストレプトコッカス ピオジェンスＢ ＤＮアーゼと会合させた上流側プ ロモーターの用途 本発明の別の要旨は、ＤＮアーゼＢ以外のタンパク質を発現させるためにスト レプトコッカス ピオジェンス (S．pyogenes)Ｂ ＤＮアーゼ遺伝子と最初に会 合させた上流側プロモーターの単離とその用途(use)である。このプロモーター 配列の検出は、以下の例11で説明する。 前記のプロモーター配列はλ2-6クローン中に保持される。この配列は、転写 開始部位と、細菌プロモーター用の共通-10部位及び-35部位に実質的に相同性の 部位とを含んでいる（例11）。この実質的に精製されたプロモーター配列は本発 明の範囲内に入る。 このプロモーター配列を使用してＤＮアーゼＢ以外のタンパク質を発現させる 方法は、 (1) ストレプトコッカス ピオジェンスＢ遺伝子と最初に会合している前記プ ロモーターをストレプトコッカス ピオジェンス ＤＮアーゼＢ遺伝子から単離 し； (2) 得られたプロモーターをＤＮアーゼＢ用の遺伝子以外のストレプトコッカ ス ピオジェンス タンパク質用の構造遺伝子と操作して結合させ；次いで (3) 前記構造遺伝子によってコード化された前記タンパク質を発現させる ことを有してなる。 前記タンパク質は、ストレプトコッカス ピオジェンス中で又はストレプトコ ッカス ピオジェンス 以外の原核生物、例えば大腸菌(E．coli)中で発現させる ことができる。前記プロモーターはベク ター又はプラスミド中のプロモーターに操作して連結させた遺伝子の発現用のベ クター又はプラスミドに組み込むことができる。 VIII．実質的に精製されたＤＮアーゼＢ酵素の使用 本発明はまた、天然供給源から精製されたものであろうと又は組換えＤＮＡ技 術によって生成させたものであろうと、実質的に精製されたストレプトコッカス ピオジェンス ＤＮアーゼＢ酵素のいくつかの用途を含んでいる。 A. 酵素の抗体調製用の用途 本発明の方法によって調製された酵素の用途の中には、抗体の調製がある。抗 体はポリクローン性又はモノクローン性のいずれかであり得る。ポリクローナル 抗体とモノクローナル抗体の両方の調製については、E．HarIowとD．Laneの著作 、“Andibodies: A Laboratory Manual”（Cold Spring Harbor Laboratory、C old Spring Harbor、New York、1988年発行）、第53〜318頁に記載されている。 得られた抗体は、ストレプトコッカス ピオジェンス酵素、すなわち疑いのある 培養物中のストレプトコッカス ピオジェンス酵素の検出に使用できる。 B. 酵素の抗ＤＮアーゼＢ抗体検出用の用途 本発明の実質的に精製されたストレプトコッカス ピオジェンス ＤＮアーゼ Ｂ酵素についての重要な用途は、例えば血清中の抗ストレプトコッカス ピオジ ェンス ＤＮアーゼＢ抗体の検出である。前記のように、かかる抗体の存在は、活 性なストレプトコッカス ピオジェンスの感染を示し、しかも及び深刻な化膿性 続発症が起こり得る警告信号を示す。 前記抗ＤＮアーゼＢ抗体の一つの検出方法は、該抗体が前記酵素 の活性を阻害することができるということを用いている。かかる方法は下記の工 程：すなわち (1) 抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ抗体を含んでいると疑 われる試験用試料を提供する工程； (2) 該試験用試料に所定量の本発明のストレプトコッカス ピオジェンスＤＮ アーゼＢ酵素を加える工程、但し、前記の量は試験用試料中の抗ＤＮアーゼＢ抗 体による酵素活性阻害の不存在下で検出可能な酵素活性レベルを産生するのに十 分な量であり；次いで (3) 酵素検定を行って前記試験用試料中のＤＮアーゼＢ酵素の活性レベルを測 定して該試験用試料中の前記抗ストレプトコッカス ピオジェンス抗体を検出及 び/又は定量する工程 を有してなる。 酵素検定は標準法、例えばWampolole Laboratories社（ニュージャージー州Cr anbury所在）のDNA−染料複合体分解検定法により行うことができる。この検定 法は基質としてDNA−染料複合体を使用する前記DNAアーゼの能力に基づいている 。この複合体は642nmの最大吸収波長を示す。しかしながら、前記のDNA−染料複 合体はＤＮアーゼによって分解されるので、前記の最大吸収波長にはシフトが存 在し、しかも642nmにおいて吸収の減少がある。別の酵素検定法例えば粘度測定 検定法が利用できる。該粘度測定検定法は酵素が長いＤＮＡ分子を分解する能力 、すなわちＤＮＡを含有している溶液の粘度を大幅に低下させる能力を測定する 。あるいは、検定は基質として放射性ＤＮＡを使用し、インキュベーション後に 放射能の放出を定量することによって行うことができる。デオキシリボヌクレア ーゼの別の検定法は当該技術では周知である。 血清中の抗ＤＮアーゼＢ酵素抗体の別の検定法はELISA検定法である。この方 法は、 (1) 本発明の抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素を固体支 持体に結合させ； (2) 抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ抗体を含んでいると疑 われる試験用試料をストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素と反応 させて前記抗体を前記酵素、すなわち固体支持体に結合させ；次いで (3) 固体支持体に結合された前記抗体を検出して試験用試料中の抗体を検出及 び/又は定量する ことを有してなる。 ELISA法は当該技術においては周知であり、例えばP．Tijssenの著作、“Pract ice and Theory of Enzyme Immunoassays”（Elsevier,Amsterdam,1985年発行） に記載されている。使用する固体支持体は典型的にはプラスチック、例えばポリ スチレンであるが、別の固体支持体、例えばニトロセルロースも使用できる。結 合抗体の検出は、典型的には第一の抗体に特異的な第二の抗体を加えることによ って行われる。前記第二の抗体はストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼ Ｂ酵素を結合しない。かかる抗体は、例えば酵素標識した抗ヒト免疫グロブリン Ｇであり得る。前記の酵素標識は典型的にはアルカリホスファターゼ、λ−ガラ クトシダーゼ、グルコースオキシダーゼ又はセイヨウワサビペルオキシダーゼで ある。かかる酵素は可視スペクトル中に光学吸収をもつ生成物を与え、しかも肉 眼で又は分光光度計で検出できる。 また、抗原−抗体複合体の形成を検出及び/又は定量する別の技 法を使用して血清中のＤＮアーゼＢ抗体を検定することができる。これらの技法 は、光の吸収又は散乱の変化によって酵素−抗体複合体、ここでは凝集抗原−抗 体複合体を検出する。一般に、かかる検定法は、 (1) 本発明のＤＮアーゼＢの緩衝溶液を調製し； (2) 得られたＤＮアーゼＢ緩衝溶液を抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤ ＮアーゼＢ抗体を含んでいると疑われる試験用試料と反応させ；次いで (3) 前記溶液中の吸光及び/又は光散乱の変化を観察及び/又は測定することに よってＤＮアーゼＢと前記ＤＮアーゼＢ抗体の間の反応を検出する ことを含んでなる。 前記ＤＮアーゼＢは、高分子量担体、例えばラテックスポリマー、プラスチッ ク又はゲルビーズなどに結合させることができる。 多数の用途においては、前記酵素をラテックス粒子に結合させるのが特に都合 がよい。これは、いくつかの利点、例えば酵素の安定化及び比濁分析(turbidime try)又は比朧分析(nephelometry)のいずれかによる検出感度の増大を提供できる 。ラテックス凝集反応検定法は臨床免疫検定では一般的である。 多数の異なる被覆法がＤＮアーゼＢをラテックス粒子に結合させるのに使用で きる。広く使用されている方法のいくつかは、以下の通りである、すなわち(1) ラテックス粒子への吸着による結合；(2)ラテックス粒子上へのカルボキシル基 を介した共有結合による結合及び(3)ラテックス粒子上へのアルデヒド基を介し た共有結合による結合である。 結合に使用されるラテックス粒子の大きさは、用途に応じて、直径で約15nmか ら約1000nmまでの範囲にあり得る。 ＤＮアーゼＢと抗ＤＮアーゼＢの間の反応は、比朧分析又は比濁分析により検 出することができる。抗ＤＮアーゼＢ抗体を検出する別の方法は毛管電気泳動法 である。 Ｃ．他の用途 組換えタンパク質は、感染を受けやすい個体中のストレプトコッカス ピオジ ェンス に対し免疫性を付与するためのワクチン開発に使用でき、しかも粘性が高 濃度のDNAを含む滲出液によるものである場合の病気、例えば嚢胞性繊維症にお ける肺粘症(lung viscosity symtoms)の治療においてエアロゾルとしても使用で きる。 ワクチンとしての用途には、多量の本発明の精製されたストレプトコッカス ピオジェンス ＤＮアーゼＢ酵素が哺乳動物に投与される。その量はストレプトコ ッカス ピオジェンス ＤＮアーゼＢに特異的な抗体の産生を刺激するのに十分な 量である。 投与は典型的には注射によるものであり、静脈内、筋肉内、皮下、皮内又はそ の他の経路によることができる。前記ＤＮアーゼＢ酵素はアジュバントと共に投 与して免疫応答を増大させることができる。適当なアジュバントは当該技術では 周知であり、加熱殺菌したボルデテラ・ペルツッシス(Bordetella pertussis)菌 を伴なうか又は伴わない、完全又は不完全なフロイントアジュバント並びに水酸 化アルミニウムが挙げられる。酵素は凝集、沈降又は不溶性の母体に結合させる ことができる。 免疫化に使用使用するのに特に適した本発明の酵素の一つは、ＤＮアーゼＢ活 性が完全に又は実質的に除かれ且つ抗原性が完全に 実質液に保持されている突然変異酵素である。 本発明の酵素活性なＤＮアーゼＢ酵素の使用方法は、 (1) 本発明の精製された酵素活性ＤＮアーゼＢ酵素のエアロゾルを製造し；次 いで (2) 得られたエアロゾルを嚢胞性繊維症をもつ患者に患者の中の肺流動性粘度 を小さくするのに十分な量で投与する ことを含んでなる。 エアロゾルの投与は当該技術において周知の吸入装置を使用して行うことがで き、吸入により気道にステロイド及び他の薬剤を送達するの頻繁に使用できる。 例 以下の例は単に例示を目的とするものであり、本発明を何ら限定するものでは ない。 例１ ストレプトコッカス ピオゲネス（Streptococcus Pyogenes）ＤＮアーゼＢ遺伝 子のクローニング ストレプトコッカス ピオゲネスＤＮアーゼＢ遺伝子を、組換えλバクテリオ ファージから生じるヌクレアーゼ活性の活性基礎−比色検出法によって同定した 。そのファージはストレプトコッカスピオゲネス（Lancefield群ＡＴＣＣ Ｎｏ ．１４２８９）ゲノムＤＮＡから精製した剪断ＤＮＡを含むλライブラリーの生 成物であった。ストレプトコッカスピオゲネスから染色体ＤＮＡの作成 ストレプトコッカスピオゲネス株ＡＴＣＣ １４２８９をトッド・ヒューイッ ト寒天培地にすじ状に塗布し、３７℃で２日間培養した。１０％子ウシ血精を含 むトッドヒューイットブロス１リットルに単一のコロニーを接種した。その培養 液を３７℃で約３６時間振とうし、高密度まで増殖させた。 ベックマンＪ６遠心分離器で４℃で３５００ｒｐｍ、４５分間遠心分離するこ とによって細胞を集めた。細胞ペレットを４０ｍＭトリス、ｐＨ７．５、１ｍＭ ＥＤＴＡ ２５ｍｌに再懸濁した。緩衝液１ｍｌ中の蛋白分解酵素アクロモペプ チダーゼ（６０ｍｇ）（Wampole）を加え、混合物を６５℃で１時間培養した。 溶菌は見られなかった。その後全部で２０ｍｌの１０％ＳＤＳを加え、１時間培 養を続けた。溶菌は非常に明らかであった。その後緩衝液５０ｍｌを加えてＳＤ Ｓ濃度を２．５％まで減らした。 混合物を等量のフェノールで２回抽出し、その後フェノール／ク ロロフォルム（１：１）で１回抽出した。水相のＤＮＡをエタノールで沈殿させ た。そのＤＮＡを遠心分離によって回収した。ペレットを４ｍｌの１０ｍＭトリ ス−ＨＣｌ、ｐＨ７．５、１ｍＭ ＥＤＴＡ（ＴＥ）に再懸濁した。ＲＮアーゼ Ａ（１０ｍｇ／ｍｌ濃度で５０μｌ）を加え、混合物を３７℃で３時間培養した 。 ＤＮＡを塩化セシウム勾配でさらに精製した。ＤＮＡの最終的濃度は約０．５ ｍｇ／ｍｌであった。λｇｔｌｌにおけるストレプトコッカスピオゲネスライブラリーの構成 分離した染色体ＤＮＡ（３００μｍｌ）をＴＥ緩衝液２００μｌに加えた。混 合物を２５ゲージ針をつけた１ｍｌ注射器を約３００回通し、ＤＮＡを平均サイ ズ６ｋｂに剪断した。 剪断ＤＮＡ（１５０μｌ）を大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）リガーゼで処理しそのＤ ＮＡに存在するニックを修復した；これをしなければニックはその後の操作で割 れ目になったかも知れない。ＤＮＡ１５０μｌに１０×大腸菌リカーゼ緩衝液（ ０．５Ｍトリス−ＨＣｌ、ｐＨ７．６、１００ｍＭ ＭｇＣｌ₂、１００ｍＭジ チオトレイトール、及び５００μｇ／ｍｌ子ウシ血清アルブミン）２０μｌ、Ｎ ＡＤ⁺（３６ｍＭ）２０μｌ及び大腸菌リガーゼ（ニューイングランド ビオラ ブス社［New England Biolabs］、ビバリー、Ｍａｓｓ、４単位／μｌ）７μｌ をＤＮＡに加え、混合物を４ないし５時間室温に放置した。リガーゼを１５分間 ６５℃に加熱して殺した。ＤＮＡをエタノールで沈殿させた。 リガーゼ処理ＤＮＡのＥｃｏＲＩ部位をメーカー（プロメガ社［Promega、マ ジソン、Wis.］）のプロトコルにしたがってＥｃｏ メチラーゼでメチル化した。これは内部ＥｃｏＲＩ部位を隠蔽するために行われ た。この部位の切断はクローニング処理を妨害する。 ＤＮＡの剪断端をＴ４ＤＮＡポリメラーゼで修復した；そのためには０．１Ｍ ＭｇＣｌ₂３０μｌ、２．５ｍＭ各４デオキシリボヌクレオシド ２０μｌ、 及びＴ４ＤＮＡポリメラーゼ（３０００Ｕ／ｍｌ）２μｌをメチル化後のＤＮＡ ミックスに加えることによって行われた。室温で１５分間反応させた。混合物を フェノール／クロロホルムで１回抽出し、その後エーテルで抽出した。水フラク ンョン中のＤＮＡはその後エタノールで沈殿させた。 ＥｃｏＲＩリンカーをＤＮＡに結合させた。使用リンカーはニューイングラン ド ビオラブスから入手したオクタマー（８量体）であった。リンカー結合後、 ＤＮＡを過剰のＥｃｏＲＩ制限酵素と共に消化した。所望サイズ範囲、すなわち ６−８ｋｂ、のＤＮＡは電気泳動後アガロースゲルから精製した。ＤＮＡをエタ ノール沈殿によって濃縮し、その後λｇｔｌｌに結合する準備をした。 約２μｌの剪断ＤＮＡを、あらかじめＥｃｏＲＩ制限酵素で消化したλｇｔｌ ｌアーム １μｌと連結化た。その場合末端リン酸残基はアルカリ性ホスファタ ーゼ処理により取り除かれていた。その結合は合計５μｌ量のバクテリオファー ジＴ４リガーゼで行われた。結合反応は４℃で１晩行われた。 全結合ミックスをプロメガ（マジソン、Ｗｉｓ．）パッケージングエクストラ クトを用いてin vitro でパッケージした。パッケージファージ１μｌをイソプ ロピルチオ−β−Ｄガラクトシド（ＩＰＴＧ）及び色素産生性基質５−ブロモ− ４−クロロ−３−インドリル−β−Ｄ−ガラクトシド）（Ｘｇａｌ）存在下でＹ １０９０大腸 菌叢に植え付け、溶菌はん（プラク）の約５％が青色になった。パッケージング 効率はＤＮＡ１μｇにつき約１０⁵溶菌はんであった。ヌクレアーゼ活性をもつλ組換えクローンのスクリーニング 非増幅ライブラリー（１０μｌ）をＬＥ３９２の１晩培養物０．１ｍｌと共に 培養した。５時間後、そのプレートの上に０．５×ＢＢＬ ＤＮアーゼテスト寒 天 プラス ０．０１％トルイジンブルー プラス １０ｍＭ ＭｇＣｌ２を重 ねた。全部で１０のプレートをスクリーニングした。４４のピンク色の溶菌はん （多分ヌクレアーゼ陽性）が再スクリーニングされた。４４ピンク溶菌はんのう ち９つはヌクレアーゼ活性陽性として確実に再スクリーニングされた。 ストレプトコッカスピオゲネスＤＮアーゼの産生は宿主大腸菌にとっては有害 であるから、これらのヌクレアーゼ陽性クローンの溶菌はんのサイズはヌクレア ーゼ陰性クローンのそれよりずっと小さい。よって、ヌクレアーゼ活性を低める 突然変異を蓄積するような選択的圧力があった。これは安定ヌクレアーゼ陽性ク ローンを分離する仕事を複雑にするものである。 本発明の選択及びスクリーニング処理の利点の１つは、安定ヌクレアーゼ陽性 クローンを容認する選択的圧を低めることである。これをするために、プラスミ ドｐＭＣ９のない大腸菌株Ｙ１０９０をヌクレアーゼ担持ファージのための宿主 として用いた。プレート溶解物を用いて、クローンを溶菌はん精製するためのス トックを作った。この方法のために、宿主及びファージを、５時間培養後に上に 重ねて置く代わりに、０．５×ＢＢＬ ＤＮアーゼテスト寒天 プラス ０．０ １％トルイジンブルー プラス １０ｍＭ ＭｇＣｌ₂ 上に直接植え付けた。 ９つの組換えクローンの溶解物をＤＮＡを含むＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲ ル上で分析した。９クローン全てのヌクレアーゼはＳＤＳ−変性後もその活性を 保持し、全部が同じ見掛け分子量、約２５ｋｄを有する。これら９溶解物を焦点 電気泳動のためのＩＥＦ３−９ゲルを用いてＰｈａｓｔＧｅｌ装置で分析した。 電気泳動後、１％アガロースを含むＴＡＥ（４０ｍＭトリス、５ｍＭ酢酸ナトリ ウム、１ｍＭ ＥＤＴＡ、ｐＨ８）中ＤＮアーゼ基質（ストレプトナーゼＢキッ ト）（ディフコ［Difco］、デトロイト、ミシガン）３．５ｍｌをそのゲル上に 重ねた。全９溶解物の活性バンドはゲルの塩基性端の末端にあり、クローン化ヌ クレアーゼの非常に高いｐＩを示唆した。これは全９クローンが同じ遺伝子を含 むことも示唆した。 特に、２−６と呼ばれたＤＮアーゼ活性を示す１ファージをさらに分析した。 λ ＤＮアーゼ２−６クローンを制限酵素分析で分析し、そのＤＮＡ断片を特徴 づけた。２−６クローンにおけるλベクターへのストレプトコッカスピオゲネス ゲノム インサートは約５．２ｋｂであった。ヌクレアーゼ遺伝子の位置は、 より小さい範囲のＤＮアーゼ２−６クローンをλｇｔ１１にサブクローニングに よって戻し、そのサブクローンのヌクレアーゼ活性を試験することによって決定 した。図２は種々のサブクローンの位置及びそれらのヌクレアーゼ活性を示す。 サブクローン１及び４はヌクレアーゼ活性を生じたが、非常に不安定であった。 サブクローン２及び３にはヌクレアーゼ活性はなかったが、安定であった。この サブクローニングの結果は、ＤＮアーゼＢ遺伝子の少なくとも１部は内部Ｓａｃ Ｉ／ＥｃｏＲＩ断片に存在することを示した。ＤＮアーゼＢ蛋白質からのアミノ 末端配列を遺伝子コードと組合わせて用い、１組の変性オリゴヌクレオチッドを 作り、それを用いてＤＮアーゼ２−６インサート及び若干のサブクローンにハイ ブリダイズした。これらのオリゴヌクレオチッドはＤＮアーゼＢ２−６の３．５ ｋｂＥｃｏＲＩ断片及びサブクローン３のＳａｃＩ／ＥｃｏＲＩ断片にハイブリ ダイズした。このデータは、サブクローニングデータと共に、ヌクレアーゼ遺伝 子の転写が図に示すように十中八、九、左から右に進行し、ＳａｃＩ部位はＤＮ アーゼＢ遺伝子内にあることを示唆する。 ５．２ｋｂインサートに隣接するストレプトコッカスピオゲネスＤＮＡの地図 作製をゲノムＤＮＡブロット ハイブリダイゼーションによって行った。λ Ｄ Ｎアーゼ２−６ＤＮＡの３．５ｋｂ及び１．５ｋｂＥｃｏＲＩ断片をゲル精製し 、ランダムプライミングによって³²Ｐで標識化した。同じゲルブロットを２つの プローブと連続的にハイブリダイズした。ストレプトコッカスピオゲネス染色体 中のインサート及びそれに隣接する領域の部分制限酵素地図を図１に示す。 例２ ストレプトコッカスピオゲネスＤＮアーゼＢを含むクローン２−６の配列決定 サンガーら（同上）のジデオキシヌクレオチド鎖停止法を用いてヌクレオチド 配列決定分析をクローン２−６において行った。配列決定分析はクローン２−６ のλｇｔ１１ファージ内からＤＮＡ活性の予想される領域に延びる合成をプライ ムすることによって開始し た。塩基配列決定結果を図３に示す。ストレプトコッカスピオゲネスＤＮアーゼ Ｂは塩基配列の最初のfull open読み枠内にある。 例３ 天然ストレプトコッカスピオゲネスＤＮアーゼＢの精製 天然ストレプトコッカスピオゲネスＤＮアーゼＢを精製するために、正確なヌ クレアーゼのマーカーとして市販のＤＮアーゼＢアッセイ試薬を用いた。言い換 えるならば、市販キットのＤＮアーゼＢで得られるポリアクリルアミドゲル電気 泳動法結果をストレプトコッカスピオゲネスＡＴＣＣ Ｎｏ．１４２８９から生 成する抽出物のゲル電気泳動法からの結果と比較した。精製法は次のことからな る：ＤＥ−２３ ジエチルアミノエチルセルロース（ワットマン〔Whatman〕） （２）フェニルセファロース^R（ファルマシア［Pharmacia］、アプザラ、スエー デン）上でのクロマトグラフィー；（３）ヘパリンセファロース^R（ファルマシ ア）上でのクロマトグラフィー；及び（４）モノ−Ｐ 等電点クロマトグラフィ ー（ファルマシア）。 細菌培養 Ａ．ベルンハイマー（Bernheimaer）Ｃ２０３Ｓ（Ｃ２０３のＭ不含有変種） から誘導したストレプトコッカスピオゲネスＡＴＣＣ Ｎｏ．１４２８９（米国 培養コレクション、ロックヴィル、メリーランド）を、ＤＮアーゼＢ−含有培養 培地収集のための細菌源として用いた；その酵素は細菌によって培地に分泌され る。０．０１％洗浄ヤギ赤血球を補充した脳心臓注入メジウム（１リットル）(D ifco Laboratories，Detroit，Michigan)に新鮮な１晩培養物を接種した。これ らの培養物は２リットル エルレンマイヤーフラスコに入れて３７℃でゆるやか な撹拌下で（３００ｒｐｍ）で２０時間増殖させた。精製する前に、培養培地を ペリ コン（Pelicon）フィルター（0．22μmドュラポアＧＶＬＰ膜）濾過とその後の ０．４５μｍ使い捨て濾過装置（ナルジーン、ナルジ社（Nalge Co.）、ロチェ スター、ニューヨーク）を通す濾過によって澄明にし、滅菌した。培養培地約１ ０５リットルをこの方法で処理した。ジエチルアミノエチルセルロースへのバッチ吸収 澄明なメジウムをペリコン装置及びフィルター面積約０.４６ｍ²をもつ１０Ｋ 膜（ＰＬＧＣ、再生セルロース）を用いて流速１２０ｍｌ／ｍｉｎ、及び圧力２ ０ｌｂｓ／平方インチ（１．４Ｋｇ／ｃｍ²）で限外濾過することによって濃縮 した。培地の最初の容量１０５リットルは最後には４リットルにまで濃縮され、 蛋白質濃度は２．３ｍｇ／ｍｌであった。 ジエチルアミノエチルセルロース（ＤＥＡＥ−セルロース）（ＤＥ２３、ワッ トマン、英国）を１５容量の０．５Ｍ ＨＣｌで洗い、その後１５容量の０．５ Ｍ ＮａＯＨで第２回目の洗浄を行うことによって再生した。水酸化ナトリウム 洗浄を繰り返した後、ＤＥＡＥセルロースを中性になるまで水で洗った。最後に セルロースを１晩ＴＭＣ緩衝液（１ｍＭトリス、１ｍＭ ＭｇＣｌ、１ｍＭ Ｃ ａＣｌ₂、ｐＨ７．５）と平衡状態にした。 平衡化した湿ったセルロース（１００ｇ）を濃縮ストレプトコッカスピオゲネ ス培地上澄液５００ｍｌに加えた。その混合物を４℃で３００ｒｐｍで２０分間 拡販し、その後３５００ｒｐｍで４５分間遠心分離した。セルロースをＴＭＣ緩 衝液４５０ｍｌで洗い、２つの上澄液を合一した。フェニルセファロース上でのクロマトグラフィー ジエチルアミノエチルセルロース バッチ吸収から得た上澄液を０．４５μｍ 膜濾過によって澄明にした。硫酸アンモニウムを０．８Ｍに加え、その後０.８ Ｍ硫酸アンモニウム、２０ｍＭリン酸ナトリウム（ｐＨ８．０）と平衡にしたフ ェニルセファロースＣＬ４５（ファルマシア、アプザラ、スエーデン）を通した 。 ８０ｍｌフェニルセファロースカラムに１．８５ｍｌ／ｍｉｎで、濃度２５８ μｇ／ｍｌのサンプル１１００ｍｌを注入した。ＤＮアーゼ活性をフロースルー に集め、それから１０−ｋｄ膜（DiafloYＭ１０、アミコン支社、Ｗ．Ｒ．グレ ース社）を用いる限外濾過によって濃縮した。最終蛋白質濃度は０．２４５ｍｇ ／ｍｌで、５５ｍｌであった。ヘパリンセファロース上でのクロマトグラフィー フェニルセファロースカラムからの濃縮溶出液をヘパリン緩衝液Ａ（２０ｍＭ ＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．９、２ｍＭジチオトレイトール、１０ｍＭ ＭｇＣｌ₂ 、０．２ｍＭＥＤＴＡ、０．１ＮａＣｌ、１０％グリセロール）に対して透析し た。ヘパリンセファロースＣＬ−６Ｂ（ファルマシア）カラム（８０ｍｌ）をヘ パリン緩衝液Ａと平衡化し、その後流速１.０ｍｌ／ｍｉｎで注入した。そのカ ラムを３容量のヘパリン緩衝液Ａで洗浄後、０％から１００％までの勾配の緩衝 液Ｂを流速２．２ｍｌ／ｍｉｎで通した。緩衝液Ｂは、塩化ナトリウム濃度が１ ．０ｍｏｌｅ／ｌであることを除けば、緩衝液Ａと同一のものであった。ＤＮア ーゼ活性は約２５０ｍｌ容量の３５０ｍＭＮａＣｌで溶出した。ＤＮアーゼ活性 を限外濾過によって濃縮した。モノ−Ｐ 等電点クロマトグラフィー 濃縮ＤＮアーゼフラクションを、等電点クロマトグラフィーにかける前に、２ ５ｍＭジエタノールアミン、ｐＨ９．５、に対して透析した。注入緩衝液（２５ ｎＭエタノールアミン、ｐＨ９．５）中で平衡化したモノＰ５／２０カラム（フ ァルマシア、ピスカタウェイ、ＮＪ）をサンプル５００μｌと共に注入し、注入 緩衝液９ｍｌで洗浄した。カラムを１００％緩衝液Ｂ（１０％ポリバッファー９ ６（ファルマシア）、ｐＨ６．０）で溶出した。総溶出量は３４ｍｌであった； フラクション０．５ｍｌを集めた。活性の２つのピークをｐＨ８．５５−８．４ （フラクション２５−２９）（ここではフラクションＩと呼ぶ）及びｐＨ８．２ ２−８．１３（フラクション３４−３５）（ここではフラクションＩＩと呼ぶ） を集めた。集めたフラクションを等電点電気泳動活性ゲル、銀染色により、及び ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動によって分析した。逆相高圧液体クロマトグラフィー 等電点クロマトグラフィーカラムから得たピークフラクションを等電点クロマ トグラフィーのために用いた両性電解質を除去するために、Ｃ４カラム（ベック マンシステム ゴールド インスツルメント、ベックマンインスツルメント、フ ラトン、カリフォルニア）を用いる逆相高圧液体クロマトグラフィーによってさ らに精製した。サンプルを緩衝液Ａ（水中０．１％トリフルオロ酢酸）に担持さ せ、０％−１００％緩衝液Ｂ（アセトニトリル中０．８％トリフルオロ酢酸）勾 配を用いて流速１ｍｌ／ｍｉｎでカラムを溶出した。これらの蛋白質は約１ｍｌ 容量の６５％緩衝液Ｂに溶出した。ＳＤＳ及び等電点分析 全サンプルのＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル分析はＰＨＡＳＴ システム（ファルマシアＬＫＢ、ピスカタウェイ、ＮＪ）自動分析器を用いて行 われた。ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動はＰｈａｓｔＧｅｌ １０− １５％ゲル上で行った。等電点ゲルはＰｈａｓｔＧｅｌ ＩＥＦ３−９ゲルを用 いて行った。ＳＤＳ並びに等電点ゲル両方の銀染色はＰｈａｓｔＳｙｓｔｅｍ自 動染色装置（ファルマシアＬＫＢ）を用いて行った。等電点電気泳動ゲル上のＤ Ｎアーゼサンプルの活性分析は電気泳動後のゲルに、リン酸緩衝塩を含む１％溶 融アガロース溶液５ｍｌ及び再構成した（reconstituted）ＤＮアーゼ基質染料 （Wampole）１ｍｌを重ねて置くことによって行った。ＩＥＦゲルを上を覆った 基質と共に室温でインキュベートすると、青色基質染料がヌクレアーゼ活性周辺 を中心としてピンク色に変色することによって活性が検出された。ＳＤＳ変性サ ンプルの活性分析試験は、５００μｇ／ｍｌニシン精巣ＤＮＡの存在下で重合さ せたＳＤＳ−１４％ポリアクリルアミドゲルを用いて行った。電気泳動後、ゲル を水ですすぎ、４０ｍＭトリスＨＣｌ、ｐＨ７．５、２ｍＭＭｇＣｌ₂、０．０ ２％アジ化ナトリウムで３７℃で２時間平衡化した。臭化エチジウムを１μｇ／ ｍｌになるように加え、ヌクレアーゼによるＤＮＡ分解の結果として目に見える ヌクレアーゼ活性を観察した。蛋白質塩基配列決定 精製ＤＮアーゼのフラクションＩ及びＩＩのアミノ末端塩基配列をアプライド ・ビオシステムズ社（Applied Biosystems）（フォスター市、カリフォルニア） ４７７セケネーターを用いて決定した。精製した酵素（フラクションＩ及びＩＩ ）の各々のサンプルをアプライド ビオシステムズ（フォスター市、ＣＡ）４７ ０蛋白質シー ケンサーに入れた。フラクションＩ及びＩＩの最初の２３アミノ酸は次のような 読み可能の塩基配列を与えた：Ｑ−Ｔ−Ｑ−Ｖ−Ｓ−Ｎ−Ｄ−Ｖ−Ｖ−Ｌ−Ｎ− Ｄ−Ｇ−Ａ−Ｓ−Ｘ−Ｙ−Ｌ−Ｎ−Ｅ−Ａ−Ｌ−Ａ（配列番号４）；ここでＸは 決定的に確認することができないが十中八、九、トリプトファンまたはリジンで あるアミノ酸をあらわす。質量分析 組換えＤＮアーゼＢ（例１）及び精製天然ＤＮアーゼＢのフラクションＩ及び ＩＩについて、フィニガンエレクトロスプレー脱イオンシステムを備えたフィニ ガンＭＡＴ ＴＳＱ７００ 三段階四極子質量分析器を用いてイオンスプレー質 量分析を行った。上記のようにＣ４カラムを用いる逆相分別によってサンプルを 調製した。ＤＮアーゼＢ蛋白質は６５％緩衝液Ｂで溶出し、凍結乾燥して保存し た。流速１μｌ／ｍｉｎで注入する前に、サンプルをアセトニトリル−水−酢酸 （５０：５０：１）に溶解した。 質量分析によって決定した分子量は次のようである：組換えＤＮ 酸配列決定結果と一致する、これは組換えＤＮアーゼＢがアミノ末端に１つの付 加的アミノ酸を有することを示す。精製天然ＤＮアーゼＢのフラクションＩとＩ Ｉとの間の分子量の差はそれ以外では同一のアミノ酸配列のわずかな変更で一致 する。可能な変更は適切なｐＩシフトをおこす脱アミノ化である。 例４ バクテリオファージλ２−６クローンから産生した組換えストレプトコッカスピ オゲネスＤＮアーゼＢの精製及びアミノ末端塩基配列分析 λＤＮアーゼＢ２−６ファージ溶解物中の組換えＤＮアーゼＢ蛋白質をＳＤＳ −ポリアクリルアミドゲル上でウエスタン ブロット分析法によって同定した。 市販ＤＮアーゼＢに対する家兎抗体を用いて組換えＤＮアーゼＢの存在を見いだ した。ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲルのクーマッシブブルー染色は、組換えＤ ＮアーゼＢ蛋白質が溶解物中の総蛋白質の約５％であることを示唆した。１ヌク レアーゼのみがＳＤＳ─ＤＮＡ─ポリアクリルアミドゲル システムにおいて検 出された。そのヌクレアーゼは見掛け分子量２５０００ダルトンを有する。 組換えＤＮアーゼＢ蛋白質の精製をＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲルを用いて モニターし、基質を用いるヌクレアーゼ活性アッセイを市販ＤＮアーゼＢアッセ イキットの対照とした。精製処理は次のものを含む：（１）Ｑ−セファロース（ トリメチルアミノメチルアガロース）上クロマトグラフィー；（２）硫酸アンモ ニウム沈殿；（３）ヘパリンアガロース上クロマトグラフィー；及び（４）Ｑ− セファロース上クロマトグラフィー。λ ＤＮアーゼＢ２．６ファージ溶解物２ リットルを、１０ｍＭＭｇＣｌ₂補充ルリアブロス上１晩培養物として調製した 。培養液をベックマンインスツルメント（フラトン、ＣＡ）遠心分離器で４℃で ３６３５×ｇ、４５分間遠心分離した後上澄液を集め、細胞くずを除去した（上 澄液の容量は１９００ｍｌ）。 溶解物を０．４５μｍ濾過ユニットを通して濾過し、残留細菌及 び細胞くずを除去した。この濾液をその後Ｑ−セファロース（ファルマシア、ピ スカタウェイ、ＮＪ；これを２０ｍＭトリス−ＨＣｌ、ｐＨ７．５、１ｍＭＥＤ ＴＡで平衡化した の約２００−ｍｌカラムを通した。カラムから流れ落ちる溶 出液を集めた。このフラクンョンに硫酸アンモニウムを最終濃度８０％になるま で室温でゆっくりと加え、溶解物を濃縮した。所望蛋白質を１５０００×ｇで３ ０分間遠心分離した。 透析蛋白質にグリセロールを最終濃度１０％になるように加えた。この調製液 を０.４５μｍ濾過ユニットを通して濾過した。蛋白質調製液の伝導度を測定し 、蛋白質調製液を２０ｍＭトリス−ＨＣｌ、ｐＨ７．５、で希釈し、伝導度が２ ０ｍＭトリス−ｐＨ７．５、２５ｍＭ ＮａＣｌ、１０％グリセロール溶液（緩 衝液Ａ）のそれと同じになるようにした。最終容量は１８００ｍｌであった。 このサンプルをファルマシアＦＰＬＣシステムのヘパリン−セファロースカラ ム（約１００ｍｌ）に流速１２０ｍｌ／ｈｒで注入した。カラムを緩衝液Ａ４０ ０ｍｌで洗った。緩衝液Ａ中２５ｍＭないし５００ｍＭ勾配ＮａＣｌ１リットル でＤＮアーゼＢを溶出した。ＤＮアーゼ活性は約１２５ｍＭＮａＣｌで約１７５ ｍｌ容量に溶出した。 ヘパリンアガロースカラムから溶出したＤＮアーゼフラクションを２０ｍＭト リス−ＨＣｌ、ｐＨ８．５、に対して透析した。そして２０ｍＭトリス−ＨＣｌ 、ｐＨ８．５に平衡化した約１７５ｍｌのＱ−セファロースカラムに注入した。 Ｑ−セファロースカラムからの流出液を集め、等電点焦点活性ゲル、銀染色、及 びＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動によって分析した。組換えＤＮアー ゼ Ｂ蛋白質の標本は９９％均質であった。最終的溶出液（１１０ｍｌ）中の蛋白質 濃度は約１００μｇ／ｍｌであった。これは約５．５ｍｇ／培養液１リットルの 収量に匹敵する。最終産物をその後例３に記載のように逆相高圧液体クロマトグ ラフィーにかけた。 精製した組換えＤＮアーゼＢのアミノ末端配列をベックマン ミクロシーケン シングシステム２０２０／ゴールド を用いて決定した。アミノ酸配列は以下の ことを除き、天然ストレプトコッカスピオゲネスＤＮアーゼＢのそれと一致した ；すなわちアミノ末端はアルギニン（Ｒ）で、Ｒ−Ｑ−Ｔ−Ｑ−Ｖ−Ｓ−Ｎ−Ｄ −Ｖ−Ｖ−Ｌ−Ｎ−Ｄ−Ｇ−Ａ−Ｓ−Ｋ−Ｙ−Ｌ−Ｎ−Ｅ−Ａ−Ｌ−Ａ−Ｗ−Ｔ −Ｆ−Ｎ−Ｄ−Ｓ−Ｐ−Ｎ−Ｙ−Ｙ−Ｋ−Ｔ−Ｌ−Ｇであった（配列番号：６） このアルギニンは組換えＤＮアーゼＢを作製する過程で生じたものである。 ＤＮアーゼＢの質量分析は、そのＤＮアーゼが均質で、見掛け分子量２５，５ ４９であることを示した。 例５ ｐＬプロモーターの調節下での大腸菌プラスミドにおけるストレプトコッカス ピオゲネスＤＮアーゼＢ酵素のクローニング及び発現 そのほかの遺伝子構成物を作製し、バクテリオファージλプロモータｐＬを挿 入するプラスミドベクターを用いてストレプトコッカスピオゲネスＤＮアーゼＢ 遺伝子の調節された発現を証明した。この構成物を作製するために、ポリメラー ゼ鎖増幅反応（ＰＣＲ）を利用して改変末端をλ２−６クローンのＤＮアーゼＢ 遺伝子に挿入した。次のオリゴヌクレオチドを設計し、メーカーの指示にしたが い、ファルマシア遺伝子アセンブラー プラス ＤＮＡ合成器で合 成した： メーカーのインストラクションにより、これらのオリゴヌクレオチドを、Ampl iTagキット（パーキンエルマー-セツス、ノルウォーク、ＣＴ）を用いるＰＣＲ 反応のプライマーとして用いた。ＭｇＣｌ₂の最終濃度を４ｍＭに調節し、パー キンエルマー４８０熱サイクラーを用いて２０サイクルの反応を行った（３７℃ 、２分；７２℃、３分；９５℃、２分）。λｇｔ１１クローン２−６（１００ｎ ｇ）のＤＮＡを各プライマーの２００μＭに沿った鋳型として用いた。生成した 増幅産物をさらにＢａｍＨＩ及びＳａｌＩで消化し、その後Δ３３発現ベクター に挿入した。これらの操作は図５に示す配列をもった翻訳融合を作り出した；こ れはλｐＬプロモーターによって調節される。 Ｃ６００Ｃ１⁺、ｇａｌＫ^-細菌を結合混合液で形質転換し、ＬＢ−Ａｍｐプレ ートに植え付けた。その後ＤＮＡのミニ標本を作製し（アウスベル〔F.M.Ausube l〕ら編集、“分子生物学の最新実験計画〔Current Protocols in Molecular Bi ology〕”、John Wiley、1987、１．６章）、その後プラスミドを酵素ＢａｍＨ Ｉ及びＳａｌ Ｉで切断し、そのプラスミドが組換えＤＮアーゼＢ断片をもっているかどうかを 確認した。所望構造のプラスミドをさらにＡＲ１２０宿主菌に形質転換した。組 換えＤＮアーゼＢを含むプラスミドをもったこれらの宿主細胞をそれからナリジ クス酸プロトコルによって誘導した（モット［Mott］ら、同上）。形質転換した ＡＲ１２０を含むコロニーを寒天プレートから取り、スーパーブロス（ベース： １２ｇトリプトン、２４ｇ酵母エキス、５ｍｌグリセロール、９００ｍｌ蒸留 Ｈ²Ｏ；ベース１リットルあたりの塩：１.７ｇＫＨ₂ＰＯ₄、１５．８ｇＫ₂ＨＰ Ｏ₄（無水）、１００ｍｌ蒸留水）、プラス １００μｇ／ｍｌアノピシリンに 接種し、６５０ｎｍにおける培養液の光学密度が０．４になるまで３７℃で増殖 させた。 その後、ナリジクス酸を接種混合物に最終濃度６０μｇ／ｍｌになるように加 えた。培養液を３７℃で約８時間、または１晩（約１６時間）インキュベートし た。すべての細胞フラクション、すなわち培養上澄液、超音波処理した細胞ペレ ット及び超音波処理細胞ペレットからの上澄液、のＤＮアーゼＢ活性を分析した 。 １晩の誘導ではＤＮアーゼＢは大腸菌細胞の外に分泌した。８時間誘導ではＤ ＮアーゼＢの大部分が細胞の外へ分泌し、約３０％が内側にあり、超音波処理ペ レットからの上澄液に回収された。ＤＮアーゼＢの量は、ポリアクリルアミドゲ ル電気泳動の際にクーマッシーブリリアントブルー染色により目に見えるほど十 分な量であった。 例６ ｐＬプロモーターの調節下で大腸菌に産生する組換えストレプトコッカスピオ ゲネスの精製 組換えＤＮアーゼＢクローンの或る量（６リットル）をスーパーブロス中で増 殖させ、例５に記載したように１晩誘導した。上澄液を収穫し、１０Ｋ膜を用い るペリコン濃縮器で濃縮した；濃縮の結果６００ｍｌ量となった。 濃縮エキスをヘパリン緩衝液Ａ（２０ｍＭ ＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．９、２ｍＭ ジチオトレイトール、１０ｍＭ ＭｇＣｌ₂、０．２ｍＭＥＤＴＡ、０．１Ｍ ＮａＣｌ、１０％グリセロール）に対して透析した。例３に記載のようにヘパリ ンカラムに注入し、移動させ、溶出した。 ヘパリンカラムからの溶出液を２０ｍＭエタノールアミン、ｐＨ８．５中で透 析した。外因性蛋白質の少量がＱ−セファロースへのバッチ吸収によりＤＮアー ゼＢ標本から吸収された。Ｑ−セファロースの或る量（１００ｍｌ）を２０ｎＭ エタノールアミン、ｐＨ８．５で平衡化し、ヘパリンＤＮアーゼＢフラクション １００ｍｌに加えた。Ｑ−セファロースをバッチ法で４℃で２０分間エキスに結 合させた。結合後、Ｑ−セファロースを０．４５μｍ濾過ユニットを通して濾過 した。その樹脂を最後に２０ｍＭエタノールアミン、ｐＨ８．５、５０ｍｌで２ ０分間洗い、その後遠心分離によって分離した。この操作から得た２つの溶出液 を合一し、逆相クロマトグラフィー、アミノ酸配列決定、及び質量分析によって 分析した。逆相クロマトグラフィーでは精製ＤＮアーゼＢ１ｍｌはＣ４カラムを 通過し、６５％緩衝液Ｂで容量１ｍｌに溶出した。例３で天然ＤＮアーゼＢの精 製に用いた同じ緩衝液を用いた。アミノ酸配列はベックマンミクロシーケンシン グ装置２０２０／ゴールドを用いて決定した。アミノ酸配列はＲ−Ｑ−Ｔ−Ｑ− Ｖ−Ｓ−Ｎ−Ｄ−Ｖ−Ｖ−Ｌ−Ｎ −Ｄ−Ｇ−Ａ−Ｓ−Ｋ−Ｙ−Ｌ−Ｎ−Ｅ−Ａ−Ｌ−Ａ−Ｗ−Ｔ−Ｆ−Ｎ−Ｄ−Ｓ −Ｐ−Ｎ−Ｙ−Ｙ−Ｋ−Ｔ−Ｌ−Ｇであった（配列番号：６）． 例７ ＤＮアーゼＢ酵素のアミノ末端配列に一致するＤＮＡプローブの調製 ＶＡＸ ＣＧＣプログラム（表１）上の腸内細菌の高発現遺伝子のためのコド ン法（Ｃｏｄｏｎ ｕｓａｇｅ）を用いて、以下のようなプローブを調製した： C-A-P-U-A-C-N-C-A-R-T-N-W-S-N-A-A-Y-G-A-Y-G-T（配列番号５）。この配列に おいて、Ｒはプリン（すなわちＡまたはＧ）、Ｙはピリミジン（すなわちＴまた はＣ）、ＳはＧまたはＣ、ＷはＡまたはＴ、Ｎは４つの一般的なデオキシリボヌ クレオチドのいずれかである。このプローブはλｇｔ１１クローン２．６と効率 的にハイブリッド形成を行って、天然のＤＮアーゼＢタンパク質がそのクローン された遺伝子に由来したことを確認した。 例８ 抗−ＤＮアーゼＢ抗体による組換えＤＮアーゼＢの阻害 組換えストレプトコッカス ピオジェンス（Ｓ．Ｐｙｏｇｅｎｅｓ、化膿連鎖 球菌）ＤＮアーゼＢが天然のＤＮアーゼＢと同じ性質をもっていることを示すた めに免疫阻害検定を行った。組換えＤＮアーゼＢを抗−ＤＮアーゼＢ抗体を含む コントロール ポジティブ ヒト血清（ｃｏｎｔｒｏｌ ｐｏｓｉｔｉｖｅ ｈ ｕｍａｎ ｓｅｒｕｍ）を用いた阻害検定をして市販の天然のＤＮアーゼＢと比 較した。用いた検定は、ＤＮアーゼＢのＤＮＡ−染料複合体を基質として利用す る能力に基づくものである。この複合体は６４２ｎｍで最大の吸光度を示す。し かし、ＤＮアーゼによってＤＮＡ−染料 複合体が分解されるにつれて最大吸光度の波長が変化し、酵素の活性は６４２ｎ ｍで計測される吸光度の減少によって示される。図６に見られるように、組換え 酵素は、天然のストレプトコッカス ピオジェンスのＤＮアーゼＢに対する免疫 反応の結果出来た抗−ＤＮアーゼＢ酵素を含むヒト血清によって、天然のストレ プトコッカス ピオジェンス ＤＮアーゼＢと同様に不活性化された。 例９ Ａ２−６クローン遺子のストレプトコッカス プロモーターによりＤＮアーゼＢ 遺伝子の転写が起こることの測定 図４で示したように、λ２−６クローン由来のＤＮアーゼＢ遺伝子は高い発現 性を示した。この発現性の原因である強い（Ｓｔｒｏｎｇ）細菌性のプロモータ ーの開始位置を決定するために、大腸菌（Ｅ．Ｃｏｌｉ）のＲＮＡポリメラーゼ を用いて試験管内でランオフ転写検定を行った。この検定では転写ＲＮＡランオ フの長さをサンガー ジオキシ シークエンシング ラダー（Ｓａｎｇｅｒ ｄ ｉｄｅｏｘｙ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｌａｄｄｅｒ）と比較することにより、 正確な転写開始塩基を求めることができる。この検定により大腸菌での転写開始 位置の強力な根拠が得られる。様々なストレプトコッカスの既知の転写開始部と の比較により、さらにこの部位がストレプトコッカス性の転写を担うものである ことが分かる。（Ｊ．フェレッティとＲ．カーチス ”ストレプトコッカル・ジ ェネティックス（ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃａｌ ｇｅｎｅｔｉｃｓ）”（１９８ ７）、２９３頁（”ストレプトコッキでの転写・翻訳開始を知らせるヌクレオチ ド配列集（Ｃｏｍｐｉｌａｔｉｏｎ ｏ ｆ Ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｔｈａｔ Ｓｉｇｎａｌ ｔｈ ｅ Ｉｎｉｔｉａｔｉｏｎ ｏｆ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ ａｎｄ Ｔｒ ａｎｓｌａｔｉｏｎ ｉｎ Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｉ）”）。 ランオフ転写反応では、ＲＮＡポリメラーゼはプロモーター領域を識別し転写 を開始した。酵素がテンプレートの末端から次第に落ちていくので、この反応を ランオフ転写という。これは転写開始部位を決定するのに一般的に使われる方法 である。 大腸菌ＲＮＡポリメラーゼの試験管内でのランオフ転写反応のテンプレートと して、ＤＮアーゼＢ遺伝子の上流部を含むＰＣＲフラグメントを作成した。２９ ８位から２８０位のオリゴヌクレオチド＃２４６と、オリゴヌクレオチド＃２６ ７（図３には示されていない）の２つのオリゴヌクレオチドを用いて、約２９０ 塩基対のＰＣＲによるＤＮＡ生成物を作り、フラグメントを電気泳動後に単離し た。ランオフ転写反応はｐＨ８のトリス３０ｍＭ、塩化カリウム１２０ｍＭ、塩 化マグネシウム４ｍＭ、２−メルカプトメタン１０ｍＭ、スペルミジン４ｍＭ、 ＡＴＰ ０．４ｍＭ、ＣＴＰ ０．４ｍＭ、ＧＴＰ ０．４ｍＭ、ＵＴＰ ０． ０８ｍＭ、８０ユニットのＲＮアシン（ＲＮＡｓｉｎ）（プロメガ（Ｐｒｏｍｅ ｇａ））、１ユニットのＲＮＡポリメラーゼ（プロメガ）、［³²Ｐ］ＵＴＰ５μ ｌ、あわせて１００μｌの中で行った。その混合物を３７℃で３０分間インキュ ベートした。反応を止めるために１０μｌの０．５ＭのＥＤＴＡを加えた。 サンプルを希釈し配列決定用ゲル上で電気泳動を行った。転写物のサイズを正 確に求めるために、２−６ＤＮＡ上でオリゴヌクレオ チド２４６を用いて配列反応を行った。反応はＧＩＢＣＯ／ＢＲＬ（ベテスダ、 エム ディ、Ｂｅｔｈｅｓｄａ，ＭＤ）サイクル シークエンシング キット（ ｃｙｃｌｅ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｋｉｄ）を用いて行った。シークエンシン グ ラダー（ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｌａｄｄｅｒ）の開始点はランオフ転写物 のランオフ点と同じであった。ウレアポリアクリルアミドゲル上のシークエンシ ング ラダーと一緒に転写物を分析することにより、転写開始部位の位置が求め られた。 図７はＤＮＡ配列の読み取り枠の上流及び大腸菌プロモーターの共通配列を示 している。（Ｄ．Ｋ．ホーリーとＷ．Ｒ．マックルー（Ｄ．Ｋ．Ｈａｗｌｅｙ＆ Ｗ．Ｒ．ＭｃＣｌｕｒｅ）、Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１１：２２３７− ２２５５（１９８３））。転写データはＲＮＡポリメラーゼの開始部位と思われ る点が２つ、９６位と９７位、あることを示している。これらの部位を図７にア ステリスクで示す。−３５と−１０領域には下線を付した。 例１０ ヒト血清サンプル内の抗−ＤＮアーゼＢ抗体との反応における精製組換えストレ プトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢと天然ＤＮアーゼＢの等価性 組換えＤＮアーゼＢが、ヒト血清サンプル内の抗−ＤＮアーゼ抗体との反応に おいて、市販のストレプトナーゼＢという天然のＤＮアーゼＢに等しいことを示 す為に、市販のストレプトナーゼの代わりに精製したＤＮアーゼＢ酵素が、スト レプトナーゼＢ検定（Ｓｔｒｅｐｔｏｎａｓｅ Ｂ ａｓｓｅｙ）に用いられた 。ボストン バイオメディカ（Ｂｏｓｔｏｎ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａ）（ボストン、マサチュー セッツ（Ｂｏｓｔｏｎ，ＭＡ））の１０人の患者のサンプルを、ストレプトナー ゼＢ ディアグノスティック キット（Ｓｔｒｅｐｔｏｎａｓｅ Ｂ ｄｉａｇ ｎｏｓｔｅｉｃ ｋｉｔ）の使用方法に従って試験した。又、同じサンプルを、 組換えストレプトナーゼＢと同じヌクレアーゼ活性を示すように希釈された精製 組換えＤＮアーゼＢを用いて試験した。結果は表２及び、図８に相関曲線の形式 でグラフとして示す。 例１１ 精製された天然ＤＮアーゼＢ分裂促進活性の欠如 精製された天然ＤＮアーゼＢがヒトリンパ球分裂促進分析での分裂促進活性を 有するか否かについて決定するために、精製された天然のストレプトコッカス ピオジェンス ＤＮアーゼＢのさまざまな断片が、Ｔ．Ｙｕｔｓｕｄｏらによって 用いられた”ストレプトコッカス ピオジェンスから産生された分裂促進要素の 新しいタイプ”ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．３０８：３０−３４（１９９２）の方法と 同様な分裂促進検定によってテストされた。分裂促進活性に対するＤＮアーゼＢ のテストのために、製造業者によって説明されるように完成されたフィコル−ペ イク（Ｆｉｃｏｌｌ−Ｐａｑｕｅ）（ファーマシア（Ｐｈａｒｍａｃｉａ））の 一段階勾配手順を使ってヒトリンパ球が分離された。リンパ球は１０⁵細胞／ウ エルの濃度でマイクロタイタープレート（９６ウエル）の中に置かれた。湿った 雰囲気での成長の３日後：３７℃、５％ＣＯ₂、でトリチエイト化されたチミジ ンの１μＣｉ（アメルシャム、アーリントン ハイツ、ＩＬ、１ｍＣｉ／ｍｌで ）がそれぞれのウエルに加えられた。付加的な２４日の成長後、細胞は、１０％ 胎児の牛血清でＭＥＭメディアに溶かされた１００ｍＭ ＥＤＴＡの２０μｌを 使ったグラスチューブに移された。１０％胎児の牛血清を有する、付加的なＭＥ Ｍの２００μｌでウエルを洗った後、５００μｌの１０％トリクロロ酢酸（ＴＣ Ａ）がそれぞれのグラスチューブに混入されたトリチエイト化されたチミジンを 促進するために加えられた。ＴＣＡ／細胞 混合物はグラスフィルター（シュラ イヒャー アンド シュール、キーン、ＮＨ）でのろ過の前２０分間氷上でイン キュベートさ せておいた。乾燥及びシンチレーターによる計測に先だって、フィルターはさら に５％ＴＣＡと１００％エタノールで洗われた。コンカナバリンＡ（１μｇ／ｍ ｌから１００μｇ／ｍｌが望ましい）は、分裂促進活性のポジティブコントロー ルに使われた。 大腸菌のＤＮアーゼＩ、例３のヘパリン−セパロース断片、例３の精製された 断片ＩとＩＩ、及び例３の組換えストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼ Ｂに対する結果を図９に示す。精製された断片ＩとＩＩの両方とも、組換えＤＮ アーゼＢと同様に分裂促進活性とは実質的に関係しない（ｆｒｅｅ ｏｆ）こと を結果は示している。ヘパリン−セパロース断片は検出し得る分裂促進活性をも っていたが、そしてそれはさらなる精製によって除かれた。このことはいかなる 分裂促進活性もＤＮアーゼＢプロテインの中にはなく、１つかそれ以上の汚染菌 の中に存することを示している。 例１２ 天然のＤＮアーゼＢと同様に導かれた大腸菌中のＤＮアーゼＢを発現するベク ターの構造 例５と６に記載された遺伝構造は、自然操作位置から１アミノ酸上のアミノ酸 から処理された、天然ＤＮアーゼＢプロテインと異なる大腸菌中の組換えＤＮア ーゼＢを導いた。大腸菌中に完全に処理された自然のＤＮアーゼＢとほとんど同 様な組換えＤＮアーゼＢを作るために、遺伝構造はこの”余分な”アミノ酸４３ のアルギニン（Ａｌａ−Ａｒｇ−Ｇｌｎ−Ｔｈｒ−Ｇｌ−Ｖａｌ）を削ることに より作られた。この構造はポリメラーゼチェインリアクション法（ＰＣＲ）を用 いてλ２−６クローンの中のＤＮアーゼＢ遺伝子へ修飾末端を組入れることによ ってなされた。次のオリゴヌクレオチ ドは製造者の推薦に従いファーマシアジーンアセンンブラーとＤＮＡシンセサイ ザー上でデザインされ合成された。 これらのオリゴヌクレオチドは、製造者の指示に従って、アンプリタック キ ッド（パーキン−エルマー−セタス、ノルオーク、ＣＴ）を使ったＰＣＲ法でプ ライマーとして使われた。最終的なＭｇＣｌ₂濃度は４ｍＭに調整され、パーキ ン−エルマー４８０熱循環機を用いて２０サイクルの反応がなされた（３７℃、 ２分；７２℃、３分；９５℃、２分）。ｇｔ１１クローン２−６（１００ｎｇ） のＤＮＡはそれぞれのプライマーの２００μＭと一緒にテンプレートとして使わ れた。その結果得られた増幅生産物はΔ３３発現ベクターの中に挿入される前にＢａｍ ＨＩとＳａｌＩでさらに消化さ れた。これらの操作は図１０（配列番号１４）で示されるように、λｐＬプロモ ーターによって調整される配列で、翻訳融合を作り出した。Ｃ ６００ Ｃｌ＋ 、ｇａｌ Ｋ− バクテリアは、連結反応混合物で形質転換され、ＬＢ− Ａｍ ｐ プレートへのせられた。その後ＤＮＡのミニプリパレーション（Ｆ．Ｍ．ア ウスベルら．、編集．、”分子生物学の現在のプロトコル”（ジョン ウイリー 、１９８７）セクション１．６）がなされ、さらにプラスミドが組換えＤＮアー ゼＢ断片を含むかどうかを決定するために酵素ＢａｍＨＩとＳａｌＩでプラスミ ドを切断した。所望の構造のプラスミドはさらにＡＲ１２０宿主の変種に形質転 換された。組換えＤＮアーゼＢを含むプラスミドを持つこれらの宿主細胞はナリ デキシック酸プロトコール（モットら．、上記参照）を経て誘導させられた。形 質転換されたＡＲ１２０を含むコロニーは寒天プレートからとり上げられてスー パーブロスに植えつけられ（ベース：１２ｇイースト抽出物、５ｍｌグリセロー ル、蒸留水９００ｍｌ；ベース１リッター当たりの塩：１．７ｇＫ₂ＨＰＯ₄とイ オン交換されたＨ₂Ｏ １００ｍｌ中の無水Ｋ₂ＨＰＯ₄１５．８ｇと１００μｇ ／ｍｌアンピシリン）、そして３７℃で６００ｎｍで培地の光学濃度が０．４と 等しくなるまで成長された。 その後、ナリジキシン酸を、接種したミクスチャーに最終濃度６０μｇ／ｍｌ で加えた。培養液は３７℃で約８時間、あるいは一晩（およそ１６時間）インキ ュベートした。すべてのセルの断片は、培養液の上澄み、音波処理したセルのペ レット及び音波処理したセルのペレットの上澄みを含めて、ＤＮアーゼＢ活性を 検定した。一晩の誘導によってＤＮアーゼＢは大腸菌セルの外に分泌された。Ｄ ＮアーゼＢの量は、ポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＰＡＧＥ）においてクー マシー染色で見えるようになるに十分であった。ＩＥＦ（３−９）ゲルは泳動さ れ、銀色に着色した。先のｐＬプロモーターより下のクローンと比較して、ｐＩ の、より酸性側への明らかな変化があった。 例１３ アルギニン削除構造の精製とアミノ酸配列の解析 例１２で述べた組換型ＤＮアーゼＢクローンの生長と精製は例６で述べたと同 様に行った。アミノ酸配列はベックマン マイクロシーケンシング システム ２０２０／Ｇｏｌｄを用いて決定した。このアミノ酸配列は （配列番号１６）と決定された。この配列の解析はアルギニン削除構造の開裂生 成物（cleavage product）がストレプトコッカス ピオジェンスで生成された天 然ＤＮアーゼＢプロテインと一致していることを示している。 例１４ ＤＮアーゼＢのカノレボキシレートラテックス粒子への結合 （予期される例） カルボキシレートラテックス粒子（Interfacial Dynamics Corp.）はＤＮアー ゼＢに結合する。この粒子は高密度カルボキシレートラテックス粒子をいう。こ の粒子は典型的には界面活性のない蒸留水中でおよそ４％の固体として生成され る。２９ｎｍと１７ｎｍの両方の直径の粒子を用いることができる。 ラテックス粒子（５ｍｌ）はｐＨ７．７５で０．１Ｍ重炭酸ナトリウム緩衝液 で２倍に希釈する。氷冷、攪拌しながらラテックス粒子のカルボキシル基を水溶 性カルボジイミド、１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジ イミド（ＥＤＡＣ）によって活性化する。２０ｍｇ／ｍｌのＥＤＡＣ溶液を調製 し、一定の攪拌下で最終濃度１０ｍＭまでラッテクス粒子に添加する。ＥＤＡＣ 添加後、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド（ＮＨＳ）（８０ｍｇ／ｍｌ溶液）を最 終濃度７０ｍＭまで加える。ラテックス粒子溶液は結合試薬添加後、懸濁する。 この溶液はその後、氷冷下、１時間攪拌される。 過剰の試薬を１０℃で３０分間ベックマン Ｊ２−２１Ｍ、ＪＡ２０ ロータ ーで１８，０００ｒｐｍで遠心分離によって分離する。上澄みは移す。ラテック ス粒子は１％のTween-20と５ｍｇ／ｍｌの組換型ＤＮアーゼＢを含む１０ｍｌの リン酸塩緩衝塩溶液（ＰＢＳ）で再び懸濁される。Heat Systems-Ultrasonics I nc．モデルＷ−３８５の音波処理機で約１〜２分、緩やかに音波処理すると、小 さな固まりが分散する。マイクロチップを用い、２に設定する。反応混合物は室 温で約２０時間からわずかにかき回される。 未結合のＤＮアーゼＢは、３０分間、ベックマン Ｌ８−７０、 Ｔｉ６０ ローターで３０，０００ｒｐｍの超遠心分離によって除かれる。上澄みは除く。 ラテックス粒子は１０ｍｌのＰＢＳで再び懸濁される。上記と同じ設定で約１〜 ２分間音波処理することにより、小さなかたまりが分散する。ＰＢＳを上記の超 遠心分離で分離する。洗浄したラテックス粒子は１０ｍＬ ＰＢＳ＋０．０１％ ナトリウムアジドで再び懸濁される。一方、未結合ＤＮアーゼＢはサイズ排除ク ロマトグラフィーによって除かれる。最終的なＤＮアーゼＢラテックス粒子スト ック（約２％）は、検定に使用するため希釈されるまで４℃で保存される。 発明の利点 本発明は、ストレプトコッカス ピオジェンスを大量に生長する必要がなく、 費用のかかる危険な方法を要しない、高度に精製されたストレプトコッカス ピ オジェンス ＤＮアーゼＢ酵素を得る方法を提供する。前記酵素は、ストレプトコ ッカス ピオジェンス の前記酵素以外のタンパク質から精製する必要がなく得ら れ、むしろ、組換えファージに感染した大腸菌又は適当な発現ベクターにトラン スフェクトされた大腸菌から精製される。発現ベクターは、発現を最適にするよ うに選択される。 前記ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢは、ＤＮアーゼＢに特異 的なアッセイで血清中の抗ＤＮアーゼＢ抗体を検定するために用いられる。特に 、精製されたＤＮアーゼＢが入手できる ことにより、固相に吸着した精製された酵素を用いるＥＬＩＳＡアッセイの使用 が可能となり、そのアッセイは広範な用途に適しており、かつ、容易、簡便に行 うことができるものである。前記アッセイはまた、高感度で特異的である。その ようなアッセイは、ストレプトコッカス ピオジェンス感染を検出する臨床用途 に特に適したものである。 本発明をそのいくつかの好ましい形態に関して詳細に説明したが、その他の形 態も可能である。よって、添付の請求の範囲の精神及び範囲は、ここに含まれる 好ましい形態の記載に限定されるべきものではない。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ Ｃ１２Ｎ 1/21 7804−4Ｂ Ｃ１２Ｎ 1/21 9/22 8827−4Ｂ 9/22 Ｃ１２Ｐ 21/08 9358−4Ｂ Ｃ１２Ｐ 21/08 Ｇ０１Ｎ 33/569 0276−2Ｊ Ｇ０１Ｎ 33/569 Ｆ 33/573 0276−2Ｊ 33/573 // Ａ６１Ｋ 39/02 9284−4Ｃ Ａ６１Ｋ 39/02 39/395 9284−4Ｃ 39/395 Ｄ (Ｃ１２Ｎ 15/09 ＺＮＡ Ｃ１２Ｒ 1:46） (Ｃ１２Ｎ 1/21 Ｃ１２Ｒ 1:19） (Ｃ１２Ｎ 9/22 Ｃ１２Ｒ 1:19） (Ｃ１２Ｎ 9/22 Ｃ１２Ｒ 1:46） (72)発明者 パン、パティー ピー ワイ アメリカ合衆国 91701 カリフォルニア 州 アルタ ロマ サウスリッジ ドライ ヴ 10354 (72)発明者 ベレイ、シー マリナ アメリカ合衆国 92804 カリフォルニア 州 アナハイム ウエスト セリトス 2631

Claims (1)

1. 【特許請求の範囲】 １．（ｉ）図４に示されたステレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素 及び（ｉｉ）Ｓ．ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素と機能的に同等の配列をコード 化する配列からなる群から選ばれたアミノ酸配列をコード化するＤＮＡを含有し 、そのＤＮＡは図４のアミノ酸配列又は、Ｓ．ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素の アミノ末端に融合したリーダーペプチド以外のＳ．ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵 素の機能的同等物をコード化しないＤＮＡを実質的に含有しない、実質的に精製 されたＤＮＡ。 ２．ＤＮＡが、さらに、Ｓ．ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素のアミノ末端に融合 した、リーダーペプチドをコード化するＤＮＡ配列を有する請求項１記載のＤＮ Ａ。 ３．図３のヌクレオチド配列を有する請求項１記載のＤＮＡ。 ４．適するバクテリア宿主セルと適合性のある少なくとも１個の対照配列に作用 しうるように連結した、請求項１のＤＮＡ配列を含む、ストレプトコッカス ピ オジェンス ＤＮアーゼＢ酵素用の発現ベクター。 ５．適するバクテリア宿主セルと適合性のある少なくとも１個の対照配列に作用 しうるように連結した、請求項３のＤＮＡ配列を含む、ストレプトコッカス ピ オジェンス ＤＮアーゼＢ酵素用の発現ベクター。 ６．そのストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素をコード化するＤ ＮＡがバクテリオファージλからの少なくとも１つの配列に連結した請求項４の ベクター。 ７．そのストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素をコ ード化するＤＮＡがバクテリオファージλからの少なくとも１つの配列に連結し た請求項５のベクター。 ８．検知できる量において、請求項４の発現ベクター内に組み込まれたＤＮＡに よってコード化されたストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢを、形質 転換バクテリア宿主セルに発現させるように、請求項４の発現ベクターで形質転 換された、バクテリア宿主セル。 ９．検知できる量において、請求項５の発現ベクター内に組み込まれたＤＮＡに よってコード化されたストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢを形質転 換バクテリア宿主セルに発現させるように、請求項５の発現ベクターで形質転換 された、宿主セル。 １０．図４のアミノ酸配列を有するタンパク質を含有する、実質的に精製されたＳ．ピオジェンス ＤＮアーゼＢ酵素。 １１．次の各段階 （ａ）請求項８のバクテリア宿主セルを培養する （ｂ）培養したバクテリア宿主セルをＤＮアーゼＢ酵素を発現させるために使用 する、そして （ｃ）培養したバクテリア宿主セルから、目的の酵素を精製するを有する実質的 に精製されたストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素の製造方法。 １２．次の各段階 （ａ）請求項９のバクテリア宿主セルを培養する （ｂ）培養したバクテリア宿主セルをＤＮアーゼＢ酵素を発現させるために使用 する、そして （ｃ）培養したバクテリア宿主セルから、目的の酵素を精製する を有する実質的に精製されたストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵 素の製造方法。 １３．請求項１１の方法により調製されたストレプトコッカス ピオジェンスＤ ＮアーゼＢ酵素。 １４．請求項１２の方法により調製されたストレプトコッカス ピオジェンスＤ ＮアーゼＢ酵素。 １５．そのアミノ末端で、リーダーペプチドと融合しており、そのリーダーペプ チドが配列 （配列番号１）を有するストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素。 １６．アミノ酸配列が図４に示される、少なくとも１つの下記に示される突然変 異が起きた、アミノ酸配列を有するタンパク質の突然変異種であって、その変異 種は低減または増強されたＤＮアーゼＢ活性又は変更された別の性質を有する突 然変異種。 （ａ）図４の配列から１個以上のアミノ酸が削除されていること。 （ｂ）図４の配列中に、１個以上の天然に発生するＬ−アミノ酸が挿入されてい ること。 （ｃ）交互に、天然に起こるＬ−アミノ酸で図４のアミノ酸の少なくとも１つを 置換すること。 １７．天然のＳ．ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素の抗原反応性を実質的に維持す る突然変異種である請求項１６の突然変異種のタンパク質。 １８．請求項３の、Ｓ．ピオジェンスＤＮアーゼＢ ＤＮＡ配列の 少なくとも一部であって、別の遺伝子と融合し、その融合が検知しうるような、 請求項３の配列の性質を変更させた性質を有する転写融合体。 １９．請求項３の、Ｓ．ピオジェンスＤＮアーゼＢタンパク質配列によって、そ のためにコード化されたタンパク質の少なくとも一部であって、別のタンパク質 を融合し、その融合が請求項３の配列によってコード化されたタンパク質の性質 を検知できるような性質に変更させたもである翻訳融合体。 ２０．（１）ストレプトコッカスＤＮアーゼＢ酵素及び（２）そのアミノ末端に ソーダーペプチドが融合したストレプトコッカスＤＮアーゼＢ酵素以外のタンパ ク質を実質的に含有しない、マイトジエン活性を実質的に有しない精製タンパク 質である、実質的に精製された、ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼ Ｂ酵素。 ２１．Ｓ．ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素のフラクションＩを含有し、Ｓ．ピオ ジェンス ＤＮアーゼＢ酵素のフラクションIIを実質的に含有しない、請求項２０ の実質的に精製されたストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素。 ２２．Ｓ．ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素のフラクションIIを含有し、Ｓ．ピオ ジェンス ＤＮアーゼＢ酵素のフラクションＩを実質的に含有しない請求項２０の 実質的に精製されたストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素。 ２３．（ａ）第１溶出液を得るためにジエチルアミノエチルセルロースへの吸収 及びそれからの溶出と、 （ｂ）第２溶出液を得るためにフェニルアガロース上で第１溶出液をクロマトグ ラフィーに付し、 （ｃ）第３溶出液を得るためにヘパリンアガロース上で第２溶出液をクロマトグ ラフィーに付し、そして （ｄ）実質的に精製されたＤＮアーゼＢ酵素を得るために第３溶出液をクロマト フォーカシーングに付すこと を有してなる実質的に精製されたストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼ Ｂ酵素の調製方法。 ２４．逆相高圧液体クロマトグラフィーにより、実質的に精製されたＤＮアーゼ Ｂをさらに精製する工程を有する請求項２３の方法。 ２５．請求項２３の方法により製造された実質的に精製されたストレプトコッカ ス ピオジェンス ＤＮアーゼＢ酵素。 ２６．ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素のアミノ酸のアミノ 末端２３をコード化するＤＮＡ配列とハイブリッド化し、その中にリーダー配列 のどのような部分も包含せず、約３０％を越える不適正部を有しない一本鎖核酸 プローブ。 ２７．請求項１３のストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素と特異 的に結合する抗体。 ２８．請求項１４のストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素と特異 的に結合する抗体。 ２９．請求項２０のストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素と特異 的に結合する抗体。 ３０．請求項２５のストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素と特異 的に結合する抗体。 ３１．請求項１３のストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素と特異 的に結合するモノクローナル抗体。 ３２．請求項１４のストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼ Ｂ酵素と特異的に結合するモノクローナル抗体。 ３３．請求項２０のストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素と特異 的に結合するモノクローナル抗体。 ３４．請求項２５のストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素と特異 的に結合するモノクローナル抗体。 ３５．次の各段階 （ａ）抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ抗体を含むと思われる 試験サンプルをとり、 （ｂ）試験サンプルに、請求項１３のストレプトコッカスＤＮアーゼＢ酵素を、 試験サンプル中で抗ＤＮアーゼ抗体による酵素活性の抑制が存在しないで酵素活 性を検出できるレベルを得るに十分な量だけ添加し、そして （ｃ）酵素アッセイを行って、試験サンプル中の抗ストレプトコッカス ピオジ ェンス 抗体を検出及び／又は測定することにより、試験サンプル中のＤＮアーゼ Ｂ酵素の活性レベルを測定する、 を有する試験サンプル中の抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ抗 体を検出及び／又は測定する方法。 ３６．次の各段階 （ａ）抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ抗体を含むと思われる 試験サンプルをとり、 （ｂ）試験サンプルに、請求項１４のストレプトコッカスＤＮアーゼＢ酵素を、 試験サンプル中で抗ＤＮアーゼ抗体による酵素活性の抑制が存在しないで酵素活 性を検出できるに十分な量だけ添加し、そして （ｃ）試験サンプル中の抗ストレプトコッカス ピオジェンス抗体 を検出及び／又は測定することにより、試験サンプル中のＤＮアーゼＢ酵素のレ ベルを測定する、 を有する試験サンプル中の抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ抗 体を検出及び／又は測定する方法。 ３７．次の各段階 （ａ）抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ抗体を含むと思われる 試験サンプルをとり、 （ｂ）試験サンプルに請求項２０のストレプトコッカスＤＮアーゼＢ酵素を、試 験サンプル中で抗ＤＮアーゼ抗体による酵素活性の抑制が存在しないで酵素活性 を検出しうるレベルを得るに十分な量だけ添加し、そして （ｃ）酵素アッセイを行って、試験サンプル中の抗ストレプトコッカス ピオジ ェンス 抗体を検出及び／又は測定することにより、試験サンプル中のＤＮアーゼ Ｂ酵素の活性レベルを測定する、 を含んでなる試験サンプル中の抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼ Ｂ抗体を検出及び／又は測定する方法。 ３８．試験サンプル中の抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ抗体 を検出及び／又は測定する方法であって、 （ａ）抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ抗体を含むと思われる 試験サンプルをとり、 （ｂ）試験サンプルに請求項２５のストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアー ゼＢ酵素を、試験サンプル中で抗ＤＮアーゼＢ抗体による酵素活性の抑制が存在 しないで酵素活性を検出し得るレベルで生ずるのに十分な量だけ加え、そして （ｃ）酵素アッセイを行って、試験サンプル中の抗ストレプトコッ カス ピオジェンス 抗体を検出及び／又は測定することにより、試験サンプル中 のＤＮアーゼＢ酵素の活性のレベルを測定する 各段階を含んでなる方法。 ３９．試験サンプル中の抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ抗体 を検出及び／又は測定する方法であって、 （ａ）請求項１３記載のストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素を 固体支持体に結合し、 （ｂ）抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ抗体を含むと思われる 試験サンプルを、固体支持体に結合したストレプトコッカス ピオジェンスＤＮ アーゼＢ酵素と反応させて、前記抗体を前記酵素そしてそれによって前記固体支 持体に結合させ、そして （ｃ）固体支持体に結合した酵素を検出して、試験サンプル中の前記抗体を検出 及び／又は測定する 各工程を含んでなる方法。 ４０．試験サンプル中の抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ抗体 を検出及び／又は測定する方法であって、 （ａ）請求項１４記載のストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素を 固体支持体に結合し、 （ｂ）抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ抗体を含むと思われる 試験サンプルを、固体支持体に結合したストレプトコッカス ピオジェンスＤＮ アーゼＢ酵素と反応させて、前記抗体を前記酵素そしてそれによって前記固体支 持体に結合させ、そして （ｃ）固体支持体に結合した酵素を検出して、試験サンプル中の前記抗体を検出 及び／又は測定する 各工程を含んでなる方法。 ４１．試験サンプル中の抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ抗体 を検出及び／又は測定する方法であって、 （ａ）請求項２０記載のストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素を 固体支持体に結合し、 （ｂ）抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ抗体を含むと思われる 試験サンプルを、固体支持体に結合したストレプトコッカス ピオジェンスＤＮ アーゼＢ酵素と反応させて、前記抗体を前記酵素そしてそれによって前記固体支 持体に結合させ、そして （ｃ）固体支持体に結合した酵素を検出して、試験サンプル中の前記抗体を検出 及び／又は測定する 各工程を含んでなる方法。 ４２．試験サンプル中の抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ抗体 を検出及び／又は測定する方法であって、 （ａ）請求項２５記載のストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ酵素を 固体支持体に結合し、 （ｂ）抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ抗体を含むと思われる 試験サンプルを、固体支持体に結合したストレプトコッカス ピオジェンスＤＮ アーゼＢ酵素と反応させて、前記抗体を前記酵素そしてそれによって前記固体支 持体に結合させ、そして （ｃ）固体支持体に結合した酵素を検出して、試験サンプル中の前記抗体を検出 及び／又は測定する 各工程を含んでなる方法。 ４３．試験サンプル中の抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ抗体 を検出及び／又は測定する方法であって、 （ａ）請求項１３記載のＤＮアーゼＢの緩衝溶液を調製し、 （ｂ）ＤＮアーゼＢ緩衝溶液を、抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアー ゼＢ抗体を含むと思われる試験サンプルと反応させ、そして （ｃ）溶液の光吸収及び／又は光散乱の変化を観察及び／又は測定することによ ってＤＮアーゼＢと抗ＤＮアーゼＢ抗体との反応を検出する 各工程を含んでなる方法。 ４４．試験サンプル中の抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ抗体 を検出及び／又は測定する方法であって、 （ａ）請求項１４記載のＤＮアーゼＢの緩衝溶液を調製し、 （ｂ）ＤＮアーゼＢ緩衝溶液を、抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアー ゼＢ抗体を含むと思われる試験サンプルと反応させ、そして （ｃ）溶液の光吸収及び／又は光散乱の変化を観察及び／又は測定することによ ってＤＮアーゼＢと抗ＤＮアーゼＢ抗体との反応を検出する 各工程を含んでなる方法。 ４５．試験サンプル中の抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ抗体 を検出及び／又は測定する方法であって、 （ａ）請求項２０記載のＤＮアーゼＢの緩衝溶液を調製し、 （ｂ）ＤＮアーゼＢ緩衝溶液を、抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアー ゼＢ抗体を含むと思われる試験サンプルと反応させ、そして （ｃ）溶液の光吸収及び／又は光散乱の変化を観察及び／又は測定することによ ってＤＮアーゼＢと抗ＤＮアーゼＢ抗体との反応を検 出する 各工程を含んでなる方法。 ４６．試験サンプル中の抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ抗体 を検出及び／又は測定する方法であって、 （ａ）請求項２５記載のＤＮアーゼＢの緩衝溶液を調製し、 （ｂ）ＤＮアーゼＢ緩衝溶液を、抗ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアー ゼＢ抗体を含むと思われる試験サンプルと反応させ、そして （ｃ）溶液の光吸収及び／又は光散乱の変化を観察及び／又は測定することによ ってＤＮアーゼＢと抗ＤＮアーゼＢ抗体との反応を検出する 各工程を含んでなる方法。 ４７．ＤＮアーゼＢ以外のタンパク質を発現するための元来ストレプトコッカス ピオジェンス ＤＮアーゼＢ遺伝子に関するプロモーターを使用する方法であっ て、 （ａ）元来ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ遺伝子に関するプロ モーターをストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ遺伝子から分離し、 （ｂ）前記プロモーターをＤＮアーゼＢのための遺伝子以外のストレプトコッカ ス ピオジェンス タンパク質のための構造遺伝子に操作的に結合し、そして （ｃ）前記構造遺伝子によってコード化されたタンパク質を発現する ことを含んでなる方法。 ４８．タンパク質がストレプトコッカス ピオジェンス中に発現さ れる請求項４７記載の方法。 ４９．タンパク質がストレプトコッカス ピオジェンス以外の原核生物中に発現 される請求項４８記載の方法。 ５０．元来ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢに関するプロモータ ー配列から誘導された、実質的に精製されたプロモーター配列であって、配列中 に転写開始部位とバイテリアプロモーターの共通部−１０及び−３５部位に相同 な部位とを含んでなる配列。 ５１．原核生物中にタンパク質を発現するためのストレプトコッカス ピオジェ ンス ＤＮアーゼＢ酵素に関するリーダーペプチドを使用する方法であって、 （１）融合されたＤＮＡが、タンパク質のアミノ末端にリーダーペプチドが存在 する単一の読み枠によって組換えタンパク質をコードするように、配列 を有するリーダーペプチドをコードするＤＮＡに対するタンパク質をコードする ＤＮＡを融合し、 （２）融合されたＤＮＡを原核生物中に導入し、そして （３）組換えタンパク質が回収可能な量で生産されるように融合ＤＮＡを原核生 物中に発現させる ことを含んでなる方法。 ５２．原核生物が大腸菌である請求項５１記載の方法。 ５３．原核生物がスタフィロコッカス、ストレプトコッカス及びストレプトミセ ス 種から選ばれるグラム陽性菌である請求項５１記載 の方法。 ５４．組換えタンパク質が原核生物の培養基中に排出される請求項５１記載の方 法。 ５５．ストレプトコッカス ピオジェンスの感染に対して哺乳動物を免疫化する 方法であって、哺乳動物に、請求項１３の精製されたストレプトコッカス ピオ ジェンス ＤＮアーゼＢ酵素を、ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ に特異的な抗体の生産を刺激するのに十分な量投与することを含んでなる方法。 ５６．ストレプトコッカス ピオジェンスの感染に対して哺乳動物を免疫化する 方法であって、哺乳動物に、請求項１４の精製されたストレプトコッカス ピオ ジェンス ＤＮアーゼＢ酵素を、ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ に特異的な抗体の生産を刺激するのに十分な量投与することを含んでなる方法。 ５７．ストレプトコッカス ピオジェンスの感染に対して哺乳動物を免疫化する 方法であって、哺乳動物に、請求項１７の精製されたストレプトコッカス ピオ ジェンス 変異ＤＮアーゼＢ酵素を、ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアー ゼＢに特異的な抗体の生産を刺激するのに十分な量投与することを含んでなる方 法。 ５８．ストレプトコッカス ピオジェンスの感染に対して哺乳動物を免疫化する 方法であって、哺乳動物に、請求項２０の精製されたストレプトコッカス ピオ ジェンス ＤＮアーゼＢ酵素を、ストレプトコッカス ピオジェンスＤＮアーゼＢ に特異的な抗体の生産を刺激するのに十分な量投与することを含んでなる方法。 ５９．ストレプトコッカス ピオジェンスの感染に対して哺乳動物を免疫化する 方法であって、哺乳動物に、請求項２５の精製されたストレプトコッカス ピオジェンス ＤＮアーゼＢ酵素を、ストレプトコッカス ピオジェンス ＤＮアーゼＢに特異的な抗体の生産を刺激するのに十分な量投与す ることを含んでなる方法。 ６０．嚢胞性線維症の患者の嚢胞性線維症を治療する方法であって、 （ａ）請求項１３の精製された酵素活性なＤＮアーゼＢ酵素のエーロゾルを生成 し、そして （ｂ）前記エーロゾルを嚢胞性線維症の患者に患者の肺流体粘性を減少するのに 十分な量投与する ことを含んでなる方法。 ６１．嚢胞性線維症の患者の嚢胞性線維症を治療する方法であって、 （ａ）請求項１４の精製された酵素活性なＤＮアーゼＢ酵素のエーロゾルを生成 し、そして （ｂ）前記エーロゾルを嚢胞性線維症の患者に患者の肺流体粘性を減少するのに 十分な量投与する ことを含んでなる方法。 ６２．嚢胞性線維症の患者の嚢胞性線維症を治療する方法であって、 （ａ）請求項２０の精製された酵素活性なＤＮアーゼＢ酵素のエーロゾルを生成 し、そして （ｂ）前記エーロゾルを嚢胞性線維症の患者に患者の肺流体粘性を減少するのに 十分な量投与する ことを含んでなる方法。 ６３．嚢胞性線維症の患者の嚢胞性線維症を治療する方法であって 、 （ａ）請求項２５の精製された酵素活性なＤＮアーゼＢ酵素のエーロゾルを生成 し、そして （ｂ）前記エーロゾルを嚢胞性線維症の患者に患者の肺流体粘性を減少するのに 十分な量投与する ことを含んでなる方法。