JPH07228542A - 不活化病原体の鶏用気管内投与ワクチン - Google Patents
不活化病原体の鶏用気管内投与ワクチンInfo
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- JPH07228542A JPH07228542A JP2088494A JP2088494A JPH07228542A JP H07228542 A JPH07228542 A JP H07228542A JP 2088494 A JP2088494 A JP 2088494A JP 2088494 A JP2088494 A JP 2088494A JP H07228542 A JPH07228542 A JP H07228542A
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Abstract
(57)【要約】
【目的】 気管内に抗原を投与することによって鶏の感
染症に対する有効な免疫を誘導する鶏伝染性ファブリキ
ウス嚢病ウイルスの不活化気管内投与ワクチンを提供す
る。 【構成】 ホルマリンにより不活化した鶏伝染性ファブ
リキウス嚢病ウイルスを主成分とする鶏伝染性ファブリ
キウス嚢病の予防用気管内投与ワクチン。
染症に対する有効な免疫を誘導する鶏伝染性ファブリキ
ウス嚢病ウイルスの不活化気管内投与ワクチンを提供す
る。 【構成】 ホルマリンにより不活化した鶏伝染性ファブ
リキウス嚢病ウイルスを主成分とする鶏伝染性ファブリ
キウス嚢病の予防用気管内投与ワクチン。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、不活化病原体を用い
て、鶏の感染症の予防に有効な免疫誘導を与えることが
できる気管内投与ワクチンに関するものである。
て、鶏の感染症の予防に有効な免疫誘導を与えることが
できる気管内投与ワクチンに関するものである。
【０００２】
【発明の背景及び従来技術】従来から、種々の動物の感
染症は生病原体及び不活化された病原体をワクチンよし
て用いて予防されており、その投与方法は生ワクチンで
は種々の方法が採用されているが、不活化ワクチンでは
通常、注射による方法が採用されていて、気管内投与に
よる方法は用いられていない。
染症は生病原体及び不活化された病原体をワクチンよし
て用いて予防されており、その投与方法は生ワクチンで
は種々の方法が採用されているが、不活化ワクチンでは
通常、注射による方法が採用されていて、気管内投与に
よる方法は用いられていない。
【０００３】そして鶏の感染症に対する投与ワクチン、
特にそのうちの具体的な鶏伝染性ファブリキウス嚢病ウ
イルス（以下「ＩＢＤＶ」と称す）、マイコプラズマパ
ラガリナラム（Mycoplasma gallisepticum）、ヘモフィ
ルスパラガリナラム（Haemophilus paragallinarum）Ａ
型についてのワクチンは、気管内投与法は全く採用され
ていないだけでなく、提案としてもされていない。
特にそのうちの具体的な鶏伝染性ファブリキウス嚢病ウ
イルス（以下「ＩＢＤＶ」と称す）、マイコプラズマパ
ラガリナラム（Mycoplasma gallisepticum）、ヘモフィ
ルスパラガリナラム（Haemophilus paragallinarum）Ａ
型についてのワクチンは、気管内投与法は全く採用され
ていないだけでなく、提案としてもされていない。
【０００４】しかし、不活化ワクチンを用いた注射によ
る投与は、１個体ずつ行わなければならないため非常に
手間がかかるという問題がある他、また針を刺すという
行為から鶏にストレスを与えることになり、経済的な負
担が大きいという問題がある。また不活化ワクチンは水
酸化アルミニウムゲル、燐酸アルミニウムゲルあるいは
オイルアジュバント等を有効成分に加えなければ十分な
効果が得られず、加えてその程度には差はあるが、これ
らの添加物が接種部位に炎症反応を引き起こしたり残留
したりして、食肉利用の際に廃棄される可能性もある。
る投与は、１個体ずつ行わなければならないため非常に
手間がかかるという問題がある他、また針を刺すという
行為から鶏にストレスを与えることになり、経済的な負
担が大きいという問題がある。また不活化ワクチンは水
酸化アルミニウムゲル、燐酸アルミニウムゲルあるいは
オイルアジュバント等を有効成分に加えなければ十分な
効果が得られず、加えてその程度には差はあるが、これ
らの添加物が接種部位に炎症反応を引き起こしたり残留
したりして、食肉利用の際に廃棄される可能性もある。
【０００５】
【発明が解決しようとする課題】本発明者は以上のよう
な従来技術の状況において、気管内に投与することによ
って鶏の感染症に対する有効な免疫を誘導することがで
きる不活化気管内投与ワクチンを提供することを目的と
してなされたものである。
な従来技術の状況において、気管内に投与することによ
って鶏の感染症に対する有効な免疫を誘導することがで
きる不活化気管内投与ワクチンを提供することを目的と
してなされたものである。
【０００６】
【課題を解決するための手段】上記目的を実現した本発
明の請求項１に記載の気管内投与ワクチンの特徴は、感
染鶏のファブリキウス嚢由来あるいは感染した培養細胞
由来の鶏伝染性ファブリキウス嚢病ウイルス（ＩＢＤ
Ｖ）をホルマリン不活化したものを主成分とするところ
にあり、この不活化病原体を主成分とするワクチンは、
気管内に投与することで用いられる。
明の請求項１に記載の気管内投与ワクチンの特徴は、感
染鶏のファブリキウス嚢由来あるいは感染した培養細胞
由来の鶏伝染性ファブリキウス嚢病ウイルス（ＩＢＤ
Ｖ）をホルマリン不活化したものを主成分とするところ
にあり、この不活化病原体を主成分とするワクチンは、
気管内に投与することで用いられる。
【０００７】このような不活化ＩＢＤＶを主成分とする
気管内投与ワクチンは、精製して用いる場合の他、注射
による投与ワクチンと同様に臓器由来成分、培養細胞由
来成分が混入していても用いることができ、他方注射に
よる投与ワクチンと比べて、水酸化アルミニウムゲル、
燐酸アルミニウムゲル、オイルアジュバントなどを添加
する必要がない。
気管内投与ワクチンは、精製して用いる場合の他、注射
による投与ワクチンと同様に臓器由来成分、培養細胞由
来成分が混入していても用いることができ、他方注射に
よる投与ワクチンと比べて、水酸化アルミニウムゲル、
燐酸アルミニウムゲル、オイルアジュバントなどを添加
する必要がない。
【０００８】また、本発明の請求項２に記載の気管内投
与ワクチンの特徴は、ホルマリン不活化したマイコプラ
ズマガリセプチカムを主成分とするところにあり、この
不活化病原体を主成分とするワクチンは、気管内に投与
することで用いられる。
与ワクチンの特徴は、ホルマリン不活化したマイコプラ
ズマガリセプチカムを主成分とするところにあり、この
不活化病原体を主成分とするワクチンは、気管内に投与
することで用いられる。
【０００９】このような不活化マイコプラズマガリセプ
チカムを主成分とする気管内投与ワクチンは、精製して
用いる場合の他、注射による投与と同様に培地成分が混
入していても用いることができるが、注射による投与ワ
クチンと比べて、水酸化アルミニウムゲル、燐酸アルミ
ニウムゲル、オイルアジュバントなどを添加する必要が
ない。
チカムを主成分とする気管内投与ワクチンは、精製して
用いる場合の他、注射による投与と同様に培地成分が混
入していても用いることができるが、注射による投与ワ
クチンと比べて、水酸化アルミニウムゲル、燐酸アルミ
ニウムゲル、オイルアジュバントなどを添加する必要が
ない。
【００１０】更に又本発明の請求項３に記載した気管内
投与ワクチンの特徴は、チメロサール、ホルマリン、β
−プロピオラクトン、マーゾニンから選択される不活化
剤を用いて不活化したヘモフィルスパラガリナルムＡ型
を主成分とするところにあり、この不活化病原体を主成
分とするワクチンは、気管内に投与することで用いられ
る。
投与ワクチンの特徴は、チメロサール、ホルマリン、β
−プロピオラクトン、マーゾニンから選択される不活化
剤を用いて不活化したヘモフィルスパラガリナルムＡ型
を主成分とするところにあり、この不活化病原体を主成
分とするワクチンは、気管内に投与することで用いられ
る。
【００１１】このような不活化ヘモフィルスパラガリナ
ルムＡ型を主成分とする気管内投与ワクチンは、精製し
て用いる場合の他、注射による投与ワクチンと同様に培
地成分を洗浄する際に使用されるＰＢＳ成分が混入して
いても用いることができるが、注射による投与ワクチン
と比べて、水酸化アルミニウムゲル、燐酸アルミニウム
ゲル、オイルアジュバントなどを添加する必要がない。
ルムＡ型を主成分とする気管内投与ワクチンは、精製し
て用いる場合の他、注射による投与ワクチンと同様に培
地成分を洗浄する際に使用されるＰＢＳ成分が混入して
いても用いることができるが、注射による投与ワクチン
と比べて、水酸化アルミニウムゲル、燐酸アルミニウム
ゲル、オイルアジュバントなどを添加する必要がない。
【００１２】本発明の上記各ワクチンを気管内投与する
方法は、カテーテルあるいはゾンデを用いて気管内に直
接投与する、また噴霧により投与する、凍結乾燥したワ
クチンの散布により投与する、発泡剤と混合して投与す
る等の方法を用いることができる。
方法は、カテーテルあるいはゾンデを用いて気管内に直
接投与する、また噴霧により投与する、凍結乾燥したワ
クチンの散布により投与する、発泡剤と混合して投与す
る等の方法を用いることができる。
【００１３】
【実施例】以下本発明の実施例に基づいて説明するが、
本発明がこの実施例に限定されるものでないことは言う
までもない。
本発明がこの実施例に限定されるものでないことは言う
までもない。
【００１４】実施例１不活化ＩＢＤＶ、９１−６株気管内投与ワクチンの製造 ５週齢のＳＰＦラインＭニワトリに９１−６株ＩＢＤＶ
（下記参照）を経口的に接種し、３日後、感染ニワトリ
のファブリキウス嚢を取り出し、細切した後、等量の燐
酸緩衝食塩水（ｐＨ７．２：以下「ＰＢＳ」と略記す
る）を加えてホモジナイズし、遠心にて組織の破片等を
除いた上清に０．２％になるようにホルマリンを加え、
３７℃で４８時間不活化し、その後、使用まで４℃の冷
蔵庫に保存した。 （９１−６株；高度病原性株） ［Z.Lin ，A.Kato，Y.Otaki ，T.Nakamura，E.Sasmaz，
and S.Ueda． Sequencecomparisons of a highly viru
lent infectious bursal disease virusprevalent in J
apan. Avian Diseases. 37:315-323，1993.T.Nakamur
a，A.Kato，Z.Lin ，T.Nunoya，Y.Otaki ，and S.Ued
a． A rapidquantitative method for detecting infe
ctious bursal disease virus usingpolystyrene latex
microsepheres. J.Virol. Mehods，43:123-130,1993
］ 実施例２不活化マイコプラズマガリセプチカム気管内投与ワクチ
ンの製造 マイコプラスマガリセプチカム（Mycoplasma gallisept
icum）ＳＡＳ株（下記参照）を液体培地にて３７℃、４
８時間培養した菌液に、ホルマリンを０．１％になるよ
うに加えて不活化した後、チメロサールを０．０１％に
なるように加え、４℃の冷蔵庫で保存した。
（下記参照）を経口的に接種し、３日後、感染ニワトリ
のファブリキウス嚢を取り出し、細切した後、等量の燐
酸緩衝食塩水（ｐＨ７．２：以下「ＰＢＳ」と略記す
る）を加えてホモジナイズし、遠心にて組織の破片等を
除いた上清に０．２％になるようにホルマリンを加え、
３７℃で４８時間不活化し、その後、使用まで４℃の冷
蔵庫に保存した。 （９１−６株；高度病原性株） ［Z.Lin ，A.Kato，Y.Otaki ，T.Nakamura，E.Sasmaz，
and S.Ueda． Sequencecomparisons of a highly viru
lent infectious bursal disease virusprevalent in J
apan. Avian Diseases. 37:315-323，1993.T.Nakamur
a，A.Kato，Z.Lin ，T.Nunoya，Y.Otaki ，and S.Ued
a． A rapidquantitative method for detecting infe
ctious bursal disease virus usingpolystyrene latex
microsepheres. J.Virol. Mehods，43:123-130,1993
］ 実施例２不活化マイコプラズマガリセプチカム気管内投与ワクチ
ンの製造 マイコプラスマガリセプチカム（Mycoplasma gallisept
icum）ＳＡＳ株（下記参照）を液体培地にて３７℃、４
８時間培養した菌液に、ホルマリンを０．１％になるよ
うに加えて不活化した後、チメロサールを０．０１％に
なるように加え、４℃の冷蔵庫で保存した。
【００１５】ＳＡＳ株（日生研ＭＧ不活化マワクチン
（商品名；日生研株式会社製）に使用されている株） 実施例３不活化鶏伝染性コリーザ（ＩＣ、Haemophilus paragall
inarum）Ａ型気管内投与ワクチンの製造 ヘモフィルスパラガリナラム（Haemophilus paragallin
arum）Ａ型の２２１株（下記参照）を倍地にて３７℃，
２０時間培養した後、８０００ｒｐｍで３０分遠心し、
その沈澱を、菌数が２．５×１０10になるようにＰＢＳ
（前出）に浮遊し、０．０１％になるようにチメロサー
ルを加えて不活化し、その後、使用まで４℃の冷蔵庫に
保存した。 （２２１株） ［日生研コリーザワクチン（商品名；日生研株式会社
製）に使用されている株 Otauki，K. and Y.Iritani. Preparation and immunolo
gical response to anew mixed vaccine composed of i
nactivated Newcastle disease virus ，inactivated i
nfectious bronchitis virus ，and inactivated Haemo
philusgallinarum. Avian Diseases. 18:297-304，197
4］ 以上のようにして製造した各気管内投与ワクチンについ
て、以下の試験１，２を行った。
（商品名；日生研株式会社製）に使用されている株） 実施例３不活化鶏伝染性コリーザ（ＩＣ、Haemophilus paragall
inarum）Ａ型気管内投与ワクチンの製造 ヘモフィルスパラガリナラム（Haemophilus paragallin
arum）Ａ型の２２１株（下記参照）を倍地にて３７℃，
２０時間培養した後、８０００ｒｐｍで３０分遠心し、
その沈澱を、菌数が２．５×１０10になるようにＰＢＳ
（前出）に浮遊し、０．０１％になるようにチメロサー
ルを加えて不活化し、その後、使用まで４℃の冷蔵庫に
保存した。 （２２１株） ［日生研コリーザワクチン（商品名；日生研株式会社
製）に使用されている株 Otauki，K. and Y.Iritani. Preparation and immunolo
gical response to anew mixed vaccine composed of i
nactivated Newcastle disease virus ，inactivated i
nfectious bronchitis virus ，and inactivated Haemo
philusgallinarum. Avian Diseases. 18:297-304，197
4］ 以上のようにして製造した各気管内投与ワクチンについ
て、以下の試験１，２を行った。
【００１６】試験例１については不活化後ラテックス凝
集価を下記の方法に準拠して測定すると共に、ＩＢＤ
Ｖに対する抗体価を下記方法に準拠して測定した。
集価を下記の方法に準拠して測定すると共に、ＩＢＤ
Ｖに対する抗体価を下記方法に準拠して測定した。
【００１７】 ＩＢＤＶのラテックス凝集反応による
抗原量の測定法 ［T.Nakamura，A.Kato，Z.Lin ，T.Nunoya，Y.Otaki, a
nd S.Ueda A rapidquantitative method for detecti
ng infectious bursal disease virus usingpolystyren
e latex microsepheres. J.Virol. Mehods，43:123-13
0,1993 ］ ＩＢＤＶのラテックス凝集阻害反応による抗体価の
測定法 ［T.Nakamura，Y.Otaki ，Z.Lin, and A.Kato. Rapid a
nd quantitative assaysystem for measuring anti-inf
ectious bursal disease virus antibody usingmonoclo
nal antibody bound polystylene latex microsphere
s.Avian Diseases ,37:1993 ］ 試験例２の凝集抗体の測定は、マイコプラズマ・ガリセ
プチカム急速凝集用菌液（商品名；日生研株式会社製）
を用いその使用方法に準拠した。
抗原量の測定法 ［T.Nakamura，A.Kato，Z.Lin ，T.Nunoya，Y.Otaki, a
nd S.Ueda A rapidquantitative method for detecti
ng infectious bursal disease virus usingpolystyren
e latex microsepheres. J.Virol. Mehods，43:123-13
0,1993 ］ ＩＢＤＶのラテックス凝集阻害反応による抗体価の
測定法 ［T.Nakamura，Y.Otaki ，Z.Lin, and A.Kato. Rapid a
nd quantitative assaysystem for measuring anti-inf
ectious bursal disease virus antibody usingmonoclo
nal antibody bound polystylene latex microsphere
s.Avian Diseases ,37:1993 ］ 試験例２の凝集抗体の測定は、マイコプラズマ・ガリセ
プチカム急速凝集用菌液（商品名；日生研株式会社製）
を用いその使用方法に準拠した。
【００１８】試験例１不活化ＩＢＤＶ気管内投与口ワクチンの抗体誘導能及び
感染防御試験 不活化後のラテックス凝集価が３２の実施例１のウイル
ス液の原液をそれぞれ０．５ｍｌ、（１／４）×０．５
ｍｌ、（１／１６）×０．５ｍｌおよび（１／６４）×
０．５ｍｌをＰＢＳで必要な場合は希釈して０．５ｍｌ
として、ＳＰＦニワトリ（ラインＭ、４週齢）、１群５
〜１０羽に２週間隔で２回投与した。
感染防御試験 不活化後のラテックス凝集価が３２の実施例１のウイル
ス液の原液をそれぞれ０．５ｍｌ、（１／４）×０．５
ｍｌ、（１／１６）×０．５ｍｌおよび（１／６４）×
０．５ｍｌをＰＢＳで必要な場合は希釈して０．５ｍｌ
として、ＳＰＦニワトリ（ラインＭ、４週齢）、１群５
〜１０羽に２週間隔で２回投与した。
【００１９】また、陽性対照として市販の不活化ワクチ
ンを２回筋肉内に注射した。
ンを２回筋肉内に注射した。
【００２０】初回免疫４週後に採血し、血清の抗体価を
ラテックス凝集阻害反応で測定した。また採血直後にＩ
ＢＤＶ、９０−１１株（１０4.5 ＥＩＤ50）を気管内投
与投与攻撃して生死及びファブリキウス嚢の病変を組織
学的に調べた。
ラテックス凝集阻害反応で測定した。また採血直後にＩ
ＢＤＶ、９０−１１株（１０4.5 ＥＩＤ50）を気管内投
与投与攻撃して生死及びファブリキウス嚢の病変を組織
学的に調べた。
【００２１】結果を表１に示す。
【００２２】
【表１】
【００２３】表１によれば、本発明の実施例１の不活化
ワクチンを２回投与された全ての鶏で、市販ワクチンと
同等以上の抗体産生が認められ、かつ全例が感染防御す
ることが分かった。
ワクチンを２回投与された全ての鶏で、市販ワクチンと
同等以上の抗体産生が認められ、かつ全例が感染防御す
ることが分かった。
【００２４】（９０−１１；高度病原性株） ［T.Nunoya，Y.Otaki ，M.Tajima，M.Hiraga，and T.Sa
ito. Occurrence ofacute infectious bursal disease
with high mortality in Japan andpathogenicity of f
ield isolates in specific-pathogen-free chickens.A
vian Diseaes ，36:597-609，1992。T.Nakamura，Y.Ota
ki ，and T.Nunoya. Immunosuppressive effct of ah
ighly virulent infectious bursal disease virus iso
lated in Japan.Avian Diseases. 36:891-896，1992］ 試験例２不活化マイコプラズマ気管内投与ワクチンの抗体誘導能
及び感染防御試験 菌数が２×１０11の菌液の原液それぞれ０．５ｍｌ，
０．０５ｍｌ，０．００５ｍｌ（順に１０11、１０10、
及び１０9 の菌が含まれている）をＰＢＳで希釈し０．
５ｍｌとして、ＳＰＦニワトリ（ラインＳ、４週齢）に
２週間隔で２回気管内投与した。
ito. Occurrence ofacute infectious bursal disease
with high mortality in Japan andpathogenicity of f
ield isolates in specific-pathogen-free chickens.A
vian Diseaes ，36:597-609，1992。T.Nakamura，Y.Ota
ki ，and T.Nunoya. Immunosuppressive effct of ah
ighly virulent infectious bursal disease virus iso
lated in Japan.Avian Diseases. 36:891-896，1992］ 試験例２不活化マイコプラズマ気管内投与ワクチンの抗体誘導能
及び感染防御試験 菌数が２×１０11の菌液の原液それぞれ０．５ｍｌ，
０．０５ｍｌ，０．００５ｍｌ（順に１０11、１０10、
及び１０9 の菌が含まれている）をＰＢＳで希釈し０．
５ｍｌとして、ＳＰＦニワトリ（ラインＳ、４週齢）に
２週間隔で２回気管内投与した。
【００２５】また陽性対照として不活化ワクチンを１回
筋肉内に注射した。
筋肉内に注射した。
【００２６】初回免疫４週後に採血し、血清の抗体価を
平板凝集阻害反応で測定した。採血直後に、Mycoplasma
gallisepticum ＳＡＳ株（菌数４×１０6 ）を気管内
接種攻撃し、２週間後に気管の組織病変をスコアリング
した。
平板凝集阻害反応で測定した。採血直後に、Mycoplasma
gallisepticum ＳＡＳ株（菌数４×１０6 ）を気管内
接種攻撃し、２週間後に気管の組織病変をスコアリング
した。
【００２７】結果を表２に示す。
【００２８】
【表２】
【００２９】表２によれば本発明の実施例２の不活化ワ
クチンを２回投与された全ての鶏で市販ワクチンと同等
以上の抗体産生が認められ、かつ全例が感染防御するこ
とがわかった。
クチンを２回投与された全ての鶏で市販ワクチンと同等
以上の抗体産生が認められ、かつ全例が感染防御するこ
とがわかった。
【００３０】試験例３不活化ＩＣ気管内投与口ワクチンの抗体誘導能及び感染
防御試験 菌数が２．５×１０10ｍｌの実施例３の菌液の原液のそ
れぞれ０．４ｍｌ、０．０４ｍｌ及び０．００４ｍｌ
（順に１０10、１０9 、及び１０8 の菌が含まれてい
る）をＰＢＳで希釈し０．５ｍｌとして、ＳＰＦニワト
リ（ラインＭ、６週齢）に２週間隔で２回気管内投与投
与した。
防御試験 菌数が２．５×１０10ｍｌの実施例３の菌液の原液のそ
れぞれ０．４ｍｌ、０．０４ｍｌ及び０．００４ｍｌ
（順に１０10、１０9 、及び１０8 の菌が含まれてい
る）をＰＢＳで希釈し０．５ｍｌとして、ＳＰＦニワト
リ（ラインＭ、６週齢）に２週間隔で２回気管内投与投
与した。
【００３１】また、陽性対照として不活化ワクチンを１
回筋肉内に注射した。
回筋肉内に注射した。
【００３２】初回免疫４週後に採血し、血清の抗体価を
赤血球凝集阻害反応で測定した。採血直後にHaemophilu
s paragallinarum Ａ型２２１株（菌数３×１０6 ）を
点鼻接種攻撃し、１週間観察した。発症は鼻汁あるいは
顔面の腫脹にて判定した。菌分離は鼻汁を出したニワト
リについては鼻汁より行い、鼻汁を出さなかったニワト
リ及び鼻汁から菌分離されなかったニワトリについては
攻撃１週後に眼窩下洞よりスワブを採取して行った。結
果を表３〜表５に示す。
赤血球凝集阻害反応で測定した。採血直後にHaemophilu
s paragallinarum Ａ型２２１株（菌数３×１０6 ）を
点鼻接種攻撃し、１週間観察した。発症は鼻汁あるいは
顔面の腫脹にて判定した。菌分離は鼻汁を出したニワト
リについては鼻汁より行い、鼻汁を出さなかったニワト
リ及び鼻汁から菌分離されなかったニワトリについては
攻撃１週後に眼窩下洞よりスワブを採取して行った。結
果を表３〜表５に示す。
【００３３】
【表３】
【００３４】
【表４】
【００３５】
【表５】
【００３６】表３〜表４によれば実施例３のワクチンを
１羽１回当たり１６×１０8 菌気管内投与されたニワト
リでは１２羽中８羽で抗体の上昇が認められ、１２羽全
てが感染防御することが明かとなった。また、１×１０
8 及び４×１０8 菌気管内投与されたニワトリでも抗体
価が上昇するものが現れ順に１２羽中９羽、１２羽中１
０羽が感染防御することが明かとなった。
１羽１回当たり１６×１０8 菌気管内投与されたニワト
リでは１２羽中８羽で抗体の上昇が認められ、１２羽全
てが感染防御することが明かとなった。また、１×１０
8 及び４×１０8 菌気管内投与されたニワトリでも抗体
価が上昇するものが現れ順に１２羽中９羽、１２羽中１
０羽が感染防御することが明かとなった。
【００３７】
【発明の効果】以上のように本発明の不活化気管内投与
ワクチンを用いて、従来の不活化ワクチンの注射による
免疫と同等の免疫誘導を得ることができる効果がある。
ワクチンを用いて、従来の不活化ワクチンの注射による
免疫と同等の免疫誘導を得ることができる効果がある。
【００３８】したがって、従来、いづれも注射によって
筋肉内に投与されていた鶏伝染性ファブリキウス嚢病、
マイコプラズマ感染症及び鶏伝染性コリーザの不活化ワ
クチンは、本発明の不活化気管内ワクチンを気管内投与
することによってそれぞれの病原体に対する抗体を誘導
して、感染症を有効に予防することができる。
筋肉内に投与されていた鶏伝染性ファブリキウス嚢病、
マイコプラズマ感染症及び鶏伝染性コリーザの不活化ワ
クチンは、本発明の不活化気管内ワクチンを気管内投与
することによってそれぞれの病原体に対する抗体を誘導
して、感染症を有効に予防することができる。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所 Ｃ１２Ｒ 1:92）
Claims (3)
- 【請求項１】 不活化した鶏伝染性ファブリキウス嚢病
ウイルスを主成分とする鶏伝染性ファブリキウス嚢病予
防用の鶏用気管内投与ワクチン。 - 【請求項２】 不活化したマイコプラズマガリセプチカ
ムを主成分とするマイコプラズマ病予防用の鶏用気管内
投与ワクチン。 - 【請求項３】 不活化したヘモフィルスパラガリナラム
Ａ型を主成分とする鶏伝染性コリーザＡ型予防用の鶏用
気管内投与ワクチン。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2088494A JPH07228542A (ja) | 1994-02-18 | 1994-02-18 | 不活化病原体の鶏用気管内投与ワクチン |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2088494A JPH07228542A (ja) | 1994-02-18 | 1994-02-18 | 不活化病原体の鶏用気管内投与ワクチン |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH07228542A true JPH07228542A (ja) | 1995-08-29 |
Family
ID=12039633
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2088494A Pending JPH07228542A (ja) | 1994-02-18 | 1994-02-18 | 不活化病原体の鶏用気管内投与ワクチン |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH07228542A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP1531861A2 (en) * | 2002-07-13 | 2005-05-25 | The University Of Georgia Research Foundation, Inc. | Mycoplasma gallisepticum formulation |
-
1994
- 1994-02-18 JP JP2088494A patent/JPH07228542A/ja active Pending
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP1531861A2 (en) * | 2002-07-13 | 2005-05-25 | The University Of Georgia Research Foundation, Inc. | Mycoplasma gallisepticum formulation |
| EP1531861A4 (en) * | 2002-07-13 | 2006-10-11 | Univ Georgia Res Found | MYCOPLASMA GALLISEPTICUM FORMULATION |
| US7217420B2 (en) | 2002-07-13 | 2007-05-15 | The University Of Georgia Research Foundation, Inc. | Mycoplasma gallisepticum formulation |
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