JPH07203978A - 新規微生物を用いるエリスリトールの製造方法 - Google Patents
新規微生物を用いるエリスリトールの製造方法Info
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- JPH07203978A JPH07203978A JP23969794A JP23969794A JPH07203978A JP H07203978 A JPH07203978 A JP H07203978A JP 23969794 A JP23969794 A JP 23969794A JP 23969794 A JP23969794 A JP 23969794A JP H07203978 A JPH07203978 A JP H07203978A
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Abstract
(57)【要約】
【構成】 オーレオバシディウムｓｐ．ＳＮ−１２４Ａ
菌株（ＦＥＲＭ Ｐ−８７４５）をグルコースなどの発
酵性糖類を主炭素源として含む培地に接種し、好気的に
培養して培養液中にエリスリトールを生成蓄積せしめ、
これを採取することを特徴とする発酵によるエリスリト
ールの製造方法。 【効果】 本発明によれば、オーレオバシディウム属に
属する菌株を用いる発酵法によってエリスリトールを極
めて効率よく製造することができる。
菌株（ＦＥＲＭ Ｐ−８７４５）をグルコースなどの発
酵性糖類を主炭素源として含む培地に接種し、好気的に
培養して培養液中にエリスリトールを生成蓄積せしめ、
これを採取することを特徴とする発酵によるエリスリト
ールの製造方法。 【効果】 本発明によれば、オーレオバシディウム属に
属する菌株を用いる発酵法によってエリスリトールを極
めて効率よく製造することができる。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、エリスリトール生産能
の高いオーレオバシディウム（Aureobasidium)ｓｐ．Ｓ
Ｎ−１２４Ａ菌株（ＦＥＲＭ Ｐ−８７４５）を用いて
発酵性糖類をエリスリトールに変換することを特徴とす
る発酵によるエリスリトールの製造方法に関する。
の高いオーレオバシディウム（Aureobasidium)ｓｐ．Ｓ
Ｎ−１２４Ａ菌株（ＦＥＲＭ Ｐ−８７４５）を用いて
発酵性糖類をエリスリトールに変換することを特徴とす
る発酵によるエリスリトールの製造方法に関する。
【０００２】
【従来の技術および発明が解決しようとする課題】従来
より、エリスリトール生産能を有する微生物としては、
例えばキャンジダ属、デバリオミセス属、トリゴノプシ
ス属、トルロプシス属、ハンゼヌラ属、オーレオバシデ
ィウム属などに属するものが知られている。例えば、特
公昭４７−４１５４９号公報にはキャンジダ属、トリゴ
ノプシス属に属する微生物を用いてグリセリンなどの発
酵性糖類をエリスリトールに変換する方法が記載されて
いる。しかしながら、この方法に従えば微生物の耐糖性
の問題から主炭素源としての糖質濃度（基質濃度）に限
界があり、比較的低濃度で発酵を行う必要があり、また
エリスリトールへの変換率も必ずしも十分でないことか
ら、未だ工業的に利用されるに至っていない。
より、エリスリトール生産能を有する微生物としては、
例えばキャンジダ属、デバリオミセス属、トリゴノプシ
ス属、トルロプシス属、ハンゼヌラ属、オーレオバシデ
ィウム属などに属するものが知られている。例えば、特
公昭４７−４１５４９号公報にはキャンジダ属、トリゴ
ノプシス属に属する微生物を用いてグリセリンなどの発
酵性糖類をエリスリトールに変換する方法が記載されて
いる。しかしながら、この方法に従えば微生物の耐糖性
の問題から主炭素源としての糖質濃度（基質濃度）に限
界があり、比較的低濃度で発酵を行う必要があり、また
エリスリトールへの変換率も必ずしも十分でないことか
ら、未だ工業的に利用されるに至っていない。
【０００３】本発明者等は、先にオーレオバシディウム
属の新規微生物ＳＮ−４５菌株（ＦＥＲＭ Ｐ−７５９
４）を用いてグルコース等の発酵性糖類よりエリスリト
ールを製造する方法（特開昭６１−３１０９１）を発明
した。この方法は、比較的高濃度の糖質よりエリスリト
ールを製造することを可能にし、それなりに価値を有す
るものであった。しかしながら、上記方法は菌体生成量
に比べてエリスリトールの収率が充分とはいえない上、
製造時の至適ｐＨ、温度等の範囲が狭く、しかもその範
囲から少しでも外れるとエリスリトールの収率が著しく
低下する等の欠点を有し、工業的には必ずしも満足のい
くものではなかった。
属の新規微生物ＳＮ−４５菌株（ＦＥＲＭ Ｐ−７５９
４）を用いてグルコース等の発酵性糖類よりエリスリト
ールを製造する方法（特開昭６１−３１０９１）を発明
した。この方法は、比較的高濃度の糖質よりエリスリト
ールを製造することを可能にし、それなりに価値を有す
るものであった。しかしながら、上記方法は菌体生成量
に比べてエリスリトールの収率が充分とはいえない上、
製造時の至適ｐＨ、温度等の範囲が狭く、しかもその範
囲から少しでも外れるとエリスリトールの収率が著しく
低下する等の欠点を有し、工業的には必ずしも満足のい
くものではなかった。
【０００４】
【課題を解決するための手段】本発明者等は、かねてよ
り生体触媒としての微生物の有用性についてそのポリオ
ール類への変換能の検索を行なってきたが、たまたま、
沖縄県の澱粉工場内の土壌から分離された不完全菌類の
オーレオバシディウム属に属する新規微生物ＳＮ−１２
４Ａ菌株が、ＳＮ−４５菌株よりも安定して高いエリス
リトール生産能を有することを見出し、本発明に到達し
たものである。
り生体触媒としての微生物の有用性についてそのポリオ
ール類への変換能の検索を行なってきたが、たまたま、
沖縄県の澱粉工場内の土壌から分離された不完全菌類の
オーレオバシディウム属に属する新規微生物ＳＮ−１２
４Ａ菌株が、ＳＮ−４５菌株よりも安定して高いエリス
リトール生産能を有することを見出し、本発明に到達し
たものである。
【０００５】即ち、本発明はオーレオバシディウムｓ
ｐ．ＳＮ−１２４Ａ菌株（ＦＥＲＭＰ−８７４５）をグ
ルコースなどの発酵性糖類を主炭素源として含む培地に
接種し、好気的に培養して培養液中にエリスリトールを
生成蓄積せしめ、これを採取することを特徴とする発酵
によるエリスリトールの製造方法に関する。
ｐ．ＳＮ−１２４Ａ菌株（ＦＥＲＭＰ−８７４５）をグ
ルコースなどの発酵性糖類を主炭素源として含む培地に
接種し、好気的に培養して培養液中にエリスリトールを
生成蓄積せしめ、これを採取することを特徴とする発酵
によるエリスリトールの製造方法に関する。
【０００６】以下に本発明を詳細に説明する。本発明に
おいて用いられる微生物オーレオバシディウムｓｐ．Ｓ
Ｎ−１２４Ａ菌株は、次のような菌学的性質を有する。 １．培地上の生育状況 １）顕微鏡的所見 栄養細胞の大きさ（＊１） ４〜７×４〜１５μ 栄養細胞の形状（＊１） 菌糸及び酵母様の単胞、卵
形等の形状を示す。 栄養細胞の増殖法（＊１） 菌糸及び酵母様細胞の多極
出芽 菌糸体（＊２） 真性菌糸を形成し、先端及
び側面に全分芽型分生子を多数生ずる。 （註）＊１ ＹＭ寒天培地に２７℃、５日間培養 ＊２ ポテトグルコース寒天によるスライド培養
おいて用いられる微生物オーレオバシディウムｓｐ．Ｓ
Ｎ−１２４Ａ菌株は、次のような菌学的性質を有する。 １．培地上の生育状況 １）顕微鏡的所見 栄養細胞の大きさ（＊１） ４〜７×４〜１５μ 栄養細胞の形状（＊１） 菌糸及び酵母様の単胞、卵
形等の形状を示す。 栄養細胞の増殖法（＊１） 菌糸及び酵母様細胞の多極
出芽 菌糸体（＊２） 真性菌糸を形成し、先端及
び側面に全分芽型分生子を多数生ずる。 （註）＊１ ＹＭ寒天培地に２７℃、５日間培養 ＊２ ポテトグルコース寒天によるスライド培養
【０００７】２）寒天斜面（＊３） 生育 良好 光沢 無し 色調 日数の経過に伴い、白色から黒色の
コロニーに変化する （註）＊３ ＹＭ寒天培地 ３）液体培養（＊４） 表面生育 厚い皮膜形成 濁度 透明 沈査 大 （註）＊４ ＹＭ液体培地
コロニーに変化する （註）＊３ ＹＭ寒天培地 ３）液体培養（＊４） 表面生育 厚い皮膜形成 濁度 透明 沈査 大 （註）＊４ ＹＭ液体培地
【０００８】２．子のう胞子の形成 ポテトグルコース寒天培地 形成せず コーンミール寒天培地 形成せず ＹＭ寒天培地 形成せず ニンジンエキス寒天培地 形成せず Ｖ8 寒天培地 形成せず
【０００９】３．生理学的性質 酸素要求性 好気的 生育温度 約４０℃まで 最適生育温度 ３５〜３７℃ 生育ｐＨ ２．５〜９．５ 最適生育ｐＨ ４〜７ ＫＮＯ3 資化性（＊５） 有り (NH4)2SO4 資化性（＊５） 有り 尿素の分解 有り ゼラチンの液化 無し カロチノイドの生成 無し 有機酸の生成 有り アルブミン 無し デンプン様物質の生成 無し ビタミンの要求性（＊５） 有り （註）＊５ Wickerham の合成培地を用いた J.Lodder
らの方法により判定 ＊６ 寒天培地 ＊７ 液体培地
らの方法により判定 ＊６ 寒天培地 ＊７ 液体培地
【００１０】４．糖の発酵性（＊５） グルコース ＋＋ ラクトース − ガラクトース − メリビオース − シュクロース ＋＋ ラフィノース − マルトース ＋ セロビオース − トレハロース − イヌリン −
【００１１】５．糖、有機酸等の資化性 グルコース ＋＋ Ｄ−キシロース ± ガラクトース − エリスリトール ＋ Ｄ−アラビノース − Ｌ−アラビノース − Ｄ−リボース ＋ シュクロース ＋ Ｌ−ラムノース − マルトース ＋ エタノール − セロビオース ＋ サリシン − Ｌ−ソルボース − リビトール − ガラクチトール − グリセリン ＋ トレハロース − ラクトース − メリビオース − Ｄ−マンニトール ＋ ラフィノース − メレチトース − α−メチル−Ｄ−グルコシド − イヌリン ± イノシトール − 可溶性デンプン − ＤＬ−乳酸 − コハク酸 ± クエン酸 ＋
【００１２】上記のごとき菌学的性質を有する本菌株の
分類学上の位置を THE GENERA OF FUNGI SPORULATING I
N PURE CULTURE (J.A.VON ARX; 1974 年) を参照して検
討した結果、本菌株はＹＭ寒天培地上での培養後期にお
いて日数の経過に伴い白色から黒色のコロニーを形成
し、栄養細胞に菌糸を形成し、多くの Blast sporeを生
じ、かつ厚膜胞子を形成しない、などの特徴を有してい
ることからオーレオバシディウムに属する新規な微生物
であると判断し、オーレオバシディウムｓｐ．ＳＮ−１
２４Ａ菌株と命名した。
分類学上の位置を THE GENERA OF FUNGI SPORULATING I
N PURE CULTURE (J.A.VON ARX; 1974 年) を参照して検
討した結果、本菌株はＹＭ寒天培地上での培養後期にお
いて日数の経過に伴い白色から黒色のコロニーを形成
し、栄養細胞に菌糸を形成し、多くの Blast sporeを生
じ、かつ厚膜胞子を形成しない、などの特徴を有してい
ることからオーレオバシディウムに属する新規な微生物
であると判断し、オーレオバシディウムｓｐ．ＳＮ−１
２４Ａ菌株と命名した。
【００１３】即ち、本発明の微生物は沖縄県の澱粉工場
内の土壌から常法に従って純粋分離されたもので、オー
レオバシディウム属に属し、栄養細胞が４〜７×４〜１
５μの単胞、卵形等の形状で、多極出芽により増殖し、
子のう胞子は見られず、真性菌糸が見られ、ＹＭ寒天培
地上での生育も速く３日間で白色から黒色のコロニーと
なり、液体培地では皮膜を形成し、かつ発酵性糖類を主
としてエリスリトールと少量のグリセリンに変換する能
力を有する。本菌株は、工業技術院生命工学工業技術研
究所に「ＦＥＲＭ Ｐ−８７４５」として寄託されてい
る。
内の土壌から常法に従って純粋分離されたもので、オー
レオバシディウム属に属し、栄養細胞が４〜７×４〜１
５μの単胞、卵形等の形状で、多極出芽により増殖し、
子のう胞子は見られず、真性菌糸が見られ、ＹＭ寒天培
地上での生育も速く３日間で白色から黒色のコロニーと
なり、液体培地では皮膜を形成し、かつ発酵性糖類を主
としてエリスリトールと少量のグリセリンに変換する能
力を有する。本菌株は、工業技術院生命工学工業技術研
究所に「ＦＥＲＭ Ｐ−８７４５」として寄託されてい
る。
【００１４】以下に、本発明に係るエリスリトールの製
造方法について述べる。本発明における培養は、通常液
体培地を用いて好気的条件下に攪拌培養により実施され
ることが望ましい。当該液体培地の主炭素源としてはグ
ルコース、フルクトース、シュクロース、マルトースな
どの糖質が使用されるが、これらの糖質の培地中におけ
る量的割合としては１０〜４０％（ｗ／ｗ）、特に好ま
しくは２０〜３０％（ｗ／ｗ）の範囲で添加使用される
ことが好ましい。窒素源としては微生物により利用可能
な窒素化合物、例えば酵母エキス、ペプトン、麦芽エキ
ス、カザミノ酸、コーンスチープリカーなどが使用され
る。また、培地に加える無機塩類としては、例えば硫酸
第一鉄、塩化カリウム、塩化ナトリウム、リン酸二水素
カリウム、水酸化カルシウムなどの塩類が使用される。
更に、必要に応じて酵母の生育に必要な各種の有機物、
無機物あるいは通常用いられる消泡剤などを添加するこ
とが出来る。
造方法について述べる。本発明における培養は、通常液
体培地を用いて好気的条件下に攪拌培養により実施され
ることが望ましい。当該液体培地の主炭素源としてはグ
ルコース、フルクトース、シュクロース、マルトースな
どの糖質が使用されるが、これらの糖質の培地中におけ
る量的割合としては１０〜４０％（ｗ／ｗ）、特に好ま
しくは２０〜３０％（ｗ／ｗ）の範囲で添加使用される
ことが好ましい。窒素源としては微生物により利用可能
な窒素化合物、例えば酵母エキス、ペプトン、麦芽エキ
ス、カザミノ酸、コーンスチープリカーなどが使用され
る。また、培地に加える無機塩類としては、例えば硫酸
第一鉄、塩化カリウム、塩化ナトリウム、リン酸二水素
カリウム、水酸化カルシウムなどの塩類が使用される。
更に、必要に応じて酵母の生育に必要な各種の有機物、
無機物あるいは通常用いられる消泡剤などを添加するこ
とが出来る。
【００１５】培養は、前記組成からなる液体培地に微生
物菌体を直接接種するか、又は、別に前培養によって得
られる種培養液を接種して行なわれる。この種培養液の
調製は、例えばグルコース２０％（ｗ／ｗ）、コーンス
チープリカー２．０％を含むｐＨ５〜６の液体培地に斜
面培養した菌を１白金耳接種して３４〜３６℃の温度で
２〜４日間培養することにより行われる。
物菌体を直接接種するか、又は、別に前培養によって得
られる種培養液を接種して行なわれる。この種培養液の
調製は、例えばグルコース２０％（ｗ／ｗ）、コーンス
チープリカー２．０％を含むｐＨ５〜６の液体培地に斜
面培養した菌を１白金耳接種して３４〜３６℃の温度で
２〜４日間培養することにより行われる。
【００１６】培養温度は微生物が生育しうる範囲内、即
ち３０〜３８℃で行なわれるが、特に好ましくは３５〜
３７℃の範囲である。また、培地のｐＨは４〜９、好ま
しくは５〜７の範囲で調節される。培養期間は使用する
培地の種類及び主炭素源である糖質の濃度により異なる
が、通常４〜１０日間程度である。本発明における培養
は、培地の栄養源が最大限に利用され、かつ培養液中の
エリスリトールの生成量が最高に達した時点で培養を終
了させることが望ましい。
ち３０〜３８℃で行なわれるが、特に好ましくは３５〜
３７℃の範囲である。また、培地のｐＨは４〜９、好ま
しくは５〜７の範囲で調節される。培養期間は使用する
培地の種類及び主炭素源である糖質の濃度により異なる
が、通常４〜１０日間程度である。本発明における培養
は、培地の栄養源が最大限に利用され、かつ培養液中の
エリスリトールの生成量が最高に達した時点で培養を終
了させることが望ましい。
【００１７】尚、培養液中のエリスリトールの生成量は
ガスクロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー
などの周知の方法を用いて速やかに測定することが出来
る。かくして、培養液中に蓄積されたエリスリトール
は、常法に従って培養液中から分離される。即ち、かか
る場合に当該分野において通常使用されている周知の手
段、例えばろ過、遠心分離、イオン交換又は吸着クロマ
トグラフィー、溶媒抽出、蒸留、結晶化などの操作が必
要に応じて適宜組み合わせて用いられる。一例を挙げれ
ば、培養液からろ過、遠心分離などによって菌体を除去
し、次いでこの液を活性炭で処理して着色物質などを除
き、更にイオン交換樹脂により脱イオンした後、液を濃
縮してシロップとする。次に、このシロップからエリス
リトールを結晶化して分離する。エリスリトールを分離
した後の母液中にグリセリンが含まれている場合には、
これを更に減圧蒸留により精製してグリセリンを得るこ
とができる。
ガスクロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー
などの周知の方法を用いて速やかに測定することが出来
る。かくして、培養液中に蓄積されたエリスリトール
は、常法に従って培養液中から分離される。即ち、かか
る場合に当該分野において通常使用されている周知の手
段、例えばろ過、遠心分離、イオン交換又は吸着クロマ
トグラフィー、溶媒抽出、蒸留、結晶化などの操作が必
要に応じて適宜組み合わせて用いられる。一例を挙げれ
ば、培養液からろ過、遠心分離などによって菌体を除去
し、次いでこの液を活性炭で処理して着色物質などを除
き、更にイオン交換樹脂により脱イオンした後、液を濃
縮してシロップとする。次に、このシロップからエリス
リトールを結晶化して分離する。エリスリトールを分離
した後の母液中にグリセリンが含まれている場合には、
これを更に減圧蒸留により精製してグリセリンを得るこ
とができる。
【００１８】
【実施例】次に、実施例を示し、本発明の態様を更に具
体的に説明する。 実施例１ グルコース２０％（ｗ／ｗ）、予めｐＨ６．０に調整し
たコーンスチープリカー２．０％、ソルビタン脂肪酸エ
ステル０．１％及びシリコン系消泡剤０．０３％を含む
培地５ｋｇを７リットル容の発酵槽に入れ、１２０℃、
２０分間滅菌した。放冷後、無菌的に培地ｐＨを５．５
に調整した。これに上記と同様の培地で３日間培養を行
なったオーレオバシディウムｓｐ．ＳＮ−１２４Ａ菌株
（ＦＥＲＭ Ｐ−８７４５）の種培養液 ２００ｍｌを
加え、３５℃、４００ｒｐｍ、通気量１リットル／ｍｉ
ｎで７日間培養を行なった。その結果、この培養液中に
４６７ｇのエリスリトール及び痕跡程度のグリセリンが
蓄積された。
体的に説明する。 実施例１ グルコース２０％（ｗ／ｗ）、予めｐＨ６．０に調整し
たコーンスチープリカー２．０％、ソルビタン脂肪酸エ
ステル０．１％及びシリコン系消泡剤０．０３％を含む
培地５ｋｇを７リットル容の発酵槽に入れ、１２０℃、
２０分間滅菌した。放冷後、無菌的に培地ｐＨを５．５
に調整した。これに上記と同様の培地で３日間培養を行
なったオーレオバシディウムｓｐ．ＳＮ−１２４Ａ菌株
（ＦＥＲＭ Ｐ−８７４５）の種培養液 ２００ｍｌを
加え、３５℃、４００ｒｐｍ、通気量１リットル／ｍｉ
ｎで７日間培養を行なった。その結果、この培養液中に
４６７ｇのエリスリトール及び痕跡程度のグリセリンが
蓄積された。
【００１９】この培養液から菌体を遠心分離して除去
し、活性炭による脱色及びイオン交換樹脂（ＩＲＡ−４
１０：ＩＲ−１２０Ｂ＝２：１）による脱塩を行なっ
た。次いで、濃縮し、５℃に保存することにより結晶を
得た。この結晶を溶解し、同様の方法により再結晶し
た。得られた多面体様の白色結晶は爽やかな甘味を有
し、その融点は１２１℃であった。ＮＭＲ、旋光度、液
体クロマトグラフィー及びガスクロマトグラフィー等の
測定結果からこの白色結晶はエリスリトールと同定され
た。
し、活性炭による脱色及びイオン交換樹脂（ＩＲＡ−４
１０：ＩＲ−１２０Ｂ＝２：１）による脱塩を行なっ
た。次いで、濃縮し、５℃に保存することにより結晶を
得た。この結晶を溶解し、同様の方法により再結晶し
た。得られた多面体様の白色結晶は爽やかな甘味を有
し、その融点は１２１℃であった。ＮＭＲ、旋光度、液
体クロマトグラフィー及びガスクロマトグラフィー等の
測定結果からこの白色結晶はエリスリトールと同定され
た。
【００２０】実施例２ グルコース３０％（ｗ／ｗ）、コーンスチープリカー
（ｐＨ６．０調整液）３．２％を含む培地５０ｇを５０
０ｍｌの三角フラスコに入れ、滅菌、冷却後培地ｐＨを
６．０に調整した。これに実施例１と同様の種培養液２
ｍｌを接種し、３５℃、１８０ｒｐｍで１０日間振とう
培養を行なった。その結果、この培養液中に５．９ｇの
エリスリトール及び１．４ｇのグリセリンが蓄積され
た。
（ｐＨ６．０調整液）３．２％を含む培地５０ｇを５０
０ｍｌの三角フラスコに入れ、滅菌、冷却後培地ｐＨを
６．０に調整した。これに実施例１と同様の種培養液２
ｍｌを接種し、３５℃、１８０ｒｐｍで１０日間振とう
培養を行なった。その結果、この培養液中に５．９ｇの
エリスリトール及び１．４ｇのグリセリンが蓄積され
た。
【００２１】実施例３ シュクロース２０％（ｗ／ｗ）、酵母エキス０．５％を
含む培地５０ｇを５００ｍｌの三角フラスコに入れ、１
２０℃、１５分間滅菌した。冷後培地ｐＨを６．０に調
整し、これにオーレオバシディウムｓｐ．ＳＮ−１２４
Ａ菌株（ＦＥＲＭ Ｐ−８７４５）を接種し、３５℃、
１８０ｒｐｍで７日間振とう培養を行なった。その結
果、培養液中に４．２ｇのエリスリトールが蓄積され、
グリセリンの蓄積は認められなかった。
含む培地５０ｇを５００ｍｌの三角フラスコに入れ、１
２０℃、１５分間滅菌した。冷後培地ｐＨを６．０に調
整し、これにオーレオバシディウムｓｐ．ＳＮ−１２４
Ａ菌株（ＦＥＲＭ Ｐ−８７４５）を接種し、３５℃、
１８０ｒｐｍで７日間振とう培養を行なった。その結
果、培養液中に４．２ｇのエリスリトールが蓄積され、
グリセリンの蓄積は認められなかった。
【００２２】実施例４ 酵母エキス０．５％、グルコース１０〜３０％（ｗ／
ｗ）を含む培地５０ｇを５００ｍｌの三角フラスコに入
れ、１２０℃、１５分間滅菌を行なった。冷後、培地ｐ
Ｈを５．５に調整し、これに種培養液（オーレオバシデ
ィウムｓｐ．ＳＮ−１２４Ａ菌株（ＦＥＲＭ Ｐ−８７
４５）をグルコース２０％、酵母エキス０．５％から成
る培地を用い、３５℃、３日間培養した培養液）２ｍｌ
を接種し、３５℃、１８０ｒｐｍで４〜１１日間振とう
培養を行なった。その結果は第１表に示す通りであっ
た。
ｗ）を含む培地５０ｇを５００ｍｌの三角フラスコに入
れ、１２０℃、１５分間滅菌を行なった。冷後、培地ｐ
Ｈを５．５に調整し、これに種培養液（オーレオバシデ
ィウムｓｐ．ＳＮ−１２４Ａ菌株（ＦＥＲＭ Ｐ−８７
４５）をグルコース２０％、酵母エキス０．５％から成
る培地を用い、３５℃、３日間培養した培養液）２ｍｌ
を接種し、３５℃、１８０ｒｐｍで４〜１１日間振とう
培養を行なった。その結果は第１表に示す通りであっ
た。
【００２３】
【表１】
【００２４】実施例５ グルコース２０％（ｗ／ｗ）、酵母エキス０．５％から
成る培地５０ｇずつを８本の５００ｍｌ三角フラスコに
入れ、滅菌を行なった。冷後、１Ｎ塩酸又は１Ｎ水酸化
ナトリウムで培地ｐＨを２．９〜１０．１の間になるよ
うに調整した。次いで、得られたそれぞれの培地に種
菌、オーレオバシディウムｓｐ．ＳＮ−１２４Ａ菌株
（ＦＥＲＭ Ｐ−８７４５号）を接種し、３５℃、１８
０ｒｐｍで７日間振とう培養を行なった。その結果、第
２表に示すような収率でエリスリトールが得られた。
成る培地５０ｇずつを８本の５００ｍｌ三角フラスコに
入れ、滅菌を行なった。冷後、１Ｎ塩酸又は１Ｎ水酸化
ナトリウムで培地ｐＨを２．９〜１０．１の間になるよ
うに調整した。次いで、得られたそれぞれの培地に種
菌、オーレオバシディウムｓｐ．ＳＮ−１２４Ａ菌株
（ＦＥＲＭ Ｐ−８７４５号）を接種し、３５℃、１８
０ｒｐｍで７日間振とう培養を行なった。その結果、第
２表に示すような収率でエリスリトールが得られた。
【００２５】
【表２】
【００２６】
【発明の効果】本発明によれば、オーレオバシディウム
属に属する菌株を用いる発酵法によってエリスリトール
を極めて効率よく製造することができる。
属に属する菌株を用いる発酵法によってエリスリトール
を極めて効率よく製造することができる。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所 Ｃ１２Ｒ 1:645） (72)発明者 小田 恒郎 東京都秋川市下代継128
Claims (1)
- 【請求項１】 オーレオバシディウムｓｐ．ＳＮ−１２
４Ａ菌株（ＦＥＲＭＰ−８７４５）をグルコースなどの
発酵性糖類を主炭素源として含む培地に接種し、好気的
に培養して培養液中にエリスリトールを生成蓄積せし
め、これを採取することを特徴とする発酵によるエリス
リトールの製造方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP23969794A JP2696092B2 (ja) | 1994-09-08 | 1994-09-08 | 新規微生物を用いるエリスリトールの製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP23969794A JP2696092B2 (ja) | 1994-09-08 | 1994-09-08 | 新規微生物を用いるエリスリトールの製造方法 |
Related Parent Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP21066986A Division JPH0722504B2 (ja) | 1986-09-09 | 1986-09-09 | 新規微生物及びそれを用いるエリスリト−ルの製造方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH07203978A true JPH07203978A (ja) | 1995-08-08 |
| JP2696092B2 JP2696092B2 (ja) | 1998-01-14 |
Family
ID=17048581
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP23969794A Expired - Lifetime JP2696092B2 (ja) | 1994-09-08 | 1994-09-08 | 新規微生物を用いるエリスリトールの製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2696092B2 (ja) |
-
1994
- 1994-09-08 JP JP23969794A patent/JP2696092B2/ja not_active Expired - Lifetime
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP2696092B2 (ja) | 1998-01-14 |
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