JPH067199A - 特定の核酸の検出方法 - Google Patents
特定の核酸の検出方法Info
- Publication number
- JPH067199A JPH067199A JP5061538A JP6153893A JPH067199A JP H067199 A JPH067199 A JP H067199A JP 5061538 A JP5061538 A JP 5061538A JP 6153893 A JP6153893 A JP 6153893A JP H067199 A JPH067199 A JP H067199A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- primer
- sequence
- nucleic acid
- energy
- formula
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6813—Hybridisation assays
- C12Q1/6816—Hybridisation assays characterised by the detection means
- C12Q1/6818—Hybridisation assays characterised by the detection means involving interaction of two or more labels, e.g. resonant energy transfer
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07H—SUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
- C07H21/00—Compounds containing two or more mononucleotide units having separate phosphate or polyphosphate groups linked by saccharide radicals of nucleoside groups, e.g. nucleic acids
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6844—Nucleic acid amplification reactions
- C12Q1/6853—Nucleic acid amplification reactions using modified primers or templates
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Immunology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
移行とを組合わせた新規な核酸配列検出系を提供する。 【構成】 検出されるべき塩基配列に相補的な部分Pp
とPpに対して相補的部分Pcとこれを折り返す部分と
から成るプライマー(I)と、対向プライマー(II)と
を用いて検出されるべき塩基配列を増幅し、プライマー
(I)に付加されたエネルギー供与体又は受容体と、プ
ローブに付加されたエネルギー受容体又は供与体との間
のエネルギー移行を検出することにより、提出されるべ
き塩基配列の存否を決定する方法。
Description
の特定の核酸配列の増幅及び検出のための方法に関する
ものであり、該サンプルは1つの核酸又は複数の核酸の
混合物であってその少なくとも1つが前記特定の核酸配
列を含有すると予想されるものであり、この方法は、
応により増幅し、ここでこの鎖延長反応は、次の一般式
(I): X−Pc−L−Pp (I) (式中、Ppは、検出されるべき核酸配列の一方の鎖の
一部分と実質的に相補的なオリゴヌクレオチド配列であ
り、Pcは前記配列Ppに実質的に相補的な核酸配列で
あり、Lは配列PcとPpのプライマー延長配列との間
の効率的な折り返しを可能にしそして折り返し部分Pc
の増幅を回避するように選択された非−ヌクレオチドリ
ンカー基であり、そしてXはエネルギー供与体又は受容
体である)により表わされる第一オリゴヌクレオチドプ
ライマー、及び検出されるべき核酸配列の他方の鎖の一
部分と実質的に相補的な第二オリゴヌクレオチドプライ
マーを使用し;
延長生成物をその相補的配列から分離して単鎖分子を生
成せしめ; (c)前記式(I)のプライマーを含有する前記単鎖分
子を、次の一般式(II): Y−Pr (II)
Xがエネルギー供与体である場合にはエネルギー受容体
であり、そして式(I)のプライマー中のXがエネルギ
ー受容体である場合にはエネルギー供与体であり、そし
てPrは、式(I)のプライマーを含有する増幅された
単鎖分子の一部分と相補的なオリゴヌクレオチドであっ
て、配列Pcの折り返し及び前記単鎖分子への配列Pc
のハイブリダイゼーションの後にエネルギーの移行が行
われ得る程XとYとの間の短い距離を保証するように選
択されたものである)により表わされるオリゴヌクレオ
チドプローブにより、折り返しによる配列Pc及びPr
配列の前記単鎖分子へのハイブリダイゼーションを可能
にする条件下で処理し;そして
決定する;ことを含んで成る。本発明はさらに、1つの
核酸又は複数の核酸の混合物であってその内の少なくと
も1つが特定の核酸配列を含有すると予想されるものを
含有するサンプル中の少なくとも1つの該特定の核酸配
列を増幅し且つ検出するためのキットに関し、このキッ
トは、前に定義した式(I)のプライマーを含有する容
器、前に定義した式(II)のプローブを含有する容器、
並びにポリメラーゼ連鎖反応による増幅及び検出のため
の手段及び試薬を含んで成る。
NA又はRNAストレッチの特異的増幅のために非常に
強力な方法である。この方法は、ヨーロッパ特許出願公
開No. 201,184、No. 200,362、及びNo.
258,017に記載されている。この技法の1つの用
途は、低コピー数で存在するDNAを検出可能なレベル
に上げるためのDNAプローブ技法においてである。
が、H.A.Erlich(編集)によるPCR Te
chnology−Principles and A
pplications fo DNA Amplif
ication,Stockton Press,米
国,1989、並びにM.A.Inis(編集)による
PCT Protocols,Academic Pr
ess,San Diego,米国,1990に記載さ
れている。
geneous)測定方式による時間のかかる分離又は
移送段階を用いないで、増幅されたDNAを直接検出す
ることである。同時に、目的はまた、DNA診断におい
て今なお主として使用されている放射能ラベルの代りに
非放射性のレポーター系を用いることにより、この技法
の用途を拡大することである。挿入化学発光性アクリジ
ンエステルを適用するこの様な均一検出系はArnol
dらによりClinical Chemistry 3
5,1588(1989)に報告されている。
B.S.ReckmannによりNachr.Che
m.Tech.Lab.37,692−702(198
9)に総説として記載されている。時間−分離(tim
e−resolved)蛍光測定により高感度で測定さ
れ得る非放射性ラベル分子としてのバソフェナンスロリ
ン(bathophenanthroline)−Ru
II複合体の使用が、W.BannwarthらによりH
elv.Chim.Acta 71,2085−209
9(1988)に記載されている。
or)分子からRu複合体へのエネルギー移行を可能に
するラベル分子の相互作用対の部分であり得る。エネル
ギー移行の効率は供与体と受容体(acceptor)
との間の距離に大きく依存するので、この様な系は分子
間相互作用の研究において適用され得る。Ru複合体の
ための供与体分子の適当なクラスとしてルマジン(lu
mazine)発色団が同定されている。
けるこの供与体/受容体対の適用可能性が、ヨーロッパ
特許出願公開No. 439,036、並びにW.Bann
warth及びF.MuellerによるHelvet
ica Chimica Acta 74,1991−
1999(1991)及び74,2000−2008
(1991)に記載されている。
てRuバソフェナンスロリン複合体によりラベルされて
おりそしてオリゴヌクレオチド内の該Ru複合体から異
る距離にルマジン色原体を有する該オリゴデオキシヌク
レオチド中でエネルギー移行が検出された。さらに、1
つのプローブ配列が供与体を有しそして他方が受容体を
有するハイブリダイゼーション法において標的DNA配
列を検出するために相互作用ラベルのこの対が使用され
得ることが示された。
体としてテルビウム錯体を用いそしてエネルギー供与体
としてサリチル酸塩を用いる他の方法が、A.Oser
及びG.ValetによりAngewandte Ch
emie 102,1197−1200(1990)に
記載されている。引き続く検出のためにエネルギー移行
を用いる均一試験方式におけるオリゴヌクレオチドの検
出のための既知の方法は、相補的DNA配列に特異的に
並んでハイブリダイズする少なくとも2個のラベルされ
たオリゴヌクレオチドを用い、これにより2個のラベル
を相互に隣り合わせに位置させる。
る。図1は、相互作用ラベル並びに一般式(I)の折り
返しプライマー及び一般式(II)のプローブを用いる、
増幅されたDNAの測定に関与する段階を示す。二本鎖
中の相補鎖は単純化のために省略されている。
の組合せを用いて行うことができ、その少なくとも一方
は一般式(I)のプライマーであり、これは、その部分
配列Pcをプライマー部分Ppに折返して短い二本鎖を
形成する能力のために折返しプライマーとも称される。
(ポリメラーゼ)を用いる鎖延長反応におけるプライマ
ーとしての使用のために意図される場合は特に、オリゴ
ヌクレオチド中の自己相補的部分は第二オリゴヌクレオ
チドとのハイブリダイゼーションの段階において問題を
生じさせる場合があることが当業界において知られてい
る。従って、明瞭な反応のためにこれらのプライマー及
びさらにプローブを最適化して、それらが前記のごとき
自己相補的部分含まないようにすることが通常推奨され
る。
オリゴヌクレオチドがポリメラーゼ連鎖反応及び検出段
階において有利に使用し得ることが見出された。式
(I)のプライマーの場合、3′−末端から非ヌクレオ
チド性リンカー基までのプライマー部分Ppが、検出さ
れるべき標的DNA配列の増幅のための標準的プライマ
ーを代表する。変性及びそれに続くポリメラーゼの使用
の温度において、折返しプライマーの少なくとも部分は
開いた形で存在し、そしてそれ故に4種類のデオキシリ
ボヌクレオシドトリホスフェート(dATP,dGT
P,dTTP及びdCTT)又はそれらの類似体の適当
な量の存在下でその鋳型依存的延長を特異的に開始する
ことができる。
大腸菌(E.coli)DNAポリメラーゼI又はその
Klenow断片、T4 DNAポリメラーゼ、Taq
DNAポリメラーゼ、サームス・サーモフィルス(Th
ermus thermophilus)からのTth
DNAポリメラーゼ、及びサーモコッカス・リトラリ
ス(Thermococcus litoralis)
からのDNAポリメラーゼが含まれる。これらのDNA
ポリメラーゼを用いてDNA合成を触媒するための反応
条件は当業界においてよく知られている。
とを許容する、鎖延長反応に基くあらゆる増幅方法を用
いることができる。ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)に
よる増幅はすでに述べられている。式(I)のプライマ
ーはまた、増幅された標的配列を製造するための他の方
法においても使用することができる。例えば、プライマ
ー(I)を第二のオリゴヌクレオチドと一緒に使用する
ことができ、ここで、これらの両者は1つのDNA鋳型
に対して相補的でありそしてそれらの3′−末端及び
5′−末端が相互に直接隣接する。
末端と5′−末端との連結の反復により増幅が起こる。
いわゆるリガーゼ連鎖反応(LCR)又はリガーゼ増幅
反応(LAR)はさらに、Wu及びWallaceによ
りGenomics 4,560−569(1988)
中に記載されている。次に、式(I)のラベルされたプ
ライマーを含有する増幅生成物が、次に記載する折返し
片Pcの近くに式(II)のラベルされたプローブをハイ
ブリダイズさせることにより検出される。PCRによる
増幅が好ましい方法である。
ポリメラーゼ反応の温度は通常さらに低く、そして使用
されるポリメラーゼに依存する。Taqポリメラーゼの
場合、温度は70℃〜80℃の間であり、これは、プラ
イマー活性を阻害するであろうプライマー(I)中のP
pへの短い配列Pcの完全な内部折返しを回避するのに
十分に高い温度である。増幅後及び低温において、導入
されたプライマー特にその部分Pcは折返され得る。
供与体分子〔式(I)のプライマー中のXがエネルギー
受容体である場合〕又はエネルギー受容体分子〔式
(I)のプライマー中のXがエネルギー供与体分子であ
る場合〕を有しそして増幅された領域にハイブリダイズ
する式(II)のプローブ(検出オリゴヌクレオチド)に
より、その様な状況下でエネルギーの移行を可能にする
折返しプライマーの5′−末端における前記供与体又は
受容体間の短い距離を折返しが保証する(図1、段階
b)。
にプライマーIによって増幅されていない場合、検出オ
リゴマーとハイブリダイズし得るプライマー延長生成物
が存在しないから、前記エネルギーの移行は不可能であ
る。従って、増幅された標的の存在とその不存在との間
の明瞭な区別が可能である。こうして、分離段階を行う
必要なく均一法での増幅の直ぐ後に試験を行うことがで
き、そしてエネルギーの移行が増幅された標的配列の存
在を示す。
適当な任意の長さであることができる。プライマー領域
Ppは約10〜30ヌクレオチドの長さであるが、しか
し検出されるべき配列に依存してより短く又はより長く
てもよい。ヌクレオチド塩基の個々の塩基対合の安定性
を考慮して、配列及び温度特異的PCRプライマーを設
計するためのパラメーターは当業界において知られてい
る。
Ppは、増幅されるべき各特定の配列に「実質的に」相
補的であるように選択される。プライマー部分Ppは鋳
型の正確な配列を反映する必要はないが、重合の温度に
おいてさえそれらの対応する鎖に選択的にハイブリダイ
ズするために十分に相補的でなければならない。プライ
マー部分Ppが、増幅されるべき鎖の一方の配列とハイ
ブリダイズするのに十分なだけ該配列に対する相補性を
維持しており、そしてそれにより重合試薬により延長さ
れ得る二本鎖構造を形成するのであれば、プライマー部
分Ppに非相補的塩基又はより長い配列を点在させるこ
とができる。プライマー部分Pcは、各場合において、
Ppの配列に部分的に又は完全に相補的であるように適
合されるであろう。好ましくは、プライマー部分Ppは
鋳型の相補的配列を反映する。
イマー機能にとって全く無害であることが見出された。
Pcの配列はPpに対して任意の長さを有することがで
きる。好ましくは、PcはPpに比較して数塩基短い。
このことは、より長いプライマー部分Pcの場合にこの
部が増幅温度において鋳型の相補的配列にPpより密接
に結合することを排除する。追加の供与体分子が3′−
末端と5′−末端との間のギャップを補うことができ、
このことは、折返しプライマーIの5′−末端が終る所
からプローブ(II)が正確に始まる必要のないことを意
味する。
折返されたプライマー(I)にその先行する延長を伴わ
ないでハイブリダイズして誤った陽性結果をもたらすこ
とがないように、プライマー部分PpはPcとの関係で
長過ぎてはならない。例えば、プライマー部分Ppは1
8塩基の長さを有し、そしてPc部分の10塩基により
折返される。これはまた、配列中の塩基の組成に依存す
る。
めに共通に使用される第二オリゴヌクレオチドプライマ
ー(対向プライマー)もまたラベルされてもよく、そし
てプライマー(I)と同じ量又は異る量で使用されるこ
とができる。両プライマーがラベルされる場合、増幅さ
れた配列中のほとんどすべてのオリゴヌクレオチドがラ
ベルされ、そして増幅後に検出されなければならない核
酸配列の少なくとも1つの折返し部分Pcの近くへのハ
イブリダイゼーションを可能にする少なくとも1つの
3′−ラベル化プローブIIを用いて検出され得る。本発
明のプライマー及び記載されるプローブの他の変更又は
組合せ、例えば異ってラベルされたプライマーの使用、
DNAではなくRNA増幅又は単鎖増幅は、本発明の範
囲内である。
に、折返しオリゴマーの5′−末端に1又は複数の供与
体分子を置き、そして検出オリゴマーの3′−末端に受
容体分子を置くことができる。好ましくは、プライマー
は5′−末端においてエネルギー供与体によりラベルさ
れる。これは、直接励起から生ずるエネルギー受容体の
バックグラウンド蛍光のため有利である。PCRにおい
て、プライマーは大過剰に適用される。従って、プライ
マーがエネルギー受容体(例えばRu複合体)によりラ
ベルされておれば、直接励起により生ずるこの蛍光が重
要となるであろう。
ネルギー移行の検出は当業界において知られている方法
により行うことができる。時間−分離蛍光技法の方法は
例えば独出願公開No. 2628158及びヨーロッパ特
許出願公開No. 178,450に記載されている。
に影響することなくプライマー又はプローブに化学的に
結合され又はそれらと複合体を形成し、そしてそれらが
DNAの存在下で検出可能であれば、本発明において任
意の組合せで相互作用分子を用いることができる。適当
な相互作用分子は、グルコールオキシダーゼ/パーオキ
シダーゼ、フルオレッセイン/ローダミン、及びサリチ
ル酢塩/テルビウム錯体である。供与体/受容体の組合
せとして、ルマジン色原体/バソフェナンスロリン−ル
テニウムII複合体が好ましい。
基Lを含有し、このものはPc及びPp中の相補的塩基
の塩基対合を可能にし、これによってループの形成を回
避する。この非ヌクレオチド性質はまた増幅工程中にこ
の位置でのポリメラーゼ反応の停止を導く。
補的配列Pcとの間の折返しを可能にするように選択さ
れる。この基Lは、ループの形成を伴わないでPpへの
Pcの定義された折返しを可能にする任意の種類の非ヌ
クレオチド性リンカーから成ることができる。好ましく
は、非ヌクレオチドリンカーはプロパンジオールに由来
する。さらに好ましくは、リンカー基Lは、1個のホス
フェート基により一緒に連結されており、そしてホスフ
ェート基を介してオリゴヌクレオチド配列Pc及びPp
に結合している2個のプロパンジオール基から成る。最
も好ましいリンカー基Lは次の式: -O-P(O)2 - -O-(CH2)3-O-P(O)2 - -O-(CH2)3-O-P(O)2 - -O- を有する。
も、PpへのPcの効率的な折返しを可能にし、そして
折返し部分Pcの増幅を回避することが見出された。ポ
リメラーゼ反応において通常のプライマーとして機能す
るオリゴヌクレオチド又は修飾されたプライマーもしく
はプローブの部分であるオリゴヌクレオチドは、当業界
において知られている方法(M.J.Cait編、DN
A−Synthesis−A Practical A
pproach,IRI−Press,1984)によ
り合成することができる。N.D.Sinhaらにより
Nucleic Acids Research 1
2,4539−4557(1984)に記載されている
ようなβ−シアノエチルホスホラミダイトを用いる固相
合成が好ましい。
過程でホスホラミダイト〔5〕又はその類似体を用いて
挿入することができる。ホスホラミダイト〔5〕の合成
はF.SeelaによりNucleic Acids
Research 15,3113(1987)に記載
されている。
間にオリゴヌクレオチドPpに加えることにより最も好
ましいリンカーが得られ、このリンカーは合成の間に、
式(I)のプライマーの折返し部分Pcを加えるために
適当なヌクレオシドホスホラミダイトにより、さらに延
される。
は5′−OH基において連結するために選択されたラベ
ルは、直接的に、又はこれらのヒドロキシ基の修飾の後
に、当業界において知られている方法により、−N
H2 ,−COOH,−SH又は他の任意の適切な基に連
結することができる。
なお支持体に結合している場合、又はすでに切り離され
ている場合のいずれにおいても行うことができる。ラベ
ルはまた、プライマー又はプローブの1又は複数個のヌ
クレオチド塩基に、それらを成長しつつあるオリゴヌク
レオチド鎖に付加するに先立って、例えばヌクレオシド
アミダイトの形で導入することができる。Ru複合体/
ルマジンラベルの場合、6,7−ジメチルルマジン−
2′−デオキシリボシドのホスホラミダイト〔7〕を用
いて、折返しプライマーの5′−末端又はプローブの
5′−/3′−末端に導入することができる。ホスフェ
ート基の導入のために他のルマジン誘導体又はカップリ
ング試薬を用いることもできる。
1又は複数個をオリゴヌクレオチドに導入することによ
りエネルギー移行を増強することができる。1〜4個の
連続するルマジン色原体が好ましい。オリゴヌクレオチ
ドの3′−又は5′−末端へのリマジンリボシドの導入
はヨーロッパ特許出願公開No. 439,036に記載さ
れている。
5及びNo. 178,450に記載されているように、エ
ネルギー受容体としての種々のRu複合体を、該複合体
とDNA分子との間の種々のスペーサーと共に用いるこ
とができる。折返しプライマーの5′−末端にRu複合
体を取り付けるため、例えば構造〔6a〕のホスホラミ
ダイト又は構造〔6b〕の試薬を用いることができる。
好ましくは、3′−末端への導入のために誘導体〔6
b〕が使用される。
例えばヒドロキシ基又はアミノ基へのカップリングのた
め、さらなる修飾を伴わないで試薬〔6a〕を用いるこ
とができる。3′−末端への試薬〔6b〕のカップリン
グは、合成のために使用される固体支持体の幾らかの修
飾の後に行うことができる。NelsonらによりNu
cleic Acids Research 17,7
179(1989)に記載されている化合物〔8〕から
出発する一般的スキーム(スキーム1)を下に記載す
る。修飾された支持体〔10〕へのRu複合体誘導体
〔6b〕の取り付けを含むさらなる詳細は実施例2を参
照のこと。
が、本発明の範囲をこれにより限定するものではない。実施例1 ルマジン及びRu複合体ホスホラミダイトの合成 6,7−ジメチル−ルマジン−2′−デオキシリボシド
のホスホラミダイトをヨーロッパ特許出願公開No. 43
9,036(1991年7月31日)に記載されている
ようにして調製した。Ru複合体のホスホラミダイト
〔6a〕を、W.Bannwarth及びD.Schm
idtによりTetrahedron Letters
30,1513−1516(1989)により記載さ
れているようにして調製した。
特許出願公開No. 340,605に、又はW.Bann
warthらによりHelvetica Chimic
aActa 17,2085−2099(1988)に
記載されているようにしてRu複合体と活性化されたN
−ヒドロキシサクシンイミドとの連結により調製した。
N,N,N′N′−テトラメチル(サクシンイミド)ウ
ロニウムテトラヒドロボレート(TSTU)を活性化剤
として使用した。
らによりTetrahedronLetters 3
0,1927−1930(1982)に、及びW.Ba
nnwarthによりTetrahedron Let
tes 32,1157−1160(1991)に記載
されている。
ル)−3−O−((N,N−ジイソプロピルアミノ)−
β−シアノエトキシ−ホスフィン)−1,3−プロパン
ジオール〔5〕の合成 この試薬の調製は、F.Seele及びK.Kaise
rによりNucleic Acids Researc
h 15,3113−3129(1987)に記載され
ている2段階法により1,3−プロパンジオールから出
発して行った。まず、この化合物を4,4′−ジメトキ
シトリチル基により保護した。次に、ジイソプロピルア
ンモニウムテトラゾリドの存在下、(β−シアノエトキ
シ)ビス(ジイソプロピルアミノ)ホスフィンによりホ
スフィニル化して化合物〔5〕を得た。
されたCPG支持体の合成はスキーム1(前記)に記載
したようにして行った。化合物〔8〕は、Nelson
らによりNucleic Acids Researc
h 17,7179−7186及び7187−7194
(1989)に記載されている方法に従って行った。
ol,6.16g)を無水ピリジンから3回蒸発させた。
次に、これを60mlの無水ピリジンに溶解し、そして2
5mmol(2.50g)の無水コハク酸及び10mmol
(1.22g)の4−ジメチルアミノピリジン(DMA
P)を添加し、そしてアルゴンのもとで撹拌した。4時
間後、反応を終えた(TLC)。反応混合物を200ml
のジエチルエーテルに入れ、そして飽和食塩水により4
回抽出した。
発させ、こうして6gの油状物を得た。150gのシリ
カゲル(0.003〜0.040nm、メルク)上での、
1000mlの混合CH2 Cl2 /MeOH/ピリジン
(94:5:1;v/v)、500mlのCH2 Cl2 /
MeOH/ピリジン(92:7:1)及び500mlのC
H2 Cl2 /MeOH/ピリジン(89:10:1)を
用いての短カラムクロマトグラフィー(CC)による精
製を行った。純粋な画分を集め、そしてn−ペンタンか
ら沈澱させて2.3gの純粋な化合物
・0.2n−ペンタンの計算値:C72.37,H
5.99,N 1.92;測定値:C 72.60,H
6.14,N 1.94。 1H−NMR(CDC
l3 ):2.64(s,OCCH 2 CH2 CO);3.
03−3.50(2m,CH2 −CH−CH2 );3.
50−3.65(m,CH2 −CH−CH2 );3.7
4(s,2OCH3 );4.19(t,CH2 −C
H);4.34(d,CH2 −CH);6.81(d,
4arom.H,C6 H4 );7.15−7.37
(m,9arom.H,C6H5 ,C6 H4 );7.3
9(t,フルオレニル);7.51(d,フルオレニ
ル);7.76(d,フルオレニル)。
G−支持体(Pierce)を無水ピリジンから蒸発さ
せた。次にこれを10mlの無水ピリジンに溶解し、そし
て0.60mmol(430mg)の
80mg)の1−(メシチレン−2−スルホニル1−3−
ニトロ−1H−1,2,4−トリアゾール(MSNT)
及び0.3mlのN−メチルイミダゾール(NMI)を加
え、そしてこの懸濁液を室温にて時々撹拌しながら反応
させた。
ン、DMF及びエーテルにより次々と洗浄した。この支
持体に、1% DMAPを含有するAc2 O/ピリジン
(1/10;v/v)の混合物10mlを加えた。1時間
後、それを濾過し、そして支持体をピリジン、DMF、
エタノール及びエーテルで洗浄した。〔10〕の官能化
の程度を、ジメトキシトリチル陽イオンの光学測定によ
り(30.5mmol/g)そしてフルオレニルメトキシカ
ルボニル(Fmoc)基の開裂及びそれに続く300nm
での光学測定(30.1mmol/g)により決定した。
の調製:1.5mmolの支持体〔10〕から始めて合成機
上で合成を行った。各サイクルの間に、10倍過剰量の
対応するホスホラミダイトを適用した。合成の後、支持
体をアセトニトリル及びエーテルで洗浄し、そして乾燥
させた。次に、20mgの支持体を、密閉したエッペンド
ルフ管内で700μlの濃アンモニアにより67℃にて
1.5時間処理した。
た。得られたペレットを300μlの80%酢酸に溶解
し、そして2時間後700μlのエーテルを加えてDN
Aを沈澱させた。遠心分離の後、ペレットを水に溶解
し、そして500mmolのKClの添加の後、これを2l
の水に対して透析した(分子量1000排除)。UV吸
収は53ODユニットのアミノ修飾DNAの収量を示し、
これをそのまま、Ru複合体への結合のために用いた。
ッペンドルフ管内で、27.5ODユニットの3′−アミ
ノ修飾DNA及び4mmol(3mg)の〔6b〕を、200
μlのDMF、200μlのジオキサン、200μlの
水及び5μlのヒューニッヒ(Huenig)塩基の混
合物中で反応させた。この混合物を暗所で振とうしなが
ら16時間反応させた。スピード真空濃縮器中で乾燥さ
せ、そして500μlの水に溶解した。この溶液を50
0μlのCHCl3 で3回抽出して過剰のRu複合体を
除去した。ポリアクリルアミド電気泳動及びそれに続く
電気溶出により沈澱を行った。
5′−修飾を有するオリゴヌクレオチドの合成 修飾を伴わないオリゴヌクレオチドを、調節された孔の
ガラス(controlled pore glas
s)(CPG,Pierce)上で、そして適切なビル
ディングブロックのβ−シアノエチルホスホラミダイト
を適用して調製した。
を、ヨーロッパ特許出願公開No. 439,036に記載
されているようにして、ルマジン−2′−デオキシリボ
シド修飾CPG−支持体の延長により調製した。この出
願はまた、5′−ルマジン及び5′−Ru複合体−修飾
オリゴヌクレオチドの合成において使用するための方法
及び試薬も記載している。
ロパンジオール基から成る非ヌクレオチド性リンカー基
を、固相合成の間に、対応するホスホラミダイト〔5〕
により挿入した。このアミダイトの結合を、10倍過剰
量及び3分間の結合時間を用いて、活性化剤としてのテ
トラゾールと共に2回行った。3′−末端へのRu複合
体の付加は、実施例2に記載したオリゴヌクレオチドの
合成及び脱保護の後にRu複合体誘導体〔6b〕を用い
て行った。
反応 幾つかのオリゴヌクレオチドを合成し、そしてホリメラ
ーゼ連鎖反応においてプライマーとして作用するそれら
の能力について試験した。増幅のために選択されたDN
A断片はHIV−1のgag領域の一部分である。5′
−末端にRu複合体を有する〔16〕か又は有しない
〔14,15〕常用のプライマー並びに一般式(I)の
修飾プライマー〔17,18〕を、すでに記載されてい
る方法により合成した。プライマーは次の特異的配列を
有していた。
に使用した第二プライマー又は対向プライマーは次の配
列を有していた。
Ouら、Science 239,295−297(1
988)の表2にすでに記載されているプライマー及び
プローブ配列に由来した。増幅反応当り1000コピー
のHIVプラスミドDNAが適用された。プライマーは
100pMで過剰に使用した。〔19〕の場合、50pMが
適用された。HIV DNAを2連で増幅し、そしてP
CR陰性対照を導入した。プライマー〔14〕及び〔1
9〕を用いての増幅を陽性対照として用いた。
め、50μlのマスター混合物に50μlのHIV D
NAを加えた。 マスター混合物: 蒸留水 27.5μl 10×Taq緩衝液 10.0μl 8mM dNTP 10.0μl 100mMプライマー(14−18) 3.0μl 50mMプライマー19 3.0μl Taqポリメラーゼ 0.5μl
ザンハイブリダイゼーション(E.M.Souther
n,Journal of Molecular Bi
ology 98,503,1975)により、放射性
ラベルされたプローブ5′−ATC CTG GGA
TTA C−3′を用いて試験した。ハイブリダイゼー
ションは、リン酸緩衝液(10mM無機リン酸:1M N
aCl,pH7.0)中で、等モル量のオリゴヌクレオチ
ドを用いてよく行われた。5′−末端にRu複合体を有
する最も短い折返しプライマーさえ、効率において標準
的非修飾プライマーに匹敵する特異的増幅を導いた。
延長された折返しプライマーの検出 一般式(I)の折返しプライマーが、ポリメラーゼ連鎖
反応におけるその延長後に、一般式(II)のオリゴヌク
レオチドプライマーによる引き続く検出のための鋳型と
して機能し得るか否かが決定された。5′−Ru−複合
体−ラベル化オリゴヌクレオチド〔1〕は、3′−ルマ
ジン−ラベル化プローブ〔2a〕,〔2b〕及び〔2
d〕並びに陰性プローブ〔2c〕のための鋳型として機
能する構造(I)の延長されたプライマーのための合成
モドル化合物として役立つ。
(10mM無機リン酸塩;1M NaCl,pH7.0)中
で等モル比のオリゴヌクレオチドを用いてよく行われ
た。蛍光測定を、SLM Model 4048S蛍光
分光計において行った。励起波長及び放射波長はそれぞ
れ337nm及び620nmであった。ハイブリドの濃度は
サンプル体積400μlのために1.3×10-6Mであ
った。
予想通り、プローブ〔2a〕及び〔2b〕の場合結果は
陽性であり、そしてプローブ〔2c〕及び〔2d〕の場
合陰性であった。
20nmにおける測定された蛍光(IF)から直接励起に
よるRu複合体の蛍光及び620nmにおけるルマジン色
原体の蛍光(IF1 )(無視することができる)を差し
引いた差として定義された。従って、エネルギー移行の
強度についての式はIF3 =IF−IF2 となる。単純
化のため、表1には、直接励起によるRu複合体の蛍光
強度(IF2 )に対する620nmでの測定された蛍光強
度IFの比率を示す。5′−リマジン−ラベルプライマ
ー及び3′−Ru複合体−ラベルプローブを用いる逆エ
ネルギー移行系を化合物〔11〕,〔12〕及び〔1
3〕を用いて研究した。
2〕(エネルギー移行を示す)及びエネルギー移行を伴
わない陰性対照としての〔13〕/〔12〕を用いて得
た結果は、エネルギー移行の効率はやや低かった(デー
ターは示してない)が、この組合せの有用性を確認し
た。
性及び増幅段階を示し、b)及びc)検出段階を示す。
Claims (15)
- 【請求項1】 サンプル中の少なくとも1つの特定の核
酸配列の増幅及び検出のための方法であって、該サンプ
ルは1つの核酸又は複数の核酸の混合物であってその少
なくとも1つが前記特定の核酸配列を含有すると予想さ
れるものであり、この方法は、 (a)検出されるべき核酸配列を鎖延長反応により増幅
し、ここでこの鎖延長反応は、次の一般式(I): X−Pc−L−Pp (I) (式中、Ppは、検出されるべき核酸配列の一方の鎖の
一部分と実質的に相補的なオリゴヌクレオチド配列であ
り、Pcは該配列Ppに実質的に相補的な核酸配列であ
り、Lは配列PcとPpのプライマー延長配列との間の
効率的な折り返しを可能にしそして折り返し部分Pcの
増幅を回避するように選択された非−ヌクレオチドリン
カー基であり、そしてXはエネルギー供与体又は受容体
である)により表わされる第一オリゴヌクレオチドプラ
イマー、及び検出されるべき核酸配列の他方の鎖の一部
分と実質的に相補的な第二オリゴヌクレオチドプライマ
ーを使用し; (b)最終増幅サイクルの後、プライマー延長生成物を
その相補的配列から分離して単鎖分子を生成せしめ; (c)前記式(I)のプライマーを含有する前記単鎖分
子を、次の一般式(II): Y−Pr (II) (式中、Yは、式(I)のプライマー中のXがエネルギ
ー供与体である場合にはエネルギー受容体であり、そし
て式(I)のプライマー中のXがエネルギー受容体であ
る場合にはエネルギー供与体であり、そしてPrは、式
(I)のプライマーを含有する増幅された単鎖分子の一
部分と相補的なオリゴヌクレオチドであって、配列Pc
の折り返し及び前記単鎖分子への配列Pcのハイブリダ
イゼーションの後にエネルギーの移行が行われ得る程X
とYとの間の短い距離を保証するように選択されたもの
である)により表わされるオリゴヌクレオチドプローブ
により、折り返しによる配列Pc及びPr配列の前記単
鎖分子へのハイブリダイゼーションを可能にする条件下
で処理し;そして (d)エネルギー移行が行われるか否かを決定する;こ
とを含んで成る方法。 - 【請求項2】 Xがエネルギー供与体であり、そしてY
がエネルギー受容体である、請求項1に記載の方法。 - 【請求項3】 Xがエネルギー受容体であり、そしてY
がエネルギー供与体である請求項1に記載の方法。 - 【請求項4】 前記エネルギー供与体がルマジン色原体
であり、そして前記エネルギー受容体がバソフェナンス
ロリン−ルテニウム−II−複合体である、請求項1〜3
のいずれか1項に記載の方法。 - 【請求項5】 Lが、1個のホスフェート基により一緒
に連結されそしてオリゴヌクレオチドPc及びPpにホ
スフェート基を介して結合されている2個のプロパンジ
オールユニットから成る、請求項1〜4のいずれか1項
に記載の方法。 - 【請求項6】 前記鎖延長反応がポリメラーゼ連鎖反応
である、請求項1〜5のいずれか1項に記載の方法。 - 【請求項7】 次の一般式(I) X−Pc−L−Pp (I) (式中、Ppは、検出されるべき核酸配列の一方の鎖の
一部分と実質的に相補的なオリゴヌクレオチド配列であ
り、Pcは該配列Ppに実質的に相補的な核酸配列であ
り、Lは配列PcとPpのプライマー延長配列との間の
効率的な折り返しを可能にしそして折り返し部分Pcの
増幅を回避するように選択された非−ヌクレオチドリン
カー基であり、そしてXはエネルギー供与体又は受容体
である)により表わされるオリゴヌクレオチドプライマ
ー。 - 【請求項8】 Xがエネルギー供与体である、請求項7
に記載のプライマー。 - 【請求項9】 Xがエネルギー受容体である、請求項7
に記載のプライマー。 - 【請求項10】 Xがルマジン色原体である請求項7又
は8に記載のプライマー。 - 【請求項11】 Xがバソフェナンスロリン−ルテニウ
ム−II−複合体である、請求項7又は9に記載のプライ
マー。 - 【請求項12】 Lが、1個のホスフェート基により一
緒に連結されそしてオリゴヌクレオチド配列Pc及びP
pにホスフェート基を介して結合されている2個のプロ
パンジオールユニットから成る、請求項7〜11のいず
れか1項に記載のプライマー。 - 【請求項13】 1つの核酸又は複数の核酸の混合物で
あってその内の少なくとも1つが特定の核酸配列を含有
すると予想されるものを含有するサンプル中の少なくと
も1つの該特定の核酸配列を増幅し且つ検出するための
キットであって、請求項7〜12のいずれか1項におい
て定義した式(I)のプライマーを含有する容器、請求
項1において定義した式(II)のプローブを含有する容
器、並びにポリメラーゼ連鎖反応による増幅及び検出の
ための手段及び試薬を含んで成る診断用キット。 - 【請求項14】 プロパンジオールに由来しそしてP
(O)2 - を含有する非ヌクレオチド性リンカー基。 - 【請求項15】 次の式: -O-P(O)2 - -O-(CH2)3-O-P(O)2 - -O-(CH2)3-O-P(O)2 - -O- により特徴付けられる、請求項14に記載の非ヌクレオ
チドリンカー基。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE92104956:5 | 1992-03-23 | ||
EP92104956A EP0566751B1 (en) | 1992-03-23 | 1992-03-23 | DNA detection method |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH067199A true JPH067199A (ja) | 1994-01-18 |
JP3771281B2 JP3771281B2 (ja) | 2006-04-26 |
Family
ID=8209457
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP06153893A Expired - Lifetime JP3771281B2 (ja) | 1992-03-23 | 1993-03-22 | 特定の核酸の検出方法 |
Country Status (9)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US5573906A (ja) |
EP (1) | EP0566751B1 (ja) |
JP (1) | JP3771281B2 (ja) |
CA (1) | CA2090904C (ja) |
DE (1) | DE69207580T2 (ja) |
DK (1) | DK0566751T3 (ja) |
ES (1) | ES2082256T3 (ja) |
GR (1) | GR3019617T3 (ja) |
IE (1) | IE72498B1 (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1998013524A1 (fr) * | 1996-09-27 | 1998-04-02 | Laboratory Of Molecular Biophotonics | Sondes de detection de polynucleotides et procede de detection |
JP2003506068A (ja) * | 1999-08-04 | 2003-02-18 | イギリス国 | 蛍光エネルギー移動を含む標的核酸を検出するための増幅方法 |
Families Citing this family (119)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5935522A (en) * | 1990-06-04 | 1999-08-10 | University Of Utah Research Foundation | On-line DNA analysis system with rapid thermal cycling |
US7273749B1 (en) | 1990-06-04 | 2007-09-25 | University Of Utah Research Foundation | Container for carrying out and monitoring biological processes |
US7081226B1 (en) | 1996-06-04 | 2006-07-25 | University Of Utah Research Foundation | System and method for fluorescence monitoring |
US6576419B1 (en) * | 1993-07-23 | 2003-06-10 | University Of Utah Research Foundation | Assay procedure using fluorogenic tracers |
US6071699A (en) * | 1996-06-07 | 2000-06-06 | California Institute Of Technology | Nucleic acid mediated electron transfer |
US5952172A (en) | 1993-12-10 | 1999-09-14 | California Institute Of Technology | Nucleic acid mediated electron transfer |
US5591578A (en) | 1993-12-10 | 1997-01-07 | California Institute Of Technology | Nucleic acid mediated electron transfer |
US5824473A (en) | 1993-12-10 | 1998-10-20 | California Institute Of Technology | Nucleic acid mediated electron transfer |
US5620850A (en) | 1994-09-26 | 1997-04-15 | President And Fellows Of Harvard College | Molecular recognition at surfaces derivatized with self-assembled monolayers |
CA2257109C (en) * | 1996-06-04 | 2009-10-06 | University Of Utah Research Foundation | Monitoring hybridization during pcr |
ATE390491T1 (de) * | 1996-06-04 | 2008-04-15 | Univ Utah Res Found | Behälter zum durchführen und beobachten biologischer prozesse |
US6444423B1 (en) | 1996-06-07 | 2002-09-03 | Molecular Dynamics, Inc. | Nucleosides comprising polydentate ligands |
US6117635A (en) * | 1996-07-16 | 2000-09-12 | Intergen Company | Nucleic acid amplification oligonucleotides with molecular energy transfer labels and methods based thereon |
WO1998002582A2 (en) * | 1996-07-16 | 1998-01-22 | Gen-Probe Incorporated | Methods for detecting and amplifying nucleic acid sequences using modified oligonucleotides having increased target specific t¿m? |
US7070925B1 (en) | 1996-07-16 | 2006-07-04 | Gen-Probe Incorporated | Method for determining the presence of an RNA analyte in a sample using a modified oligonucleotide probe |
US5866336A (en) * | 1996-07-16 | 1999-02-02 | Oncor, Inc. | Nucleic acid amplification oligonucleotides with molecular energy transfer labels and methods based thereon |
US5853990A (en) | 1996-07-26 | 1998-12-29 | Edward E. Winger | Real time homogeneous nucleotide assay |
US7160678B1 (en) | 1996-11-05 | 2007-01-09 | Clinical Micro Sensors, Inc. | Compositions for the electronic detection of analytes utilizing monolayers |
US7045285B1 (en) | 1996-11-05 | 2006-05-16 | Clinical Micro Sensors, Inc. | Electronic transfer moieties attached to peptide nucleic acids |
US7393645B2 (en) * | 1996-11-05 | 2008-07-01 | Clinical Micro Sensors, Inc. | Compositions for the electronic detection of analytes utilizing monolayers |
US7381525B1 (en) | 1997-03-07 | 2008-06-03 | Clinical Micro Sensors, Inc. | AC/DC voltage apparatus for detection of nucleic acids |
US7014992B1 (en) | 1996-11-05 | 2006-03-21 | Clinical Micro Sensors, Inc. | Conductive oligomers attached to electrodes and nucleoside analogs |
US6096273A (en) * | 1996-11-05 | 2000-08-01 | Clinical Micro Sensors | Electrodes linked via conductive oligomers to nucleic acids |
US7803528B1 (en) | 1997-02-28 | 2010-09-28 | Quest Diagnostics Incorporated | Fluorescence energy transfer by competitive hybridization |
CA2284612A1 (en) * | 1997-04-04 | 1998-10-15 | Michael Knapp | Closed-loop biochemical analyzers |
US6391622B1 (en) | 1997-04-04 | 2002-05-21 | Caliper Technologies Corp. | Closed-loop biochemical analyzers |
US6235471B1 (en) | 1997-04-04 | 2001-05-22 | Caliper Technologies Corp. | Closed-loop biochemical analyzers |
US6013459A (en) | 1997-06-12 | 2000-01-11 | Clinical Micro Sensors, Inc. | Detection of analytes using reorganization energy |
US6342350B1 (en) * | 1997-09-05 | 2002-01-29 | The General Hospital Corporation | Alpha-2-macroglobulin diagnostic test |
US6485901B1 (en) * | 1997-10-27 | 2002-11-26 | Boston Probes, Inc. | Methods, kits and compositions pertaining to linear beacons |
US6355421B1 (en) | 1997-10-27 | 2002-03-12 | Boston Probes, Inc. | Methods, kits and compositions pertaining to PNA molecular beacons |
US6686150B1 (en) | 1998-01-27 | 2004-02-03 | Clinical Micro Sensors, Inc. | Amplification of nucleic acids with electronic detection |
EP1051517A2 (en) | 1998-01-27 | 2000-11-15 | Clinical Micro Sensors, Inc. | Amplification of nucleic acids with electronic detection |
US6268146B1 (en) | 1998-03-13 | 2001-07-31 | Promega Corporation | Analytical methods and materials for nucleic acid detection |
US6270974B1 (en) | 1998-03-13 | 2001-08-07 | Promega Corporation | Exogenous nucleic acid detection |
US6270973B1 (en) | 1998-03-13 | 2001-08-07 | Promega Corporation | Multiplex method for nucleic acid detection |
US6703211B1 (en) | 1998-03-13 | 2004-03-09 | Promega Corporation | Cellular detection by providing high energy phosphate donor other than ADP to produce ATP |
US6312902B1 (en) | 1998-03-13 | 2001-11-06 | Promega Corporation | Nucleic acid detection |
US7090975B2 (en) * | 1998-03-13 | 2006-08-15 | Promega Corporation | Pyrophosphorolysis and incorporation of nucleotide method for nucleic acid detection |
US6235480B1 (en) | 1998-03-13 | 2001-05-22 | Promega Corporation | Detection of nucleic acid hybrids |
US6277578B1 (en) | 1998-03-13 | 2001-08-21 | Promega Corporation | Deploymerization method for nucleic acid detection of an amplified nucleic acid target |
US6391551B1 (en) | 1998-03-13 | 2002-05-21 | Promega Corporation | Detection of nucleic acid hybrids |
US6361942B1 (en) | 1998-03-24 | 2002-03-26 | Boston Probes, Inc. | Method, kits and compositions pertaining to detection complexes |
US6287772B1 (en) * | 1998-04-29 | 2001-09-11 | Boston Probes, Inc. | Methods, kits and compositions for detecting and quantitating target sequences |
DE69910026T2 (de) * | 1998-06-12 | 2004-04-15 | Intergen Co. | Mehrfach fluoreszierende und energie übertragende hairpin-oligonukleotide |
GB9812768D0 (en) | 1998-06-13 | 1998-08-12 | Zeneca Ltd | Methods |
US7087148B1 (en) | 1998-06-23 | 2006-08-08 | Clinical Micro Sensors, Inc. | Binding acceleration techniques for the detection of analytes |
US6761816B1 (en) | 1998-06-23 | 2004-07-13 | Clinical Micro Systems, Inc. | Printed circuit boards with monolayers and capture ligands |
US6290839B1 (en) | 1998-06-23 | 2001-09-18 | Clinical Micro Sensors, Inc. | Systems for electrophoretic transport and detection of analytes |
DE69941333D1 (de) * | 1998-07-02 | 2009-10-08 | Gen Probe Inc | Molekulare fackeln |
US6740518B1 (en) * | 1998-09-17 | 2004-05-25 | Clinical Micro Sensors, Inc. | Signal detection techniques for the detection of analytes |
WO2000024941A1 (en) | 1998-10-27 | 2000-05-04 | Clinical Micro Sensors, Inc. | Detection of target analytes using particles and electrodes |
US6833267B1 (en) * | 1998-12-30 | 2004-12-21 | Clinical Micro Sensors, Inc. | Tissue collection devices containing biosensors |
US6627400B1 (en) | 1999-04-30 | 2003-09-30 | Aclara Biosciences, Inc. | Multiplexed measurement of membrane protein populations |
US20040248150A1 (en) * | 1999-04-02 | 2004-12-09 | Sharat Singh | Methods employing oligonucleotide-binding e-tag probes |
US6322980B1 (en) * | 1999-04-30 | 2001-11-27 | Aclara Biosciences, Inc. | Single nucleotide detection using degradation of a fluorescent sequence |
US7312087B2 (en) | 2000-01-11 | 2007-12-25 | Clinical Micro Sensors, Inc. | Devices and methods for biochip multiplexing |
US6942771B1 (en) | 1999-04-21 | 2005-09-13 | Clinical Micro Sensors, Inc. | Microfluidic systems in the electrochemical detection of target analytes |
US20020177135A1 (en) | 1999-07-27 | 2002-11-28 | Doung Hau H. | Devices and methods for biochip multiplexing |
US7037654B2 (en) | 1999-04-30 | 2006-05-02 | Aclara Biosciences, Inc. | Methods and compositions for enhancing detection in determinations employing cleavable electrophoretic tag reagents |
US6673550B2 (en) | 1999-04-30 | 2004-01-06 | Aclara Biosciences, Inc. | Electrophoretic tag reagents comprising fluorescent compounds |
US20030235832A1 (en) * | 2000-06-21 | 2003-12-25 | Ahmed Chenna | Multiplexed analysis by chromatographic separation of molecular tags |
US7001725B2 (en) | 1999-04-30 | 2006-02-21 | Aclara Biosciences, Inc. | Kits employing generalized target-binding e-tag probes |
AU779220B2 (en) | 1999-07-26 | 2005-01-13 | Clinical Micro Sensors, Inc. | Sequence determination of nucleic acids using electronic detection |
US7771929B2 (en) * | 2000-04-28 | 2010-08-10 | Monogram Biosciences, Inc. | Tag library compounds, compositions, kits and methods of use |
US20030207300A1 (en) * | 2000-04-28 | 2003-11-06 | Matray Tracy J. | Multiplex analytical platform using molecular tags |
US7160735B2 (en) * | 2000-04-28 | 2007-01-09 | Monogram Biosciences, Inc. | Tagged microparticle compositions and methods |
US7537938B2 (en) * | 2000-04-28 | 2009-05-26 | Monogram Biosciences, Inc. | Biomarker detection in circulating cells |
US6753143B2 (en) | 2000-05-01 | 2004-06-22 | Clinical Micro Sensors, Inc. | Target analyte detection using asymmetrical self-assembled monolayers |
JP4382265B2 (ja) * | 2000-07-12 | 2009-12-09 | 日本電気株式会社 | 酸化シリコン膜の形成方法及びその形成装置 |
WO2002083922A2 (en) * | 2001-04-11 | 2002-10-24 | The Government Of The United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health & Human Services | Modified random primers for probe labeling |
US7041459B2 (en) | 2001-05-21 | 2006-05-09 | Monogram Biosciences, Inc. | Analyzing phosphorylated proteins |
WO2002095356A2 (en) | 2001-05-21 | 2002-11-28 | Aclara Biosciences, Inc. | Methods and compositions for analyzing proteins |
GB0112868D0 (en) | 2001-05-25 | 2001-07-18 | Secr Defence | Detection system |
US7358052B2 (en) * | 2001-05-26 | 2008-04-15 | Monogram Biosciences, Inc. | Catalytic amplification of multiplexed assay signals |
US6905827B2 (en) | 2001-06-08 | 2005-06-14 | Expression Diagnostics, Inc. | Methods and compositions for diagnosing or monitoring auto immune and chronic inflammatory diseases |
US7235358B2 (en) | 2001-06-08 | 2007-06-26 | Expression Diagnostics, Inc. | Methods and compositions for diagnosing and monitoring transplant rejection |
US7026121B1 (en) | 2001-06-08 | 2006-04-11 | Expression Diagnostics, Inc. | Methods and compositions for diagnosing and monitoring transplant rejection |
US7118864B2 (en) | 2001-06-15 | 2006-10-10 | Quiatech Ab | Amplifiable probe |
EP1537240A2 (en) * | 2002-09-06 | 2005-06-08 | Johns Hopkins Singapore Pte Ltd | Strand specific detection and quantification |
US8394944B2 (en) * | 2002-09-20 | 2013-03-12 | Siemens Healthcare Diagnostics Inc. | Dual-purpose primers and probes for providing enhanced hybridization assays by disruption of secondary structure formation |
MXPA05010429A (es) | 2003-03-31 | 2005-11-04 | Hoffmann La Roche | Composiciones y metodos para detectar ciertos flavivirus que incluyen miembros del serogrupo del virus de la encefalitis japonesa. |
US7820030B2 (en) | 2003-04-16 | 2010-10-26 | Handylab, Inc. | System and method for electrochemical detection of biological compounds |
US7892745B2 (en) | 2003-04-24 | 2011-02-22 | Xdx, Inc. | Methods and compositions for diagnosing and monitoring transplant rejection |
US20050130246A1 (en) * | 2003-10-27 | 2005-06-16 | Hossein Salimi-Moosavi | Detecting human anti-therapeutic antibodies |
CA2577122C (en) * | 2004-08-27 | 2017-06-13 | Gen-Probe Incorporated | Single-primer nucleic acid amplification methods |
US7713697B2 (en) * | 2004-08-27 | 2010-05-11 | Gen-Probe Incorporated | Methods and kits for amplifying DNA |
US7645575B2 (en) | 2004-09-08 | 2010-01-12 | Xdx, Inc. | Genes useful for diagnosing and monitoring inflammation related disorders |
EP2418018B1 (en) | 2004-12-23 | 2013-05-22 | Abbott Point of Care Inc. | Methods for the separation nucleic acids |
JP2008539761A (ja) * | 2005-05-11 | 2008-11-20 | ストラタジーン カリフォルニア | スナップバックオリゴヌクレオチドプローブ |
RU2005132940A (ru) * | 2006-03-01 | 2007-11-27 | Институт биохимии и генетики Уфимского научного центра РАН (RU) | Способ детекции специфических фрагментов днк или рнк с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени |
EP2029775B1 (en) * | 2006-06-05 | 2014-10-15 | California Institute Of Technology | Real time micro arrays |
US11001881B2 (en) | 2006-08-24 | 2021-05-11 | California Institute Of Technology | Methods for detecting analytes |
US7833716B2 (en) | 2006-06-06 | 2010-11-16 | Gen-Probe Incorporated | Tagged oligonucleotides and their use in nucleic acid amplification methods |
JP2008029333A (ja) * | 2006-07-03 | 2008-02-14 | Fujifilm Corp | 新規遺伝子増幅法に用いられるプライマー |
US8048626B2 (en) * | 2006-07-28 | 2011-11-01 | California Institute Of Technology | Multiplex Q-PCR arrays |
US11525156B2 (en) | 2006-07-28 | 2022-12-13 | California Institute Of Technology | Multiplex Q-PCR arrays |
WO2008021431A2 (en) | 2006-08-14 | 2008-02-21 | Xdx, Inc. | Methods and compositions for diagnosing and monitoring the status of transplant rejection and immune disorders |
US11560588B2 (en) | 2006-08-24 | 2023-01-24 | California Institute Of Technology | Multiplex Q-PCR arrays |
EP2102367A2 (en) | 2006-11-09 | 2009-09-23 | XDX, Inc. | Methods for diagnosing and monitoring the status of systemic lupus erythematosus |
US9938641B2 (en) * | 2006-12-18 | 2018-04-10 | Fluidigm Corporation | Selection of aptamers based on geometry |
US8183359B2 (en) * | 2007-03-01 | 2012-05-22 | Gen-Probe Incorporated | Kits for amplifying DNA |
EP2140033B1 (en) | 2007-03-28 | 2012-10-10 | Signal Diagnostics | System and method for high resolution analysis of nucleic acids to detect sequence variations |
WO2008152144A1 (de) * | 2007-06-13 | 2008-12-18 | Attomol Gmbh Molekulare Diagnostika | Verfahren und sonden/primersystem zum 'real time' nachweis eines nukleinsäuretargets |
US10669574B2 (en) | 2008-11-18 | 2020-06-02 | XCR Diagnostics, Inc. | DNA amplification technology |
CN102686728B (zh) | 2009-06-29 | 2018-09-18 | 卢米耐克斯公司 | 具有发夹构象的嵌合引物及其使用方法 |
US8940487B2 (en) * | 2010-02-09 | 2015-01-27 | UmiTaq Bio | Methods and compositions for universal detection of nucleic acids |
DE102010003781B4 (de) * | 2010-04-08 | 2012-08-16 | Aj Innuscreen Gmbh | Verfahren zum Nachweis spezifischer Nukleinsäuresequenzen |
GB201007867D0 (en) | 2010-05-11 | 2010-06-23 | Enigma Diagnostics Ltd | Signalling system |
US10370707B2 (en) | 2013-10-09 | 2019-08-06 | Fluoresentric, Inc. | Multiplex probes |
RU2017103505A (ru) | 2014-07-10 | 2018-08-15 | Флюоресентрик, Инк. | Технология амплификации днк |
US9708647B2 (en) | 2015-03-23 | 2017-07-18 | Insilixa, Inc. | Multiplexed analysis of nucleic acid hybridization thermodynamics using integrated arrays |
US9499861B1 (en) | 2015-09-10 | 2016-11-22 | Insilixa, Inc. | Methods and systems for multiplex quantitative nucleic acid amplification |
WO2017155858A1 (en) | 2016-03-07 | 2017-09-14 | Insilixa, Inc. | Nucleic acid sequence identification using solid-phase cyclic single base extension |
WO2018055577A1 (en) | 2016-09-23 | 2018-03-29 | Synthena Ag | Mixed tricyclo-dna, 2'-modified rna oligonucleotide compositions and uses thereof |
CN110945005A (zh) | 2017-04-20 | 2020-03-31 | 新特纳股份公司 | 包含三环dna核苷的修饰的寡聚化合物及其用途 |
WO2018193428A1 (en) | 2017-04-20 | 2018-10-25 | Synthena Ag | Modified oligomeric compounds comprising tricyclo-dna nucleosides and uses thereof |
EP3937780A4 (en) | 2019-03-14 | 2022-12-07 | InSilixa, Inc. | METHODS AND SYSTEMS FOR TIMED FLUORESCENCE-BASED DETECTION |
EP3978608A1 (en) | 2020-10-05 | 2022-04-06 | SQY Therapeutics | Oligomeric compound for dystrophin rescue in dmd patients throughout skipping of exon-51 |
Family Cites Families (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR2565996B1 (fr) * | 1984-06-15 | 1988-01-22 | Inst Nat Sante Rech Med | Acides nucleiques marques chimiquement, leur utilisation et necessaire pour sa mise en oeuvre |
US4683202A (en) * | 1985-03-28 | 1987-07-28 | Cetus Corporation | Process for amplifying nucleic acid sequences |
US5215899A (en) * | 1989-11-09 | 1993-06-01 | Miles Inc. | Nucleic acid amplification employing ligatable hairpin probe and transcription |
CA2033692A1 (en) * | 1990-01-25 | 1991-07-26 | Wilhelm Bannwarth | Energy transfer systems |
-
1992
- 1992-03-23 ES ES92104956T patent/ES2082256T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1992-03-23 DE DE69207580T patent/DE69207580T2/de not_active Expired - Lifetime
- 1992-03-23 EP EP92104956A patent/EP0566751B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1992-03-23 DK DK92104956.5T patent/DK0566751T3/da active
-
1993
- 1993-03-03 CA CA002090904A patent/CA2090904C/en not_active Expired - Lifetime
- 1993-03-22 US US08/035,010 patent/US5573906A/en not_active Expired - Lifetime
- 1993-03-22 JP JP06153893A patent/JP3771281B2/ja not_active Expired - Lifetime
- 1993-03-22 IE IE930219A patent/IE72498B1/en not_active IP Right Cessation
-
1996
- 1996-04-09 GR GR960401012T patent/GR3019617T3/el unknown
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1998013524A1 (fr) * | 1996-09-27 | 1998-04-02 | Laboratory Of Molecular Biophotonics | Sondes de detection de polynucleotides et procede de detection |
JP2003506068A (ja) * | 1999-08-04 | 2003-02-18 | イギリス国 | 蛍光エネルギー移動を含む標的核酸を検出するための増幅方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JP3771281B2 (ja) | 2006-04-26 |
US5573906A (en) | 1996-11-12 |
IE72498B1 (en) | 1997-04-23 |
DE69207580D1 (de) | 1996-02-22 |
CA2090904C (en) | 2004-08-10 |
GR3019617T3 (en) | 1996-07-31 |
CA2090904A1 (en) | 1993-09-24 |
EP0566751B1 (en) | 1996-01-10 |
DK0566751T3 (da) | 1996-03-04 |
DE69207580T2 (de) | 1996-08-08 |
EP0566751A1 (en) | 1993-10-27 |
ES2082256T3 (es) | 1996-03-16 |
IE930219A1 (en) | 1993-10-06 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP3771281B2 (ja) | 特定の核酸の検出方法 | |
EP1368489B1 (en) | Asynchronous primed pcr | |
KR0145908B1 (ko) | 핵산 증폭 검출방법 | |
US5525494A (en) | Amplification processes | |
EP0543889B1 (en) | Incorporation of selectably clevable sites into oligonucleotide chains and reagents therefor | |
US5258506A (en) | Photolabile reagents for incorporation into oligonucleotide chains | |
US6130038A (en) | Method for amplifying target nucleic acids using modified primers | |
JP2641322B2 (ja) | 大きな櫛型分枝状ポリヌクレオチド | |
JP2004535382A (ja) | 移動度改変ヌクレオ塩基ポリマーおよび同一物を使用する方法 | |
JP2009017882A (ja) | 標的ハイブリダイゼーション検出のための、プローブおよびクランプのバイナリー組成物ならびに方法 | |
US7495093B2 (en) | Amplification and detection method | |
EP1442142A2 (en) | NUCLEIC ACID PROBES AND METHODS TO DETECT AND/OR QUANTIFY NUCLEIC ACID ANALYTES | |
JPH05211872A (ja) | エネルギー転移系 | |
CA2494571C (en) | Oligonucleotides containing molecular rods | |
JPH10500572A (ja) | 標的核酸を検出する方法 | |
US20080015349A1 (en) | Oligonucleotide production | |
JP3970816B2 (ja) | バックグラウンドを下げる蛍光ハイブリダイゼーションプローブ | |
US20040161749A1 (en) | 3' end tagged oligonucleotides | |
WO1992022671A1 (en) | Polynucleotide determination with selectable cleavage sites | |
JPH08501212A (ja) | エキソヌクレオリチック活性を用いた標的核酸の検出及び増幅 | |
EP1035214B1 (en) | A 3'-end modified nucleic acid probe, suitable for hybridization and detection via fluorescence | |
AU2001268235B2 (en) | Asynchronous primed PCR | |
McGuire | Synthesis and studies of modified nucleotides and oligonucleotides | |
AU2001268235A1 (en) | Asynchronous primed PCR |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20050517 |
|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20050811 |
|
A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20051115 |
|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20051128 |
|
TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20060110 |
|
A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20060209 |
|
R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |
|
FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20100217 Year of fee payment: 4 |
|
FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20100217 Year of fee payment: 4 |
|
FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20110217 Year of fee payment: 5 |
|
FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120217 Year of fee payment: 6 |
|
FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20130217 Year of fee payment: 7 |
|
FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20140217 Year of fee payment: 8 |