JPH0662569B2 - 色原体アクリジノン酵素基質及びその製造方法 - Google Patents

色原体アクリジノン酵素基質及びその製造方法

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JPH0662569B2 JP62308813A JP30881387A JPH0662569B2 JP H0662569 B2 JPH0662569 B2 JP H0662569B2 JP 62308813 A JP62308813 A JP 62308813A JP 30881387 A JP30881387 A JP 30881387A JP H0662569 B2 JPH0662569 B2 JP H0662569B2
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Description

【発明の詳細な説明】 発明の背景 本発明は分析試験系における光学指示薬化合物として有
用な色原体化合物に関する。更に詳しくは、本発明は新
規な色原体酵素基質化合物、及び液体試験試料中の酵素
の検出のための分析試験系におけるその使用に関する。
酵素類の測定は、生化学的研究、環境試験及び工業試
験、並びに医療診断学のような種々の分野において重要
である。血清及び血漿のような体液中の酵素の量を定量
することは、疾患の状態やその処置を診断するうえで非
常に有用な情報を医師に与える。酵素類は、生体液中の
重要な分析対象物であるのに加えて、免疫試験及び核酸
の交雑技術のような種々の分析方法における検出試薬と
しても用いることができる。かかる方法において、酵素
類は生じる抗原−抗体結合又は核酸の混成の程度を監視
する標識体として直接に、又は間接に有用なものであ
る。
したがって、酵素分析物質を検出したり種々の分析試験
系における診断具として酵素標識体を用いたいという要
望により、かかる酵素類の活性を検出し測定するのに用
いる光学指示薬化合物が開発されるようになった。通
常、かかる公知の光学指示薬化合物は、対象とする酵素
に関して特異的な酵素開裂性基質基によって誘導され
る、螢光助剤又は色原体のような検出可能な化学基から
なる。かかる光学指示薬化合物は、単独の本来の形態の
螢光助剤又は色原体によって得られる光学信号とは異な
る光学信号を示す。理論的には、酵素は指示薬化合物を
開裂せしめ、明らかな螢光性を有するか、又は着色され
た生成物の形態の螢光助剤又は色原体を遊離させ、存在
する酵素の量に比例した螢光又は色の変化を与え、これ
らは更に、液体試験試料中に存在する分析対象物の量に
相関させることができる。
特に、ヒドロラーゼ類、すなわちエステル類、グリコシ
ド結合、ペプチド結合、他の炭素−窒素結合及び酸無水
物類の加水分解反応に触媒作用を与える酵素類の検出及
び／又は測定［LehningerのBiochemistry（ニューヨー
ク州、ニューヨークのWorth Publishers,Inc.発行、１
９７０年）１４８頁を参照のこと］は、例えば、膵臓の
機能障害の診断におけるアミラーゼ及びリパーゼの測定
［KaplanとPesceのClinical Chemistry Theory,Analysi
s and Correlation）ミズーリ州セントルイスのC.V.Mos
by Co.発行、１９８４年）５６章を参照のこと］、腎臓
疾患の指示薬としてのＮ−アセチルグルコサミニダーゼ
（ＮＡＧ）の測定［PriceのCurr.Probl.Clin.Biochem.
第９巻、１５０頁（１９７９年）を参照のこと］及び白
血球の指示薬としてのエステラーゼの検出［SkjoldのCh
in,Chem.第３１巻９９３頁（１９８５年）を参照のこ
と］といったような、種々の疾患の診断及び監視におい
て重要なものである。ヒドロラーゼ類は、近年、疾患の
監視における有用性に加えて、診断学並びにバイオテク
ノロジーの領域においての重要性が高まっている。例え
ば、アルカリのホスファターゼ及び、好ましくはβ−Ｄ
−ガラクトシダーゼは、酵素免疫試験のための指示酵素
としての使用が増加していることが認められる［Annals
of Clinical Biochemistry、第１６巻、２２１〜４０
頁（１９７９年）を参照のこと］。
したがって、グルコシダーゼ類、特にβ−Ｄ−ガラクト
シダーゼを分析試験系における指示薬酵素標識体として
用いることは、β−Ｄ−ガラクトシダーゼによって加水
分解され、それぞれ、紫外領域において分光学的に測定
されるフェノール類、又は短波長可視領域において測定
されるニトロフェノール類を遊離する、フェニル−β−
Ｄ−ガラクトシド、ｏ−ニトロフェニル−β−Ｄ−ガラ
クトシド及びｐ−ニトロフェニル−β−Ｄ−ガラクトシ
ドのような基質グリコシド類［Biochem.Z.第３３３巻、
２０９頁（１９６０年）を参照のこと］の開発をもたら
した。ヨーロッパ特許出願第１５６，３４７号は、対象
とする特定のグリコシダーゼに対して特異的なものであ
り、それによって開裂され、可視領域において分光学的
に測定することができるか、あるいは速やかに励起して
螢光を発することができるレゾルフィン誘導体を遊離す
るレゾルフィン誘導体のグリコシド類を開示している。
同様に、米国特許第３，９５０，３２２号は、４−メチ
ルウンベリフェロン、フルオレセイン、メチルフルオレ
セイン、レゾルフィン又はウンベリフェロンのような螢
光助剤によって誘導される、ノイラミニダーゼの検出の
ためのＮ−アシル−ノイラミン酸を開示しており、ここ
では、螢光助剤基質グリコシドは同様に酵素を作用させ
ることによって螢光助剤を遊離する。
β−Ｄ−ガラクトシド類の使用もまた、Histochemie.第
３５巻、１９９頁及び第３７巻、８９頁（１９７３年）
に記載されたナフチル−β−Ｄ−ガラクトシド類、及び
J.Biol.chem.第１９５巻、２３９頁（１９５２年）に記
載されたその６−ブロモ−α−ナフチル誘導体類のよう
な組織化学的な研究に関連して記載されている。かかる
試験系によると、ガラクトシダーゼと酵素との相互作用
によって遊離されるナフトール類は種々のジアゾニウム
塩類と反応せしめられ、視認することができるアゾ染料
がそれぞれ生成する。
種々のアクリジン化合物が、過酸化水素の検出のための
試験における指示薬化合物として（ヨーロッパ特許公報
番号第３８，２０５号、４５，２２０号、及び１２４，
２８７号）、または、自己失活を誘発し、酵素的に溶解
して螢光を発する多重発螢光団標識体として（カナダ特
許第１，１２４，６４３号）用いるためのアクリジン染
料として記載されている。アクリジンオレンジもまた、
螢光性生化学的着色剤としての使用に関して開示されて
いる（米国特許第３，７９３，１３１号、４，１９０，
３２８号、４，２５７，７７５号及び４，３４５，０２
７号）。
かかる公知の光学指示薬化合物は分析試験系における酵
素分析物質及び標識体の検出に有用であるが、低い吸光
係数、低い水溶性、種々の顔料及び生体液中に通常存在
する他の成分によって障害を受ける最大吸光度、及び、
複雑な装置を用いなければ測定するのが困難な光学指示
薬化合物と標識された色原体又は螢光助剤との間の色シ
フトのような、試験の感度及び正確性に影響を与える多
くの問題点がなおも存在する。
したがって、本発明の目的は、液体試験試料中の酵素を
正確に感度よく測定するための分析試験系における光学
指示薬化合物として用いることのできる色原体酵素基質
化合物を提供することにある。
更に、本発明の目的は、その中に導入される、あるいは
そこに施される液体試験試料中の酵素を測定するための
光学指示薬化合物として、分析試験具の多孔性固体マト
リクス中に導入することができる色原体酵素基質化合物
を提供することにある。
発明の概要 本発明は次式： （式中、Ｙは特定の対応する酵素に対して特異性を与え
るように選択される酵素的に開裂しうる基を示し；Ｒ及
びＲ′は同一であっても異なっていてもよく、それぞれ
アルキル又はアリール、好ましくは低級アルキル又はフ
ェニルであり、あるいは、一緒になってシクロヘキサ−
２，５−ジエン−４−オン残基又は４−ヒドロキシシク
ロヘキシル残基を形成する） の新規な色原体アクリジノン酵素基質化合物を提供す
る。酵素的に開裂しうる基Ｙは、広範囲の酵素のいずれ
に対しても特異性を与えるように選択することができる
酵素特異的部分を含むＹ−ＯＨ化合物の残基であり、例
えば、糖類及びその誘導体のような酵素特異的部分、脂
肪族及び芳香族カルボン酸類をはじめとするアシル基、
アミノ酸類及びペプチド類、並びにリン酸及び硫酸など
のような向き無機酸類の残基が挙げられるが、これらに
限定する必要性はない。
本発明の利点は、適当な酵素的に開裂しうる基Ｙによっ
て誘導される７−ヒドロキシ−９Ｈ−アクリジン−２−
オン色原体を中間体として用いることにある。特に、酵
素的に開裂しうる基Ｙを、好ましくはpH約７．０〜１
０．０の塩基性溶液中の、それに対して特異的な酵素に
よって開裂させると、本発明の色原体酵素基質化合物の
最大吸光度よりも実質的に大きな最大吸光度を有する脱
プロトン化された形態の色原体が遊離され、それによっ
てそれらの間の吸光度の明確な変化が得られる。吸光度
の明確な変化は、正確に測定し、液体試験試料中に存在
する酵素の量に相関させることができる。容易に観察し
検出しうる光学信号を与える。
本発明は更に、本発明の色原体アクリジノン酵素基質化
合物の製造に特に有用である新規な７−ヒドロキシ−
１，３−ジハロ−９，９−ジメチル−９Ｈ−アクリジン
−２−オン色原体中間体、及びその製造方法を提供す
る。
好適な実施態様の説明 本発明の色原体酵素基質化合物は、一般式： を有する７−ヒドロキシ−９Ｈ−アクリジン−２−オン
色原体（以下アクリジノン類と称する）から誘導され、
上式において、Ｒ及びＲ′がフェニルであるもの［F.Ke
hrmanとJ.TschuiのHelv.Chim.Acta.第８巻２３頁（１９
２５年）］又はメチルであるもの［H.GoldsteinとW.Kop
pのHelv.Chem.Acta.第１１巻４７８頁（１９２８年）］
が文献において記載されている。上記記載のジフェニル
及びジメチル色原体の可視吸光スペクトルがR.Hillらの
J.Chem.Soc.（Ｃ）、２４６２頁（１９７０年）に記載
されており、ここにおいてかかるジメチル及びジフェニ
ル色原体のプロトン付加形態と脱プロトン化形態との間
の吸光（λ max）における１７５nmのシフトが報告さ
れている。かかる脱プロトン化は、通常は、pH約７．０
〜７．５の塩基性溶液中で、次式： のような分子内のアニオン負電荷の非局在化によって色
原体（２）のフェノール系水酸基において起こる。脱プ
ロトン化形態（３）は、そのプロトン付加形態（２）に
よって与えられる黄色とは異なる青色を与える。
同様に他のアクリジノン類縁体がHillらの上記文献に記
載されており、ここにおいて、例えば、Ｒ及びＲ′が一
緒になってシクロヘキサ−２，５−ジエン−４−オン残
基を形成して［C.LiebermanのChem.Ber.第７巻１０９８
頁（１８７４年）：Hillらの上記文献によって７−ヒド
ロキシスピロ［アクリジン−９，１′−シクロヘキサ−
２′，５′−ジエン］−２（９Ｈ），４−ジオンである
と同定された］、次式（４）： の色原体を提供し、あるいは、Ｒ及びＲ′が一緒になっ
てヒドロキシシクロヘキシル残基を形成して次式
（５）： の色原体を提供し、並びに、置換された形態の化合物
（４）を形成して次式（６） の色原体を提供するが、ここで、化合物（４）、（５）
及び（６）は一般式（２）のアクリジノン化合物、及び
上記記載のようなそのジメチル及びジフェニル類縁体に
よって示されるのと同様の光学特性を示す。次式： で示される、化合物（６）のアクリジノン類縁体（７）
もまた米国特許第３，７８１，７１１号に記載されてい
る。
本発明の教示するところによれば、色原体（２）のフェ
ノール系水酸基を、酵素特異的部分である化合物Ｙ−Ｏ
Ｈの残基からなる酵素的に開裂しうる基によって誘導す
ると、得られる化合物は、一般式（８）： （式中、Ｙは酵素的に開裂しうる基を示し；Ｒ及びＲ′
は同一であっても異なっていてもよく、アルキル又はア
リールであるか、あるいは一緒になって、シクロヘキサ
ジエン基、好ましくはシクロヘキサ−２，５−ジエン−
４−オン残基、又は４−ヒドロキシシクロヘキシル残基
を形成する） の異性構造を有する新規な色原体酵素基質化合物であ
る。構造式（８）で示されるような色原体酵素基質化合
物のかかる異性化は、例えば、ＲとＲ′とが異なってい
る場合及び／又は芳香環Ａ又はＢのいずれかが置換され
ている場合に起こることが理解されよう。
本発明はアクリジノン類の色原体を色原体酵素基質にお
ける指示薬基として使用することを始めて開示したもの
であり、したがって、広範囲の置換アクリジノン誘導体
を包含することが理解されるべきである。式（８）にお
ける芳香環Ａ及びＢが、本発明の範囲から逸脱すること
なしに種々の置換基を有することができることは明らか
である。以下により詳細に説明するように、かかる置換
基は、本発明の色原体酵素基質特性を有する安定な化合
物を製造するための通常の当該技術の能力によってのみ
限定され、例えば、非置換又は置換アルキル、非置換又
は置換アリール、アルコキシ、アリールオキシ、ハロゲ
ン（例えばフルオロ、クロロ、ブロモ）、ニトロ及びジ
アルキルアミノのような置換アミノのような基が挙げら
れる。
本発明明細書において、「アルキル」は、一般式：−Ｃ
ｎＨ２＋１の直鎖及び分岐鎖形態の非置換炭化水素残
基、好ましくは、ｎが６以下の「低級アルキル」脂肪族
類、例えば、メチル、エチル、ｎ−プロピル、イソプロ
ピル、ｎ−ブチル、イソブチル、tert−ブチル、ｎ−ヘ
キシルなど、並びにこれらの置換形態を包含することを
意味する。
更に、本発明明細書においては、ここで用いられるよう
に、「アリール」は、水素原子を除去することによって
芳香族炭化水素環又は環系から誘導される有機残基を包
含し、また、フェニル及びナフチルのような非置換炭化
水素環残基及びその置換形態を包含することを意味して
いる。本発明の目的のためには、アリール残基として
は、当業者によって選択することのできる、１以上の、
同一の又は異なる官能基又は置換基を有し、本発明の色
原体酵素基質化合物を生成するものが挙げられる。
更に詳しくは、「アリール」及び「アルキル」が置換さ
れている場合は、かかる置換は、官能基によって単又は
多置換される場合に本化合物の有用な特性を実質的に消
散せしめることのないような基又は置換基を包含するこ
とを意味している。かかる官能基としては、合成的に導
入して本発明の安定で有用な色原体酵素基質指示薬化合
物を生成しうる化学基が挙げられる。かかる官能基の例
としては、ハロゲン（例えばフルオロ、クロロ、ブロ
モ）、ジアルキルアミノのような置換アミノ、ニトロ、
アルコキシ、アリールオキシ、アルキル及びアリール基
が挙げられるが、これらに限定されるものではない。
特に、Ｒ及び／又はＲ′がアルキル、好ましくは低級ア
ルキルの場合、かかるアルキル基としては、メチル、エ
チル、ｎ−プロピル、イソプロピル、ｎ−ブチル、イソ
ブチル、tert−ブチル、ｎ−ヘキシル、並びに、ベンジ
ル、ジアルキルアミノメチル、更に詳しくはジメチルア
ミノメチル、又はハロゲン化メチル、更に詳しくはブロ
モメチルなどをはじめとするこれらの置換形態が挙げら
れるが、これらに限定されるものではない。Ｒ及び／又
はＲ′がアリールの場合、かかるアリール基としては、
ナフチル、フェニル、ｐ−クロロフェニル、２，４−ジ
メトキシフェニルなどが挙げられるが、これらに限定さ
れるものではない。
色原体酵素基質化合物（８）は、周囲の液体雰囲気のpH
にかかわらず、プロトン付加形態の色原体（２）と実質
的に同一の色特性を示し、ここでは、pH約６．５〜１０
の塩基性溶液からなる周囲雰囲気中で、誘導された色原
体酵素基質化合物（８）と適当な酵素とを接触させるこ
とによって、酵素的に開裂しうる基Ｙが酵素によって開
裂し、色原体酵素基質化合物（８）の最大吸光度よりも
実質的に大きな最大吸光度を有する、解離した又は脱プ
ロトン化した形態の色原体（３）を遊離し、それらの間
の最大吸光度の明確な変化を与える。したがって、本発
明の色原体酵素基質化合物（８）は、その中で用いる、
酵素で標識された試験試薬の検出が必要とされる分析試
験系において特に有用である。基質化合物（８）と脱プ
ロトン化された形態の色原体（３）との間に生じる最大
吸光度の明確で測定しうる変化は正確に検出され、測定
され、液体試験試料中に存在する分析対象物の量と相関
させることができる。
酵素的に開裂しうる基 本発明によると、酵素的に開裂しうる基Ｙは、酵素特異
的部分からなり、臨床化学においてみられる広範囲の酵
素類、特にヒドロラーゼ類に対して特異性を与える新規
な色原体酵素基質化合物を与える化合物Ｙ−ＯＨの残基
である。化合物Ｙ−ＯＨは、糖類及びその誘導体、脂肪
族及びカルボン酸類をはじめとするアシル基を含む酸
類、アミノ酸類及びペプチド類、並びにリン酸及び硫酸
のような無機酸類を包含することを意味しているが、こ
れらに限定する必要はない。
酵素的に開裂しうる基Ｙの選択は、もちろん対象とする
特定の酵素によるものであることは当業者に明らかであ
ることが理解されよう。例えば、対象とする酵素がグリ
コシダーゼの場合、グリコシドは、酵素的に開裂しうる
基Ｙが特定のグリコシダーゼに関する本来の基質に対応
するグリコシド基である場合に生成することができる。
好適なグリコシド基としては、特定のグリコシダーゼに
対して特異的なグリコシド基質中に導入して該酵素によ
って開裂することができる、モノ及びオリゴ糖残基、例
えば、β−Ｄ−ガラクトピラノース、α−Ｄ−ガラクト
ピラノース、β−Ｄ−グルコピラノース、α−Ｄ−グル
コピラノース及びα−Ｄ−マンノピラノースなどの残
基、並びにアミノ糖類、例えばＮ−アセチルグルコース
アミン及びＮ−アセチルノイラミン酸などの残基が挙げ
られるがこれらに限定されるものではない。他の好適な
グリコシド基としては、糖鎖開裂酵素によって単糖又は
オリゴ糖類に分解され、次に対応するグリコシダーゼに
よって開裂することができる、例えばマルトペントー
ス、マルトヘキソース及びマルトヘプトースの残基のよ
うな、α−１−４グリコシド結合によって結合した２〜
２０、好ましくは２〜７の単糖単位による多糖類が挙げ
られる。
ある場合において、グリコシド基が上記記載のオリゴ糖
鎖である場合、かかる鎖は第１に、測定される酵素によ
ってより短いオリゴ糖類又は単糖類に変成され、又は分
解されて２次基質化合物を生成し、ここで、酵素的に開
裂しうる基が第２の酵素によってアクリジノン類指示薬
基から開裂し、この場合、２次基質化合物は次に、第２
の酵素と接触して上記記載の測定しうる吸光度変化を生
成することが理解されよう。例えば、測定される酵素が
α−アミラーゼである場合、オリゴ糖類が開裂して２次
グリコシド基質化合物、例えばα−グリコシド又はβ−
グリコシドを生成し、得られたそのグリコシド基が第２
のグリコシダーゼ、例えば、それぞれα−グルコシダー
ゼ又はβ−グルコシダーゼによってアクリジノン指示薬
基から開裂される。
非特異性エステラーゼの場合は、酵素的に開裂しうる基
Ｙは式（９）： の色原体エステルを与えるアシル基である。式中、Ｚが
低級アルキル又はアリールである場合、かかる化合物
は、コリンエステラーゼ、アミラーゼ、リパーゼなどの
ような非特異性エステラーゼの検出に用いることができ
る。
本発明の色原体酵素基質化合物はまた、白血球中に通常
みられる蛋白分解酵素の検出に用いることができる。か
かる化合物は一般式（８）においてＹが化合物Ｙ−ＯＨ
の残基であり、Ｙ−ＯＨが、Ｎを保護したアミノ酸、又
は、例えば２〜５のアミノ酸単位からなる短ペプチドで
あるエステル類である。例えば、Ｙが、Ｎを保護したア
ミノ酸、Ｎ−トシル−Ｌ−アラニンの残基であり、Ｒ及
びＲ′が上記に定義したものである場合、該エステルは
式（１０）： で示される。以下により詳細に記載されるように、本発
明においては他のカルボン酸残基、アミノ酸残基及びＮ
を保護した基が同等のものとして考えられていることが
理解されよう。
同様に液体試験試料からのアルカリ性ホスファターゼの
検出のためには、酵素的に開裂しうる基Ｙは化合物Ｙ−
ＯＨのラジカルであり、Ｙ−ＯＨは次式（１１）： の色原体リン酸エステルを与えるリン酸基である。
色原体アクリジノン酵素基質化合物の製造 本発明の色原体アクリジノン酵素基質化合物（８）は、
以下により詳細に説明するように、当該技術において周
知の縮合反応条件下で、Ｙが選択された酵素的に開裂し
うる基である化合物Ｙ−ＯＨと、適当に誘導された７−
ヒドロキシ−９Ｈ−アクリジン−２−オン色原体とを反
応させることによって製造することができる。一般に、
適当なアクリジノン色原体は、適当な条件下で、化合物
Ｙ−ＯＨの反応性誘導体、好ましくは上記記載の炭水化
物（糖）類又は炭水化物誘導体、あるいは酸類と結合せ
しめられ、所望の立体異性を有する色原体アクリジノン
酵素基質となる。
上述したように、本発明においては式（８）におけるア
クリジノン核の芳香環Ａ及びＢを置換しうる種々の置換
基は、式（８）の基質化合物と同等のものであると考え
られている。置換された同等の物質は当該技術において
周知の方法（図１）によって、出発物質として３−ヒド
ロキシアセトフェノン又は３−ヒドロキシベンゾフェノ
ン（１２）及び適当なグリニャール試薬を用い、これら
を反応させて［反応（ａ）］、置換フェノール（１３）
を生成し、続いて置換ベンゾキノン−Ｎ−クロロイミン
（１４）と反応させて［反応（ｂ）］、官能化インドフ
ェノール（１６）を生成することによって製造すること
ができる適当に誘導された７−ヒドロキシ−９Ｈ−アク
リジン−２オンを用いることによって製造することがで
きる。インドフェノール（１６）を次にそのロイコ形態
に還元し、酸環化し、続いて酸化して［反応（ｄ）］、
所望の７−ヒドロキシ−９Ｈ−アクリジン−２−オン
（１７及び１８）が得られる。適当に誘導された出発物
質及び適当なグリニャール試薬を選択することによって
種々の置換フェノール類が得られ、したがって、有機合
成化学の当業者によって、本発明の色原体アクリジノン
酵素基質化合物の色原体として用いる、所望の適当に誘
導された７−ヒドロキシ−９Ｈ−アクリジノン−２−オ
ンに転化することができる、種々の置換基を有する特定
のインドフェノール類が生成されることが理解されよ
う。
特に、Ｒ及びＲ′がいずれもメチル又はフェニルであ
り、Ａ、Ｂ及びＣが水素である場合、フェノール類（１
３）は、Hillらの上述の文献に記載された方法にしたが
って、対応する３−ヒドロキシアセトフェノン又は３−
ヒドロキシ−ベンゾフェノン（１２）から、それぞれ、
臭化メチルマグネシウムグリニャール試薬又はヨウ化フ
ェニルマグネシウムグリニャール試薬と反応させて［反
応（ａ）］生成される。グリニャール試薬は当該技術に
おいて開示された広範囲のかかる試薬から選択すること
ができ、例えば、Ｘが臭素及びヨウ素を示すようなアル
キル及びアリールグリニャール試薬、並びに−Ｏ−アル
キル（アルコキシ）、−Ｏ−アリール（アリールオキ
シ）、−アルキル及び−アリールのような官能性置換基
を有するものを挙げることができるが、これらに限定す
る必要はないことが理解されよう。同様に、Ｒがアルキ
ル又は置換アルキルである種々の置換３−ヒドロキシア
セトフェノン類（１２）、並びにＲがアリール又は置換
アリールである種々の置換３−ヒドロキシベンゾフェノ
ン（１２）の合成が開示されており、例えば、Ｒ、Ａ、
Ｂ及びＣが当該技術において周知の広範囲の置換基から
選択されうる一般式（１２）の化合物が挙げられる。例
えば、Ｒがメチル、Ａ及びＣが水素、Ｂがブロモ、クロ
ロ、ヨード、メチル又はシクロヘキシルであってよく
［J.Med.Chem.第２３巻７３８頁（１９８０年）］；あ
るいはＲ及びＣがメチル、Ａ及びＢがそれぞれニトロ及
び水素、又は水素及びニトロ、又はＡ及びＢが水素であ
ってよく［Chem.Ber.第９２巻２１７２頁（１９５９
年）］；あるいはＲがメチル、Ａ及びＣが水素、Ｂがメ
トキシ［Chem.Ber.第５５Ｂ巻１８９２頁（１９２２
年）］，又はシクロヘキシルエーテル［J.Chem.Soc.３
４３０頁（１９５１年）］でよく；あるいは、Ｒ及びＡ
がメチル、Ｂが水素、Ｃがニトロであってよく［J.Org.
Chem.第１４巻３９７頁（１９４９年）］；あるいは、
Ｒがメチル、Ａ及びＢがメトキシ、Ｃが水素であってよ
く［J.Prakt.Chem.第１０３巻３２９頁（１９２２
年）］；あるいは、Ｒがメチル、Ａ及びＣが水素、Ｂが
ｐ−ヒドロキシフェノールであってよく［Hoppe-Seyler
のZ.Physiol.Chem.第２９２巻５８頁（１９５３
年）］；あるいは、Ａ、Ｂ及びＣが水素、Ｒがジメチル
アミノメチル［Monatsh.第８０巻５１７頁（１９４９
年）］、又はベンジルもしくはフェニルエチル［Medd.N
orsk.Farm.Selskap.第２４巻４５頁（１９６２年）］、
又はｐ−クロロフェニル［J.Chem.Soc.５頁（１９４６
年）］、又は２，４−ジメトキシフェニル［Bull.Soc.C
him.France、１６８２頁（１９５９年）］であってよ
く；あるいは、Ｒがブロモメチルであってよく、Ａ、Ｂ
又はＣがニトロである場合はＢ及びＣ、Ａ及びＣもしく
はＡ及びＢがそれぞれ水素であってよく［Acta Univ.Sz
eged.,Acta Phys.Chem.第９巻４８頁（１９６３
年）］；あるいは、Ｒがフェニルであってよく、Ａ及び
Ｃが水素、Ｂがメチル［Helv.Chim.Acta.第２９巻１４
１３頁（１９４６年）］、又はＡ及びＢがメトキシ、Ｃ
が水素［J.Org.Chem.第２４巻９５２頁（１９５９
年）］などであってよい。
所望のインドフェノール（１６）は、Hillらの上述の文
献に記載されたように（ここではＲ及びＲ′はどちらも
メチル又はフェニルであってよく、Ａ〜Ｇはすべて水素
であってよい）、あるいはGibssらのPublic Health Rep
orts（ワシントンＤ．Ｃ．）補遺版６９号（１９２８
年）により一般的に記載されたように（ここでは、一般
式（１４）における置換基Ｄ、Ｅ、Ｆ及びＧがすべて水
素であってよく、あるいは、Ｄがメチル、Ｅ、Ｆ及びＧ
が水素であってよく、あるいは、Ｄ、Ｅ及びＧが水素、
Ｆがメチルであってよく、あるいは、それぞれ、Ｄ及び
Ｅが塩素又は臭素、Ｆ及びＧが水素であってよい）、ア
ルカリ水溶液中で、反応（ａ）から得られた適当に置換
されたフェノール（１３）と適当に置換されたベンゾキ
ノン−Ｎ−クロロイミン（１４）とを反応させることに
よって製造される［反応（ｂ）］。インドフェノール
（１６）を製造する他の合成経路もCorbettのJ.Chem.So
c.（Ｂ）１５０２頁（１９７０年）に記載されており、
ここでは、適当に置換されたフェノール（１３）が、ア
ルカリ水溶液の存在下で、適当に置換されたｐ−アミノ
フェノール（１５）及び酸素と反応せしめられる［反応
（ｃ）］。ｐ−アミノフェノール（１５）の置換基Ｄ、
Ｅ、Ｆ及びＧが開示されており、ここで、それぞれ、
Ｄ、Ｅ及びＧが水素、Ｆがメチル又は塩素であってよ
く；あるいは、Ｄ、Ｆ及びＧが水素、Ｅがメチルであっ
てよく；あるいはＤ及びＧがメチル、Ｅ及びＦが水素で
あってよく；あるいは、Ｄ及びＥがメチル又は塩素、Ｆ
及びＧが水素であってよく；あるいは、Ｄが塩素、Ｅ、
Ｆ及びＧが水素であってよい。
（ｂ）又は（ｃ）のいずれかの反応で得られたインドフ
ェノール（１６）は、次に、Hillらの上記の文献に記載
された方法にしたがって７−ヒドロキシ−９Ｈ−アクリ
ジン−２−オン類（１７）及び（１８）を製造するのに
用いられ［反応（ｄ）］、ここで、インドフェノール
（１６）は、酸水溶液、又は、ヒドロ亜硫酸ナトリウ
ム、ナトリウムボロヒドリドなどのような当該技術にお
いて周知の他の温和な還元剤中で、例えば塩化スズ（I
I）によってそのロイコ形態に還元される（工程１）。
得られたロイコ中間体は、無機酸水溶液、好ましくは２
ＮのＨＣ中において、９０〜１００℃で約１時間、該
中間体を加熱することによって環化され（工程２）、続
いて、アルカリ水溶液、又は、フェリシアン化カリウム
もしくはアルカリ金属の過ヨウ素酸塩類、好ましくは過
ヨウ素酸ナトリウムなどのような他の化学酸化体中で例
えば空気（Ｏ２）によって酸化される（工程３）。アク
リジノン類（１７）及び（１８）を満足な収率で得るた
めに、反応（ｄ）の工程１〜３で得られる種々の中間体
を単離する必要がないことが理解されよう。
本発明の好適な実施態様によると、式（１９）： （式中、Ｒ及びＲ′は同一でも異なっていてもよく、上
記記載のアルキル又はアリール、好ましくは低級アルキ
ル又はフェニルであり、Ｘはハロゲン基、好ましくはブ
ロモ又はクロロである） の互変異性構造を有する新規な７−ヒドロキシ−１，３
−ジハロ−９Ｈ−アクリジン−２−オン誘導体もまた生
成される。かかる中間体は、次にＹ−ＯＨ化合物のＹ基
と反応して本発明の色原体酵素基質化合物を生成しうる
ジメチルアクリジノン色原体（２０）を製造するのに特
に有用である（図２）。
特に、図２に示したように、ジメチルアクリジノン色原
体（２０）は、最初に３−（１−ヒドロキシ−１−メチ
ルエチル）フェノール（２１）［BruceらのJ.Chem.Soc.
（ｃ）、１６２７頁（１９６６年）］及び２，６−ジク
ロロキノン−４−クロロイミド（２２）［GibbsらのU.
S.Public Health Reports、補遺６９巻及びChem.Abs.第
２３巻３４５０頁（１９２９年）］と水酸化ナトリウム
とを、適当な条件下でテトラヒドロフラン水溶液中で反
応させ［反応（ｅ）］、ジクロロ置換インドフェノール
（２３）を生成し、次に還元して［反応（ｆ）］化合物
（２４）を生成し、酸環化して［反応（ｇ）］化合物
（２５）を生成し、次に酸化して［反応（ｈ）］本発明
の新規な７−ヒドロキシ−１，３−ジクロロ−９，９−
ジメチル−９Ｈ−アクリジン−２−オン（２６）を生成
することによって製造することができる。ジクロロ誘導
体（２６）は最初に、(i)ラネーニッケルで処理して水
素化し、次に(ii)過ヨウ素酸ナトリウムで処理してジメ
チルアクリジノン色原体（２０）を生成する。
アクリジノン類（１７）及び（１８）におけるＲ及び
Ｒ′は上記記載の種々の置換基から選択することができ
るが、Ｒ及びＲ′は一緒になって、環状成分を形成する
こともでき、一般式（２７）を有するもの（７−ヒドロ
キシスピロ［アクリジン−９，１′−シクロヘキサ−
２′，５′−ジエン］−２（９Ｈ），４′−ジオン）
は、Hillらの上述の文献に記載された方法にしたがって
製造される（図３）。かかる化合物（２７）は、インド
フェノール（２８）と適当に置換されたフェノール（２
９）とを、硫酸及び亜硝酸ナトリウム中で反応させるこ
とによって製造され、ここで、Ａ′、Ｂ′、Ｃ′及び
Ｄ′がすべて水素又はメチルであってよく；あるいは、
それぞれ、Ａ′及びＢ′が水素又はメチル、Ｃ′及び
Ｄ′がメチル又は水素であってよく；あるいは、Ａ′が
メチル、Ｂ′、Ｃ′及びＤ′が水素であってよく；ある
いは、Ａ′、Ｂ′及びＤ′が水素、Ｃ′がメチルであっ
てよい。Ａ′、Ｂ′、Ｃ′及びＤ′がすべて水素である
場合、化合物（２７）を水酸化ナトリウム水溶液中にニ
ッケル−アルミニウム合金によって還元し［反応
（ｊ）］、その飽和類縁体（３０）を生成することがで
きる。同様に、Ａ′がイソプロピル、Ｄ′がメチル、
Ｂ′及びＣ′が水素であってよい、式（２７）のアクリ
ジノンが開示されている（米国特許第３，７８１，７１
１号）。
一般式（８）のアクリジノン誘導体のグリコシド類は、
炭水化物化学の技術において周知の方法にしたがって、
式Ｙ−ＯＨの公知の炭水化物誘導体を用いて適当な色原
体（２）と反応させて製造することができる。いくつか
の場合は保護基を有するかかる炭水化物誘導体は市販さ
れており（米国、ワイオミング州、ミルウォーキーのAl
drich Chemical Co.製；米国、ミズーリ州、セントルイ
スのSigma chemical Co.製）、あるいは、当該技術にお
いて周知の方法［Methods in Carbohydrate chemistry
(Academic Press発行、１９６３年）第２巻］にしたが
って製造することができる。一般式（２）のアクリジノ
ン誘導体に結合し、一般式（８）のグリコシド類を生成
するのに好適なグリコシド基としては、β−Ｄ−ガラク
トピラノース、α−Ｄ−ガラクトピラノース、β−Ｄ−
グルコピラノース、α−Ｄ−グルコピラノース、α−Ｄ
−マンノピラノース、Ｎ−アセチルグルコースアミン、
β−グルクロン酸及びノイラミン酸のような糖類の残基
が挙げられるが、これらに限定されるものではない。他
の好適なグリコシド基としては、糖鎖開裂酵素によって
単糖類又はオリゴ糖類のレベルに分解し、次に対応する
グリコシダーゼによってアクリジノン骨格から直接解離
することができるオリゴ糖鎖の残基が挙げられる。かか
るオリゴ糖鎖は、マルトペントース、マルトヘキソース
又はマルトヘプトースのような、２〜２０、好ましくは
２〜７の単糖単位からなる鎖であることが理解されよ
う。一般式（２）のアクリジノン誘導体は、すべての水
酸基が炭水化物化学の技術において周知の方法によって
保護基で置換されている、単糖類又はオリゴ糖類、又は
その１−ハロゲノ−誘導体と反応せしめられてペル−Ｏ
−置換グリコシド類を生成し、それから、一般式（８）
のアクリジノン誘導体のグリコシド類が、当該技術にお
いて周知の方法にしたがって保護基を解離することによ
って得られる。
一般式（２）の化合物は、好ましくはアルカリ水酸化物
類又はアルカリ炭酸塩類のようなプロトン受容体の存在
下で、アセトン水溶液中、あるいは（相転位条件下で）
水／クロロホルムもしくは水／ベンゼン混合物中におい
てペル−Ｏ−置換−１−ハロゲン糖類と反応せしめられ
る。更にこの工程は、最初に、一般式（２）のアクリジ
ノン誘導体を、アルカリ水酸化物又はアルコラートによ
ってアルカリ塩類に、あるいは、場合によっては置換さ
れたアミン類を用いてアンモニウム塩類に転化させ、次
にこれらを、アセトン、ジメチルスルホキシド、ジクロ
ロメタン、テトラヒドロフラン又はジメチルホルムアミ
ドのような双極性非プロトン性溶媒中でペル−Ｏ−置換
−１−ハロゲノ糖類と反応させることによって行なうこ
とができる。更に、一般式（２）のアクリジノン誘導体
及びペル−Ｏ−置換−１−ハロゲノ糖類からのペル−Ｏ
−置換グリコシド類の合成において、酸化銀、炭酸銀、
炭酸担持Celite （米国、コロラド州、デンバーのJohn
s-Manville Corp.製）、銀トリフレート又はサリチル酸
銀のような一価の銀酸類又は銀塩類の混合物、及び／又
は、臭化水銀、シアン化水銀、酢酸水銀又は酸化水銀の
ような一価の水銀塩類又は水銀塩類の混合物、及び／又
は、炭酸カドミウム又は酸化カドミウムのような一価の
カドミウム塩類又はカドミウム塩類の混合物の形態の添
加剤が、塩化メチレン、クロロホルム、ベンゼン、トル
エン、酢酸エチル、キノリン、テトラヒドロフラン又は
ジオキサンのような溶媒中で、場合によっては塩化カル
シウム、モレキュラーシーブ又はDrierite （米国、オ
ハイオ州、キセニアのW.A.Hammond Drierite.Co.製）の
ような乾燥剤と共に用いると有効であることが示されて
いる。α−結合グリコシド類の合成においては、一般式
（２）の化合物は、その水酸基が保護基、好ましくはア
セチル基で置換されている糖類によって、塩化亜鉛のよ
うなルイス酸の存在下で融解される［Chem.Ber.６６
巻、３７８〜３８３頁（１９３３年）及びMethods in C
arbohydrate Chemistry(Academic Press発行、１９６７
年）第２巻３４５〜３４７頁を参照のこと］。反応温度
は好ましくは８０〜１３０℃、更に好ましくは１１０〜
１３０℃である。得られる一般式（２）のアクリジノン
誘導体のペル−Ｏ−置換グリコシド類もまた新規化合物
である。ペル−Ｏ−置換グリコシド類から保護基を除去
して一般式（８）のグリコシド類を形成することは、保
護アシル基を有するような炭水化物化学の技術において
周知の方法［Advances in Carbohydrate Chem.１２巻１
５７頁（１９６７年）］にしたがって、ナトリウムメチ
ラート、バリウムメチラート又はメタノール中のアンモ
ニアによって行なわれる。炭水化物化学において通常用
いられる「保護基」としては、特に、アセチル、ベンゾ
イル、ベンジル又はトリメチルシリル基が好ましい。
一般式（８）において、Ｙがα−１−４グルコシド結合
を介して結合した２〜２０の単糖単位からなるオリゴ糖
類の残基であるアクリジノン誘導体は、更に、グリコシ
ドを酵素：（１，４）−α−グルカン−４−グルコシル
トランスフェラーゼ（シクロマルトデキストリングルカ
ノトランスフェラーゼとしても知られている；ＥＣ２．
４．１．１９）によって予め形成された多糖鎖に転位せ
しめることを伴う、FrenchらのJ.Am.Chem.Soc.第７６巻
２３８７頁（１９５４年）に最初に記載され、その後、
WallenfelsらのCarbohydrate Research、第６１巻３５９
頁（１９７８年）に記載された酵素的方法によってα−
及びβ−アクリジノングリコシド類から製造することが
できる。
本発明の好適な実施態様によれば、一般式（８）におい
てＹが酵素特異的糖部分を含む化合物、Ｙ−ＯＨ、好ま
しくはβ−Ｄ−ガラクトース又はβ−Ｄ−グルコースの
残基であり、Ｒ及びＲ′がメチルである色原体酵素基質
化合物は、ジメチル色原体（２０）を、その水酸基位が
保護基、好ましくはアセテート保護基で置換されている
酵素特異的部分の１−ハロゲノ誘導体、好ましくはその
１−ブロモ誘導体と反応させて、ペル−Ｏ−置換誘導体
を生成し、これを加水分解してかかる保護基を除去して
所望の色原体酵素基質化合物を得ることによって製造す
ることができる。例えば、Ｙがβ−Ｄ−ガラクトースの
残基であり、Ｒ及びＲ′がメチルである色原体酵素基質
（８）のβ−Ｄ−ガラクトシド（２０）は、β−Ｄ−ガ
ラクトシダーゼの測定に用いるために製造することがで
きる。特に、一般式（２）においてＲ及びＲ′がメチル
であるジメチルアクリジノン色原体（２０）は、酢酸エ
チル／キノリン中でアセトブロモガラクトース及び酸化
銀と反応せしめられ、次式： の７−（テトラ−Ｏ−アセチル−β−Ｄ−ガラクトピラ
ノシルオキシ）−９，９−ジメチル−９Ｈ−アクリジン
−２−オン（３１）を生成する。アセテート保護基（３
１）は次に、メタノール中でナトリウムメトキシドによ
って加水分解され、次式： の、本発明の所望の７−β−Ｄ−ガラクトピラノシルオ
キシ−９，９−ジメチル−９Ｈ−アクリジン−２−オン
（３２）を生成する。得られるガラクシド（３２）は４
３８nm（黄色）の吸光度（λ max）、２７，４００の
吸光係数を有し、リン酸塩緩衝溶液（pH７．４）中に溶
解する。液体試験試料からのβ−Ｄ−ガラクトシダーゼ
によるガラクトシドの加水分解によって解離した色原体
アニオンは、リン酸塩緩衝溶液中に溶解し、６３４nm
（青色）の吸光度を示し、１９６nmの吸光度の変化を与
える。更に、該酵素は、５ｍＭのＭｇＣ２を含有する
５０ｍＭのリン酸塩緩衝溶液（pH７．４）中において、
活性部位１モルあたり１．３２×１０４モル／分の速度
で基質を開裂せしめ（Ｋ cat）、０．１７ｍＭの結合
定数（Ｋｍ）を示し、したがって、β−Ｄ−ガラクトシ
ダーゼに関する非常に有利な基質を提供する。
Ｙがβ−Ｄ−グルコースのラジカルであり、Ｒ及びＲ′
がメチルである色原体酵素基質（８）のβ−Ｄ−グルコ
シド（２０）は、同様に、キノリン中で、ジメチルアク
リジノン色原体（２０）をアセトブロモグルコース及び
酸化銀と反応せしめ、次式： の７−（テトラ−Ｏ−アセチル−β−Ｄ−グルコピラノ
シルオキシ）−９，９−ジメチル−９Ｈ−アクリジン−
２−オン（３２）を生成することによって製造すること
ができる。式（３３）のアセテート保護基は次に、メタ
ノール中においてナトリウムメトキシドによって加水分
解され次式： の、本発明の所望の７−β−Ｄ−グルコピラノシルオキ
シ−９，９−ジメチル−９Ｈ−アクリジン−２−オン
（３４）を生成する。
一般式（９）のアクリジノン誘導体のエステル類は、有
機化学の技術において周知の方法によって、式：Ｙ−Ｏ
ＨにおいてＹがＺ−Ｃ−であり、Ｚが上記のＲ及びＲ′
と同様に定義される公知のカルボン酸類の誘導体を一般
式（２）のアクリジノン誘導体と反応せしめることによ
って製造することができる。式：Ｙ−ＯＨのかかる公知
のカルボン酸誘導体としては、Ｌ−又はＤ−形態、又は
同様にラセミ形態のアミノ酸残基、好ましくは天然α−
アミノ酸類の残基が挙げられ、グリシン、アラニン、バ
リン、ロイシン、イソロイシン、フェニルアラニン及び
チロシンの残基が好ましく、そのＬ−形態が更に好まし
いが、これらに限定されるものではない。場合によって
は存在するどのような遊離水酸基も、アシル化、好まし
くはアセチル化することができる。この定義のＹ−ＯＨ
におけるペプチド残基は、例えば、アミノ酸類あるいは
ジ−、トリ−、テトラ−及びペンタペプチド類のような
約２〜５のアミノ酸単位からなるペプチド類であり、ジ
−及びトリペプチド類が好ましく、そのアミノ酸部分は
上記記載のアミノ酸類であることが理解されよう。かか
るアミノ酸類又はペプチド類のアミノ基は、例えば、ア
シル、オキシカルボニル、チオカルボニル、スルホニ
ル、特にｐ−トルエンスルホニル（Tosyl、Ｔｓ）、スル
フェニル、ビニル、シクロヘキシル、及びカルバモイ
ル、特にｔ−ブチル−（ＢＯＣ）及びベンジル−（ＣＢ
ｚ）カルバモイル基をはじめとする、ペプチド化学の技
術において周知の窒素保護基［Ｔ．Ｗ．GreenのProtect
ive Groups in Organic Synthesis（ニューヨーク州、
ニューヨークのJ.Wiley and Sons発行、１９８１年）、
２１８〜２８７頁を参照のこと］で保護されていてもよ
い。本発明の好適な実施態様によれば、特に好ましいＮ
を保護されたアミノ酸基は、Ｎ−トシル−Ｌ−アラニン
であり、これは、BeachamのJ.Am.Chem.Soc.第７９巻３
２５７頁（１９５７年）に記載された方法にしたがって
製造することができ、次に塩化チオニルと反応せしめら
れ次式： のＮ−トシル−Ｌ−アラニニルクロリド中間体（３５）
を生成し、次に、テトラヒドロフラン及びピリジン中で
ジメチルアクリジノン色原体（２０）と反応せしめら
れ、次式： の７−（Ｎ−トシル−Ｌ−アラニニルオキシ）−９，
９′−ジメチル−９Ｈ−アクリジン−２−オンを生成す
ることができる。かかるエステル類はまた同様に、有機
化学の技術において周知の方法［J.MarchのAdvanced Or
ganic Chemistry;Reactions,Mechanism and Structure
（ニューヨーク州、ニューヨークのMcGraw-Hill Book C
o.発行、１９６８年）、３１９〜３２３頁を参照のこ
と］を用いて、一般式（２）の化合物を、カルボン酸、
アミノ酸又はペプチド、上記記載のＹ−ＯＨと、あるい
は、その適当な反応性誘導体と反応せしめることによっ
て製造してもよい。用いる反応性誘導体は、例えば、酸
塩化物又は臭化物、あるいは、ペプチド合成において通
常用いられる無水物質との混合物、例えば、クロロギ酸
エチルとの混合物、あるいは活性エステル類、例えばＮ
−ヒドロキシスクシンイミドとの混合物でよい。
同様に、一般式（８）のアクリジノン誘導体の無機エス
テル類を有機合成の技術において周知の方法にしたがっ
て製造することができる。リン酸のような無機酸Ｙ−Ｏ
Ｈの公知の誘導体、例えば化合物（１１）（ここでは、
Ｙが である）、又は硫酸の誘導体（ここではＹが である）は、ある種のクマリン類の無機エステル類に関
する、KollerとWolfbeisのMonatsh.第１１６巻６５頁
（１９８５年）において示されたような有機化学の技術
において周知の方法を用いて一般式（２）の化合物と反
応せしめられる。
本発明の好適な実施態様によれば、ピリジン中のジメチ
ル色原体化合物（２０）を、最初にオキシ塩化リンと、
次に水酸化ナトリウム水溶液と反応せしめて次式： のジナトリウム−９，９−ジメチル−９Ｈ−アクリジン
−２−オン−ホスフェート（３７）を生成することがで
き、これは５．０ｍＭのＭｇＣ２を含有する１．０Ｍ
ジエタノールアミン緩衝液（pH９．８）中でアルカリホ
スファターゼによって加水分解され、ＫＭ０．４８ｍＭ
及び酵素１モルあたりのＫcat１．９４×１０５モル／
分を示す。参照化合物であるｐ−ニトロフェニルホスフ
ェートは同一条件下で、ＫＭ０．９７ｍＭ及び酵素１モ
ルあたりのＫcat４．１６×１０５モル／分を有する。
分析試験系 本発明の色原体酵素基質化合物は、その中に存在する酵
素の量を測定することが必要とされる分析試験系、特に
酵素で標識された試験試薬を用いる分析試験系において
有用である。かかる分析試験系としては、その特定のフ
ラクション中の酵素標識体の量を測定し、液体試験試料
から得られる、測定される分析対象物の量と相関させう
る、競合するサンドイッチ状の免疫測定技術として当該
技術において周知の酵素免疫試験が挙げられるが、これ
らに限定されるものではない。
抗原類、ハプテン類、抗体類、レクチン類、受容体類、
アビジン及び他の結合性蛋白質のような特異結合性物
質、並びに酵素で標識されたポリヌクレオチド類を用い
ることが最近になって開発され、生体液中の物質に測定
に適用されている［例えば、Clin.Chem.第２２巻１２３
２頁（１９７６年）；米国再発行特許第３１，００６号
及び英国特許第２，０１９，３０８号を参照のこと］。
概して、かかる測定は、結合性物質、例えば抗体又は抗
原の特定の分析対象物と結合する能力に依存し、酵素で
標識されたかかる物質からなる標識試薬はかかる結合の
程度を決定するために用いられる。通常、結合の程度
は、分析対象物との結合反応に関与するか、あるいは関
与しない、標識試薬中に存在する酵素標識体の量を測定
することによって決定され、検出され測定された酵素の
量を液体試験試料中に存在する分析対象物の量と相関さ
せることができる。
本発明の色原体酵素基質化合物は、本発明の色原体酵素
基質化合物が組みこまれた担体マトリックスからなる分
析試験具が用いられる上記記載の分析試験系において特
に有用であり、その酵素特異性部分の種類は、もちろ
ん、検出される特定の酵素によるものである。
かかる担体マトリクス材料の種類は、溶液分析のための
試薬片に用いられるもののような、本発明の色原体酵素
基質化合物を組みこむ能力を有するどのような物質であ
ってもよい。例えば、米国特許第３，８４６，２４７号
には、フェルト、多孔性セラミック片及び織成又はマッ
ト状ガラス繊維の使用が記載されている。紙の代用とし
ては、米国特許第３，５５２，９２８号に、木片、布、
スポンジ材及び粘土基質の使用が記載されている。紙の
代わりに合成樹脂フリース及びガラス繊維フェルトを用
いることが英国特許第１，３６９，１３９号に示唆され
ており、また、英国特許第１，３４９，６２３号には下
層の紙マトリクスの被覆物として薄いフィラメントの光
透過性メッシュ材を用いることが教示されている。この
参照文献においては、紙に試薬系の一部を含浸せしめ、
メッシュ材に他の潜在的に不相溶性の試薬を含浸せしめ
ることも教示されている。フランス国特許第２，１７
０，３９７号に、その中に５０％を超えるポリアミド繊
維を有する担体マトリクスを用いることが記載されてい
る。担体マトリクスに関する他の適用法が米国特許第
４，０４６，５１３号に記載されており、ここでは、好
適な担体マトリクス上に試薬を印刷するという概念が用
いられている。米国特許第４，０４６，５１４号には、
反応物質系中の試薬を結合したフィラメントの織成又は
編成物が記載されている。かかるすべての担体マトリク
スの概念を、他のものと同様に本発明において用いるこ
とができる。好ましくは、担体マトリクスは紙のよう
な吸収性材料からなり、それを用いることによって、本
発明の色原体酵素基質化合物の溶液が用いられ、マトリ
クスに含浸せしめられる。これはまた、ポリマーマイク
ロカプセルのような、試験試薬を物理的に保持し、次に
試験試料と接触することによって破壊される系からなる
こともできる。それは試験試薬が流体又は半流体状の担
体マトリクスと均一に結合し、その後硬化又は凝固し、
それによって試験試薬を保持する系からなることができ
る。
好適な実施態様において、担体マトリクスは、用いられ
る本発明の色原体酵素基質化合物を組みこんだ単域又は
単層の形態の吸収性材料であり、ここで、特異的な試験
が当該技術において周知の不溶性試験試薬を用いて液体
雰囲気中で行なわれ、標識試薬の遊離種を標識試薬の結
合種から物理的に分離せしめる。かかる分析系によって
遊離種を含有する液体のアリコートが取り出されて担体
マトリクスに施され、ここで、その中に組みこまれた色
原体酵素基質化合物が、液体試験試料から遊離種の標識
試薬の酵素標識体と相互作用して、視認することがで
き、及び／又は適当な装置、例えば分光光度計で測定す
ることができる検出可能な信号を生成する。
同様に、例えば最上層又は区域及び最下層又は区域の形
態の２以上の担体マトリクスからなる試験具を用いるこ
とができる。かかる試験具の最下層に本発明の色原体酵
素基質化合物を組みこみ、測定される分析対象物を含有
する液体試験試料を該具の最上層に施すことができる。
分析対象物はその中で拡散し必要な結合反応に関与し、
上記記載のように、その中で、酵素で標識された試薬の
遊離種及び結合種（すなわち固定化種）を生成する。し
たがって、このようにして生成した標識試薬の遊離種が
自由に最下層中に移行し、遊離種の酵素標識体がその中
に組みこまれた本発明の色原体酵素基質化合物の酵素的
に開裂しうる基を開裂し、上記記載のような測定可能で
検出可能な信号を生成する。
本発明を以下の実施例によって説明するが、これらに限
定されるものではない。カッコ内の数字は図面及び／又
は明細書中で用いている構造式に関するものである。
実施例１ ７−ヒドロキシ−９，９−ジメチル−９Ｈ−アクリジン
−２−オン（２０）の合成及び分析 色原体（２）の、本発明の色原体酵素基質化合物におけ
る指示薬として用いることに関する好適性を示すため
に、次式： の７−ヒドロキシ−９，９−ジメチル−９Ｈ−アクリジ
ン−２−オン色原体（２０）を、HillらのJ.Chem.Soc.
（Ｃ），２４６２頁（１９７０年）の方法にしたがって
製造した（ここでは、一般式（２）におけるＲ及びＲ′
はメチルである）。ジメチル色原体（２０）の分析によ
って、かかる色原体が７，１のフェノール性ｐＫａ及び
４５９nmの吸光度（λ max）を有することが測定さ
れ、これは塩基性水溶液中に溶解し、安定であった。ジ
メチル色原体（２０）を脱プロトン化すると、そのアニ
オンは６３５nmの吸光度及びpH１０において５３，１０
０の吸光係数を示し、最大吸光度における１７６nmのシ
フト及び本発明の色原体酵素基質化合物に必要な高い吸
光係数を与えた。
実施例２ ７−ヒドロキシ−１，３−ジクロロ−９，９−ジメチル
−９Ｈ−アクリジン−２−オン中間体（２６）からの７
−ヒドロキシ−９，９−ジメチル−９Ｈ−アクリジン−
２−オン（２０）の合成（図２） （ａ）７−ヒドロキシ−１，３−ジクロロ−９，９−ジ
メチル−９Ｈ−アクリジン−２−オン（２６）の合成 テトラヒドロフラン（５ｍ）中の、BruceらのJ.Chem.
Soc.（Ｃ），１６２７頁（１９６６年）に記載されたよ
うに製造された２−（３′−ヒドロキシフェニル）−２
−プロパノール（２１）（１．５２ｇ：１０ミリモル）
と、２，６−ジクロロキノン−４−クロロイミド（２
２）（米国、ワイオミング州ミルウォーキーのAldrich
Chemical Co.製）（２．１０ｇ：１０ミリモル）との混
合物をＨ２Ｏ（５ｍ）で希釈し氷浴中で冷却し、２Ｍ
のＮａＯＨ水溶液（１０．５ｍ：２１ミリモル）によ
って１０分間かけて滴加処理した。得られた濃青色の反
応混合物を０℃で１．５時間攪拌にかけ、次に、強く攪
拌されているＮＨ４Ｃの飽和水溶液（５００ｍ）及
び酢酸エチル（３００ｍ）の混合物中に配合した。相
を分離し、水相を酢酸エチル（１００ｍ）で１回抽出
し、次に、酢酸エチル層を合わせてＮＨ４Ｃ飽和水溶
液（２００ｍ）で１回洗浄した。得られた化合物（２
３）の酢酸エチル溶液を次にＨ２Ｏ（２５０ｍ）中の
Ｎａ２Ｓ２Ｏ４（２５ｇ）溶液で２回洗浄した。水性洗
浄液を合わせて酢酸エチル（５０ｍ）で１回抽出し、
次に酢酸エチル層を合わせてＮａＣ飽和水溶液（塩
水）（１５０ｍ）で１回洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥
させ、過し、減圧下で溶媒を除去して粗形態の化合物
（２４）が茶色のタール状物質として生成し、これを精
製せずに用いた。メタノール（１０ｍ）の粗生成物
（２４）の溶液を、高速攪拌された、（不活性ガスのパ
ージによって）脱酸素化された２Ｍ ＨＣ水溶液（２
５０ｍ）中に周囲温度でゆっくりと配合した。得られ
た懸濁液を不活性ガス雰囲気下で、１００℃の油浴中で
１．２５時間加熱し、この間に、暗色でガム状の固体か
ら分離した。反応混合物を周囲温度に冷却し、酢酸エチ
ル（２００ｍ）と共に高速で攪拌し、相を分離した。
水層を酢酸エチル（２００ｍ）で１回抽出し、次に、
酢酸エチル層を合わせて塩水（５０ｍ）で１回洗浄し
た。得られた化合物（２５）の酢酸エチル溶液を、Ｈ２
Ｏ（１００ｍ）中のＮａＩＯ４（３ｇ）溶液と共に１
５分間強く攪拌することによって酸化し、次に相を分離
し、酢酸エチル層を塩水（１００ｍ）で１回洗浄し、
Ｎａ２ＳＯ４で乾燥し、過し、減圧下で蒸発乾固させ
て粗形態の７−ヒドロキシ−１，３−ジクロロ−９，９
−ジメチル−９Ｈ−アクリジン−２−オン（２６）が得
られ、次にこれを沸騰したエチルアルコール（５００ｍ
）中に投入し、容量が約１５０ｍになるまで沸騰す
ることによって濃縮した。冷却すると、化合物（２６）
が微細な赤黒色の針状物として分離し、２回の採取によ
って２．５ｇが得られた（８２％）。最初に採取された
ものの一部をエチルアルコールから再結晶し、２５０℃
以上の融点を有する化合物（２６）の分析試料を得た。
IR(KBr)(cm-1):1624,1492,1451,1304,985,500;１ H NMR(DMSO-d６）：δ＝1.74(s,6H),6.84(dのd,J1=8.
5Hz及びJ2＝2.4Hz,1H),7.06(d,J=2.4Hz、1H), 7.50(d,J＝8.5Hz、1H),7.76(s,1H);１３ Ｃ NMR(DMSO-d6)(ppm):172.07,162.70,145.73,14
1.18,140.85,139.23,134.8,134.6,134.28,132.46,115.9
5,114.12,26.27（１つは同域のバンドであり、一方が溶
媒バンドによって隠蔽されている）； 分析値 C15H11Cl2NO2に関する 計算値：C,58.46;H,3.60;N,4.55 測定値：C,58.71;H,3.83;N,4.34 （ｂ）７−ヒドロキシ−９，９−ジメチル−９Ｈ−アク
リジン−２−オン（２０）の合成 １ＭのＮａＯＨ水溶液（６０ｍ）及びエチルアルコー
ル（４０ｍ）中の、本実施例の工程（ａ）からのジク
ロロ化合物（２６）（２．０ｇ：６．４９ミリモル）の
溶液を、ラネーニッケル２８００（米国、メリーランド
州バルチモアのW.R.Grace and Co.製）（小さじ一抔）
で処理し、攪拌しながら、約７０℃で５時間、４０ｐｓ
ｉのＨ２で水素化した。周囲温度に冷却した後、反応混
合物を珪藻土（米国、コロラド州デンバーのJohns-Manv
ille Corp.製のCelite ）で過し、Ｈ２Ｏ（５００ｍ
）で希釈し、次に２ＭのＨＣ水溶液（１００ｍ）
で酸性化し、酢酸エチル（１回２００ｍ）で５回抽出
した。酢酸エチル抽出物を合わせてＨ２Ｏ（３００ｍ
）中のＮａＩＯ４（４ｇ）溶液と共に、周囲温度で１
０分間強く攪拌し、次に１ＭのＨＣ水溶液（１００ｍ
）で処理した。相を分離し、水層を酢酸エチル（１回
５０ｍ）で２回洗浄し、酢酸エチル層を合わせて塩水
（５０ｍ）で１回洗浄し、ＭｇＳＯ４で乾燥し、過
し、減圧下で蒸発乾固させた。微量の残留水をトルエン
と共に共沸することによって除去し、次に６０℃で減圧
乾燥して赤色粉末の形態のジメチル色原体（２０）
（１．３８ｇ：８９％）を得た。酢酸エチル／ヘキサン
（１：１）からの再結晶によって、Hillらの上述の文献
の方法によって製造されたものと同一の、紅赤色の針状
物の形態のジメチル色原体（２０）が提供された。
実施例３ ７−（テトラ−Ｏ−アセチル−β−Ｄ−ガラクトピラノ
シルオキシ−９，９−チル−９Ｈ−アクリジン−２−オ
ン（３１）中間体を用いた７−β−Ｄ−ガラクトピラノ
シルオキシ−９，９−ジメチル−９Ｈ−アクリジン−２
−オン（３２）の合成 （ａ）７−（テトラ−Ｏ−アセチル−β−ガラクトピラ
ノシルオキシ）−９，９−ジメチル−９Ｈ−アクリジン
−２−オン（３１） 無水キノリン（１５．８ｍ）を含有する酢酸エチル
（３１．６５ｍ）中の、実施例２によって得られたジ
メチル色原体（２０）（１．５７ｇ：６．５６ミリモ
ル）、アセトブロモガラクトース（米国ミズーリ州セン
トルイスのSigma Chemical Co.製）（３．２３８ｇ：
７．８７ミリモル）、Ａｇ２Ｏ（１．８２５ｇ：７．８
７ミリモル）及びＣａＳＯ４（米国、オハイオ州キセニ
アのW.A.Hammond Drierite Co.製のDrierite ）（２．
６２５ｇ）の混合物を、光から保護された、密栓したフ
ラスコ中において、周囲温度で１９時間攪拌した。反応
混合物を酢酸エチル（７５ｍ）で希釈し、Celite で
過し、１．２５ＭのＨＣ水溶液（１回７５ｍ）で
２回抽出した。水性抽出物を合わせて酢酸エチル（５０
ｍ）で１回洗浄し、次に酢酸エチル層を合わせて塩水
（１回３５ｍ）で２回、５％のＮａＨＣＯ３水溶液
（１回７５ｍ）で３回、最後に塩水（７５ｍ）で洗
浄した。次に、酢酸エチル溶液をＮａ２ＳＯ４で乾燥
し、過し、減圧下で蒸発乾固させ、褐色がかった橙色
の泡状残査（４．７８ｇ）が生成した。泡状残査を酢酸
エチル／ヘキサン（３：２，５５ｍ）中に投入し、活
性炭（米国、デラウェア州、ウィルミントンのICI Amer
icas,Inc.製のDarco Ｇ−６０）（４．７８ｇ）で処理
し、周囲温度で１時間攪拌した。混合物をCelite で
過し、フィルターケーキを酢酸エチル／ヘキサン（３：
２、１１５ｍ）で洗浄し、次に、液及び洗浄液を合
わせて減圧下で蒸発乾固させ、褐色がかった金色の泡状
物（４．１７ｇ）が得られた。泡状物を沸騰した酢酸エ
チル（５．５ｍ）中に投入し、ヘキサン（９ｍ）で
希釈し、強くかきまぜて結晶化を誘発し、２回の採取
後、収量３．０ｇ（８０％）の７−（テトラ−Ｏ−アセ
チル−β−Ｄ−ガラクトピラノシルオキシ）−９，９−
ジメチル−９Ｈ−アクリジン−２−オン（３１）が得ら
れた。酢酸エチル／ヘキサン（２：１）からの一度の結
晶化によって、１５６．５〜１５８．０℃の融点を有す
る鮮やかな黄色の針状物のロゼット形態の式（３１）の
分析試料が得られた。
IR(KBr)(cm-1):2970,1755,1645,1620,1515,1375,1235,1
080;１ H NMR(DMSO-d６）：δ＝1.50(s,6H),1.93(s,3H),1.97
(s,3H),1.97(s,3H),2.01(s,3H),2.12(s,3H),4.00-4.15
(m,2H),4.42-4.62(m,1H),5.20-5.40(m,3H),5.67-5.80
(m,1H),6.52-7.70(m,6H);１３ Ｃ NMR(DMSO-d6)(ppm):186.44,169.92,169.53,16
9.20,158.15,151.00,147.29,141.44,139.62,137.34,13
3.05,131.23,127.46,115.55,113.80,96.76,70.75,70.2
3,68.28,67.50,61.84,36.87,32.25,31.80,20.42（４つ
の同域バンド）； 分析値 C29H31NO11に関する 計算値：C,61.15;H,5.49;N,2.46 測定値：C,60.96;H,5.54;N,2.46 （ｂ）７−β−Ｄ−ガラクトピラノシルオキシ−９，９
−ジメチル−９Ｈ−アクリジン−２オン（３２）の合成 加温状態のＨＰＬＣ級メタノール（２５０ｍ）中の、
本実施例の工程（ａ）からの７−（テトラ−Ｏ−アセチ
ル−β−Ｄ−ガラクトピラノシルオキシ）−９，９−ジ
メチル−９Ｈ−アクリジン−２−オン（３１）（５．３
ｇ：９．３ミリモル）の溶液を周囲温度に冷却し、ナト
リウムメトキシド（０．１０６ｇ：１．９６ミリモル）
で処理した。加水分解反応に続いて薄層クロマトグラフ
ィー［シリカゲル；メタノール／ＣＨＣ３（１５：８
５）］を行ない１．３３時間後に完了した。酢酸（０．
１１２ｍ）を加えることによって反応を停止させ、次
に減圧下で蒸発乾固させて暗橙色の固体を得た。暗橙色
の固体を熱したエタノール（７５ｍ）中に投入し、Da
rco Ｇ−６０で処理し、１０分間攪拌し、次に、Celit
e で過し、加温状態のエタノール（１００ｍ）を
用いてフィルターケーキをすすいだ。液及び洗浄液を
合わせて減圧下で生成物が分離しはじめるまで濃縮し、
次に溶液を、容量約５０ｍになるまで沸騰することに
よって更に濃縮した。冷却すると、ガラクトシド（３
２）がアモルファス状の橙色粉末として分離し、２回の
採取の後、収量３．３ｇ（８８％）が得られた。一部を
エタノールから再結晶させ、１３２℃で１時間減圧
（０．１トル）乾燥し、１８４〜１８６℃の融点（分
解）を示すがより低い約１４０℃でシンチレーションの
発生がみられるガラクトシド（３２）の分析試料を得
た。
IR(KBr)(cm-1):3400,1635,1610,1505,1240,1070;１ H NMR(DMSO-d６）：δ＝1.50(s,6H),3.40-3.72(m,6
H),4.51(d,J＝4.1Hz,1H),4.66(t,J＝5.1Hz,1H),4.88(d,
J＝3.5Hz,1H),5.00(d,J＝7.7Hz,1H),5.18(d,J＝5.0Hz,1
H),6.60(dのd,J1＝9.8Hz及びJ2＝2.0Hz,1H),6.79(d,J＝
2.0Hz,1H),7.06(dのd,J1＝8.7Hz及びJ2＝2.6Hz,1H),7.3
1(d,J＝2.6Hz,1H),7.42(d,J＝9.8Hz,1H),7.59(d,J＝8.7
Hz,1H);１３ Ｃ NMR(DMSO-d6)(ppm):186.45,159.60,150.34,14
7.52,141.48,139.51,136.68,133.00,130.99,127.26,11
5.43,114.10,100.40,75.79,73.40,70.22,68.25,60.48,3
7.15,32.28,31.89; 分析値 C21H23NO7に関する 計算値：C,62.83;H,5.78;N,3.49 測定値：C,62.74;H,5.73;N,3.20 実施例４ ７−（テトラ−Ｏ−アセチル−β−Ｄ−グルコピラノシ
ルオキシ−９，９−ジメチル−９Ｈ−アクリジン−２−
オン（３３）中間体を用いる７−β−Ｄ−グルコピラノ
シルオキシ−９，９−ジメチル−９Ｈ−アクリジン−２
−オン（３４）の合成 （ａ）７−（テトラ−Ｏ−アセチル−β−Ｄ−グルコピ
ラノシルオキシ）−９，９−ジメチル−９Ｈ−アクリジ
ン−２−オン（３３）の合成 実施例２によって得られたジメチル色原体（２０）
（０．２３９３ｇ：１．０ミリモル）、アセトブロモグ
ルコース（米国、ミズーリ州セントルイスのSigma Chem
ical Co.製）（０．８２２４ｇ：２．０ミリモル）及び
Ａｇ２Ｏ（０．５１ｇ：２．２ミリモル）の混合物を、
光から保護された、密栓したフラスコ中において、周囲
温度で１７時間、無水キノリン（７．５ｍ）中で攪拌
した。反応混合物を酢酸エチル（１００ｍ）で希釈
し、Celite で過し、１．２５ＭのＨＣ水溶液（１
回５０ｍ）で２回抽出した。水性抽出物を合わせて酢
酸エチル（１０ｍ）で１回洗浄し、次に、酢酸エチル
層を合わせて塩水（２０ｍ）で１回、５％のＮａＨＣ
Ｏ３水溶液（５０ｍ）で１回、塩水（２０ｍ）でも
う１回洗浄した。次に、酢酸エチル溶液をＮａ２ＳＯ４
で乾燥し、過し、減圧下で蒸発乾固させた。粗生成物
を、アセトン／ＣＨＣ３（１：９）溶媒を用いてシリ
カゲル（７５ｇ）上でクロマトグラフにかけ、明黄色の
主生成物のバンドを採取し、減圧下で蒸発乾固させ、橙
色の泡状物を得た。泡状物を酢酸エチル／ヘキサン
（１：１）から結晶化させて黄金色の微細な針状物の形
態の、７−（テトラ−Ｏ−アセチル−β−Ｄ−グルコピ
ラノシルオキシ）−９，９−ジメチル−９Ｈ−アクリジ
ン−２−オン（３３）（０．４９８ｇ：８７％）を生成
した。一部を上記のように再結晶化させ、１４２．０〜
１４３．５℃の融点を有する化合物（３３）の分析試料
を得た。
IR(KBr)(cm-1):2980,1754,1637,1617,1514,1368,1132,1
074,1038;１ H NMR(DMSO-d６）：δ＝1.52(s,6H),1.91(s,3H),1.99
(s,3H),2.01(s,3H),2.02(s,3H),3.98-4.19(m,2H),4.32-
4.38(m,1H),5.03-5.13(m,2H),5.42(t,J＝9.6Hz,1H),5.8
3(d,J=8.0Hz,1H),6.62(dのd,J1＝9.8Hz及びJ2＝2.1Hz,1
H),6.81(d,J＝2.1Hz,1H),7.04(dのd,J1＝8.7Hz及びJ2＝
2.7Hz,1H),7.27(d,J＝2.7Hz,1H),7.43(d,J=9.8Hz,1H),
7.63(d,J＝8.7Hz,1H);１３ Ｃ NMR(DMSO-d6)(ppm):186.46,170.00,169.62,16
9.33,169.12,158.08,150.99,147.31,141.44,139.67,13
7.32,133.04,131.26,127.47,115.44,113.84,96.15,72.0
3,71.13,70.58,68.96,61.92,37.13,32.27,31.79,20.52,
20.40,20.30（１つの同域ピーク）； 分析値 C29H31NO11に関する 計算値：C,61.15;H,5.49;N,2.46 測定値：C,61.35;H,5.58;N,2.24 （ｂ）７−β−Ｄ−グルコピラノシルオキシ−９，９−
ジメチル−９Ｈ−アクリジン−２−オン（３４）の合成 ＨＰＬＣ級メタノール（３０ｍ）中の、本実施例の工
程（ａ）からの７−（テトラ−Ｏ−アセチル−β−Ｄ−
グルコピラノシルオキシ）−９，９−ジメチル−９Ｈ−
アクリジン−２−オン（３３）（０．４７ｇ：０．８２
ミリモル）の溶液を氷浴中で冷却し、ナトリウムメトキ
シド（２０mg）で処理し、周囲温度に加温した。加水分
解反応に続いて薄層クロマトグラフィー［シリカゲル；
メタノール／ＣＨＣ３（１５：８５）］を行ない、
１．５時間で完了した。酢酸（約２０μ）を加えるこ
とによって反応を停止させ、減圧下で蒸発乾固させ、粗
形態のグリコシド（３４）が橙色の泡状物として得られ
た。粗形態のグリコシド（３４）を、メタノール／ＣＨ
Ｃ３（１５：８５）溶媒を用いてシリカゲル（７５
ｇ）上でクロマトグラフにかけ、黄色の主生成物のバン
ドを採取し、減圧下で溶媒を除去して橙色の泡状物を
得、これを最小量の加熱エタノールから結晶化させ、２
３２〜２３３℃の融点（分解点）を有する明橙色の微細
な針状物の形態のグリコシド（３４）（０．２８ｇ：８
６％）を得た。
IR(KBr)(cm-1):3320,2900,1627,1604,1500,1230,1083;１ H NMR(DMSO-d６）：δ＝1.52(s,6H),3.12-3.19(m,1
H),3.23-3.35(m,2H),3.40-3.49(m,2H),3.67-3.72(m,1
H),4.59(t,J＝5.2Hz,1H),5.05(d,J＝6.2Hz,1H),5.12(d,
J＝4.0Hz,1H),5.35(d,J＝4.4Hz,1H),6.60(dのd,J1＝9.8
HzびJ2＝2.1Hz,1H),6.80(d,J＝2.0Hz,1H),7.05(dのd,J1
＝8.7Hz及びJ2＝2.6Hz,1H),7.30(d,J＝2.5Hz,1H),7.43
(d,J＝9.8Hz,1H),7.59(d,J＝8.7Hz,1H);１３ Ｃ NMR(DMSO-d6)(ppm):186.15,159.40,150.28,14
7.40,141.26,139.33,136.65,132.80,130.82,127.00,11
5.37,113.90,99.90,77.13,76.64,73.16,69.86,60.74,3
7.00,31.98,31.65; 分析値 C21H23NO7に関する 計算値：C,62.83;H,5.78;N,3.49 測定値：C,62.49;H,5.78;N,3.64. 実施例５ Ｎ−トシル−Ｌ−アラニニルクロリド中間体（３５）を
用いる７−（Ｎ−トシル−Ｌ−アラニニルオキシ）−
９，９−ジメチル−９Ｈ−アクリジン−２−オン（３
６）の合成 （ａ）Ｎ−トシル−Ｌ−アラニニルクロリド（３５）の
合成 Ｎ−トシル−Ｌ−アラニニルクロリド（３５）の合成に
おいては、出発物質として、BeechamのJ.Am.Chem.So
c.、第７９巻３２５７頁（１９５７年）に記載された方
法にしたがって製造されたＮ−トシル−Ｌ−アラニンを
用いる。Ｌ−アラニン（米国、ミズーリ州セントルイス
のSigma Chemical Co.製）（１００ｇ：１．１１モル）
を１．０ＭのＮａＯＨ水溶液（２．２５）に溶解し、
５℃に冷却し、攪拌しながら、トルエン（４５０ｍ）
中のｐ−トルエンスルホニルクロリド（塩化トシル）
（２１８ｇ：１．１１モル）の溶液をゆっくりと加え
た。混合物を周囲温度で２０時間攪拌した。層を分離
し、冷却した水層を濃縮塩酸でpH１．０に酸性化した。
白色の固体を過によって採取し、水で洗浄し、乾燥し
て１３４〜１３５℃の融点を有するＮ−トシル−Ｌ−ア
ラニン（１７８．５ｇ：６６％）を得た。
IR(CHCl3)(cm-1):1726,1340,1165,1095;１ H NMR(DMSO-d６）：δ＝1.20(d,J＝7Hz,3H),2.40(s,3
H),3.85(p,J＝8Hz,1H),6.4(br.d,1H),7.41(d,｜JAB｜＝
8Hz,2H)及び7.75(d,｜JAB｜＝8Hz,2H)（パターン中心7.
58),8.03(br.d,J=8Hz,1H). 次に、Ｎ−トシル−Ｌ−アラニニルクロリド（３５）
を、Ｎ−トシル−Ｌ−アラニンを用いて下記の方法(i)
及び(ii)にしたがって製造した。すなわち、 (i)Ｎ−トシル−Ｌ−アラニン（１２．４ｇ：０．０５
モル）及び塩化チオニル（２５ｍ）の混合物を５５℃
で１．５時間加熱し、次に、減圧下、４０℃浴で蒸発乾
固させた。赤色の固体残査を沸騰したＣＣ４（２００
ｍ）に溶解し、活性炭（米国、フロリダ州ジャクソン
ビルのAmerican Norit Co.,Inc.製のNorit ２１１）に
よって脱色し、過し、冷却した。クリーム色の固体を
過によって採取し、ヘキサンで洗浄し、乾燥して１０
１〜１０１．５℃の融点を有するＮ−トシル−Ｌ−アラ
ニニルクロリド（３５）（８．４８ｇ：６５％）を得
た。
IR(CHCl3)(cm-1):3360,3260,3025,1775,1605,1350,117
0,910;１ H NMR(CDCl3):δ＝1.48(d,J=7Hz,3H),2.43(s,3H),4.3
3(p,J=8Hz,1H),5.93(br.d,J=8Hz,1H),7.31(d,｜JAB｜＝
8Hz,2H)及び7.76(d,｜JAB｜＝8Hz,2H)（パターン中心7.
53). 分析値 C10H12NO3Sに関する 計算値：C,45.89;H,4.62;N,5.35 測定値：C,46.63;H,4.90;N,5.19 (ii)Ｎ−トシル−Ｌ−アラニン（３．１ｇ：１３ミリモ
ル）及び塩化チオニル（６ｍ）の混合物を５０℃で
１．５時間加熱し、次に乾燥ヘキサン（５０ｍ）で希
釈した。混合物を高速で攪拌し、冷却し、固体を過に
よって採取して、９９〜１００℃の融点を有するＮ−ト
シル−Ｌ−アラニニルクロリド（３５）３．１５ｇ（９
３％）を得た。この物質のＩＲスペクトルは、方法(i)
によって製造された再結晶化物質のそれと同一であっ
た。
（ｂ）７−（Ｎ−トシル−Ｌ−アラニニルオキシ）−
９，９−ジメチル−９Ｈ−アクリジン−２−オン（３
６）の合成 無水テトラヒドロフラン（３．２ｍ）中の、実施例２
によって製造されたジメチル色原体（２０）（３８mg：
０．１６ミリモル）の溶液を、周囲温度で攪拌し、反応
中は不活性ガス雰囲気に保持しながら、本実施例の工程
（ａ）からのＮ−トシル−Ｌ−アラニニルクロリド（３
５）（２４３mg：０．９３ミリモル）及び無水ピリジン
（２８０μ）で１．５時間かけて一部ずつ処理した。
添加が完了したら、反応系を更に１時間攪拌し、次に酢
酸エチル（５０ｍ）中に配合し、続いて、１Ｎのクエ
ン酸水溶液（１回１０ｍ）で２回抽出した。水性抽出
物を合わせて酢酸エチル（１０ｍ）で１回洗浄し、酢
酸エチル層を合わせて５％のＮａＨＣＯ３水溶液（１回
１０ｍ）で３回抽出した。ＮａＨＣＯ３抽出物を合わ
せて酢酸エチル（１０ｍ）で１回抽出し、次に酢酸エ
チル層を合わせて塩水（２０ｍ）で１回洗浄し、Ｎａ
２ＳＯ４で乾燥し、過し、減圧下で蒸発乾固させて橙
色の粘稠性油状物（１１０mg）を得た。これを、アセト
ン／ＣＨＣ３（１：９）溶媒を用いてシリカゲル（５
０ｇ）上でクロマトグラフにかけた。黄色の主生成物の
バンド（Ｒｆ＝０．３２）を採取し、減圧下で蒸発乾固
させて、黄色のガラス状の７−（Ｎ−トシル−Ｌ−アラ
ニニルオキシ）−９，９−ジメチル−９Ｈ−アクリジン
−２−オン（３６）（４０mg：５４％）を得た。
IR(CHCl3)(cm-1):1758,1639,1617,1516,1343,1215,116
5,670;１ H NMR(CDCl3):δ-1.52(s,6H),1.57(d,J=7.2Hz,3H),2.
44(s,3H),4.22-4.32(m,1H),5.25(br.d,J=8.8Hz,1H),6.6
5-6.59(m,2H),6.86(dのd,J1＝8.6Hz及びJ2＝2.5Hz,1H),
7.07(d,J=2.5Hz,1H),7.40(d,J=10.2Hz,1H),7.33(d,｜J
AB｜＝8.1Hz,2H)及び7.81(d,｜JAB｜＝8.1Hz,2H)（パタ
ーン中心7.57),7.65(d,J＝8.6Hz,1H);１３ Ｃ−NMR(CDCl3)(ppm):186.91,170.58,153.01,151.6
6,146.98,143.87,141.60,138.76,137.13,132.89,132.0
4,129.81,127.97,127.35,120.62,118.38,51.76,37.26,3
2.14,21.53,19.58（３つの同域バンド）。
実施例６ ジナトリウム−９，９−ジメチル−９Ｈ−アクリジン−
２−オン−７−ホスフェート（３７）の合成 無水ピリジン（３ｍ）中の、実施例２によって製造さ
れたジメチル色原体（２０）（０．２３９３ｇ：１．０
ミリモル）の溶液を、不活性ガス雰囲気下に保持し、０
℃に冷却し、次にＰＯＣ３（０．２８ｍ：３ミリモ
ル）で部分的に処理し、０℃で１時間攪拌した。反応混
合物を周囲温度のＨ２Ｏ（１００ｍ）中に配合し、得
られた溶液のpHを、１０．０ＭのＮａＯＨ水溶液を注意
深く加えることによって７．０に調節した。この溶液を
減圧下で数ｍまで濃縮し、次に、エタノール／１．０
Ｍ重炭酸トリエチルアンモニウム水溶液（７：３）溶媒
を用いて、シリカゲル（１００ｇ）上でクロマトグラフ
にかけた。黄色の主生成物のバンド（この系においてＲ
ｆは約０．４５であった）を採取し、減圧下で蒸発乾固
させ、次に、残査をメタノール（５ｍ）中に３回溶解
させ、減圧下で蒸発乾固させて微量の重炭酸トリエチル
アンモニウムを除去した。残査をＨ２Ｏ（２〜３ｍ）
中に投入し、イオン交換樹脂（米国、ペンシルバニア州
フィラデルフィアのRohm and Haas CO.製のＮａ形態のA
mberlite ＩＲＣ−５０）カラムに通し、溶出液を減圧
下で蒸発乾固させた。残査を、メタノールを用いて粉砕
し、粉砕物をCelite で過し、減圧下で蒸発乾固させ
て粗形態のジナトリウム−アクリジノン−ホスフェート
（３７）を得た。粗生成物（３７）を最小量の加熱Ｈ２
Ｏ（１〜２ｍ）中に投入し、３倍容量のエタノールで
希釈し、かきまわして結晶化を誘発して、２回の採取の
後、化合物（３７）０．０９１５ｇ（２５％）を得た。
Ｈ２Ｏ／エタノール（１：３）からの再結晶によって、
１００℃を超える温度に加熱すると分解する、微細な褐
色がかった橙色の針状物の形態のジナトリウム−アクリ
ジノン−ホスフェート（３７）の分析試料が生成した。
IR(KBR)(cm-1):3430,1635,1610,1505,1246,1124,988,95
3,879,711,571;１ H NMR(D2O):δ＝1.57(s,6H),6.72(dのd,J1＝9.8Hz及
びJ2＝2.1Hz,1H),6.86(d,J＝2.2Hz,1H),7.28(br.dのd,J
1＝8.3Hz及びJ2＝2.0Hz,1H),7.50(d,J＝9.8Hz,1H),7.53
(br.d,J＝2.4Hz,1H),7.63(d,J＝8.7Hz,1H);１３ Ｃ NMR(D2O)(ppm):192.16,160.73,153.18,152.94,
144.60,143.40,139.05,135.47,133.47,129.66,122.43,1
20.73,40.46,34.09（１つの同域バンド）。
実施例７ β−Ｄ−ガラクトシダーゼの検出のための分析試験具 Whatman５４紙（米国、ニュージャージー州クリフト
ンのWhatman,Inc.製）の幅２インチ（５．０８cm）×長
さ２インチ（５．０８cm）のシートを、０．３Ｍのビチ
ン（bicine）緩衝剤（pH７．９）及び４．０ｍＭのＭｇ
Ｃ２からなる水溶液中に浸漬し、室温で一晩空気乾燥
した。次に、紙を、実施例３からの基質生成物（３
２）１５ｍＭを含有するメタノール溶液中に浸漬し、室
温で１時間空気乾燥し、黄色の紙を得た。
上記記載の、含浸した黄色の紙の、幅０．５cm×長さ
１．０cmの切片を、液体試験試料からのβ−Ｄ−ガラク
トシダーゼの検出のための分析試験具として用いるため
の、Double Stick の両面粘着テープ（米国、ミネソタ
州セントポールの３ＭCompany製）の２mm片が予め積層
されている、０．５cm×８．１２５cmのポリスチレン支
持体（米国、ミシガン州のミッドランドのDow Chemical
CO.製のTricite ）の片面の端縁にそって取り付け
た。
実施例８ 液体試験試料からのβ−Ｄ−ガラクトシダーゼの測定 実施例４による１０種の分析試験具を製造し、本発明の
基質生成化合物（３２）の、β−Ｄ−ガラクトシダーゼ
に対する用量応答を測定するために用いた。０．０２ｎ
ｇ／ｍ，０．０４ｎｇ／ｍ，０．０６ｎｇ／ｍ，
０．０８ｎｇ／ｍ，０．１０ｎｇ／ｍ，０．１２ｎ
ｇ／ｍ，０．１４ｎｇ／ｍ，０．１６ｎｇ／ｍ，
０．１８ｎｇ／ｍ及び０．２０ｎｇ／ｍの濃度のβ
−Ｄ−ガラクトシダーゼを含有する１０種の試験試料溶
液を調製し、分析試験具をそれぞれの中に浸漬した。次
に、それぞれの分析試験具をＳＥＲＡＬＹＺＥＲ 反射
光度計（米国インディアナ州エルクハートのMiles Inc.
製）中に取り付け、実施例１に記載の遊離色原体（２
０）を含む試験具からの光の反射率を、５０〜７０秒後
に６３０nmで測定し、その反射率値を、それぞれの試験
試料溶液濃度に対してプロットし、図４に示したような
直線性の用量応答を示した。
実施例９ ７−β−マルトヘプタオシルオキシ−９，９−ジメチル
−アクリジン−２−オン（４３）／ＤＭＡ−Ｇ７の合成 実施例４の工程（ｂ）からの、７−β−Ｄ−グルコピラ
ノシルオキシ−９，９−ジメチル−９Ｈ−アクリジン−
２−オン（３４）（以下、ＤＭＡ−Ｇ１と称する）１
２．５ｍＭ、α−シクロデキストリン（米国、ミズーリ
州セントルイスのSigma Chemical Co.製６２．０ｍＭ及
びシクロデキストリングルカノトランスフェラーゼ（Ｅ
Ｃ２．４．１．１９；天野製薬（株）製）５６単位／ｍ
の混合物を、ピペラジン−Ｎ，Ｎ′−ビス（２−エタ
ンスルホン酸）緩衝剤（ＰＩＰＥＳ、pH６．０）中で、
５０℃で４時間反応させた。次にこの反応混合物を１０
０℃（沸騰水）で１０分間加熱し、シクロデキストリン
グルカノトランスフェラーゼを不活性化し、次に、減圧
下で蒸発乾固させ、水０．５ｍ中に再溶解し、グルコ
シド（ＤＭＡ−Ｇ１）、非置換マルトオリゴ糖（例え
ば、グルコース、マルトース、マルトトリオース、マル
トテトロース、マルトペントース、マルトヘキソース、
マルトヘプトース及びα−シクロデキストリン）、並び
に、表１において示した構造を有する、所望の７−β−
マルトヘプタオシルオキシ−９，９−ジメチル−アクリ
ジン−２−オン（ＤＭＡ−Ｇ７）化合物、及びより短か
い連鎖長の色原体マルトオリゴ糖［７−β−マルト、−
マルトトリオ、−マルトテトラ、−マルトペンタ及び−
マルトヘキサオシルオキシ−９，９−ジメチル−アクリ
ジン−２−オン、すなわち、以下においてそれぞれ、Ｄ
ＭＡ−Ｇ２（３８）、ＤＭＡ−Ｇ３（３９）、ＤＭＡ−
Ｇ４（４０）、ＤＭＡ−Ｇ５（４１）及びＤＭＡ−Ｇ６
（４２）と称するもの］の混合物を得た。
所望のＤＭＡ−Ｇ７種を、分取可逆相Ｃ−１８カラム
（米国、イリノイ州モートングローブのRegis Chemical
Co.製）を用いた高圧液クロマトグラフィー（ＨＰＬ
Ｃ）によってＤＭＡ−Ｇ１へＤＭＡ−Ｇ６種から分離し
た。上記システムは、２つのConstametric−III計量ポ
ンプ、クロマトグラフィー制御モジュール及びSpectrom
onitor−II検出器（すべて、米国フロリダ州リビエラビ
ーチのLaboratory Data Control製）からなっていた。
再溶解した基質反応混合物を、ＨＰＬＣ系の中に注入
し、流速６．０ｍ／分において９０分間溶出させた。
直線勾配の０〜２５％のＣＨ３ＣＮ／Ｈ２Ｏ、ＤＭＡ−
Ｇ１〜ＤＭＡ−Ｇ７及び非置換マルトオリゴ糖種をカラ
ムから溶出させるのに用いられた。非置換マルトオリゴ
糖を溶出させ、無効量として除去し、カラム溶出物を５
２０nmでモニターしてＤＭＡ−Ｇ１〜ＤＭＡ−Ｇ７種を
含有するフラクションを検出した。ＤＭＡ−Ｇ７、ＤＭ
Ａ−Ｇ６、ＤＭＡ−Ｇ５，ＤＭＡ−Ｇ４、ＤＭＡ−Ｇ
３、ＤＭＡ−Ｇ２及びＤＭＡ−Ｇ１を含有するフラクシ
ョン（９．０ｍ）を、それぞれ、保持時間４２．５、
４４．６、４８．５、５３．１、５８．５，６４．６及
び７０．８分において、フラクション採取器（スウェー
デン、BrommaのＬＫＢ社製）によって採取し、これによ
って反応混合物からのＤＭＡ−Ｇ１の約５０％が所望の
ＤＭＡ−Ｇ７に添加した。４２．５分において採取され
たＤＭＡ−Ｇ７を含有するフラクションをＨＰＬＣで再
分析してその純度を確認した。
実施例１０ α−アミラーゼの検出のための液体分析試験系 液体α−アミラーゼ検出試験を、ＰＩＰＥＳ５０ｍＭ、
ＮａＣｍＭ及び塩化カルシウム５．０ｍＭからなる緩
衝溶液（pH７．０）１．０ｍ中において、実施例９に
よって製造されたＤＭＡ−Ｇ７（４３）１．８ｍＭ、α
−グルコシダーゼ３８単位及びβ−グルコシダーゼ２０
単位を結合させることによって製造した。α−アミラー
ゼをそれぞれ３７ＩＵ／、１７５ＩＵ／及び３１３
ＩＵ／含有するアミラーゼ対照血清（０．０２５ｍ
）を検出試薬に個々に加え、３７℃でインキュベート
した。それぞれの混合物中の基質化合物に対するα−ア
ミラーゼの酵素作用により、その、より短連鎖の色原体
マルトオリゴ糖化合物（例えばＤＭＡ−Ｇ２〜ＤＭＡ−
Ｇ４）が遊離し、続いて、α−グルコシダーゼ及びβ−
グルコシダーゼが酵素的に作用して光学的に活性な形態
のジメチルアクリジノン色原体（２０）が遊離した。そ
れぞれの混合物中の遊離色原体によって生じる色変化の
速度を、それぞれの血清試料を検出試薬に加えた後、１
〜９分において、Cary２１９分光光度計（米国カリフォ
ルニア州ソニーベールのVarian Associates,Inc.製）で
６３４nmにおいて測定した（表２）。試料におけるα−
アミラーゼの反応性を、３〜６分間の３つの連続する読
み値の平均をとることによって計算し、それから、α−
アミラーゼ濃度に対する直線状の用量応答が示された
（表３）。
実施例１１ α−アミラーゼの検出のための分析試験具 Whatman５４紙（米国ニュージャージー州クリフトン
のWhatman,Inc.製）のシートを、実施例１０によって製
造された液体α−アミラーゼ検出試薬TritonＸ−１００
（米国ミズリー州セントルイスのSigma Chemical Co.
製）０．１％及びカルボキシセルロース０．５％からな
る溶液中に浸漬し、乾燥した。
上記記載の含浸した紙の幅０．５cm×長さ１．０cmの
切片をDouble Stick 両面粘着テープ（米国ミネソタ州
セントポールの３ＭCompany製）の２mm片を予め積層し
た、０．５cm×８．１２５cmのポリスチレン支持体（米
国ミシガン州ミッドランドのDow Chemical Co.製のTric
ite ）の一方の面の端縁に沿って取り付けることによ
って分析試験具を製造した。
α−アミラーゼをそれぞれ、３９ＩＵ／、７８ＩＵ／
、１１７ＩＵ／、２３５ＩＵ／及び３１３ＩＵ／
含有する非希釈血清の、それぞれ３つずつの３０μ
アリコートを、個々に試験具に施し、それぞれの試験具
において遊離色原体によって生じた色変化の速度を、血
清試料をそれぞれの試験具に加えた後、０〜２４０秒の
間、Seralyzer 反射光度計（米国インディアナ州エル
クハートのMiles Inc.製）で６３０nmにおいて測定し
た。α−アミラーゼの濃度に関する色変化の速度によっ
て得られた反射率のデータの直線性を調べるために、試
験具の反応性を、１８０〜２００秒の間において、Ｌ
（Ｒ）［ここで、Ｌ（Ｒ）＝ａ／（Ｒ＋ｂ）であり、Ｒ
は反射率であり、ａ＝０．５７９８６、ｂ＝０．１６４
９８である］の直線性回帰線をとることによって測定
し、それから、α−アミラーゼに対する直線性用量応答
が示された。
上記に示した発明の多くの修正及び変化がその精神及び
範囲から逸脱することなしに可能であり、したがって、
添付の特許請求の範囲に示されたような制限のみが付加
されることは明らかである。
【図面の簡単な説明】
図１は、７−ヒドロキシ−９Ｈ−アクリジン−２−オン
色原体を製造する合成経路の流れ図； 図２は、７−ヒドロキシ−１，３−ジクロロ−９，９−
ジメチル−９Ｈ−アクリジン−２−オン中間体を用いて
７−ヒドロキシ−９，９−ジメチル−９Ｈ−アクリジン
−２−オン色原体を製造する合成経路の流れ図； 図３は、７−ヒドロキシスピロ［アクリジン−９，１′
−シクロヘキサ−２′，５′−ジエン］−２（９Ｈ）４
−ジオン色原体及びその類縁体を製造する合成経路の流
れ図であり、 図４は、本発明の色原体酵素基質を組みこんだ試験具の
β−Ｄ−ガラクトシダーゼに対する用量応答を示すグラ
フである。

Claims (65)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項１】式： （式中、Ｙは酵素的に開裂しうる基を表し；Ｒ及びＲ′
    は、同一であっても異なっていてもよく、それぞれアル
    キル又はアリールであり、あるいは、一緒になってシク
    ロヘキサジエノン又はヒドロキシシクロヘキシル残基を
    形成する）の色原体アクリジノン酵素基質化合物。
  2. 【請求項２】該酵素的に開裂しうる基が、糖類及びその
    誘導体、脂肪族及び芳香族カルボン酸、リン酸並びに硫
    酸からなる群より選択される酵素特異的部分を含む化合
    物Ｙ−ＯＨの残基である特許請求の範囲第１項記載の化
    合物。
  3. 【請求項３】該酸素特異的部分を含む化合物が、α−Ｄ
    −ガラクトース、β−Ｄ−ガラクトース、α−Ｄ−グル
    コース、β−Ｄ−グルコース、α−Ｄ−マンノース、Ｎ
    −アセチルグルコサミン及びＮ−アセチルノイラミン酸
    からなる群より選択される糖類又はその誘導体である特
    許請求の範囲第２項記載の化合物。
  4. 【請求項４】該酵素特異的部分を含む化合物が、２〜２
    ０の単糖単位からなるオリゴ糖鎖である特許請求の範囲
    第２項記載の化合物。
  5. 【請求項５】該酵素特異的部分を含む化合物が、マルト
    ペントース、マルトヘキソース及びマルトヘプトースか
    らなる群より選択されるオリゴ糖類である特許請求の範
    囲第２項記載の化合物。
  6. 【請求項６】該酵素特異的部分を含む化合物が、β−Ｄ
    −ガラクトースである特許請求の範囲第３項記載の化合
    物。
  7. 【請求項７】該酵素特異的部分を含む化合物が、β−Ｄ
    −グルコースである特許請求の範囲第３項記載の化合
    物。
  8. 【請求項８】該酵素特異的部分を含む化合物が、α−Ｄ
    −グルコースである特許請求の範囲第３項記載の化合
    物。
  9. 【請求項９】該酵素特異的部分を含む化合物が、マルト
    ヘプトースである特許請求の範囲第５項記載の化合物。
  10. 【請求項１０】該酵素特異的部分を含む化合物が、脂肪
    族又は芳香族カルボン酸である特許請求の範囲第２項記
    載の化合物。
  11. 【請求項１１】該酵素特異的部分を含む化合物が、Ｎ−
    保護アミノ酸、又は２〜５のアミノ酸単位からなるペプ
    チドである特許請求の範囲第２項記載の化合物。
  12. 【請求項１２】該酵素特異的部分を含む化合物が、Ｎ−
    トシル−Ｌ−アラニンである特許請求の範囲第１１項記
    載の化合物。
  13. 【請求項１３】該酵素特異的部分を含む化合物が、硫酸
    である特許請求の範囲第２項記載の化合物。
  14. 【請求項１４】該酵素特異的部分を含む化合物が、リン
    酸である特許請求の範囲第２項記載の化合物。
  15. 【請求項１５】Ｒ及びＲ′が、同一であっても異なって
    いてもよく、アルキル又はフェニルであるか、あるいは
    一緒になってシクロヘキサ−２，５−ジエン−４−オン
    残基又は４−ヒドロキシシクロヘキシル残基を形成する
    特許請求の範囲第１項記載の化合物。
  16. 【請求項１６】Ｒ及びＲ′が、同一であっても異なって
    いてもよく、アルキル又はフェニルである特許請求の範
    囲第１５項記載の化合物。
  17. 【請求項１７】Ｒ及びＲ′が、同一であっても異なって
    いてもよく、低級アルキル又はフェニルである特許請求
    の範囲第１６項記載の化合物。
  18. 【請求項１８】式： （式中、Ｙは、糖類及びその誘導体、脂肪族及び芳香族
    カルボン酸、並びにリン酸からなる群より選択される酵
    素特異的部分を含む化合物Ｙ−ＯＨの残基である） で示される特許請求の範囲第１項記載の化合物。
  19. 【請求項１９】該酵素特異的部分を含む化合物が、α−
    Ｄ−ガラクトース、β−Ｄ−ガラクトース、α−Ｄ−グ
    ルコース、β−Ｄ−グルコース、α−Ｄ−マンノース、
    Ｎ−アセチルグルコサミン及びＮ−アセチルノイラミン
    酸からなる群より選択される糖類又はその誘導体である
    特許請求の範囲第１８項記載の化合物。
  20. 【請求項２０】該酵素特異的部分を含む化合物が、２〜
    ２０の単糖単位からなるオリゴ糖鎖である特許請求の範
    囲第１８項記載の化合物。
  21. 【請求項２１】該酵素特異的部分を含む化合物が、β−
    Ｄ−ガラクトースである特許請求の範囲第１９項記載の
    化合物。
  22. 【請求項２２】該酵素特異的部分を含む化合物が、β−
    Ｄ−グルコースである特許請求の範囲第１９項記載の化
    合物。
  23. 【請求項２３】該酵素特異的部分を含む化合物が、α−
    Ｄ−グルコースである特許請求の範囲第１９項記載の化
    合物。
  24. 【請求項２４】該酵素特異的部分を含む化合物が、マル
    トヘプトースである特許請求の範囲第１８項記載の化合
    物。
  25. 【請求項２５】該酵素特異的部分を含む化合物が、Ｎ−
    保護アミノ酸、又は２〜５のアミノ酸単位からなるペプ
    チドである特許請求の範囲第１８項記載の化合物。
  26. 【請求項２６】該酵素特異的部分を含む化合物が、Ｎ−
    トシル−Ｌ−アラニンである特許請求の範囲第２５項記
    載の化合物。
  27. 【請求項２７】該酵素特異的部分を含む化合物が、リン
    酸である特許請求の範囲第１８項記載の化合物。
  28. 【請求項２８】式： （式中、Ｙは酵素特異的糖部分を含む化合物Ｙ−ＯＨの
    残基である） の色原体アクリジノン酵素基質化合物の製造方法であっ
    て、 （ａ）式： のアクリジノン色原体を、酵素特異的糖部分の水酸基が
    それぞれ独立して保護基によって置換された１−ハロゲ
    ノ−誘導体と反応させ、該色原体アクリジノン酵素基質
    化合物のペル−Ｏ−置換誘導体を得； （ｂ）該ペル−Ｏ−置換誘導体を加水分解試薬と反応さ
    せて該保護基を除去し、該色原体アクリジノン酵素基質
    化合物を得ることを特徴とする方法。
  29. 【請求項２９】該酵素特異的糖部分の該１−ハロゲノ−
    誘導体が１−ブロモ−誘導体であり、該保護基がアセテ
    ート保護基である特許請求の範囲第２８項記載の方法。
  30. 【請求項３０】該酵素特異的糖部分が、β−Ｄ−ガラク
    トースである特許請求の範囲第２９項記載の方法。
  31. 【請求項３１】該酵素特異的糖部分が、β−Ｄ−グルコ
    ースである特許請求の範囲第２９項記載の方法。
  32. 【請求項３２】液体試験試料中の特定の酵素を測定する
    方法であって、 （ａ）試験試料を式： ［式中、Ｒ及びＲ′は、同一であっても異なっていても
    よく、アルキル又はアリールであるか、あるいは一緒に
    なってシクロヘキサジエノン又はヒドロキシシクロヘキ
    シル残基を形成し；Ｙは（ｉ）該酵素によってアクリジ
    ノン指示薬基から開裂させることができる、あるいは
    （ii）測定される該酵素によって変性されて２次基質化
    合物を生成することができ、この２次基質化合物におい
    て、酵素的に開裂しうる基が第２の酵素によってアクリ
    ジノン指示薬基から開裂可能である（この場合、２次基
    質化合物は該第２の酵素と接触せしめられる）、酵素的
    に開裂しうる基である］ の色原体アクリジノン酵素基質化合物と接触させ； （ｂ）開裂したアクリジノン指示薬基によって生じた、
    得られた色を測定する工程からなることを特徴とする方
    法。
  33. 【請求項３３】該酵素的に開裂しうる基が、糖類及びそ
    の誘導体、脂肪族及び芳香族カルボン酸、リン酸並びに
    硫酸からなる群より選択される酵素特異的部分を含む化
    合物Ｙ−ＯＨの残基である特許請求の範囲第３２項記載
    の方法。
  34. 【請求項３４】Ｒ及びＲ′が、同一であっても異なって
    いてもよく、アルキル又はフェニルであるか、あるいは
    一緒になってシクロヘキサ−２，５−ジエン−４−オン
    残基又は４−ヒドロキシシクロヘキシル残基を形成する
    特許請求の範囲第３３項記載の方法。
  35. 【請求項３５】Ｒ及びＲ′が、同一であっても異なって
    いてもよく、アルキル又はフェニルである特許請求の範
    囲第３３項記載の方法。
  36. 【請求項３６】Ｒ及びＲ′が、同一であっても異なって
    いてもよく、低級アルキル又はフェニルである特許請求
    の範囲第３５項記載の方法。
  37. 【請求項３７】Ｒ及びＲ′が、共にメチルである特許請
    求の範囲第３３項記載の方法。
  38. 【請求項３８】該酵素がグリコシダーゼであり、Ｙがα
    −Ｄ−ガラクトース、β−Ｄ−ガラクトース、α−Ｄ−
    グルコース、β−Ｄ−グルコース、α−Ｄ−マンノー
    ス、Ｎ−アセチルグルコサミン及びＮ−アセチルノイラ
    ミン酸からなる群より選択される糖類又はその誘導体の
    残基である特許請求の範囲第３７項記載の方法。
  39. 【請求項３９】該酵素がα−アミラーゼであり、Ｙが２
    〜２０の単糖単位からのオリゴ糖鎖の残基であり、α−
    アミラーゼによって変性されて２次グリコシド基質化合
    物を生成することができ、得られたグリコシド基が第２
    のグリコシダーゼによってアクリジノン指示薬基から開
    裂可能である（ここでは、２次グリコシド化合物は該第
    ２のグリコシダーゼと接触せしめられる）特許請求の範
    囲第３７項記載の方法。
  40. 【請求項４０】該オリゴ糖鎖が、マルトヘプトースであ
    る特許請求の範囲第３９項記載の方法。
  41. 【請求項４１】該得られるグリコシド基がグルコシドで
    あり、該第２のグリコシダーゼがグルコシダーゼである
    特許請求の範囲第３９項記載の方法。
  42. 【請求項４２】該酵素がβ−Ｄ−ガラクトシダーゼであ
    り、Ｙがβ−Ｄ−ガラクトース残基である特許請求の範
    囲第３７項記載の方法。
  43. 【請求項４３】該酵素がβ−Ｄ−グルコシダーゼであ
    り、Ｙがβ−Ｄ−グルコース残基である特許請求の範囲
    第３７項記載の方法。
  44. 【請求項４４】該酵素が非特異的エラステーゼであり、
    Ｙが脂肪族又は芳香族カルボン酸の残基である特許請求
    の範囲第３７項記載の方法。
  45. 【請求項４５】該酵素が白血球中に存在する蛋白分解酵
    素であり、Ｙが、Ｎが保護されたアミノ酸又は２〜５の
    アミノ酸単位からなるペプチド残基である特許請求の範
    囲第３７項記載の方法。
  46. 【請求項４６】Ｙが、Ｎ−トシル−Ｌ−アラニン残基で
    ある特許請求の範囲第４４項記載の方法。
  47. 【請求項４７】該酵素がアルカリホスファターゼであ
    り、Ｙがリン酸残基である特許請求の範囲第３７項記載
    の方法。
  48. 【請求項４８】該酵素がスルファターゼであり、Ｙが硫
    酸残基である特許請求の範囲第３７項記載の方法。
  49. 【請求項４９】液体試験試料中の特定の酵素を測定する
    ための試験具であって、式： ［式中、Ｒ及びＲ′は、同一であっても異なっていても
    よく、アルキル又はアリールであるか、あるいは一緒に
    なってシクロヘキサジエノン又はヒドロキシシクロヘキ
    シル残基を形成し；Ｙは、（ｉ）該酵素によってアクリ
    ジノン指示薬基から開裂させることができるか、あるい
    は（ii）測定される該酵素によって変性されて２次基質
    化合物を生成することができ、この２次基質化合物にお
    いて、酵素的に開裂しうる基が第２の酵素によってアク
    リジノン指示薬基から開裂可能である（この場合、担体
    マトリクスには、該２次基質化合物もまた組みこまれて
    いる）、酵素的に開裂しうる基である］ の色原体アクリジノン酵素基質化合物を組みこんだ担体
    マトリクスからなる試験具。
  50. 【請求項５０】該酵素的に開裂しうる基が、糖類及びそ
    の誘導体、脂肪族及び芳香族カルボン酸、リン酸並びに
    硫酸からなる群より選択される酵素特異的部分を含む化
    合物Ｙ−ＯＨの残基である特許請求の範囲第４９項記載
    の試験具。
  51. 【請求項５１】Ｒ及びＲ′が、同一であっても異なって
    いてもよく、アルキル又はフェニルであるか、あるいは
    一緒になってシクロヘキサ−２，５−ジエン−４−オン
    残基又は４−ヒドロキシシクロヘキシル残基を形成する
    特許請求の範囲第５０項記載の試験具。
  52. 【請求項５２】Ｒ及びＲ′が、同一であっても異なって
    いてもよく、アルキル又はフェニルである特許請求の範
    囲第５０項記載の試験具。
  53. 【請求項５３】Ｒ及びＲ′が、同一であっても異なって
    いてもよく、低級アルキル又はフェニルである特許請求
    の範囲第５０項記載の試験具。
  54. 【請求項５４】Ｒ及びＲ′が、共にメチルである特許請
    求の範囲第５０項記載の試験具。
  55. 【請求項５５】該酵素がグリコシダーゼであり、Ｙがα
    −Ｄ−ガラクトース、β−Ｄ−ガラクトース、α−Ｄ−
    グルコース、β−Ｄ−グルコース、α−Ｄ−マンノー
    ス、Ｎ−アセチルグルコサミン及びＮ−アセチルノイラ
    ミン酸からなる群より選択される糖類又はその誘導体の
    残基である特許請求の範囲第５４項記載の試験具。
  56. 【請求項５６】該酵素がα−アミラーゼであり、Ｙが２
    〜２０の単糖単位からのオリゴ糖鎖の残基であり、α−
    アミラーゼによって変性されて２次グリコシド基質化合
    物を生成することができ、得られたグリコシド基が第２
    のグリコシダーゼによってアクリジノン指示薬基から開
    裂可能であり、該担体マトリクスにもまた該第２のグリ
    コシダーゼが組みこまれている特許請求の範囲第５４項
    記載の試験具。
  57. 【請求項５７】該オリゴ糖鎖が、マルトヘプトースであ
    る特許請求の範囲第５６項記載の試験具。
  58. 【請求項５８】該得られるグリコシド基がグルコシドで
    あり、該第２のグリコシダーゼがグルコシダーゼである
    特許請求の範囲第５６項記載の試験具。
  59. 【請求項５９】該酵素がβ−Ｄ−ガラクトシダーゼであ
    り、Ｙがβ−Ｄ−ガラクトース残基である特許請求の範
    囲第５４項記載の試験具。
  60. 【請求項６０】該酵素がβ−Ｄ−グルコシダーゼであ
    り、Ｙがβ−Ｄ−グルコース残基である特許請求の範囲
    第５４項記載の試験具。
  61. 【請求項６１】該酵素が非特異的エステラーゼであり、
    Ｙが脂肪族又は芳香族カルボン酸の残基である特許請求
    の範囲第５４項記載の試験具。
  62. 【請求項６２】該酵素が白血球中に存在する蛋白分解酵
    素であり、Ｙが、Ｎが保護されたアミノ酸又は２〜５の
    アミノ酸単位からなるペプチドの残基である特許請求の
    範囲第５４項記載の試験具。
  63. 【請求項６３】Ｙが、Ｎ−トシル−Ｌ−アラニン残基で
    ある特許請求の範囲第６２項記載の試験具。
  64. 【請求項６４】該酵素がアルカリホスファターゼであ
    り、Ｙがリン酸残基である特許請求の範囲第５４項記載
    の試験具。
  65. 【請求項６５】該酵素がスルファターゼであり、Ｙが硫
    酸残基である特許請求の範囲第５４項記載の試験具。
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