JPH06256207A - 抗変異原物質，抗ウイルス物質及び細胞増殖促進物質 - Google Patents
抗変異原物質，抗ウイルス物質及び細胞増殖促進物質Info
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- JPH06256207A JPH06256207A JP3254340A JP25434091A JPH06256207A JP H06256207 A JPH06256207 A JP H06256207A JP 3254340 A JP3254340 A JP 3254340A JP 25434091 A JP25434091 A JP 25434091A JP H06256207 A JPH06256207 A JP H06256207A
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- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
- Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
Abstract
(57)【要約】
【目的】 キウイフルーツ植物体由来の抗変異原物質，
抗ウイルス物質及び細胞増殖促進物質を提供する。 【構成】 変異原物質と一緒に用いて突然変異の頻度を
著しく減少する抗変異原物質及びウイルス感染を抑制す
る抗ウイルス物質は、キウイフルーツの植物体のエタノ
ール抽出物又は水・エタノール混合溶媒抽出物を有効成
分とするものであり、また、細胞培養系の培養細胞の増
殖を著しく増加することができる細胞増殖促進物質は、
キウイフルーツの植物体の水抽出物又は希塩酸抽出物を
有効成分とするものである。
抗ウイルス物質及び細胞増殖促進物質を提供する。 【構成】 変異原物質と一緒に用いて突然変異の頻度を
著しく減少する抗変異原物質及びウイルス感染を抑制す
る抗ウイルス物質は、キウイフルーツの植物体のエタノ
ール抽出物又は水・エタノール混合溶媒抽出物を有効成
分とするものであり、また、細胞培養系の培養細胞の増
殖を著しく増加することができる細胞増殖促進物質は、
キウイフルーツの植物体の水抽出物又は希塩酸抽出物を
有効成分とするものである。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は植物由来の抗変異原物
質，抗ウイルス物質及び細胞増殖促進物質に関し、詳し
くは、キウイフルーツの茎等の植物体由来の抗変異原物
質，抗ウイルス物質及び細胞増殖促進物質に関するもの
である。
質，抗ウイルス物質及び細胞増殖促進物質に関し、詳し
くは、キウイフルーツの茎等の植物体由来の抗変異原物
質，抗ウイルス物質及び細胞増殖促進物質に関するもの
である。
【０００２】
【従来の技術】自然に起こるよりも高い割合で突然変異
を誘発する所謂、変異原物質と共に与えると、その突然
変異の誘発を抑制する所謂、抗変異原物質として、種々
のものが確認されている。食品中に種々の変異原物質及
び発癌物質の確認がなされている昨今、この抗変異原物
質は、同時に共することにより、これら変異原物質及び
発癌物質を失活させる上で有益な物質である。
を誘発する所謂、変異原物質と共に与えると、その突然
変異の誘発を抑制する所謂、抗変異原物質として、種々
のものが確認されている。食品中に種々の変異原物質及
び発癌物質の確認がなされている昨今、この抗変異原物
質は、同時に共することにより、これら変異原物質及び
発癌物質を失活させる上で有益な物質である。
【０００３】また、従来より、特定遺伝子由来のタンパ
ク質の生産を、前記特定遺伝子を導入した大腸菌等の微
生物を培養して、産生させることは種々行なわれてい
る。しかしながら、大腸菌等の原核微生物では、糖タン
パク質の合成は不可能であることが判明し、ここで動物
細胞を培養する培養細胞系が生れてきた。
ク質の生産を、前記特定遺伝子を導入した大腸菌等の微
生物を培養して、産生させることは種々行なわれてい
る。しかしながら、大腸菌等の原核微生物では、糖タン
パク質の合成は不可能であることが判明し、ここで動物
細胞を培養する培養細胞系が生れてきた。
【０００４】ところで、特定のタンパク質及び糖タンパ
ク質を細胞培養で産生させるのであるが、通常培養細胞
が産生した産生物は培養細胞外の培養液中に分泌され
る。そこで、産生物をこの培養液から分離する必要があ
る。このため、煩雑な分離操作を極力少なくするため、
培養液中に血清を添加しない所謂、無血清培地を用いた
動物培養細胞による特定のタンパク質及び糖タンパク質
の産生が行われている。これは内部成分が不明な血清の
代わりに、成分の判明した種々のホルモン類等の細胞成
長因子を培養液中に添加して細胞に供給し、培養液から
成分の判明している種々の物質を分離して、分泌された
生成物を得る方法である。
ク質を細胞培養で産生させるのであるが、通常培養細胞
が産生した産生物は培養細胞外の培養液中に分泌され
る。そこで、産生物をこの培養液から分離する必要があ
る。このため、煩雑な分離操作を極力少なくするため、
培養液中に血清を添加しない所謂、無血清培地を用いた
動物培養細胞による特定のタンパク質及び糖タンパク質
の産生が行われている。これは内部成分が不明な血清の
代わりに、成分の判明した種々のホルモン類等の細胞成
長因子を培養液中に添加して細胞に供給し、培養液から
成分の判明している種々の物質を分離して、分泌された
生成物を得る方法である。
【０００５】このような無血清培地に添加する細胞成長
因子は、対象細胞に応じて、種々の細胞成長因子が発見
されている。例えば、生体成分から見つけられたもの
や、食品中の細胞成長因子（上野川修一，東徳洋，山内
邦男：化学と生物，25 , 3 (1987) ）などが、種々見つ
かっている。それらは動物性由来のものが多く、植物性
の物質からの報告は藍藻の抽出液からの成長因子の検索
が試みられているに過ぎない（篠原和毅：発酵と工業，
vol43,(No.11),p.1076-1077,(1989)）。
因子は、対象細胞に応じて、種々の細胞成長因子が発見
されている。例えば、生体成分から見つけられたもの
や、食品中の細胞成長因子（上野川修一，東徳洋，山内
邦男：化学と生物，25 , 3 (1987) ）などが、種々見つ
かっている。それらは動物性由来のものが多く、植物性
の物質からの報告は藍藻の抽出液からの成長因子の検索
が試みられているに過ぎない（篠原和毅：発酵と工業，
vol43,(No.11),p.1076-1077,(1989)）。
【０００６】一方、キウイフルーツ(Actinidia chinens
is Planch)は、ニュージーランド特産の果実であった
が、最近では国内でも広く栽培されるようになってきて
いる植物である。
is Planch)は、ニュージーランド特産の果実であった
が、最近では国内でも広く栽培されるようになってきて
いる植物である。
【０００７】
【発明が解決しようとする課題】本発明者らは、この食
用果実として広く知られるキウイフルーツの植物体に強
い抗変異原活性，抗ウイルス活性及び細胞増殖促進活性
を見出し、本発明を完成したものであり、詳しくはキウ
イフルーツ植物体由来の抗変異原物質，抗ウイルス物質
及び細胞増殖促進物質を提供することを目的とする。
用果実として広く知られるキウイフルーツの植物体に強
い抗変異原活性，抗ウイルス活性及び細胞増殖促進活性
を見出し、本発明を完成したものであり、詳しくはキウ
イフルーツ植物体由来の抗変異原物質，抗ウイルス物質
及び細胞増殖促進物質を提供することを目的とする。
【０００８】
【課題を解決するための手段】本発明に係る抗変異原物
質では、キウイフルーツの植物体のエタノール抽出物又
は水・エタノール混合溶媒抽出物を有効成分とするもの
である。
質では、キウイフルーツの植物体のエタノール抽出物又
は水・エタノール混合溶媒抽出物を有効成分とするもの
である。
【０００９】また、本発明に係る抗ウイルス物質では、
キウイフルーツの植物体のエタノール抽出物又は水・エ
タノール混合溶媒抽出物を有効成分とするものである。
キウイフルーツの植物体のエタノール抽出物又は水・エ
タノール混合溶媒抽出物を有効成分とするものである。
【００１０】更に、本発明に係る細胞増殖促進物質で
は、キウイフルーツの植物体の水抽出物又は希塩酸抽出
物を有効成分とするものである。
は、キウイフルーツの植物体の水抽出物又は希塩酸抽出
物を有効成分とするものである。
【００１１】
【作用】本発明では、キウイフルーツの植物体のエタノ
ール抽出物又は水・エタノール混合溶媒抽出物を有効成
分とするものは、変異原物質と一緒に用いることによ
り、突然変異の頻度を著しく減少することができる。詳
しくは、キウイフルーツの植物体を原料とし、アルコー
ル又はアルコール・水の混合溶媒（混合率は１００：１
〜１：５）で低温下又は室温乃至加温下に、数時間乃至
数日抽出操作を行なった抽出物を有効成分とする抗変異
原物質又は抗ウイルス物質である。尚、この抽出操作は
雑菌の繁殖等を考慮して低温下で行う方がよい。ところ
で、後述する一実施例では、原料であるキウイフルーツ
の茎（もしくはその乾燥物）を細かく破砕した後、１０
０％エタノール又は５０％水・エタノールで室温２４時
間抽出を行なった後、濃縮したものを開示した。
ール抽出物又は水・エタノール混合溶媒抽出物を有効成
分とするものは、変異原物質と一緒に用いることによ
り、突然変異の頻度を著しく減少することができる。詳
しくは、キウイフルーツの植物体を原料とし、アルコー
ル又はアルコール・水の混合溶媒（混合率は１００：１
〜１：５）で低温下又は室温乃至加温下に、数時間乃至
数日抽出操作を行なった抽出物を有効成分とする抗変異
原物質又は抗ウイルス物質である。尚、この抽出操作は
雑菌の繁殖等を考慮して低温下で行う方がよい。ところ
で、後述する一実施例では、原料であるキウイフルーツ
の茎（もしくはその乾燥物）を細かく破砕した後、１０
０％エタノール又は５０％水・エタノールで室温２４時
間抽出を行なった後、濃縮したものを開示した。
【００１２】一方、キウイフルーツの植物体の水抽出物
又は希塩酸抽出物を有効成分とするものは、細胞培養系
の培養細胞の増殖を著しく増加することができる。詳し
くは、キウイフルーツの植物体を原料とし、水又は希塩
酸で低温下又は室温乃至加温下に、数時間乃至数日抽出
操作を行なった抽出物である。尚、この抽出操作も雑菌
の繁殖等を考慮して低温下で行う方がよい。ところで、
後述する一実施例では、原料となるキウイフルーツの茎
（もしくはその乾燥物）を細かく破砕した後、水又は希
塩酸に浸潤し、低温下で２４時間抽出を行なった。
又は希塩酸抽出物を有効成分とするものは、細胞培養系
の培養細胞の増殖を著しく増加することができる。詳し
くは、キウイフルーツの植物体を原料とし、水又は希塩
酸で低温下又は室温乃至加温下に、数時間乃至数日抽出
操作を行なった抽出物である。尚、この抽出操作も雑菌
の繁殖等を考慮して低温下で行う方がよい。ところで、
後述する一実施例では、原料となるキウイフルーツの茎
（もしくはその乾燥物）を細かく破砕した後、水又は希
塩酸に浸潤し、低温下で２４時間抽出を行なった。
【００１３】本発明に係る抗変異原物質，抗ウイルス物
質及び細胞増殖促進物質の原料となるキウイフルーツの
植物体は、通常市販されているキウイフルーツの栽培用
の植物で構わなく、特に品種に限定されない。また、樹
齢や採取の季節等には限定されない。更に、採取したそ
のものでも構わないし、一旦乾燥処理を行なったもので
も構わない。
質及び細胞増殖促進物質の原料となるキウイフルーツの
植物体は、通常市販されているキウイフルーツの栽培用
の植物で構わなく、特に品種に限定されない。また、樹
齢や採取の季節等には限定されない。更に、採取したそ
のものでも構わないし、一旦乾燥処理を行なったもので
も構わない。
【００１４】また、植物体の器官は、茎や果実等如何な
る器官でも構わないが、剪定された茎の有効利用の点か
ら、好ましくは茎部分を用いる。更に、抽出操作前に破
砕処理を行なうと抽出効果が高まる。また、他の不要成
分を予め除くための操作、例えば、有機溶媒抽出操作等
を行なってもよい。
る器官でも構わないが、剪定された茎の有効利用の点か
ら、好ましくは茎部分を用いる。更に、抽出操作前に破
砕処理を行なうと抽出効果が高まる。また、他の不要成
分を予め除くための操作、例えば、有機溶媒抽出操作等
を行なってもよい。
【００１５】
【実施例】１．試料調整 図１はキウイフルーツから各抽出試料を調整する工程を
示す工程図である。図に示すように、キウイフルーツ茎
の先端部から約５０cm位を採取し、洗浄、細切後、乾
燥、破砕して乾物試料とした。得られた乾物試料を図に
示したように各工程の抽出液で順に２４時間抽出した後
当量の抽出液で洗浄し、その液を合せて抽出試料とし
た。
示す工程図である。図に示すように、キウイフルーツ茎
の先端部から約５０cm位を採取し、洗浄、細切後、乾
燥、破砕して乾物試料とした。得られた乾物試料を図に
示したように各工程の抽出液で順に２４時間抽出した後
当量の抽出液で洗浄し、その液を合せて抽出試料とし
た。
【００１６】１００％エタノール、８０％エタノール、
５０％エタノールは減圧濃縮し、細胞増殖活性測定に
は、各試料を５０mg／mlの割合でＰＢＳに溶解し、フィ
ルター滅菌して用いた。また、抗変異原活性測定には、
サルモネラＴＡ９８，ＴＡ１００を用いた。一方、細胞
増殖促進活性測定用の培養細胞は、ＨＢ４Ｃ５（humanh
ybridoma,IgM 生産）と、ＨＬ６０（human promyelocyt
ic leukemia）とを用いた。また、培地は市販合成培地
ＥＲＤＦ，ＥＲＤＦ培地＋ＩＴＥＳ(Insulin,Transferr
in,Ethanolamine,Selenite) ，及びＥＲＤＦ培地＋ＩＴ
ＥＳ＋ＹＬＰ(Yolk lipoprotein)を用いた。
５０％エタノールは減圧濃縮し、細胞増殖活性測定に
は、各試料を５０mg／mlの割合でＰＢＳに溶解し、フィ
ルター滅菌して用いた。また、抗変異原活性測定には、
サルモネラＴＡ９８，ＴＡ１００を用いた。一方、細胞
増殖促進活性測定用の培養細胞は、ＨＢ４Ｃ５（humanh
ybridoma,IgM 生産）と、ＨＬ６０（human promyelocyt
ic leukemia）とを用いた。また、培地は市販合成培地
ＥＲＤＦ，ＥＲＤＦ培地＋ＩＴＥＳ(Insulin,Transferr
in,Ethanolamine,Selenite) ，及びＥＲＤＦ培地＋ＩＴ
ＥＳ＋ＹＬＰ(Yolk lipoprotein)を用いた。
【００１７】２．抗変異原活性 抗変異原活性の測定はエイムズ（Ames）法によって測定
した。菌株はサルモネラＴＡ９８，ＴＡ１００を使用
し、変異原としてはトリプトファン燃焼変異原であるＴ
ｒｐ−ｐ−２を用いて実験した。
した。菌株はサルモネラＴＡ９８，ＴＡ１００を使用
し、変異原としてはトリプトファン燃焼変異原であるＴ
ｒｐ−ｐ−２を用いて実験した。
【００１８】図２は抗変異原活性の測定の工程を示す工
程図である。図に示す通り、菌株，変異原，Ｓ−９ｍｉ
ｘ及び菌液を混ぜた種々の濃度の各抽出試料と、抽出試
料を添加していないコントロールと、抽出試料，変異
原，Ｓ−９ｍｉｘを添加していない自然突然変異との試
料液１mlを２０分間前培養を行ない、トップ・アガーと
共に最小グルコース培地中に播種して抗変異原活性を測
定した。尚、１００％エタノール抽出試料は、ＤＭＳＯ
に溶解して用いた。
程図である。図に示す通り、菌株，変異原，Ｓ−９ｍｉ
ｘ及び菌液を混ぜた種々の濃度の各抽出試料と、抽出試
料を添加していないコントロールと、抽出試料，変異
原，Ｓ−９ｍｉｘを添加していない自然突然変異との試
料液１mlを２０分間前培養を行ない、トップ・アガーと
共に最小グルコース培地中に播種して抗変異原活性を測
定した。尚、１００％エタノール抽出試料は、ＤＭＳＯ
に溶解して用いた。
【００１９】図３は各抽出試料の抗変異原活性の結果を
示す線図であり、ａ図は菌株ＴＡ９８について、ｂ図は
菌株ＴＡ１００についての結果である。図中、破線がコ
ントロールであり、横軸の各抽出試料の添加量に対する
縦軸のＴＲＰ−ｐ−２によって起こる復帰突然変異のコ
ロニー数（Number of revertants）を示している。図に
示す通り、各アルコール抽出試料は、添加量の増加に伴
い明らかにコロニー数は減少し、ＴＡ９８，ＴＡ１００
両者の菌株で活性が確認された。また、抽出試料が用い
た菌株を死滅させる場合もあるが、確認したところ、復
帰突然変異のコロニー数の減少は菌数の減少ではなく、
試料によってＴｒｐ−ｐ−２の発現を減少させたもので
あることが確認された。
示す線図であり、ａ図は菌株ＴＡ９８について、ｂ図は
菌株ＴＡ１００についての結果である。図中、破線がコ
ントロールであり、横軸の各抽出試料の添加量に対する
縦軸のＴＲＰ−ｐ−２によって起こる復帰突然変異のコ
ロニー数（Number of revertants）を示している。図に
示す通り、各アルコール抽出試料は、添加量の増加に伴
い明らかにコロニー数は減少し、ＴＡ９８，ＴＡ１００
両者の菌株で活性が確認された。また、抽出試料が用い
た菌株を死滅させる場合もあるが、確認したところ、復
帰突然変異のコロニー数の減少は菌数の減少ではなく、
試料によってＴｒｐ−ｐ−２の発現を減少させたもので
あることが確認された。
【００２０】更に、前述の復帰突然変異のコロニー数の
減少が、変異原物質であるＴｒｐ−ｐ−２に直接作用す
るもの（脱変異原物質(desmutagen)）か、又はＴｒｐ−
ｐ−２によって生じた変異原活性を抑えるもの（抗変異
原物質(antimutagen) ）であるのかを確認した。
減少が、変異原物質であるＴｒｐ−ｐ−２に直接作用す
るもの（脱変異原物質(desmutagen)）か、又はＴｒｐ−
ｐ−２によって生じた変異原活性を抑えるもの（抗変異
原物質(antimutagen) ）であるのかを確認した。
【００２１】次の表１はコントロールとして菌液とＴ
ｒｐ−ｐ−２とを混合した際の復帰突然変異数を、菌
液と８０％エタノール抽出試料とＴｒｐ−ｐ−２とを混
合して３０分間保持し更にＳ−９ｍｉｘを混合した際の
復帰突然変異数を、菌液と８０％エタノール抽出試料
とＳ−９ｍｉｘとを混合して３０分間保持し更にＴｒｐ
−ｐ−２を混合した際の復帰突然変異数を、菌液と水
とＳ−９ｍｉｘとを混合して３０分間保持し更にＴｒｐ
−ｐ−２を混合した際の復帰突然変異数を示している。
ｒｐ−ｐ−２とを混合した際の復帰突然変異数を、菌
液と８０％エタノール抽出試料とＴｒｐ−ｐ−２とを混
合して３０分間保持し更にＳ−９ｍｉｘを混合した際の
復帰突然変異数を、菌液と８０％エタノール抽出試料
とＳ−９ｍｉｘとを混合して３０分間保持し更にＴｒｐ
−ｐ−２を混合した際の復帰突然変異数を、菌液と水
とＳ−９ｍｉｘとを混合して３０分間保持し更にＴｒｐ
−ｐ−２を混合した際の復帰突然変異数を示している。
【００２２】
【表１】
【００２３】表１に示すように、Ｔｒｐ−ｐ−２と混合
して３０分間保持した後にＳ−９ｍｉｘを混合した場合
と、Ｓ−９ｍｉｘと混合して３０分間保持した後にＴｒ
ｐ−ｐ−２を混合した場合との復帰突然変異コロニー数
に顕著な差はなかった。この結果から、この試料は変異
原（Ｔｒｐ−ｐ−２）と直接反応して不活性化し、誘発
突然変異を下げる抗突然変異物質（脱変異原物質）とし
ての活性を有すると考えられた（Ｔｒｐ−ｐ−２の不活
性物質の一種）。
して３０分間保持した後にＳ−９ｍｉｘを混合した場合
と、Ｓ−９ｍｉｘと混合して３０分間保持した後にＴｒ
ｐ−ｐ−２を混合した場合との復帰突然変異コロニー数
に顕著な差はなかった。この結果から、この試料は変異
原（Ｔｒｐ−ｐ−２）と直接反応して不活性化し、誘発
突然変異を下げる抗突然変異物質（脱変異原物質）とし
ての活性を有すると考えられた（Ｔｒｐ−ｐ−２の不活
性物質の一種）。
【００２４】３．アデノウイルス感染に対するアルコー
ル抽出試料の影響 ４８ウエルプレートにＨｅｌａ細胞を撒き、３日後に培
地を除き、ガンウイルスであるアデノウイルスを１０-1
〜１０-9の各段階にＭＥＭ培地で希釈し、各ウエルに分
注し、３７℃，約３時間培養器に入れ、感染させた。そ
の後、培地を除き、ＭＥＭ培地（含ＦＣＳ 0.5％，Ｎａ
ＨＣＯ3 ２ml／１００ml）にアルコール抽出試料を加え
たものを各ウエルに分注した。試料を加えた培地は、３
日おきに取り替え、細胞のウイルスによｒｕ染を観察し
た。培養は３７℃，５％ＣＯ2 レベルの培養器内で行な
った。
ル抽出試料の影響 ４８ウエルプレートにＨｅｌａ細胞を撒き、３日後に培
地を除き、ガンウイルスであるアデノウイルスを１０-1
〜１０-9の各段階にＭＥＭ培地で希釈し、各ウエルに分
注し、３７℃，約３時間培養器に入れ、感染させた。そ
の後、培地を除き、ＭＥＭ培地（含ＦＣＳ 0.5％，Ｎａ
ＨＣＯ3 ２ml／１００ml）にアルコール抽出試料を加え
たものを各ウエルに分注した。試料を加えた培地は、３
日おきに取り替え、細胞のウイルスによｒｕ染を観察し
た。培養は３７℃，５％ＣＯ2 レベルの培養器内で行な
った。
【００２５】Ｈｅｌａ細胞のウイルス感染による変化
（Cytopathic effect,CPE)を観察し、ＴＣＩＤ50（50%
tissue culture inefective dose）を求めた。コントロ
ールでは、ＣＰＥはウィルスの希釈率が１０7 ，１０8
で出現しているが、エタノール抽出試料では、１０6 の
みであった。この結果からＴＣＩＤ50を求めると、エタ
ノール抽出試料は１０6.5 となり、コントロール１０8
に対してウイルスの感染を抑える作用が確認された。
（Cytopathic effect,CPE)を観察し、ＴＣＩＤ50（50%
tissue culture inefective dose）を求めた。コントロ
ールでは、ＣＰＥはウィルスの希釈率が１０7 ，１０8
で出現しているが、エタノール抽出試料では、１０6 の
みであった。この結果からＴＣＩＤ50を求めると、エタ
ノール抽出試料は１０6.5 となり、コントロール１０8
に対してウイルスの感染を抑える作用が確認された。
【００２６】
【表２】
【００２７】４．細胞増殖促進活性 細胞増殖促進活性は、上記の細胞を２×１０4 ／mlの濃
度で２４ウエル・プレートに分注し、各試料量を０，２
０，４０，８０μｌ／mlの容量として実験を行ない。Ｈ
Ｌ６０は３日、ＨＢ４Ｃ５は４日間ＣＯ2 ５％インキュ
ベータ内で培養した。細胞数はSysmex F-500（自動血球
計数装置，東亜医用電子ＫＫ社製）を使用し、抗体量は
ＥＬＩＳＡ法により分析した。各活性は、コントロール
（試料無添加）と比較し、増加率を算出した。
度で２４ウエル・プレートに分注し、各試料量を０，２
０，４０，８０μｌ／mlの容量として実験を行ない。Ｈ
Ｌ６０は３日、ＨＢ４Ｃ５は４日間ＣＯ2 ５％インキュ
ベータ内で培養した。細胞数はSysmex F-500（自動血球
計数装置，東亜医用電子ＫＫ社製）を使用し、抗体量は
ＥＬＩＳＡ法により分析した。各活性は、コントロール
（試料無添加）と比較し、増加率を算出した。
【００２８】図４は各種培地でのＨＬ６０に対する増殖
促進活性を示す線図である。ＥＲＤＦ培地で１％ＨＣｌ
抽出試料で約４９０％、Ｈ2 Ｏ抽出試料で約２８０％の
増殖促進が見られた。３種の培地において１％ＨＣｌ，
Ｈ2 Ｏ抽出試料は、添加サンプル量に比例して、活性が
上昇し、ＥＲＤＦ＋ＩＴＥＳ培地で、１３０〜１４０
％，ＥＲＤＦ＋ＩＴＥＳ＋ＹＬＰ培地でも約１００％の
増加が見られた。
促進活性を示す線図である。ＥＲＤＦ培地で１％ＨＣｌ
抽出試料で約４９０％、Ｈ2 Ｏ抽出試料で約２８０％の
増殖促進が見られた。３種の培地において１％ＨＣｌ，
Ｈ2 Ｏ抽出試料は、添加サンプル量に比例して、活性が
上昇し、ＥＲＤＦ＋ＩＴＥＳ培地で、１３０〜１４０
％，ＥＲＤＦ＋ＩＴＥＳ＋ＹＬＰ培地でも約１００％の
増加が見られた。
【００２９】図５は各種培地でのＨＢ４Ｃ５に対する増
殖促進活性を示す線図である。ハイブリドーマーである
ＨＢ４Ｃ５に対しても、Ｈ2 Ｏ抽出試料，１％ＨＣｌ抽
出試料に高い活性と容量に応じた反応が確認された。ま
た、図６は各種培地でのＨＢ４Ｃ５に対するＩｇＭ抗体
量を示す線図であり、図５のように試料添加に伴う抗体
産生量の増加が見られた。
殖促進活性を示す線図である。ハイブリドーマーである
ＨＢ４Ｃ５に対しても、Ｈ2 Ｏ抽出試料，１％ＨＣｌ抽
出試料に高い活性と容量に応じた反応が確認された。ま
た、図６は各種培地でのＨＢ４Ｃ５に対するＩｇＭ抗体
量を示す線図であり、図５のように試料添加に伴う抗体
産生量の増加が見られた。
【００３０】
【発明の効果】本発明は以上説明したとおり、キウイフ
ルーツの植物体のエタノール抽出物又は水・エタノール
混合溶媒抽出物を有効成分とするものは、変異原物質と
一緒に用いることにより、突然変異の頻度を著しく減少
することができ、ウイルスの感染を抑えることがでる。
また、キウイフルーツの植物体の水抽出物又は希塩酸抽
出物を有効成分とするものは、細胞培養系の培養細胞の
増殖を著しく増加することができるという効果がある。
ルーツの植物体のエタノール抽出物又は水・エタノール
混合溶媒抽出物を有効成分とするものは、変異原物質と
一緒に用いることにより、突然変異の頻度を著しく減少
することができ、ウイルスの感染を抑えることがでる。
また、キウイフルーツの植物体の水抽出物又は希塩酸抽
出物を有効成分とするものは、細胞培養系の培養細胞の
増殖を著しく増加することができるという効果がある。
【図１】キウイフルーツから各抽出試料を調整する工程
を示す工程図である。
を示す工程図である。
【図２】抗変異原活性の測定の工程を示す工程図であ
る。
る。
【図３】各抽出試料の抗変異原活性の結果を示す線図で
あり、ａ図は菌株ＴＡ９８について、ｂ図は菌株ＴＡ１
００についての結果である。
あり、ａ図は菌株ＴＡ９８について、ｂ図は菌株ＴＡ１
００についての結果である。
【図４】各種培地でのＨＬ６０に対する増殖促進活性を
示す線図である。
示す線図である。
【図５】各種培地でのＨＢ４Ｃ５に対する増殖促進活性
を示す線図である。
を示す線図である。
【図６】各種培地でのＨＢ４Ｃ５に対するＩｇＭ抗体量
を示す線図である。
を示す線図である。
Claims (3)
- 【請求項１】 キウイフルーツの植物体のエタノール抽
出物又は水・エタノール混合溶媒抽出物を有効成分とす
る抗変異原物質。 - 【請求項２】 キウイフルーツの植物体のエタノール抽
出物又は水・エタノール混合溶媒抽出物を有効成分とす
る抗ウイルス物質。 - 【請求項３】 キウイフルーツの植物体の水抽出物又は
希塩酸抽出物を有効成分とする細胞増殖促進物質。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP3254340A JPH06256207A (ja) | 1991-09-06 | 1991-09-06 | 抗変異原物質，抗ウイルス物質及び細胞増殖促進物質 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP3254340A JPH06256207A (ja) | 1991-09-06 | 1991-09-06 | 抗変異原物質，抗ウイルス物質及び細胞増殖促進物質 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH06256207A true JPH06256207A (ja) | 1994-09-13 |
Family
ID=17263644
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP3254340A Pending JPH06256207A (ja) | 1991-09-06 | 1991-09-06 | 抗変異原物質，抗ウイルス物質及び細胞増殖促進物質 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH06256207A (ja) |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2008023266A3 (en) * | 2006-05-05 | 2009-04-09 | Gmbh Omnica | Kiwi extract |
| CN103705550A (zh) * | 2012-10-08 | 2014-04-09 | 上海医药工业研究院 | 一种猕猴桃素及其制备方法和应用 |
| CN111316915A (zh) * | 2020-04-13 | 2020-06-23 | 通化天妍生物技术有限公司 | 一种ems诱导软枣猕猴桃种胚下胚轴突变的新品种培育方法 |
| CN111466292A (zh) * | 2020-04-13 | 2020-07-31 | 通化天妍生物技术有限公司 | 一种软枣猕猴桃一步成苗及休眠的繁殖方法 |
-
1991
- 1991-09-06 JP JP3254340A patent/JPH06256207A/ja active Pending
Cited By (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2008023266A3 (en) * | 2006-05-05 | 2009-04-09 | Gmbh Omnica | Kiwi extract |
| JP2010503609A (ja) * | 2006-05-05 | 2010-02-04 | オムニカ ゲーエムベーハー | キーウィ抽出物 |
| US7862840B2 (en) | 2006-05-05 | 2011-01-04 | Omnica Gmbh | Kiwi extract |
| CN103705550A (zh) * | 2012-10-08 | 2014-04-09 | 上海医药工业研究院 | 一种猕猴桃素及其制备方法和应用 |
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| CN111466292A (zh) * | 2020-04-13 | 2020-07-31 | 通化天妍生物技术有限公司 | 一种软枣猕猴桃一步成苗及休眠的繁殖方法 |
| CN111316915B (zh) * | 2020-04-13 | 2023-05-26 | 通化天妍生物技术有限公司 | 一种ems诱导软枣猕猴桃种胚下胚轴突变的新品种培育方法 |
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