JPH0614768A - ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質に結合するモノクローナル抗体 - Google Patents

ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質に結合するモノクローナル抗体

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JPH0614768A
JPH0614768A JP3205204A JP20520491A JPH0614768A JP H0614768 A JPH0614768 A JP H0614768A JP 3205204 A JP3205204 A JP 3205204A JP 20520491 A JP20520491 A JP 20520491A JP H0614768 A JPH0614768 A JP H0614768A
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Bristol Myers Squibb Co
ER Squibb and Sons LLC
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Abstract

(57)【要約】 （修正有） 【目的】 ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／または
ｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質の存在および／または量
の決定のためのイムノアッセイ法、該モノクローナル抗
体を含有する癌治療剤、および該モノクローナル抗体を
用いた該ｔｒｋ癌原遺伝子の精製方法。 【構成】 ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／または
ｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質に結合するモノクローナ
ル抗体を産生するハイブリッド細胞株、該細胞株により
分泌されたモノクローナル抗体、該抗体を用いた試料中
のこれらのタンパク質の存在を検出するためのイムノア
ッセイ法、試料中のこれらのタンパク質の量を定量的に
決定するためのイムノアッセイ法、該抗体を含有するこ
とを特徴とする癌治療剤、これらのタンパク質の精製方
法、および造影剤と結合させたものを含有する、癌検出
用剤。

Description

【発明の詳細な説明】
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、ｔｒｋ癌原遺伝子（pr
oto-oncogene）タンパク質および／またはｔｒｋ関連癌
（oncogene）遺伝子タンパク質に結合するモノクローナ
ル抗体、該モノクローナル抗体を産生するハイブリッド
細胞、該モノクローナル抗体を用いた該ｔｒｋ癌原遺伝
子タンパク質および／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タンパ
ク質の存在および／または量の決定のためのイムノアッ
セイ法、該モノクローナル抗体を含有する癌治療剤、お
よび該モノクローナル抗体を用いた該ｔｒｋ癌原遺伝子
タンパク質および／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク
質の精製方法に関する。
【０００２】
【従来の技術および発明が解決しようとする課題】１９
７５年にコーラーとミルシュテインによって免疫マウス
からの脾臓細胞とマウスミエローマ細胞とが融合された
[Nature２５６、４９５〜４９７(１９７５)]ことによ
り、均一な(いわゆる「モノクローナルな」)抗体を産生し
得る連続細胞株を得ることが可能であることが初めて示
された。この画期的な仕事以来、種々のハイブリッド細
胞株(「ハイブリドーマ」とも呼ばれる)を製造すること、
およびこれらハイブリドーマによって産生された抗体を
種々の科学的探求に用いることに多くの努力が払われて
きた。ハイブリドーマおよびモノクローナル抗体の一般
的な調製方法はよく知られているが、各特定の場合に多
くの困難に直面し種々変更が必要とされる。事実、所定
のハイブリドーマの調製を試みる前には、所望のハイブ
リドーマが得られるかどうか、得られたとしても該ハイ
ブリドーマが抗体を産生するかどうか、またかくして産
生された抗体が所望の特異性を有するかどうかについて
は保証はない。
【０００３】ｔｒｋ癌遺伝子(トロポミオシンレセプタ
ーキナーゼ)は、遺伝子導入アッセイによりヒト結腸癌
生検で最初に同定された。ｔｒｋ癌遺伝子は、多数の遺
伝子からなるチロシンキナーゼ遺伝子群の中の一つであ
る。チロシンキナーゼレセプター残基は非筋肉トロポミ
オシンと融合し[マーチン−ザンカ(Martin-Zanca)ら、N
ature３１９、７４３〜７４８(１９８６)；ミトラ(Mitr
a)ら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA８４、６７０７〜６７１
１(１９８７)]、この体細胞転位がｔｒｋ癌原遺伝子を
活性化させることがわかった[クーリエ(Coulier)ら、Mo
lec.Cell.Biol.９、１５〜２３(１９８８)]。他の細胞
性配列がｔｒｋ癌遺伝子の活性化に関与していることが
示されている[コズマ(Kozma)ら、EMBO J.７、１４７〜
１５４(１９８８)；クーリエら、上記文献；ツィーミー
キー(Ziemiecki)ら、EMBO J.４、１９１〜１９６(１９
９０)]。ｔｒｋ癌遺伝子の自然発生は、ＮＩＨ３Ｔ３細
胞がｔｒｋ癌原遺伝子でトランスフェクションする結果
として起こることが示されている[オスカム(Oskam)ら、
Proc.Natl.Acad.Sci.USA８５、２９６４〜２９６８(198
8)]。
【０００４】ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質は７９０個の
アミノ酸からなり、この生成物の細胞外ドメインの多く
は癌遺伝子の活性化の間に非筋肉トロポミオシンによっ
て置換される[マーチン−ザンカら、Molec.Cell.Biol.
９、２４〜３３(１９８９)]。ヒトｔｒｋ癌原遺伝子は
８０,０００ダルトンのポリペプチドをコードしてお
り、多くのＮ−糖付加可能部位を含んでいる。１１０キ
ロダルトンの糖タンパク質のｔｒｋ癌原遺伝子タンパク
質が主要な翻訳生成物であり、さらに糖付加が起こって
１４０キロダルトンの成熟ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質
を生じさせると思われる。ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質
は、最初の３９２個のアミノ酸(Ｎ−結合糖付加のため
の多くの共通配列を含む)を除いて、当初単離されたｔ
ｒｋ癌遺伝子タンパク質と高い相同性を有する。経膜ド
メイン、チロシンキナーゼ触媒ドメインおよび細胞質ド
メインは、ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質とｔｒｋ癌遺伝
子タンパク質とで同一である。ｔｒｋＢと呼ばれるマウ
ス遺伝子が単離されているが、これはヒトｔｒｋ癌原遺
伝子と構造的に類似している。
【０００５】触媒ドメインを認識するがｔｒｋ癌遺伝子
タンパク質とｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質とを識別でき
ないポリクローナルな抗血清が製造されている[マーチ
ン−ザンカら、Mol.Cell.Biol.９、２４〜３３(１９８
９)]。ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質に特異的な一群のモ
ノクローナル抗体は、ヒト組織中での該ｔｒｋ癌原遺伝
子タンパク質の分布を調べるために該抗体を使用するこ
とに加えて、炭水化物に富んだ細胞外ドメインの機能を
理解する上で有用であろう。
【０００６】
【課題を解決するための手段】本発明は、ｔｒｋ癌原遺
伝子タンパク質および／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タン
パク質に結合するモノクローナル抗体を産生するハイブ
リッド細胞株に関する。本発明はさらに、ｔｒｋ癌原遺
伝子タンパク質および／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タン
パク質に結合するモノクローナル抗体に関する。本発明
はさらに、試料中のｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および
／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質の存在を検出す
るためのイムノアッセイ法に関する。本発明はさらに、
試料中のｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／またはｔ
ｒｋ関連癌遺伝子タンパク質の量を定量的に決定するた
めのイムノアッセイ法に関する。本発明はさらに、ｔｒ
ｋ癌原遺伝子タンパク質および／またはｔｒｋ関連癌遺
伝子タンパク質に結合するモノクローナル抗体を用い
た、ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／またはｔｒｋ
関連癌遺伝子タンパク質の精製法に関する。
【０００７】本発明は、ハイブリッド細胞株(ハイブリ
ドーマとも呼ばれる)、該ハイブリドーマ細胞株が産生
するモノクローナル抗体および該モノクローナル抗体を
使用したイムノアッセイ法に関する。特に、本発明は、
ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／またはｔｒｋ関連
癌遺伝子タンパク質に結合するモノクローナル抗体を産
生するハイブリドーマ細胞株に関する。
【０００８】本明細書において「ｔｒｋ癌原遺伝子タン
パク質」とは、ｔｒｋ癌原遺伝子によりコードされるタ
ンパク質を意味する。また「ｔｒｋ関連癌遺伝子タンパ
ク質」とは、細胞を形質転換する能力を有し、ｔｒｋ癌
原遺伝子タンパク質の細胞外ドメインからの１または２
以上のエピトープを有する転位(rearranged)ｔｒｋ癌原
遺伝子タンパク質を意味する。本明細書において「ｔｒ
ｋ癌原遺伝子タンパク質および／またはｔｒｋ関連癌遺
伝子タンパク質」とは、ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質の
みか、またはｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質のみか、ま
たはｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質とｔｒｋ関連癌遺伝子
タンパク質の両方を意味する。
【０００９】特に好ましいのは、ＴＴＭ７−４１.１と
呼ばれるハイブリッド細胞株(ＴＴＭ７−４１のサブク
ローンである)か、またはこのハイブリッド細胞株の同
定特性を有するハイブリッド細胞株である。ハイブリッ
ド細胞株ＴＴＭ７−４１.１は、ブダペスト条約の下、
１９９０年４月１９日にアメリカン・タイプ・カルチャ
ー・コレクション(ロックビル、メリーランド)にＡＴＣ
Ｃ受託番号ＨＢ１０４３２にて寄託してある。
【００１０】同じく好ましいハイブリッド細胞株として
は、ＴＴＭ１−８、ＴＴＭ６−１３、ＴＴＭ６−４６、
ＴＴＭ６−５０、ＴＴＭ７−４、ＴＴＭ７−４１、ＴＴ
Ｍ９−９、ＴＴＭ９−１２、ＴＵＭ５−４７またはＴＵ
Ｍ７−９と呼ばれるハイブリッド細胞株、またはそのサ
ブクローン、またはこれらハイブリッド細胞株の同定特
性を有するハイブリッド細胞株が挙げられる。本発明の
ハイブリッド細胞株は、当業者に一般に知られた種々の
方法により製造することができる。一般に、そのような
方法には、適当な動物(たとえばマウス)を目的抗原(こ
の場合はｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質)で免疫し、該動
物から単離した抗体産生細胞をミエローマ細胞と融合
し、得られたハイブリッド細胞をクローニングし、目的
抗原に結合する所望のモノクローナル抗体を産生する細
胞を選択することが含まれる。
【００１１】免疫に用いる通常の哺乳動物はマウス、と
りわけＢＡＬＢ／ｃマウスであるが、他の哺乳動物やマ
ウス株も用いることができる。免疫は、ｔｒｋ癌原遺伝
子タンパク質を発現する組換え宿主細胞を皮下投与する
か(その際、免疫した哺乳動物は細胞塊が増殖するにつ
れ絶えず刺激される)、または精製ｔｒｋ癌原遺伝子タ
ンパク質を用いて行う。精製ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク
質を用いる場合は、免疫は当該技術分野で知られた方
法、たとえば、通常はアジュバント(たとえば、フロイ
ンドの完全アジュバントや不完全アジュバントなど)と
ともに約１〜６週間の間隔をあけて、適量(すなわち、
約１μｇ〜約５０μｇ)の抗原をそれぞれ含有する注射
を３〜６回、非経口、腹腔内、静脈内および／または皮
下投与することにより行う。免疫は一般にインビボで行
われるが、種々のインビトロ法も知られており、これら
も用いることができる。
【００１２】免疫した動物の抗体産生細胞(通常は脾臓
細胞)を動物から取り出し、適当な細胞株のミエローマ
細胞と融合させる。ミエローマ細胞株およびそれから由
来する細胞株は適当な融合相手として知られている。種
内ハイブリッドの方が種間ハイブリッドよりも生存力が
大きいので、ミエローマ細胞株は一般に免疫哺乳動物と
同じ種からのものにする。ミエローマ細胞としては、酵
素ヒポキサンチン−グアニン−ホスホリボシルトランス
フェラーゼ(ＨＧＰＲＴ)または酵素チミジンキナーゼ
(ＴＫ)が欠損し、そのためヒポキサンチン、アミノプテ
リンおよびチミジンを含有する選択培地(ＨＡＴ培地)中
では生存できないミエローマ細胞を用いることができ
る。ＨＡＴ培地中では生存できず免疫グロブリンまたは
その部分を分泌しないミエローマ細胞および該細胞から
調製した細胞株、たとえば細胞株Ｐ３Ｘ６３−Ａｇ８.
６５３およびＳｐ２／０−Ａｇ１４もまた用いることが
できる。
【００１３】種々の融合促進剤、たとえば、センダイウ
イルスや他のパラミクソウイルス(場合によりＵＶ不活
化した形態のもの)、カルシウムイオン、表面活性脂質
(イソレシチンなど)、またはポリエチレングリコールな
ども用いることができる。融合は、一般に、分子量が約
１０００〜４０００の３０〜５０％ポリエチレングリコ
ール(ＰＥＧ)を含有する溶液中、ミエローマ細胞を、免
疫した動物からの脾臓細胞の３〜２０倍過剰量と融合さ
せる。細胞毒性を防ぐため、ＰＥＧに約２〜３分間暴露
するのが最適であると思われる。約３７℃の温度が推奨
される。
【００１４】融合後、細胞を分離し、選択ＨＡＴ培地で
培養するとハイブリッド細胞のみが生存する。なぜな
ら、これらハイブリッド細胞は、ミエローマ細胞からは
インビトロ増殖能を、免疫動物の抗体産生細胞からは欠
損していたＨＧＰＲＴまたはＴＫ遺伝子をそれぞれ受け
継いでいるためＨＡＴ培地中で生存できるからである。
【００１５】ハイブリドーマ細胞の増殖に適した培地
は、通常の標準培地、たとえば、抗生物質を添加し１０
〜１５％ウシ胎仔血清を含有するダルベッコの変性イー
グル培地またはロスウエルパークメモリアルインスティ
チュート(Roswell Park Memorial Institute；ＲＰＭ
Ｉ)１６４０培地である。細胞増殖の開始時にいわゆる
フィーダー細胞、たとえば正常マウス腹腔滲出細胞、脾
臓細胞、骨髄マクロファージなどを加えてもよい。最初
のＨＡＴ選択工程後もなお存在している通常のミエロー
マ細胞の方がハイブリッド細胞よりも過剰に増殖するの
を防ぐため、一定の期間をあけて選択ＨＡＴ培地を培地
に添加してもよい。
【００１６】ＨＡＴ選択で生存したハイブリッド細胞の
細胞培養上澄み液を、所望のモノクローナル抗体の存在
について調べる。細胞上澄み液の試験は、目的抗原への
モノクローナル抗体の結合を示すイムノアッセイ、たと
えばラジオイムノアッセイやエンザイムイムノアッセイ
で行うのが有利である。ついで、所望の特異性並びに他
の所望の特性を有する抗体を産生するハイブリッド細胞
を生きた培養液として維持し、および／または貯蔵用に
凍結することができる。
【００１７】本発明はさらに、ｔｒｋ癌原遺伝子タンパ
ク質および／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質に結
合するモノクローナル抗体に関する。好ましいモノクロ
ーナル抗体としては、ＭａｂＴＴＭ１−８、ＭａｂＴＴ
Ｍ６−１３、ＭａｂＴＴＭ６−４６、ＭａｂＴＴＭ６−
５０、ＭａｂＴＴＭ７−４、ＭａｂＴＴＭ７−４１、Ｍ
ａｂＴＴＭ９−９、ＭａｂＴＴＭ９−１２、ＭａｂＴＵ
Ｍ５−４７またはＭａｂＴＵＭ７−９と呼ばれるもの、
またはこれらモノクローナル抗体の同定特性を有するモ
ノクローナル抗体が挙げられる。特に好ましいモノクロ
ーナル抗体はＭａｂＴＴＭ７−４１.１と呼ばれるも
の、またはこのモノクローナル抗体の同定特性を有する
モノクローナル抗体である。同様に好ましいのは、ｔｒ
ｋ癌原遺伝子タンパク質および／またはｔｒｋ関連癌遺
伝子タンパク質に結合する実質的に精製したモノクロー
ナル抗体である。また、ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質お
よび／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質に結合する
モノクローナル抗体の誘導体も好ましい。
【００１８】本発明のモノクローナル抗体は、当業者に
一般に知られた種々の方法により製造することができ
る。そのような抗体を産生するハイブリッド細胞をイン
ビトロで培養し、その培養上澄み液からモノクローナル
抗体を単離するか、または適当な哺乳動物中でインビボ
で増殖させ、該動物の体液からモノクローナル抗体を単
離する。所望なら、これら方法のいずれかにより得られ
たモノクローナル抗体をその誘導体に変換させてもよ
い。インビトロ培養のために適した培地としては、通常
の標準培地、たとえば、１０〜１５％のウシ胎仔血清を
含有し抗生物質を添加したダルベッコの変性イーグル培
地やＲＰＭＩ１６４０培地などが挙げられる。
【００１９】上記ハイブリッド細胞をインビボで増殖さ
せることによっても、大量の所望のモノクローナル抗体
を得ることができる。この目的のためには、抗体産生ハ
イブリドーマを同系の哺乳動物の腹腔内に接種し、１〜
３週間後にこれら哺乳動物の腹水から抗体を単離する。
たとえば、ＢＡＬＢ／ｃマウスに由来するハイブリッド
細胞を、前以て２,６,１０,１４−テトラメチルペンタ
デカン(プリスタン)などの炭水化物で腹腔内前処理して
腹腔を刺激したＢＡＬＢ／ｃマウスに腹腔内注入し、８
〜１０日後、これら動物から腹水を取り出す。
【００２０】インビトロまたはインビボで産生させたモ
ノクローナル抗体の精製は、種々の方法、たとえば、ゲ
ル濾過クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフ
ィー、ＤＥＡＥ−セルロースクロマトグラフィーまたは
アフィニティークロマトグラフィーを用いて行うことが
できる。場合により、クロマトグラフィーに供する前に
所定濃度の硫酸アンモニウムなどを用い、培養上澄み液
または腹水中の選択タンパク質(所望のモノクローナル
抗体を含む)を沈殿させてもよい。所望なら、インビト
ロまたはインビボのいずれかで産生させたモノクローナ
ル抗体の誘導体を製造することができる。
【００２１】本発明によるモノクローナル抗体の誘導体
としては、たとえば、目的抗原の抗原決定基に対する特
異性を保持している、Ｆａｂ、Ｆａｂ'またはＦ(ａｂ')
2各フラグメントなどのフラグメント；たとえば放射性
のヨウ素(125Ｉ、131Ｉ)、炭素(14Ｃ)、硫黄(35Ｓ)、ト
リチウム(3Ｈ)、112Ｉｎ、99mＴｃなどで標識した放射
性標識モノクローナル抗体；西洋ワサビペルオキシダー
ゼ、アルカリホスファターゼ、β−Ｄ−ガラクトシダー
ゼ、グルコースオキシダーゼ、グルコアミラーゼ、炭酸
脱水酵素、アセチルコリンエステラーゼ、リゾチーム、
リンゴ酸脱水素酵素またはグルコース−６−リン酸脱水
素酵素などの酵素を結合させたモノクローナル抗体が挙
げられる。他の誘導体としては、フルオレセインやロー
ダミンなどの蛍光物質で標識したモノクローナル抗体お
よびビオチンで標識したモノクローナル抗体などが挙げ
られる。
【００２２】本発明のモノクローナル抗体のフラグメン
ト、たとえば、Ｆａｂ、Ｆａｂ'またはＦ(ａｂ')2フラ
グメント(目的抗原の抗原決定基の特異性を保持してい
る)は、一般に知られた方法、たとえばペプシンやパパ
インなどのタンパク質分解酵素を用いたタンパク質分解
消化および／または化学的還元によるジスルフィド結合
の開裂によりモノクローナル抗体をフラグメント化する
ことにより調製することができる。
【００２３】ヨウ素(125Ｉ、131Ｉ)で放射性標識したモ
ノクローナル抗体は、たとえば、化学的酸化剤(次亜塩
素酸ナトリウム、クロラミンＴなど)や酵素的酸化剤(ラ
クトペルオキシダーゼやグルコースオキシダーゼなど)
で酸化させた後、放射性のヨウ化ナトリウムやヨウ化カ
リウムでヨウ素化することにより得ることができる。本
発明の放射性標識したモノクローナル抗体はまた、イン
ビトロ培養のための培地に公知方法により、放射性の炭
素(14Ｃ)、トリチウム(3Ｈ)、硫黄(35Ｓ)などを含む放
射性標識栄養物、たとえば、Ｌ−(14Ｃ)−ロイシン、Ｌ
−(3Ｈ)−ロイシンまたはＬ−(35Ｓ)−メチオニンを加
え、上記のようにしてモノクローナル抗体を得ることに
よっても調製することができる。
【００２４】本発明の酵素結合モノクローナル抗体は、
一般に知られた種々の方法、たとえば、アルデヒド、カ
ルボジイミド、マレイミド、イミデート、スクシンイミ
ドおよびピリジルジスルフィドなどのカップリング試薬
で修飾した後、モノクローナル抗体と所望の酵素を反応
させることにより得ることができる。カップリング試薬
の具体例としては、たとえば、グルタルアルデヒド、パ
ーイオデート、Ｎ,Ｎ'−ｏ−フェニレンジマレイミド、
Ｎ−(ｍ−マレイミドベンゾイルオキシ)スクシンイミ
ド、Ｎ−(３−(２'−ピリジルジチオ)プロピニルオキ
シ)スクシンイミドなどが挙げられる。
【００２５】種々の酵素基質、たとえば、西洋ワサビペ
ルオキシダーゼに対しては５−アミノサリチル酸、ｏ−
フェニレンジアミン、３,３'−ジメトキシベンジジンお
よび２,２'−アジノ−ビス−(３)−エチルベンゾチアゾ
リン−６−スルホン酸など、およびアルカリホスファタ
ーゼに対してはｐ−ニトロフェニルホスフェートなどを
酵素結合抗体とともに用いることができる。
【００２６】本発明で考えられるモノクローナル抗体の
他の誘導体としては、治療目的のため(すなわち、癌治
療のため)、たとえば、ジフテリア毒素、リシンまたは
脱糖リシンＡ鎖などの毒素を結合したモノクローナル抗
体、または癌細胞の増殖を制限し得るまたは癌細胞を破
壊し得るある種の他の物質(たとえば、放射性同位元素
など)に結合させたモノクローナル抗体などが挙げられ
る。そのような誘導体は、当該技術分野で一般に知られ
た方法により調製することができる。これらモノクロー
ナル抗体を癌の治療に使用するに際しては、これらモノ
クローナル抗体誘導体を適当な方法(たとえば、非経口
溶液を用い)で、癌に罹っていることがわかっている種
々の哺乳動物種(たとえば、ヒト、ネコ、イヌなど)に約
０.０１〜１００ｍｇ／ｋｇ／日、好ましくは約０.１〜
１０ｍｇ／ｋｇ／日の投与量範囲の治療学的有効量に
て、１日に１回投与または２〜４回の分割投与で投与す
ることができる。
【００２７】別法として、上記投与量を供給するため溶
液を連続投与してもよい。この場合、活性物質は、単位
投与量当たり約１.０〜約１０.０ｍｇの誘導体化モノク
ローナル抗体を含有する溶液中にて使用すべきである。
これらは、許容された製剤プラクティスで要求されるよ
うに、保存剤や安定化剤などの他の生理学的に許容し得
る物質とともに常法により調合することができる。
【００２８】本発明のモノクローナル抗体のフラグメン
トもまた、完全長のモノクローナル抗体について記載し
たと同様の方法により、上記種々の物質、たとえば、放
射性同位元素、酵素、蛍光物質、ビオチン、毒素、およ
び癌細胞の増殖を制限し得るまたは癌細胞を破壊し得る
物質で標識することができる。そのような変更もまた、
本発明に包含される。
【００２９】本発明は、本明細書で記載したモノクロー
ナル抗体の特性を示すすべてのモノクローナル抗体を包
含する。本発明のモノクローナル抗体はクラスＩｇＧ、
サブクラスＩｇＧ1およびＩｇＧ2bに属する。しかしな
がら、属する免疫グロブリンのクラスまたはサブクラス
のいかんに拘わらず、本明細書に記載した反応性パター
ンを有する抗体は本発明に包含されることが考えられ
る。たとえば、本明細書に記載した特性を示すモノクロ
ーナル抗体はサブクラスＩｇＧ1、ＩｇＧ2a、ＩｇＧ2b
またはＩｇＧ3であってよく、またクラスＩｇＭ、Ｉｇ
Ａまたは他の知られたＩｇクラスであってよい。
【００３０】さらに、既知のマウスミエローマ細胞株と
既知種の免疫マウスからの脾臓細胞とから得たハイブリ
ッド細胞株は、該ハイブリッド細胞株によって産生され
た抗体を参照する以外には同定することができないの
で、上記反応性特性を有する抗体を産生するハイブリッ
ド細胞株はすべて本発明に包含されることが考えられ
る。
【００３１】本発明はさらに、上記ｔｒｋ癌原遺伝子タ
ンパク質および／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質
に結合するモノクローナル抗体を、とりわけ生物学的試
料中のｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／またはｔｒ
ｋ関連癌遺伝子タンパク質の定性的および定量的決定に
利用したイムノアッセイ法に関する。特に好ましいの
は、試料中のｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／また
はｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質の存在を検出するため
の定性的イムノアッセイ法であって、(a)該ｔｒｋ癌原
遺伝子タンパク質および／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タ
ンパク質に結合するモノクローナル抗体とともに試料を
インキュベートし、ついで(b)該ｔｒｋ癌原遺伝子タン
パク質および／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質と
該モノクローナル抗体とによって生成した免疫複合体の
存在を検出することを特徴とする方法である。
【００３２】同様に好ましいのは、試料中のｔｒｋ癌原
遺伝子タンパク質および／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タ
ンパク質の量を定量的に決定するためのイムノアッセイ
法であって、(a)該ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および
／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質に結合するモノ
クローナル抗体とともに試料をインキュベートし、(b)
該ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／またはｔｒｋ関
連癌遺伝子タンパク質と該モノクローナル抗体とによっ
て生成した免疫複合体の量を決定し、ついで(c)該生成
した免疫複合体の量を、試料中に存在するｔｒｋ癌原遺
伝子タンパク質および／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タン
パク質の量と相関させることを特徴とする方法である。
【００３３】本発明のイムノアッセイ法は、インビボま
たはインビトロのいずれであってもよい。インビボ造影
法の場合は、適当な検出可能な造影残基、たとえば、放
射性同位元素(たとえば、131Ｉ、112Ｉｎ、99mＴｃな
ど)、放射線不透過性物質、または核磁気共鳴により検
出可能な物質で標識したモノクローナル抗体またはモノ
クローナル抗体フラグメントを、調べようとする被験体
(たとえば、ヒト)に導入する(たとえば、非経口、皮下
または腹腔内で)。被験体のサイズおよび使用した造影
系により、診断像を得るのに必要な造影残基の量が決定
されるであろう。放射性同位元素の場合、ヒト被験体に
対しては、注入する放射能の量は、通常、約５〜２０ミ
リキュリーのテクネチウム−９９ｍの範囲であろう。
【００３４】ついで、上記標識モノクローナル抗体また
はモノクローナル抗体フラグメントは、ｔｒｋ癌原遺伝
子タンパク質および／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タンパ
ク質を含む細胞部位に主として蓄積するであろう。つい
で、これら標識モノクローナル抗体またはモノクローナ
ル抗体フラグメントを公知方法を用いて検出することが
できる。この技術分野の一般的記載は、バーチエル(S.
W.Burchiel)らの「イミュノファーモカイネティックス・
オブ・ラジオラベルド・アンタイボディーズ・アンド・
ゼア・フラグメンツ(Immunopharmokinetics of Radiola
beled Antibodies and their Fragments)」、「チューマ
ー・イミジング、ザ・ラジオケミカル・ディテクション
・オブ・キャンサー(Tumor Imaging，The Radiochemica
l Detection of Cancer)」、バーチエルおよびローデス
(B.A.Rhodes)編、マッソン・パブリッシング(１９８２)
を参照することができる。
【００３５】所望なら、ヒトでの免疫原性を減少させる
ため、ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／またはｔｒ
ｋ関連癌遺伝子タンパク質に結合するマウスモノクロー
ナル抗体のＨ鎖およびＬ鎖可変領域をコードするゲノム
ＤＮＡ断片をクローニングし、発現ベクター中に移し、
その結果、マウス抗体の特異性を保持したヒト免疫グロ
ブリンを産生させることができる[サン(Sun,L.K.)ら、P
roc.Natl.Acad.Sci.USA、８４、２１４〜２１８(１９８
７)]。
【００３６】ｔｒｋ癌原遺伝子の転位は、ヒト乳頭状甲
状腺癌において高頻度で同定されている。下記で示すよ
うに、本発明のモノクローナル抗体は、転位ｔｒｋ癌原
遺伝子タンパク質、すなわちｔｒｋ関連癌遺伝子タンパ
ク質を認識することができる。それゆえ、被験体の特定
部位での標識モノクローナル抗体またはモノクローナル
抗体フラグメントの蓄積は、原発腫瘍の存在または転移
増殖を示す。
【００３７】インビトロ法の場合には、本発明のイムノ
アッセイ法は、使用した特定のプロトコールに依存し
て、ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／またはｔｒｋ
関連癌遺伝子タンパク質に結合する非標識モノクローナ
ル抗体またはその放射性標識誘導体を単独または組み合
わせて利用するラジオイムノアッセイ(ＲＩＡ)であって
よい。ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／またはｔｒ
ｋ関連癌遺伝子タンパク質に結合するモノクローナル抗
体が非標識である場合は、異なる検出可能なマーカー、
たとえば、ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／または
ｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質に結合するモノクローナ
ル抗体に結合し得る放射性標識抗体を用いることができ
る。ＲＩＡの公知の変法、たとえば、均一ＲＩＡ、不均
一ＲＩＡ、競合ＲＩＡおよびサンドイッチＲＩＡのいず
れもを用いることができる。
【００３８】本発明のイムノアッセイ法はまた、使用し
た特定のプロトコールに依存して、ｔｒｋ癌原遺伝子タ
ンパク質および／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質
に結合する非標識モノクローナル抗体またはその酵素標
識誘導体を単独または組み合わせて利用するエンザイム
イムノアッセイ(ＥＩＡ)であってもよい。ｔｒｋ癌原遺
伝子タンパク質および／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タン
パク質に結合するモノクローナル抗体が酵素で標識して
いない場合は、異なる検出可能なマーカー、たとえば、
ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／またはｔｒｋ関連
癌遺伝子タンパク質に結合するモノクローナル抗体に結
合し得る酵素標識抗体を用いることができる。あらゆる
ＥＩＡの公知の変法、たとえば、酵素結合抗体免疫アッ
セイ(ＥＬＩＳＡ)を用いることができる。
【００３９】本発明のイムノアッセイ法は、他の公知の
イムノアッセイ法、たとえば、フルオレセインやローダ
ミンなどの蛍光物質の抗体結合体または抗原結合体を用
いた蛍光イムノアッセイ、抗体コーティングラテックス
粒子または抗原コーティングラテックス粒子を用いたラ
テックス凝集法、抗体コーティング血球または抗原コー
ティング血球を用いた血球凝集反応、およびアビジン−
ビオチンまたはストレプトアビジン−ビオチン検出系を
用いたイムノアッセイなどであってもよい。
【００４０】本発明のインビトロイムノアッセイに用い
る特定のパラメーターは、試料中の抗原濃度、試料の性
質、使用したイムノアッセイの種類などの種々の因子に
依存して大きく変わり得る。最適条件は、当業者により
容易に確立することができる。ｔｒｋ癌原遺伝子タンパ
ク質および／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質に結
合する抗体の量は、一般に、試料不在下で検出可能なマ
ーカーの５０％結合が得られるように選択する。精製抗
体を抗体源として用いる場合は、アッセイ当たりに使用
する抗体の量は一般に約１ｎｇ〜約１００ｎｇの範囲で
ある。典型的なアッセイ条件としては、約４℃〜約４５
℃の温度範囲、好ましくは約２５℃、約５〜９のｐＨ範
囲、好ましくは約７、蒸留水のものから約０.２Ｍ塩化
ナトリウム、好ましくは０.１５Ｍ塩化ナトリウムのも
のまでの範囲のイオン強度が挙げられる。アッセイ時間
はアッセイの性質により大きく異なるが、一般に約０.
１分〜約２４時間の範囲である。広範囲の緩衝液、たと
えばＰＢＳを用いることができ、イオン強度を高めるた
めの塩、血清アルブミンなどのタンパク質、安定化剤、
殺生物剤および非イオン性界面活性剤などの他の試薬を
用いることもできる。
【００４１】生物学的試料中にｔｒｋ関連癌遺伝子タン
パク質が存在することは、試料を採取した被験体中に癌
が存在することを示す。本発明のモノクローナル抗体の
フラグメントも本発明のイムノアッセイ法に用いること
ができ、そのような変更も本発明の範囲に包含される。
【００４２】本発明のモノクローナル抗体はまた、ｔｒ
ｋ癌原遺伝子タンパク質および／またはｔｒｋ関連癌遺
伝子タンパク質を精製するために用いることもできる。
簡単に説明すると、ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および
／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質に結合するモノ
クローナル抗体を基体(たとえば、プロテインＡ−セフ
ァロースなどの固体支持体)に結合させ、該モノクロー
ナル抗体がｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／または
ｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質に結合し得る条件下、ｔ
ｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／またはｔｒｋ関連癌
遺伝子タンパク質を含有する調製物(たとえば、溶液)と
接触させる。固定化モノクローナル抗体から未結合物質
を除去し、結合したｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および
／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質を該モノクロー
ナル抗体から回収して(たとえば、適当な溶離剤で溶出
することにより)、精製ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質お
よび／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質を得る。
【００４３】ついで、精製した癌原遺伝子タンパク質
は、とりわけ、ｔｒｋ癌遺伝子タンパク質には結合しそ
の機能を抑制するがｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質には結
合しない薬物を同定するための薬物スクリーニングに用
いることができる。本発明のモノクローナル抗体はま
た、粗製の細胞抽出液中およびマウスおよびヒト細胞で
発現させた場合のｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／
またはｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質の同定に用いるこ
ともできる。本発明のモノクローナル抗体は、プロト−
ｔｒｋレセプターリガンドの同定を助けるために用いる
こともできる。つぎに、本発明を実施例に基づいてさら
に詳しく説明するが、本発明はこれらに限られるもので
はない。
【００４４】実施例１ 細胞培養 マウスミエローマ(形質細胞腫)細胞株として、ヒポキサ
ンチングアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ(Ｈ
ＧＲＰＴ)の欠損したＳｐ２／０−Ａｇ１４を用いた。
この細胞株は、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレ
クション(ロックビル、ＭＤ)およびナショナル・インス
チチュート・オブ・ジェネラル・メディカル・サイエン
スィズ・ヒューマン・ジェネティック・ミュータント・
セルズ・デポジトリー(National Institute of General
Medical Sciences Human Genetic Mutant Cells Depos
itory)(カムデン、ＮＪ)から入手可能である。
【００４５】Ｓｐ２／０細胞および選択ハイブリドーマ
を３７℃、加湿８％ＣＯ2雰囲気中、１０％ウシ胎仔血
清およびＬ−グルタミン(０.３ｍｇ／ｍｌ)を添加した
高グルコース(４.５ｇ／Ｌ)のダルベッコの変性イーグ
ル培地(ＤＭＥＭ)中で培養した。ＤＭＥＭおよびＬ−グ
ルタミンはギブコ・ラボラトリーズ(ライフ・テクノロ
ジーズ、グランドアイランド、ＮＹ)から得、ウシ胎仔
血清はハイクローン・ラボラトリーズ(ローガン、ユタ)
から得た。他の培地成分は、特に断らない限り、シグマ
・ケミカル・カンパニー(セントルイス、ＭＯ)から得
た。融合後、ヒポキサンチン(０.１ｍＭ)、アミノプテ
リン(０.１μＭ)およびチミジン(０.０１６ｍＭ)を含有
するＨＹ培地(ＨＹ培地：１０％ＮＣＴＣ１０９(ギブ
コ)、１５％ウシ胎仔血清、０.２単位のウシインシュリ
ン／ｍｌ、０.４５ｍＭピルビン酸、１ｍＭオキザロ酢
酸および０.１％グルタミンを添加したＤＭＥＭ)中で細
胞を増殖させた。
【００４６】実施例２ 血清陽性動物の調製 血清陽性動物は、ｔｒｋ癌原遺伝子／ｐＳＶ２ｎｅｏで
トランスフェクションしたＮＩＨ３Ｔ３細胞を皮下免疫
することにより得ることができる。この細胞株Ｅ２５−
４−２７[以前にマーチン−ザッカらの「モレキュラー・
アンド・バイオケミカル・キャラクタライゼーション・
オブ・ザ・ヒューマン・ｔｒｋ・プロト−オンコジーン
(Molecular and biochemical characterization of the
human trk proto-oncogene)」、Mol.Cell.Biol.,９：２
４〜３３(１９８９)に記載されている]を３７℃、加湿
８％ＣＯ2雰囲気下、１０％ウシ胎仔血清、Ｌ−グルタ
ミン(０.３ｍｇ／ｍｌ)およびゲネチシン(geneticin)
(Ｇ４１８)(５００μｇ／ｍｌ)を添加した高グルコース
(４.５ｇ／Ｌ)のダルベッコの変性イーグル培地(ＤＭＥ
Ｍ)中で培養した。免疫原として使用する細胞を集密状
態近くまで増殖させ、フラスコから掻き取った。
【００４７】これら細胞をハンクス(Hanks)平衡塩溶液
中で洗浄し、６週齢ＮＩＨ／スイスマウスの鼡径部への
注射用に調製した。５〜１０×１０6細胞を注射してか
ら早くも５日後に直径２ｍｍの腫瘍が認められた。幾つ
かのマウスでは、腫瘍退行の１０〜１５日前にピークの
腫瘍増殖が観察された。同じ免疫原を与えた他のマウス
では、２２〜２５日目に屠殺するときまで腫瘍は増殖し
続けた。
【００４９】実施例３ ハイブリドーマの製造 腫瘍を有する動物を屠殺し、脾臓を取り出した。腫瘍塊
が退行したマウスばかりでなく腫瘍塊が増殖し続けたマ
ウスからも脾臓を取り出した。融合は、コッホ−ライト
(Koch-light)ポリエチレングリコール４０００を用い、
コーラーおよびミルシュテインの方法[Nature、２５
６、４９５〜４９７(１９７５)]の変法に従って行っ
た。注射器により導入した培地で潅流して選択動物から
脾臓細胞を回収し、赤血球を冷０.１７Ｍ ＮＨ4Ｃｌ中
で溶解させた。回収した細胞をカウントし、丸底チュー
ブ中で１０8脾臓細胞／２×１０7ミエローマ細胞の比で
混合した。この細胞混合物を遠心分離により血清不含培
地中で洗浄した。上澄み液をすべて吸引除去し、ペレッ
トをほぐした。
【００５０】上記ペレットにＰＥＧ溶液(血清不含培地
中に３０％ポリエチレングリコール、５％ジメチルスル
ホキシド)(０.５ｍｌ)をゆっくりと加えた。これら細胞
をＰＥＧ溶液中に８分間保持し、その間に１０００ｒｐ
ｍで５〜６分間遠心分離してペレット化した。血清不含
培地(５ｍｌ)をゆっくりと加えてペレットを分散させ、
ついで１５％ウシ胎仔血清を含有するＨＹ培地(５ｍｌ)
を加えた。細胞をペレット化し、ヒポキサンチン、アミ
ノプテリンおよびチミジンを添加したＨＹ培地中に均一
に再懸濁して１.５×１０6細胞／ｍｌの細胞懸濁液とし
た。
【００５１】ついで、細胞を９６−ウエルのマイクロタ
イタープレート中にプレーティングし(１００μｌ／ウ
エル)、３７℃の加湿ＣＯ2インキュベーター中に置い
た。６〜７日後にウエルに再び培地を添加した。マイク
ロタイタープレートウエル中の選択培地で増殖した細胞
を、逆付きミラースタンドを用いて肉眼でプレートを調
べることにより同定した。これらクローンを含有するウ
エルからの培地について、酵素結合抗体免疫アッセイ
(ＥＬＩＳＡ；実施例５参照)により特定抗体の存在を試
験した。
【００５２】実施例４ 抗体産生ハイブリドーマの拡張(expansion) ＥＬＩＳＡによって示された特定の抗体を産生するハイ
ブリドーマを標準細胞培養法により拡張し、ヒポキサン
チンおよびチミジンを添加したＨＹ培地中で５〜６継代
増殖させた。１０％ウシ血清およびグルタミン(０.１
％)を添加したダルベッコの変性イーグル培地に細胞を
適合させた。新たに調製したＨＹ培地中での限界希釈に
より、目的ハイブリドーマをサブクローニングした。サ
ブクローニングしたハイブリドーマおよび最初の細胞株
を、９５％ウシ血清と５％ジメチルスルホキシドとの凍
結混合物を用いた標準法により低温保存した。
【００５３】密に増殖している培養液から抗体を蓄積さ
せることにより、細胞培養上澄み液中に抗体を回収し
た。細胞培養法に加えて、ヌード(ｎｕ／ｎｕ)マウスの
腹腔内でもハイブリドーマを増殖させた。目的ハイブリ
ドーマ株を注射する少なくとも１０日前に０.５ｍｌの
プリスタン(２,６,１０,１４−テトラメチルデカン酸、
アルドリッチ・ケミカル・カンパニー、ミルウォーキ
ー、ＷＩ)を腹腔内注射した。注射前にＥＬＩＳＡによ
り活性が示されたハイブリドーマ(約４×１０6細胞)を
上記プリスタン処理したマウスの腹腔内に接種して腹水
を生成させた。７〜１０日後にマウスから腹水を取り出
し、ベックマン５０Ｔｉローター中、６℃で３５０００
ｒｐｍにて遠心分離することにより清澄化した。清澄化
した腹水を０.０２％アジ化ナトリウムとともに４℃で
貯蔵するかまたは−７０℃でアリコートとして凍結し
た。
【００５４】実施例５ 酵素結合抗体免疫吸着アッセイ(ＥＬＩＳＡ) 免疫マウスからの血清およびＨＡＴで選択したハイブリ
ドーマを含むウエルから回収した培地を、プロト−ｔｒ
ｋタンパク質を認識する抗体の存在について試験した。
スクリーニングに用いた抗原は、ｔｒｋ癌原遺伝子でト
ランスフェクションした細胞株Ｅ２５−４−２７および
そのパートナー細胞株Ｅ２５−３−２(ｐＳＶ２ｎｅｏ
単独でトランフェクションしたＮＩＨ３Ｔ３)の両方か
ら調製した亜細胞フラクションであった。これら細胞株
Ｅ２５−４−２７およびＥ２５−３−２を上記のように
して、ウシ血清、グルタミンおよびゲネチシン(５００
μｇ／ｍｌ)を添加したダルベッコの変性イーグル培地
中で増殖させた。細胞レベル下の分画に用いる細胞を約
７５％の集密状態まで増殖させ、掻き取りにより回収し
た。細胞をハンクス平衡塩溶液中で数回洗浄した。ペレ
ット化した細胞を分画緩衝液[２０ｍＭ ＨＥＰＥＳ ｐ
Ｈ７.４、１ｍＭ ＥＤＴＡ、１ｍＭ 塩化マグネシウ
ム、１ｍＭ ジチオスレイトール、１ｍＭ フェニルメチ
ルスルホニルフルオリド(ＰＭＳＦ)]中に再懸濁し、超
音波処理した。
【００５５】１０００×ｇで１０分間遠心分離にかけた
後、その上澄み液を１５０,０００×ｇで３０分間、４
℃にて遠心分離にかけた。その上澄み液を捨て、残った
ペレットを分画緩衝液中で洗浄し、超音波処理し、１５
０,０００×ｇで３０分間、４℃にて遠心分離にかけ
た。その上澄み液を捨て、ペレットをスタッフ(Staph)
Ａ緩衝液(１０ｍＭリン酸ナトリウム[ｐＨ７.０]、１％
トリトン−Ｘ１００、０.１％ドデシル硫酸ナトリウ
ム、０.１％アジ化ナトリウム、１００ｍＭ塩化ナトリ
ウム、０.５％デオキシコール酸ナトリウム)中に可溶化
した。このフラクションをｐ１００フラクションを呼ぶ
ことにする。バイオ−ラドプロテインアッセイキット
(バイオ−ラド、リッチモンド、ＣＡ)を用いてタンパク
質濃度を決定した。ｐ１００フラクションをアリコート
し、ドライアイス／メタノール上で直ちに凍結させ、長
期貯蔵には−７０℃で保存した。
【００５６】上記ｐ１００フラクションをリン酸緩衝食
塩水中に希釈し(６μｇ／ｍｌ)、ＥＬＩＳＡ法を行うた
めポリスチレンプレートに吸着させた。この溶液の５０
μｌを、蒸留水で濯いだヌンクイムノプレートＩＦ９６
−ウエルプレート(Ａ／Ｓヌンク、カムストルプ、デン
マーク)の各ウエルに加え、シールした。４℃で一夜イ
ンキュベートした後、ＰＢＳ−Ｔｗ２０（０．０５％ツ
イーン２０含有リン酸緩衝食塩水）でプレートを６回濯
いだ。非希釈培養液(５０μｌ)または希釈マウス血清
(５０μｌ)を室温で２時間インキュベートした。プレー
トをＰＢＳ−Ｔｗ２０洗浄液で６回洗浄して未結合抗体
を除いた。洗浄後、１００μｌの希釈アルカリホスファ
ターゼ結合ヤギ抗マウス免疫グロブリンＩｇＧ(Ｈ鎖お
よびＬ鎖)(ジャクソン・イムノリサーチ・ラボラトリー
ズ、ウエストグローブ、ＰＡ)を各ウエルに室温で２時
間加えた。塩化ナトリウム(２０.４ｇ／Ｌ)、ＥＤＴＡ
(０.２９ｇ／Ｌ)および０.２％ペルオキシダーゼ不含ウ
シ血清アルブミンを添加したＰＢＳ−Ｔｗ２０からなる
ＥＬＩＳＡ緩衝液中に抗血清を１：３０００に希釈し
た。ＰＢＳ−Ｔｗ２０で充分に洗浄し、ついでトリス緩
衝食塩水、ｐＨ７.５(０.０５Ｍトリス−塩酸、０.１５
Ｍ塩化ナトリウム)で数回洗浄することにより、未結合
の結合体を除いた。
【００５７】結合した結合体の検出は、ベセスダ・リサ
ーチ・ラボラトリーズ／ライフ・テクノロジー(ガイセ
ルスバーグ、ＭＤ)により製造されたアルカリホスファ
ターゼＥＬＩＳＡ増幅キットを用いて視覚化することに
より行った。基質および増幅試薬の調製は、適当な基質
および増幅剤希釈液を用いて製造業者の指示に従って行
った。５０μｌの基質溶液を各ウエルに加え、ダイナテ
ックプレートシェーカー上で震盪しながら室温で２０分
間反応させた。５０μｌの増幅剤を各ウエルに加え、室
温で１５分間インキュベートし、ついで５０μｌの０.
３Ｍ硫酸を加えて反応を停止させた。光学濃度により測
定した反応生成物をタイターテックマルチスカンＰＬＵ
Ｓマイクロタイタープレートリーダー(フロー・ラボラ
トリーズ、マクリーン、ＶＡ)上で４９２ｎｍにて定量
した。
【００５８】実施例６ 免疫グロブリンクラス／サブクラスの決定 ハイブリドーマの免疫グロブリンクラス／サブクラスを
決定するため、抗体を含有する細胞培養液をＥＬＩＳＡ
法でアッセイした。アフィニティー精製したヤギ抗マウ
ス免疫グロブリン(Ｈ鎖およびＬ鎖)(オルガノン・テク
ニカ−カッペル、モールバン、ＰＡ)を０.０５Ｍ炭酸ナ
トリウム緩衝液(ｐＨ９.６)中に１：８００に希釈し
た。この溶液の５０μｌを、蒸留水で濯いだヌンクイム
ノプレートＩＦの各ウエルに加え、室温で２時間または
４℃で一夜インキュベートした。ＰＢＳ−Ｔｗ２０で洗
浄して未吸着抗体を除いた。抗体含有上澄み液または希
釈したミエローマ腹水コントロールの５０μｌを加え、
室温で２時間インキュベートした。充分に洗浄して未結
合抗体を除いた。アルカリホスファターゼ結合ヤギ抗マ
ウス免疫グロブリンクラスおよびサブクラス特異的試薬
(フィッシャーバイオテク、オレンジバーグ、ＮＹ)を、
０.２％ウシ血清アルブミンを含有するＰＢＳ−Ｔｗ２
０緩衝液中に１：５００に希釈した。
【００５９】抗マウスＩｇおよび目的マウス抗体で前以
てインキュベートしたウエルに各アルカリホスファター
ゼ結合体(１００μｌ)を加えた。このアルカリホスファ
ターゼ結合体を室温で２時間インキュベートし、プレー
トをＰＢＳ−Ｔｗ２０で４回洗浄し、ついでトリス緩衝
食塩水(０.０５ＭトリスＨＣｌ、０.１５Ｍ ＮａＣｌｐ
Ｈ７.５)で４回洗浄した。アルカリホスファターゼ緩衝
液(０.５ｍＭ ＭｇＣｌを含有する１０ｍＭ ジエタノー
ルアミン)中に希釈したｐ−ニトロフェニルホスフェー
ト(１ｍｇ／ｍｌ)を用いてアルカリホスファターゼ活性
を視覚化した。反応生成物を肉眼で評価するか、または
タイターテックマルチスカンＰＬＵＳマイクロタイター
プレートリーダーで４０５ｎｍにて定量を行った。
【００６０】実施例７ モノクローナル抗体の精製 適当なハイブリドーマから得られた腹水(約２〜４ｍｌ)
を、バイオ・ラドによりバイオ−ラドアフィ−ゲルプロ
テインＡ ＭＡＰＳ ＩＩ キット(バイオ−ラド・ラボラ
トリーズ、リッチモンド、ＣＡ)において提供された結
合緩衝液を用いて１：１に希釈し、結合緩衝液で前以て
平衡化した１ｃｍ×５ｃｍアフィ−ゲルプロテインＡカ
ラムに適用した。０.２〜０.３ｍｌ／分の速度にて希釈
腹水を適用した。流出液を回収し、洗浄する前にカラム
に再適用した。ついで、バイオ−ラド溶出緩衝液を０.
５ｍｌ／分の速度で用いて結合抗体の溶出を行った。１
ＭトリスＨＣｌ(ｐＨ９.０)を加えて、フラクションを
直ちに中和した。免疫グロブリン溶出のモニターは、各
試料を２８０ｎｍで吸光度を測定することにより行っ
た。
【００６１】有意のタンパク質レベルを示す試料をプー
ルし、ＰＢＳに対して４℃にて透析した。タンパク質濃
度の計算は、免疫グロブリンに対する吸光係数Ｅ＝１.
４ｃｍ2／ｍｇを用いて行った。上記ＥＬＩＳＡを用い
て抗体活性を決定した。免疫グロブリンの純度は、パラ
ゴンシステム(ベックマン・インスツルメンツ、フラー
トン、ＣＡ)によるアガロースゲル電気泳動および標準
的なドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリルアミドゲル
電気泳動により決定した。
【００６２】実施例８ 分析法 レムリ(Laemmli,U.K.)の「クリービッジ・オブ・ストラ
クチュラル・プロテインズ・デュアリング・アセンブリ
ー・オブ・ザ・ヘッド・オブ・バクテリオファージＴ
4(Cleavage of Structural Proteins During Assembly
of the Head of Bacteriophage T4)」、Nature 227: 680
〜685(1970)に記載されたゲルおよび緩衝液を用いてド
デシル硫酸ナトリウム−ポリアクリアミドゲル電気泳動
(ＳＤＳ−ＰＡＧＥ)を行った。β−メルカプトエタノー
ルおよびＳＤＳを含有する緩衝液中で試料を調製し、加
熱し、電気泳動に供した。
【００６３】実施例５に記載のＮＩＨ３Ｔ３トランスフ
ェクションプロト−ｔｒｋ陽性および陰性の細胞株から
調製したｐ１００フラクションについてイムノブロット
を行い、ＳＤＳ−ＰＡＧＥにより電気泳動した。トウビ
ン(Towbin,H.T.)、ステヘリン(Staehelin,T.)およびゴ
ードン(Gordon,J.)の「エレクトロフォレティック・トラ
ンスファー・オブ・プロテイン・フロム・ポリアクリル
アミド・ゲルズ・トゥー・ニトロセルロース・シーツ：
プロシーデャー・アンド・サム・アプリケーションズ(E
lectrophoretic transfer of protein from polyacryla
mide gels to nitrocellulose sheets：Procedure and
some applications)」、Proc.Natl.Acad.Sci.USA、７
６：４３５０〜４３５４(１９７９)に記載の方法に従
い、上記タンパク質を電気泳動によりニトロセルロース
シートに移した。
【００６４】トリス緩衝食塩水(０.０２ＭトリスＨＣ
ｌ、０.５Ｍ ＮａＣｌ、ｐＨ７.５)中で調製した５％Ｂ
ＳＡ(フラクションＶ)を用い、室温にて３０〜６０分撹
拌しながらニトロセルロース膜をブロッキングした。つ
いで、ブロッキングしたニトロセルロース膜を抗体含有
上澄み液かまたは希釈抗血清とともにインキュベートす
るためにストリップにカッティングするか、またはミニ
ブロッターマニホルド(イムネティックス、ケンブリッ
ジ、ＭＡ)中に入れ、適当な抗体をチャネルに加えた。
第一の抗体とのインキュベーションは、撹拌しながら室
温で１〜２時間行った。ＴＢＳで数回洗浄して未結合抗
体を除いた。
【００６５】アルカリホスファターゼを結合しアフィニ
ティー精製したヤギ抗マウスＩｇＧ(Ｈ鎖およびＬ鎖)試
薬(ジャクソン・イムノリサーチ・ラボラトリーズ、ウ
エストグローブ、ＰＡ)を、０.０５％ツイーン２０およ
び１％ゼラチンを含有するＴＢＳ中に１：３０００に希
釈し、上記ブロットに加え、撹拌しながら室温で１〜２
時間インキュベートした。基質を加える前にブロットを
ＴＢＳで充分に洗浄した。酵素結合部位の検出は、キル
ケガール・アンド・ペリー(ガイセルスバーグ、ＭＤ)か
らのキット型で供給されるＢＣＩＰ／ＮＢＴ(５−ブロ
モ−４−クロロ−３−インドリルホスフェート／ニトロ
ブルーテトラゾリウム)基質を用いて行った。
【００６６】実施例９ ｔｒｋタンパク質、プロト−ｔｒｋタンパク質およびｔ
ｒｋ関連タンパク質のラジオ免疫沈降 ほぼ集密状態の細胞株を１００ｍｍディッシュ中、ハン
クスの平衡塩溶液(ＨＢＳＳ)で１回、メチオニン不含ダ
ルベッコの変性イーグル培地(ＤＭＥＭ)で１回洗浄し、
１０％透析ウシ血清を添加したメチオニン不含ＤＭＥＭ
(３.５ｍｌ)中で１時間インキュベートした。この培地
を吸引し、０.０５０ｍＣｉ[35Ｓ]トラン(Ｔｒａｎ)35
Ｓ標識[ＩＣＮ；放射性標識[35Ｓ]メチオニン(８５％)
および放射性標識[35Ｓ]システイン(１５％)からなる混
合物]を含有する新たな培地を加え、４時間インキュベ
ートした。糖付加していない放射性標識タンパク質を調
べるため、抗生物質のツニカマイシンを５μｇ／ｍｌで
添加して細胞株を上記のようにして標識した。標識培地
を吸引し、細胞をＨＢＳＳで濯いだ。１ｍＭ ＰＭＳＦ
および２.５ＴＩＵ(トリプシンインヒビター単位)のア
プロチニン／ｍｌを含有するスタッフＡ緩衝液(実施例
５参照)(１.０ｍｌ)を用い、氷上で細胞を１５分間溶解
した。
【００６７】細胞抽出物を回収し、４℃にて１５,００
０×ｇで遠心分離にかけた。上澄み液を除き、トリクロ
ロ酢酸カウントを測定し、直ちに使用するかまたは−７
０℃で凍結した。この抽出物を適当な抗血清(２μｌ)か
またはモノクローナル抗体を含有する濃密な上澄み液
(１５０μｌ)とともに４℃で一夜インキュベートした。
プロテインＡ−セファロースＣＬ−４Ｂ(ファルマシ
ア、ウプサラ、スウェーデン)を３０ｍｇ／ｍｌに調製
した。マウスのすべてのサブクラスの結合を促進するた
め、プロテインＡ−セファロースをヤギ抗マウス免疫グ
ロブリン(Ｈ鎖およびＬ鎖)(オルガノン・テクニカ−カ
ッペル)(プロテインＡ−セファロース１５０ｍｇ当たり
２ｍｌ)でコーティングした。抽出物と抗体を入れた各
反応容器にプロテインＡ−セファロース(２００μｌ)を
加え、４℃で１時間インキュベートした。新たに調製し
たスタッフＡ緩衝液で試料を３回洗浄し、得られた免疫
複合体に還元試料緩衝液を加え、９０℃にて５分間加熱
した後、ＳＤＳ含有アクリルアミドゲルに適用した(実
施例８参照)。ゲルを固定化し、オートラジオグラフィ
ーのために処理した。放射性標識マーカーを加え、免疫
沈降したタンパク質の相対分子量を決定した。
【００６８】実施例１０ モノクローナル抗体の同定および特徴付け 免疫沈降実験での血清試験による測定によれば、腫瘍を
有するマウスは有意レベルの抗体を産生した。これらマ
ウスは、ｔｒｋ癌原遺伝子の１４０ｋｄおよび１１０ｋ
ｄ糖タンパク質を免疫沈降し得る抗体を産生した。応答
動物の脾臓を取り出し、上記のようにしてミエローマ株
と融合させた。全部で３回の融合で、プレーティングし
たウエルの４０％以上(全部で２１５０ウエル)が、光学
顕微鏡で識別可能なＨＡＴ抵抗性のクローンを産生し
た。抗体産生ハイブリドーマは、実施例５に記載のＥＬ
ＩＳＡ法により同定した。すべての上澄み液について、
Ｅ２５−４−２７株(＋ｔｒｋ癌原遺伝子)およびＥ２５
−３−２(陰性コントロール)から調製したｐ１００フラ
クションに対してスクリーニングした。
【００６９】Ｅ２５−４−２７株から調製した抽出物と
は陽性の反応を示すがｔｒｋ癌原遺伝子を発現しない同
一株から調製した抽出物とは反応しない上澄み液を取
り、プロト−ｔｒｋ糖タンパク質に特異的であるとし
た。８００以上の上澄み液のスクリーニングから、この
性質を有する１１のクローンを同定した。これら１１の
すべてのクローンは、拡張およびサブクローニング後も
そのような活性を示し続けた。抗体ハイブリドーマの名
称は、ＴＴＭまたはＴＵＭの接頭辞に対応数字を付した
ものであり(たとえば、ＴＴＭ７−４など)、サブクロー
ンは接尾辞 .１−.ｎで表した。対応モノクローナル抗
体(ＭａｂＴＴＭまたはＭａｂＴＵＭの接頭辞を付し
た；サブクローンにより産生された抗体は、上記のよう
な接尾辞 .１−.ｎで表した)のＨ鎖アイソタイプおよび
Ｌ鎖クラスを実施例６に記載のようにしてＥＬＩＳＡに
より決定した。このデータを表１に示した。
【００７０】すべてのモノクローナル抗体について、Ｅ
２５−４−２７抽出物中に存在するどの特定タンパク質
がこれらモノクローナル抗体と反応するかを決定するた
め分析した。Ｅ２５−４−２７およびＥ−２５−３−２
抽出物を用いた実施例８に記載のイムノブロット分析に
よれば、チロシンキナーゼドメインの１４末端アミノ酸
に対して調製したウサギ抗血清(１４０ｋｄおよび１１
０ｋｄの両癌原遺伝子ポリペプチドを検出した)とは対
照的に、これら抗体のいずれもイムノブロットしたタン
パク質を認識しないことがわかった。この方法は抗原の
変性を伴うので、これらモノクローナル抗体による認識
は、エピトープがタンパク質を天然の非変性立体配置で
認識していることを示唆している。プロト−ｔｒｋモノ
クローナル抗体が溶液中に遊離状態で存在するときに特
定タンパク質を認識する能力は、インビトロ標識細胞抽
出物を用いた免疫沈降プロトコールにより確認された。
すべての抗体が、ｔｒｋ癌原遺伝子含有細胞株Ｅ２５−
４−２７からの１４０ｋｄおよび１１０ｋｄプロト−ｔ
ｒｋ糖タンパク質のみを免疫沈降させた。最良の免疫沈
降抗体は、ＴＴＭ６−１３およびＴＴＭ７−４である。
【００７１】上記１１のモノクローナル抗体について、
α−２−マクログロブリン、β−ガラクトシダーゼおよ
びウシ血清アルブミンとの交差反応の程度を分析した。
これら精製タンパク質を実施例５に記載のようにしてポ
リスチレンプレートに吸着させた。これら抗体は、Ｅ２
５−４−２７細胞株からのｐ１００フラクション以外は
いずれのタンパク質とも特異的な反応を示さなかった。
【００７２】実施例１１ プロト−ｔｒｋモノクローナル抗体の性質 ｔｒｋ癌原遺伝子モノクローナル抗体のパネルは１４０
キロダルトンおよび１１０キロダルトンの癌原遺伝子糖
タンパク質に特異的であることが決定されたので、ｔｒ
ｋ癌原遺伝子に関連があることが知られているタンパク
質を実施例９に記載の免疫沈降により分析した。これら
本発明のモノクローナル抗体のいずれも、７０ｋｄのｔ
ｒｋ癌遺伝子タンパク質または１４５ｋｄおよび１２０
ｋｄのｔｒｋ Ｂ(ｔｒｋ関連マウスタンパク質)糖タン
パク質を免疫沈降させなかった。ツニカマイシン処理し
たｔｒｋ癌原遺伝子発現Ｅ２５−４−２７からのタンパ
ク質の免疫沈降は、上記モノクローナル抗体が、糖付加
していないｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質と結合せず沈降
させないことを示している。これらすべての場合におい
て、タンパク質の発現はマウス細胞株で行った。ｔｒｋ
癌原遺伝子を発現させるためにヒト骨肉腫細胞株である
ＨＯＳも用いたが、このタンパク質の発現レベルはＮＩ
Ｈ３Ｔ３トランスフェクション体に比べて有意に低かっ
た。記載したすべてのモノクローナル抗体は、ヒト細胞
中で発現させたときにヒトｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質
(１４０ｋｄ、１１０ｋｄ)を免疫沈降させることができ
る。
【００７３】オスカムらの「フリークエント・ジェネレ
ーション・オブ・オンコジーンズ・バイ・インビトロ・
リコンビネーション・オブ・ＴＲＫ・プロトオンコジー
ン・シークエンスィズ(Frequent generation of oncoge
nes by in vitro recombination of TRK protooncogene
sequences)」(Proc.Natl.Acad.Sci.USA８５：２９６４
〜２９６８[１９８８])およびクーリエらの「ヒューマン
・ｔｒｋ・オンコジーンズ・アクティベイテッド・バイ
・ポイント・ミューテーション、イン−フレイム・ディ
リーション・アンド・デュープリケーション・オブ・ザ
・タイロシン・キナーゼ・ドメイン(Human trk oncogen
es activated by point mutation,in-frame deletion a
nd duplication of the tyrosine kinase domain)」(Mol
ec.Cell.Biol.[１９９０]に提出)に記載の他のｔｒｋ癌
原遺伝子を、ｔｒｋ関連タンパク質を発現する細胞株か
ら調製した放射性標識抽出物の免疫沈降により分析し
た。
【００７４】特定ｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質(分子
量は既知生成物について示す)の免疫沈降の結果を表２
および表３にまとめて示す。いずれの抗体も、ｔｒｋ６
変異体によって発現されたタンパク質産物(糖付加して
いない６２ｋｄタンパク質)を認識しない。モノクロー
ナル抗体ＭａｂＴＴＭ１−８.１、ＭａｂＴＴＭ６−１
３.１、ＭａｂＴＴＭ６−４６.６、ＭａｂＴＴＭ６−５
０.２、ＭａｂＴＴＭ７−４.１、ＭａｂＴＴＭ７−４
１.１、ＭａｂＴＴＭ９−９.２およびＭａｂＴＴＭ９−
１２.１は、期待されるすべてのｔｒｋ関連癌遺伝子タ
ンパク質を免疫沈降させる。モノクローナル抗体Ｍａｂ
ＴＵＭ５−４７.５およびＭａｂＴＵＭ７−９.３１は、
幾つかの形質転換細胞からのｔｒｋ関連癌遺伝子タンパ
ク質を免疫沈降させる。
【００７５】実施例１２ モノクローナル抗体を用いたｔｒｋ癌原遺伝子の免疫化
学的局在化 ｔｒｋ癌原遺伝子の細胞内発現を局在化する能力につい
て、一群のモノクローナル抗体を調べた。８−チャンバ
ラブテック組織培養スライド(マイルズ・サイエンティ
フィック(Miles Scientific))中で約５０％集密まで増
殖させたＥ２５−４−２７(ｔｒｋ癌原遺伝子陽性)細胞
およびＥ２５−３−２(コントロール)細胞について、免
疫ペルオキシダーゼ染色を行った。これらスライドを、
カルシウム塩およびマグネシウム塩を添加した８５％リ
ン酸緩衝食塩水中で簡単に洗浄した。無水メタノールと
アセトンの１：１混合物をチャンバに加え、室温で１０
分間インキュベートした。固定剤を除き、ウエルを上記
ＰＢＳで３回洗浄した。
【００７６】ＰＢＳ中の５％ウシ血清アルブミンを用い
て室温で４５分間インキュベートすることにより、非特
異的結合をブロッキングした。ブロッキング溶液を吸引
し、ウエルを洗浄し、モノクローナル抗体を含有する細
胞培養上澄み液を加え、４°Ｃで一夜インキュベートし
た。上澄み液を吸引し、ウエルをＰＢＳで洗浄し、ＰＢ
Ｓ中で調製した西洋ワサビペルオキシダーゼ結合ヤギ抗
マウス免疫グロブリン(オルガノン・テクニカ−カッペ
ル、モールバン、ＰＡ)の１：２００倍希釈液とともに
室温で３時間インキュベートした。ジアミノベンジジン
(ＤＡＢ)含有基質(３０％過酸化水素を１μｌ／ｍｌ添
加したＰＢＳ中、０.３ｍｇ／ｍｌ)を添加する前に、ウ
エルをＰＢＳで３回洗浄した。すべてのモノクローナル
抗体が、強い染色反応をｔｒｋ−トランスフェクション
Ｅ２５−４−２７細胞に局在して示した。モノクローナ
ル抗体ＴＵＭ５−４７およびサブクローンは、コントロ
ールのＥ２５−３−２細胞で非常に低い染色を示した。
【００７７】
【表１】 表１(ｔｒｋ癌原遺伝子モノクローナル抗体の免疫化学的特徴付け) モノクローナル アイソタイプ 免疫反応性 抗体 Ｌ鎖 Ｈ鎖 イムノブロット 免疫沈降 140/110 Kd ＭａｂＴＴＭ１−８ κ γ１ − ＋ ＭａｂＴＴＭ６−１３ κ γ１ − ＋ ＭａｂＴＴＭ６−４６ κ γ２ｂ − ＋ ＭａｂＴＴＭ６−５０ κ γ１ − ＋ ＭａｂＴＴＭ７−４ κ γ１ − ＋ ＭａｂＴＴＭ７−４１ κ γ１ − ＋ ＭａｂＴＴＭ９−９ κ γ２ｂ − ＋ ＭａｂＴＴＭ９−１２ κ γ２ｂ − ＋ ＭａｂＴＵＭ５−４７ κ μ − ＋ ＭａｂＴＵＭ７−９ κ γ１ − ＋
【００７８】
【表２】
【表３】
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所 Ｃ１２Ｎ 15/06 Ｃ１２Ｐ 21/08 8214−4Ｂ Ｇ０１Ｎ 33/536 8310−2Ｊ 33/574 Ａ 9015−2Ｊ 33/577 Ｂ 9015−2Ｊ //(Ｃ１２Ｐ 21/08 Ｃ１２Ｒ 1:91）

Claims (22)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項１】 ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／ま
    たはｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質に結合するモノクロ
    ーナル抗体を産生するハイブリッド細胞株。
  2. 【請求項２】 ＴＴＭ７−４１またはそのサブクローン
    である請求項１に記載のハイブリッド細胞株。
  3. 【請求項３】 ＴＴＭ１−８、ＴＴＭ６−１３、ＴＴＭ
    ６−４６、ＴＴＭ６−５０、ＴＴＭ７−４１、ＴＴＭ９
    −９、ＴＴＭ９−１２、ＴＵＭ５−４７、ＴＵＭ７−９
    もしくはＴＵＭ１０−１４、またはそのサブクローンで
    あり、請求項１に記載のハイブリッド細胞株の同定特性
    を有するハイブリッド細胞株。
  4. 【請求項４】 請求項２または３に記載のハイブリッド
    細胞株により分泌されたモノクローナル抗体。
  5. 【請求項５】 請求項１に記載のハイブリッド細胞株に
    より分泌されたモノクローナル抗体。
  6. 【請求項６】 ＩｇＧおよびＩｇＭよりなる群から選ば
    れたものである請求項５に記載のモノクローナル抗体。
  7. 【請求項７】 請求項５に記載のモノクローナル抗体の
    フラグメント。
  8. 【請求項８】 ＭａｂＴＴＭ７−４１である請求項５に
    記載のモノクローナル抗体。
  9. 【請求項９】 ＭａｂＴＴＭ１−８、ＭａｂＴＴＭ６−
    １３、ＭａｂＴＴＭ６−４６、ＭａｂＴＴＭ６−５０、
    ＭａｂＴＴＭ７−４、ＭａｂＴＴＭ７−４１、ＭａｂＴ
    ＴＭ９−９、ＭａｂＴＴＭ９−１２、ＭａｂＴＵＭ５−
    ４７、ＭａｂＴＵＭ７−９もしくはＭａｂＴＵＭ１０−
    １４であり、請求項５に記載のモノクローナル抗体の同
    定特性を有するモノクローナル抗体。
  10. 【請求項１０】 誘導体化した請求項５、７、８または
    ９に記載のモノクローナル抗体。
  11. 【請求項１１】 放射性同位元素で標識した請求項１０
    に記載のモノクローナル抗体。
  12. 【請求項１２】 酵素に結合させた請求項１０に記載の
    モノクローナル抗体。
  13. 【請求項１３】 毒素を結合させた請求項１０に記載の
    モノクローナル抗体。
  14. 【請求項１４】 癌細胞の増殖を制限させ得る、または
    癌細胞を破壊し得る物質で誘導体化した、請求項１０に
    記載のモノクローナル抗体。
  15. 【請求項１５】 実質的に精製したものである請求項
    ５、７、８または９に記載のモノクローナル抗体。
  16. 【請求項１６】 試料中のｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質
    および／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質の存在を
    検出するためのイムノアッセイ法であって、(a)該ｔｒ
    ｋ癌原遺伝子タンパク質および／またはｔｒｋ関連癌遺
    伝子タンパク質に結合するモノクローナル抗体またはそ
    のフラグメントとともに試料をインキュベートし、つい
    で(b)該ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／またはｔ
    ｒｋ関連癌遺伝子タンパク質と該モノクローナル抗体ま
    たはそのフラグメントとによって生成した免疫複合体の
    存在を検出することを特徴とする方法。
  17. 【請求項１７】 試料中のｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質
    および／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質の量を定
    量的に決定するためのイムノアッセイ法であって、(a)
    該ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／またはｔｒｋ関
    連癌遺伝子タンパク質に結合するモノクローナル抗体ま
    たはそのフラグメントとともに試料をインキュベート
    し、(b)該ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／または
    ｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質と該モノクローナル抗体
    またはそのフラグメントとによって生成した免疫複合体
    の量を決定し、ついで(c)該生成した免疫複合体の量
    を、試料中に存在するｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質およ
    び／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質の量と相関さ
    せることを特徴とする方法。
  18. 【請求項１８】 ラジオイムノアッセイである請求項１
    ６または１７に記載のイムノアッセイ法。
  19. 【請求項１９】 エンザイムイムノアッセイである請求
    項１６または１７に記載のイムノアッセイ法。
  20. 【請求項２０】 請求項１３または１４に記載のモノク
    ローナル抗体を含有することを特徴とする癌治療剤。
  21. 【請求項２１】 (a)ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質およ
    び／またはｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質を含有する調
    製物を、ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／またはｔ
    ｒｋ関連癌遺伝子タンパク質に結合するモノクローナル
    抗体であって基体に結合させたものと接触させ、(b)該
    ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／またはｔｒｋ関連
    癌遺伝子タンパク質を該基体結合モノクローナル抗体に
    結合させ、(c)該基体結合モノクローナル抗体から未結
    合物質を除去し、ついで(d)該基体結合モノクローナル
    抗体から該ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／または
    ｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質を回収する、ことを特徴
    とする、ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／またはｔ
    ｒｋ関連癌遺伝子タンパク質の精製方法。
  22. 【請求項２２】 ｔｒｋ癌原遺伝子タンパク質および／
    またはｔｒｋ関連癌遺伝子タンパク質に結合するモノク
    ローナル抗体またはそのフラグメントであって造影剤と
    結合させたものを含有することを特徴とする、癌検出用
    剤。
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