JPH035797B2 - - Google Patents
Info
- Publication number
- JPH035797B2 JPH035797B2 JP60144561A JP14456185A JPH035797B2 JP H035797 B2 JPH035797 B2 JP H035797B2 JP 60144561 A JP60144561 A JP 60144561A JP 14456185 A JP14456185 A JP 14456185A JP H035797 B2 JPH035797 B2 JP H035797B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- plasmid
- dna
- ecor
- gene
- fragment
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
- 239000013612 plasmid Substances 0.000 claims description 71
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims description 51
- IXKSXJFAGXLQOQ-XISFHERQSA-N WHWLQLKPGQPMY Chemical compound C([C@@H](C(=O)N[C@@H](CC=1C2=CC=CC=C2NC=1)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](CCC(N)=O)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N1CCC[C@H]1C(=O)NCC(=O)N[C@@H](CCC(N)=O)C(=O)N[C@@H](CC(O)=O)C(=O)N1CCC[C@H]1C(=O)N[C@@H](CCSC)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC(O)=CC=1)C(O)=O)NC(=O)[C@@H](N)CC=1C2=CC=CC=C2NC=1)C1=CNC=N1 IXKSXJFAGXLQOQ-XISFHERQSA-N 0.000 claims description 32
- 238000011144 upstream manufacturing Methods 0.000 claims description 7
- 108700007698 Genetic Terminator Regions Proteins 0.000 claims description 5
- 108020005091 Replication Origin Proteins 0.000 claims description 5
- AVKUERGKIZMTKX-NJBDSQKTSA-N ampicillin Chemical compound C1([C@@H](N)C(=O)N[C@H]2[C@H]3SC([C@@H](N3C2=O)C(O)=O)(C)C)=CC=CC=C1 AVKUERGKIZMTKX-NJBDSQKTSA-N 0.000 claims description 5
- 229960000723 ampicillin Drugs 0.000 claims description 5
- 108010075344 Tryptophan synthase Proteins 0.000 claims description 3
- 108020004414 DNA Proteins 0.000 description 56
- 101000702488 Rattus norvegicus High affinity cationic amino acid transporter 1 Proteins 0.000 description 46
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 43
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 20
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 18
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 16
- QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol;hydron;chloride Chemical compound Cl.OCC(N)(CO)CO QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 15
- ISWSIDIOOBJBQZ-UHFFFAOYSA-N Phenol Chemical compound OC1=CC=CC=C1 ISWSIDIOOBJBQZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 14
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 description 12
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 12
- TWRXJAOTZQYOKJ-UHFFFAOYSA-L Magnesium chloride Chemical compound [Mg+2].[Cl-].[Cl-] TWRXJAOTZQYOKJ-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 10
- 235000014680 Saccharomyces cerevisiae Nutrition 0.000 description 10
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 10
- 102000003960 Ligases Human genes 0.000 description 9
- 108090000364 Ligases Proteins 0.000 description 9
- RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N Diethyl ether Chemical compound CCOCC RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 8
- CSNNHWWHGAXBCP-UHFFFAOYSA-L Magnesium sulfate Chemical compound [Mg+2].[O-][S+2]([O-])([O-])[O-] CSNNHWWHGAXBCP-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 8
- 238000005520 cutting process Methods 0.000 description 8
- 108091008146 restriction endonucleases Proteins 0.000 description 8
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 8
- 239000007984 Tris EDTA buffer Substances 0.000 description 7
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 7
- 101800005049 Beta-endorphin Proteins 0.000 description 5
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 description 5
- 241001131785 Escherichia coli HB101 Species 0.000 description 5
- 102100027467 Pro-opiomelanocortin Human genes 0.000 description 5
- WOPZMFQRCBYPJU-NTXHZHDSSA-N beta-endorphin Chemical compound C([C@@H](C(=O)N[C@@H](CCCCN)C(=O)N[C@@H](CC(N)=O)C(=O)N[C@@H](C)C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)CC)C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)CC)C(=O)N[C@@H](CCCCN)C(=O)N[C@@H](CC(N)=O)C(=O)N[C@@H](C)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC(O)=CC=1)C(=O)N[C@@H](CCCCN)C(=O)N[C@@H](CCCCN)C(=O)NCC(=O)N[C@@H](CCC(N)=O)C(O)=O)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@@H](NC(=O)[C@@H](NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@H]1N(CCC1)C(=O)[C@@H](NC(=O)[C@H](CCC(N)=O)NC(=O)[C@H](CO)NC(=O)[C@H](CCCCN)NC(=O)[C@H](CCC(N)=O)NC(=O)[C@H](CO)NC(=O)[C@@H](NC(=O)[C@H](CCSC)NC(=O)[C@H](CC=1C=CC=CC=1)NC(=O)CNC(=O)CNC(=O)[C@@H](N)CC=1C=CC(O)=CC=1)[C@@H](C)O)[C@@H](C)O)C(C)C)[C@@H](C)O)C1=CC=CC=C1 WOPZMFQRCBYPJU-NTXHZHDSSA-N 0.000 description 5
- 230000002759 chromosomal effect Effects 0.000 description 5
- VHJLVAABSRFDPM-QWWZWVQMSA-N dithiothreitol Chemical compound SC[C@@H](O)[C@H](O)CS VHJLVAABSRFDPM-QWWZWVQMSA-N 0.000 description 5
- 229910001629 magnesium chloride Inorganic materials 0.000 description 5
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 5
- 230000010076 replication Effects 0.000 description 5
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 5
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 5
- 238000009396 hybridization Methods 0.000 description 4
- 239000005457 ice water Substances 0.000 description 4
- 229910052943 magnesium sulfate Inorganic materials 0.000 description 4
- 235000019341 magnesium sulphate Nutrition 0.000 description 4
- 238000000034 method Methods 0.000 description 4
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 4
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 3
- 108091028043 Nucleic acid sequence Proteins 0.000 description 3
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- DBMJMQXJHONAFJ-UHFFFAOYSA-M Sodium laurylsulphate Chemical compound [Na+].CCCCCCCCCCCCOS([O-])(=O)=O DBMJMQXJHONAFJ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 238000003776 cleavage reaction Methods 0.000 description 3
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 3
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 3
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 3
- 239000002773 nucleotide Substances 0.000 description 3
- 125000003729 nucleotide group Chemical group 0.000 description 3
- 125000002467 phosphate group Chemical group [H]OP(=O)(O[H])O[*] 0.000 description 3
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 3
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 3
- 229920006395 saturated elastomer Polymers 0.000 description 3
- 230000007017 scission Effects 0.000 description 3
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 102000002260 Alkaline Phosphatase Human genes 0.000 description 2
- 108020004774 Alkaline Phosphatase Proteins 0.000 description 2
- UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L Calcium chloride Chemical compound [Cl-].[Cl-].[Ca+2] UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 2
- 102000016943 Muramidase Human genes 0.000 description 2
- 108010014251 Muramidase Proteins 0.000 description 2
- 108010062010 N-Acetylmuramoyl-L-alanine Amidase Proteins 0.000 description 2
- 101710163270 Nuclease Proteins 0.000 description 2
- 108091034117 Oligonucleotide Proteins 0.000 description 2
- 239000001888 Peptone Substances 0.000 description 2
- 108010080698 Peptones Proteins 0.000 description 2
- 108091000080 Phosphotransferase Proteins 0.000 description 2
- 241000582914 Saccharomyces uvarum Species 0.000 description 2
- VMHLLURERBWHNL-UHFFFAOYSA-M Sodium acetate Chemical compound [Na+].CC([O-])=O VMHLLURERBWHNL-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 229930006000 Sucrose Natural products 0.000 description 2
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N Sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 description 2
- 210000004899 c-terminal region Anatomy 0.000 description 2
- 229940041514 candida albicans extract Drugs 0.000 description 2
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 2
- 238000010276 construction Methods 0.000 description 2
- 238000000432 density-gradient centrifugation Methods 0.000 description 2
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 2
- 238000012869 ethanol precipitation Methods 0.000 description 2
- 239000000284 extract Substances 0.000 description 2
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 2
- 239000004325 lysozyme Substances 0.000 description 2
- 229960000274 lysozyme Drugs 0.000 description 2
- 235000010335 lysozyme Nutrition 0.000 description 2
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 2
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 2
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 description 2
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 description 2
- 150000007523 nucleic acids Chemical class 0.000 description 2
- 235000019319 peptone Nutrition 0.000 description 2
- 102000020233 phosphotransferase Human genes 0.000 description 2
- 239000013600 plasmid vector Substances 0.000 description 2
- 239000000047 product Substances 0.000 description 2
- 230000006798 recombination Effects 0.000 description 2
- 238000005215 recombination Methods 0.000 description 2
- 238000011160 research Methods 0.000 description 2
- 239000013606 secretion vector Substances 0.000 description 2
- 239000001632 sodium acetate Substances 0.000 description 2
- 235000017281 sodium acetate Nutrition 0.000 description 2
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 2
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 description 2
- 238000013519 translation Methods 0.000 description 2
- 239000012138 yeast extract Substances 0.000 description 2
- 239000007222 ypd medium Substances 0.000 description 2
- DGVVWUTYPXICAM-UHFFFAOYSA-N β‐Mercaptoethanol Chemical compound OCCS DGVVWUTYPXICAM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- ZKHQWZAMYRWXGA-KQYNXXCUSA-J ATP(4-) Chemical compound C1=NC=2C(N)=NC=NC=2N1[C@@H]1O[C@H](COP([O-])(=O)OP([O-])(=O)OP([O-])([O-])=O)[C@@H](O)[C@H]1O ZKHQWZAMYRWXGA-KQYNXXCUSA-J 0.000 description 1
- ZKHQWZAMYRWXGA-UHFFFAOYSA-N Adenosine triphosphate Natural products C1=NC=2C(N)=NC=NC=2N1C1OC(COP(O)(=O)OP(O)(=O)OP(O)(O)=O)C(O)C1O ZKHQWZAMYRWXGA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 1
- 102000053602 DNA Human genes 0.000 description 1
- 102000012410 DNA Ligases Human genes 0.000 description 1
- 108010061982 DNA Ligases Proteins 0.000 description 1
- 101500024092 Homo sapiens Beta-endorphin Proteins 0.000 description 1
- 108020002230 Pancreatic Ribonuclease Proteins 0.000 description 1
- 102000005891 Pancreatic ribonuclease Human genes 0.000 description 1
- 108091005804 Peptidases Proteins 0.000 description 1
- 102000035195 Peptidases Human genes 0.000 description 1
- 108010059712 Pronase Proteins 0.000 description 1
- 239000004365 Protease Substances 0.000 description 1
- 241000235070 Saccharomyces Species 0.000 description 1
- TTWYZDPBDWHJOR-IDIVVRGQSA-L adenosine triphosphate disodium Chemical compound [Na+].[Na+].C1=NC=2C(N)=NC=NC=2N1[C@@H]1O[C@H](COP(O)(=O)OP(O)(=O)OP([O-])([O-])=O)[C@@H](O)[C@H]1O TTWYZDPBDWHJOR-IDIVVRGQSA-L 0.000 description 1
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- 230000010310 bacterial transformation Effects 0.000 description 1
- 239000001110 calcium chloride Substances 0.000 description 1
- 229910001628 calcium chloride Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 1
- 210000000170 cell membrane Anatomy 0.000 description 1
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 1
- 210000002421 cell wall Anatomy 0.000 description 1
- 238000012258 culturing Methods 0.000 description 1
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 1
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 1
- 238000011049 filling Methods 0.000 description 1
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 1
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 1
- 239000012145 high-salt buffer Substances 0.000 description 1
- 230000003834 intracellular effect Effects 0.000 description 1
- 238000011835 investigation Methods 0.000 description 1
- XIXADJRWDQXREU-UHFFFAOYSA-M lithium acetate Chemical compound [Li+].CC([O-])=O XIXADJRWDQXREU-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 230000026731 phosphorylation Effects 0.000 description 1
- 238000006366 phosphorylation reaction Methods 0.000 description 1
- 229940057838 polyethylene glycol 4000 Drugs 0.000 description 1
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 1
- 239000002994 raw material Substances 0.000 description 1
- 230000003248 secreting effect Effects 0.000 description 1
- 230000028327 secretion Effects 0.000 description 1
- 125000006850 spacer group Chemical group 0.000 description 1
- 239000002344 surface layer Substances 0.000 description 1
- 230000009466 transformation Effects 0.000 description 1
- 210000005253 yeast cell Anatomy 0.000 description 1
- NWONKYPBYAMBJT-UHFFFAOYSA-L zinc sulfate Chemical compound [Zn+2].[O-]S([O-])(=O)=O NWONKYPBYAMBJT-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 229960001763 zinc sulfate Drugs 0.000 description 1
- 229910000368 zinc sulfate Inorganic materials 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
- C12N15/80—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for fungi
- C12N15/81—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for fungi for yeasts
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Mycology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biophysics (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は複合プラスミドに関するものである。
とくに分泌ベクターとして有用な複合プラスミド
に関するものである。
とくに分泌ベクターとして有用な複合プラスミド
に関するものである。
(発明の構成)
酵母は、細胞の構造や機能が高等生物の特徴を
備え、また、食品、医薬品、飼料等の原料とし
て、人間の日常生活と深い係わり合いを持つ有用
な微生物であり、遺伝子工学に於ける宿主として
の開発が期待されている。
備え、また、食品、医薬品、飼料等の原料とし
て、人間の日常生活と深い係わり合いを持つ有用
な微生物であり、遺伝子工学に於ける宿主として
の開発が期待されている。
しかし、酵母の細胞表層は、細胞膜の外側に強
固な細胞壁を有するため、遺伝子組換え技術によ
つて生産された有用物質(異種蛋白質)の精製が
困難な場合が多く、精製を簡略化するために、生
産物を菌体外に分泌させる系の開発が望まれてい
る。また、分泌生産は連続培養が可能となり、大
幅な生産量の増加が期待され、更に菌体内プロテ
アーゼによる生産物の分解が防止される等そのメ
リツトは大きい。
固な細胞壁を有するため、遺伝子組換え技術によ
つて生産された有用物質(異種蛋白質)の精製が
困難な場合が多く、精製を簡略化するために、生
産物を菌体外に分泌させる系の開発が望まれてい
る。また、分泌生産は連続培養が可能となり、大
幅な生産量の増加が期待され、更に菌体内プロテ
アーゼによる生産物の分解が防止される等そのメ
リツトは大きい。
従来酵母サツカロマイセス・セレビシエのα因
子の遺伝子が検討され、その配列が解明されてい
る[Cell、30巻、933−943頁(1982)]。本発明者
等は、酵母を宿主とする遺伝子組換え技術におい
て、菌体内で生産された有用物質を効率よく分泌
させることのできるプラスミドベクターを得るこ
とを目的として検討中のところ、サツカロマイセ
ス・ウバルムα因子遺伝子配列を解明し、この知
見に基づいて更に検討の結果、ウバルムα因子遺
伝子のプロモーター及びリーダー配列を所望の蛋
白質をコードする外来遺伝子(構造遺伝子)の上
流に連結したプラスミドを調製して適当な宿主中
で発現させた場合、目的とする蛋白質を効果的に
分泌させることができることを見出し本発明を達
成した。即ち、本発明の要旨は、構造遺伝子の上
流にサツカロマイセス・ウバルムα因子遺伝子の
プロモーター配列及びリーダー領域をコードする
配列を連結し、構造遺伝子の下流にサツカロマイ
セス・セレビシエα因子遺伝子のターミネーター
配列を連結し、かつプラスミドpBR322のアンピ
シリン耐性遺伝子及び複製開始点を含む領域、
2μmプラスミドの複製開始点を含む領域並びにサ
ツカロマイセス・セレビシエのトリプトフアン合
成酵素遺伝子を含む領域を含有してなる複合プラ
スミドに存する。
子の遺伝子が検討され、その配列が解明されてい
る[Cell、30巻、933−943頁(1982)]。本発明者
等は、酵母を宿主とする遺伝子組換え技術におい
て、菌体内で生産された有用物質を効率よく分泌
させることのできるプラスミドベクターを得るこ
とを目的として検討中のところ、サツカロマイセ
ス・ウバルムα因子遺伝子配列を解明し、この知
見に基づいて更に検討の結果、ウバルムα因子遺
伝子のプロモーター及びリーダー配列を所望の蛋
白質をコードする外来遺伝子(構造遺伝子)の上
流に連結したプラスミドを調製して適当な宿主中
で発現させた場合、目的とする蛋白質を効果的に
分泌させることができることを見出し本発明を達
成した。即ち、本発明の要旨は、構造遺伝子の上
流にサツカロマイセス・ウバルムα因子遺伝子の
プロモーター配列及びリーダー領域をコードする
配列を連結し、構造遺伝子の下流にサツカロマイ
セス・セレビシエα因子遺伝子のターミネーター
配列を連結し、かつプラスミドpBR322のアンピ
シリン耐性遺伝子及び複製開始点を含む領域、
2μmプラスミドの複製開始点を含む領域並びにサ
ツカロマイセス・セレビシエのトリプトフアン合
成酵素遺伝子を含む領域を含有してなる複合プラ
スミドに存する。
本発明を詳細に説明するに、本発明に於けるα
因子遺伝子は、酵母サツカロマイセス・ウバルム
株(Saccharomyces uvarum、IFO 0751)由来
のものであり、サツカロマイセス・ウバルムの染
色体遺伝子から単離することができる。
因子遺伝子は、酵母サツカロマイセス・ウバルム
株(Saccharomyces uvarum、IFO 0751)由来
のものであり、サツカロマイセス・ウバルムの染
色体遺伝子から単離することができる。
本発明者等は、サツカロマイセス・ウバルムの
α因子遺伝子配列を解明した結果、前記Cell、30
巻、937頁(1982)に記載されているセレビシエ
のα因子遺伝子配列では、63塩基対からなるスペ
ーサーと成熟α因子の単位が4回の繰り返しから
なるに対して、ウバルムでは同単位が3回の繰り
返しからなる点において相違することが判明し
た。
α因子遺伝子配列を解明した結果、前記Cell、30
巻、937頁(1982)に記載されているセレビシエ
のα因子遺伝子配列では、63塩基対からなるスペ
ーサーと成熟α因子の単位が4回の繰り返しから
なるに対して、ウバルムでは同単位が3回の繰り
返しからなる点において相違することが判明し
た。
更にサツカロマイセス・ウバルムのα因子遺伝
子と、前記文献記載のサツカロマイセス・セレビ
シエα因子遺伝子とは、塩基配列において13塩基
対の相違があることが判明した。即ち、前記
Cell、30巻、937頁(1982)に記載されているセ
レビシエのα因子遺伝子配列における翻訳領域の
上流−40番目Cと−41番目Aの間に、ウバルムで
はAが挿入されている。またセレビシエの翻訳領
域の上流−74番目及び−47番目の塩基は夫々T及
びAであるのに対し、これと対応するウバルムの
翻訳領域の上流−75番目及び−48番目の塩基はど
ちらもCである。またセレビシエの翻訳領域中の
+90番目、+125番目、+126番目、+288番目、+372
番目、+403番目、+414番目及び+435番目の塩基
は夫々G、C、A、A、A、C、G及びAである
のに対し、これに対応するウバルムの翻訳領域中
の+90番目、+125番目、+126番目、288番目、+
309番目、+340番目、+351番目及び+372番目の塩
基は夫々C、T、G、G、G、T、A及びGであ
る。更にセレビシエの翻訳領域の下流+505番目
及び+594番目の塩基はどちらもCであるが、こ
れと対応するウバルムの翻訳領域の下流+442番
目及び+531番目の塩基はどちらもTである。
子と、前記文献記載のサツカロマイセス・セレビ
シエα因子遺伝子とは、塩基配列において13塩基
対の相違があることが判明した。即ち、前記
Cell、30巻、937頁(1982)に記載されているセ
レビシエのα因子遺伝子配列における翻訳領域の
上流−40番目Cと−41番目Aの間に、ウバルムで
はAが挿入されている。またセレビシエの翻訳領
域の上流−74番目及び−47番目の塩基は夫々T及
びAであるのに対し、これと対応するウバルムの
翻訳領域の上流−75番目及び−48番目の塩基はど
ちらもCである。またセレビシエの翻訳領域中の
+90番目、+125番目、+126番目、+288番目、+372
番目、+403番目、+414番目及び+435番目の塩基
は夫々G、C、A、A、A、C、G及びAである
のに対し、これに対応するウバルムの翻訳領域中
の+90番目、+125番目、+126番目、288番目、+
309番目、+340番目、+351番目及び+372番目の塩
基は夫々C、T、G、G、G、T、A及びGであ
る。更にセレビシエの翻訳領域の下流+505番目
及び+594番目の塩基はどちらもCであるが、こ
れと対応するウバルムの翻訳領域の下流+442番
目及び+531番目の塩基はどちらもTである。
更に、適当なプラスミド・ベクター上におい
て、サツカロマイセス・ウバルムα因子遺伝子の
主要部を占める、プロモーター配列及びリーダー
配列の後に、所望の蛋白質をコードする外来遺伝
子を挿入して宿主中で発現させた場合、目的とす
る蛋白質を効率よく分泌させることができること
が判明した。
て、サツカロマイセス・ウバルムα因子遺伝子の
主要部を占める、プロモーター配列及びリーダー
配列の後に、所望の蛋白質をコードする外来遺伝
子を挿入して宿主中で発現させた場合、目的とす
る蛋白質を効率よく分泌させることができること
が判明した。
以下に、サツカロマイセス・ウバルムのα因子
遺伝子の単離、及びヒトのβ−エンドルフイン遺
伝子(以下βE DNAという)をマーカーとして
使用し、このα因子遺伝子のプロモーター配列及
び、リーダー領域をコードする配列をβE DNA
の上流に連結し、βE DNAの下流にセレビシエ
α因子遺伝子のターミネーター配列を連結し、か
つpBR322のアンピシリン耐性遺伝子(Apr)及
び複製開始点(ori)を含む領域、2μmの複製開
始点を含む領域並びにセレビシエのトリプトフア
ン合成酵素遺伝子(TRP1)を含む領域を含ん
だ、本発明の複合プラスミドの調製法と有用性に
ついて詳細に説明する。
遺伝子の単離、及びヒトのβ−エンドルフイン遺
伝子(以下βE DNAという)をマーカーとして
使用し、このα因子遺伝子のプロモーター配列及
び、リーダー領域をコードする配列をβE DNA
の上流に連結し、βE DNAの下流にセレビシエ
α因子遺伝子のターミネーター配列を連結し、か
つpBR322のアンピシリン耐性遺伝子(Apr)及
び複製開始点(ori)を含む領域、2μmの複製開
始点を含む領域並びにセレビシエのトリプトフア
ン合成酵素遺伝子(TRP1)を含む領域を含ん
だ、本発明の複合プラスミドの調製法と有用性に
ついて詳細に説明する。
[α因子を含む遺伝子の単離]
プラスミドpLS05(4.3kb)の調製
詳細は後記実施例に記載するが、サツカロマイ
セス・ウバルムの染色体遺伝子をEcoRで切断
し、2kb前後のDNA断片をプラスミドpUC13
(Pharmacia社カタログ、P−LBiochemicals、
27頁、27−4973記載)のEcoR部位に挿入して、
大腸菌を形質転換し、挿入DNAを含む白色のコ
ロニーを集め、サツカロマイセス・セレビシエの
α因子遺伝子MFα1及びMFα2と相同な下記の16
塩基のヌクレオチド 5〓GGCCAACCAATGTACT3〓 (α因子のC末端側の−Gly−Gln−Pro−Met
−Tyrに相当する) をプローブとしてコロニーハイブリダイゼーシヨ
ンを行ない、陽性のコロニーを選択択する。次い
で、プラスミドDNAを分離し、サツカロマイセ
ス・ウバルムのα因子遺伝子を含むプラスミド
pLS05(4.3kb)を選択採取する。
セス・ウバルムの染色体遺伝子をEcoRで切断
し、2kb前後のDNA断片をプラスミドpUC13
(Pharmacia社カタログ、P−LBiochemicals、
27頁、27−4973記載)のEcoR部位に挿入して、
大腸菌を形質転換し、挿入DNAを含む白色のコ
ロニーを集め、サツカロマイセス・セレビシエの
α因子遺伝子MFα1及びMFα2と相同な下記の16
塩基のヌクレオチド 5〓GGCCAACCAATGTACT3〓 (α因子のC末端側の−Gly−Gln−Pro−Met
−Tyrに相当する) をプローブとしてコロニーハイブリダイゼーシヨ
ンを行ない、陽性のコロニーを選択択する。次い
で、プラスミドDNAを分離し、サツカロマイセ
ス・ウバルムのα因子遺伝子を含むプラスミド
pLS05(4.3kb)を選択採取する。
このプラスミドをEcoRで切断することによ
り、α因子を含む遺伝子(1.6kb)が得られる
(第1図参照)。
り、α因子を含む遺伝子(1.6kb)が得られる
(第1図参照)。
[分泌ベクターの構築]
(1)サツカロマイセス・セレビシエのα因子遺伝子
を含むプラスミドpLSOl(4.4kb)の調製 酵母サツカロマイセス・セレビシエの染色体遺
伝子をEcoRで切断し、2kb前後のDNA断片を
プラスミドpUC13(Pharmacia社カタログ、P−
L Biochemicals、27頁、27−4973記載)の
EcoR部位に挿入して、大腸菌を形質転換し、
挿入DNAを含む白色のコロニーを集め、上記酵
母のα因子遺伝子MFα1及びMFα2と相同な下記
の16塩基のヌクレオチド 5GGCCAACCAATGTACT3 (α因子のC末端側の−Gly−Gln−Pro−Met
−Tyrに相当する) をプローブとして、コロニーハイブリダイゼーシ
ヨンを行ない、陽性のコロニーを選択する。
を含むプラスミドpLSOl(4.4kb)の調製 酵母サツカロマイセス・セレビシエの染色体遺
伝子をEcoRで切断し、2kb前後のDNA断片を
プラスミドpUC13(Pharmacia社カタログ、P−
L Biochemicals、27頁、27−4973記載)の
EcoR部位に挿入して、大腸菌を形質転換し、
挿入DNAを含む白色のコロニーを集め、上記酵
母のα因子遺伝子MFα1及びMFα2と相同な下記
の16塩基のヌクレオチド 5GGCCAACCAATGTACT3 (α因子のC末端側の−Gly−Gln−Pro−Met
−Tyrに相当する) をプローブとして、コロニーハイブリダイゼーシ
ヨンを行ない、陽性のコロニーを選択する。
次いでプラスミドDNAを分離して、サツカロ
マイセス・セレビシエのα因子遺伝子を含むプラ
スミドpLSO1(4.4kb)を選択採取する。
マイセス・セレビシエのα因子遺伝子を含むプラ
スミドpLSO1(4.4kb)を選択採取する。
(2) プラスミドpREl032(5.8kb)の調製
プラスミドYRp7[5.7kb、酵母のTRP1を含む
DNA断片とpBR322を結合したプラスミド、
Nature、282巻、39〜43頁(1979)記載]を
EcoRで部分切断し粘着末端を充填した後、連
結してYRp7の一方のEcoRサイトが除去され
たpREl032(5.8kb)を調製する。
DNA断片とpBR322を結合したプラスミド、
Nature、282巻、39〜43頁(1979)記載]を
EcoRで部分切断し粘着末端を充填した後、連
結してYRp7の一方のEcoRサイトが除去され
たpREl032(5.8kb)を調製する。
(3) プラスミドpUC8−βE(2.9kb)の調製
プラスミド pYT3−24[特開昭58−92696号公
報、2頁記載、βE DNAを含む]をHaeで切
断して、βEDNA(93bp)を含む160bpのHae〜
Hae断片を採取する。
報、2頁記載、βE DNAを含む]をHaeで切
断して、βEDNA(93bp)を含む160bpのHae〜
Hae断片を採取する。
一方、フアージM13mp7(Nucleic Acids
Research9巻、309〜321頁記載)のRF DNA
(二本鎖DNA)をHincで切断し、エタノール
に溶解するHinc〜Hinc断片
5′GACCTGCAGGTC3を除いたHinc部位
に、上記βEDNAを含む160bpのDNA断片を連結
し大腸菌を形質転換した。形質転換株からRF
DNAを調製し、これをBamHで切断して
得られた172bpのBamH〜BamH断片を、プ
ラスミドpUC8[Bethesda Research
Laboratories,lnc.発行のBRLカタログ
(August 1,1983)、Cat/No.5359SA記載]の
BamHサイトに挿入してpUC8−βE(2.9kb)を
得る。
Research9巻、309〜321頁記載)のRF DNA
(二本鎖DNA)をHincで切断し、エタノール
に溶解するHinc〜Hinc断片
5′GACCTGCAGGTC3を除いたHinc部位
に、上記βEDNAを含む160bpのDNA断片を連結
し大腸菌を形質転換した。形質転換株からRF
DNAを調製し、これをBamHで切断して
得られた172bpのBamH〜BamH断片を、プ
ラスミドpUC8[Bethesda Research
Laboratories,lnc.発行のBRLカタログ
(August 1,1983)、Cat/No.5359SA記載]の
BamHサイトに挿入してpUC8−βE(2.9kb)を
得る。
(4) プラスミド pREl046(7.4kb)の調製
pLSO1(4.4kb)の、プロモーター及びリーダ
ー配列を含むEcoR〜Hind(1.4kb)とpUC8
−βE(2.9kb)のHind〜EcR断片(0.2kb、
βE DNAを含む)とを、pREl032(5.8kb)の
EcoR切断部位に連結してpREl046(7.4kb)を
得る。(第2図参照) (5) プラスミドpREl052(5.2kb)の調製 pREl032(5.8kb)のTRP1を含むEcoR〜Pst
断片(0.8kb)と、2μmプラスミドの複製開始
点を含むPst〜EcoR断片(2kb)と、
pBR322のPvu〜EcoR断片(2.3kb)とを、
連結してpREl051(5.1kb)を作製した後EcoR
で部分切断し、粘着末端を充填後連結して、
pREl051の一方のEcoR切断部位を欠いた
pREl052(5.2kb)を得た。(第3図参照) (6) プラスミドpREl059(6.8kb)の調製 前記(4)で得たpREl046のプロモーター配列、 リーダー配列及びβE DNA配列を含むEcoR
〜Sma断片(1.6kb)と、pLS01(4.4kb)の、
ターミネーター配列を含むHinc〜EcoR断片
(0.3kb)とを採取する。
ー配列を含むEcoR〜Hind(1.4kb)とpUC8
−βE(2.9kb)のHind〜EcR断片(0.2kb、
βE DNAを含む)とを、pREl032(5.8kb)の
EcoR切断部位に連結してpREl046(7.4kb)を
得る。(第2図参照) (5) プラスミドpREl052(5.2kb)の調製 pREl032(5.8kb)のTRP1を含むEcoR〜Pst
断片(0.8kb)と、2μmプラスミドの複製開始
点を含むPst〜EcoR断片(2kb)と、
pBR322のPvu〜EcoR断片(2.3kb)とを、
連結してpREl051(5.1kb)を作製した後EcoR
で部分切断し、粘着末端を充填後連結して、
pREl051の一方のEcoR切断部位を欠いた
pREl052(5.2kb)を得た。(第3図参照) (6) プラスミドpREl059(6.8kb)の調製 前記(4)で得たpREl046のプロモーター配列、 リーダー配列及びβE DNA配列を含むEcoR
〜Sma断片(1.6kb)と、pLS01(4.4kb)の、
ターミネーター配列を含むHinc〜EcoR断片
(0.3kb)とを採取する。
一方、pREl052(5.2kb)をEcoRで切断し、
次いでバクテリアルアルカリンフオスフアターゼ
(Bacterial alkaline phosphatase,BAP)を加
えて末端のリン酸基を外した後、これを、上記二
つのDNA断片と連結してプラスミドpREl059
(6.8kb)を得る。(第4図参照) (7) プラスミドpREl085(6.8kb)の調製 pREl059をEcoR及びAatで切断して得ら
れるEcoR〜Aat断片、pREl059をHind及
びAatで切断して得られるHind〜Aat断片
並びに、pLS05をEcoR及びHindで切断して
得られるEcoR〜Hind断片の3種のDNA断
片を連結してβE DNAの上流にウバルムα因子
遺伝子のプロモーター配列及びリーダー領域をコ
ードする配列が連結され、βE DNAの下流にセ
レビシエα因子遺伝子のターミネーター配列が連
結され、かつプラスミドpBR322のApr及びori、
2μmプラスミドの複製開始点並びにセレビシエの
TRP1を含むプラスミドpREl085(6.8kb)を得
る。(第5図参照) (発明の効果) プラスミドpREl085は、βE DNA配列を、第
1図に示す本発明のサツカロマイセス・ウバルム
α因子遺伝子のプロモーター配列及びリーダー配
列(1.1kb)の後に挿入したものである。このプ
ラスミドを、例えば、酵母サツカロマイセス・セ
レビシエYNN27株に導入し、形質転換株を培養
すると、後記実施例に示すように、高い効率でβ
−エンドルフインを培養液中に分泌させることが
できる。
次いでバクテリアルアルカリンフオスフアターゼ
(Bacterial alkaline phosphatase,BAP)を加
えて末端のリン酸基を外した後、これを、上記二
つのDNA断片と連結してプラスミドpREl059
(6.8kb)を得る。(第4図参照) (7) プラスミドpREl085(6.8kb)の調製 pREl059をEcoR及びAatで切断して得ら
れるEcoR〜Aat断片、pREl059をHind及
びAatで切断して得られるHind〜Aat断片
並びに、pLS05をEcoR及びHindで切断して
得られるEcoR〜Hind断片の3種のDNA断
片を連結してβE DNAの上流にウバルムα因子
遺伝子のプロモーター配列及びリーダー領域をコ
ードする配列が連結され、βE DNAの下流にセ
レビシエα因子遺伝子のターミネーター配列が連
結され、かつプラスミドpBR322のApr及びori、
2μmプラスミドの複製開始点並びにセレビシエの
TRP1を含むプラスミドpREl085(6.8kb)を得
る。(第5図参照) (発明の効果) プラスミドpREl085は、βE DNA配列を、第
1図に示す本発明のサツカロマイセス・ウバルム
α因子遺伝子のプロモーター配列及びリーダー配
列(1.1kb)の後に挿入したものである。このプ
ラスミドを、例えば、酵母サツカロマイセス・セ
レビシエYNN27株に導入し、形質転換株を培養
すると、後記実施例に示すように、高い効率でβ
−エンドルフインを培養液中に分泌させることが
できる。
(実施例)
以下に実施例を挙げて、本発明を更に詳細に説
明する。
明する。
なお、以下の実施例における操作は、特に記載
する場合を除き、次の〜の方法によつた。
する場合を除き、次の〜の方法によつた。
[制限酵素によるDNAの切断と回収]
制限酵素による切断用緩衝液は、下記4種類を
用い(1)〜(3)の使い分けは、Advanced Bacterial
Genetics(1981)(Cold spring Harbor,New
York)に従つた。また切断条件は、2単位/
μgDNAの制限酵素を用い、37℃または65℃、30
分間処理する。
用い(1)〜(3)の使い分けは、Advanced Bacterial
Genetics(1981)(Cold spring Harbor,New
York)に従つた。また切断条件は、2単位/
μgDNAの制限酵素を用い、37℃または65℃、30
分間処理する。
次いで、TE緩衝液(10mMのトリス塩酸PH8.0
及び1mMのEDTAからなる)で飽和したフエノ
ールで1回抽出し、エーテルでフエノールを除
き、2倍容のエタノールを加えて−20℃で30分間
放置した後、遠心分離してDNAを回収する。
及び1mMのEDTAからなる)で飽和したフエノ
ールで1回抽出し、エーテルでフエノールを除
き、2倍容のエタノールを加えて−20℃で30分間
放置した後、遠心分離してDNAを回収する。
(1) 低塩濃度緩衝液
10mMのトリス塩酸(PH7.4),10mMの硫酸マ
グネシウム及び1mMのジチオスレイトールから
なる。
グネシウム及び1mMのジチオスレイトールから
なる。
(2) 中塩濃度緩衝液
50mMのNaCl、10mMのトリス塩酸(PH7.4)
10mMの硫酸マグネシウム及び1mMのジチオス
レイトールからなる。
10mMの硫酸マグネシウム及び1mMのジチオス
レイトールからなる。
(3) 高塩濃度緩衝液
100mMのNaCl、50mMのトリス塩酸(PH7.4)
及び10mMの硫酸マグネシウムからなる。
及び10mMの硫酸マグネシウムからなる。
(4) 制限酵素Sma用緩衝液
20mMのKCl、10mMのトリス塩酸(PH8.0),
10mMの硫酸マグネシウム及び1mMのジチオス
レイトールからなる。
10mMの硫酸マグネシウム及び1mMのジチオス
レイトールからなる。
[大腸菌(E.coli)HB101からのプラスミド
DNAの調製] (1)ミニ調製法(mini prep法)Nucleic Acids
Res.7巻、1513〜1523頁(1979)] 大腸菌HB101を宿主とし、0.5mlのL−ブロス
(10gのペプトン、5gのイースト・エキス、1
gのグルコース、5gのNaCl/1からなるPH
7.2)を用いて一夜間培養し、遠心分離して集菌
した菌体を、100μlの溶液A(50mMのグルコー
ス、10mMのEDTA、25mMのトリス塩酸(PH
8.0)及びリゾチーム2mg/mlからなる)に懸濁
し室温で30分間放置する。
DNAの調製] (1)ミニ調製法(mini prep法)Nucleic Acids
Res.7巻、1513〜1523頁(1979)] 大腸菌HB101を宿主とし、0.5mlのL−ブロス
(10gのペプトン、5gのイースト・エキス、1
gのグルコース、5gのNaCl/1からなるPH
7.2)を用いて一夜間培養し、遠心分離して集菌
した菌体を、100μlの溶液A(50mMのグルコー
ス、10mMのEDTA、25mMのトリス塩酸(PH
8.0)及びリゾチーム2mg/mlからなる)に懸濁
し室温で30分間放置する。
次いで氷水中で200μlの溶液B[1%のSDS(ド
デシル硫酸ナトリウム)を含む0.2NのNaOH]
を加えて振盪してし、同時にDNAの変性を行う。
150μlの3M酢酸ソーダ溶液を加え氷冷後、遠心分
離し、上清に冷エタノールを加え、−20℃に冷却
して遠心分離し、沈澱を集める。
デシル硫酸ナトリウム)を含む0.2NのNaOH]
を加えて振盪してし、同時にDNAの変性を行う。
150μlの3M酢酸ソーダ溶液を加え氷冷後、遠心分
離し、上清に冷エタノールを加え、−20℃に冷却
して遠心分離し、沈澱を集める。
沈澱を、溶液C(50mMのトリス塩酸及び0.1M
の酢酸ソーダからなる)に溶解し、不溶物を除去
後、冷エタノールを加え、沈澱するDNAを洗浄
し、減圧下乾燥し−20℃で保存する。
の酢酸ソーダからなる)に溶解し、不溶物を除去
後、冷エタノールを加え、沈澱するDNAを洗浄
し、減圧下乾燥し−20℃で保存する。
(2) 大量調製法
200mlのL−ブロス(薬剤耐性プラスミドの場
合は薬剤を含む)に大腸菌HB101を植菌し、一
夜間培養し、集菌後、15mlのSTES緩衝液[TES
緩衝液(10mMのトリス塩酸(PH7.4),1mMの
EDTA及び50mMのNaClからなる)に25%のサ
ツカロースを添加したもの]に懸濁し、EDTA、
リゾチーム及びリボヌクレアーゼA(シグマ社製)
を夫々30mM、600μg/ml及び50μg/ml加え、
更に氷水中でプロナーゼEを500μg/ml添加す
る。次いで、SDSを1%となるように加え、37℃
で振盪し、氷水中に戻し、NaClを終濃度1Mとな
るように添加した後、遠心分離し、上清に、2倍
容の冷エタノールを加え、−20℃に保持し遠心分
離してDNAを沈澱として回収し、減圧下乾燥し、
−20℃で保存する。
合は薬剤を含む)に大腸菌HB101を植菌し、一
夜間培養し、集菌後、15mlのSTES緩衝液[TES
緩衝液(10mMのトリス塩酸(PH7.4),1mMの
EDTA及び50mMのNaClからなる)に25%のサ
ツカロースを添加したもの]に懸濁し、EDTA、
リゾチーム及びリボヌクレアーゼA(シグマ社製)
を夫々30mM、600μg/ml及び50μg/ml加え、
更に氷水中でプロナーゼEを500μg/ml添加す
る。次いで、SDSを1%となるように加え、37℃
で振盪し、氷水中に戻し、NaClを終濃度1Mとな
るように添加した後、遠心分離し、上清に、2倍
容の冷エタノールを加え、−20℃に保持し遠心分
離してDNAを沈澱として回収し、減圧下乾燥し、
−20℃で保存する。
[T4 DNAリガーゼによる連結]
連結する2個のDNA断片は、1μg/10μlにな
るように、連結用緩衝液[66mMのトリス塩酸
(PH7.5)、6.6mMの塩化マグネシウム、10mMの
ジチオスレイトールからなる]に溶解し65℃で10
分間処理した後、4℃で65μMのATP(アデノシ
ントリフオスフエート)を加え、更にT4リガー
ゼを粘着末端の場合は0.1単位/μgDNA、また
平滑末端の場合は1単位/μgDNAになるよう
に加えて4℃で18時間反応させた後、65℃で10分
間処理する。
るように、連結用緩衝液[66mMのトリス塩酸
(PH7.5)、6.6mMの塩化マグネシウム、10mMの
ジチオスレイトールからなる]に溶解し65℃で10
分間処理した後、4℃で65μMのATP(アデノシ
ントリフオスフエート)を加え、更にT4リガー
ゼを粘着末端の場合は0.1単位/μgDNA、また
平滑末端の場合は1単位/μgDNAになるよう
に加えて4℃で18時間反応させた後、65℃で10分
間処理する。
[大腸菌の形質転換(Advanced Bacterial
Genetics(1981)(Cold Spring Havor,New
York)] 5mlのL−ブロスに、大腸菌HB101を植菌し、
一夜間培養する。この0.2mlを20mlのL−ブロス
に植え、37℃でクレツトユニツトが60に達するま
で振盪培養する。菌体を集め氷冷した50mMの塩
化カルシウムと10mMのトリス塩酸(PH8.0)と
からなる緩衝液10mlに懸濁し、30分間氷冷する。
遠心分離した菌体を1mlの塩化カルシウム溶液に
顕濁し、この0.1mlを10μlのDNA溶液と混合し0
℃で30分間、42℃で2分間インキユベートした
後、1.5mlのL−ブロスを加え37℃で30分間培養
し、この0.1mlを寒天培地に植える。
Genetics(1981)(Cold Spring Havor,New
York)] 5mlのL−ブロスに、大腸菌HB101を植菌し、
一夜間培養する。この0.2mlを20mlのL−ブロス
に植え、37℃でクレツトユニツトが60に達するま
で振盪培養する。菌体を集め氷冷した50mMの塩
化カルシウムと10mMのトリス塩酸(PH8.0)と
からなる緩衝液10mlに懸濁し、30分間氷冷する。
遠心分離した菌体を1mlの塩化カルシウム溶液に
顕濁し、この0.1mlを10μlのDNA溶液と混合し0
℃で30分間、42℃で2分間インキユベートした
後、1.5mlのL−ブロスを加え37℃で30分間培養
し、この0.1mlを寒天培地に植える。
[SlヌクレアーゼによるDNA粘着末端の除
去] 粘着末端を持つDNAを、200μlの高塩濃度緩衝
液[30mMの酢酸ソーダ(PH4.25)、0.3MのNaCl
及び4mMの硫酸亜鉛からなる]に溶解し、Slヌ
クレアーゼを20単位/μgDNA加え、22℃で40
分間処理し、TE緩衝液で飽和したフエノールで
抽出処理した後、エーテルでフエノールを除き、
冷エタノールを加え、−20℃に冷却し、遠心分離
により、沈澱したDNAを回収する。
去] 粘着末端を持つDNAを、200μlの高塩濃度緩衝
液[30mMの酢酸ソーダ(PH4.25)、0.3MのNaCl
及び4mMの硫酸亜鉛からなる]に溶解し、Slヌ
クレアーゼを20単位/μgDNA加え、22℃で40
分間処理し、TE緩衝液で飽和したフエノールで
抽出処理した後、エーテルでフエノールを除き、
冷エタノールを加え、−20℃に冷却し、遠心分離
により、沈澱したDNAを回収する。
[Bam HIリンカーのリン酸化]
Bam Hリカー(B.R.L社製)
5CCGGATCCGG3
GGCCTAGGCC
は、末端にリン酸基が付いていないので、T4キ
ナーゼでリン酸化を行なつた。
ナーゼでリン酸化を行なつた。
3n molのBamHリンカーを、41μlの80mM
トリス塩酸(PH7.5)及び12mMの塩化マグネシ
ウムに溶解し、60℃で10分間インキユベートした
後、37℃で10mMの2−メルカプトエタノール
と、20mMのATPを加え、更に10単位のT4キナ
ーゼを添加して37℃で30分間処理した後、−20℃
で保存する。
トリス塩酸(PH7.5)及び12mMの塩化マグネシ
ウムに溶解し、60℃で10分間インキユベートした
後、37℃で10mMの2−メルカプトエタノール
と、20mMのATPを加え、更に10単位のT4キナ
ーゼを添加して37℃で30分間処理した後、−20℃
で保存する。
[BamHリンカーの平滑末端への連結]
平滑末端のDNA断片(1.2pmol末端)と上記
でリン酸化したBanHリンカー(100p mol
末端)を連結用緩衝液[66mMのトリス塩酸(PH
7.5),6.6mMの塩化マグネシウム、10mMのジチ
オスレイトールからなる]に溶解し、1単位の
T4リガーゼを加え4℃で18時間反応後、BamH
で処理して余分のBamHリンカーを除き、
TE緩衝液で飽和したフエノールでDNAを抽出
し、エーテルでフエノールを除去後エタノール沈
殿でDNAを回収する。
でリン酸化したBanHリンカー(100p mol
末端)を連結用緩衝液[66mMのトリス塩酸(PH
7.5),6.6mMの塩化マグネシウム、10mMのジチ
オスレイトールからなる]に溶解し、1単位の
T4リガーゼを加え4℃で18時間反応後、BamH
で処理して余分のBamHリンカーを除き、
TE緩衝液で飽和したフエノールでDNAを抽出
し、エーテルでフエノールを除去後エタノール沈
殿でDNAを回収する。
[プラスミド DNAのバクテリアルアルカリ
ンフオスフアターゼ(BAP)処理] プラスミドDNAの自己連結を阻止するため、
プラスミドDNAの制限酵素部位とDNA断片との
連結に先だつて、プラスミドDNAを予めBAPで
処理する。
ンフオスフアターゼ(BAP)処理] プラスミドDNAの自己連結を阻止するため、
プラスミドDNAの制限酵素部位とDNA断片との
連結に先だつて、プラスミドDNAを予めBAPで
処理する。
制限酵素で切断したプラスミドDNA(10p
mol5末端)を200μlのBAP緩衝液[10mMのトリ
ス塩酸(PH8.0)及び0.1mMのEDTAからなる]
に溶解し、100単位のBAPを加え、65℃で1時間
反応後、TE緩衝液で飽和したフエノールで抽出
処理し、エーテルでフエノールを除去し、エタノ
ール沈澱によりプラスミドDNAを回収する。
mol5末端)を200μlのBAP緩衝液[10mMのトリ
ス塩酸(PH8.0)及び0.1mMのEDTAからなる]
に溶解し、100単位のBAPを加え、65℃で1時間
反応後、TE緩衝液で飽和したフエノールで抽出
処理し、エーテルでフエノールを除去し、エタノ
ール沈澱によりプラスミドDNAを回収する。
実施例
(1) プラスミドpLSOl(4.4kb)の調製
サツカロミセス・セレビシエlF0 1136の染色体
遺伝子500μgを500μlの緩衝液[100mMのトリス
塩酸(PHを7.5)、50mMのNaCl、10mMの塩化マ
グネシウム及び1mMのジチオスレイトールから
なる]中で15単位のEcoRで37℃、1夜間処理
して切断した後濃縮し、蔗糖密度勾配遠心にか
け、2kb前後のDNA断片を集めた。これをプラ
スミドpUC13をEcoRを用いて切断した断片1μ
gとT4リガーゼ2単位を用いて連結し、得られ
たプラスミドで大腸菌JM83株を形質転換し、ア
ンピシリン耐性株を選択した。
遺伝子500μgを500μlの緩衝液[100mMのトリス
塩酸(PHを7.5)、50mMのNaCl、10mMの塩化マ
グネシウム及び1mMのジチオスレイトールから
なる]中で15単位のEcoRで37℃、1夜間処理
して切断した後濃縮し、蔗糖密度勾配遠心にか
け、2kb前後のDNA断片を集めた。これをプラ
スミドpUC13をEcoRを用いて切断した断片1μ
gとT4リガーゼ2単位を用いて連結し、得られ
たプラスミドで大腸菌JM83株を形質転換し、ア
ンピシリン耐性株を選択した。
合成オリゴヌクレオチド
5GGCCAACCAATGTACT3
をプローブとしてコロニーハイブリダイゼーシヨ
ンを行ない、陽性のコロニーを選択し、プラスミ
ドDNAを分離し、制限酵素による解析と塩基配
列の決定により、Gell、30巻、937頁(1982)の
記載と一致する塩基配列を有するサツカロマイセ
ス・セレビシエのα因子遺伝子を含むプラスミド
pLS01(4.4kb)を選択採取した。
ンを行ない、陽性のコロニーを選択し、プラスミ
ドDNAを分離し、制限酵素による解析と塩基配
列の決定により、Gell、30巻、937頁(1982)の
記載と一致する塩基配列を有するサツカロマイセ
ス・セレビシエのα因子遺伝子を含むプラスミド
pLS01(4.4kb)を選択採取した。
(2) プラスミドpREl032(5.8kb)の調製
プラスミドYRp7(5.7kb)をEcoRで部分切
断し、粘着末端を充填した後、T4リガーゼで連
結してYRp7の一方のEcoRサイトが除去され
たpREl032(5.8kb)を調製した。
断し、粘着末端を充填した後、T4リガーゼで連
結してYRp7の一方のEcoRサイトが除去され
たpREl032(5.8kb)を調製した。
(3) プラスミドpUC−βE(2.9kb)の調製
プラスミドpYT3−24をHaeで切断して、
βEDNA(93bp)を含む160bpのHae〜Hae断
片を採取した。
βEDNA(93bp)を含む160bpのHae〜Hae断
片を採取した。
一方、フアージM13mp7のRFDNAをHinc
で切断し、エタノールを添加してエタノールに
溶解する断片5GACCTGCAGGTC3(Hinc
〜Hinc)を除去した後、Hinc部位に、上
記βE DNAを含む160bpのHae〜Hae断片を
T4リガーゼで連結し、これを大腸菌HB101株に
導入した。得られた形質転換株からDNAを調製
し、これをBamHで切断し、得られたBamH
〜Bam H断片を、プラスミドpUC8の
BamHサイトに挿入してpUC8−βE(2.9kb)を
得た。
で切断し、エタノールを添加してエタノールに
溶解する断片5GACCTGCAGGTC3(Hinc
〜Hinc)を除去した後、Hinc部位に、上
記βE DNAを含む160bpのHae〜Hae断片を
T4リガーゼで連結し、これを大腸菌HB101株に
導入した。得られた形質転換株からDNAを調製
し、これをBamHで切断し、得られたBamH
〜Bam H断片を、プラスミドpUC8の
BamHサイトに挿入してpUC8−βE(2.9kb)を
得た。
(4) プラスミpREl046(7.4kb)の調製
(イ) pLS01(4.4kb)をEcoR及びHindで切断
してプロモーター配列及びリーダー配列を含む
EcoR−Hind断片(1.4kb)を得た。
してプロモーター配列及びリーダー配列を含む
EcoR−Hind断片(1.4kb)を得た。
(ロ) pUC8−βE(2.9kb)をHind及びEcoRで
切断してHind〜EcoR断片(0.2kb)を得
た。
切断してHind〜EcoR断片(0.2kb)を得
た。
(ハ) pREl032(5.8kb)をEcoRで切断し、これ
を上記(イ)及び(ロ)で得たDNA断片とT4リガーゼ
を用いて連結してpREl046(7.4kb)を得た。
を上記(イ)及び(ロ)で得たDNA断片とT4リガーゼ
を用いて連結してpREl046(7.4kb)を得た。
(5) プラスミドpREl052(5.2kb)の調製
(イ) pREl032(5.8kb)をEcoR及びPstで切断
してTRPlを含むEcoR〜Pst断片(0.8kb)
を得た。
してTRPlを含むEcoR〜Pst断片(0.8kb)
を得た。
(ロ) 2μmプラスミドをEcoRで切断し、その粘
着末端を充填して平滑末端とした後、Pstで
切断して複製開始点を含むPst〜EcoR断片
(2kb)を得た。
着末端を充填して平滑末端とした後、Pstで
切断して複製開始点を含むPst〜EcoR断片
(2kb)を得た。
(ハ) 上記(イ)及び(ロ)で得たDNA断片を、pBR322
をEcoR及びPvuで切断したPvu〜EcoR
断片(2.3kb)と共にT4リガーゼにより連結
してpREl051(5.1kb)を作製しEcoRで部分
切断した後、粘着末端を充填して平滑末端とし
てT4リガーゼで連結し、一方のEcoR切断部
位を欠失したpREl052(5.2kb)を得た。
をEcoR及びPvuで切断したPvu〜EcoR
断片(2.3kb)と共にT4リガーゼにより連結
してpREl051(5.1kb)を作製しEcoRで部分
切断した後、粘着末端を充填して平滑末端とし
てT4リガーゼで連結し、一方のEcoR切断部
位を欠失したpREl052(5.2kb)を得た。
(6) プラスミドpREl059(6.8kb)の調製
(イ) pREl046(7.4kb)をEcoR及びSmaで切
断し、得られたプロモーター配列、リーダー配
列及びβE DNA配列を含むEcoR〜Sma断
片(1.6kb)を採取した。
断し、得られたプロモーター配列、リーダー配
列及びβE DNA配列を含むEcoR〜Sma断
片(1.6kb)を採取した。
(ロ) pLSOl(4.4kb)をHinc及びEcoRで切断
しターミネーター配列を含むHinc〜EcoR
断片(0.3kb)を採取した。
しターミネーター配列を含むHinc〜EcoR
断片(0.3kb)を採取した。
(ハ) pREl052(5.2kb)をEcoRで切断し、BAP
を加えて末端のリン酸基を外した後、上記(イ)及
び(ロ)で得たDNA断片とT4リガーゼを用いて連
結してプラスミドpREl059(6.8kb)を得た。
を加えて末端のリン酸基を外した後、上記(イ)及
び(ロ)で得たDNA断片とT4リガーゼを用いて連
結してプラスミドpREl059(6.8kb)を得た。
(7) プラスミドpLS05(4.3kb)の調製
サツカロミセス・ウバルムlFO 0751の染色体
遺伝子500μgを、500μlの緩衝液[100mMのトリ
ス塩酸(PH7.5)、50mMのNaCl、10mMの塩化マ
グネシウム及び1mMのジチオスレイトールから
なる]中で15単位のEcoRで37℃、1夜間処理
して切断した後濃縮し、蔗糖密度勾配遠心にか
け、2kb前後のDNA断片を集めた。これをプラ
スミドpUC13をEcoRを用いて切端した断片1μ
gとT4リガーゼ2単位を用いて連結し、得られ
たプラスミドで大腸菌JM83株を形質転換し、ア
ンピシリン耐性株を選択した。
遺伝子500μgを、500μlの緩衝液[100mMのトリ
ス塩酸(PH7.5)、50mMのNaCl、10mMの塩化マ
グネシウム及び1mMのジチオスレイトールから
なる]中で15単位のEcoRで37℃、1夜間処理
して切断した後濃縮し、蔗糖密度勾配遠心にか
け、2kb前後のDNA断片を集めた。これをプラ
スミドpUC13をEcoRを用いて切端した断片1μ
gとT4リガーゼ2単位を用いて連結し、得られ
たプラスミドで大腸菌JM83株を形質転換し、ア
ンピシリン耐性株を選択した。
合成オリゴヌクレオチド
5GGCCAACCAATGTACT3
をプローブとしてコロニーハイブリダイゼーシヨ
ンを行ない、陽性のコロニーを選択し、プラスミ
ドDNAを分離した。このプラスミドDNAは、制
限酵素による解析と塩基配列の決定により、
Cell、30巻、937頁(1982)に記載されている、
サツカロマイセス・セレビシエのα因子遺伝子と
異なり、63塩基対からなるスペーサーと成熟α因
子の単立が3回繰り返しており、また、サツカロ
マイセス・セレビシエのα因子遺伝子とは、12塩
基対の違いがある、サツカロミセス・ウバルムの
α因子遺伝子を含むプラスミドpLS05(4.3kb)を
選択採取した。
ンを行ない、陽性のコロニーを選択し、プラスミ
ドDNAを分離した。このプラスミドDNAは、制
限酵素による解析と塩基配列の決定により、
Cell、30巻、937頁(1982)に記載されている、
サツカロマイセス・セレビシエのα因子遺伝子と
異なり、63塩基対からなるスペーサーと成熟α因
子の単立が3回繰り返しており、また、サツカロ
マイセス・セレビシエのα因子遺伝子とは、12塩
基対の違いがある、サツカロミセス・ウバルムの
α因子遺伝子を含むプラスミドpLS05(4.3kb)を
選択採取した。
(8) プラスミドpREl085(6.8kb)の調製
pREl059をEcoR及びAat切断してEcoR
〜Aat断片(5.0kb)を得た。また、pREl059
をHind及びAatで切断してHind〜Aat
断片(0.6kb)を得た。更に、pLS05をEcoR及
びHindで切断してEcoR〜Hind断片
(1.2kb)を得た。これら3種のDNA断片をT4リ
ガーゼで連結してプラスミドpREl085(6.8kb)を
得た。
〜Aat断片(5.0kb)を得た。また、pREl059
をHind及びAatで切断してHind〜Aat
断片(0.6kb)を得た。更に、pLS05をEcoR及
びHindで切断してEcoR〜Hind断片
(1.2kb)を得た。これら3種のDNA断片をT4リ
ガーゼで連結してプラスミドpREl085(6.8kb)を
得た。
(9)プラスミドpREl085による酵母サツカロマイセ
ス・セレビシエYNN27株の形質転換 サツカロミセス・セレビシエYNN27株を、
YPD培地(1%の酵母エキス、2%のペプトン
及び2%のグルコースからなる)で一夜間培養し
た培養液0.5mlを20mlのYPD培地に植え、30℃で
クレツトユニツト60まで振盪培養する。この10ml
を遠心分離して得た菌体を10mlのTE緩衝液で洗
浄し、1mlのTE緩衝液に懸濁する。この0.5mlに
0.5mlの0.2M酢酸リチウム、10mMのトリス塩酸
(PH7.5)及び1mMのEDTAを加え、30℃で1時
間保持した後、氷水中で冷却する。
ス・セレビシエYNN27株の形質転換 サツカロミセス・セレビシエYNN27株を、
YPD培地(1%の酵母エキス、2%のペプトン
及び2%のグルコースからなる)で一夜間培養し
た培養液0.5mlを20mlのYPD培地に植え、30℃で
クレツトユニツト60まで振盪培養する。この10ml
を遠心分離して得た菌体を10mlのTE緩衝液で洗
浄し、1mlのTE緩衝液に懸濁する。この0.5mlに
0.5mlの0.2M酢酸リチウム、10mMのトリス塩酸
(PH7.5)及び1mMのEDTAを加え、30℃で1時
間保持した後、氷水中で冷却する。
こうして得られた菌体懸濁液100μlに10μgの
pREl085を含むTE緩衝液10μlを加え、0℃で30
分間保持した後、200μlの70%ポリエチレングリ
コール4000溶液を加え、30℃で1時間、次いで42
℃で5分間保持した後、集菌し、0.5mlの水で洗
浄後0.3mlの水に懸濁し、プレート1枚に0.1ml植
える。
pREl085を含むTE緩衝液10μlを加え、0℃で30
分間保持した後、200μlの70%ポリエチレングリ
コール4000溶液を加え、30℃で1時間、次いで42
℃で5分間保持した後、集菌し、0.5mlの水で洗
浄後0.3mlの水に懸濁し、プレート1枚に0.1ml植
える。
(10) β−エンドルフインの分泌量
上記(9)で得たプラスミドpREl085を含むサツカ
ロミセス・セレビシエYNN27株を2日間培養し
た後、遠心分離し、上清について、β−エンドル
フイン[RlA]キツトNew England Nuclear
社、カタログ番号NEK−003)を使用し、カタロ
グ記載の方法に従つてラジオイムノアツセイを行
なつた結果、上清中のβ−エンドルフイン量は
282.4ng/mlであつた。
ロミセス・セレビシエYNN27株を2日間培養し
た後、遠心分離し、上清について、β−エンドル
フイン[RlA]キツトNew England Nuclear
社、カタログ番号NEK−003)を使用し、カタロ
グ記載の方法に従つてラジオイムノアツセイを行
なつた結果、上清中のβ−エンドルフイン量は
282.4ng/mlであつた。
なお前記のプラスミドpREl059により、同様に
サツカロマイセス・セレビシエYNN27株を形質
転換し、培養後、遠心分離した上清について、上
記と同一方法により測定したβ−エンドルフイン
量は、233.7ng/mlであつた。
サツカロマイセス・セレビシエYNN27株を形質
転換し、培養後、遠心分離した上清について、上
記と同一方法により測定したβ−エンドルフイン
量は、233.7ng/mlであつた。
第1図は、サツカロマイセス・ウバルムα因子
遺伝子の配列を示す模式図、第2〜第5図は本発
明における複合プラスミドの構成ルートを示す模
式図であつて、図中、EはEcoRを、HはHind
を、SはSalを、PはPstを、BはBamH
を、PvはPvuを、SmはSmaを、Hcは
Hincを、XはXbaを、AはAatを夫々示
す。
遺伝子の配列を示す模式図、第2〜第5図は本発
明における複合プラスミドの構成ルートを示す模
式図であつて、図中、EはEcoRを、HはHind
を、SはSalを、PはPstを、BはBamH
を、PvはPvuを、SmはSmaを、Hcは
Hincを、XはXbaを、AはAatを夫々示
す。
Claims (1)
- 1 構造遺伝子の上流にサツカロマイセス・ウバ
ルムα因子遺伝子のプロモーター配列及びリーダ
ー領域をコードする配列を連結し、構造遺伝子の
下流にサツカロマイセス・セレビシエα因子遺伝
子のターミネーター配列を連結し、かつプラスミ
ドpBR322のアンピシリン耐性遺伝子及び複製開
始点を含む領域、2μmプラスミドの複製開始点を
含む領域並びにサツカロマイセス・セレビシエの
トリプトフアン合成酵素遺伝子を含む領域を含有
してなる複合プラスミド。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP60144561A JPS626684A (ja) | 1985-07-03 | 1985-07-03 | 複合プラスミド |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP60144561A JPS626684A (ja) | 1985-07-03 | 1985-07-03 | 複合プラスミド |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS626684A JPS626684A (ja) | 1987-01-13 |
JPH035797B2 true JPH035797B2 (ja) | 1991-01-28 |
Family
ID=15365114
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP60144561A Granted JPS626684A (ja) | 1985-07-03 | 1985-07-03 | 複合プラスミド |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS626684A (ja) |
-
1985
- 1985-07-03 JP JP60144561A patent/JPS626684A/ja active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS626684A (ja) | 1987-01-13 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Cornet et al. | Characterization of two cel (cellulose degradation) genes of Clostridium thermocellum coding for endoglucanases | |
JPH0336516B2 (ja) | ||
FI94426C (fi) | Itsenäisiä replikointisekvenssejä Pichia-hiivakannoille | |
Yang et al. | Identification of the pleiotropic sacQ gene of Bacillus subtilis | |
US7060465B2 (en) | Modified chitin binding domain and uses thereof | |
JPH07170978A (ja) | レンニンの製造方法 | |
Sibakov et al. | Secretion of TEM beta-lactamase with signal sequences isolated from the chromosome of Lactococcus lactis subsp. lactis | |
Filho et al. | Stable Yeast Transformants that Secrete Functional α–Amylase Encoded by Cloned Mouse Pancreatic cDNA | |
Owolabi et al. | Expression in Escherichia coli of the Cellulomonas fimi structural gene for endoglucanase B | |
Kuhn et al. | Recombinant forms of M13 procoat with an OmpA leader sequence or a large carboxy‐terminal extension retain their independence of secY function. | |
JPS60199386A (ja) | ヤロウイア・リポリテイカの形質転換方法 | |
JPH035797B2 (ja) | ||
JPH035798B2 (ja) | ||
KR100407835B1 (ko) | 니트릴히드라타제(NitrileHydratase)유전자발현을위한조절유전자 | |
JPH0256076B2 (ja) | ||
JPH0771492B2 (ja) | グラム陽性細菌の熱誘導性遺伝子発現方法 | |
JP2604365B2 (ja) | 細菌酵素類 | |
JP2507874B2 (ja) | 分泌シグナルペプチドをコ−ドするdna配列 | |
Minas et al. | Co-overexpression of prlF increases cell viability and enzyme yields in recombinant Escherichia coli expressing Bacillus stearothermophilus. alpha.-amylase | |
JPS6398389A (ja) | 酵母における改良遺伝子発現 | |
JPS63501053A (ja) | 異種タンパク質の生産方法 | |
JP2500312B2 (ja) | ヒト成長ホルモンの生産法 | |
JP2560214B2 (ja) | 分泌シグナルペプチドをコードするdna配列 | |
JPH066060B2 (ja) | 新規なプロモ−タ− | |
JP2538200B2 (ja) | ポリペプチド分泌発現ベクタ―及び形質転換微生物 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
EXPY | Cancellation because of completion of term |