JPH0357920B2 - - Google Patents
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Description
この発明は、免疫調節に影響を与える新規なペ
プチドに関する。 過去数年間の研究により、リンパ細胞依存免疫
平衡の調節過程において、胸腺ホルモンが直接関
与することが明らかにされた。このホルモンは、
未成熟T−細胞を、細胞性免疫及び種々の免疫応
答の調節に中心的役割を演ずる成熟分化した細胞
に変えるものと考えられている。胸腺ホルモン
は、胸腺内においてのみならず、胸腺外において
も、その作用を発揮し、サイトトキシツク細胞、
サプレツサー細胞及びヘルパー細胞の形成に役割
を演ずる。免疫不全症患者又はガン患者につい
て、胸腺抽出物を用いて行われた臨床試験の有望
な結果は、この分野における研究活動を大いに刺
激した。さらに、デイゲオルグ(DiGeorge)症
候群、IgA欠損症及び一般の皮膚結核の症例にお
いて血清の胸腺レベルは低下し、一方、リウマチ
様関節炎の症例において胸腺レベルが上昇するこ
とが見出された。このため、ホルモンレベルの調
節が、上記のような病気に好都合な影響を与える
であろうことが合理的に結論される(E.Arrigoni
−Martelli、Drugs of Today16、203、1980)。 均一産物として分離され、構造的に固定され、
そして合成までされた胸腺ホルモンの一つはチモ
ポイエチン(thymopoietine)(Goldstein等、
Nature247、11、1974、Goldstein等、Ann.N.Y.
Sci.249、177、1975、米国特許明細書第4002740
号及び第4071949号)であり、これは49個のアミ
ノ酸から成つている。天然産物及び合成産物を用
いて行われた試験(Fujino等、Chem.Pharm.
Bull.25、1486、1977、Bliznakov等、Biochem.
Biophys.Res.Commun.80、631、1978)の結果
は、チモポイエチンが、試験管内においてのみな
らず生体内においても、T−細胞の分化を誘導す
ることを明白に示している。 チモポイエチンの天然供給源に限界があつて、
大きな需要を満たすには十分でなく、又、合成品
は高価であるため、チモポイエチンの活性中心を
解明するための広範な研究が開始された。まず最
初に、チモポイエチン(24−41)のトリデカペプ
チド(Schlesinger等、Cell5、631、1978)及び
チモポイエチン(32−36)のペンタペプタイド
(TP5と称する)が、完全なホルモンが有するす
べての生物学的性質を有すことが報告された
(Goldstein等、Science204、1309、1979、米国特
許明細書第4190646号)。最近、TP5の幾つかの断
片及び類似体も記述されたが、しかしながら、こ
れらはその試験方法においては効果がなかつた
(Abiko等、Chem.Pharm.Bull.28、2507、1980)。 本発明者等は、日本の著書(Abiko等、Chem.
Pharm.Bull.28、2507、1980)により示唆されて
いるように、TP5を、N−末端部分からではな
く、C−末端部分から始めて短くしていけば、
Arg−Lys−Asp−Valのテトラペプチド及びArg
−Lys−Aspのトリペプチドでさえ活性を有する
こと、すなわち、E−ロゼツトを形成するリンパ
細胞の数を増加せしめること、を見出した。この
発明は、前記のテトラペプチド及びトリペプチド
並びにこれらの幾つかの類似体の合成に関する。
ある種の類似体は生物学的活性を抑制するという
驚くべき事実を見出した。これにより、活性を誘
導し又は阻害する免疫応答が、密接に関連してい
る構造要素と結びついているという事実を、初め
て実験的に証明した。この発明により製造される
すべての化合物は新規物質である。 この発明に係る新規化合物はペプチド化学の常
法に従つて、溶液中で段階的に、合成することが
できる。合成過程で使用する保護基の組合わせ
は、保護基の選択的脱離が可能になるように行な
う必要があり、選択的脱離が一段階で出来るよう
に組合わせるのが特に望ましい。ほとんどの場
合、ペプチド結合は、発明者等によるペンタフル
オロフエニルエステル法(Kisfaludy等、ハンガ
リー特許明細書第168431号、及びKisfaludy等、
Tetra−hedron Letters、1785、1974)により、
形成することができる。 この発明は、免疫調節に影響を与える新規なペ
プチドに関する。さらに詳しくは、次のアミノ酸
配列: X−Arg−Lys−Y−Z (式中、Xはアミノ基中の水素原子又はGlpを表
わし、YはAsp、Asp−Val、Asp−Ala、Asp−
Ile、Asn−Val、Asu−Val又はGlu−Valを表わ
し、そしてZはカルボキシル基中のヒドロキシル
基、又は該ヒドロキシル基に代るアミノ基もしく
は低級アルコキシル基を表わし、ここでGlpはピ
ログルタミル残基を表わし、Argはアルギニン残
基を表わし、Lysはリジン残基を表わし、Aspは
アスパラギン酸残基を表わし、Valはバリン残基
を表わし、Alaはアラニン残基を表わし、Ileはイ
ソロイシン残基を表わし、Asnはアスパラギン残
基を表わし、Asuはアミノスクシニル残基を表わ
し、そしてGluはグルタミン酸残基を表わす) を有するペプチド、又はこれらの塩もしくは被保
護ペプチド(被保護ペプチドにおいては、少なく
とも1つの遊離基が次の保護基により保護されて
いる;Glpのアミノ基:ベンジルオキシカルボニ
ル基;Argのα−アミノ基:ベンジルオキシカル
ボニル基;Argのグアニジノ基:ニトロ基;Lys
のε−アミノ基:ベンジルオキシカルボニル基;
Aspのβ−カルボキシル基:ベンジルオキシ基;
Aspのα−カルボキシル基:ベンジルオキシ基;
Valのカルボキシ基:4−ニトロベンジルオキシ
基;Alaのカルボキシ基:4−ニトロベンジルオ
キシ基;Ileのカルボキシ基:ベンジルオキシ
基;Gluのγ−カルボキシル基:4−クロロ−ベ
ンジルオキシ基)に関する。 本発明の好ましいペプチドとして、次の新規ペ
プチド、すなわち Arg−Lys−Asp Arg−Lys−Asp−Val Arg−Lys−Asn−Val Arg−Lys−Asu−Val Arg−Lys−Asp−Ala Arg−Lys−Asp−Ile Arg−Lys−Glu−Val Lys−Arg−Asp−Val Glp−Arg−Lys−Asp Glp−Arg−Lys−Asp−Val と、これらの塩、アミド、低級アルキルエステル
又は被保護誘導体に関する。この発明に係る新規
ペプチドは、ペプチド化学の常法に従つて合成す
ることができ、そしてもし必要であれば、被保護
誘導体から保護基を脱離することができる。ここ
で、「低級アルキル」なる語は炭素原子1ないし
4個を有するアルキル基について使用する。 この方法の好ましい態様によれば、テトラペプ
チドArg−Lys−Asp−Valは次のようにして合
成することができる。すなわち、L−バリン−P
−ニトロベンジルエステルを、N−tert−ブチル
オキシカルボニル−L−アスパラギン酸−β−ベ
ンジルエステル−α−ペンタフルオロフエニルエ
ステルでアシル化し、この反応で生成した被保護
ジペプチドから、tert−ブチルオキシカルボニル
基を選択的に脱離し、その後、この遊離ジペプチ
ドを、N−α−tert−ブチルオキシカルボニル−
N−ε−ベンジルオキシカルボニル−L−リジン
−ペンタフルオロフエニルエステルによりアシル
化する。こうして得た被保護トリペプチドを、ト
リフルオロ酢酸で処理することにより、N−末端
部分を遊離したトリペプチドを得、そして、これ
を、N−ベンジルオキシカルボニル−O−ニトロ
−L−アルギニン−ペンタフルオロフエニルエス
テルでアシル化する。こうして得た被保護テトラ
ペプチドの全保護基は、接触水素添加により、一
段階で脱離することができる。こうして得た遊離
ペプチドは、一般に、さらに純化する必要がな
い。ある場合には、遊離ペプチドを、シリカゲル
を用いるクロマトグラフ処理により純化する。そ
して、蒸発法又は凍結乾燥法により最終製品を分
離する。こうして得たペプチドは所望の塩又は錯
誘導体に変換することができる。 この発明に係るペプチドの生物学的試験は、次
の試験法により行つた。 () 試験管内試験法 活性E−ロゼツト試験は、ウイブラン
(Wybran)等(Wybran等、New Engl.J.
Med.292、475、1975)の変法により、健康者
及び自己免疫疾患患者(リウマチ様関節炎患者
及び全身性エリテマトーデス患者)のリンパ細
胞を用いて行つた。50μのリンパ細胞懸濁液
に、10-3〜10-11mol/濃度の被検物質溶液を
加え、そしてこの混合物を、37℃において、
5.0%の、二酸化炭素を含む雰囲気中で、60分
間インキユベートした。この後、50μの1%
ヒツジ赤血球懸濁液を加え、そして、この混合
物を1000回/分で10分間遠心分離し、つづい
て、ガレンカンプ(Gallenkampf)振とう機
の変形機で振とうした(振とう時間30秒、振幅
8cm、振とう速度65回/分)。ロゼツトを0.1%
のグルタルアルデヒド(各試験管当り50μ、
3分間)で固定した。3個より多くのヒツジ赤
血球を結合しているリンパ細胞を顕微鏡で計数
し、そして、4×100細胞の値を求めた。分離
したリンパ細胞には、不純成分として、マクロ
フアージ及び多形核細胞が含まれている(10%
以下)。ロゼツトを形成した細胞数は、各場合
につき、この数値により修正した。この結果を
第1表及び第2表に示した。 () 生体内試験法 (1) 抗体産生に対する効果をゼグロウスキー
(Ceglowski)法(Ceglowski、Ann.N.Y.
Acad.Sci.249、343、1975)に従つて試験し
た。新生H.ウイスター(H.Wister)ラツト
を、生後12時間以内に、4×10-3ないし4×
10-7mol/の被検物質25μを一回投与す
ることにより処理した(各投与量につき9動
物を使用)。そして、ヒツジ赤血球5%懸濁
液0.5mlづつを各動物に腹腔内投与すること
により、14日目の動物にヒツジ赤血球懸濁液
による免疫処理をほどこした。この免疫処理
後7日目に、動物を断頭した。3動物の血液
を一緒にし、(3000回/分で10分間遠心分離
した後)に得られた血清について、抗体価を
タカツシ(Takatsy)の方法(Takatsy、
Acta Microbiol.Acad.Sci.Hung.3、191、
1955)により測定した。この結果を凝集素価
で表示した。この値は、凝集を観察しうる、
血清の最低希釈に一致する。この結果を第3
表に示した。 (2) 特異抗体産生細胞の数をカニンガム (Canningham)の方法(Handbook of
Experimental Immunology、著者、D.M.
Weir、第2巻、P−285、Blackwell、オツ
クスアオード−ロンドン、1978)により測定
した。この方法に従い、免疫動物の脾臓細
胞、ヒツジ赤血球懸濁液及び補体からなる均
一な懸濁液を調製し、そしてこれを、単一細
胞層を形成するのに適した容器に入れた。脾
臓細胞の周囲に溶血斑が生じる。この溶血斑
の数は、特異抗体産生細胞(プラーク形成細
胞、PFC)の数と同じである。 実験動物に、生後12時間以内に、被検物質
を一回腹腔内投与した。(1)の方法に従つて、
各物質につき3種類の投与量で試験した。免
疫処理後7日目に、動物から分離した脾臓細
胞のプラーク形成を試験した。処理動物と無
処理動物(対象)によるプラーク形成の比を
第4表に示した。
プチドに関する。 過去数年間の研究により、リンパ細胞依存免疫
平衡の調節過程において、胸腺ホルモンが直接関
与することが明らかにされた。このホルモンは、
未成熟T−細胞を、細胞性免疫及び種々の免疫応
答の調節に中心的役割を演ずる成熟分化した細胞
に変えるものと考えられている。胸腺ホルモン
は、胸腺内においてのみならず、胸腺外において
も、その作用を発揮し、サイトトキシツク細胞、
サプレツサー細胞及びヘルパー細胞の形成に役割
を演ずる。免疫不全症患者又はガン患者につい
て、胸腺抽出物を用いて行われた臨床試験の有望
な結果は、この分野における研究活動を大いに刺
激した。さらに、デイゲオルグ(DiGeorge)症
候群、IgA欠損症及び一般の皮膚結核の症例にお
いて血清の胸腺レベルは低下し、一方、リウマチ
様関節炎の症例において胸腺レベルが上昇するこ
とが見出された。このため、ホルモンレベルの調
節が、上記のような病気に好都合な影響を与える
であろうことが合理的に結論される(E.Arrigoni
−Martelli、Drugs of Today16、203、1980)。 均一産物として分離され、構造的に固定され、
そして合成までされた胸腺ホルモンの一つはチモ
ポイエチン(thymopoietine)(Goldstein等、
Nature247、11、1974、Goldstein等、Ann.N.Y.
Sci.249、177、1975、米国特許明細書第4002740
号及び第4071949号)であり、これは49個のアミ
ノ酸から成つている。天然産物及び合成産物を用
いて行われた試験(Fujino等、Chem.Pharm.
Bull.25、1486、1977、Bliznakov等、Biochem.
Biophys.Res.Commun.80、631、1978)の結果
は、チモポイエチンが、試験管内においてのみな
らず生体内においても、T−細胞の分化を誘導す
ることを明白に示している。 チモポイエチンの天然供給源に限界があつて、
大きな需要を満たすには十分でなく、又、合成品
は高価であるため、チモポイエチンの活性中心を
解明するための広範な研究が開始された。まず最
初に、チモポイエチン(24−41)のトリデカペプ
チド(Schlesinger等、Cell5、631、1978)及び
チモポイエチン(32−36)のペンタペプタイド
(TP5と称する)が、完全なホルモンが有するす
べての生物学的性質を有すことが報告された
(Goldstein等、Science204、1309、1979、米国特
許明細書第4190646号)。最近、TP5の幾つかの断
片及び類似体も記述されたが、しかしながら、こ
れらはその試験方法においては効果がなかつた
(Abiko等、Chem.Pharm.Bull.28、2507、1980)。 本発明者等は、日本の著書(Abiko等、Chem.
Pharm.Bull.28、2507、1980)により示唆されて
いるように、TP5を、N−末端部分からではな
く、C−末端部分から始めて短くしていけば、
Arg−Lys−Asp−Valのテトラペプチド及びArg
−Lys−Aspのトリペプチドでさえ活性を有する
こと、すなわち、E−ロゼツトを形成するリンパ
細胞の数を増加せしめること、を見出した。この
発明は、前記のテトラペプチド及びトリペプチド
並びにこれらの幾つかの類似体の合成に関する。
ある種の類似体は生物学的活性を抑制するという
驚くべき事実を見出した。これにより、活性を誘
導し又は阻害する免疫応答が、密接に関連してい
る構造要素と結びついているという事実を、初め
て実験的に証明した。この発明により製造される
すべての化合物は新規物質である。 この発明に係る新規化合物はペプチド化学の常
法に従つて、溶液中で段階的に、合成することが
できる。合成過程で使用する保護基の組合わせ
は、保護基の選択的脱離が可能になるように行な
う必要があり、選択的脱離が一段階で出来るよう
に組合わせるのが特に望ましい。ほとんどの場
合、ペプチド結合は、発明者等によるペンタフル
オロフエニルエステル法(Kisfaludy等、ハンガ
リー特許明細書第168431号、及びKisfaludy等、
Tetra−hedron Letters、1785、1974)により、
形成することができる。 この発明は、免疫調節に影響を与える新規なペ
プチドに関する。さらに詳しくは、次のアミノ酸
配列: X−Arg−Lys−Y−Z (式中、Xはアミノ基中の水素原子又はGlpを表
わし、YはAsp、Asp−Val、Asp−Ala、Asp−
Ile、Asn−Val、Asu−Val又はGlu−Valを表わ
し、そしてZはカルボキシル基中のヒドロキシル
基、又は該ヒドロキシル基に代るアミノ基もしく
は低級アルコキシル基を表わし、ここでGlpはピ
ログルタミル残基を表わし、Argはアルギニン残
基を表わし、Lysはリジン残基を表わし、Aspは
アスパラギン酸残基を表わし、Valはバリン残基
を表わし、Alaはアラニン残基を表わし、Ileはイ
ソロイシン残基を表わし、Asnはアスパラギン残
基を表わし、Asuはアミノスクシニル残基を表わ
し、そしてGluはグルタミン酸残基を表わす) を有するペプチド、又はこれらの塩もしくは被保
護ペプチド(被保護ペプチドにおいては、少なく
とも1つの遊離基が次の保護基により保護されて
いる;Glpのアミノ基:ベンジルオキシカルボニ
ル基;Argのα−アミノ基:ベンジルオキシカル
ボニル基;Argのグアニジノ基:ニトロ基;Lys
のε−アミノ基:ベンジルオキシカルボニル基;
Aspのβ−カルボキシル基:ベンジルオキシ基;
Aspのα−カルボキシル基:ベンジルオキシ基;
Valのカルボキシ基:4−ニトロベンジルオキシ
基;Alaのカルボキシ基:4−ニトロベンジルオ
キシ基;Ileのカルボキシ基:ベンジルオキシ
基;Gluのγ−カルボキシル基:4−クロロ−ベ
ンジルオキシ基)に関する。 本発明の好ましいペプチドとして、次の新規ペ
プチド、すなわち Arg−Lys−Asp Arg−Lys−Asp−Val Arg−Lys−Asn−Val Arg−Lys−Asu−Val Arg−Lys−Asp−Ala Arg−Lys−Asp−Ile Arg−Lys−Glu−Val Lys−Arg−Asp−Val Glp−Arg−Lys−Asp Glp−Arg−Lys−Asp−Val と、これらの塩、アミド、低級アルキルエステル
又は被保護誘導体に関する。この発明に係る新規
ペプチドは、ペプチド化学の常法に従つて合成す
ることができ、そしてもし必要であれば、被保護
誘導体から保護基を脱離することができる。ここ
で、「低級アルキル」なる語は炭素原子1ないし
4個を有するアルキル基について使用する。 この方法の好ましい態様によれば、テトラペプ
チドArg−Lys−Asp−Valは次のようにして合
成することができる。すなわち、L−バリン−P
−ニトロベンジルエステルを、N−tert−ブチル
オキシカルボニル−L−アスパラギン酸−β−ベ
ンジルエステル−α−ペンタフルオロフエニルエ
ステルでアシル化し、この反応で生成した被保護
ジペプチドから、tert−ブチルオキシカルボニル
基を選択的に脱離し、その後、この遊離ジペプチ
ドを、N−α−tert−ブチルオキシカルボニル−
N−ε−ベンジルオキシカルボニル−L−リジン
−ペンタフルオロフエニルエステルによりアシル
化する。こうして得た被保護トリペプチドを、ト
リフルオロ酢酸で処理することにより、N−末端
部分を遊離したトリペプチドを得、そして、これ
を、N−ベンジルオキシカルボニル−O−ニトロ
−L−アルギニン−ペンタフルオロフエニルエス
テルでアシル化する。こうして得た被保護テトラ
ペプチドの全保護基は、接触水素添加により、一
段階で脱離することができる。こうして得た遊離
ペプチドは、一般に、さらに純化する必要がな
い。ある場合には、遊離ペプチドを、シリカゲル
を用いるクロマトグラフ処理により純化する。そ
して、蒸発法又は凍結乾燥法により最終製品を分
離する。こうして得たペプチドは所望の塩又は錯
誘導体に変換することができる。 この発明に係るペプチドの生物学的試験は、次
の試験法により行つた。 () 試験管内試験法 活性E−ロゼツト試験は、ウイブラン
(Wybran)等(Wybran等、New Engl.J.
Med.292、475、1975)の変法により、健康者
及び自己免疫疾患患者(リウマチ様関節炎患者
及び全身性エリテマトーデス患者)のリンパ細
胞を用いて行つた。50μのリンパ細胞懸濁液
に、10-3〜10-11mol/濃度の被検物質溶液を
加え、そしてこの混合物を、37℃において、
5.0%の、二酸化炭素を含む雰囲気中で、60分
間インキユベートした。この後、50μの1%
ヒツジ赤血球懸濁液を加え、そして、この混合
物を1000回/分で10分間遠心分離し、つづい
て、ガレンカンプ(Gallenkampf)振とう機
の変形機で振とうした(振とう時間30秒、振幅
8cm、振とう速度65回/分)。ロゼツトを0.1%
のグルタルアルデヒド(各試験管当り50μ、
3分間)で固定した。3個より多くのヒツジ赤
血球を結合しているリンパ細胞を顕微鏡で計数
し、そして、4×100細胞の値を求めた。分離
したリンパ細胞には、不純成分として、マクロ
フアージ及び多形核細胞が含まれている(10%
以下)。ロゼツトを形成した細胞数は、各場合
につき、この数値により修正した。この結果を
第1表及び第2表に示した。 () 生体内試験法 (1) 抗体産生に対する効果をゼグロウスキー
(Ceglowski)法(Ceglowski、Ann.N.Y.
Acad.Sci.249、343、1975)に従つて試験し
た。新生H.ウイスター(H.Wister)ラツト
を、生後12時間以内に、4×10-3ないし4×
10-7mol/の被検物質25μを一回投与す
ることにより処理した(各投与量につき9動
物を使用)。そして、ヒツジ赤血球5%懸濁
液0.5mlづつを各動物に腹腔内投与すること
により、14日目の動物にヒツジ赤血球懸濁液
による免疫処理をほどこした。この免疫処理
後7日目に、動物を断頭した。3動物の血液
を一緒にし、(3000回/分で10分間遠心分離
した後)に得られた血清について、抗体価を
タカツシ(Takatsy)の方法(Takatsy、
Acta Microbiol.Acad.Sci.Hung.3、191、
1955)により測定した。この結果を凝集素価
で表示した。この値は、凝集を観察しうる、
血清の最低希釈に一致する。この結果を第3
表に示した。 (2) 特異抗体産生細胞の数をカニンガム (Canningham)の方法(Handbook of
Experimental Immunology、著者、D.M.
Weir、第2巻、P−285、Blackwell、オツ
クスアオード−ロンドン、1978)により測定
した。この方法に従い、免疫動物の脾臓細
胞、ヒツジ赤血球懸濁液及び補体からなる均
一な懸濁液を調製し、そしてこれを、単一細
胞層を形成するのに適した容器に入れた。脾
臓細胞の周囲に溶血斑が生じる。この溶血斑
の数は、特異抗体産生細胞(プラーク形成細
胞、PFC)の数と同じである。 実験動物に、生後12時間以内に、被検物質
を一回腹腔内投与した。(1)の方法に従つて、
各物質につき3種類の投与量で試験した。免
疫処理後7日目に、動物から分離した脾臓細
胞のプラーク形成を試験した。処理動物と無
処理動物(対象)によるプラーク形成の比を
第4表に示した。
【表】
【表】
【表】
【表】
【表】
第1表のデーターは、リユウマチ様関節炎患者
のリンパ細胞のE−ロゼツト形成活性が、
10-9mol/濃度のテトラペプチドArg−Lys−
Asp−Val(化合物No.1)、この物質のアミド(化
合物No.3)、トリペプチドArg−Lys−Asp(化合
物No.2)、テトラペプチドArg−Lys−Asu−Val
(化合物No.8)によつて有意に刺激され、そして
10-7mol/濃度のテトラペプチドエステルArg
−Lys−Asp−Val−OMeも又刺激効果を有する
ことを示している。それぞれ、10-9mol/及び
10-5mol/濃度の、ピログルタミン酸から始ま
るペンタペプチド及びテトラペプチド(物質No.7
及びNo.8)は、10-5mol/濃度の、アスパラギ
ンを含むテトラペプチド(化合物No.7)と同様有
意な阻害活性を示した。 健康者のリンパ細胞のE−ロゼツト形成活性を
示す第2表によれば、10-9mol/濃度のテトラ
ペプチドArg−Lys−Asp−Val(化合物No.1)、
10-7mol/濃度のトリペプチドArg−Lys−Asp
(化合物No.2)は有意な刺激効果を有する。
10-11mol/濃度の化合物No.1のアミド(化合
物No.3)、それぞれ10-11mol/濃度のテトラペ
プチドArg−Lys−Asp−Ala(化合物No.9)及び
テトラペプチドGlp−Arg−Lys−Asp(化合物No.
6)も同様に刺激効果を有する。この試験におい
て、化合物No.1のメチルエステル(化合物No.4)
は、10-11mol/濃度において使用した場合阻
害効果を示した。 凝集素価で表示した、生体内における抗体産生
に対する効果を第3表に示す。4×10-6mol/
濃度のトリペプチドArg−Lys−Asp、及び4×
10-7mol/濃度のテトラペプチドArg−Lys−
Asp−Alaは、4×10-8mol/濃度のArg−Lys
−Asp−Val−NH2と同様に、有意な刺激活性を
有する。配列がピログルタミン酸から始まる2種
のペプチド、すなわち、Glp−Arg−Lys−Asp−
Val(4×10-7mol/濃度)は、この試験におい
ても又阻害活性を示した。 プラーク形成脾臓細胞に対する生体内における
効果の結果を第4表に示す。このデーターによれ
ばトリペプチドArg−Lys−Asp及びテトラペプ
チドアミドArg−Lys−Asp−Val−NH2はより
低い投与量において約2倍に増加せしめ、一方テ
トラペプチドArg−Lys−Asp−Alaは試験した
すべての投与量において実質的な増加を導いた。 この発明に係るペプチドは、その塩及びその錯
体と同様、常用の剤形で治療に用いることができ
る。この製剤組成物は、経腸投与又は非経口投与
に適する無機又は有機の担体と混合した状態で、
この発明に係る活性化合物を含む。典型的な製剤
には、炭化水素のごとき、ペプチドと反応しない
担体を含む凍結乾燥固形物、薄いもしくは濃厚な
懸濁液もしくは乳濁液、錠剤又は注射剤等が含ま
れる。 この発明を、さらに次の実施例により説明す
る。但し、これによつてこの発明を限定しようと
するものではない。 この実施例において使用している略号と記号は
化学文献に広く使用されている(J.Biol.
Chem.247、977、1972)。更に次の記号を使用す
る。 Z:ベンジルオキシカルボニル基 Boc:tert−ブチルオキシカルボニル基 OtBu:tert−ブチルオキシ基 OPfp:ペンタフルオロフエノキシ基 Asu:L−アミノ−サクシニル基 OMe:メトキシ基 OBzl:ベンジルオキシ基 ONB:4−ニトロベンジルオキシ基 これらの保護基に関し、アミノ酸の3文字記号
の前に示した保護基はα−アミノ基の保護基を意
味し、アミノ酸の記号の後のハイフオンの後に示
した保護基はα−カルボキシ基の保護基を意味
し、そしてアミノ酸記号のすぐ後のカツコ内に示
した保護基はα−アミノ基及びα−カルボキシ基
以外の官応基の保護基を示す。 融点はトツトリ(Tottori)氏の装置(Bu¨chi、
スイス)により測定した。薄層クロマトグラフ法
はシリカゲル吸着板(メルク社製DC
Fetigplatten)上で、次の溶剤混合物を使用して
行つた。 (1) 酢酸エチル:(ピリジン:酢酸:水) 95:5(20:6:11) (2) 酢酸エチル:(ピリジン:酢酸:水) 9:1(20:6:11) (3) 酢酸エチル:(ピリジン:酢酸:水) 4:1(20:6:11) (4) 酢酸エチル:(ピリジン:酢酸:水) 3:2(20:6:11) (5) n−ブタノール:(ピリジン:酢酸:水) 3:7(20:6:11) (6) クロロホルム:メタノール 9:1 (7) n−ブタノール:酢酸:水 1:1:1 (8) n−ブタノール:酢酸:水(上層) 4:1:5 クロマトグラムはニンヒドリンにより、又は塩
素化した後KJ−トリジンにより発色せしめた。
比旋光度はパーキン―エルマー(Perkin−
Elmer)141光電旋光計で測定した。溶剤は、40
℃を越えない水浴上のビユツヒローターベーパー
(Bu¨chi Rotavopor)蒸発器で(蒸発により)除
去した。 実施例 1 (方法A) Z−Arg(NO2)−Lys(2)−Asp(OBZl)−Val−
ONB 1.73g(6mmol)のVal−ONB・HClを15mlの
ジメチルホルムアミドに溶解した溶液に、0.84ml
(6mmol)のトリエチルアミンと2.45g
(5mmol)のBos−Asp(OBZl)−OPfpを加えた。
この反応混合液を、室温で、30分間撹拌し、溶剤
を蒸発させ、そして残渣を30mlの酢酸エチルに溶
解した。この溶液を15mlの1N塩酸水溶液、5%
炭酸水素ナトリウム水溶液及び水と、順次振とう
し、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、そして、真空
蒸発した。残留物(Rf 6=0.9)として得た被保護
ジペプチドを、ジオキサンに溶解した8N塩酸溶
液10mlの中におき、15分後、40mlの無水エーテル
で希釈し、そして蒸発乾燥した。残留遊離ジペプ
チド(Rf 2=0.5)を、10mlのジメチルホルムアミ
ドに溶解し、トリエチルアミンによりPHを8に調
整し、そして、3.1g(5.5mmol)のBoc−Lys(2)
−OPfpを加えた。反応混合物を、トリエチルア
ミンを加えてPHを8に保持しながら、室温におい
て、30分間撹拌した。そして、この溶液を60mlの
クロロホルムで希釈し、そして、それぞれ、15ml
の1N塩酸水溶液及び水と共に、順次振とうした。
有機相を乾燥し、そして、蒸発乾燥し、得られた
残渣を乾燥エーテルを加えて凝固させた。こうし
て得た被保護トリペプチド(Rf 1=0.4)を、100
mlの乾燥エーテルで沈澱せしめ、濾取し、そし
て、エーテルで2回洗浄した。こうして得た生成
物を20mlのジメチルホルムアミドに溶解し、この
溶液のPHを、トリエチルアミンにより8に調整
し、そして、3.3g(7mmol)のZ−Arg(NO2)
−OPfpを加えた。反応混合物を、トリエチルア
ミンでPH8に保持しながら、室温において、30分
間撹拌した。次に、溶剤を蒸発せしめ、残渣を50
mlのエタノールと共に粉砕し、濾取し、そして、
10mlのエタノールで2回洗浄し、3.05gの被保護
テトラペプチドを得た〔収率は、最初のBoc−
Asp(OBZl)−OPfpに関して73%〕。融点:135
〜148℃;Rf 2=0.80であつた。 実施例 2 (方法B) Z−Arg(NO2)−Lys(2)−Asp(OBZl)−OBZ
l 1.62g(3.3mmol)のBoc−Lsy(2)−OPfp、
1.40g(4.0mmol)のAsp(OBZl)−OBZl・
HCl及び0.98ml(7.0mmol)のトリエチルアミン
の混合物を10mlの酢酸エチル中で、室温にて、1
時間置いた。この反応混合物を20mlの酢酸エチル
で希釈し、10mlの1N酸水溶液及び10mlの5%炭
酸水素ナトリウム水溶液と共に振とうし、無水硫
酸ナトリウムで乾燥し、溶剤を真空蒸発し、そし
て、残渣をn−ヘキサンで凝固せしめ、濾取し、
そして、n−ヘキサンで洗浄した。こうして得た
被保護ジペプチド(収率81.2%、融点92〜95℃、
Rf 2=0.75)を、ジオキサンに溶解した4N塩酸溶
液30mlで処理し、そして、30分後、この溶液を蒸
発乾燥した。遊離ジペプチド(Rf 2=0.10)を10
mlのジメチルホルムアミドに溶解し、この溶液を
0.35mlのトリエチルアミンで中和し、そして、こ
うして得た懸濁液を、次のようにして調製した混
合無水物に加えた。すなわち、10.6g
(3.0mmol)のZ−Arg(NO2)−OH及び0.42ml
(3.0mmol)のトリエチルアミンを5mlのジエチ
ルホルムアミドに入れて、これを−10℃に冷却
し、この温度で、この溶液に0.36ml(3.0mmol)
のピバロイルクロリドを、滴下しながら添加し
た。5分後に、−10℃において、この混合無水物
溶液への前記の遊離ジペプチド溶液の添加を開始
した。反応混合物を、0℃において、さらに30分
間撹拌し、一夜室温で静置し、そして蒸発乾燥し
た。残渣を50mlのクロロホルムに溶解し、順次、
10mlの1N塩酸溶液、5%炭酸水素ナトリウム水
溶液及び水と共に振とうした。有機相を乾燥し、
そして、蒸発乾燥し、そして、この残渣を、エー
テルとn−ヘキサンの1:1混液で凝固せしめ
た。こうして、1.82g(84%)の前記の被保護ト
リペプチド(Rf 2=0.07)を得た。 実施例 3 (方法C) Z−Arg(NO2)−Lys(2)−Asu−Val−OH 2.51g(12mmol)のVal−OtBu・HClを50ml
のクロロホルムに溶解し、そして、3.86g
(10mmol)のBoc−Asp(OtBu)−OSuを加え、
次に、1.68ml(12mmol)のトリエチルアミンを
加えた。次の日、この溶液を、それぞれ、10ml
の、1N塩酸水溶液及び炭酸水素ナトリウム水溶
液と共に3回振とうした。乾燥した後、溶剤を蒸
発せしめ、そして残留した被保護ジペプチド
(Rf 2=0.08)を、1週間、30mlの5N臭化水素酢
酸溶液中に置いた。次に、この反応混合物を蒸発
乾燥し、この残渣を乾燥エーテルで凝固せしめ
た。こうして、2.65g(98.2%)のAsu−Val−
OH・HBr(Rf 4=0.15)を得、これを実施例1に
記載した方法でアシル化した。こうして得た被保
護テトラペプチドの性質を第5表に示す。 実施例 4 Arg−Lys−Asp−Val 2.25g(2.22mmol)のZ−Arg(NO2)−Lys(2)
−Asp(OBZl)−Val−ONB(実施例1)を50ml
の90%酢酸溶液に懸濁し、そして、1gの5%パ
ラジウム―活性炭触媒を加え、そして、14時間、
この混合物を通して水素ガスを泡立たせた。触媒
を濾去し、10mlの90%酢酸溶液で2回洗浄し、こ
の濾液を蒸発乾燥した。この残渣に水及びエタノ
ールを加えて、再度蒸発せしめ、そして、これを
2mlの水に溶解し、続いて30mlのエタノールを加
えた。こうして得た懸濁液を濾過し、そして、こ
の沈澱物をエタノールで洗浄した。これにより遊
離の一酢酸テトラペプチドを0.92g(80%)得
た。 アミノ酸分析の結果は、Lys:1.05(1.00);
Arg:0.95(1.00);Asp:1.04(1.00);Val:0.95
(1.00)であり、〔α〕22 D=−24.8°(c=1.0、10%
酢
酸)、Rf 8=0.10であつた。 それぞれ上記の方法A,B及びCに従つて、等
モル量の対応する他の出発物質を使用して、第5
表及び第6表に示した類似の構造を有する化合物
を得た。
のリンパ細胞のE−ロゼツト形成活性が、
10-9mol/濃度のテトラペプチドArg−Lys−
Asp−Val(化合物No.1)、この物質のアミド(化
合物No.3)、トリペプチドArg−Lys−Asp(化合
物No.2)、テトラペプチドArg−Lys−Asu−Val
(化合物No.8)によつて有意に刺激され、そして
10-7mol/濃度のテトラペプチドエステルArg
−Lys−Asp−Val−OMeも又刺激効果を有する
ことを示している。それぞれ、10-9mol/及び
10-5mol/濃度の、ピログルタミン酸から始ま
るペンタペプチド及びテトラペプチド(物質No.7
及びNo.8)は、10-5mol/濃度の、アスパラギ
ンを含むテトラペプチド(化合物No.7)と同様有
意な阻害活性を示した。 健康者のリンパ細胞のE−ロゼツト形成活性を
示す第2表によれば、10-9mol/濃度のテトラ
ペプチドArg−Lys−Asp−Val(化合物No.1)、
10-7mol/濃度のトリペプチドArg−Lys−Asp
(化合物No.2)は有意な刺激効果を有する。
10-11mol/濃度の化合物No.1のアミド(化合
物No.3)、それぞれ10-11mol/濃度のテトラペ
プチドArg−Lys−Asp−Ala(化合物No.9)及び
テトラペプチドGlp−Arg−Lys−Asp(化合物No.
6)も同様に刺激効果を有する。この試験におい
て、化合物No.1のメチルエステル(化合物No.4)
は、10-11mol/濃度において使用した場合阻
害効果を示した。 凝集素価で表示した、生体内における抗体産生
に対する効果を第3表に示す。4×10-6mol/
濃度のトリペプチドArg−Lys−Asp、及び4×
10-7mol/濃度のテトラペプチドArg−Lys−
Asp−Alaは、4×10-8mol/濃度のArg−Lys
−Asp−Val−NH2と同様に、有意な刺激活性を
有する。配列がピログルタミン酸から始まる2種
のペプチド、すなわち、Glp−Arg−Lys−Asp−
Val(4×10-7mol/濃度)は、この試験におい
ても又阻害活性を示した。 プラーク形成脾臓細胞に対する生体内における
効果の結果を第4表に示す。このデーターによれ
ばトリペプチドArg−Lys−Asp及びテトラペプ
チドアミドArg−Lys−Asp−Val−NH2はより
低い投与量において約2倍に増加せしめ、一方テ
トラペプチドArg−Lys−Asp−Alaは試験した
すべての投与量において実質的な増加を導いた。 この発明に係るペプチドは、その塩及びその錯
体と同様、常用の剤形で治療に用いることができ
る。この製剤組成物は、経腸投与又は非経口投与
に適する無機又は有機の担体と混合した状態で、
この発明に係る活性化合物を含む。典型的な製剤
には、炭化水素のごとき、ペプチドと反応しない
担体を含む凍結乾燥固形物、薄いもしくは濃厚な
懸濁液もしくは乳濁液、錠剤又は注射剤等が含ま
れる。 この発明を、さらに次の実施例により説明す
る。但し、これによつてこの発明を限定しようと
するものではない。 この実施例において使用している略号と記号は
化学文献に広く使用されている(J.Biol.
Chem.247、977、1972)。更に次の記号を使用す
る。 Z:ベンジルオキシカルボニル基 Boc:tert−ブチルオキシカルボニル基 OtBu:tert−ブチルオキシ基 OPfp:ペンタフルオロフエノキシ基 Asu:L−アミノ−サクシニル基 OMe:メトキシ基 OBzl:ベンジルオキシ基 ONB:4−ニトロベンジルオキシ基 これらの保護基に関し、アミノ酸の3文字記号
の前に示した保護基はα−アミノ基の保護基を意
味し、アミノ酸の記号の後のハイフオンの後に示
した保護基はα−カルボキシ基の保護基を意味
し、そしてアミノ酸記号のすぐ後のカツコ内に示
した保護基はα−アミノ基及びα−カルボキシ基
以外の官応基の保護基を示す。 融点はトツトリ(Tottori)氏の装置(Bu¨chi、
スイス)により測定した。薄層クロマトグラフ法
はシリカゲル吸着板(メルク社製DC
Fetigplatten)上で、次の溶剤混合物を使用して
行つた。 (1) 酢酸エチル:(ピリジン:酢酸:水) 95:5(20:6:11) (2) 酢酸エチル:(ピリジン:酢酸:水) 9:1(20:6:11) (3) 酢酸エチル:(ピリジン:酢酸:水) 4:1(20:6:11) (4) 酢酸エチル:(ピリジン:酢酸:水) 3:2(20:6:11) (5) n−ブタノール:(ピリジン:酢酸:水) 3:7(20:6:11) (6) クロロホルム:メタノール 9:1 (7) n−ブタノール:酢酸:水 1:1:1 (8) n−ブタノール:酢酸:水(上層) 4:1:5 クロマトグラムはニンヒドリンにより、又は塩
素化した後KJ−トリジンにより発色せしめた。
比旋光度はパーキン―エルマー(Perkin−
Elmer)141光電旋光計で測定した。溶剤は、40
℃を越えない水浴上のビユツヒローターベーパー
(Bu¨chi Rotavopor)蒸発器で(蒸発により)除
去した。 実施例 1 (方法A) Z−Arg(NO2)−Lys(2)−Asp(OBZl)−Val−
ONB 1.73g(6mmol)のVal−ONB・HClを15mlの
ジメチルホルムアミドに溶解した溶液に、0.84ml
(6mmol)のトリエチルアミンと2.45g
(5mmol)のBos−Asp(OBZl)−OPfpを加えた。
この反応混合液を、室温で、30分間撹拌し、溶剤
を蒸発させ、そして残渣を30mlの酢酸エチルに溶
解した。この溶液を15mlの1N塩酸水溶液、5%
炭酸水素ナトリウム水溶液及び水と、順次振とう
し、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、そして、真空
蒸発した。残留物(Rf 6=0.9)として得た被保護
ジペプチドを、ジオキサンに溶解した8N塩酸溶
液10mlの中におき、15分後、40mlの無水エーテル
で希釈し、そして蒸発乾燥した。残留遊離ジペプ
チド(Rf 2=0.5)を、10mlのジメチルホルムアミ
ドに溶解し、トリエチルアミンによりPHを8に調
整し、そして、3.1g(5.5mmol)のBoc−Lys(2)
−OPfpを加えた。反応混合物を、トリエチルア
ミンを加えてPHを8に保持しながら、室温におい
て、30分間撹拌した。そして、この溶液を60mlの
クロロホルムで希釈し、そして、それぞれ、15ml
の1N塩酸水溶液及び水と共に、順次振とうした。
有機相を乾燥し、そして、蒸発乾燥し、得られた
残渣を乾燥エーテルを加えて凝固させた。こうし
て得た被保護トリペプチド(Rf 1=0.4)を、100
mlの乾燥エーテルで沈澱せしめ、濾取し、そし
て、エーテルで2回洗浄した。こうして得た生成
物を20mlのジメチルホルムアミドに溶解し、この
溶液のPHを、トリエチルアミンにより8に調整
し、そして、3.3g(7mmol)のZ−Arg(NO2)
−OPfpを加えた。反応混合物を、トリエチルア
ミンでPH8に保持しながら、室温において、30分
間撹拌した。次に、溶剤を蒸発せしめ、残渣を50
mlのエタノールと共に粉砕し、濾取し、そして、
10mlのエタノールで2回洗浄し、3.05gの被保護
テトラペプチドを得た〔収率は、最初のBoc−
Asp(OBZl)−OPfpに関して73%〕。融点:135
〜148℃;Rf 2=0.80であつた。 実施例 2 (方法B) Z−Arg(NO2)−Lys(2)−Asp(OBZl)−OBZ
l 1.62g(3.3mmol)のBoc−Lsy(2)−OPfp、
1.40g(4.0mmol)のAsp(OBZl)−OBZl・
HCl及び0.98ml(7.0mmol)のトリエチルアミン
の混合物を10mlの酢酸エチル中で、室温にて、1
時間置いた。この反応混合物を20mlの酢酸エチル
で希釈し、10mlの1N酸水溶液及び10mlの5%炭
酸水素ナトリウム水溶液と共に振とうし、無水硫
酸ナトリウムで乾燥し、溶剤を真空蒸発し、そし
て、残渣をn−ヘキサンで凝固せしめ、濾取し、
そして、n−ヘキサンで洗浄した。こうして得た
被保護ジペプチド(収率81.2%、融点92〜95℃、
Rf 2=0.75)を、ジオキサンに溶解した4N塩酸溶
液30mlで処理し、そして、30分後、この溶液を蒸
発乾燥した。遊離ジペプチド(Rf 2=0.10)を10
mlのジメチルホルムアミドに溶解し、この溶液を
0.35mlのトリエチルアミンで中和し、そして、こ
うして得た懸濁液を、次のようにして調製した混
合無水物に加えた。すなわち、10.6g
(3.0mmol)のZ−Arg(NO2)−OH及び0.42ml
(3.0mmol)のトリエチルアミンを5mlのジエチ
ルホルムアミドに入れて、これを−10℃に冷却
し、この温度で、この溶液に0.36ml(3.0mmol)
のピバロイルクロリドを、滴下しながら添加し
た。5分後に、−10℃において、この混合無水物
溶液への前記の遊離ジペプチド溶液の添加を開始
した。反応混合物を、0℃において、さらに30分
間撹拌し、一夜室温で静置し、そして蒸発乾燥し
た。残渣を50mlのクロロホルムに溶解し、順次、
10mlの1N塩酸溶液、5%炭酸水素ナトリウム水
溶液及び水と共に振とうした。有機相を乾燥し、
そして、蒸発乾燥し、そして、この残渣を、エー
テルとn−ヘキサンの1:1混液で凝固せしめ
た。こうして、1.82g(84%)の前記の被保護ト
リペプチド(Rf 2=0.07)を得た。 実施例 3 (方法C) Z−Arg(NO2)−Lys(2)−Asu−Val−OH 2.51g(12mmol)のVal−OtBu・HClを50ml
のクロロホルムに溶解し、そして、3.86g
(10mmol)のBoc−Asp(OtBu)−OSuを加え、
次に、1.68ml(12mmol)のトリエチルアミンを
加えた。次の日、この溶液を、それぞれ、10ml
の、1N塩酸水溶液及び炭酸水素ナトリウム水溶
液と共に3回振とうした。乾燥した後、溶剤を蒸
発せしめ、そして残留した被保護ジペプチド
(Rf 2=0.08)を、1週間、30mlの5N臭化水素酢
酸溶液中に置いた。次に、この反応混合物を蒸発
乾燥し、この残渣を乾燥エーテルで凝固せしめ
た。こうして、2.65g(98.2%)のAsu−Val−
OH・HBr(Rf 4=0.15)を得、これを実施例1に
記載した方法でアシル化した。こうして得た被保
護テトラペプチドの性質を第5表に示す。 実施例 4 Arg−Lys−Asp−Val 2.25g(2.22mmol)のZ−Arg(NO2)−Lys(2)
−Asp(OBZl)−Val−ONB(実施例1)を50ml
の90%酢酸溶液に懸濁し、そして、1gの5%パ
ラジウム―活性炭触媒を加え、そして、14時間、
この混合物を通して水素ガスを泡立たせた。触媒
を濾去し、10mlの90%酢酸溶液で2回洗浄し、こ
の濾液を蒸発乾燥した。この残渣に水及びエタノ
ールを加えて、再度蒸発せしめ、そして、これを
2mlの水に溶解し、続いて30mlのエタノールを加
えた。こうして得た懸濁液を濾過し、そして、こ
の沈澱物をエタノールで洗浄した。これにより遊
離の一酢酸テトラペプチドを0.92g(80%)得
た。 アミノ酸分析の結果は、Lys:1.05(1.00);
Arg:0.95(1.00);Asp:1.04(1.00);Val:0.95
(1.00)であり、〔α〕22 D=−24.8°(c=1.0、10%
酢
酸)、Rf 8=0.10であつた。 それぞれ上記の方法A,B及びCに従つて、等
モル量の対応する他の出発物質を使用して、第5
表及び第6表に示した類似の構造を有する化合物
を得た。
【表】
ール
(1〓4)
ール
(1〓4)
【表】
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 次のアミノ酸配列: X−Arg−Lys−Y−Z (式中、Xはアミノ基中の水素原子又はGlpを表
わし、YはAsp、Asp−Val、Asp−Ala、Asp−
Ile、Asn−Val、Asu−Val又はGlu−Valを表わ
し、そしてZはカルボキシル基中のヒドロキシル
基、又は該ヒドロキシル基に代るアミノ基もしく
は低級アルコキシル基を表わし、ここでGlpはピ
ログルタミル残基を表わし、Argはアルギニン残
基を表わし、Lysはリジン残基を表わし、Aspは
アスパラギン酸残基を表わし、Valはバリン残基
を表わし、Alaはアラニン残基を表わし、Ileはイ
ソロイシン残基を表わし、Asnはアスパラギン残
基を表わし、Asuはアミノスクシニル残基を表わ
し、そしてGluはグルタミン酸残基を表わす) を有するペプチド、又はこれらの塩もしくは被保
護ペプチド(被保護ペプチドにおいては、遊離基
が次の保護基により保護されている;Glpのアミ
ノ基:ベンジルオキシカルボニル基;Argのα−
アミノ基:ベンジルオキシカルボニル基;Argの
グアニジノ基:ニトロ基;Lysのε−アミノ基:
ベンジルオキシカルボニル基;Aspのβ−カルボ
キシル基:ベンジルオキシ基;Aspのα−カルボ
キシル基:ベンジルオキシ基;Valのカルボキシ
基:4−ニトロベンジルオキシ基;Alaのカルボ
キシ基:4−ニトロベンジルオキシ基;Ileのカ
ルボキシ基:ベンジルオキシ基;Gluのγ−カル
ボキシル基:4−クロロ−ベンジルオキシ基)。
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