JPH03172179A - 2型―制限エンドヌクレアーゼMcrI - Google Patents
2型―制限エンドヌクレアーゼMcrIInfo
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- JPH03172179A JPH03172179A JP2307356A JP30735690A JPH03172179A JP H03172179 A JPH03172179 A JP H03172179A JP 2307356 A JP2307356 A JP 2307356A JP 30735690 A JP30735690 A JP 30735690A JP H03172179 A JPH03172179 A JP H03172179A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
[産業上の利用分野1
本発明は■型一制限エンドヌクレアーゼMcrI,その
取得法及び使用に関する。
取得法及び使用に関する。
■型−m@工冫ドヌクレアーゼは、特定のDNA配列を
認識し、切断することのできるエンドデソキシリポヌク
レアーゼである。この際、U的配列中のホスホジエステ
ル禍が、しかモ各ポリヌクレオチド鎖中で加水分解され
る。従って、■型制限工冫ドヌクレアーゼは、DNA一
分子の分析にとって重要である。多くのDNA−配列に
関して特異的なn型一制限エンドヌクレアーゼは、既に
公知であるが、DNA一配列に関して特異的であり、従
来、公知の制限エンドヌクレアーゼのいずれによっても
認識されない■型一制限エンドヌクレアーゼを提供する
必要がある。 [発明が解決しようとする課題〕 従って、本発明は、従来の酵素によって認識されなかっ
た配列を特異的に認識し、かつ切断することのできる新
規の制限エンドヌクレアーゼを提供することを課題とし
ている。 [課題を解決するための手段1 この課題は、本発明により、 の認識配列及び標識で定義された切断位置に関係する■
型一制限エンドヌクレアーゼにより解決される。 本発明による新規の制限エンドヌクレアーゼ(以後これ
をMcrIと称する)は、37℃で至適温度を有する。 この酵素は、p H 7 .4〜8.3で、DTE (
ジチオスレイトール)1.0篇モル/Q,酢酸マグネシ
ウム10+モル/Qを有スルトリスーHCI−緩衝液5
0mモル/a中で良好な活性を有する。この至適pHは
p H 7 .8である。Mcrlに対するアイソシゾ
マー(夏soschizo+mar)である酵素は知ら
れていない。 この認識配列は、ウイルスアデノ2、ファ−ジラムダ、
phiX l 7 4及び7アージ誘導体M13mp8
及びグラスミド,B322及びpBR328の完全消化
により確認できる。これらのDNA一分子をMcrlで
処理する。 第l表に、次の配列: を認識する酵素に関する実験的に観察された切断位置特
異性とコンピュータ測定された切断位置特異性とを比較
して示す。 この酵素の認識配列内の切断位置は、ユニ/《一サルな
配列決定プライマー( S equenzierpr−
imers ; M ess ing等によるN uc
l.A cids R es.(+ 98 1) 、旦
、309〜32l)の結合位置に対して約30〜200
塩基の距離にこの認識配列を有するM13一誘導体で測
定できる。 このMI3誘導体の1本鎖DNSの所で、まずユニバー
サルな配列決定プライマーとジデソキシ連鎖中断法によ
る配列決定反応を実施する(S anger F .等
による( 1 9 7 7 ) 、P roc.Na−
tl. Acad. S ci.U S A 7 4、
560〜564M essing. J .等による(
1 9 8 1) 、Nucl.A aids R
es. 9、309〜321)。 これと並行して、配列決定プライマーをT4ーポリヌク
レオチドーキナーゼ及び[γ31]ATPを用いて、5
′一末端の所で放射能標識付けをする。この5′一末端
標識付けされた配列決定プライマーの1本11M13−
DNSへのノ)イブリド結合の後に、DNSポリメラー
ゼI(クレノ7酵素)及びdATP,dCTP,dGT
P及びdTTPからのデソキシヌクレオチドホス7エー
ト混合物での挿入反応で、部分的2本鎖DNSを製造す
る。新規に合威された鎖の5′末端の所で放射能標識さ
れているこのDNSを、次いで制限エンドヌクレアーゼ
Mcrrで切断する。この切断バッチの半分を、付加的
に、なお、平滑DNS一末端を得るために、全ての4種
のデソキシヌクレオチドホスフェートの混合物の存在下
で、T4−DNS−ポリメラーゼで処理する。 反応生虞物の分析を、配列決定ゲル( S equ−e
nziergel) (尿素8モル/12,ポリアク
リルアミド5%)上での電気泳勧及び引統くオートラジ
オグラフィにより行なう。結果の解析は、ブラウン(
B rown) N . L .及びスミス( Smi
th)M.による方法( M ethods in E
nzymology65、(1980)、391〜4
01)で実施する。放射能標識されたフラグメントの移
動距離と配列リーダー( S equenzleite
r)との比較により、切断位置を決定する。付加的に7
4DNSボリメラーゼで処理された試料は、単にMcr
lで切断された試料と比べて2bpだけ延長されたバン
ドの移動距離を示す。従って、Mcrlは、3′一突出
しているDNS一末端を生じることが明らかである。従
って、MCrIの切断は、次の特異性: を有する認識配列内で行なわれる。 実論的に測定された切断位置の数は、配列:に関する種
々のDNSでのコンピュータ分析により得られた切断位
置の数と同じである(第l表)。付加的に、これらのデ
ータをGenlO(1980)357〜370からの表
と比較した。 有利に、Marlは、マイクロコッカス属の微生物を培
貢し、その細胞から酵素を取得する方法で得られる。マ
イクロコッカス・クリオ7イル7. ( M icro
coccus cryophilus) D S M
20429を使用するのが有利である。 この微生物は、D S M (D eutschen
S aa+IIIlungvon M ikroorg
anismen %Manscheroder Weg
lbs 3300Braunschweig, BRD
)に寄託されており、DSM2 0 4 2 9の寄託
番号を有する。 この酵素の取得のために使用される微生物は、好気的に
メルク・スタンダード(Merck S ta−nda
rd) I培地中で生長する。 至適生長条件は、l8℃、pH7.2〜7.8である。 2倍化時間は約2時間である。 その取得のためには、慣用の生物学的精製法が使用され
、この際、その都度に得られるフラクション中で、その
認識配列の切断により、この酵素の存在を容易に立征す
ることができる。 基質としては、例えばλ一DNAが好適である.得られ
るDNA−7ラグメントは、フラグメント分雌のために
慣用の緩衝剤系中でのアガロースゲルで、臭化エチジウ
ムの存在下に電気泳動により分離されうる。 この酵素を、慣用の化学的及びIII械的方法例えば高
圧分散、超音波又は酵素的崩壊法により単離しかつ精製
する。本発明方法の有利なl実施形では、細胞を5バー
ルの過圧に露呈する。 この際に生じた細胞物質を、トリスーHCI緩衡液(p
H8.0、これはグロテアーゼ阻害剤を含有する)中に
再懸濁させる。引続きこの細胞を7レンチプレス( F
rench − P resse)により崩壊させる
。上澄みを更に精製するために、有利に77イニテイク
口マトグラフィ及びイオン交換体クロマトグラフィを実
施する。ア7イニテイクロマトグラフィ用材料としては
、例えばヘバリンーセ7アロースC L−6B (H
eparin 一S epharose C L −
6 B ; P harw+acia)が好適である。 アニオン交換体としては、Q−セファロース( Q −
S epharose ; P harmacia
)なる名称で入手される製品が好適である。しかしな
がら、当業者に公知である他のクロマトグラフィ材料も
好適である。
認識し、切断することのできるエンドデソキシリポヌク
レアーゼである。この際、U的配列中のホスホジエステ
ル禍が、しかモ各ポリヌクレオチド鎖中で加水分解され
る。従って、■型制限工冫ドヌクレアーゼは、DNA一
分子の分析にとって重要である。多くのDNA−配列に
関して特異的なn型一制限エンドヌクレアーゼは、既に
公知であるが、DNA一配列に関して特異的であり、従
来、公知の制限エンドヌクレアーゼのいずれによっても
認識されない■型一制限エンドヌクレアーゼを提供する
必要がある。 [発明が解決しようとする課題〕 従って、本発明は、従来の酵素によって認識されなかっ
た配列を特異的に認識し、かつ切断することのできる新
規の制限エンドヌクレアーゼを提供することを課題とし
ている。 [課題を解決するための手段1 この課題は、本発明により、 の認識配列及び標識で定義された切断位置に関係する■
型一制限エンドヌクレアーゼにより解決される。 本発明による新規の制限エンドヌクレアーゼ(以後これ
をMcrIと称する)は、37℃で至適温度を有する。 この酵素は、p H 7 .4〜8.3で、DTE (
ジチオスレイトール)1.0篇モル/Q,酢酸マグネシ
ウム10+モル/Qを有スルトリスーHCI−緩衝液5
0mモル/a中で良好な活性を有する。この至適pHは
p H 7 .8である。Mcrlに対するアイソシゾ
マー(夏soschizo+mar)である酵素は知ら
れていない。 この認識配列は、ウイルスアデノ2、ファ−ジラムダ、
phiX l 7 4及び7アージ誘導体M13mp8
及びグラスミド,B322及びpBR328の完全消化
により確認できる。これらのDNA一分子をMcrlで
処理する。 第l表に、次の配列: を認識する酵素に関する実験的に観察された切断位置特
異性とコンピュータ測定された切断位置特異性とを比較
して示す。 この酵素の認識配列内の切断位置は、ユニ/《一サルな
配列決定プライマー( S equenzierpr−
imers ; M ess ing等によるN uc
l.A cids R es.(+ 98 1) 、旦
、309〜32l)の結合位置に対して約30〜200
塩基の距離にこの認識配列を有するM13一誘導体で測
定できる。 このMI3誘導体の1本鎖DNSの所で、まずユニバー
サルな配列決定プライマーとジデソキシ連鎖中断法によ
る配列決定反応を実施する(S anger F .等
による( 1 9 7 7 ) 、P roc.Na−
tl. Acad. S ci.U S A 7 4、
560〜564M essing. J .等による(
1 9 8 1) 、Nucl.A aids R
es. 9、309〜321)。 これと並行して、配列決定プライマーをT4ーポリヌク
レオチドーキナーゼ及び[γ31]ATPを用いて、5
′一末端の所で放射能標識付けをする。この5′一末端
標識付けされた配列決定プライマーの1本11M13−
DNSへのノ)イブリド結合の後に、DNSポリメラー
ゼI(クレノ7酵素)及びdATP,dCTP,dGT
P及びdTTPからのデソキシヌクレオチドホス7エー
ト混合物での挿入反応で、部分的2本鎖DNSを製造す
る。新規に合威された鎖の5′末端の所で放射能標識さ
れているこのDNSを、次いで制限エンドヌクレアーゼ
Mcrrで切断する。この切断バッチの半分を、付加的
に、なお、平滑DNS一末端を得るために、全ての4種
のデソキシヌクレオチドホスフェートの混合物の存在下
で、T4−DNS−ポリメラーゼで処理する。 反応生虞物の分析を、配列決定ゲル( S equ−e
nziergel) (尿素8モル/12,ポリアク
リルアミド5%)上での電気泳勧及び引統くオートラジ
オグラフィにより行なう。結果の解析は、ブラウン(
B rown) N . L .及びスミス( Smi
th)M.による方法( M ethods in E
nzymology65、(1980)、391〜4
01)で実施する。放射能標識されたフラグメントの移
動距離と配列リーダー( S equenzleite
r)との比較により、切断位置を決定する。付加的に7
4DNSボリメラーゼで処理された試料は、単にMcr
lで切断された試料と比べて2bpだけ延長されたバン
ドの移動距離を示す。従って、Mcrlは、3′一突出
しているDNS一末端を生じることが明らかである。従
って、MCrIの切断は、次の特異性: を有する認識配列内で行なわれる。 実論的に測定された切断位置の数は、配列:に関する種
々のDNSでのコンピュータ分析により得られた切断位
置の数と同じである(第l表)。付加的に、これらのデ
ータをGenlO(1980)357〜370からの表
と比較した。 有利に、Marlは、マイクロコッカス属の微生物を培
貢し、その細胞から酵素を取得する方法で得られる。マ
イクロコッカス・クリオ7イル7. ( M icro
coccus cryophilus) D S M
20429を使用するのが有利である。 この微生物は、D S M (D eutschen
S aa+IIIlungvon M ikroorg
anismen %Manscheroder Weg
lbs 3300Braunschweig, BRD
)に寄託されており、DSM2 0 4 2 9の寄託
番号を有する。 この酵素の取得のために使用される微生物は、好気的に
メルク・スタンダード(Merck S ta−nda
rd) I培地中で生長する。 至適生長条件は、l8℃、pH7.2〜7.8である。 2倍化時間は約2時間である。 その取得のためには、慣用の生物学的精製法が使用され
、この際、その都度に得られるフラクション中で、その
認識配列の切断により、この酵素の存在を容易に立征す
ることができる。 基質としては、例えばλ一DNAが好適である.得られ
るDNA−7ラグメントは、フラグメント分雌のために
慣用の緩衝剤系中でのアガロースゲルで、臭化エチジウ
ムの存在下に電気泳動により分離されうる。 この酵素を、慣用の化学的及びIII械的方法例えば高
圧分散、超音波又は酵素的崩壊法により単離しかつ精製
する。本発明方法の有利なl実施形では、細胞を5バー
ルの過圧に露呈する。 この際に生じた細胞物質を、トリスーHCI緩衡液(p
H8.0、これはグロテアーゼ阻害剤を含有する)中に
再懸濁させる。引続きこの細胞を7レンチプレス( F
rench − P resse)により崩壊させる
。上澄みを更に精製するために、有利に77イニテイク
口マトグラフィ及びイオン交換体クロマトグラフィを実
施する。ア7イニテイクロマトグラフィ用材料としては
、例えばヘバリンーセ7アロースC L−6B (H
eparin 一S epharose C L −
6 B ; P harw+acia)が好適である。 アニオン交換体としては、Q−セファロース( Q −
S epharose ; P harmacia
)なる名称で入手される製品が好適である。しかしな
がら、当業者に公知である他のクロマトグラフィ材料も
好適である。
次の例で本発明を更に説明する。
例 l
マイクロコッカス・クリオフィルスDSM20429を
18℃で25時間培養し、対数後期に収獲する.培貴媒
体としてメルク・スタンダードI (Merck S
tandardl )一培地を使用する。 細胞ペースト(湿重量30g)を、プロテアーゼ阻害剤
を含・有する緩衝液A(トリスーHCL40s+モル/
Q%p H 8 .0、EDTA O.1モル/Q1
2−メルカプトエタノール7mモル702.4容量中に
再懸濁させる。引続き、細胞を230 0 0 lb/
in2でフレンチーグレスに2回通すことにより崩壊
させ、沈殿を分離する。上澄み1:mNiJ,ml!−
加讐ス(lk鉢逃麿nR*ル/o)ポリミンー沈殿法で
核酸を除去する。引続き、遠心分離された上澄みを55
%fIL酸アルミニウムで処理する。沈殿を緩衝液B(
1−リスーHC140mモル/Q,pH8.0、EDT
A O.lmモル/Q, 2−メルカプトエタノール
7wモル/Q1 グリセリンI O (v/v)%)中
ニ入レ、Q一セファロースーカラムを通して分別する。 溶雌のためにNaCIO〜0.5モル/Qの勾配液を使
用する。Marlは、NaC 1 0 −2 〜0 .
3モル/Qの間のフラクシBン中に認められる。この活
性フラクションをS−セ7アロースカラム上で分別する
。溶離のために,NaCIO”1モル/Qの勾配液を使
用する。NaCI 0.4 〜0.5モル/aの間の活
性フラクションを緩衝液Bに対して平衡化させ、ヘバリ
ンーセ77ロースーカラム上に装入する。溶離のために
、緩衝液B中のNaClO〜1モル/Qの勾配液を使用
する.Mcr■はNaCI O−4〜0.6モル/12
の間の7ラクション中に認められる。 活性フラクションを一集め、貯藏緩衝液(トリスーHC
L 2011モル/12,pH8.0、2−メルカプ
トエタノールlOmモル/(+、Nac1100mモル
/12、E D T A 0 . 1 m%ル/ff
及びグリセリン5 0 (v/v)%)に対して透析さ
せる例 2 活性の測定 酵素単位の定義:McrlUは、最終量25μα中、3
7℃で1時間以内にλ−DNA lpgを切断する。 インキュベーション緩衝液(トリスーHCL500mモ
ル/Q, ptt 7 .5、37℃、酢酸マグネシウ
ム100mモル/Q1NaC1 1モル/i2及びD
TE lOm−t−ル/ff)2.5μl2の混合物
に、水l7.9μQ1及びλ一DNA (光学密度=5
.6 0D/m(2) 3.6/712及びMcrl
−溶液(lU/μ0/μaを加える。 この溶液を、37℃で1時間インキユベートし、氷上で
冷却し、尿素7冒モル/12、サッカロース2 0
(v/v)%、EDTA aomモル/a及びブロム
フェノールプル一0 .0 1 (v/v)%より戊る
停止試薬( A bstopp − R eagens
es) 5 p Qを加える。 引続き、l%アガロースゲル中で,IOOV3〜4時間
の電気泳動により分離を実施する。得られるバンドをD
NA一長さ標準と比較することにより同定する。
18℃で25時間培養し、対数後期に収獲する.培貴媒
体としてメルク・スタンダードI (Merck S
tandardl )一培地を使用する。 細胞ペースト(湿重量30g)を、プロテアーゼ阻害剤
を含・有する緩衝液A(トリスーHCL40s+モル/
Q%p H 8 .0、EDTA O.1モル/Q1
2−メルカプトエタノール7mモル702.4容量中に
再懸濁させる。引続き、細胞を230 0 0 lb/
in2でフレンチーグレスに2回通すことにより崩壊
させ、沈殿を分離する。上澄み1:mNiJ,ml!−
加讐ス(lk鉢逃麿nR*ル/o)ポリミンー沈殿法で
核酸を除去する。引続き、遠心分離された上澄みを55
%fIL酸アルミニウムで処理する。沈殿を緩衝液B(
1−リスーHC140mモル/Q,pH8.0、EDT
A O.lmモル/Q, 2−メルカプトエタノール
7wモル/Q1 グリセリンI O (v/v)%)中
ニ入レ、Q一セファロースーカラムを通して分別する。 溶雌のためにNaCIO〜0.5モル/Qの勾配液を使
用する。Marlは、NaC 1 0 −2 〜0 .
3モル/Qの間のフラクシBン中に認められる。この活
性フラクションをS−セ7アロースカラム上で分別する
。溶離のために,NaCIO”1モル/Qの勾配液を使
用する。NaCI 0.4 〜0.5モル/aの間の活
性フラクションを緩衝液Bに対して平衡化させ、ヘバリ
ンーセ77ロースーカラム上に装入する。溶離のために
、緩衝液B中のNaClO〜1モル/Qの勾配液を使用
する.Mcr■はNaCI O−4〜0.6モル/12
の間の7ラクション中に認められる。 活性フラクションを一集め、貯藏緩衝液(トリスーHC
L 2011モル/12,pH8.0、2−メルカプ
トエタノールlOmモル/(+、Nac1100mモル
/12、E D T A 0 . 1 m%ル/ff
及びグリセリン5 0 (v/v)%)に対して透析さ
せる例 2 活性の測定 酵素単位の定義:McrlUは、最終量25μα中、3
7℃で1時間以内にλ−DNA lpgを切断する。 インキュベーション緩衝液(トリスーHCL500mモ
ル/Q, ptt 7 .5、37℃、酢酸マグネシウ
ム100mモル/Q1NaC1 1モル/i2及びD
TE lOm−t−ル/ff)2.5μl2の混合物
に、水l7.9μQ1及びλ一DNA (光学密度=5
.6 0D/m(2) 3.6/712及びMcrl
−溶液(lU/μ0/μaを加える。 この溶液を、37℃で1時間インキユベートし、氷上で
冷却し、尿素7冒モル/12、サッカロース2 0
(v/v)%、EDTA aomモル/a及びブロム
フェノールプル一0 .0 1 (v/v)%より戊る
停止試薬( A bstopp − R eagens
es) 5 p Qを加える。 引続き、l%アガロースゲル中で,IOOV3〜4時間
の電気泳動により分離を実施する。得られるバンドをD
NA一長さ標準と比較することにより同定する。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、 【DNA配列があります】 の認識配列及び標識で特徴付けられた切断位置に関係す
るII型−制限エンドヌクレアーゼ。 2、 【DNA配列があります】 の認識配列及び標識で特徴付けられた切断位置に関係す
るII型−制限エンドヌクレアーゼを使用することを特徴
とする、補足性2本鎖DNA−配列: 【DNA配列があります】 を認識し、かつ切断する方法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE3938144A DE3938144A1 (de) | 1989-11-16 | 1989-11-16 | Typ ii-restriktionsendonuklease mcri |
DE3938144.7 | 1989-11-16 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH03172179A true JPH03172179A (ja) | 1991-07-25 |
Family
ID=6393676
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2307356A Pending JPH03172179A (ja) | 1989-11-16 | 1990-11-15 | 2型―制限エンドヌクレアーゼMcrI |
Country Status (4)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US5134068A (ja) |
EP (1) | EP0428061A1 (ja) |
JP (1) | JPH03172179A (ja) |
DE (1) | DE3938144A1 (ja) |
-
1989
- 1989-11-16 DE DE3938144A patent/DE3938144A1/de not_active Withdrawn
-
1990
- 1990-11-08 EP EP90121350A patent/EP0428061A1/de not_active Withdrawn
- 1990-11-15 JP JP2307356A patent/JPH03172179A/ja active Pending
- 1990-11-16 US US07/615,438 patent/US5134068A/en not_active Expired - Fee Related
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
DE3938144A1 (de) | 1991-05-23 |
US5134068A (en) | 1992-07-28 |
EP0428061A1 (de) | 1991-05-22 |
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