JPH03157338A - ヒト腫瘍造影用注射組成物 - Google Patents

ヒト腫瘍造影用注射組成物

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JPH03157338A
JPH03157338A JP1135702A JP13570289A JPH03157338A JP H03157338 A JPH03157338 A JP H03157338A JP 1135702 A JP1135702 A JP 1135702A JP 13570289 A JP13570289 A JP 13570289A JP H03157338 A JPH03157338 A JP H03157338A
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 主光里Ω宵景 がん胎児性抗原(CEA)に対する放射性標識抗体は腫
瘍の位置測定に使用できることが知られている。ハンセ
ンらの米国特許3,927.193号はそのような方法
を開示するが、しかしその動物への使用の実施例を提供
するに過ぎない。この特許に記載されている方法は、腫
瘍部位に関連した放射能の精密な識別を妨害し得る放射
能が血液、その他の体液およびある種のm織、特に心臓
および肝臓のような他の体内部位にも存在する状況にお
いて、どのように腫瘍が可視化され得るのか説明してい
ない、Re1f et al、 Surg、 0nco
1.6+133(1974)およびMach et a
l、 Europ、 J、 Cancer、 5upp
l。
1.113(1978)に報告されている初期の臨床的
研究は、放射性抗CEA抗体をもってヒトの腫瘍の位置
測定に失敗した。
Goldenberg et al、 New Eng
land Journal ofMedicine、 
298.1384(197B)はCEAに対する放射性
標識抗体を投与されている患者のシンチレーション走査
によって腫瘍の発見および位置測定の臨床実験に成功し
たことを報告した。この文献では、血液プールバックグ
ラウンド放射能から特定の放射性抗体活性を区別するこ
とが動物およびヒトの両方の研究において問題であり、
そして他の放射性核種による特別のスキャナー減法技術
がこの方法を用いるあいまいでない腫瘍位置測定に必須
であると考えられることを記している。この文献におい
て使用された抗体製剤はCEAと70%免疫反応性であ
った。この文献はさらに正常なハムスター組織中のCE
Aの不存在は、該抗原が通常がん患者には増加したレベ
ルで循環しており、そしである正常な組織中には少量し
た存在しないヒトへ補外を阻害することを記している。
このシンチグラフ方法を使用する位置測定を可能とする
ために使用される減法技術は、各造影スキャンの前にT
e−99m過テクネチウム酸塩およびTc−99m標識
ヒト血清アルブミンの注射を含む。得られたデータは標
識抗体単独、Tc−99m標識種との合計、およびこれ
ら各種の値の和および差のデジタルイメージを発生する
ことができるミニコンピユータに記憶される。
CEAはftiyderman、 5cand、 J、
 Immunol、、8゜5upp1.8.119(1
,978)およびその他多数によッテ報告されているよ
うに主として細胞表面抗原である。
5par、 Semjnars In Nucl、 M
ed、、6,379(1976)およびEmrjch、
 Deutshe Med、 Woch、 5chr、
、104,153(1979)により、ヒトの腫瘍位置
測定は腫瘍細胞の表面に存在する抗原に特異性な抗体を
必要とすると考えていた。前出11eyderman、
 Lee et al、 Guillouz。
et al、 Albrechtsen et alお
よびRuoslahti et alによるそれぞれ5
cand、 J、 rmmunol、」、5upp1.
8゜pp、 485 ff、289ff、165ff、
3ffの報告により、ヒト絨毛膜ゴナンドトロピン(F
(CG )およびアルファフェトタンパク(AFP)の
両方が細胞質性細胞内腫瘍関連物質であることが知られ
ている。
Quinones et al、 J、Nucl、Me
d、、12.69(1971)はハムスターに育成させ
たヒト絨毛膜がんは腫瘍中において動物の肝臓中に比較
して2.8倍の増加した放射性標識抗HCG抗体の摂取
を示すことを報告した。しかしながら標識した正常1g
Gによる対照研究は第2日の後注射により同様の増加し
た腫瘍摂取を示した。さらに著者は特に第3日および第
4日における組織分析により見られる、標識正常1gG
を上潮る放射性抗体の摂取量の差は全身写真スキャニン
グでは観察されなかったと述べている。平井ら八bst
raets 6th Int、 Res、 Group
for  Carcinoembroyonic  P
rotein、  Marberg/Lahn西ドイツ
は移植したヒトへパトーマを持った、およびラットおよ
びヒト卵黄のう腫瘍を持つネズミへ放射性標識抗AFP
を投与すると、II!瘍組織組織抗体のホームインは見
られないことを報告した。
心臓ミオシンへ特異性の抗体の開裂によって得られる放
射性標識フラグメントは、ハーバ−の米国特許第4.0
36,945号において心筋梗塞の位置および寸法の決
定に使用されている。
抗体を用いる放射療法は多数の人により提案され、1例
の多モード治療的fin床使用におけるその成功の徴候
が0rder、 Radiol、 118,219(1
976)に報告されている。治療へのホウ素標識抗体の
使用は+1awthorne et al、、J、Me
d、 Chem、、15.449(1972)に報告さ
れているが、しかし治療のためホウ素とそして位置測定
のためラジオアイソトープの組み合わせ使用は示されて
いない。
前出Goldenbergらによる最近の成功した腫瘍
位置測定および検出方法といえども、その解像力、効率
および実用性を制限するいくつかの欠点を有する。米国
特許第3.927,193号は、上で論じた後の参考で
は疑問とされなかった制限である、抗CEA抗体はその
特異性を妨害する程度まで標識してはならないことを教
える。しかしながらこれはこの方法の鋳像力を制限し、
そして像検出のために多量の抗体を必要とする。
標識した抗体は非常に大きい分子であり、そして交差反
応性の抗原性定量分を含むことがあり、そのため交差反
応性を15%以下に減らし、そして70%より高い特定
抗原に対する特異性を得ることは非常に困難である。G
oldenberg et alによって使用された減
算法は、標識特異抗体とは異なる移動および分布動力学
を有する担体へ結合した異なる放射性核種の使用を含む
。加えて、バックグラウンド補償材料は各写真走査毎に
事前に注射されなければならず、これは患者を増大した
レベルの放射能および不快さへ暴露する。先行技術方法
のさらに別の制限は抗体分子が血液−脳障壁を通過でき
ないことであり、これは静脈注射した抗体が頭蓋内腫瘍
の位置測定に使用できないことを意味する。
さらに細胞表面抗原に対する抗体の使用に限定されず、
減算性技術のためバックグラウンド補償材料の反復注射
を必要とせず、診断および治療に適応でき、高度の信軌
性と高い解像力を有し、単−回の注射を使用して理想的
には腫瘍または腫瘍細胞の二基上のタイプを検出し、そ
して位置測定することができる腫瘍検出および位置測定
方法に対する需要が存在し続ける。
木光凱皇且眞 従って本発明の目的は、バックグラウンド活性のコンピ
ューターを使用した減算法のため他の放射性物質の反復
注射の必要なしに、高い解像度が得られる腫瘍位置測定
および検出方法を提供することである。
本発明の他の目的は、高い特異活性およびCEAに対す
る高い特異性を有し、それによりシンチグラフ法による
腫瘍位置測定および検出方法の解像度を改善するl1i
IG検出および位置測定用抗体を提供することである。
本発明のさらに他の目的は、高い解像度が得られ、そし
て細胞内腫瘍関連マーカー物質を使用する腫瘍位置測定
および検出方法を提供することである。
本発明のさらに他の目的は、高い特異活性および高い腫
瘍マーカーに対する特異性を有し、それによりシンチグ
ラフ法による腫瘍位置測定および検出方法の解像を改善
する腫瘍検出および位置測定用抗体フラグメントを提供
することである。
本発明のなお他の目的は、腫瘍関連抗原またはマーカー
の2タイプ以上に対する特異性を有するフラグメントを
化学的組合せにおいて含有する多価抗体フラグメントを
提供することである。
本発明の他の目的は、放射線治療的に有効なラジオアイ
ソトープがそれが腫瘍関連マーカーに高度に特異性の抗
体もしくは抗体フラグメントへ結合することによって腫
瘍生育部位へ集中される腫瘍放射線療法を提供すること
である。
本発明のさらに別の目的は、結合したラジオアイソトー
プ標識の検出によって位置測定されたホウ素−10アイ
ソト一プ含有抗体もしくは抗体フラグメントが熱中性子
によって励起される腫瘍治療方法を提供することである
本明細書および請求の範囲をさらに検討するとき、当業
者には本発明のその他の目的および利益が明らかになる
であろう。
本光皿Ω盟要 前記の諸口的は、がん胎児性抗原(CEA)を産生ずる
かまたはそれに関連するII!1!JJ&の位置を決定
する方法であって、CEAに特異であり、そして写真走
査装置を使用して検出し得る薬理学的に不活性なラジオ
アイソトープで標識した抗体を被検者に被経口的に注射
することと、そして前記腫瘍による前記抗体の発生する
摂取の位置を決定するように前記装置によりその後被検
者を走査することよりなる前記方法において、前記特異
抗体の製造に使用された種と同一または異なる種からの
正常免疫グロブリンを前記被検者に同時に注射すること
よりなり、前記免疫グロブリンは前記特異抗体を標識す
るために使用した同じ元素の異なるラジオアイソトープ
で放射標識されそして前記写真走査装置を使用して独自
検知可能なエネルギーにおいて放射するものであり、標
識した正常免疫グロブリンは目標を指向しない特異抗体
によるバツクグラウンド活性の分布を測定するために使
用され、前記分布は特異抗体の全活性より成算されそれ
により実質上目標を指向した腫瘍関連抗体だけの活性が
測定されることよりなる改良の提供によって達成される
本発明はさらに、前記抗CEA抗体として標識前のCE
A−特異免疫反応性を少なくとも70%、および他の抗
体に対する交差反応性を15%以下有する実質上単一特
異性抗体であって、そのCE八へ異免疫反応性を5ない
し33%減少するに充分な程度に放射標識した該抗体を
使用することを含む前記−船方法の改良を提供する。
加えて、本発明は、細胞内マーカー物質を産生ずるかま
たはそれに関連する腫瘍の検出および位置測定方法であ
って、前記マーカー物質に特異性でそして写真走査装置
を使用して検出し得る薬理学的に不活性なラジオアイソ
トープによって標識した抗体を被検者に非経口的に注射
し、そしてその後前記腫瘍による前記標識抗体の摂取部
位を検出し位置測定するため前記装置により前記被検者
を走査することよりなる前記方法を提供する。
細胞質、細胞内または細胞表面マーカー物質を産生じま
たはそれに関連する腫瘍を検出し、そして位置測定する
方法であって、前記マーカー物質に特異性な抗体の開裂
によって得られ、そして写真走査装置を使用して検出し
得る薬理学的に不活性なラジオアイソトープによって標
識した少なくとも1種のマーカー特異フラグメントを被
検者に非経口的に注射し、そしてその後前記腫瘍による
前記標識抗体フラグメントの摂取部位を検出し位置測定
するため前記装置により前記被検者を走査することより
なる前記方法が提供される。
本発明はまた少なくとも1種の細胞質、細胞内または細
胞表面マーカー物質を産生または関連する少なくとも1
タイプの腫瘍の検出および位置測定方法であって、第1
の腫瘍関連マーカーに対し特異性の抗体の開裂によって
得られる少なくとも1種のマーカー特異フラグメントと
、そして同一または異なる腫瘍関連マーカーに対し特異
性の抗体の開裂によって得られる少なくとも第2の異な
るマーカー特異フラグメントとを化学的組合せにおいて
含有する多価ハイブリッドにして、写真走査装置を使用
して検出し得る薬理学的に不活性なラジオアイソトープ
で放射標識した該ハイブリッドを被検者に非経口的に注
射することと、そしてその後前記少なくとも1タイプの
腫瘍による前記標識ハイブリッドの摂取の部位を前記装
置により検出し、位置測定するため被検者を走査するこ
とよりなる前記方法を提供する。
前記方法に使用するために好適な抗体および注射し得る
組成物と、そして放射能標識したマーカー特異性腫瘍関
連抗体または抗体フラグメントが提供される。
詳亘左蛋俯 本発明に使用される抗体は各種の腫瘍関連抗原またはマ
ーカー物質に特異性であり、他方本発明方法に使用され
るマーカー特異抗体フラグメントはそのような特異抗体
の開裂によって製造される。
該マーカーは、!!lf1!によって産生される物質、
細胞質内であれ、核内であれ、各種の機能質的であれ腫
瘍細胞内に蓄積する物質、または腫瘍細胞の上もしくは
まわりに蓄積する物質でよい。それらは細胞内または細
胞表面または細胞質マーカーでよい。このような腫瘍関
連マーカーのうちには、Hebermamによる。 ”
Lmmunodiagnosis of Cancer
″Fleisher Ed、および”The C11n
ical Biochemistryof  Canc
er  、  page  347  (八m、  A
s5n、  Cl1n、  Chem。
1979) 、および−oHsen et alの米国
特許第4.150149に記載のものがある。
腫瘍関連マーカーは前出Herbern+anにより、
腫瘍胎児抗原、胎盤抗原、腫瘍形成または腫瘍ビールス
関連抗原、m織関連抗原、臓器関連抗原、適所ホルモン
および通常の抗原またはその変種を含む多数のカテゴリ
ーに分類されている。しばしば腫瘍関連マーカーのサブ
ユニットが高い腫瘍特異性を有する抗体を上昇させるた
めに有利に使用される。例えばヒト絨毛ゴナンドトロビ
ン(HCC;)のベーターサブユニ・ントは、非腫瘍物
質への大きく減少された交差反応性を有する抗体の産生
を促進する。本発明において有用な、それに対する特異
抗体を上昇させ得るこのような好適なマーカーは、これ
らに限定されるものではないが、アルファ胎児タンパク
(AFP)、ヒト絨毛ゴナントロビン(HCG)および
そのベーターサブユニーット、結腸特異抗原−p (C
3Ap)、がん胎児性抗原(CEA) 、前立腺酸性フ
ォスファターゼ、すい臓腫瘍胎児性抗原、胎盤アルカリ
性フォスファターゼ、妊婦ベーター1−グロブリン、上
皮小体ホルモン、カルシトニン、m織ポリペプチド抗原
、T−抗原、ベーター2−ミクログロブリン、乳房腫瘍
関連糖タンパク(MTGP) 、ガラクイジルトランス
フェラーゼ−If (GT−II)、gp−!52ビー
ルス関連抗原、卵巣のう腫がん関連抗原(OCAA) 
、乾燥腫瘍特異抗原(OCA) 、子宮頚骨がん抗原(
CA−58、CCA、TA−4)塩基性胎児性タンパク
(BFP)、末端デオキシヌクレオチジルトランスフエ
ラーゼ(TdT)。
細胞質黒色腫関連抗原、ヒト星状細胞腫関連抗原(HA
AA)、通常グリオーマ抗原(CGA)。
膠芽胎児性抗原(GEA)、神経膠原線維酸性タンパク
(GFA)、通常髄膜腫抗原(CMA)。
および腫瘍脈管形成因子(TAF)を含む。
マーカー特異抗体はこの分野でよく知られた慣用方法に
よって製造することができる。通常動物、好ましくはネ
ズミ、ウサギ、さらに好ましくはヤギまたは霊長類に腫
瘍関連マーカー物質を挑戦させ、それに対しその免疫系
をこれらマーカーに特異性の抗体を産生ずることによっ
て反応させる。
動物を出血させ、血液の免疫グロブリン分画を単離し、
そして好ましくは1回または2回以上のアフィニティー
クロマトグラフィーを含む各種の慣用分離技術により特
異性免疫グロブリンを単離する。腫瘍関連マーカー物質
に特異な抗体を上昇させるための好適なこのような一般
法は、特に“。
ImmunodiagnoSis of Cancer
 、 llerberman et aLEds、 (
Marcel Dekker、 Inc、、 NewY
ork and Ba5el+1979)および”Tr
mor Markers”、5e11.Ed、(Hum
anaPerss、 C11fton、 N、J、 1
98)に記載されている。
CEA特異抗体は、とりわけPrimus et al
、 J。
Immunol、  118.55(1977);  
Goldenberg  et  al、5upra:
Pr1n+us et al、  Cancer Re
s、、37.1544(1977);Goldenbe
rg et al、’  Immunodiagnos
is of CancerPart I’、  Fle
rbeman et al、  εds、、pages
 265−306(Marcel  Dekker、 
 Inc、+New York & Ba5el  1
979)に報告されている当分野で公知の各種の方法で
製造することができる。
前記の慣用技術によって製造した抗体は通常抗体の混合
物であり、その一定割合が特異性であるが、しかし一般
に非腫瘍関連または他の抗原に交差反応性の抗体を可変
割合で含有している。抗体混合物のいくつかの成分がそ
れに対し交差反応性である結合抗原を使用する繰り返し
アフィニティークロマトグラフィーおよび結合した精製
抗原を含むカラムの通過によって精製した抗体は、高い
特異免疫反応性を有し、しばしば70%近くまたはそれ
以上へ達し、そして非腫瘍関連抗原または他の抗原に対
する交差反応性が15%以下となる。
これら抗体はそれらが上昇された抗原に対して実質上モ
ノ特異性であると考えられ、そして本発明において好適
に使用される。
腫瘍位置測定のため、高いマーカー特異免疫反応性を有
する抗体を使用することは特に有利である。高い特異性
は、標識抗体の高割合が腫瘍部位を標的とし、小割合が
非標的態様で分布されることを意味する。それ故標識抗
体の少量を使用することができ、患者の被曝量を減らし
、そして標的へ向わない抗体によるバックグラウンド放
射の低いレベルは解像度を改善するであろう。このこと
はさらに他のどの方法でもしばしば困難または不可能で
あるより小さい腫瘍を検出し得ることを意味する。高度
に特異なモノクローン性抗体は雑種形成技術によって製
造することができる。このような抗体は通常精製を殆ん
どまたは全く必要とせず、そして通常少なくとも75%
の特異免疫反応性を持ち、ある場合には95%以上の特
異性を有する。このようなモノクローン性のハイブリド
ーマ誘導抗体もまた本発明において使用するのに好適で
ある。好適な具体例において、モノクローン性抗体は、
サルに精製した腫瘍関連マーカーを挑戦させ、抗体産生
サルリンパもしくはひ臓細胞をヒトもしくはマウス骨髄
腫細胞と融合して雑種細胞をつくり、次にこれを分離し
、クローン化し、前EEママ−−物質に特異なモノクロ
ーン性抗体を生成するそれらの能力について選定する。
免疫グロブリンG(IgG)分画からのモノクローン性
抗体はこの方法で得られ、そして本発明による腫瘍検出
、位置測定および治療のため使用されるフラグメントを
製造するために使用される。
Koprowsk iの米国特許第4.172,124
号のI g Mモノクローン性抗体はこの方法に使用す
るために適していない。
抗体フラグメントはF(ab’)zと呼ばれる5Sフラ
グメントを与えるように抗体をペプシンで酵素分解する
ことによって製造し得ることが知られている。このフラ
グメントはさらにチオール還元剤と、場合によってジサ
ルファイド結合の開裂から生ずるスルフヒドリル基のブ
ロッキング基を使用して開裂し、3.5SFab“ 1
価フラグメントを生成させることができる。その代りに
、パパインを使用する酵素分解は直接2個の1価Fab
フラグメントおよび1個のFcフラグメントを生成する
。これらの方法は特に米国特許第4゜036、945号
およびその引用文献に、そしてN15onoffet 
al、 Arch、 Biochem、 Btophy
S、、 89.320(1960);Porter、 
Biochem、J、+ 73,119(1959);
 Edelman etal、 ”Methods i
n Immunology and Immunoch
emistry。
Vol、 1,422(Aead、 Press、 1
967)に記載されている。
抗体を開裂する他の方法、例えばFabフラグメントの
それ以上の開裂または他の酵素もしくは化学的手法の使
用も使用することができる。それらの親杭体がそれに対
して1−昇された紳瘍関連マーカーに対して特異性を保
持しているフラグメントだけがこの方法に使用される。
混成抗体フラグメントは異なる抗体の還元的開裂から生
ずるFab”フラグメントの酸化的結合によって製造さ
れた。これらの一部分はもとの抗体がそれに対して上昇
された抗原の両方へ特異性のフラグメントを含有するで
あろう。これは二つの異なる抗体のペプシン分解によっ
て製造された二つの異なるF (ab’ )zフラグメ
ントを混合し、Fab’ フラグメントの混合物を生成
するように還元的に開裂し、次にもとの抗原のそれぞれ
へ特異なFab’部分を含む混成フラグメントを含むF
(ab”)2フラグメント混合物を生成するように酸化
してジサルファイド結合を再生成させることによって有
利に実施することができる。
このように混成抗体フラグメントの製造法は、Fete
anu、 ”Labeled Antibodies 
in Biology and門edicine  p
ages 321−323(McGraw−Hill 
Int、 Bk。
Co、、 Now York et al、 1978
)・N15onoff et atへrch、  Bi
ochem、  13iophys、、93.470(
1961);tlammcrlin6st ah J、
 Exp、 Med、、128.1461(1968)
に記載されている。
以下の議論において、「抗体」なる語は断わりのない限
りこれまで記載したような抗体および抗体フラグメント
を包含する。
抗体は当分野で公知のいくつかの手法のいずれによって
も標識することができる。標識技術の広い範囲がFet
eanu、“Labeled Antibodies 
in Biologyand Medicine  、
  pages 214−309(?lcGraw−)
fill  1nL。
Book Co、、 New York et ai、
 1978)に記載されている種々の金属ラジオアイソ
トープの導入は、Wagner et al、、 J、
 Nucl、 Med、、 20,428(1979)
5undbery et al、 J、 Med、 C
hem、、17.1304(1974);5aha e
t al、 J、 Nucl、 Med、、6,542
(1976)の方法によって達成することができる。以
上に当分野で公知のタンパクを放射標識するための多数
の方法の数例に過ぎない。
使用するラジオアイソトープのうち、ガンマ放射体、陽
電子放射体、X線放射体、および螢光発光体が位置測定
および/または治療用に好適であり、一方ベーター放射
体およびアルファ放射体も治療に使用することができる
。抗体を標識するため好適なラジオアイソトープはヨウ
素−131ヨー素−123,ヨー素126.ヨー素13
3臭素−77,インジウム−111,インジウム113
m、ガリウム−67、ガリウム−68,ルテニウム−9
5,ルテニウム−97,ルテニウム−103,ルテニウ
ム−105,水銀−197水銀−203,レニウム−9
9m、レニウム−105,レニウム−101,テルル−
121m、テルル−112m、テルル−125m、ツリ
ウム−165、ツリウム−167、ツリウム−168−
テクネチウム−99m、およびフン素−18を含む。ハ
ロゲン標識抗体もしくはフラグメントおよび/または正
常免疫グロブリンもしくは対応するフラグメントは、実
質上同一の運動性および分布と、そして類似の代謝を持
つであろうから、ハロゲンは標識として多かれ少なかれ
互換性を持って使用することができる。
抗体標識のために好適な技術は、Greenivood
 etal、 Biochem、 J、、89,114
(1963)によって報告され、McConahey 
 at  al、  Int、  ^rch、  AI
lergy  Appln。
Immunol、、 29,185(1969)によっ
て修正されたように、放射性ヨー化カリウムまたはナト
リウムと抗体との混合物をクロラミン−Tで処理する酸
化法を用いて、ヨー素−131(I−131)またはヨ
ー素−123(f−123)で標識することを含む。こ
れは試薬の割合および反応条件に依存して、抗体分子上
の、恐らくチロシン残基上の、多分トリプトファンおよ
びフェニルアラニン残基上の水素原子をヨー素原子で直
接置換する結果を生ずる。
一般に、抗体へその免疫特異性を破壊することなくでき
るだけ高い割合の放射性標識を導入するのが望ましい。
非常に多数の研究者は抗体1分子当りヨー素原子1.5
ないし2個以上の直接置換による投入は不利であると考
えていたが、今や抗体1分子当りヨー素を少なくとも2
.5および好ましくは平均5ないし10原子直接置換し
て導入することは、特に抗体が標識面高度にマーカー特
異性である場合有利であることが判明した。この場合、
高度の標識化の結果として5ないし33%の抗体特異性
の低下さえも高い活性の方が上廻り、実質上より少量の
標識抗体の使用を許容する。前記したように、高活性の
高い特異性抗体の使用は効率的な位置測定および増大し
た解像性を結果する。
この増加した活性と減少した特異性とのバランスは抗体
1分子当り平均ヨー素10原子まで有利で、その後は特
異性の減少が高活性の利益を上廻る。
放射性標識を導入するための他の方法を使用することに
より、減少した免疫特異性に受容できない価格を支払う
ことなしに抗体フラグメントに対する標識の割合をさら
に′増加することが可能であろう。それ以上の改良は、
抗体上の抗原結合部位が保護されることを確実にするた
め、放射性標識化を特異抗原の存在下において実施する
ことによって達成することができる。該抗原は標識死後
分離される。
2価混成抗体フラグメントの実例、例えば2つの異なる
腫瘍特異抗体のそれぞれからFab’ フラグメントの
化学的結合によって得られるF(ab゛)2抗体フラグ
メントを以下に示す。表1は、検出および治療の両方に
対しそれらが有利に使用される好適なそのような2価混
成体および腫瘍タイプの例示リストを与える。1番目の
カラムは混成体の二つのFab’成分がそれに対して特
異性である二つの抗原を示し、各混成体はそれぞれの抗
原性決定因子に対し特異性の一つのフラグメントを有す
る。いくつかの場合において抗体は特異性を増加させる
ため腫瘍関連抗原のより小さいフラグメントに対して上
昇されるであろう。例えばHCGのベーターサブユニッ
トに対して上昇された抗体はHCG自体に対して上昇さ
せた抗原より好ましい。2番目のカラムは各ハイブリッ
ドタイプを優先的に濃縮する腫瘍タイプを示す9表1 F (ab’ )2混成抗体フラグメントおよび関連!
l!II瘍タイプ 胃腸例えば結腸、こう門、胃 すい臓、肺 肺、卵巣、胃腸 肝臓、胃腸、卵巣、こう丸 大部分 CEA/C3Ap CEA/POA CEA/HCG CEA/AFP CEA/TAP CEA/フェリチン CEA/カルシトニン CEA/PAP 固形、造血、肝臓 甲状腺 前立腺 CEA/上皮小体ホルモ HCG/PBG CG A/G E A GFA/CMA 凡例: EA がん胎児性抗原 ン   上皮小体、肺 顆粒性原形質 脳 脳 SAp OA FP PA AP BG GA EA FA MA 結腸特異抗原−p すい臓腫瘍胎児性抗原 アルファ胎児性タンパク 組織ペプチド抗原 前立腺酸性フォスファターゼ 妊婦ベーター1−グロブリン 通常グリオーマ抗原 膠芽胎児性抗原 神経膠原線維酸性タンパク 通常髄膜腫抗原 表1に示したような混成フラグメントは多数腫瘍タイプ
または細胞の検出および位置測定のため単一ラジオアイ
ソトープで標識するか、または治療のため単数もしくは
複数のラジオアイソトープで標識することができる。さ
らにこのような混成体は検出のためあるラジオアイソト
ープで、そして治療のため1種またはそれ以上のアイソ
トープで、例えばあるラジオアイソトープおよび/また
はホウ素含有フラグメントで標識することができ、その
ため位置測定された腫瘍は以下記載の態様で熱中性子で
照射されることができる。
より小さいマーカー特異性フラグメントを生成するよう
に抗体からFcフラグメントを除去することは、フラグ
メントの移動度およびその血液−脳障壁通過能力を容易
にするより小さい分子量を有する分子を生成するという
利益を有する。加えて、Fcフラグメントは抗体の主な
過アレルゲン性および非特異的結合の大部分に責任があ
る。従ってその開裂は抗体の注射、特に多数の腫瘍の造
影または腫瘍放射線療法のための反復注射に対するアレ
ルギー反応の危険を減らす。抗体フラグメントの連動性
は全天然免疫グロブリンよりももっと速く、そして腫瘍
にもっと特異的に結合するので、減算性技術は省略する
か、または特定の状況で使用するため修正することがで
きる。加えて、特定の動脈によって供給された腫瘍への
標識した検知剤のもっと直接的な動脈内通用のための標
識抗体の使用は、腫瘍検出および腫瘍放射線療法の両方
のため、このプロセスの重要な機会を提供する。
腫瘍位置測定、検出および治療のための単一製剤に標識
抗体フラグメントの混合物を使用することができる。該
混合物は、位置測定および解像度を向上させるため同一
腫瘍タイプに関連する異なる抗原に特異なフラグメント
を使用することができる。この代りに広い腫瘍特異性を
有するフラグメントの混合物を使用して、種々の腫瘍タ
イプの広範囲スクリーニングを実施することができる。
混成フラグメントの使用に同様に、同一もしくは異なる
腫瘍または腫瘍細胞タイプに関連する抗原に対し特異な
標識抗体の混合物を使用してもよい。これはある場合に
検出、位置測定および/または治療を向上させることが
でき、そしてまた2種以上の腫瘍または腫瘍細胞タイプ
についての広いスクリーンの範囲を増加することができ
る。
放射性標識特異抗体の投与後24時間後においてのみ通
常腫瘍位置測定を可能とする以前公知の方法とは対照的
に、この改良された減算技術は、放射性標識特異抗体お
よび放射性標識正常免疫グロブリンの同時投与後24時
間以内に腫瘍検出および位置測定を可能とする。腫瘍位
置測定は、抗体/免疫グロブリン対の注射後2時間で、
投与後6.12.18および24時間において改良され
た解像度をもって達成することができる。抗体フラグメ
ントは大変速く組織中に拡散しそして一層速く局在化さ
れるので、腫瘍検出および位置測定は標識フラグメント
の注射後短時間で達成することができる。
血液プールまたは間質性体液中に標識フラグメントまた
はそれらの代謝物が蓄積することによる放射能は、腫瘍
関連マーカーへ特異性の標識抗体フラグメントを使用す
る腫瘍位置測定の解像度を著しく減少させることがあり
得る。そのような場合には、フォト走査前に被検者へ参
照物質を注射するのが有利である。参照物質はマーカー
特異抗体フラグメント標識と異なるエネルギーで放射し
、そしてフォト走査装置で独立に検出し得るラジオアイ
ソトープで放射標識される。参照物質の活性のレベルは
非標的指向特異抗体フラグメントによるバックグラウン
ド活性の測定に使用され、このバックグラウンド活性は
次に特異抗体の全活性から減算され、実質上標的指向腫
瘍関連抗体のみの活性の測定を許容する。
Goldenberg et al、 N、 Eng、
 J、 Med、、 298+ 1384(197B)
に報告された成功したヒトがんの非侵人的ラジオ免疫検
知法においては、減算技術が成功的位置測定のために必
要であることを示した。しかしながら使用された減算技
術は本発明のそれと実質的に相違する。参照方法では、
放射性ヨード化した抗CEA抗体が注射され、そしてテ
クネチチウムー99m標識ヒト血清アルブミンおよび過
テクネチウム酸テクネチウム−99mが各造影走査前に
静注された。像はガンマシンチレーションカメラで得ら
れ、得られたデータはミニコンビ1−ターに記憶される
。非標的区域におけるTc−99活性に対するl−13
1活性の比はバックグラウンド非局在抗体活性のための
比較標準を与えた。これは他の位置における非標的指向
特異抗体活性の測定を許容し、これは全特異抗体活性か
ら減算され、局在化された標的指向抗体の活性値が得ら
れた。
本発明は適当な参照物質のうちで、Tc−99m標識正
常免疫グロブリンGまたはそのフラグメントおよびTc
−99m標識イオウコロイドの使用を含む。しかしなが
ら好ましくは参照物質は、対応する正常な無関係な免疫
グロブリンG(IgG)か、または腫瘍位置測定剤とし
て使用した特異抗体フラグメントを製造するために使用
したものと同一もしくは異なる種からの対応するフラグ
メントである。この正常免疫グロブリンGは、好ましく
は特異抗体を標識するために使用した同じ元素の異なる
アイソトープで放射標識され、そして好ましくは放射標
識されたマーカー特異抗体と同時に注射される。これは
参照物質として標識特異抗体と実質上同じ結合、分布お
よび代謝動力学性を有する分子種を使用するという利益
を有する。
その結果−回だけの参照物質の注射が必要で、そして増
加した解像度が得られる。正常1gGはそれが対応する
特異抗体と同じ方法で製造され、標識される。
一方は特異抗体を標識するために使用することができ、
他方は正常免疫グロブリンを標識するために使用される
ラジオアイソトープの適当な対は、ヨー素−131とヨ
ー素123、インジウム−111とインジウム−113
m、ガリウム−67とガリウム−68、ルテニウム−9
7とルテニウム−103、または水銀−197と7に恨
−203を含む。ヨー素は化学的置換反応により直接導
入し得るため、そして放射性でそしてフォト走査装置を
使用して検出し得る少なくとも5種類のアイソトープを
有するので、ヨー素は、本発明方法に使用するため特異
抗体フラグメントおよび正常免疫グロブリンG参照物質
の両方を放射標識するのに好適である。有利には、ヨー
素−131が特異抗体を標識するために使用され、ヨー
素−123が正常免疫グロブリンを標識するために使用
される。
発生する放射はガンマ−シンチレーション検出器の2つ
の異なるチャンネル上に別々に検出される。
得られる走査データはミニコンピユータ−に好都合に記
憶され、そしてその非標的区域における標識参照免疫グ
ロブリンに対する比を上潮る、放射標識特異抗体の過剰
蓄積区域を決定するため前述の減算法が実施される。こ
れらの値は関連した出力信号、有利にはカラービデオス
クリーン上のカラーの変化を発生させるために使用する
こ七ができる。フォト走査装置はコンピューター断層放
射線写真能力を備えることができる。高い活性と許容し
得る免疫特異性との間に最大のバランスを与えるように
標識した高度にモノ特異性で、好ましくはモノクローン
性の抗体を使用するこの高度に能率的な減算技術は、著
しく改良された解像度の腫瘍位置測定および検出方法を
提供する。
勿論、高度に標識した、高度に特異性抗体と本発明の改
良された減算技術の組合せはもっと高い解像度を導びく
。好適な具体例において、実質上モノ特異性抗体が抗体
1分子あたりヨー素が平均少なくとも2.5原子、好ま
しくは5ないし10原子導入されるように1−131ま
たはl−123で放射標識され、そして生成した高度に
標識されたモノ特異性抗体は本発明に従って注射される
抗体1分子当り少なくとも2.5および好ましくは5な
いし10原子の平均ヨー素含撥へ!−131またはl−
123で放射標識されたモノクローン性特異抗体の使用
も好適である。
さらに改善された解像度は、減算技術において参照物質
として、放射標識された情調正常免疫グロブリンを使用
することによって得られる。正常グロブリンはグロブリ
ンの混合物であり、そのあるものは放射性抗体がそれへ
向けられる特異抗原へ結合されることができる。従って
問題のマーカーに対する反応性を除去するため、減算剤
として使用すべき正常グロブリンを精製することが望ま
しく、そのような−精製法は正常免疫グロブリンを好ま
しくは固体吸着剤上の特異抗原で吸着し、抗原と反応す
るグロブリンをカラム上に残し、そして通過する物質は
非特異性減算剤として標識するためにもっと好適となる
であろう。モノクローン性非特異免疫グロブリンまたは
骨髄腫タンパン自体は、標識および減算剤として使用の
ために所望の純度を持つであろう。
本発明の減算技術を使用するとき、高い放射活性と高い
特異性とのバランスは、抗体の対応して高いマーカー特
異免疫反応性をもって、放射性標識のいくらか低い程度
の側においてもっと破壊される。再びマーカー特異免疫
反応性が高い程、標識化は高くなるが、抗体性質の有益
なバランスはなお維持される。このように少なくとも7
0%、好ましくは少なくとも80%のマーカー特異免疫
反応性と、15%以下、好ましくは10%以下の交差反
応性を有する実質上モノ特異性の抗体は、高度に効果的
な位置測定を許容するように標識後もなお充分な特異性
を保有する一方、抗体1分子当り2.5、好ましくは5
ないし10ヨ一ド原子程度へ、l−131またはr−1
23で標識することができる。
改良された減算技術を使用しない、しかし好ましくは使
用する本性の使用は、腫瘍位置の連続的、反復的、また
は随時的監視を許容する。これは特に手術前に腫瘍の診
断および期決定との組合せに利益を有する。加えて、こ
の方法はどの程度完全な腫瘍除去が達成されたかの徴候
として、手術中または手術後に有用である。転移の場合
、特に小さい拡散転移の増殖が認められた場合、この方
法の高い解像度は術後療法のための標的区域の同定を許
容する。これは本発明の治療方法または他の技術、例え
ば化学療法、照射処置もしくは多モード療法を使用して
実施することができる。
放射性標識したマーカー特異抗体またはフラグメントは
腫瘍治療に有効である。標識された抗体が被検者の腫瘍
部位に局在化されることが決定された後、一般に投与当
り25ないし250mCi好ましくは50ないし150
mC1の標識された抗体の高投与量が注射される。注射
は静脈内、動脈内、リンパ管内、包成内、または体腔で
よく、そして反復することができる。
種々の放射性核種が治療のために有用であり、そしてそ
れらは前に論じた標識化技術によって特異抗体中に取り
入れることができる。好ましい治療的に有効な核種は!
−131である。
本発明の治療方法は、有利には高度にマーカー特異抗体
、好ましくは少なくとも70%、好ましくは少なくとも
80%のマーカー特異免疫反応性と、15%以下、好ま
しくは10%以下の他の抗原に対する交差反応性を有す
る抗体を使用する。
モノクローン性抗体はそれらの高い特異性のために好ま
しい。
放射標識したマーカー特異抗体またはフラグメントを使
用する療法は、他の療法例えば照RJおよび化学療法と
組合せて一次的治療処置として、そして外科手術の補助
法として有利に使用される。
外科的に除去できない、または検出をのがれることので
きる小さい転移がある場合には、本発明の放射療法はこ
れらの腫瘍を発見しそして破壊する有力な武器を提供す
る。
抗体フラグメントはしばしばいくらか低い免疫反応性を
持ち、そしてその時低い放射性核種含量で、例えばフラ
グメント1分子当り、例えばl−131を0.1ないし
1.0原子で標識するのが有利である。これは治療のた
め、そしてもし必要ならば検出のため、l−131比活
性2.5ないし52Ci/μgを有するフラグメントを
生成させる。
本発明のさらに別の局面は、ラジオアイソトープ標識と
、ホウ素−10アイソトープの天然存在比を少なくとも
20%有する著しい多数のホウ素原子を含む付加物の両
方を含有する抗体またはフラグメントの使用に関する。
ホウ素含有付加物は各種の方法により、好ましくは抗体
に、tlawthorneet al、 J、 Med
、 Chem6.15,449(1972)の方法によ
り、1−(4−アミノフェニル)−1,2−ジカルハク
ロソドデカボラン(12)から誘導されたジアゾニウム
イオンのようなホウ素リッチなカップリング剤をカップ
リングすることによって導入することができる。ホウ素
−10含有抗体は次に、腫瘍位置測定および/または治
療のため1種またはそれ以上の放射性標識と、そして熱
中性子の吸収のためホウ素−10原子の高含量の両方を
含有する抗体を製造するため、上述の方法の一つまたは
それ以上に従って放射標識される。放射標識されそして
ホウ素標識された抗体を注射した後、放射性標識を用い
て腫瘍の位置測定をする。腫瘍は次によくコリメートさ
れた熱中性子のビームで照射され、それらはホウ素含有
付加物中のホウ素lO核によって優先的に吸収され、そ
して活性化された核は急速にリチウム−7およびアルフ
ァ粒子に崩壊する。これら生成するアルファ粒子は細胞
毒性で、そしてそれらの腫瘍細胞内での生成は細胞を殺
し、そして腫瘍の減少をもたらす。
高度にマーカー特異性の抗体上のホウ素付加物と1種ま
たはそれ以上の放射性標識との結合は、はじめて多モー
ド腫瘍治療剤として作用する単一の試薬を提供する。腫
瘍部位におけるこれら二重に標識された抗体の急速なそ
して特異的な局在化は、中性子照射を集中すべき区域の
速いそして精密な区切りを許容する。さらに、腫瘍細胞
は放射性標識からの放射と中性子で活性化され7たホウ
素−10放射との結合効果によって破壊され、そして殺
された腫瘍細胞は除去されるので、放射線治療的処理は
局在化された放射標識された抗体の測定または他の腫瘍
検出法によって監視することができる。
本発明の抗体は注射組成物の形で有利に投与される。−
船釣スクリーニングのため、そして位置測定および治療
の多数のタイプのため、注射は静脈内、動脈内または包
成内注射であろう。注射し得る抗体溶液は静脈、動脈ま
たはを髄液中に2分ないし約1時間のコースにわたり、
好ましくは静脈内または動脈内注入のため10分ないし
20分にわたって投与されるであろう。ある場合には、
皮下、粘膜上組織、または体腔内投与が有利である。腫
瘍が既知の接近し得る動脈から供給される場合は、動脈
内投与が治療のために好ましい。動脈内ルートは製剤の
長い注入時間、例えば24時間またはそれ以上を使用し
得る。加えて包成内投与または頚動扉中へのフラグメン
トの注射は脳内に所在する腫瘍に使用することができる
。皮下、粘膜下組職または体腔内投与は皮膚の特定区域
および/または特定の体腔へ近い区域に限られた腫瘍に
有益である。
本発明による典型的な注射組成物は、ヒト血清アルブミ
ン34■(1%米国局方:パークデビス社)と、0.9
%NaCl含有0.04 Mリン酸緩衝液(p H7,
4、バイオウェア社)1d当り放射標識された抗体1な
いし500μgを含有する。本発明の減算性技術が使用
される場合は、特異抗体の重量にほぼ等しい放射標識し
た正常イムノグロブリンの量を含有する。他の慣用の薬
剤学的に許容し得る注射用担体も、包成内、皮下、粘膜
上組織または体腔内注射のため、および静脈内または動
脈内注射のためのように指示された場合に使用すること
ができる。
当業者はさらに熟考することなく、前記説明を用いて本
発明をその全範囲に利用することができるものと信ぜら
れる。従って以下の特定の好ましい具体例は単に例示で
あり、開示の残余の部分を限定するものではないと解す
べきである。以下の実施例において、すべての温度は未
補正の摂氏度であり、断わりのない限りすべての部およ
び%は重量による。
これら実施例で使用される抗体は高度に特異性で、そし
て慣用の免疫化の後、補体を不活性し、血球凝固成分を
除去するため吸着し、そして交差反応性抗原および特異
抗原に対してアフィニティー情調して調製するか、また
はハイブリドーマ誘導モノクローン性抗体のどちらかで
ある。
実施例1 ”I  T−CEA  I  G  ヤギ の(a)C
EAはNetmman et al+ Cancer 
Res、、 34+2125(1974)の方法により
、結腸がんの肝転移から高純度で得られる。
(b)  精製CEA乾燥重量0.5 mgをメチル化
ウシ血清アルブミン(シグマ社)2mgを含む水2 r
ag中に溶解し、CEA溶液を完全なフロインドアジュ
バント(デイフコ社)の等容積で乳化する。
CEA接種物の等量を健康ヤギの首の別々の2部位に皮
下性1・!する。注射は2週間置きに最後の注射後14
日後に採集した抗血清のラジオイムノ7ツセイ(RrA
)が抗CEA力価1:106以上を示すまで投与される
次にヤギから血液を無菌的に採取し、パイロ−ジエンを
含有しない遠心試験管へ移し、そして遠心する。抗CE
Aは一20°Cで貯蔵する。
ヤギ抗CEAの補体は56°Cで1時間インキュベート
することによって不活化し、そしてそれ以上血球凝固活
性が検出できなくなるまで、洗浄レバツクしたAB型ヒ
ト赤血球(RBC)と、血球凝固活性定量から計算した
血清/RBC比で繰り返して混合することにより、抗血
液グループを除去する。吸収した抗CEA血清は次に0
.1Mリン酸緩衝液pH7,0(PO,)の数容積に対
して透析される。
(C)  結腸がん抗原III (CCA−[[)免疫
吸着体は、正常肺の過塩素酸抽出物の60,000分子
景分画を慣用の技術を用いて臭化シアン活性化セファロ
ーズ4B(ファルマシア社)へ結合させることにより調
製される。結合は4°Cでゆるやかにかきまぜながら一
夜進行を許容される。CCA−III−免疫吸着体は0
.05 Mホウ酸緩衝液p H8,4で洗浄され、0.
1MMホウ酸緩衝液pH8,0中の1M2−アミノエタ
ノールの4容積中に再懸濁される。スラリーは室温で1
時間混合され、口過され、PO,で洗浄される。
CCA−II[免疫吸着体カラムが調製され、10%(
V/V)正常ヤギ血液(ギブコ社)2In1.、次いで
3Mチオシアン酸アンモニウムの約1カラム容積を前循
環し、そして0.1 Mリン酸緩衝液p H7,0で再
平衡化される。
CCA−III−免疫吸着体は自動クロマトグラフィー
システムへ挿入され、そして全体のシステムが非発熱原
性の無菌PO,で完全に洗浄される。
緩衝液容器は千オシアン酸アンモニウムおよび透析物を
含む容器で取り替えられる。
吸着された抗CEA血清はカラムの空隙容積の2/3の
容積へPO4で希釈され、そしてカラムを通る1サイク
ル毎に抗血′清の適当量を含有する。
この希釈した抗血清の体積はカラム中へ適用され、そし
てIカラム空隙体積の全容を与えるのに充分なPO,で
洗浄される。抗血清は室温で20分間インキュベートす
ることが許され、次に吸着されない分画である特異抗C
EA血清がカラムからPO4で溶離される。システムは
抗CEA血清の第2の部分標本を適用することにより、
自動的に次のサイクルを開始する。サイクルの回数は抗
血清の全ロフトを処理するようにセントされる。
抗CEA血清の部分標本が抗血液のもとの容積へ濃縮さ
れ、そして免疫拡散によって再テストされる。抗血清は
参照CEA、CCA−III製剤、正常ヒト組織抽出物
および血漿に対してテストされる。もし抗血清がCCA
−Ill製剤、血漿または正常ヒト組織抽出物に陽性反
応を有するならば、それはCCA−1免疫吸着体カラム
にリサイクルされる。
(d)CEA−免疫吸着体カラムは、CCA−I[[免
疫吸着体と同じ結合操作により、精製CEAを臭化シア
ン活性化セファローズ4Bへ結合し、前記(C)のよう
にカラムを調製し、前循環し、平衡化することによって
調製される。
CEA吸着体カラムは自動化されたクロマトグラフィー
システムへ導入され、そして非発熱原性のPO,で完全
に洗浄される。各サイクル毎に適用すべき抗CEA血液
の量はラジオイムノアッセイ定量をもとに計算され、抗
血清のサンプルが希釈され、適用され、そしてCCA−
m免疫吸着体カラムと同様にインキュベートされる。す
べての非反応性免疫グロブリンを含んでいる血清タンパ
クはカラムからPO4で溶離され、そして吸着されない
分画として採取される。
特異抗CEA  IgGは解離されそしてPO。
中3Mチオシアン酸アンモニウムでカラムから溶離され
、そして吸着された分画として採集される。
チオシアン酸アンモニウムの微量のすべてを除去するた
め、吸着された分画はPO,中1M尿素および10%グ
リセロールに対し、中空繊維透析ユニット(アミコン社
またはビオラッド社)の使用によってインライン透析に
かけられる。特異抗体の解離のための別法は、混乱剤と
してグアニジン塩酸塩と、脱塩のためセファデックスG
25ゲルロ過クロマトグラフイーを使用する。
吸着された分画は4°CでPM30膜(アミコン社)に
よる限外口過により、ゲル口過クロマトグラフィーを容
易にする体積まで濃縮される。例えば抗CEA血清の1
00dの07トは約20m1へ濃縮される。cm液は5
0mMリン酸緩衝食塩水(PBS)pH7,5の100
容で4回、各4時間透析される。抗CEA  IgG製
剤は無菌のパイロ−ジエン不含血清バイアル中へ無菌口
過される。
部品標本がRIAおよび免疫拡散による品質管理試験の
ために保存される。
(e)  セファクリルS−200(ファルマシア社)
カラムがゲルを無菌のパイロ−ジエン不含50mM。
PBS、pH7,5で5回洗浄することによって調製さ
れる。カラムは180°Cで3時間乾燥滅菌される。使
用カラム寸法は抗体のロフトサイズに応して2.6 X
 90 cmか、または5.0 X 90 cmである
次にカラムはカラムの3倍容のPBSで洗浄される。
ヤギ抗CEA  rgGのロットはカラムに適用され、
そしてPBSで6m/Cd/時間の流量において溶離さ
れる。IgGタンパクを含有する分画がプールされ、そ
して約5■ IgGタンパク/BSに対して透析され、
0.2ミクロンMillexユニット(ミリポア社)で
無菌口過され、そして保存剤としてアジ化ナトリウムを
添加して約5111gIgGタンパク/戚のld部分標
本の形で冷蔵される。
(f)  +31 1の1mC1当り7.2ないし16
.8 tt gIgGのヤギ抗CEA  [gGを13
1  l (アマーシャムーサール社)を含む放射性核
種バイアル中へ注入する。
クロラミンTおよびメタ重亜硫酸ナトリウム溶液は、そ
れぞれクロラミンTIO■および重亜硫酸塩50■を含
む2個のバイアルのそれぞれへ、無菌のパイロ−ジエン
不合0.04 Mリン酸緩衝液p H7,4の5dを注
入することによって調製された。クロラミンTは10μ
g/mCi’″1 ■の割合で放射性核種バイアル中へ
注入された。クロラミンTの5倍量のメタ重亜硫酸ナト
リウム溶液は、クロラミンTの注入後正確に90秒後に
バイアル中へ注入される。混合物は無菌注射器で反応バ
イアルから除去され、反応バイアルは1%正常ヒト血清
アルブミンでリンスされ、リンス液は反応混合物と合併
された。
1311抗CEA  IgGのサンプルが事前にPBS
中1%正常ヒト血清アルブミンで平衡化されたPD−1
0セファデックスG−25カラムに適用され、PBS中
1%正常ヒト血清アルブミン約4゜5II!1で溶離さ
れ、シールドされたガンマ検出器(Eberline社
)でモニターされ、貯蔵および使用のため採集され、あ
らかじめ定めた濃度に希釈される。
生成する1コ1 ■−抗CEA  IgGは抗体1分子
当り平均ヨー素3ないし7原子を有する。各バッチから
の無作為部分標本が無菌性、発熱原性、毒性およびその
他の品質管理変動について別々にテストされる。
実施例2 モ/りo−7”’  r−CEA  I  GO)  
’−雌6月令のBa1b/Cマウスに、がん胎児性抗原
10ないし100 // gを腹腔内注射する。その場
合CEAは等容積(10−100μP)の不完全フロイ
ドアジュバント中に混合される。これは1週間後とそし
て2週間後に繰り返されるが、最後はアジュバントなし
で静脈内ルートが用いられる。3日ないし4日後、マウ
スは頚部脱臼により殺される。与えられた抗原に対する
抗体を得るための最適時期は、抗原、投与ルート、免疫
化のタイミング、それに最終の増強注射とひ臓細胞除去
の間の間隔によって変化する。
ひ臓を除去し、そして室温で、血清不合培地か、または
20%ウシ胎児血清を加えたダルベツコの修正イーグル
培地(DMEM)を収容する60mmペトリ皿中に入れ
、そして細胞を分散するためはさみでミンチする。細胞
はVortex ミキサー上で1−2分かきまぜること
によりさらに遊離される。
ひ臓細胞は円錐形遠心試験管へ移され、rEC−MS2
遠心機中で1.OOOrpmにおいてへレット化され、
上清が除去され、ベレットをたたいてほぐし、そして赤
血球を溶解するため10分間冷たい0.1 N H4C
15ml中に再懸濁する。20%ウシ胎児血清添加の冷
却したDMEMを加え、そして細胞をベレット化し、そ
して再び20%ウシ胎児血清を添加したDMEM10z
l中に懸濁する。
融合のために使用した骨髄腫細胞系統は、高グルコース
(4,5g//りおよび20%ウシ胎児血清添加DME
M中の静止懸濁培養物に、5ないし10%COt中、1
00.000ないし1 、000.000/、7!i!
の細胞濃度において保存される。骨髄腫(形質細胞腫)
細胞系統は、5vastiおよびMilstein、 
Biochem。
J、、旦紅427−444 (1972)により報告さ
れた、MOP(、−21から誘導されたBa1b/C形
’ff Ill胞胛であるP3−X63−Ag8か、F
azekas de St。
Groth  &  Scheidegger、  B
a5le  Tnstitute  ofImmuno
lgyによるFOとして知られるその誘導体か、または
門argulies et al、 Ce1l、 8.
405(1976)によって報告された、MPC−11
から誘導されたBa1b/C系統である4 5.6 T
 G 1.7であることができる。これら系統のすべて
は酵素ヒボキサンチンフォスフオリボシルトランスフエ
ラーゼ(HPRT、E、C,2,4,2,8)を欠き、
そしてそのためLittlefield、 5cien
ce+ 145+709−710(1964)に記載さ
れているように、ヒボキサンチン アミノプテリンおよ
びチミジンを含有する選択培地中で死滅する。
免疫化した動物から得られるひ臓細胞は、次にGe1f
eret al、 Somatic Ce1l Gin
etic、+ 3,231−236(1977)の方法
の採用によるポリエチレングリコールを使用することに
より、形質細胞種細胞と融合される。例えば30%ポリ
エチレングリコール溶液は、無菌ポリエチレングリコー
ル4000 (メルク社、分子単約4.000)(ポリ
エチレングリコール0゜5g+ジメチルスルホキシド(
DMSo)0.05d+蒸留水0.5d)と、血清なし
のDMEMとを41°Cへ加熱し、そしてポリエチレン
グリコール3戒を血清なしのDMEM  pH7゜4−
7.6の7−と混合することにより3FR’JJされ、
そして使用まで37゛Cで保存される。融合は室温で行
われる。骨髄腫細胞(106−10’ )は血清を含ま
ない培地で2回洗浄され、50m1円錐底円錐形遠心試
験管シヨン2070)中のひ臓細胞1−3X10’−1
−3X101′と混合される。
細胞は250Xgで5分間遠心され、そして上清液は注
意深く吸引される。ポリエチレングリコール液の0.2
 d量が加えられ、そして試験管は細胞を再懸濁するた
め手でゆっくりかきまぜられる。
次に細胞は250Xgで3分間、そし゛ζ再度400×
gで3分間遠心され、そしてさらに3分間静止状態に保
たれる。細胞はポリエチレングリコールに約8分曝され
る。その後で約5 mlの血清を含まない培地が試験管
へ加えられ、細胞がゆっくり再懸濁され、そして250
Xgにおいて5分間遠心することにより再ベレット化さ
れる。上清を除去し、そして細胞を血清含有培地20m
1中に再懸濁し、そしてHAT培地がそれへ添加される
マイクロプレートに移される前に加湿したインキュベー
ター中37°Cで48時間インキュベートされる。
その代りに、細胞は、DMEM、10%NCTC109
培地(マイクロバイオロジカル、アソシエイツ社)、2
0%ウシ胎児血清(ギブコ社)、2単位ウシインシュリ
ン/ml(シグマ社)、(145mMピルへ一ト、1m
Mオキザロアセテート、および必要に応じ抗生物質より
なる培地30d中に直接懸濁されるチミジン(1,6X
 10−5M)およびヒポキサンチン(IXIO−’M
)が添加される。
この培地中の細胞は6個のマイクロプレートにウェル当
り1滴(約50μl)で分配される。次に日にチミジン
とヒポキサンチンを含有し、今回アミノプテリン(8X
 10−’)を加えた上で規定した培地の1滴を各ウェ
ルへ加える。上の培地を6ないし7日後2滴加え、クロ
ーンは顕微鏡的に10ないし20日で出現する。ヒポキ
サンチン−アミノプテリン−チミジン()IAT)は融
合直後または後で加えることができる。得られる雑種の
数の改善は各マイクロウエルヘフィーダー層を加えると
きに達成される。こ\ではヒト胎児線維芽細胞が450
Orで照射され、そしてこのような細胞1,000〜2
,000が各ウェルへ融合の前日または融合した細胞へ
直接加えられ、そしてそれらがマイクロウェル中にその
ように分配される。
顕微鏡的にクローンが出現した後、培地の大部分を除去
し、そして新しい培地を加えることよって交換される。
2回目の培地交換後、培地はそのままに少なくとも4日
間放置され、次に慣用定量法により抗体活性および特異
性のアッセイのために集められる。
150mmプレートまたはローラーボトルから収穫され
た消費培養培地から多量の抗体が得られる。
培地は中空繊維濃縮器(アミコン社)によって後で濃縮
される。また2ないし3週間前に約10億のクローンし
たハイブリドーマ細胞を注射された無胸腺(無毛)マウ
ス(nu/nu)の腹水からも得られる。腹水は各マウ
スの腹腔を食塩水であふれさせることによって食塩水で
希釈され、そして各マウスからの希釈液はプールされる
モノクローン性抗CEA  IgGは、実施例1げ)の
ように1−131で放射標識される。
実施例3 ”’I−TG  ヤギ の 聰 正常ヤギ免疫グロブリンG(IgG)(マイルス社)を
臭化シアンで結合したCEAに対してアフィニティー精
製し、そしてl−131の代りに1−123を用い、比
放射能の差に対応して試薬の量を比例的に変更すること
を除いて、実施例1げ)の操作を用いてl−123で放
射標識する。標識した抗体の比放射能を例えば100−
500μCi/μgに調節するため担体ヨー素を添加す
ることができる。添加した担体ヨードの量は、担体当り
のヨー素原子の与えられた数のため、標識した抗体分子
の比放射能を決定するであろう。
実施例4 13+   ■ −CEA−”ゝBIG の   °1
(a)  実施例1または2で製造した抗CEA  I
CGを、HawLhorne et al、 J、 M
ed、 Chem、+ 15+449(1972)の操
作を使用して、天然存在比のホウ素−10アイソトープ
(20%)を有する1−(3−アミノフェニル)−1,
2−ジカルバクロンードデカルボラン(I2)のジアゾ
ニウム塩の20倍モル過剰と反応させる。得られる抗体
は、平均して抗体分子当り2ないし10個のジアゾ結合
カルポラン残基、または4ないし20のホウ素−10原
子を有する。
ら)前記(a)の抗CEA−”B  I gGを実施例
1(f)と同様に1−131で放射標識し、抗体分子当
すョー素lないしIO原子平均を導入する。
実施例5 注・し′、る。   の11吉 以下に示すように無菌のパイロ−ジエン不含溶液が調製
される。
(a)  無菌溶液はd当り次の成分を含有する。
(1)ヒト血清アルブミン(H3A)(1%、米局方パ
ークデービス社)34■ (2) 0.04 Mリン酸緩衝液pf(7,4(バイ
オウェア社) (3) 0.9%NaC1 (4)実施例1によって製造したlff1  [−抗C
EAIgG(ヨー素平均約5原子/分子、比放射能約8
0μCi/μg) 実施例1の標識抗体は20ug/ldの濃度において溶
液(1)、(2)および(3)中に貯蔵され、そしてこ
の溶液を調製するためリン酸緩衝液(PBS)中1%H
3Aの等容で希釈される。
[有])実施例3で調製した1231igGを15.1
μg/d余分に含有することを除いて(a)部の操作に
よって無菌溶液が調製される。比放射能500μCi/
μgのlffl)gQは10.2μg/瀬の濃度で1%
H3Aを含むリン酸緩衝液中に貯蔵される。この溶液の
等容を(a)部の操作中のPBS中1%ISAの代りに
使用する。
(C)  抗体が実施例2によって製造し、20μg/
dの濃度でPBS中1%ISAに貯蔵され、そして比較
し得る活性を有する1ffl  l−抗CEA  rF
、 Gであること以外(′b)部の操作による無菌溶液
(d)  抗体が実施例4によって製造され、抗体分子
当り平均ジアゾ結合したカルボラン残基5個とヨー素l
原子を有し、そして約16μCi/μgの比放射能を有
する1:11 1−抗CEA−”B  IgGであるこ
と以外(b)部の操作による無菌溶液。最終溶液は抗体
50.4μg/!lllを含有する。
実施例6 ■夏作!息足 放射性ヨード化した抗CEA  IgGを腫瘍の疑いあ
る患者に投与する。患者はヤギ1gGまたは骨髄腫1g
Gに対するアナフィラキシ−過敏症に対して事前テスト
される。l−131またはl−123の甲状腺摂取を阻
止するため、ルゴール液(ピュアバック社)を口から、
放射能標識した抗体の注射1日前から開始して7日間、
5適づつ1日2回投与する。
位置測定はGoldenberg et al、 N、
 Eng、 J、門ed。
298.1384(197B)の方法により、無菌生理
食塩水20d中実施例5(b)または5(C)によって
製造した+23 IigGを含有する+31  f−抗
CEA  IgGの溶’(& 3.5 mlを10分な
いし45分を要して注入することによって実施される。
Tc−99m化合物は使用せず、減算技術はIII  
lと123  (との間を識別するため慣用の態様に適
応している。
抗体の注射完了直後および2,8,12,24゜48お
よび72時間後走査が行われる。
有意な局在化が2時間後に見られ、時間につれて改良さ
れた解像度が得られ、注射後8ないし24時間の間に高
原に達する傾向がある。追加のバックグラウンド12!
  ■ JgQは添加されない。
この方法のCEA選択性は以前のGoldenberg
 etal法と比較できるが、しかし解像度、速さおよ
び便利さは著しく増強される。
実施例7 1監准遼 (a)  場合によって実施例6の操作によって検出さ
れ、位置測定された卵巣がんを有する患者に、無菌生理
食塩水50d中実施例5(a)の溶液150mC1を静
脈内注射により注射する。腫瘍サイズの減少を20日以
内に観察する。前記投与量を個人ベースに調節された間
隔で繰り返す。
(b)  場合によって実施例6の操作によって検出さ
れ、位置測定された子宮頚部がんを有する患者に、患者
の体重70kgをもとにして2.8mC1の1311活
性を与えるのに充分な実施例5(d)の溶液の量(無歯
生理食塩水中)を注射する。
腫瘍は実施例6の操作を使用して注射後12時間で正確
に位置測定される。よくコリメートされた熱中性子ビー
ムが位置決めされた腫瘍位置に集中される。3X10”
中性子/cr1の照射が各腫瘍位置に対して有効であり
、そして場合により個人ベースで調節された間隔で、放
射標識を持ちまたは持たない腫瘍位置測定抗体の投与が
繰り返される。成功した腫瘍縮小が観察される。
実施例8 ”’  I−HCG  I  G  ヤギ の 1(a
)  HCGに対する抗体(抗HCG)は、Gagsh
awe。
Method in InvestistigaLiv
e and DiagnosticEndocltol
ogy、 part III、 Peptide )I
ormonesBearson et al、  Ed
s、、  pages 756−763(NorthH
olland、 Amsterdam、 1978)の
方法によって製造される。
HCGのβ−サブユニットに対する抗体(抗−HCG−
β IgG)は、νaitukaitis et al
Am、 J、 0bstet、 Gynecol、、 
113.75H1972)の方法によって製造される。
(b)  前記(a)部において調製した抗体は血清溶
液としてさらに精製された。操作は抗−HCG  rg
Gおよび抗−HCG−β IgGについて同一である。
抗−HCG (または抗−HCG−β)血清の補体は5
6゛Cで1・時間のインキュベーションにより不活性さ
れ、もはや血球凝固活性が検出されなくなるまで、血球
凝固アッセイから計算された血清/RBC比をもって抗
血液ABヒトRBCが除去される。吸着された抗−〇〇
〇血清は0.1Mリン酸緩衝液p H7,0(P O4
)の数倍容に対して透析される。
(C)  ヒト尿タンパク(HUP)免疫吸着体が精製
したHUPを臭化シアン活性化セファローズ4Bへ結合
することによって調製され、HUP免疫吸着体カラムが
調製され、そして抗−)ICG (または抗−HCG−
β)が精製され、そして実施例1(C)の操作に準じて
テストされる。
(d)HCC;−免疫吸着体力ラムが精製したHCGを
臭化シアン活性化したセファローズ4BへF(UP免疫
吸着体のそれと同じカップリング操作により結合し、(
C)部と同様にカラムを調製し、前循環し、そして平衡
化することによって調製される。
HCG免疫吸着体カラムは自動クロマトグラフィーシス
テムへ導入され、上記(C)部からの抗HCG血清が実
施例1(d)の操作と同様に精製される。
抗HCC;  IgG製剤の無菌のパイロ−ジエン不合
血清バイアル中へ無菌口過される。部分標本がRIAお
よび免疫拡散による品質管理テストのために保存される
(e)  セファクリルS−200(ファルマシア社)
カラムが準備され、前記(d)部からのヤギ抗HCGI
gGのロフトが実施例1の操作と同様に精製され、そし
てアジ化ナトリウムを保存剤として添加して、約5mg
  IgG/mlの1d部分標本として冷蔵される。
(f)”’  I  mCi当り7.2ないし16. 
a u gのヤギ抗HCG  IgGが111 (アマ
ーシャムーサール社)を含む核種バイアル中へ注射され
、標識され、そして実施例1(f)の操作と同様に精製
され、貯蔵される。
得られる131■−抗HCG  IgGまたはIll 
 (−抗HCG−β IgGは、抗体分子当すョー素を
平均3ないし7原子有する。各バッチからの無作為部分
標本は無菌性、発熱原性、毒性およびその他の品質管理
変動について別々にテストされる。
実施例9 (a)  ”’  I −AFP  I  G  ヤギ
 の ゛1過免疫ヤギ抗血清は、西、Cancer R
es、、30,2507(1970)の方法により精製
したヒトAFPの繰り返した皮肉注射によって精製され
る。抗血清の特異性は二重ゲル拡散、免疫電気泳動およ
びラジオイムノアッセイによって確認される。免疫電気
泳動的に純粋なrgcは、抗血清1OIn1のDEAE
セルロースクロマトグラフィーと、次にアミコンPM−
30膜上の濃縮によって製造される。4.2■/dの濃
度において、ヤギ抗AFP  IgGは終了点として2
ngの標識抗体の50%結合を用いて、ラジオイムノア
ッセイ力価3X10’を有する。
抗体は実施例1(f)の操作と同様に放射標識され、該
実施例記載と同じ様に精製され、貯蔵される。
(b)  ”’  I−C3A   I  G  ヤギ
 の 1抗C3Ap血清は、氷水下の脱イオン水の5容
量(W/V)中のGW−39ヒト結腸がん外来移植腫瘍
を全速度で2分間ポリトロンによりホモジナイズするこ
とにより調製される。次にホモジネートは48.OOO
Xgで1時間遠心される。透明な上滑が免疫原として使
用される。免疫原のタンパク含量はロウジー法により測
定するとき7 mg/dである。ヤギがヤギの首に皮下
投与された、5厩の完全フロイドアジュバント中に乳化
したホモシネ−)5d(タンパク35■)で免疫化され
る。増強免過は3ないし4週間隔で続けられる。
ヤギは毎月試験採血され、そして血清が抗体産生につい
てテストされる。特異抗−C3Ap抗体の製造のため、
アフイニテイにより、10月目およびその後の日日にお
ける出血が処理される。
抗C3Ap抗体は各種の臓器および組織抽出物に対して
アフィニティー精製される。ヒト結腸がん、ヒトすい臓
および肺、ハムスター肝臓および腎臓の抽出物は、全速
度2分間のポリトロンにより氷水下の脱イオン水5容(
W/V)中につくられる。ホモジネートは48,000
Xgで1時間遠心される。透明な上清か集められ、凍結
乾燥され、そして臭化シアン法によって抗原をセファロ
ーズ4Bへ結合するのに適当なタンパク濃度を得るよう
に水に再溶解される。同時に、ヒトおよびハムスター血
清がセファローズ4Bへの結合前にタンパクについて調
節される。GW−39水ホモジネートおよびその4B、
000g上清は、Goldenberg et al、
 Cancer Res、、36.3455(1976
)に報告されているように、C3A製造のため90%フ
ェノール液で処理され、そしてセファローズ4Bへ結合
される。
アヘイニティー吸着は実施例1(C)ないしくe)の操
作と同様に実施される。粗製ヤギ抗C3Ap (4d)
は結腸がん抽出物を結合したセファローズ4B100+
+1を収容するカラムへ適用され、下方へ流下すること
を許容される。流下液中にタンパクが出現する時流れを
止め、そして抗血清は免疫吸着体と30分間反応するこ
とが許容され、そして次にゲルが0.1 M  P O
a 、  p H7,0緩衝液で洗浄される。溶離され
た抗体は直ちにアミコンPM−30膜上で透析され、0
.1M  PO,、pH7゜0緩衝液で、次に0.05
M  P Oa 、  p H7,0中の1.0M尿素
および10%グリセロールで、そして最終に0.1M 
 PO,、pH7,0緩衝液で平衡化される。抗体は次
にヒトひ臓、肺および血清を結合したセファローズ4B
  15dの混合物を通過させられる。抗体が免疫吸着
体と反応することが許容された後、カラムは0.1MP
○4.PH7,0緩衝液で溶離される。抗体はアミコン
PM−30膜上で濃縮され、そしてハムスター肝臓、腎
臓および血清抗原の混合物を含む免疫吸着体カラム75
dを通過させ、そして前述の態様で処理される。
最後に抗体はGW−39腫瘍のフェノール抽出物でつく
った免疫吸着体320dへ適用される。
抗体30分間インキュベートした後、カラムは0゜LM
  PO,、PH7,0緩衝液で溶離される。抗体は次
に濃縮され、そしてアミコンPM−30膜上で0.05
M  P Oa 、  p H7,5緩衝液で平衡化さ
れる。このようにして得られるアフィニティー精製され
た抗体はセファデックスG−200(2゜5X100c
+++)カラムに適用され、そして0.05M  PO
4、pH7,5緩衝液を用いて分画される。
IgG分画はプールされ、アミコンPM−30膜上で濃
縮される。抗C3Ap  rgGのタンパクは2.8■
/dに調節され、そして−20°Cで貯蔵される。
1−135による放射性ヨー素化は実施例1 (f)の
操作と同様に実施され、そして1コ1【−抗C3Ap 
 IgC;は核実施例1と同様に精製され、貯蔵される
(C)  実施例1.8およびこの実施例に類似の操作
を使用して、CEA、HCG、AFPまたはC5ApO
代りに、前立腺酸性フォスファターゼ、すい臓胎児性腫
瘍抗原、胎盤アルカリ性フォスファターゼ、妊婦ベータ
ー1−グロブリン、小麦小体ホルモン、カルシトニン、
組織ポリペプチド抗原、T−抗原、ベーター2−マイク
ログロブリン、ガラクトシルトランスフェラーゼ−I[
(GT−II)。
gp−52ビールス関連抗原、卵巣のう腫瘍関連抗原(
OCAA)、卵巣腫瘍特異抗原(OCA)。
頚管がん抗原(CA−58,CCA、TA−4)。
塩基性胎児性タンパク(BFP)、末端デオキシヌクレ
オチジルトランスフエラーゼ(TdT)。
細胞質黒色腫関連抗原、ヒト星状細胞腫関連抗原(HA
AA)、通常グリオーマ抗原(CCA)。
膠芽胎児性抗原(GEA)、神経膠原線維酸性タンパク
(GFA)、通常髄膜腫抗原(CMA)および腫瘍脈管
形成因子(TAF)のいずれか1種を用い、そして適当
なアフィニティー精製により、これら抗原に対する標識
した抗体が得られる。
実施例10 モノクローン ”’  I−AFP  I  Gの ゛
1モノクローン性+ff:l  7−抗AFP  Ig
Gは、CEAの代りにAFP抗原を使用することを除い
て、実施例2の操作と同様に製造される。
モノクローン性抗AFP  IgGは実施例1(r)の
操作と同様にr−133で放射標識される。
実施例11 ■−−I  G  ヤギ の ゛1 正常ヤギIgG(マイルス社)は、臭化シアン結合HC
G、AFPおよびC3Apに対してアフィニティー精製
され、そしてl−123をr−+31に代え、実施例3
のように比放射能の差を補償するように試薬の比率を変
更することを除き、実施例1(f)の操作と同様にT−
123で標識される。
実施例12 ”’  r−AFP−10B  I  G(7)”−(
a)  実施例9(a)によって製造した抗AFP  
IgGを、実施例4(a)の操作と同様に、ホウ素−1
0天然存在比(20%)を有する、1−(4−アミノフ
ェニル)−1,2−ジカルバクロソードデカルボラン(
12)のジアゾニウム塩の20倍モル過剰と反応させる
。生成する抗体は抗体1分子当り、平均ジアゾ結合カル
ボラン残基2ないし10個、もしくは4ないし20個の
ホウ素−10原子を有する。
(5)上記(a)部の抗A F P−”Bを実施例1(
f)の操作と同様に1−131で放射標識し、抗体1分
子当りヨー素平均1ないし10原を導入する。
実施例13 ン゛ ・し′ る7   の−1・告 無菌のパイロ−ジエン不含溶液は以下に示すように製造
される。
(a)  無菌溶液はd当り以下の成分を含有する。
(1)ヒト血清アルブミン(H5A)(1%、米局方、
バークデービス社)3.4■ (2)0.04 Mリン酸緩衝液、pH7,4(バイオ
ウェア社) (3) 0.9%NaCI (4)実施例8によって製造した1311−抗F(CO
tgC(ヤギ)10部g(平均ヨー素約5原子/分子、
比放射能約80μCi/μg)実施例8の標識抗体は2
0部g/vdlの濃度で(1)、(2)および(3)の
溶液中に貯蔵され、そしてこの溶液を調製するためにリ
ン酸緩衝食塩水(PBS)中の1%H3Aの等容で希釈
される。
[有])実施例11で製造した12ff ■−IgGの
5.1μg/mlをさらに含有することを除いて、上記
(31部の操作による無歯溶液。標識放射能500μC
j/μgにおける121  ■−IgGは濃度10.2
μg/1tdlにおいて1%H3Aを含むリン酸緩衝食
塩水中に貯蔵される。この溶液の等容が(a)部の操作
におけるPBS中1%H3Aの代りに使用される。
(C)  抗体が実施例9(a)により製造され、濃度
20μg/ynflにおいてPBS中15H3A中に貯
蔵され、そして匹敵する比放射能を有するIII  l
−抗AFP  IgG(ヤギ)であることを除き、[有
])部の操作による無菌溶液。
(d)  実施例10により製造した+3ゴ ■−抗A
FPTgG(モノクローン性)10部g / mlをさ
らに含有することを除き、(b)部の操作による無菌溶
液。
+ゴ寛 ■−抗HCG  IgG、+2’I−IgGお
よび+33 1−抗AFP  IgGはそれぞれ最終溶
液の所望の比放射能の3倍の濃度で貯蔵され、そして各
溶液の等容が無菌溶液の調製に使用される。
(e)  抗体が実施例12により製造され、抗体1分
子当りジアゾ結合カルボラン基を平均5個およびヨー素
平均1原子と、そして比放射能16μCi/μgを有す
る1ull  l−抗AFP  IgGであることを除
き、(b)部の操作による無菌溶液。?8液は抗体50
.4μg / ml含有する。
実施例14 獲簾位1貫足 放射性ヨード化した抗体は腫瘍の疑いある患者に投与さ
れる。患者はヤギIgGに対するアナフィラキシ−過敏
症に対して事前テストされる。■−131またはl−1
23の甲状腺摂取を阻止するため、ルゴール液(ピュア
バック社)が放射性標識抗体の注射1日前から始まる7
日管5滴づつ毎日2回口から投与される。
(a)  位置測定は、Goldenberg et 
al+ N、 Eng、 J。
Med、、 298.1384(1978)の操作によ
り、無菌生理食塩水20d中実施例13(b)によって
製造した”I−IgGを含有する131■−抗HC0I
gGの溶液3.5 mlを10ないし20分を要して注
入することにより実施される。Tc−99m化合物は使
用せず、減算技術は慣用の態様でl−131と!−12
3とを識別するのに適応している。
抗体の注射完了直後および2,8,12,24゜48お
よび72時間走査が行われる。
データ解析はフォト操作データをタンビューターに記憶
させ、標識した正常免疫グロブリンの放射能レベルを少
なくとも1つの標的区域における標識抗体のそれと等化
し、各データポイントについて標識抗体に対するバック
グラウンドレベルを計算し、各データポイント毎に標的
を指向した抗体の活性に対する値を発生するため、写真
毎に全抗体活性からえらえたバックグラウンド値を減算
し、そして得られる標的指向抗体活性の発生した値を関
連する出力信号を発生させるために使用することを含む
有意を局在化が2時間後に見られ、時間とともに解像度
が改善され、注射後日ないし24時間で高原へ達する傾
向がある。追加のバックグラウンド12:11(gGは
加えない。この方法はHCG選択性は以前のGolde
nberg et alの方法に匹敵するが、しかし解
像度、速さおよび便利さは著しく増強される。
造影はHCGを排泄するこう丸生殖細胞腫瘍を持つ患者
において特に成功する。これら患者の2次的骨盤および
腹部腫瘍もまた成功して位置測定され、それらのうちあ
るもの、例えば腹部転移はコンピューター化した腹部断
層撮影法、静脈内賢う造影法および下部ビナキアボグラ
フィーによっては検出困難または不可能である。
(b)  抗体が実施例13(C)で製造した131−
IgGを含有する溶液中のlff1 1−抗AFP  
IgGであることを除いて、(a)部の操作を繰り返す
造影は(a)のそれに匹敵し、こう丸および肝臓がんを
有する患者に特に成功である。しばしば高く上昇するA
FPレベルにもか\わらず、2次的腹部および肺転移が
よく位置測定される。
(C)  抗体溶液が実施例13 (d)により製造し
たIII  (−抗HCG  IgG、”” I−抗A
FP  IgGおよびI23 ■−IgGの3.5 d
であることを除き、(a)部の操作が繰り返される。フ
ォト走査データが慣用手段で1−131.l−133お
よびl−123放射を分離し、標識標的抗体に対するバ
ックグラウンド値を決定するため等化した[−123/
l−131およびl−123/l−133比を記憶して
使用し、これらを各抗体に対する個別的標的指向活性を
計算するため減算することによって解析される。
造影は(a)部および(b)部の別々の抗体走査により
成功して造影されたすべてのタイプの腫瘍に対して成功
である。走査の組み合せは多数の場合において、特に胎
児性がんにおいて増強された位置測定および解像度を与
える。
実施例15 皿簾血班 (a)  場合により実施例14(a)の走査によって
検出され、位置測定されたこう丸生殖細胞がんを有する
患者に、無菌生理食塩水50d中実施例13(a)の溶
液150mCiを静注する。腫瘍の縮小が20日以内に
観察される。この投与は個人毎に調節される間隔で繰り
返される。
(b)  場合により実施例14[有])の操作により
検出され、位置測定された肝臓がんを有する患者に、患
者の体重70kgに対してIII  I活性2.8mC
1を与えるのに充分な量の実施例13(e)の溶液(無
菌生理食塩水50m1中)を注射する。腫瘍は実施例1
3の操作を用いて注射12時間後に精密に位置測定され
る。よくコリメートした熱中性子ビームが区切られる腫
瘍位置へ集中される。c4当り3×1012中性子の照
射が各腫瘍位置について実施され、そして個人ベースで
調節された間隔で、放射標識しまたはしない腫瘍位置測
定抗体の投与と共に繰り返される。成功した腫瘍縮小が
観察される。
実施例16 (a)  リン酸緩衝食塩水中15■/−の実施例1で
製造したアフィニティー精製したヤギ抗CEAI gG
2dが、4°Cにおいて24時間、100mM酢酸ナト
リウム緩衝液、pH4,0(NaAc)に対して透析さ
れる。抗体溶液はねし蓋つき試験管へ移され、37°C
へ予熱され、そしてNaAc中3 tpg / rtd
lのブタペプシン(シグマ社) 0.1 mlと37°
Cで16時間インキュベートされる。沈澱を含むダイジ
ェストは100mMリン酸ナトリウム緩衝液、p H7
,5(P O−a ) ニ対して4°Cで6時間透析さ
れる。得られる溶液はセファデックスG−100上でP
O,でクロマトグラフされ、F(ab’)、フラグメン
トは2番目のタンパクピークに溶離される。F(ab”
)2分画を合し、限外口過で濃縮し、50 m M  
P Oa 、  P H7,5に対し透析し、そして−
20°Cで貯蔵する。
(b)  ゲル口過前の(a)部で得られた溶液をサン
プル戚当り7μ2の2−メルカプトエタノールで処理し
、4°Cで0.5時間一定のかきまぜのちとにインキュ
ベートする。サンプル1 ml当り、1Mヨードアセタ
ミド0.135 mlを加え、混合物をかきまぜなから
4°Cで1時間インキュベートし、遠心して清澄化する
得られる粗製Fab’ フラグメント溶液はセファデッ
クスG−100上でゲル口過され、抗CEAFab’ 
フラグメントは2番目のタンパクピークに溶離される。
ピーク2の分画がプールされ、限外口過により濃縮され
、50 mM  P 04 p H7,5に対して透析
され、−20°Cで貯蔵される。
(C)  前記(a)部の操作により、抗HCG、抗A
FP。
抗C3Ap、抗CGA、抗GEA、抗GFA、抗CMA
および抗HAAAのF(ab’)2フラグメントが製造
される。
(d)  前記(a)部および(b)部の操作により、
抗HCG。
抗AFP、抗C3Ap、抗CGA、抗GEA、抗GFA
、抗CMAおよび抗HAAAのFab’フラグメントが
製造される。
(e)  13’  l−1mC1当り、前記(a)部
またハ(C)カらF(ab’)、フラグメント4.4な
いし10128g、または前記Φ)部または(d)部か
らのFabフラグメント2.4ないし5.6μgがIl
l  l (アマーシャムーサール社)を含む放射性核
種バイアル中へ注射され、実施例1(f)の操作と同様
に放射標識される。
得られる1:11 1−抗体F (ab’ )zは、フ
ラグメント当りヨー素平均3ないし7原子を有する。
各バッチからの無作為部分標本は個々に無凹性、発熱原
性、毒性およびその他の品質管理変動についてテストさ
れる。
実施例17 フラグメントの 1および (a)NaActl衝液p !45.0中15mg/m
l溶液の形の、実施例16 (C)で製造した抗CEA
および抗C3ApF(ab”)2フラグメントの等景況
合物がサンプルi当り7μ2の0.01M2−メルカプ
トエチルアミン塩酸塩溶液で処理され、一定したかきま
ぜのちとに37”Cで1時間インキュベートされる。混
合物は還元剤を除去するためpH5で40’Cにおいて
イオン交換カラム(IR120)を通され、得られる溶
液はpH8に調節され、ゆるやかにかきまぜながらそし
て酸素を溶液に通しながら2時間かきまぜる。溶液は次
にPO,に対して4°Cで6時間透析され、実施例16
(a)の最終工程のようにセファデックスc−t o 
o上PO。
でクロマトグラフされる。
F (ab’ )z混成フラグメントを含有する分画は
2番目のタンパクピークに溶離される。この分画は臭化
シアンで結合したCEAおよびC3Apを含む別々のセ
ファローズ4Bカラム上のアフィニティークロマトグラ
フィーにかけられる。両方のカラ1、に保持される分画
は)昆乱的に解離され、セファデックスG−100上で
再クロマトグラムされ、そして硫安で沈澱し、解離しそ
してPO。
に対し透析することによってさらに精製され、そして抗
CEA/C3Ap  F (a b’ )zの溶液は一
20℃で貯蔵される。
(b)  上記(a)部の操作により、以下の混成F(
ab’)フラグメントが製造される。成分Fab’記号
はそれらの抗体源によって示される。
(1)抗AF P / HCG  F (a b’ )
 2(2)抗CEA/PAP  F (a b’ ) 
2(3)抗CGA/CEA  F (a b’ ) 2
(C)  上記(81部および0))部で製造したフラ
グメントはそれぞれ実施例1(r)の操作に同様に>1
31またはl−133のどちらかで放射標識される。
実施例18 ■ Gフラグメントの ′告および 正常ヤシIgG(マイルス社)が臭化シアン結合された
HCC;、AFP、C3Ap、CEA  PAP、GE
AおよびCGAに対してアフィニティー精製され、実施
例16の操作によりフラグメント化され、そしてフラグ
メントが、l−123を1−131の代りに使用し、そ
して実施例3のように比放射能の差を補償するため試薬
の比例的変更を行うこと以外は実施例1 (f)の操作
と同様に■−123で放射標識される。
実施例1つ ホウ −10A   フラグメントの ′告および■ (a)  抗体フラグメント、例えば実施例16により
製造した抗CEA  F (ab’ )2を、実施例4
(a)の操作と同様に、ホウ素−10を天然存在比に含
む(20%)、1.−(3−アミノフェニル)=1.2
−ジカルバクロソードデカルボラン(12)のジアゾニ
ウム塩の20倍モル過剰と反応させる。
得られるフラグメントは抗体フラグメント当りジアゾ結
合カルボラン残基を平均2ないし10個もしくはホウ素
−10を4ないし10原子有する。
a〕)前記(a)部の抗CEA−”B−F (a b’
 ) 。
は実施例1(f)の操作と同様にr〜131で放射標識
され、抗体フラグメント当りヨー素を平均工ないし10
原子が導入される。
(C)  実施例16(C)のF(ab’)、フラグメ
ントをそれぞれこの実施例の(a)部の操作によりカル
ボラン付加物を付加するように反応させ、得られるホウ
素−10含有フラグメントは実施例1 (f)の操作と
同様に放射標識され、抗体フラグメント当りヨー素平均
1ないし10@子の標識が達成される。
(d)  ヨードアセタミドの代りに、■−(4−アミ
ノフェニル)−1,2−ジカルハクロソードテカルボラ
ン(12)のN−ヨードアセタミドが使用される以外は
、実施例16α))の操作が繰り返される。咳アミドは
、慣用方法により、塩基の存在下アミンをヨードアセチ
ルクロライドと反応させることによって製造される。得
られるFab’ フラグメントは、還元的開裂で遊離さ
れたスルフヒドリル基に、2個のカルポラノフェニル置
換アセタミド基を有する。ホウ素−10含有フラグメン
トは、抗体フラグメント当すョー素平均lないし10原
子の標識を得るように、実施例1 (f)の操作と同様
に放射性コード化される。
(e)  実施例17(a)および17(b)によって
製造した混成F (ab’ )zフラグメントをこの実
施例の(81部のように反応させ、次に抗体フラグメン
ト当りヨー素1ないし10原子の標識を得るように、実
施例1(f)の操作と同様に放射性ヨード化される。
実施例20 止■旦往工凱戎立二裂遣 無菌のパイロ−ジエン不含溶液が以下のように製造され
る。
(a)  m1当り、以下の成分の含存する無菌溶液(
1)ヒト血清アルブミン(H3A)(1%、米局方、パ
ークデービス社)34mg (2)0.04 Mリン酸緩衝液、pi(7,4(バイ
オウェア社) (3) 0.9%N a C1 (4)実施例16により製造した+31 1−抗CEA
F (ab’ )z  (ヤギ)6.1μg(ヨー素平
均約5原子/分子、比放射能約125μCi/μg) 実施例工6の抗体は24.4μg / miの濃度で溶
液(1)、(2)および(3)中に貯蔵され、この溶液
を調製するためにリン酸緩衝食塩水(PBS)中の1%
H3Aの3容で希釈される。
(b)  実施例18で製造した比放射能500uci
/pgの+2:II −F (ab’ )zを5.2 
u g /mlをさらに含有することを除き、上記(a
)部の操作による無菌溶液。t2コ r  F(ab’
)zは濃度20.8μg/rnllにおいて工%H3A
を含むPBS中に貯蔵される。この溶液の等容が(a)
の操作におけるPBS中の1%ISAの1容の代りに使
用される。
(C)  抗体が実施例16により製造され、濃度40
゜4μg/dにおいてPBS中1%H3A中貯蔵され(
フラグメント当すョー素平均2゜5原子)、そして13
+  1−抗CEA  F (a b’ )2フラグメ
ントの活性の約半分を有する131  )−抗AFPF
ab’の10.1μg/dであり、そして123I−F
 (a b’ )’zの代りに”’I−Fab’を■−
131対1−123の活性化が実施例20(b)と同じ
になるような比放射能において含むこと以外は、(a)
部の操作による無菌溶液。
(d)  抗体が実施例16により製造され、24,4
μg / rtdlの濃度でPBS中1%ISAに貯蔵
され、そして匹敵する比活性を有する13′I−抗C3
Ap  F(ab’)zであることを除いて、(b)部
の操作による無菌溶液。
(e)抗体が実施例17により製造され、24,4μg
 / mlの濃度でPBS中の1%H3Aに貯蔵され、
そして匹敵する比活性を有する131■−抗CEA/C
3Ap混成F(ab’)、であることを除き、[有])
部の操作による無菌溶液。
(f)  それぞれ24.4μg/戚の濃度でPBS中
の1%ISAに貯蔵され、そして匹敵し得る比活性を有
する+31 ■−抗AFP  F(ab’)zおよびl
ff1  l−抗HCGF (a b’ )zをそれぞ
れ6゜1μg/rttlさらに含むことを除き、(′b
)部の操作による無菌溶液。それぞれの等容が(a)部
の操作におけるPBS中の1%I S Aの1容の代り
に使用される。
(g)  実施例17により製造し、20.4μg/m
1の濃度でPBS中の1%H3A中に貯蔵され、そして
匹敵し得る比活性を有する1:13  ■−抗A F 
P /HCG  F (ab’ )zをさらに含むこと
を除いて(e)部の操作による無菌溶液。
(ハ)抗体が実施例17により製造され、24.4μg
 / mflの濃度でPBS中の1%ISAに貯蔵され
、そして匹敵する比活性を有する+11 1−抗CGA
/GEA  F (a b’ ) !フラグメントであ
ることを除き、[有])部の操作による無菌溶液。
(i)  抗体が実施例19により製造され、抗体分子
当り平均5個のジアゾ結合カルポラン残基とヨード1原
子とを有し、そして約25μCi/μgの比放射能を有
する+31  i−抗CEA−IOB  F (ab’
)、フラグメントであることを除き、[有])の操作に
よる無菌溶液。
(j)  抗体が実施例19により製造され、抗体分子
当り平均5個のジアゾ結合カルボラン残基およびヨーF
 1原子とを有し、そして約25μCi/μgの比放射
能を有するIII  l−抗CEA/C3AP 16B
混成 F (ab’ )zであることを除き、(b)の
操作による無菌溶液。
最終溶液は抗体30.6μg/lniを含有する。
(財)抗体が実施例19(d)により製造され、抗体分
子当り平均2個のアミド結合カルボラン残基およびヨー
素1原子とを有し、そして約52μCi/μgの比放射
能を有する直31  (−抗AFP−1’BFab’ 
フラグメントであることを除き、(ハ)部の操作による
無菌水溶液。最終溶液は抗体16.8μg/mlを含有
する。
(1)  抗体が実施例19(e)により製造され、抗
体分子当り平均5個のアミド結合カルボラン残基および
ヨー素l原子とを有し、そして約25μCi/μgの比
活性を有するIll  l−抗CC;A/GEAIOB
混成F (ab’ )zフラグメントであることを除き
、Q′))部の操作による無菌溶液。最終溶液は抗体3
0.6μg/rrdlを含有する。
実施例21 ■棗位1皿足 放射性ヨード化した抗体フラグメントは腫瘍の疑いのあ
る患者に投与される。患者は対応するIgGフラグメン
トに対するアナフィラキシ−過敏症について事前テスト
される。l−131または!−123の甲状腺摂取を阻
止するため、ルゴール液(ピュアパック社)が放射性標
識抗体フラグメントの注射1日前から始める7日間、5
滴づつ1日2回口から投与される。
(a)  位置測定はGoIderberget at
、 N、 Eng、 J。
Med、、 1384(1978)の方法により、無菌
生理食塩水20雁中の、実施例20(b)により製造し
た!2ff  l−F (ab’ )zを含むlff1
  l−抗CEAF(ab’)2の溶液3.5 mlを
10分ないし20分を要して注入することにより実施さ
れる。Tc−99m化合物は使用されず、減算技術は慣
用態様で1−131およびr−123を識別するのに適
応している。フラグメントの注射の完了直後、および2
.4,8.12.24.48および78時間後走査が行
われる。
データ解析は、フォト走査データをコンピューターに記
憶させ、標識した正常IgGフラグメントの活性レベル
を少なくとも1つの標的区域における標識した特異フラ
グメントのそれに等化し、そして各データポイントに対
し標識したフラグメントのためのバックグラウンドレベ
ル値を計算し、得られたバックグラウンド値を全フラグ
メント活性から減算し、各データポイントに対し標的へ
向ったフラグメントの活性のための値を発生させ、そし
て得られた標的指向フラグメント活性に対する発生させ
た値を関連する出力信号を発生するように使用すること
を含む。
2時間後に有意な位置測定が見られ、時間とともに改良
された解像度が得られ、注射後4ないし12時間の間に
高原に達する傾向が見られる。追加のバックグラウンド
+23 1−1’;’ (a b’ ) zは加えられ
ない。この方法のCEA特異性は以前のGolderb
erg et at法に匹敵するが、しかし解像度、速
さおよび便利さは著しく増強された。
(′b)実施例20(b)の溶液の代りに実施例20 
(C)の溶液3.5雁を使用し、上記(a)部の操作が
繰り返される。
造影は(a)部に匹敵し、こう丸および肝臓がんを有す
る患者に特に成功する62次的肺および腹部転移は、し
ばしば高く上昇する血清AFPにもかかわらず良好に位
置測定される。
(C)  実施例20(b)の溶液の代りに実施例20
 (d)の溶液3゜5 mlを使用し、(a)部の操作
が繰り返された。
造影は(a)部のそれに匹敵し、結腸がんを有する愚者
に特に成功する。
(d)  実施例20(b)の溶液の代りに実施例20
(e)の溶液3.5 mlを使用し、(81部の操作が
繰り返される。
胃腸がんの造影は特にシャープで、この実施例の(a)
部および(C)部に匹敵する。
(e)  実施例20(b)の溶液の代りに実施例20
 (f)の溶液3.5 mlを使用し、(a)部の操作
を繰り返す。
この実施例の(a、)、(b)および(C)部で位置測
定および検出に成功したタイプのすべてのll1gの造
影に成功する。組み合わせ走査は多くの場合、特にこう
丸生殖細胞、肝臓および肺がんに対して増強された位置
測定および解像度を与える。
げ)実施例20(b)の溶液の代りに実施例20 (g
)の溶液3.5 mlを使用し、(a)部の操作を繰り
返す。
造影はこの実施例の(a)ないしくb)部の操作により
造影されるすべての腫瘍タイプに対し、この実施例の(
bJ部のそれに匹敵する。
(8)実施例20[有])の溶液の代りに実施例20ら
)の溶液3.5 mftを使用し、(a)部の操作を繰
り返す。脳の膠芽腫の造影に成功し、混成抗体は血液−
脳障壁を通過することができ、そして脳腫瘍中に集中す
ることを示す。
実施例22 腫廣血遼 (a)  場合により実施例21の操作により検出され
、位置測定された卵巣がんを有する患者に、無菌生理食
塩水50緘中実施例20 (a)の溶液150mC1を
静注する。腫瘍サイズの縮小は20口以内に観察される
。該投与は個人ベースで調節された間隔で繰返される。
(b)場合により実施例21の操作により検出され、位
置測定された子宮頚部がんを有する患者に、患者の体重
70kgに対し+311活性2.8mC1を与えるのに
充分な量の実施例20(i)の溶液(無菌生理食塩水5
0d中)を注射する。
腫瘍は実施例21の操作を用いて注射後12時間で精密
に位置測定される。よくコリメートされた熱中性子ビー
ムが区切られた腫瘍位置に集中される。cffl当り3
X10”中性子の照射が各111!i位置に対して実施
され、そして場合により個人ベースで調節された間隔で
、放射標識し、またはしない腫瘍位置測定剤の投与とと
もに繰り返される。
成功する腫瘍縮小が観察される。
(C)  実施例20(i)の溶液の代りに実施例20
(j)の溶液が使用され、患者が結腸がんを有すること
を除いて、上記(b)部の操作が繰り返される。成功し
た腫瘍縮小が観察される。
(d)  実施例20(i)の溶液の代りに実施例20
(k)の溶液が使用し、そして患者がこう丸生殖細胞腫
瘍を有することを除いて、(b)部の操作が繰り返され
る。腹部転移の減少を含む、成功した腫瘍縮小が観察さ
れる。
(e)  実施例20(i)の溶液の代りに実施例20
(1)の溶液を使用し、そして患者が脳の膠芽腫を有す
ることを除き、(b)部の操作が繰り返される。成功し
た腫瘍縮小が観察される。
前記実施例は本発明の一般的にまたは特定的に記載した
反応剤および/または処理条件で前述の実施例中に使用
されたそれらの置き換えることにより、同様の成功度を
もって繰り返すことができる。
以上の記載から、当業者は本発明の基本的特徴を確かめ
ることができ、そしてその精神および範囲を逸脱するこ
となく、その各種の用途および条件に適応させるため本
発明の各種の改変を行うことができる。

Claims (5)

    【特許請求の範囲】
  1. (1)(a)腫瘍マーカーに対し特異性であり、フォト
    走査装置を用いて外部から検出可能な薬理学的に不活性
    なラジオアイソトープの造影有効量で放射標識された少
    なくとも1種のマーカー特異性抗体であって、前記抗体
    は細胞内腫瘍マーカーに対して特異性の全免疫グロブリ
    ンであり、かつ前記腫瘍マーカーがヒト絨毛ゴナントロ
    ビンである時は前記ラジオアイソトープはテクネチウム
    −99m以外のラジオアイソトープである前記マーカー
    特異性抗体と、 (b)薬剤学的に許容し得る注射剤担体とを含むことを
    特徴とするヒト腫瘍造影用注射組成物。
  2. (2)前記腫瘍マーカーは、アルファ胎児性タンパク、
    ヒト絨毛ゴナントロビンもしくはそのベーターサブユニ
    ット、または結腸特異抗原−pである第1項の組成物。
  3. (3)前記抗体はモノクロナール抗体である第1項また
    は第2項の組成物。
  4. (4)前記ラジオアイソトープはインジウム−111、
    ガリウム−67、ヨウ素−123、またはテクネチウム
    −99mである第1項または第2項の組成物。
  5. (5)前記抗体はモノクロナール抗体である第4項の組
    成物。
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