JPH0272198A - 抗ヒト肺腺癌モノクローナル抗体 - Google Patents
抗ヒト肺腺癌モノクローナル抗体Info
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明はヒト肺腺癌由来のVMR(、LCR株を免疫原
として作成された融合細胞が産生し、その認識する抗原
がシアル酸化された糖蛋白あるいは糖脂質であることを
特徴とするモノクローナル抗体並びにこれら抗体を用い
た肺腺癌及び膵癌等、他のヒト腺癌の直情学的な早期診
断並びに病理診断の利用に関するものである。
として作成された融合細胞が産生し、その認識する抗原
がシアル酸化された糖蛋白あるいは糖脂質であることを
特徴とするモノクローナル抗体並びにこれら抗体を用い
た肺腺癌及び膵癌等、他のヒト腺癌の直情学的な早期診
断並びに病理診断の利用に関するものである。
〔従来の技術)
肺癌は気管支から末梢までにできた悪性腫瘍で本邦にお
いて1986年の死亡数は3.0万人と胃癌に次いで癌
死の主な原因とされ〔財団法人がん研究財団発行、がん
の統計、 1987] 、さらには、統計」二減少傾向
の認められる胃癌に比べ、1990年の死亡数は3.5
〜4万人と増えるものと推定されている。 この疾
患は5つの主要組織型に分類され(WHO)、その特徴
はl)偏平上皮癌(30〜35z): 喫煙と最も関連
があり、治癒の可能性は高い。
いて1986年の死亡数は3.0万人と胃癌に次いで癌
死の主な原因とされ〔財団法人がん研究財団発行、がん
の統計、 1987] 、さらには、統計」二減少傾向
の認められる胃癌に比べ、1990年の死亡数は3.5
〜4万人と増えるものと推定されている。 この疾
患は5つの主要組織型に分類され(WHO)、その特徴
はl)偏平上皮癌(30〜35z): 喫煙と最も関連
があり、治癒の可能性は高い。
発生部位は3/4が肺門型、11)小細胞癌(10−1
5χ);増殖の進展が早く悪性度は極めて高く、多くは
太い気管支に発生、1ii)腺癌(40χ);肺癌中足
も多く、大部分は末梢(細気管支、肺胞上皮)に発4に
、iv)大細胞癌(5〜10χ);多くは細気管支より
宋+ffに発生、ν)その他(5χ);悪性度は低いに
分卸される〔臨床腫瘍学、朝倉書店、 1982)。
5χ);増殖の進展が早く悪性度は極めて高く、多くは
太い気管支に発生、1ii)腺癌(40χ);肺癌中足
も多く、大部分は末梢(細気管支、肺胞上皮)に発4に
、iv)大細胞癌(5〜10χ);多くは細気管支より
宋+ffに発生、ν)その他(5χ);悪性度は低いに
分卸される〔臨床腫瘍学、朝倉書店、 1982)。
肺癌は他の癌と同様に多くの場合、放射線療法および化
学療法によっては完治せず、M瘍の完全な外科的手術が
唯一の有効な療法と考えられている。
学療法によっては完治せず、M瘍の完全な外科的手術が
唯一の有効な療法と考えられている。
従って、−¥−術可能な早期に診断することが望まれて
いる。
いる。
癌の血ttff学的な診断の試みは、Goldらにより
ヒト大腸癌組織中に癌特異抗原として見出された癌胎児
性蛋白抗原;Carcinoe++bronic ar
+Ligen (CEA)(J、Exp、Med、、1
21,467(1965)、J、Exp、Med、+
122467(1965) )をThonson
らがRadioimnunoassay(1?IA)に
より測定した報告[Pro、Natl、Acad、Sc
i、。
ヒト大腸癌組織中に癌特異抗原として見出された癌胎児
性蛋白抗原;Carcinoe++bronic ar
+Ligen (CEA)(J、Exp、Med、、1
21,467(1965)、J、Exp、Med、+
122467(1965) )をThonson
らがRadioimnunoassay(1?IA)に
より測定した報告[Pro、Natl、Acad、Sc
i、。
64.161(19G9) ) 、その後AFP、EI
asLase 1.PAP。
asLase 1.PAP。
TPA 、 SCC等の癌の血清学的マーカーが報告な
されている。 さらには高い特異性、一定の品質の抗体
が無水に得られる等の利点より、モノクローナル抗体を
用いて、これらマーカーを測定することが報告されてい
る。
されている。 さらには高い特異性、一定の品質の抗体
が無水に得られる等の利点より、モノクローナル抗体を
用いて、これらマーカーを測定することが報告されてい
る。
モノクローナル抗体はXohlerら(Na Lure
+ 256+495(1975) )により考案された
融合細胞技術、即ら抗体産生細胞と骨髄腫細胞とを融合
した融合細胞は、抗体を産生ずる能力と細胞培養液中で
永久的に培養できる能力を「1しているため抗体産生細
胞が予め暴露、規定された抗原に対して特異的なモノク
ローンな免疫グロブリンを型造できる。
+ 256+495(1975) )により考案された
融合細胞技術、即ら抗体産生細胞と骨髄腫細胞とを融合
した融合細胞は、抗体を産生ずる能力と細胞培養液中で
永久的に培養できる能力を「1しているため抗体産生細
胞が予め暴露、規定された抗原に対して特異的なモノク
ローンな免疫グロブリンを型造できる。
融合細胞技術を用いてヒ)Nti癌に対するモノクロー
ナル抗体を得ることはすでに報告されている(Canc
er Res、、42,150(1982)、Canc
er Res、、42゜3187 (1982)等〕。
ナル抗体を得ることはすでに報告されている(Canc
er Res、、42,150(1982)、Canc
er Res、、42゜3187 (1982)等〕。
しかしながら、これらの報告は、ヒト正常細胞とも反応
するものが多(、血清学的診断に足る抗体は得られてい
ない。
するものが多(、血清学的診断に足る抗体は得られてい
ない。
〔発明が解決しようとする問題点および解決方法〕肺癌
のモノクローナル抗体は知られていたが、さらに優れた
抗体の開発が梁まれていた。本発明はヒト肺腺癌由来の
V M RC−L CR株を免疫原として作成した融合
細胞が産生ずるモノクローナル抗体が、シアル酸化され
た糖蛋白あるいは糖脂質を抗原として認コすることによ
り肺腺癌に対して優れた反応性を有し、従来のマーカー
のうち肺腺癌での陽性率が高いとされていたCEAにお
いても早期の癌(ステージ1期、■期)〔松原ら。
のモノクローナル抗体は知られていたが、さらに優れた
抗体の開発が梁まれていた。本発明はヒト肺腺癌由来の
V M RC−L CR株を免疫原として作成した融合
細胞が産生ずるモノクローナル抗体が、シアル酸化され
た糖蛋白あるいは糖脂質を抗原として認コすることによ
り肺腺癌に対して優れた反応性を有し、従来のマーカー
のうち肺腺癌での陽性率が高いとされていたCEAにお
いても早期の癌(ステージ1期、■期)〔松原ら。
内科、 60,703C1987) ]では、25%以
下であったが、本モノクローナル抗体を用いた測定にお
いては55%以上の陽性率であり、さらには膵癌をはじ
めとしたヒト腺癌の血清学的診断に有用なモノクローナ
ル抗体を製造し本発明を完成した。
下であったが、本モノクローナル抗体を用いた測定にお
いては55%以上の陽性率であり、さらには膵癌をはじ
めとしたヒト腺癌の血清学的診断に有用なモノクローナ
ル抗体を製造し本発明を完成した。
以下、本発明について詳細に説明する。
本発明は、免疫原としてヒト肺腺癌由来のVMRC−L
CR株〔(受託番号)微工研菌寄 第9849号〕を用
いたものであるが、VMRCLCR細胞は、本発明者の
秋山等により米国ンアトルのVerginia Mas
on Re5earch Centerにおいて63歳
の女性(M、R,R,)に発生した肺腺癌の手術材料か
ら培養株として樹立されたもので、当該肺腺癌組織は超
微形態的には、Bronchiolo−Alveola
rcell carcinoma と診断されている。
CR株〔(受託番号)微工研菌寄 第9849号〕を用
いたものであるが、VMRCLCR細胞は、本発明者の
秋山等により米国ンアトルのVerginia Mas
on Re5earch Centerにおいて63歳
の女性(M、R,R,)に発生した肺腺癌の手術材料か
ら培養株として樹立されたもので、当該肺腺癌組織は超
微形態的には、Bronchiolo−Alveola
rcell carcinoma と診断されている。
先頭では、大部分の腺癌細胞は低分化型腺癌であるが、
一部に大細胞化し局所的にムチン産生部を認めている。
一部に大細胞化し局所的にムチン産生部を認めている。
当該細胞株の樹立の方法は、細切した肺腺癌組織を10
%Fetal Ca1f Serumを含むPR旧−1
640倍地で初代培養し、同様の借地で継代培養して樹
立した。 In Vitroでの培養下では、主に2!
iの形態の異なる細胞から形成され、一つは立方型の細
胞であり、他は紡錘型である。doubling Li
a+eは極めて遅く、約7日間と推定される。又ヌード
マウスへは再移植性であり、to6,5X10b、 1
0’個をその皮下に移植した実験において、すべてのマ
ウスに皮下腫瘤を形成した。摘出した腫瘤の先頭像では
充実性の腫瘍の形成がみとめられた。
%Fetal Ca1f Serumを含むPR旧−1
640倍地で初代培養し、同様の借地で継代培養して樹
立した。 In Vitroでの培養下では、主に2!
iの形態の異なる細胞から形成され、一つは立方型の細
胞であり、他は紡錘型である。doubling Li
a+eは極めて遅く、約7日間と推定される。又ヌード
マウスへは再移植性であり、to6,5X10b、 1
0’個をその皮下に移植した実験において、すべてのマ
ウスに皮下腫瘤を形成した。摘出した腫瘤の先頭像では
充実性の腫瘍の形成がみとめられた。
当該V M RC−1= CR株で免疫した呻R動物の
稗臓細胞と骨髄腫細胞とを融合させ、得られた融合細胞
よりヒト肺腺癌に特異性を有するモノクローナル抗体を
産生ずる!I胞株をクローニングすることにより得られ
たものである。本発明のモノクローナル抗体は、IgM
またはIP、Gl型抗体で、ンアル酸化された糖蛋白ま
たは糖脂質を抗原として認識する。
稗臓細胞と骨髄腫細胞とを融合させ、得られた融合細胞
よりヒト肺腺癌に特異性を有するモノクローナル抗体を
産生ずる!I胞株をクローニングすることにより得られ
たものである。本発明のモノクローナル抗体は、IgM
またはIP、Gl型抗体で、ンアル酸化された糖蛋白ま
たは糖脂質を抗原として認識する。
本発明は以上のような特性を有するモノクローナル抗体
を用いてヒト肺腺癌及び膵癌などのヒト腺癌のI11清
学的診断並びに病理診断法を提供するものであり、次に
示す種々の方法により達成できる。
を用いてヒト肺腺癌及び膵癌などのヒト腺癌のI11清
学的診断並びに病理診断法を提供するものであり、次に
示す種々の方法により達成できる。
(1)ヒト肺腺癌に対するモノクローナル抗体を製造す
る方法 ヒト肺腺癌に対するモノクローナル抗体1:L、i融合
細胞融合技術により、3Il製できる。
る方法 ヒト肺腺癌に対するモノクローナル抗体1:L、i融合
細胞融合技術により、3Il製できる。
豚、牛、兎、サル、ラット、マウス等、人以外の哺乳動
物、好ましくは抗体産生細胞の相手になる骨髄8=胞が
マウス由来のため特にマウスがよく、3〜10週令、退
会しくは8退会のマウスに、ヒト肺腺癌由来のV M
RC−1−CR株をそのままあるいはホモジナイズして
、皮下あるいは静脈内あるいは腹腔内に適当なアジュバ
ントとともにI XIO’〜I X107個を注射し、
必要に応じて追加免疫する。最終免疫後3〜7日にこれ
らマウスより抗体を産生ずるリンパ球を含むIP!Jf
flを摘出する。摘出する組織はリンパ節等末梢リンパ
系組織ならばどこでもよい。
物、好ましくは抗体産生細胞の相手になる骨髄8=胞が
マウス由来のため特にマウスがよく、3〜10週令、退
会しくは8退会のマウスに、ヒト肺腺癌由来のV M
RC−1−CR株をそのままあるいはホモジナイズして
、皮下あるいは静脈内あるいは腹腔内に適当なアジュバ
ントとともにI XIO’〜I X107個を注射し、
必要に応じて追加免疫する。最終免疫後3〜7日にこれ
らマウスより抗体を産生ずるリンパ球を含むIP!Jf
flを摘出する。摘出する組織はリンパ節等末梢リンパ
系組織ならばどこでもよい。
得られた組織からリンパ球を単細胞として分離する方法
としては、例えば免疫実験操作法B〔1974年日本免
疫学会発行1253ページ〕に記載されている方法によ
る。次にリンパ球が半永久的に継代できる増殖清を持た
せる方法としてl)ポリエチレングリコール、センダイ
ウィルス等の存在下で骨髄腫細胞等の癌細胞と融合させ
る方法1i)EBV等のウィルスにリンパ球を感染させ
トランスホームする方法がある。 実際の細胞融合の手
法としては、上記抗体産生リンパ球細胞とマウス骨髄腫
細胞とを、ポリエチレングリコールの存在下でHΔT培
地(ヒボキサンヂン、アミノプテリン、チミノン添加培
地)で37℃で10〜14日間培養する。コロニー状に
成した融合細胞は、その培養液中の抗体を、蛍光法ある
いは酵素法により二次抗体で染色し抗体価を測定してス
クリーニングする。スクリーニングにより活性を認めた
融合細胞株株は、限界希釈法により複数回のクローニン
グを行いクローンを確立する。クローンの作るモノクロ
ーナル抗体は一般に抗体価が高(、細胞培養液の上ll
1tをそのまま或いは分離精製して使用できるが、ブリ
ステン処理(2,6,10,14−テトラメチレルベン
タデカンを投与し、2週間程度飼育)したマウスの腹腔
にクローンを注入して生ずる腹水。
としては、例えば免疫実験操作法B〔1974年日本免
疫学会発行1253ページ〕に記載されている方法によ
る。次にリンパ球が半永久的に継代できる増殖清を持た
せる方法としてl)ポリエチレングリコール、センダイ
ウィルス等の存在下で骨髄腫細胞等の癌細胞と融合させ
る方法1i)EBV等のウィルスにリンパ球を感染させ
トランスホームする方法がある。 実際の細胞融合の手
法としては、上記抗体産生リンパ球細胞とマウス骨髄腫
細胞とを、ポリエチレングリコールの存在下でHΔT培
地(ヒボキサンヂン、アミノプテリン、チミノン添加培
地)で37℃で10〜14日間培養する。コロニー状に
成した融合細胞は、その培養液中の抗体を、蛍光法ある
いは酵素法により二次抗体で染色し抗体価を測定してス
クリーニングする。スクリーニングにより活性を認めた
融合細胞株株は、限界希釈法により複数回のクローニン
グを行いクローンを確立する。クローンの作るモノクロ
ーナル抗体は一般に抗体価が高(、細胞培養液の上ll
1tをそのまま或いは分離精製して使用できるが、ブリ
ステン処理(2,6,10,14−テトラメチレルベン
タデカンを投与し、2週間程度飼育)したマウスの腹腔
にクローンを注入して生ずる腹水。
または面清中に存在する抗体を使用する。これら抗体は
さらに塩析、イオン交換ゲル濾過、アフィニティカラム
クロマト等で精製して使用することもてきる。
さらに塩析、イオン交換ゲル濾過、アフィニティカラム
クロマト等で精製して使用することもてきる。
(2)モノクローナル抗体が認識する抗原の解析方法
本モノクローナル抗体を用いて、血il?学的診断並び
に病理学的診断を実施する場合において本モノクローナ
ル抗体が抗原(肺腺癌組織、肺腺癌培養細胞)の認識部
位を決定する方法として、抗原をノイラミニダーゼ、ト
リブノン、過ヨウ素酸等の試薬で処理した後、モノクロ
ーナル抗体と反応させ、これらの処理をしない場合にお
ける抗原の反応性と比較する。
に病理学的診断を実施する場合において本モノクローナ
ル抗体が抗原(肺腺癌組織、肺腺癌培養細胞)の認識部
位を決定する方法として、抗原をノイラミニダーゼ、ト
リブノン、過ヨウ素酸等の試薬で処理した後、モノクロ
ーナル抗体と反応させ、これらの処理をしない場合にお
ける抗原の反応性と比較する。
ノイラミニダーゼ処理により抗原性が消失すればシアル
酸が、トリプシン処理により抗原性が消失すれば蛋白が
、過ヨウ素酸処理により抗原性が消失すれば糖鎖を認識
する抗体と決定できる。
酸が、トリプシン処理により抗原性が消失すれば蛋白が
、過ヨウ素酸処理により抗原性が消失すれば糖鎖を認識
する抗体と決定できる。
(3) IflL清学的清新的診
断方法イフチ方式により達成できる。すなわち固相化し
たモノクローナル第一抗体に抗原を含む検体を抗原抗体
反応により結合させ、次いで固相上のモノクローナル第
一抗体に結合した抗原に標識剤で標識したモノクローナ
ル第二抗体を作用させることにより〔固相化モノクロー
ナル第一抗体〕−〔抗原〕−〔標識化モノクローナル第
二抗体〕複合物を形成させ、固相−]二あるいは液1,
4の標識化モノクローナル抗体の標識剤の活性を測定し
、予め濃度既知の抗原において同様にして得られた標準
曲線より検体中の抗原t1を求める。検体としての生体
試料は、血清血漿、尿、腹水、胸水等の体液があげられ
る。
たモノクローナル第一抗体に抗原を含む検体を抗原抗体
反応により結合させ、次いで固相上のモノクローナル第
一抗体に結合した抗原に標識剤で標識したモノクローナ
ル第二抗体を作用させることにより〔固相化モノクロー
ナル第一抗体〕−〔抗原〕−〔標識化モノクローナル第
二抗体〕複合物を形成させ、固相−]二あるいは液1,
4の標識化モノクローナル抗体の標識剤の活性を測定し
、予め濃度既知の抗原において同様にして得られた標準
曲線より検体中の抗原t1を求める。検体としての生体
試料は、血清血漿、尿、腹水、胸水等の体液があげられ
る。
標識剤としては放射性同位元素、酵素あるいは蛍光物質
等を用いることができる。
等を用いることができる。
(4)病理学的診断方法
病理組織を標本とし、モノクローナル抗体を反応させ免
疫学的にモノクローナル抗体が結合する抗原を検出する
方法として1)間接法11)直接法がある。11;1者
は、病理標本にモノクロナル抗体を反応させ、次いで標
識化した二次抗体を反応させ、後者は標コ化したモノク
ロ−する抗体を直接病理標本に反応させた後、両者とと
も標識剤の活性を測定する。直接法の利点としてはモノ
クローナル抗体に直接標識剤を標識し病理標本と反応さ
せるため、間接法に比ベステノブが少ない。ところがバ
ックグランドを高めることとなり欠点となる。 標識剤
としては酵素あるいは蛍光物質等をもちいることができ
る。
疫学的にモノクローナル抗体が結合する抗原を検出する
方法として1)間接法11)直接法がある。11;1者
は、病理標本にモノクロナル抗体を反応させ、次いで標
識化した二次抗体を反応させ、後者は標コ化したモノク
ロ−する抗体を直接病理標本に反応させた後、両者とと
も標識剤の活性を測定する。直接法の利点としてはモノ
クローナル抗体に直接標識剤を標識し病理標本と反応さ
せるため、間接法に比ベステノブが少ない。ところがバ
ックグランドを高めることとなり欠点となる。 標識剤
としては酵素あるいは蛍光物質等をもちいることができ
る。
以下に実施例を示し本発明を更に詳細に説明する。
実施例 l。
モノクローナル抗体の作成
ヒト肺腺癌組織由来の細胞株であるVMRCL CR株
を5 x l O”個をR1)旧−1640(GIBC
O社5!i)培養液で洗浄後、0.2 mlの固液に浮
遊させ、退会8週のB A L B / cマウス皮下
に投与、更に2週間隔で腹腔内に2回の免疫を行った。
を5 x l O”個をR1)旧−1640(GIBC
O社5!i)培養液で洗浄後、0.2 mlの固液に浮
遊させ、退会8週のB A L B / cマウス皮下
に投与、更に2週間隔で腹腔内に2回の免疫を行った。
3回目の免疫終了後、3日目にこのマウスより無菌的に
F!臓を摘出し、摘出した8!!I臓は裁断しさらにメ
ソシュを通してリンパ球の縣濁液を得た。融合細胞とし
てのマウスミエローマ細胞(R3−NSI−へg471
株)は、勘合の2日前よりlO%生胎児血清(Fe2)
を含むRPMI −1640培養液中5%CO,,37
℃の条件で増殖させた。上記脾臓細胞8.4 X107
個とマウスミローマ細胞4.2 x107Bを含む培養
液を混合し、15,000rpmで30分遠心後、上清
を捨て、42%ポリエチレングリコール6.000
(Kodak社31)1mlを17F2iづつ滴下しな
がらゆっくりと細胞をはぐしだ。 1分後、FC5含
有RP旧−1640培養液を1mlゆっくりと滴下しな
がら細胞を混合させ、同様の操作を1分間繰り返した。
F!臓を摘出し、摘出した8!!I臓は裁断しさらにメ
ソシュを通してリンパ球の縣濁液を得た。融合細胞とし
てのマウスミエローマ細胞(R3−NSI−へg471
株)は、勘合の2日前よりlO%生胎児血清(Fe2)
を含むRPMI −1640培養液中5%CO,,37
℃の条件で増殖させた。上記脾臓細胞8.4 X107
個とマウスミローマ細胞4.2 x107Bを含む培養
液を混合し、15,000rpmで30分遠心後、上清
を捨て、42%ポリエチレングリコール6.000
(Kodak社31)1mlを17F2iづつ滴下しな
がらゆっくりと細胞をはぐしだ。 1分後、FC5含
有RP旧−1640培養液を1mlゆっくりと滴下しな
がら細胞を混合させ、同様の操作を1分間繰り返した。
さらにFe2を含む1?PMI −1640培養液b+
1を3分間かけてゆっくりと遠心管を回転させながら加
えた。この時点で培養液をさらに加え12.6X10’
個の細胞が12.6mlの培養液に含まようにJ整しこ
の細胞縣濁液0.11づつを96穴マイクロプレートに
分注し、10%CO2下で37℃で培養した。培養開始
2日後、3日後5日後、7日後、 11日後に培養上清
0.l哨1を廃棄し、ヒボキサンチン、アミノプテリン
チミジンおよびFe2を含むRPMI−1640培養
液0.1mlを加えた。増殖限界に達した融合細胞は、
予めl穴あたり5X10′″個のマウス胸腺細胞を播種
しておいた24穴培養プレートに移し、更に培養した。
1を3分間かけてゆっくりと遠心管を回転させながら加
えた。この時点で培養液をさらに加え12.6X10’
個の細胞が12.6mlの培養液に含まようにJ整しこ
の細胞縣濁液0.11づつを96穴マイクロプレートに
分注し、10%CO2下で37℃で培養した。培養開始
2日後、3日後5日後、7日後、 11日後に培養上清
0.l哨1を廃棄し、ヒボキサンチン、アミノプテリン
チミジンおよびFe2を含むRPMI−1640培養
液0.1mlを加えた。増殖限界に達した融合細胞は、
予めl穴あたり5X10′″個のマウス胸腺細胞を播種
しておいた24穴培養プレートに移し、更に培養した。
増殖限界になったところでVMRC−LCI7細胞に対
する培養土清中の抗体活性を間接蛍光抗体法で検討した
。 コロニを通常の培MAに移し替え、それぞれ5ml
の培養液でI XlO7個/mlになるまで培養した。
する培養土清中の抗体活性を間接蛍光抗体法で検討した
。 コロニを通常の培MAに移し替え、それぞれ5ml
の培養液でI XlO7個/mlになるまで培養した。
モノクローナル抗体産生クローン3種類の細胞を0.2
11のブリステンによって処理したBALB/cマウス
腹腔内に注射し、2週間後に腹水を採取した。
11のブリステンによって処理したBALB/cマウス
腹腔内に注射し、2週間後に腹水を採取した。
実施例 2゜
モノクローナル抗体の精製
実施例1で得た腹水を15,000 rpmで30分間
遠心分離し上laを得た。上清に生理食塩水を加えて2
倍量とし、この希釈腹水に飽和硫安を徐々に加えて硫安
40%飽和とし、室温で30分静かに攪拌後5.000
rpmで30分間遠心分離して沈渣を得た。
遠心分離し上laを得た。上清に生理食塩水を加えて2
倍量とし、この希釈腹水に飽和硫安を徐々に加えて硫安
40%飽和とし、室温で30分静かに攪拌後5.000
rpmで30分間遠心分離して沈渣を得た。
この沈渣をさらに3回40%飽和硫安溶液で洗浄しT−
グロブリン分画を得た。このT−グロブリン分画ヲDE
AE−セルロースカラムクロマトグラフィ法にて精製抗
体を回収した。なお、これら抗体のアイザイムの特徴づ
けは寒天ゲル沈降反応によったところ、第−表に示すよ
うな結果であった。
グロブリン分画を得た。このT−グロブリン分画ヲDE
AE−セルロースカラムクロマトグラフィ法にて精製抗
体を回収した。なお、これら抗体のアイザイムの特徴づ
けは寒天ゲル沈降反応によったところ、第−表に示すよ
うな結果であった。
第−表
須二表
実施例 3゜
モノクローナル抗体の特異性
実施例2で得られた抗体を各種癌細胞法の反応性より特
異性を調べた。第二表にモノクローナル抗体LISAI
OIの反応特異性を示した。
異性を調べた。第二表にモノクローナル抗体LISAI
OIの反応特異性を示した。
実施例 4゜
モノクローナル抗体が認識する抗原の解析実施例2で得
たモノクローナル抗体が認識する抗原を解析するために
、V M RC−L CR株の成分をノイラミニダーゼ
、トリプシンおよび過ヨウ素酸で処理した後、抗体の反
応性を調べた。
たモノクローナル抗体が認識する抗原を解析するために
、V M RC−L CR株の成分をノイラミニダーゼ
、トリプシンおよび過ヨウ素酸で処理した後、抗体の反
応性を調べた。
酵素及び試薬
ノイラミニダーゼ(Sigma社製)
PBS (Phosphate Buffered 5
aline)中0.001 0.01.0.1μ/ml
含有トリプンン(Sigma社製) リン酸緩衝液中0.25%含有 過ヨウ素酸(和光純薬社製) PBS中1.10.1100II含有 VMRC−LCR株の成分を50μl/穴ツツ、マイク
ロプレートに入れ0.5%グルタルアルデヒド100μ
lを添加し室温で7分間静置する。PBSで3回洗浄後
0.3%過酸化水素メタノール溶液100 μmを加え
30分間室温で静置する。 PBSで3回洗浄後、上記
試薬を50μm/穴づつ分注し、37℃で1時間反応さ
せた。反応l&TBS (Tween 20BSA、P
BS )で3回洗浄後、モノクローナル抗体50μI/
穴分注し室温で1時間反応させた。TBSで3回洗浄後
、パーオキシダーゼ標識抗−マウスIgGを50β1/
穴加え室温で1時間反応させた。
aline)中0.001 0.01.0.1μ/ml
含有トリプンン(Sigma社製) リン酸緩衝液中0.25%含有 過ヨウ素酸(和光純薬社製) PBS中1.10.1100II含有 VMRC−LCR株の成分を50μl/穴ツツ、マイク
ロプレートに入れ0.5%グルタルアルデヒド100μ
lを添加し室温で7分間静置する。PBSで3回洗浄後
0.3%過酸化水素メタノール溶液100 μmを加え
30分間室温で静置する。 PBSで3回洗浄後、上記
試薬を50μm/穴づつ分注し、37℃で1時間反応さ
せた。反応l&TBS (Tween 20BSA、P
BS )で3回洗浄後、モノクローナル抗体50μI/
穴分注し室温で1時間反応させた。TBSで3回洗浄後
、パーオキシダーゼ標識抗−マウスIgGを50β1/
穴加え室温で1時間反応させた。
TBSで3回洗浄後オルトフェニレンジアミン)!5質
10oz11を加え30分間反応後、1規定硫酸100
μmを加え反応を停止Fシ、492 nmにおける吸光
度を測定した。結果は第三表に示した。
10oz11を加え30分間反応後、1規定硫酸100
μmを加え反応を停止Fシ、492 nmにおける吸光
度を測定した。結果は第三表に示した。
計算:
君昌未
処理抗原を抗体と反応
させた時の吸光度
処理抗原を陰性コントロール
と反応させた時の吸光度
%−
未処理抗原を抗体と反応
させた時の吸光度
未処理抗原を陰性コントロール
と反応させた時の吸光度
VMI?C1,cl?1lrJの/1.$I胞を間接蛍
光抗体法で染色した。トリブンン処理+1ill&の陽
性率をセルソーターで解析した。
光抗体法で染色した。トリブンン処理+1ill&の陽
性率をセルソーターで解析した。
討S1
トリプノン処理後の陽性細胞率
%−
×100
未処理の陽性細胞率
実施例 5゜
モノクローナル抗体への1251標識
2mCiのNa 12J 40μL0.5Mリン酸緩衝
液50μ+。
液50μ+。
実施例2で作成したモノクローナル抗体LISA101
を50μl 及びクロラミンT (1mg/m1)25
tt 1を混合し20秒間よく振って反応させた後、
10秒間静置した。これにメタル亜硫酸ナトリウム(1
mg/m+)100μmを加えて反応を停止した。さら
にヨウ化カリウム(50mg/n l )25 μm、
5%BS八を含有するI’BS 100μm、ブルーデ
キストラン(501g/m1)25μmを加えてpo−
toによるゲル濾過で遊離の1251 を除去し、″′
l標識LISAIOI抗体を得た。
を50μl 及びクロラミンT (1mg/m1)25
tt 1を混合し20秒間よく振って反応させた後、
10秒間静置した。これにメタル亜硫酸ナトリウム(1
mg/m+)100μmを加えて反応を停止した。さら
にヨウ化カリウム(50mg/n l )25 μm、
5%BS八を含有するI’BS 100μm、ブルーデ
キストラン(501g/m1)25μmを加えてpo−
toによるゲル濾過で遊離の1251 を除去し、″′
l標識LISAIOI抗体を得た。
実施例 6゜
モノクローナル抗体への蛍光標識
実施例2で得られたモノクローナル抗体LISA101
を0.05M炭酸ナトリウム緩衝液に溶解させたものと
、2町のFITC(Sigma社髪)を0.05M炭酸
ナトリウム緩衝液に溶解させたものを混合し、4℃で2
4時間反応させた。反応生成物を0.01MIJン酸緩
衝液で平衡化したセファデックスG−25にかけ0.0
1Mリン酸緩衝液で溶出した。DEAEセルロースカラ
ムに溶出分画をかけ0.01MIJン酸緩衝液で未反応
ののIP、Gだけを溶出させた。0.05M塩化ナトリ
ウムを含む0.01Mリン酸緩衝液でFITea識1g
Gを溶出させて蛍光標識LISAIOI抗体を得た。
を0.05M炭酸ナトリウム緩衝液に溶解させたものと
、2町のFITC(Sigma社髪)を0.05M炭酸
ナトリウム緩衝液に溶解させたものを混合し、4℃で2
4時間反応させた。反応生成物を0.01MIJン酸緩
衝液で平衡化したセファデックスG−25にかけ0.0
1Mリン酸緩衝液で溶出した。DEAEセルロースカラ
ムに溶出分画をかけ0.01MIJン酸緩衝液で未反応
ののIP、Gだけを溶出させた。0.05M塩化ナトリ
ウムを含む0.01Mリン酸緩衝液でFITea識1g
Gを溶出させて蛍光標識LISAIOI抗体を得た。
実施例 7゜
モノクローナル抗体への酵素標識
実施例2で作成したモノクローナル抗体L I S△!
01,50μmを111のPBSに溶解し、ついで20
0 μl の1mMのN−サクンニジル3−(2−ピリ
ジルチオ)プロピオネ−) (SPDP) (和光純薬
社製)のエタノール溶液を攪拌しながら添加し、室温で
30分間反応を行った。反応後セファデックスG−25
カラムクロマトグラフィーを用いて未反応の5PDP及
び抗体とS P D )1結合抗体分画を分離した。こ
の5PDP結合抗体分画をジチオスレイトール(DTT
)処理した。他方、西洋ワサビバーオキンダーゼ(II
RPO)(S i P、n+a社製) 0.5 nag
を1mlのPBSに溶解し、ついで 250μmのIm
M SP叶エタノール溶液を攪拌しながら添加し、室温
で30分間反応後、セファデックスG−25カラムクロ
マトグラフイーを用いて未反応の5PDP及びIIRP
Oと5PDP結合1−IRPO分画を分離した。
01,50μmを111のPBSに溶解し、ついで20
0 μl の1mMのN−サクンニジル3−(2−ピリ
ジルチオ)プロピオネ−) (SPDP) (和光純薬
社製)のエタノール溶液を攪拌しながら添加し、室温で
30分間反応を行った。反応後セファデックスG−25
カラムクロマトグラフィーを用いて未反応の5PDP及
び抗体とS P D )1結合抗体分画を分離した。こ
の5PDP結合抗体分画をジチオスレイトール(DTT
)処理した。他方、西洋ワサビバーオキンダーゼ(II
RPO)(S i P、n+a社製) 0.5 nag
を1mlのPBSに溶解し、ついで 250μmのIm
M SP叶エタノール溶液を攪拌しながら添加し、室温
で30分間反応後、セファデックスG−25カラムクロ
マトグラフイーを用いて未反応の5PDP及びIIRP
Oと5PDP結合1−IRPO分画を分離した。
この5pop結合HRPO分画とDTT処理した5po
p結合抗体分画とを混合した後室温で16時間反応させ
、酵素標識LISAIOI抗体を得た。
p結合抗体分画とを混合した後室温で16時間反応させ
、酵素標識LISAIOI抗体を得た。
実施例 8゜
モノクローナル抗体固相化プレートの作成96穴のプレ
ート(Flow社5!りの各式に、実施例2で作成した
モノクローナル抗体LISAIO1の100+*M炭酸
水素ナトリウム−50mM炭酸ナトリウム水溶液を50
μlずつ各式に分注し、室温で1時間静置後1%BII
Sで洗浄し、L I S A 101抗体固相化プレー
トを得た。
ート(Flow社5!りの各式に、実施例2で作成した
モノクローナル抗体LISAIO1の100+*M炭酸
水素ナトリウム−50mM炭酸ナトリウム水溶液を50
μlずつ各式に分注し、室温で1時間静置後1%BII
Sで洗浄し、L I S A 101抗体固相化プレー
トを得た。
実施例 9゜
モノクローナル抗体を用いた癌の血清学的診断(サンド
イッチ方式による酵素免疫測定法)実施例8で得たL
I S A I O1抗体固相化プレートの各式に検体
面精50μmを加え、室温で16時間反応後、PBSで
洗浄する。 第二抗体として、実施例7と同様の方法で
作成したペルオキシダーゼ標識L I S A 202
抗体を100μI各穴に加え室温で16時間反応した後
、PBSでよく洗浄した。
イッチ方式による酵素免疫測定法)実施例8で得たL
I S A I O1抗体固相化プレートの各式に検体
面精50μmを加え、室温で16時間反応後、PBSで
洗浄する。 第二抗体として、実施例7と同様の方法で
作成したペルオキシダーゼ標識L I S A 202
抗体を100μI各穴に加え室温で16時間反応した後
、PBSでよく洗浄した。
次に酵素基質反応の基質として、オルト−フェニレンジ
アミン(Signa社り (3ng/ml)を100μ
l各穴に加え、室温で30分間反応させ、IN硫酸10
0μmを各式に加え反応を停止した。各式の溶液の49
2 nmにおける吸光度を測定した(0049□)。そ
の結果は図に示す様に、健常者1fllt#では、その
最1?1i測定値は0.295であったので、0.30
を正常の上限とした(129例)。正常値を0.30と
した、各種の癌患者での陽性率は、肺癌患者では46%
(112例1151例)、胃癌患者では18%(17例
中3例)、大腸癌患者では13%(15例中2例)、肝
癌患者では18%(39例中7例)、膵癌患者では79
%(33例中26例)、という結果であった。この結果
は肺癌及び膵癌で46%及び79%と高い確立で診断が
可能であることがわかる。肺の良性疾患および消化器の
良性疾患での陽性率は、それぞれ12%(51例中6例
)および2%(54例中1例)という結果であった。
アミン(Signa社り (3ng/ml)を100μ
l各穴に加え、室温で30分間反応させ、IN硫酸10
0μmを各式に加え反応を停止した。各式の溶液の49
2 nmにおける吸光度を測定した(0049□)。そ
の結果は図に示す様に、健常者1fllt#では、その
最1?1i測定値は0.295であったので、0.30
を正常の上限とした(129例)。正常値を0.30と
した、各種の癌患者での陽性率は、肺癌患者では46%
(112例1151例)、胃癌患者では18%(17例
中3例)、大腸癌患者では13%(15例中2例)、肝
癌患者では18%(39例中7例)、膵癌患者では79
%(33例中26例)、という結果であった。この結果
は肺癌及び膵癌で46%及び79%と高い確立で診断が
可能であることがわかる。肺の良性疾患および消化器の
良性疾患での陽性率は、それぞれ12%(51例中6例
)および2%(54例中1例)という結果であった。
また肺癌患者の組織別での陽性率は、腺癌患者では60
%(50例中30例)、扁平上皮癌患者では29%(3
8例中11例)、小細胞癌患者では42%(24例中1
0例)という結果であり、組織別でみると特に腺癌の陽
性率が高いことがみとめられた。さらに腺癌をステージ
別に分類すると、ステージIと■では56%(18例中
IO例)、IIIでは50%(16例中8例)、■では
75%(16例中12例)、という結果であった。
%(50例中30例)、扁平上皮癌患者では29%(3
8例中11例)、小細胞癌患者では42%(24例中1
0例)という結果であり、組織別でみると特に腺癌の陽
性率が高いことがみとめられた。さらに腺癌をステージ
別に分類すると、ステージIと■では56%(18例中
IO例)、IIIでは50%(16例中8例)、■では
75%(16例中12例)、という結果であった。
この結果は現在の早期の肺腺癌(ステージI。
■)でのCEAの陽性率が25%以下ということを勘案
すれば、56%の陽性率は早期の肺腺癌の発見に特に有
用であることが示唆された。
すれば、56%の陽性率は早期の肺腺癌の発見に特に有
用であることが示唆された。
図は、本モノクローナル抗体を用いたエンザイムイムノ
アノセイによる種々の癌患者の血清学的診断の結果を示
す。
アノセイによる種々の癌患者の血清学的診断の結果を示
す。
Claims (5)
- (1)ヒト肺腺癌由来のVMRC−LCR株を哺乳動物
に免疫し、当該動物から得られる抗体産生細胞と骨髄腫
細胞とを融合させた融合細胞が産生し、その認識する抗
原がシアル酸化された糖蛋白あるいは糖脂質であり、か
つヒト肺腺癌細胞と反応し、ヒト正常肺細胞とは反応し
ないことを特徴とする抗ヒト肺癌モノクローナル抗体。 - (2)クラスIgG_1に属する特許請求の範囲第(1
)項記載の抗ヒト肺癌モノクローナル抗体。 - (3)クラスIgMに属する特許請求の範囲第(1)項
記載の抗ヒト肺癌モノクローナル抗体。 - (4)免疫する動物がマウスで、抗体産生細胞がマウス
脾臓由来のB細胞である特許請求の範囲第(1)項記載
の抗ヒト肺癌モノクローナル抗体。 - (5)ヒト肺腺癌由来のVMRC−LCR株を哺乳動物
に免疫し、当該動物から得られる抗体産生細胞と骨髄腫
細胞とを融合させた融合細胞が産生し、その認識する抗
原がシアル酸化された糖蛋白あるいは糖脂質であり、か
つヒト肺腺癌細胞と反応し、ヒト正常肺細胞とは反応し
ない抗ヒト肺癌モノクローナル抗体を用いた免疫学的測
定法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63022934A JPH0272198A (ja) | 1988-02-04 | 1988-02-04 | 抗ヒト肺腺癌モノクローナル抗体 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63022934A JPH0272198A (ja) | 1988-02-04 | 1988-02-04 | 抗ヒト肺腺癌モノクローナル抗体 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0272198A true JPH0272198A (ja) | 1990-03-12 |
Family
ID=12096459
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP63022934A Pending JPH0272198A (ja) | 1988-02-04 | 1988-02-04 | 抗ヒト肺腺癌モノクローナル抗体 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0272198A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH049665A (ja) * | 1990-04-27 | 1992-01-14 | Teijin Ltd | 肺疾患マーカー蛋白の測定法 |
WO1996028569A1 (fr) * | 1995-03-13 | 1996-09-19 | Terumo Kabushiki Kaisha | Anticoprs monoclonal et antigene relatifs a l'adenocarcimome pulmonaire humain et methode du dosage immunologique au moyen de cet anticorps et de cet antigene |
-
1988
- 1988-02-04 JP JP63022934A patent/JPH0272198A/ja active Pending
Non-Patent Citations (3)
Title |
---|
CANCER RES=1984 * |
CANCER RES=1986 * |
CANCER RES=1987 * |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH049665A (ja) * | 1990-04-27 | 1992-01-14 | Teijin Ltd | 肺疾患マーカー蛋白の測定法 |
WO1996028569A1 (fr) * | 1995-03-13 | 1996-09-19 | Terumo Kabushiki Kaisha | Anticoprs monoclonal et antigene relatifs a l'adenocarcimome pulmonaire humain et methode du dosage immunologique au moyen de cet anticorps et de cet antigene |
US6015680A (en) * | 1995-03-13 | 2000-01-18 | Terumo Kabushiki Kaisha | Human lung adenocarcinoma-related monoclonal antibody and immunoassay method which uses the same |
US6919435B1 (en) | 1995-03-13 | 2005-07-19 | Fujirebio Inc. | Human lung adenocarcinoma-related monoclonal antibody and antigen and immunoassay method which uses the same |
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