JPH02286700A - 免疫グロブリンのフラグメントの精製法 - Google Patents
免疫グロブリンのフラグメントの精製法Info
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- JPH02286700A JPH02286700A JP10737389A JP10737389A JPH02286700A JP H02286700 A JPH02286700 A JP H02286700A JP 10737389 A JP10737389 A JP 10737389A JP 10737389 A JP10737389 A JP 10737389A JP H02286700 A JPH02286700 A JP H02286700A
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は免疫グロブリンのフラグメントの精製法に関す
る。さらに詳しくは、免疫グロブリンのフラグメント溶
液を疎水クロマトグラフィにかけることにより、効率よ
く短時間に簡便に、しかも純度良く該物質を精製する方
法に関する。
る。さらに詳しくは、免疫グロブリンのフラグメント溶
液を疎水クロマトグラフィにかけることにより、効率よ
く短時間に簡便に、しかも純度良く該物質を精製する方
法に関する。
(従来の技術)
免疫グロブリンのフラグメントの精製方法は従来よりい
くつか知られている。なかでも代表的な例は、精製され
たマウス免疫グロブリンG(IgG)をペプシンにて限
定分解した後ゲル濾過で分離精製する方法である。未消
化1gGF(ab−)2フラグメント、分解小ペプチド
のピークか順に現れるので目的物質を分取することがで
きる。しかしながら、ゲル濾過法では、完全に未消化I
gGとF(ab−)2フラグメントを収率よく分画する
ことは難しい。また1回の操作で処理できる試料容積が
少ないため大量精製にはむいていない。他のプロテアー
ゼを使っても本質的に上記ような欠点を補うことは不可
能である。
くつか知られている。なかでも代表的な例は、精製され
たマウス免疫グロブリンG(IgG)をペプシンにて限
定分解した後ゲル濾過で分離精製する方法である。未消
化1gGF(ab−)2フラグメント、分解小ペプチド
のピークか順に現れるので目的物質を分取することがで
きる。しかしながら、ゲル濾過法では、完全に未消化I
gGとF(ab−)2フラグメントを収率よく分画する
ことは難しい。また1回の操作で処理できる試料容積が
少ないため大量精製にはむいていない。他のプロテアー
ゼを使っても本質的に上記ような欠点を補うことは不可
能である。
その他にイオン交換クロマトグラフィを利用する精製法
が知られている。プロテアーゼ処理した免疫グロブリン
の試料溶液を塩濃度の低い緩衝液に透析し、カチオン交
換樹脂(スルホプロピル(SP)、カルボキシメチル(
CM)基を有する樹脂)、またはアニオン交換樹脂(ジ
エチルアミノエチル(DEAE)、 クオータナリイア
ミノエチル(QAE)基を有する樹脂)のカラムに吸着
させ、塩濃度を徐々に上げたり、−度に上げたりするこ
とにより吸着した免疫グロブリンのフラグメントを選択
的に溶出させ単離精製する方法である。この方法では多
くの免疫グロブリンのフラグメントはカラムを素通りで
溶出してしまい若干の不純物は分離できない。また、容
積も増えてしまう。加えて、カラムにかける前処理とし
て開始緩衝液に透析し、脱塩する煩雑な操作を必要とす
る。
が知られている。プロテアーゼ処理した免疫グロブリン
の試料溶液を塩濃度の低い緩衝液に透析し、カチオン交
換樹脂(スルホプロピル(SP)、カルボキシメチル(
CM)基を有する樹脂)、またはアニオン交換樹脂(ジ
エチルアミノエチル(DEAE)、 クオータナリイア
ミノエチル(QAE)基を有する樹脂)のカラムに吸着
させ、塩濃度を徐々に上げたり、−度に上げたりするこ
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的に溶出させ単離精製する方法である。この方法では多
くの免疫グロブリンのフラグメントはカラムを素通りで
溶出してしまい若干の不純物は分離できない。また、容
積も増えてしまう。加えて、カラムにかける前処理とし
て開始緩衝液に透析し、脱塩する煩雑な操作を必要とす
る。
一方、免疫グロブリンのフラグメントに対する親和性を
もつタンパク質や免疫グロブリンの抗原特異性をうまく
利用した精製方法もある。免疫グロブリンのF(ab−
)2に特異性を持つ抗体や抗原自体を不溶性の支持体に
固定化し、免疫グロブリンのフラグメントを特異的にか
つ可逆的に吸着させた後、ジオキサン(10%)などの
有機溶媒、プロピオン酸(pH=2.5 、 I M
) 、塩酸(pH=2.5)などの酸性の溶液、エチレ
ングリコール(50%)、カオトロピックイオン(■C
F3Coo−、5CN−、CCl3 Co。
もつタンパク質や免疫グロブリンの抗原特異性をうまく
利用した精製方法もある。免疫グロブリンのF(ab−
)2に特異性を持つ抗体や抗原自体を不溶性の支持体に
固定化し、免疫グロブリンのフラグメントを特異的にか
つ可逆的に吸着させた後、ジオキサン(10%)などの
有機溶媒、プロピオン酸(pH=2.5 、 I M
) 、塩酸(pH=2.5)などの酸性の溶液、エチレ
ングリコール(50%)、カオトロピックイオン(■C
F3Coo−、5CN−、CCl3 Co。
p H−7,0〜8.0.3M)等で免疫グロブリンの
フラグメントとそれに対する抗体あるいは抗原との相互
作用を減少させることにより、または尿素(pH=7.
0.8M)、塩酸グアニジン(p H=3.1.6M)
等のタンパク変性剤により免疫グロブリンのフラグメン
トを遊離させ溶出させることができる。溶出の最適条件
は抗原抗体反応の結合の強さと抗体の安定性によって決
まるものであり、一般的に抗体の活性や収率の低下は免
れ得ないものである。また担体の劣化も早く、再現性や
コストの面でも不利である。
フラグメントとそれに対する抗体あるいは抗原との相互
作用を減少させることにより、または尿素(pH=7.
0.8M)、塩酸グアニジン(p H=3.1.6M)
等のタンパク変性剤により免疫グロブリンのフラグメン
トを遊離させ溶出させることができる。溶出の最適条件
は抗原抗体反応の結合の強さと抗体の安定性によって決
まるものであり、一般的に抗体の活性や収率の低下は免
れ得ないものである。また担体の劣化も早く、再現性や
コストの面でも不利である。
大量に免疫グロブリンのフラグメントを得ようとする際
に、後者の精製方法を使用するにはコメト的な問題か大
きいので、通常、大量分取するには前者の・イオン交換
クロマトグラフィを用いた非特異的な精製方法が用いら
れる。
に、後者の精製方法を使用するにはコメト的な問題か大
きいので、通常、大量分取するには前者の・イオン交換
クロマトグラフィを用いた非特異的な精製方法が用いら
れる。
しかしながら前者のイオン交換クロマトグラフィを用い
た精製方法で行う場合、前処理として塩濃度の低い開始
緩衝液に透析し、脱塩する操作を必ず行わなければなら
ない。よって、タンパク質試料を稀薄溶液というタンパ
ク質にとっては非常に不安定な条件にさらすことになる
。試料によっては非可逆的に沈殿してしまうため、クロ
マトグラフィーの開始緩衝液を高い塩濃度で始めなけれ
ばならないという、不都合を生じる場合もある。
た精製方法で行う場合、前処理として塩濃度の低い開始
緩衝液に透析し、脱塩する操作を必ず行わなければなら
ない。よって、タンパク質試料を稀薄溶液というタンパ
ク質にとっては非常に不安定な条件にさらすことになる
。試料によっては非可逆的に沈殿してしまうため、クロ
マトグラフィーの開始緩衝液を高い塩濃度で始めなけれ
ばならないという、不都合を生じる場合もある。
さらにその場合、塩濃度グラジェントをかけて溶出を行
うと、溶出されるピークがブロード化してしまうという
ことがしばしば観察され、夾雑タンパク質の混入を余儀
無くされることもある。
うと、溶出されるピークがブロード化してしまうという
ことがしばしば観察され、夾雑タンパク質の混入を余儀
無くされることもある。
(発明か解決しようとする課題)
本発明の目的は、従来の方法よりも簡便な操作で、前処
理せずかつ短時間に、くわえて効率良く高純度に、しか
も−度に大量の免疫グロブリンのフラグメントを精製す
る方法を提供するものである。
理せずかつ短時間に、くわえて効率良く高純度に、しか
も−度に大量の免疫グロブリンのフラグメントを精製す
る方法を提供するものである。
(課題を解決するための手段)
本発明者らは上記課題に関し鋭意検討した結果、本発明
に到達した。すなわち本発明は、免疫グロブリンのフラ
グメントを含む試料溶液を、疎水クロマトグラフィを用
いて、フラグメントを選択的に分離溶出させることを特
徴とする免疫グロブリンのフラグメントの精製法である
。
に到達した。すなわち本発明は、免疫グロブリンのフラ
グメントを含む試料溶液を、疎水クロマトグラフィを用
いて、フラグメントを選択的に分離溶出させることを特
徴とする免疫グロブリンのフラグメントの精製法である
。
本発明で用いられる免疫グロブリンのフラグメントを含
む試料溶液の調製方法には、特に限定はない。免疫グロ
ブリンの由来としては、ハイブリドーマを移植した動物
の腹水液、ハイブリドーマおよび/またはリンパ球の培
養液、または動物の血清等があげられる。免疫グロブリ
ンは、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体のいず
れでもよく、モノクローナル抗体の場合、IgGIgA
、IgE、IgD、またはIgMのいずれのサブクラス
に属するものであってもよい。これらの免疫グロブリン
をフラグメント化するには、例えば、プロテアーゼ、s
−s結合還元剤などが用いられる。プロテアーゼとして
一例を上げると、パパイン、ペプシン、トリプシン、キ
モトリプシン、カテプシンD、カテプシンE、プラスミ
ン。
む試料溶液の調製方法には、特に限定はない。免疫グロ
ブリンの由来としては、ハイブリドーマを移植した動物
の腹水液、ハイブリドーマおよび/またはリンパ球の培
養液、または動物の血清等があげられる。免疫グロブリ
ンは、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体のいず
れでもよく、モノクローナル抗体の場合、IgGIgA
、IgE、IgD、またはIgMのいずれのサブクラス
に属するものであってもよい。これらの免疫グロブリン
をフラグメント化するには、例えば、プロテアーゼ、s
−s結合還元剤などが用いられる。プロテアーゼとして
一例を上げると、パパイン、ペプシン、トリプシン、キ
モトリプシン、カテプシンD、カテプシンE、プラスミ
ン。
またはズブチリシン等があるが、これらに限定されるも
のではない。
のではない。
このようにして得られたFab。
F (ab−)2+ Fc等のフラグメント、未消化
免疫グロブリン、分解小ペプチド等は、疎水クロマトグ
ラフィを用いて、各フラグメントを選択的に分離溶出さ
せることができる。
免疫グロブリン、分解小ペプチド等は、疎水クロマトグ
ラフィを用いて、各フラグメントを選択的に分離溶出さ
せることができる。
疎水クロマトグラフィの疎水性基をもつ樹脂としては、
フェニル基、オリゴエチレングリコール基、炭素数か4
ないし18個である直鎖または分枝状の炭化水素鎖を共
有結合させた親水性ポリマ系樹脂または親水性シリカゲ
ル樹脂、スチレン系樹脂、アクリレート系コポリマー、
メタアクリレート系コポリマー、アガロース、セルロー
スまたはデキストランの一種等があげられるが、これに
限定されるものではない。
フェニル基、オリゴエチレングリコール基、炭素数か4
ないし18個である直鎖または分枝状の炭化水素鎖を共
有結合させた親水性ポリマ系樹脂または親水性シリカゲ
ル樹脂、スチレン系樹脂、アクリレート系コポリマー、
メタアクリレート系コポリマー、アガロース、セルロー
スまたはデキストランの一種等があげられるが、これに
限定されるものではない。
上述の疎水クロマトグラフィーに、免疫グロブリンのフ
ラグメントを含む試料を吸着させ、塩濃度を変化させる
ことにより、目的とする免疫グロブリンのフラグメント
を選択的に分離溶出させることができる。このとき用い
られる塩溶液としては、例えば硫酸アンモニウム、硫酸
ナトリウム、リン酸カリウム、リン酸ナトリウム等があ
げられる。塩濃度は、直線的に変化させても、段階的に
変化させてもよい。
ラグメントを含む試料を吸着させ、塩濃度を変化させる
ことにより、目的とする免疫グロブリンのフラグメント
を選択的に分離溶出させることができる。このとき用い
られる塩溶液としては、例えば硫酸アンモニウム、硫酸
ナトリウム、リン酸カリウム、リン酸ナトリウム等があ
げられる。塩濃度は、直線的に変化させても、段階的に
変化させてもよい。
(発明の効果)
以上の説明から明らかなように、本発明によれば、従来
法に比べてより簡便な操作で短時間に、かつ効率よく高
純度にしかも一度に大量の免疫グロブリンのフラグメン
トを精製することが可能である。
法に比べてより簡便な操作で短時間に、かつ効率よく高
純度にしかも一度に大量の免疫グロブリンのフラグメン
トを精製することが可能である。
(実施例)
以下、その条件等、実施例を挙げて詳細に説明する。し
かし、これら実施例のみに本発明は限定されるものでは
ない。
かし、これら実施例のみに本発明は限定されるものでは
ない。
[実施例1]
(1)ペプシンをマウス腹水に反応させる工程ヒト成長
ホルモンに対するモノクローナル抗体(I gGl )
を産生ずるハイブリドーマを移植したマウスの腹水液1
1m1に、100%飽和硫酸アンモニウム水溶液((N
H4)2 SO4、pH=7.4)9mlを氷上で攪拌
しながら滴下した。
ホルモンに対するモノクローナル抗体(I gGl )
を産生ずるハイブリドーマを移植したマウスの腹水液1
1m1に、100%飽和硫酸アンモニウム水溶液((N
H4)2 SO4、pH=7.4)9mlを氷上で攪拌
しながら滴下した。
次にその試料を11,000回転(10,000x g
)、20分間、4℃で遠心して沈殿を得た。再度同様の
操作を行い、−り清を除去した後、沈殿を6mlのリン
酸緩衝化生理食塩水(0,85%NaC1含有0.01
%リン酸緩衝液、pH7,2:以下PBS)に溶解し可
溶化した。この試料を透析チューブに移し、100倍量
の容積のPBSに4℃で攪拌しなから透析し、試料の伝
導度がPBSのそれと同じになるまで繰り返しPBSを
交換した。
)、20分間、4℃で遠心して沈殿を得た。再度同様の
操作を行い、−り清を除去した後、沈殿を6mlのリン
酸緩衝化生理食塩水(0,85%NaC1含有0.01
%リン酸緩衝液、pH7,2:以下PBS)に溶解し可
溶化した。この試料を透析チューブに移し、100倍量
の容積のPBSに4℃で攪拌しなから透析し、試料の伝
導度がPBSのそれと同じになるまで繰り返しPBSを
交換した。
試料の280nmにおける紫外吸光度は、13.4であ
った。この試料3.6mlをサンプル管にとり、0.4
mlの1Mクエン酸緩衝液(pH=2.5)を加えて、
さらにINの塩酸で試料のpHを3.7に調製した。こ
の試料に0.1Mクエン酸緩衝液(pH=3.7)に溶
解したペプシン(シグマ社製)を試料に対する重量比で
0,5%(w / w )添加した。ただちに上記試料
を37℃で攪拌しなから2時間放置し、次に3Mのトリ
ス(ヒドロキシメチル)アミノメタン緩衝液を0.4m
l加え試料のpHを中性に調製しペプシンの酵素反応を
停止し、反応物を10.000回転で20分間遠心し、
沈殿物を除いた後、免疫グロブリンの酵素分解物を得た
。
った。この試料3.6mlをサンプル管にとり、0.4
mlの1Mクエン酸緩衝液(pH=2.5)を加えて、
さらにINの塩酸で試料のpHを3.7に調製した。こ
の試料に0.1Mクエン酸緩衝液(pH=3.7)に溶
解したペプシン(シグマ社製)を試料に対する重量比で
0,5%(w / w )添加した。ただちに上記試料
を37℃で攪拌しなから2時間放置し、次に3Mのトリ
ス(ヒドロキシメチル)アミノメタン緩衝液を0.4m
l加え試料のpHを中性に調製しペプシンの酵素反応を
停止し、反応物を10.000回転で20分間遠心し、
沈殿物を除いた後、免疫グロブリンの酵素分解物を得た
。
(2)疎水クロマトグラフィによる分離精製上記の免疫
グロブリンの酵素分解物2mlに3Mの硫酸アンモニウ
ムを含む20mMリン酸緩衝液(pH7,4)1mlを
加え、攪拌混合した。
グロブリンの酵素分解物2mlに3Mの硫酸アンモニウ
ムを含む20mMリン酸緩衝液(pH7,4)1mlを
加え、攪拌混合した。
同試料3mlを、1Mの硫酸アンモニウムを含む20m
Mリン酸緩衝液(pH7,4)で平衡化したTSK−G
el Phenyl−5PW(商品名;東ソー社製)
のカラム(φ7.5mmx7.5cm)にアプライした
。該カラムによる高速液体クロマトグラフィのチャート
を図1に示す。
Mリン酸緩衝液(pH7,4)で平衡化したTSK−G
el Phenyl−5PW(商品名;東ソー社製)
のカラム(φ7.5mmx7.5cm)にアプライした
。該カラムによる高速液体クロマトグラフィのチャート
を図1に示す。
約10m1の同緩衝液でカラムを洗浄すると夾雑タンパ
ク質が溶出された(図]:ピーク1゜4.62分)。溶
出されるタンパク質のピーク(280nmにおける吸光
度)が終わったところで(図]:矢印のところ、10分
)、溶出液を、硫酸アンモニウム濃度1MからOMの、
20mMリン酸緩衝液(pH7,4)で、直線的に硫酸
アンモニウム濃度を60分間かけて下げた。さらに、純
水で10分間溶出しカラムを洗浄した。この時の溶離液
の流速は1ml/minで、検出波長は280nmであ
った。この条件で免疫グロブリンのフラグメントのピー
クは約39分に現れた(図1;ピーク2,39.73分
)。このピークを分取して精製免疫グロブリンフラグメ
ント画分とした。カラムはさらに未消化IgG1を含む
ピークを約52分に溶出した(図1:ピーク3゜52.
77分)。以上で−通りの精製操作が終了した。分取し
たピーク2及びピーク3はそれぞれメルカプトエタノー
ル還元下の12%5DS−ポリアクリルアミドゲル電気
泳動を行った。結果を図2に示す。図2からも明らかな
ように、均一の] ] 免疫グロブリンのF(ab)2と未消化IgG1である
ことが確認された。
ク質が溶出された(図]:ピーク1゜4.62分)。溶
出されるタンパク質のピーク(280nmにおける吸光
度)が終わったところで(図]:矢印のところ、10分
)、溶出液を、硫酸アンモニウム濃度1MからOMの、
20mMリン酸緩衝液(pH7,4)で、直線的に硫酸
アンモニウム濃度を60分間かけて下げた。さらに、純
水で10分間溶出しカラムを洗浄した。この時の溶離液
の流速は1ml/minで、検出波長は280nmであ
った。この条件で免疫グロブリンのフラグメントのピー
クは約39分に現れた(図1;ピーク2,39.73分
)。このピークを分取して精製免疫グロブリンフラグメ
ント画分とした。カラムはさらに未消化IgG1を含む
ピークを約52分に溶出した(図1:ピーク3゜52.
77分)。以上で−通りの精製操作が終了した。分取し
たピーク2及びピーク3はそれぞれメルカプトエタノー
ル還元下の12%5DS−ポリアクリルアミドゲル電気
泳動を行った。結果を図2に示す。図2からも明らかな
ように、均一の] ] 免疫グロブリンのF(ab)2と未消化IgG1である
ことが確認された。
(3)免疫グロブリンのF(ab−)2精製物と未処理
1gGL精製物の抗体力価の酵素免疫学的測定法による
検査 未処理マイクロタイタープレー1−(96ウエル・ヌン
クプレート、インターメッド社製)の各ウェルに0.1
M炭酸ナトリウム緩衝液(pH9,6)に溶解した1μ
g / m lのヒト成長ホルモンの溶液50μlを加
えて、4℃で一夜インキユベートした。各ウェルの溶液
を除去し、リン酸緩衝化生理食塩水(0,85%NaC
1含有0.01%リン酸緩衝液、pH7,2:以下PB
S)に0.04%ツイーン(tween)−20を含ん
だ溶液(以下PBS−T)で3回洗浄した後、0.1%
ウシ血清アルブミン(以下BSA)を溶解したPBS=
T溶液300μlを各ウェルに加えて、4℃でブロッキ
ング処理しそのまま保存した。マイクロタイタープレー
1・を室温にもどし、PBS−T溶液で洗浄した後、2
80nmの紫外吸光度を0.005になるようPBSで
希釈したF(ab−)2又は未処理IgGを含む試料を
各ウェルにそれぞれ50μm加えた。この状態で37°
Cで90分間放置した。つぎにペルオキシダーゼ標識ウ
サギ抗マウスIgG(Fcフラグメント特異的、ジャク
ソン・イムノケミカル社製)抗体又はペルオキシダーゼ
標識ヤギ抗マウスI gG CF (ab ) 2フ
ラグメント特異的;カペル社製)抗体をPBS−T溶液
で5000倍に希釈し、各ウェルにそれぞれ50μmず
つ添加した。そのまま室温で90分間インキュベートし
た後、溶液を除去しPBS+−T溶液で3回洗浄した。
1gGL精製物の抗体力価の酵素免疫学的測定法による
検査 未処理マイクロタイタープレー1−(96ウエル・ヌン
クプレート、インターメッド社製)の各ウェルに0.1
M炭酸ナトリウム緩衝液(pH9,6)に溶解した1μ
g / m lのヒト成長ホルモンの溶液50μlを加
えて、4℃で一夜インキユベートした。各ウェルの溶液
を除去し、リン酸緩衝化生理食塩水(0,85%NaC
1含有0.01%リン酸緩衝液、pH7,2:以下PB
S)に0.04%ツイーン(tween)−20を含ん
だ溶液(以下PBS−T)で3回洗浄した後、0.1%
ウシ血清アルブミン(以下BSA)を溶解したPBS=
T溶液300μlを各ウェルに加えて、4℃でブロッキ
ング処理しそのまま保存した。マイクロタイタープレー
1・を室温にもどし、PBS−T溶液で洗浄した後、2
80nmの紫外吸光度を0.005になるようPBSで
希釈したF(ab−)2又は未処理IgGを含む試料を
各ウェルにそれぞれ50μm加えた。この状態で37°
Cで90分間放置した。つぎにペルオキシダーゼ標識ウ
サギ抗マウスIgG(Fcフラグメント特異的、ジャク
ソン・イムノケミカル社製)抗体又はペルオキシダーゼ
標識ヤギ抗マウスI gG CF (ab ) 2フ
ラグメント特異的;カペル社製)抗体をPBS−T溶液
で5000倍に希釈し、各ウェルにそれぞれ50μmず
つ添加した。そのまま室温で90分間インキュベートし
た後、溶液を除去しPBS+−T溶液で3回洗浄した。
それに、0.3mg/mlの 2,2−アジノジ(3−
エチルベンズチアゾリン硫酸)−ジアンモニウム塩(A
BTS)及び0.01%過酸化水素(H2O2)を含有
する0、1Mクエン酸緩衝液(pH4,1)から成る基
質溶液を各ウェルに100μl添加し゛、室温で30分
間呈色反応させた後、200mMシュウ酸溶液を100
μl加えて酵素反応を停止させた。上記マイクロタイタ
プレートを各ウェルについて、波長415nm。
エチルベンズチアゾリン硫酸)−ジアンモニウム塩(A
BTS)及び0.01%過酸化水素(H2O2)を含有
する0、1Mクエン酸緩衝液(pH4,1)から成る基
質溶液を各ウェルに100μl添加し゛、室温で30分
間呈色反応させた後、200mMシュウ酸溶液を100
μl加えて酵素反応を停止させた。上記マイクロタイタ
プレートを各ウェルについて、波長415nm。
対照波長492nmの吸光強度を自動マイクロタイター
プIノートリーダー(東ソー株式会社製、MPR−A4
、商品名)で測定した結果を図3−1図3−2に示す。
プIノートリーダー(東ソー株式会社製、MPR−A4
、商品名)で測定した結果を図3−1図3−2に示す。
図3−1は、未処理1gG又はF(ab−)を、二次抗
体としてHRP標識ヤギ抗マウスI gG (F (a
b ) 2特異的)抗体を用イテ測定した結果である
。この図からも明らかなように、本発明による精製法を
行っても、抗体活性に悪影響を及ぼさないことが示され
た。
体としてHRP標識ヤギ抗マウスI gG (F (a
b ) 2特異的)抗体を用イテ測定した結果である
。この図からも明らかなように、本発明による精製法を
行っても、抗体活性に悪影響を及ぼさないことが示され
た。
図3−2は、未処理IgG又はF(ab−)zを、二次
抗体としてHRP標識ウサつ抗マウスIgG(Fc特異
的)抗体を用いて測定した結果である。F(ab−)2
は本発明法により精製され、Fc部分の混入かないこと
が示された。
抗体としてHRP標識ウサつ抗マウスIgG(Fc特異
的)抗体を用いて測定した結果である。F(ab−)2
は本発明法により精製され、Fc部分の混入かないこと
が示された。
[比較例1]
イオン交換クロマトグラフィによる分離精製実施例1の
(1)で調製したF(ab−)27ラグメントと未消化
1gGを含む試料2mlを40mM塩化すトリウムを含
む20mMトリス−塩酸緩衝液(pH8,0)500m
lに一昼夜透析した。同試料2mlを、40mM塩化ナ
トリウムを含む20 m M )リス−塩酸緩衝液(p
H8,0)で平衡化したTSK−Gel DEAE5
PW(商品名;東ソー側製)のカラム(φ7.5mmX
7.5cm)にアプライした。該カラムによる高速液体
クロマトグラフィのチャートを図4に示す。約10m1
の同緩衝液で流速1 ml/minでカラムを洗浄する
とF(ab−)2フラグメントと夾雑タンパク質が溶出
された(図4;ピーク1,5.17分)。これは素通り
画分であり、このピークを分取して精製F(ab−)2
両分とした。溶出されるタンパク質のピーク(280n
mにおける吸光度)が終わったところ(図4.矢印のと
ころ、10分)で溶出液を、塩化すトリウム濃度40m
Mから500mMの20mMトリス−塩酸緩衝液(pH
8,0>で、直線的に塩化ナトリウム濃度を60分間か
けて高くした。この時の溶離液の流速は1ml/min
てあった。カラムはさらに未消化1gG1を含むピクを
約26分に溶出した(図4;ピーク226.07分)。
(1)で調製したF(ab−)27ラグメントと未消化
1gGを含む試料2mlを40mM塩化すトリウムを含
む20mMトリス−塩酸緩衝液(pH8,0)500m
lに一昼夜透析した。同試料2mlを、40mM塩化ナ
トリウムを含む20 m M )リス−塩酸緩衝液(p
H8,0)で平衡化したTSK−Gel DEAE5
PW(商品名;東ソー側製)のカラム(φ7.5mmX
7.5cm)にアプライした。該カラムによる高速液体
クロマトグラフィのチャートを図4に示す。約10m1
の同緩衝液で流速1 ml/minでカラムを洗浄する
とF(ab−)2フラグメントと夾雑タンパク質が溶出
された(図4;ピーク1,5.17分)。これは素通り
画分であり、このピークを分取して精製F(ab−)2
両分とした。溶出されるタンパク質のピーク(280n
mにおける吸光度)が終わったところ(図4.矢印のと
ころ、10分)で溶出液を、塩化すトリウム濃度40m
Mから500mMの20mMトリス−塩酸緩衝液(pH
8,0>で、直線的に塩化ナトリウム濃度を60分間か
けて高くした。この時の溶離液の流速は1ml/min
てあった。カラムはさらに未消化1gG1を含むピクを
約26分に溶出した(図4;ピーク226.07分)。
以上で−通りの精製操作が終了した。これらF(ab′
)2フラグメントと未消化1gGの抗体活性は、実施例
1(3)の方法で確認し、ともに陽性であった。しかし
、精製F(ab−)2両分は、大量の夾雑タンパク質を
含んでいた。
)2フラグメントと未消化1gGの抗体活性は、実施例
1(3)の方法で確認し、ともに陽性であった。しかし
、精製F(ab−)2両分は、大量の夾雑タンパク質を
含んでいた。
図1は、実施例1における高速液体クロマ)・グラフィ
のチャートを、図2は実施例1における電気泳動ゲルの
結果を、図3−1及び図3−2は実施例1での抗体価を
反映した呈色反応の415nmでの吸光度を縦軸に、抗
原の濃度(ng/m1)を横軸にその関係をそれぞれ示
した図である。図4は、比較例1における高速液体クロ
マトグラフィのチャートを示した図である。
のチャートを、図2は実施例1における電気泳動ゲルの
結果を、図3−1及び図3−2は実施例1での抗体価を
反映した呈色反応の415nmでの吸光度を縦軸に、抗
原の濃度(ng/m1)を横軸にその関係をそれぞれ示
した図である。図4は、比較例1における高速液体クロ
マトグラフィのチャートを示した図である。
Claims (6)
- (1)免疫グロブリンのフラグメントを含む試料溶液を
、疎水クロマトグラフィを用いて、フラグメントを選択
的に分離溶出させることを特徴とする免疫グロブリンの
フラグメントの精製法。 - (2)疎水クロマトグラフィの疎水性基をもつ樹脂が、
フェニル基、オリゴエチレングリコール基、炭素数が4
ないし18個である直鎖または分枝状の炭化水素鎖を共
有結合させた親水性ポリマー系樹脂または親水性シリカ
ゲル樹脂、スチレン系樹脂、アクリレート系コポリマー
、メタアクリレート系コポリマー、アガロース、セルロ
ースまたはデキストランの一種である特許請求の範囲第
1項記載の方法。 - (3)免疫グロブリンが、ハイブリドーマを移植した動
物の腹水液、ハイブリドーマおよび/またはリンパ球の
培養液、または動物の血清由来である特許請求の範囲第
1項または第2項記載の方法。 - (4)免疫グロブリンが、ポリクローナル抗体、IgG
、IgA、IgE、IgD、またはIgMのいずれかの
サブクラスに属するモノクローナル抗体である特許請求
の範囲第1〜3項いずれかの項に記載の方法。 - (5)疎水クロマトグラフィで使用する塩溶液が、硫酸
アンモニウム、硫酸ナトリウム、リン酸カリウム、リン
酸ナトリウムのいずれかである特許請求の範囲第1〜4
項いずれかの項に記載の方法。 - (6)免疫グロブリンのフラグメントを含む試料溶液が
、パパイン、ペプシン、トリプシン、キモトリプシン、
カテプシンD、カテプシンE、プラスミン、またはズブ
チリシンを用いて調製されたものである特許請求の範囲
第1〜5項いずれかの項に記載の方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP10737389A JPH02286700A (ja) | 1989-04-28 | 1989-04-28 | 免疫グロブリンのフラグメントの精製法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP10737389A JPH02286700A (ja) | 1989-04-28 | 1989-04-28 | 免疫グロブリンのフラグメントの精製法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH02286700A true JPH02286700A (ja) | 1990-11-26 |
Family
ID=14457458
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP10737389A Pending JPH02286700A (ja) | 1989-04-28 | 1989-04-28 | 免疫グロブリンのフラグメントの精製法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH02286700A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS6340700A (ja) * | 1986-08-04 | 1988-02-22 | Aida Eng Ltd | デジタルロ−タリカムスイツチ |
JPH1090268A (ja) * | 1996-09-18 | 1998-04-10 | Eiken Chem Co Ltd | 免疫学的粒子凝集反応方法 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS63253100A (ja) * | 1987-04-10 | 1988-10-20 | Tosoh Corp | 抗体の精製法 |
-
1989
- 1989-04-28 JP JP10737389A patent/JPH02286700A/ja active Pending
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS63253100A (ja) * | 1987-04-10 | 1988-10-20 | Tosoh Corp | 抗体の精製法 |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS6340700A (ja) * | 1986-08-04 | 1988-02-22 | Aida Eng Ltd | デジタルロ−タリカムスイツチ |
JPH1090268A (ja) * | 1996-09-18 | 1998-04-10 | Eiken Chem Co Ltd | 免疫学的粒子凝集反応方法 |
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