JPH02271255A - 標準液又は希釈液の製造方法 - Google Patents
標準液又は希釈液の製造方法Info
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- JPH02271255A JPH02271255A JP9185889A JP9185889A JPH02271255A JP H02271255 A JPH02271255 A JP H02271255A JP 9185889 A JP9185889 A JP 9185889A JP 9185889 A JP9185889 A JP 9185889A JP H02271255 A JPH02271255 A JP H02271255A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は標準液又は希釈液の製造方法に関するものであ
り、詳しくは免疫測定において測定されるべき被測定物
を認識する抗体を使用するアフィニティクロマトグラフ
ィーによる前記製造方法に関するものである。
り、詳しくは免疫測定において測定されるべき被測定物
を認識する抗体を使用するアフィニティクロマトグラフ
ィーによる前記製造方法に関するものである。
(従来の技術)
例えば血清又は尿等の動物生体試料(これらは時にはヒ
トに由来する試料である)に含まれる蛋白質等の生体成
分を、該成分を認識する抗体を用いて測定する方法が知
られている。
トに由来する試料である)に含まれる蛋白質等の生体成
分を、該成分を認識する抗体を用いて測定する方法が知
られている。
この様な免疫測定方法においては、検量線を作製するた
めの、既知濃度の非測定物を含有する標準液や生体試料
を希釈するための希釈液(以下これらを単に免疫測定用
試薬と記載する)が使用される。
めの、既知濃度の非測定物を含有する標準液や生体試料
を希釈するための希釈液(以下これらを単に免疫測定用
試薬と記載する)が使用される。
免疫測定用試薬は、生体試料と被測定物以外の成分が同
一であることが正確な免疫測定のために要求される。例
えば、生体試料がヒト血清又はヒト血漿である場合に、
ヒト血清又はヒト血漿以外の溶液を希釈液として使用す
ると、いわゆる血清効果が引起こされ、前記試料中の被
測定物濃度が正しい値を示さないことがある。
一であることが正確な免疫測定のために要求される。例
えば、生体試料がヒト血清又はヒト血漿である場合に、
ヒト血清又はヒト血漿以外の溶液を希釈液として使用す
ると、いわゆる血清効果が引起こされ、前記試料中の被
測定物濃度が正しい値を示さないことがある。
前記した様な不都合を解消するために、従来は、例えば
標準液であれば免疫測定に供される生体試料を材料とし
てこれに既知濃度の被測定物を添加したり又例えば希釈
液であれば生体試料をそのまま使用することがある。
標準液であれば免疫測定に供される生体試料を材料とし
てこれに既知濃度の被測定物を添加したり又例えば希釈
液であれば生体試料をそのまま使用することがある。
以上の様に、生体試料自体を利用して標準液材料又は希
釈液を製造することは、特別な準備や面倒な操作を必要
としないため、簡便である。しかし、例えば生体試料が
ヒト血清又はヒト血漿である場合であって、被測定物が
フェリチン、インシュリン又は種々のホルモンである様
な場合にはこれら被測定物が通常のヒト生体試料中に初
めから存在していることから、これを予あ除去すること
が必要である。
釈液を製造することは、特別な準備や面倒な操作を必要
としないため、簡便である。しかし、例えば生体試料が
ヒト血清又はヒト血漿である場合であって、被測定物が
フェリチン、インシュリン又は種々のホルモンである様
な場合にはこれら被測定物が通常のヒト生体試料中に初
めから存在していることから、これを予あ除去すること
が必要である。
この様な課題を考慮して、近年ではより正確な免疫測定
を実施するため、生体試料を被測定物を認識する抗体を
固定化した担体と接触させる、いイつゆるアフィニティ
クロマトグラフィーを実施することにより生体試料中の
被i’1tlJ定物を除去し、標準液又は希釈液を製造
する方法が知られる様になった。この方法によれば、生
体試料を前記した様な担体に接触させることで、被測定
物以外の成分組成が同一の免疫測定用試薬を製造するこ
とができる。
を実施するため、生体試料を被測定物を認識する抗体を
固定化した担体と接触させる、いイつゆるアフィニティ
クロマトグラフィーを実施することにより生体試料中の
被i’1tlJ定物を除去し、標準液又は希釈液を製造
する方法が知られる様になった。この方法によれば、生
体試料を前記した様な担体に接触させることで、被測定
物以外の成分組成が同一の免疫測定用試薬を製造するこ
とができる。
(発明が解決しようとする課題)
従来のアフィニティクロマトグラフィーによる方法にお
いては、被測定物を認識する抗体の担体への結合は活性
化された担体表面の化学基と抗体との化学的結合、即ち
共有結合により実現され、 る。ところが、活性化され
た担体表面と抗体の化学反応は人為的なコントロールが
不可能であることから、例えば抗体中の抗原認識部位が
該表面と反応してしまうことがあり、該抗体がもはや被
測定物を認識する能力を失っていたり、あるいは認識能
力が低下していることがあり、十分に被測定物の除去さ
れた免疫測定用試薬を製造することができないという課
題がある。
いては、被測定物を認識する抗体の担体への結合は活性
化された担体表面の化学基と抗体との化学的結合、即ち
共有結合により実現され、 る。ところが、活性化され
た担体表面と抗体の化学反応は人為的なコントロールが
不可能であることから、例えば抗体中の抗原認識部位が
該表面と反応してしまうことがあり、該抗体がもはや被
測定物を認識する能力を失っていたり、あるいは認識能
力が低下していることがあり、十分に被測定物の除去さ
れた免疫測定用試薬を製造することができないという課
題がある。
本発明者はアフィニティークロマトグラフィーにより免
疫測定用試薬を製造する方法について検討した結果、担
体と被測定物を認識する抗体の結合を改良することで被
測定物を認識する抗体の失活を防ぎ、もってより正確な
免疫測定を実現し得る免疫測定用試薬を製造する方法を
発明するに至った。即ち本発明は、免疫測定において使
用される標準液又は希釈液の製造方法であって、前記免
疫Δ1り定において測定されるべき被測定物を認識する
抗体を吸着したポリスチレン製担体と試料を“接触させ
た後該試料と担体を分離することを特徴とする方法であ
り、以下詳細に説明する。
疫測定用試薬を製造する方法について検討した結果、担
体と被測定物を認識する抗体の結合を改良することで被
測定物を認識する抗体の失活を防ぎ、もってより正確な
免疫測定を実現し得る免疫測定用試薬を製造する方法を
発明するに至った。即ち本発明は、免疫測定において使
用される標準液又は希釈液の製造方法であって、前記免
疫Δ1り定において測定されるべき被測定物を認識する
抗体を吸着したポリスチレン製担体と試料を“接触させ
た後該試料と担体を分離することを特徴とする方法であ
り、以下詳細に説明する。
(課題を解決するだめの手段)
本発明は、担体と被at++定物を認識する抗体を化学
的な共有結合ではなく、物理的な吸着によって行うこと
で該抗体の失活を防ぎ、もってより勝れた免疫測定用試
薬を製造するものである。
的な共有結合ではなく、物理的な吸着によって行うこと
で該抗体の失活を防ぎ、もってより勝れた免疫測定用試
薬を製造するものである。
担体に担持させる抗体は、被測定物を認識する抗体であ
れば制限なく使用できる。それらは例えばポリクローナ
ル抗体であっても良いし、モノクローナル抗体であって
も良い。例えば、本発明の方法により製造された免疫測
定用試薬を使用する免疫測定で用いられる抗体を使用す
れば、本発明を行うために新たな抗体を調製する必要が
なくなる。
れば制限なく使用できる。それらは例えばポリクローナ
ル抗体であっても良いし、モノクローナル抗体であって
も良い。例えば、本発明の方法により製造された免疫測
定用試薬を使用する免疫測定で用いられる抗体を使用す
れば、本発明を行うために新たな抗体を調製する必要が
なくなる。
本発明で使用するポリスチレン製担体は、形状又はその
大きさにおいて特別な制限はない。また、ポリスチレン
製との言葉は、他の物質によりその核を形成し、表面に
ポリスチレン被覆を施した担体を使用することを妨げな
い。即ち本発明で使用する担体は表面がポリスチレンに
由来する抗体吸着能力を有する担体をであれば良い。担
体は、以下説明する手順で抗体を吸着させた後、通常行
われる様に、例えば牛血清アルブミン等を用いてブロッ
キング処理することにより他の蛋白質の吸着を阻止し得
る様にしておくことが好ましい。ブロッキング操作自体
は公知の方法を適用することができる。その−例として
、例えば本発明の実施例で採用した様に、重量比0.1
%の牛血清アルブミンを含むPBSを担体を吸着担持し
た担体と接触させ、4℃にて24時間放置する等の作業
を例示することができる。
大きさにおいて特別な制限はない。また、ポリスチレン
製との言葉は、他の物質によりその核を形成し、表面に
ポリスチレン被覆を施した担体を使用することを妨げな
い。即ち本発明で使用する担体は表面がポリスチレンに
由来する抗体吸着能力を有する担体をであれば良い。担
体は、以下説明する手順で抗体を吸着させた後、通常行
われる様に、例えば牛血清アルブミン等を用いてブロッ
キング処理することにより他の蛋白質の吸着を阻止し得
る様にしておくことが好ましい。ブロッキング操作自体
は公知の方法を適用することができる。その−例として
、例えば本発明の実施例で採用した様に、重量比0.1
%の牛血清アルブミンを含むPBSを担体を吸着担持し
た担体と接触させ、4℃にて24時間放置する等の作業
を例示することができる。
本発明で使用する、被測定物を認識する抗体を担持する
担体は、前記した様に物理的な吸着により調製されるか
ら、繁雑な操作を行うことなしに得ることができる。例
えば担体を予めメタノール等で洗浄し乾燥させた後、担
持させようとする抗体と混和し、撹拌しながら48時間
放置するなどしても良いが、放置する時間、その温度等
は検討の上、適宜決定すれば良い。
担体は、前記した様に物理的な吸着により調製されるか
ら、繁雑な操作を行うことなしに得ることができる。例
えば担体を予めメタノール等で洗浄し乾燥させた後、担
持させようとする抗体と混和し、撹拌しながら48時間
放置するなどしても良いが、放置する時間、その温度等
は検討の上、適宜決定すれば良い。
本発明の製造方法は、例えば適当な空間を提供する反応
容器中に被測定物を認識する抗体を担持する担体及び試
料を入れることで行っても良いし、容器自体又は容器内
へきをポリスチレンで被覆したものを担体として使用し
、抗体を担持させ、そこに試料を添加することで行って
も良いが、製造された免疫測定用試薬と担体との分離等
を容易にするためには、抗体を担持する担体を適当なカ
ラムに充填し、カラムクロマトグラフィーの形態で行う
ことが好ましい。カラムクロマトグラフィーの形態によ
れば、担体に担持された抗体と被測定物の接触をむらな
(しかも速やかに行うことができ、また、カラムからの
溶出液をフラクションコレクター等を用いて採取するこ
とで、担体と試料の分離を実現することもできる。
容器中に被測定物を認識する抗体を担持する担体及び試
料を入れることで行っても良いし、容器自体又は容器内
へきをポリスチレンで被覆したものを担体として使用し
、抗体を担持させ、そこに試料を添加することで行って
も良いが、製造された免疫測定用試薬と担体との分離等
を容易にするためには、抗体を担持する担体を適当なカ
ラムに充填し、カラムクロマトグラフィーの形態で行う
ことが好ましい。カラムクロマトグラフィーの形態によ
れば、担体に担持された抗体と被測定物の接触をむらな
(しかも速やかに行うことができ、また、カラムからの
溶出液をフラクションコレクター等を用いて採取するこ
とで、担体と試料の分離を実現することもできる。
本発明の製造方法をカラムクロマトグラフィーの形態で
行うためには、担体を5〜300μmの球状に形成する
と良い。この様な担体によればカラムからの溶液の流出
も速く、その表面積も比較的大きいからより多くの抗体
を担持させることができる。
行うためには、担体を5〜300μmの球状に形成する
と良い。この様な担体によればカラムからの溶液の流出
も速く、その表面積も比較的大きいからより多くの抗体
を担持させることができる。
試料はこれまで説明してきた様に、免疫測定に供される
生体試料と同一のものを使用することが、正確な免疫測
定を行うための試薬を製造するために好ましい。例えば
免疫測定に供される生体試料がヒト血清である場合には
試料としてヒト血清を、生体試料がヒト血漿である場合
には試料としてヒト血漿を使用することが好ましい。
生体試料と同一のものを使用することが、正確な免疫測
定を行うための試薬を製造するために好ましい。例えば
免疫測定に供される生体試料がヒト血清である場合には
試料としてヒト血清を、生体試料がヒト血漿である場合
には試料としてヒト血漿を使用することが好ましい。
本発明の方法に従って製造された免疫測定用試薬は、担
体と分離された後、特別の操作をすることなしに希釈液
又は濃度O(零)の標準液として、また被測定物を必要
量添加することにより、既知の被測定物濃度を示す標準
液として使用できる。
体と分離された後、特別の操作をすることなしに希釈液
又は濃度O(零)の標準液として、また被測定物を必要
量添加することにより、既知の被測定物濃度を示す標準
液として使用できる。
(発明の効果)
本発明の方法により、より正確な免疫測定を実現するた
めの標準液又は希釈液を製造することができる。本発明
の製造方法では、被測定物を認識する抗体をポリスチレ
ンが6する特別な吸着性質を利用して、該抗体の活性を
低下させることなしに担持させた担体を使用することに
より、より効率的に試料中の被測定物を補足し、除去す
ることができる。
めの標準液又は希釈液を製造することができる。本発明
の製造方法では、被測定物を認識する抗体をポリスチレ
ンが6する特別な吸着性質を利用して、該抗体の活性を
低下させることなしに担持させた担体を使用することに
より、より効率的に試料中の被測定物を補足し、除去す
ることができる。
本発明の製造方法に使用される、例えば抗体を担持した
担体等は、複雑な操作なしに簡単に準備することが可能
であり、従って、本発明の方法はその準備をも含め、短
時間で、しかも簡便に行うことができる。
担体等は、複雑な操作なしに簡単に準備することが可能
であり、従って、本発明の方法はその準備をも含め、短
時間で、しかも簡便に行うことができる。
本発明の製造方法は特に、担体を適当なカラムに充填し
て実施することが好ましい。即ち、カラムクロマトグラ
フィーによれば、担体に担持された抗体と被測定物の接
触をむらなくしかも速やかに行うことができ、またカラ
ムからの溶出液をフラクションコレクター等を用いて採
取することで、担体と試料の分離を実現することもでき
るからである。これらのことは、被測定物の除去が実質
的に一部の抗体のみで行われることによる急激な被測定
物除去能力の低下を防ぎ、より長期間に渡って均一な免
疫測定用試薬を製造できることを意味するものである。
て実施することが好ましい。即ち、カラムクロマトグラ
フィーによれば、担体に担持された抗体と被測定物の接
触をむらなくしかも速やかに行うことができ、またカラ
ムからの溶出液をフラクションコレクター等を用いて採
取することで、担体と試料の分離を実現することもでき
るからである。これらのことは、被測定物の除去が実質
的に一部の抗体のみで行われることによる急激な被測定
物除去能力の低下を防ぎ、より長期間に渡って均一な免
疫測定用試薬を製造できることを意味するものである。
また、−度使用されたカラムの洗浄等も、抗体が被測定
物を遊離する様な緩衝液等を添加することで簡便に行う
ことができるという効果も有している。これは、例えば
3M濃度程度のチオシアン酸を添加した緩衝液等を使用
して行えば良い。
物を遊離する様な緩衝液等を添加することで簡便に行う
ことができるという効果も有している。これは、例えば
3M濃度程度のチオシアン酸を添加した緩衝液等を使用
して行えば良い。
(実施例)
以下本発明を更に詳細に説明するたあに実施例を示すが
、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。
、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。
実施例 1
粒径40〜60μmの、アミノ基と結合するN−ヒドロ
キシサクシンイミドエステルを有するポリメタクリレー
ト製ゲル(バイオラッド社製アフィプレップ10(商品
名);以下ゲル1と記載する)及びポリスチレンゲル(
東ソー(株)製;粒径約50μm1以下ゲル2と記載す
る)を担体として、以下の操作により被測定物を認識す
る抗体を担持させた。
キシサクシンイミドエステルを有するポリメタクリレー
ト製ゲル(バイオラッド社製アフィプレップ10(商品
名);以下ゲル1と記載する)及びポリスチレンゲル(
東ソー(株)製;粒径約50μm1以下ゲル2と記載す
る)を担体として、以下の操作により被測定物を認識す
る抗体を担持させた。
まず、両ゲルを1.Omlのゲル容量となるように計り
とり、ゲル1については4℃のA液(塩化ナトリウム5
g/l、リン酸カリウム0゜4g/l、リン酸水素2カ
リウム2.3g/l1、アジ化すトリウム1g/lを含
むpH7,5の水溶液)にて洗浄した後、ミルシュタイ
ンとケーラー (G、Kohlcr、C,Milstc
in、Nature、256巻495頁1975年)の
方法に従って調製された抗ヒトフェリチンマウスモノク
ローナル抗体(IgGクラス)1.0mgを1.Oml
のA液に溶解したものをゲル1に添加して懸濁し、更に
4°Cにて48時間反応させた。
とり、ゲル1については4℃のA液(塩化ナトリウム5
g/l、リン酸カリウム0゜4g/l、リン酸水素2カ
リウム2.3g/l1、アジ化すトリウム1g/lを含
むpH7,5の水溶液)にて洗浄した後、ミルシュタイ
ンとケーラー (G、Kohlcr、C,Milstc
in、Nature、256巻495頁1975年)の
方法に従って調製された抗ヒトフェリチンマウスモノク
ローナル抗体(IgGクラス)1.0mgを1.Oml
のA液に溶解したものをゲル1に添加して懸濁し、更に
4°Cにて48時間反応させた。
ゲル2に対しては、メタノールにて洗浄した後、減圧下
で乾燥させ、1.OmlのA液にて希釈された1、Om
gの前記抗体を添加して懸濁し、更に48時間反応させ
た。
で乾燥させ、1.OmlのA液にて希釈された1、Om
gの前記抗体を添加して懸濁し、更に48時間反応させ
た。
ゲル1及びゲル2の前記懸濁液をA液にて洗浄した後、
重量比0.1%の牛血清アルブミン及び10mMモノエ
タノールアミンを含むA液を添加し、4℃にて24時間
放置してブロッキング処理を行った。
重量比0.1%の牛血清アルブミン及び10mMモノエ
タノールアミンを含むA液を添加し、4℃にて24時間
放置してブロッキング処理を行った。
以上のようにして調製された被測定物(ヒトフェリチン
)認識抗体を担持する担体を、ガラスカラムにそれぞれ
充填し、A液にて洗浄、平衡化した。なお、該カラムの
ベツドボリュームは]−mlである。
)認識抗体を担持する担体を、ガラスカラムにそれぞれ
充填し、A液にて洗浄、平衡化した。なお、該カラムの
ベツドボリュームは]−mlである。
実施例 2
実施例1で調製された2種のカラムに対し、最終的に5
Qng/mlとなるようにヒトフェリチン(サンフレン
ドケミカル社製)を添加した正常牛血清を3mlずつ添
加した。それぞれのカラムからの溶出液をフラクション
コレクターにて1mlずつ分画した。
Qng/mlとなるようにヒトフェリチン(サンフレン
ドケミカル社製)を添加した正常牛血清を3mlずつ添
加した。それぞれのカラムからの溶出液をフラクション
コレクターにて1mlずつ分画した。
なお、以上の操作は4℃条件下にて行い、カラムからの
溶出液の流速は0.02m1/minとした。
溶出液の流速は0.02m1/minとした。
実施例 3
実施例2の操作に引続き、5mlのA液をカラムに添加
して溶出させた。続いてカラムからの流速を0.15m
1/minに変更して実施例2と同様の4mlの試料に
ついて同様の操作を行った。
して溶出させた。続いてカラムからの流速を0.15m
1/minに変更して実施例2と同様の4mlの試料に
ついて同様の操作を行った。
実施例 4
実施例3の操作に引続き5mlのA液をカラムに添加し
て溶出させた。続いてカラムからの流速を1 、 0m
l/rn i nに変更して実施例2と同様の6ml
の試料について同様の操作を行った。
て溶出させた。続いてカラムからの流速を1 、 0m
l/rn i nに変更して実施例2と同様の6ml
の試料について同様の操作を行った。
実施例 5
実施例2〜4で得られた溶出液分画中のヒ!・フェリチ
ン濃度を測定した。
ン濃度を測定した。
ポリスチレン製マイクロタイタープレート(ヌンク社製
、96ウエル)の各ウェルに、実施例1で使用いた抗ヒ
トフェリチンマウスモノクローナル抗体を50mM炭酸
ナトリウム緩衝液(pH9,6)に1.Oμl/mlに
なるように溶解し、100μmずつ分注し、4℃にて2
4時間放置した。
、96ウエル)の各ウェルに、実施例1で使用いた抗ヒ
トフェリチンマウスモノクローナル抗体を50mM炭酸
ナトリウム緩衝液(pH9,6)に1.Oμl/mlに
なるように溶解し、100μmずつ分注し、4℃にて2
4時間放置した。
B液(塩化ナトリウム5g/l、リン酸水素ナトリウム
0.2g/l、リン酸水素2ナトリウム1.15g/L
塩化カリウム0.2g/l、tween−200,5m
l/mlを含むpH7,4の水溶液)にて各ウェルを洗
浄した後、重量比0.1%の牛面清アルブミンを含むB
液を300μmずつ各ウェルに分注し、4°Cにて24
時間放置してブロッキング処理した。
0.2g/l、リン酸水素2ナトリウム1.15g/L
塩化カリウム0.2g/l、tween−200,5m
l/mlを含むpH7,4の水溶液)にて各ウェルを洗
浄した後、重量比0.1%の牛面清アルブミンを含むB
液を300μmずつ各ウェルに分注し、4°Cにて24
時間放置してブロッキング処理した。
ヒトフェリチンをそれぞれ0.1.25.2.5.5.
10,20.40.80.160.320ng/mlと
なるように添加した正常牛血清を100μmずつ各ウェ
ルに添加し、37℃にて2時間反応させた後、B液にて
3回洗浄し、実施例1とは異なる部位でヒトフェリチン
を認識する、西洋ワサビペルオキシダーゼで標識された
マウスモノクローナル抗体を添加し、37℃で更に2時
間反応させた。各ウェルにに100μmの酵素基質(2
,2”−アジノビス(3−エチルベンゾジアゾリン6−
スルホン酸)2アンモニウム及び過酸化水素を含有する
pH4の緩衝液)を分注し、室温にて2時間放置した後
、シュウ酸溶液(pH1)を添加して酵素反応を停止さ
せ、各ウェルの415nmにおける吸光度を測定し、こ
の免疫測定におけるヒトフェリチン濃度と吸光度の関係
を明らかにした。
10,20.40.80.160.320ng/mlと
なるように添加した正常牛血清を100μmずつ各ウェ
ルに添加し、37℃にて2時間反応させた後、B液にて
3回洗浄し、実施例1とは異なる部位でヒトフェリチン
を認識する、西洋ワサビペルオキシダーゼで標識された
マウスモノクローナル抗体を添加し、37℃で更に2時
間反応させた。各ウェルにに100μmの酵素基質(2
,2”−アジノビス(3−エチルベンゾジアゾリン6−
スルホン酸)2アンモニウム及び過酸化水素を含有する
pH4の緩衝液)を分注し、室温にて2時間放置した後
、シュウ酸溶液(pH1)を添加して酵素反応を停止さ
せ、各ウェルの415nmにおける吸光度を測定し、こ
の免疫測定におけるヒトフェリチン濃度と吸光度の関係
を明らかにした。
なお、西洋ワサビペルオキシダーゼ標識抗体は、Nak
ane、P、に、らの方法(J。
ane、P、に、らの方法(J。
11istchcm、Cytochcm、、vol 、
22.1084〜1091頁1974年)に従って調製
した。
22.1084〜1091頁1974年)に従って調製
した。
続いて、実施例2〜4で得られた各分画について同様の
測定を行い、先の結果を標準値として各フラクション中
のヒトフェリチン含有濃度を算出した。これらの結果を
図1に示す。
測定を行い、先の結果を標準値として各フラクション中
のヒトフェリチン含有濃度を算出した。これらの結果を
図1に示す。
各フラクション中のヒトフェリチンはいずれの流速で溶
出を行った場合でも均一に除去されていることが分る。
出を行った場合でも均一に除去されていることが分る。
特に、カラムからの溶出液の流速を0.15m1/mi
n程度以下とした時には、この傾向が明確である。
n程度以下とした時には、この傾向が明確である。
なお、実施例2及び3において、A液を添加した後のフ
ラクションからは、ヒトフェリチンは測定されなかった
。
ラクションからは、ヒトフェリチンは測定されなかった
。
図1は本発明の実施例の結果を示す。図中の黒丸はゲル
1の結果を、白丸はゲル2の結果を示している。 図1−Aは実施例2で得られフラクションについての、
図1−Bは実施例3で得られたフラクションについての
、図1−Cは実施例4で得られたフラクションについて
の、実施例5での結果を示す。 各図において、横軸は実施例2〜4得られたフラクショ
ンの内、平衝化に用いたA液置換に取得されたフラクシ
ョンのNo、を示し、縦軸は各フラクションに含有され
ていたヒトフェリチンの濃度を示す。 特許出願人 東ソー株式会゛社 図1 フラクノヨンN。
1の結果を、白丸はゲル2の結果を示している。 図1−Aは実施例2で得られフラクションについての、
図1−Bは実施例3で得られたフラクションについての
、図1−Cは実施例4で得られたフラクションについて
の、実施例5での結果を示す。 各図において、横軸は実施例2〜4得られたフラクショ
ンの内、平衝化に用いたA液置換に取得されたフラクシ
ョンのNo、を示し、縦軸は各フラクションに含有され
ていたヒトフェリチンの濃度を示す。 特許出願人 東ソー株式会゛社 図1 フラクノヨンN。
Claims (1)
- (1)免疫測定において使用される標準液又は希釈液の
製造方法であって、前記免疫測定において測定されるべ
き被測定物を認識する抗体を吸着したポリスチレン製担
体と試料を接触させた後該試料と担体を分離することを
特徴とする方法
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP9185889A JP2722646B2 (ja) | 1989-04-13 | 1989-04-13 | 標準液又は希釈液の製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP9185889A JP2722646B2 (ja) | 1989-04-13 | 1989-04-13 | 標準液又は希釈液の製造方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH02271255A true JPH02271255A (ja) | 1990-11-06 |
JP2722646B2 JP2722646B2 (ja) | 1998-03-04 |
Family
ID=14038256
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP9185889A Expired - Fee Related JP2722646B2 (ja) | 1989-04-13 | 1989-04-13 | 標準液又は希釈液の製造方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JP2722646B2 (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1307422C (zh) * | 2005-01-31 | 2007-03-28 | 上海市血液中心 | 一种质控品稀释液及其形成的质控品 |
-
1989
- 1989-04-13 JP JP9185889A patent/JP2722646B2/ja not_active Expired - Fee Related
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1307422C (zh) * | 2005-01-31 | 2007-03-28 | 上海市血液中心 | 一种质控品稀释液及其形成的质控品 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JP2722646B2 (ja) | 1998-03-04 |
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |