JPH02196727A - 肝保護作用物質の製造法 - Google Patents
肝保護作用物質の製造法Info
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- JPH02196727A JPH02196727A JP1015750A JP1575089A JPH02196727A JP H02196727 A JPH02196727 A JP H02196727A JP 1015750 A JP1015750 A JP 1015750A JP 1575089 A JP1575089 A JP 1575089A JP H02196727 A JPH02196727 A JP H02196727A
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Landscapes
- Medicines Containing Plant Substances (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、薬用ニンジンまたはその組織培養物から単離
し得る肝保護作用物質の製造法に関する。
し得る肝保護作用物質の製造法に関する。
(従来の技術)
薬用ニンジン、例えば、オタネニンジン(Panaxd
土l■C,A、 Meyer)の根は有用漢方薬として
珍重され広く利用されている。薬用ニンジンの薬効とし
ては、古くから強壮、長生などが言われ、現在では抗疲
労作用、抗ストレス作用、整腸作用、利尿作用、新陳代
謝亢進作用などが知られている。
土l■C,A、 Meyer)の根は有用漢方薬として
珍重され広く利用されている。薬用ニンジンの薬効とし
ては、古くから強壮、長生などが言われ、現在では抗疲
労作用、抗ストレス作用、整腸作用、利尿作用、新陳代
謝亢進作用などが知られている。
この他に肝保護作用についての知見も得られている。
薬用ニンジンの有効成分としては、サポニン。
サボゲニン、ビタミンB群などが知られており。
このうちサポニンは、四塩化炭素、ガラクトサミン、チ
オアセタミドなどの化学物質により引き起こされる肝炎
に有効であることが報告されている。
オアセタミドなどの化学物質により引き起こされる肝炎
に有効であることが報告されている。
このように、薬用人参が肝保護作用を有することは知ら
れているが、サポニン以外の物質で肝保護作用を有する
有効成分については全く知られていない。
れているが、サポニン以外の物質で肝保護作用を有する
有効成分については全く知られていない。
薬用ニンジンを肝炎に有効な漢方製剤に配合した例とし
ては、特公昭57−200312号公報の報告がある。
ては、特公昭57−200312号公報の報告がある。
この公報では薬用ニンジンをジオウ、ブクリヨウ、およ
びその他の生薬と共に混合して加熱し、肝炎に有効な漢
方製剤を製造する方法についての開示があるが、薬用ニ
ンジンの肝炎に対する作用は明確にされていない、さら
に、薬用ニンジンに含有される肝保護作用を有する成分
についても全く開示されていない。
びその他の生薬と共に混合して加熱し、肝炎に有効な漢
方製剤を製造する方法についての開示があるが、薬用ニ
ンジンの肝炎に対する作用は明確にされていない、さら
に、薬用ニンジンに含有される肝保護作用を有する成分
についても全く開示されていない。
(発明が解決しようとする課題)
本発明は上記従来の課題を解決するものであり。
その目的とするところは、薬用ニンジンに含有される非
サポニン性の肝保護作用物質を製造する方法を提供する
ことにある。
サポニン性の肝保護作用物質を製造する方法を提供する
ことにある。
(課題を解決するための手段)
本発明の肝保護作用物質の製造法は、(a)薬用ニンジ
ンもしくはその組織培養物、またはそれらの乾燥物を水
性有機溶媒で抽出する工程;(b)得られた抽出物を有
機溶媒による沈澱処理に供し、上清を採取する工程;お
よび(C)該上清を吸着クロマトグラフィー用担体を充
填したカラムクロマトグラフィーに供し、有機溶媒系の
溶離液にて溶出する工程;を包含し、そのことにより上
記目的が達成される。
ンもしくはその組織培養物、またはそれらの乾燥物を水
性有機溶媒で抽出する工程;(b)得られた抽出物を有
機溶媒による沈澱処理に供し、上清を採取する工程;お
よび(C)該上清を吸着クロマトグラフィー用担体を充
填したカラムクロマトグラフィーに供し、有機溶媒系の
溶離液にて溶出する工程;を包含し、そのことにより上
記目的が達成される。
本発明方法に使用される薬用ニンジンとしては。
オタネニンジン(Pa眩I山MM C,A、間eyer
) 。
) 。
トチバニンジン(h且■ハ肛l陵用C9^、Meyer
) 。
) 。
アメリカニンジン(Panax uin uefol
ius L、 ) 。
ius L、 ) 。
サンシチニンジン(Panax 肱助山μM(Burk
、)F、H,Chen) 、 ヒマラヤニンジン(P
a且鯨邦μ瓜虹註■」Wall、 5ubsp、 hi
malaicus Hara) 、球子ニンジン(h且
■、ム旦」1以住C,A、Meyer var。
、)F、H,Chen) 、 ヒマラヤニンジン(P
a且鯨邦μ瓜虹註■」Wall、 5ubsp、 hi
malaicus Hara) 、球子ニンジン(h且
■、ム旦」1以住C,A、Meyer var。
major (Burk) C,Y、Wu et K、
M、Feng) 、 美状三七(Panax zin
1berenesis C,Y、Wu et K、M、
Feng) 。
M、Feng) 、 美状三七(Panax zin
1berenesis C,Y、Wu et K、M、
Feng) 。
屏辺三七(打■st’ ulea atus Tsai
et Feng)狭葉竹節9 (Panax ム狸皿
匡皿C,^、Meyer var。
et Feng)狭葉竹節9 (Panax ム狸皿
匡皿C,^、Meyer var。
angustifolius (Burk) Chen
g et Chu)などが挙げられる。
g et Chu)などが挙げられる。
本発明方法により非サポニン性の肝保護作用物質を得る
には1例えば、上記薬用ニンジンの根部もしくはその乾
燥物(例えば、白参、紅参などの漢方薬として入手され
得る)が用いられる。薬用ニンジンの組織培養物を使用
することも有効であり、その場合には、該組織培養物は
1通常の方法により調製される1例えば、上記薬用ニン
ジンの組織の一部を、植物ホルモンを含む固体培地上で
無菌的に培養してカルスを発生させ、このカルスを液体
もしくは固体培地上で培養することにより調製される。
には1例えば、上記薬用ニンジンの根部もしくはその乾
燥物(例えば、白参、紅参などの漢方薬として入手され
得る)が用いられる。薬用ニンジンの組織培養物を使用
することも有効であり、その場合には、該組織培養物は
1通常の方法により調製される1例えば、上記薬用ニン
ジンの組織の一部を、植物ホルモンを含む固体培地上で
無菌的に培養してカルスを発生させ、このカルスを液体
もしくは固体培地上で培養することにより調製される。
特にオタネニンジンの組織培養物が好適に使用される。
本発明方法により肝保護作用物質が、上記薬用ニンジン
またはその組織培養物から1例えば1次の方法により単
離される。まず、薬用ニンジンまたはその組織培養物を
必要に応じて乾燥する。これを水性有機溶媒で抽出する
。水性有機溶媒としてはエタノール、メタノール、アセ
トンなどの水溶性有機溶媒の少なくとも一種を含有する
水溶液が用いられる。水性有機溶媒中の該水溶性有機溶
媒の濃度は、JJX料の種類などによって異なるが。
またはその組織培養物から1例えば1次の方法により単
離される。まず、薬用ニンジンまたはその組織培養物を
必要に応じて乾燥する。これを水性有機溶媒で抽出する
。水性有機溶媒としてはエタノール、メタノール、アセ
トンなどの水溶性有機溶媒の少なくとも一種を含有する
水溶液が用いられる。水性有機溶媒中の該水溶性有機溶
媒の濃度は、JJX料の種類などによって異なるが。
約50%から約90%とされる。抽出時に加温したり。
被抽出物である薬用ニンジンやその組織培養物を粉砕す
ると抽出が促進されるため好ましい、抽出時の加温は、
80℃を越えない温度範囲内で行うのが好ましい。
ると抽出が促進されるため好ましい、抽出時の加温は、
80℃を越えない温度範囲内で行うのが好ましい。
次いで、上記抽出液をデ過し、減圧濃縮する。
この濃縮液を水に懸濁した後に有機溶媒を加えて沈澱処
理し、上清液を採取する。この沈澱処理により、多糖類
、ポリペプチドなどの高分子化合物が沈澱し、除去され
る。この沈澱処理に用いられる有機溶媒としては、エタ
ノール、メタノール。
理し、上清液を採取する。この沈澱処理により、多糖類
、ポリペプチドなどの高分子化合物が沈澱し、除去され
る。この沈澱処理に用いられる有機溶媒としては、エタ
ノール、メタノール。
アセトンなどの水溶性有機溶媒が挙げられる。上清液は
必要に応じて一過し、減圧濃縮し、これを吸着クロマト
グラフィー用担体を充填したカラムにかけて分画する。
必要に応じて一過し、減圧濃縮し、これを吸着クロマト
グラフィー用担体を充填したカラムにかけて分画する。
吸着クロマトグラフィー用担体としては1例えば、セラ
イト、シリカゲルなどが用いられる。溶離液としては、
クロロホルム。
イト、シリカゲルなどが用いられる。溶離液としては、
クロロホルム。
ヘキサンおよびベンゼンでなる群から選択される少なく
とも一種と、メタノール、酢酸エチルおよびアセトンで
なる群から選択される少なくとも一種との混液である混
合系有機溶媒が用いられる。
とも一種と、メタノール、酢酸エチルおよびアセトンで
なる群から選択される少なくとも一種との混液である混
合系有機溶媒が用いられる。
例えば、ヘキサン、クロロホルム、クロロホルム−メタ
ノール(4: 1)混液およびメタノールを順次用いて
溶出することにより、肝保護作用物質がクロロホルム−
メタノール(4: 1)画分に溶出される。この画分を
減圧濃縮し、薄層クロマトグラフィーにより確認すると
、サポニンとは異なる位置にスポットが認められ、非サ
ポニン性の物質であることが確認される。
ノール(4: 1)混液およびメタノールを順次用いて
溶出することにより、肝保護作用物質がクロロホルム−
メタノール(4: 1)画分に溶出される。この画分を
減圧濃縮し、薄層クロマトグラフィーにより確認すると
、サポニンとは異なる位置にスポットが認められ、非サ
ポニン性の物質であることが確認される。
このようにして得られた非サポニン性物質は。
後述の実施例に示すように、肝保護作用についての検定
を行うと優れた肝保護作用を有することが判明した。−
最に、薬用ニンジンを単に水性有機溶媒で抽出したエキ
スには、低極性画分中に細胞毒性を示す物質が含有され
ているということが知られているが、上記クロマトグラ
フィーにより該物質はヘキサン画分に溶出され、除去さ
れる。そのため、単に水性溶媒で抽出したエキスに比べ
て。
を行うと優れた肝保護作用を有することが判明した。−
最に、薬用ニンジンを単に水性有機溶媒で抽出したエキ
スには、低極性画分中に細胞毒性を示す物質が含有され
ているということが知られているが、上記クロマトグラ
フィーにより該物質はヘキサン画分に溶出され、除去さ
れる。そのため、単に水性溶媒で抽出したエキスに比べ
て。
より効果的に肝保護作用を示す物質が得られる。
従って、この非サポニン性物質を用いて、効果的な肝保
護作用を有する薬剤組成物が提供される。
護作用を有する薬剤組成物が提供される。
このような薬剤組成物は内服薬としても注射剤としても
投与が可能である。
投与が可能である。
(実施例)
本発明を以下の実施例につき説明する。
夾旌■]
(A)肝保護作用を有する非サポニン成分の単離オタネ
ニンジン(Panax C■1MC,A、 Meyer
)の根から得た組織の一部を、植物ホルモンを含む寒
天培地で無菌的に培養してカルスを発生させ。
ニンジン(Panax C■1MC,A、 Meyer
)の根から得た組織の一部を、植物ホルモンを含む寒
天培地で無菌的に培養してカルスを発生させ。
このカルスの液体培養を行なった。得られたカルス(組
織培養物)を乾燥し、 40kgの乾燥カルスを得た。
織培養物)を乾燥し、 40kgの乾燥カルスを得た。
この乾燥カルスに50%エタノール水溶液720 を
加え、70℃にて1時間加熱・抽出し、抽出液を一過し
た。濾過残滓にさらに50%エタノール水溶液720
を加え、上記と同様の加熱・抽出および濾過操作を繰
り返した。得られたP液を先のr液と合わせ、減圧濃縮
して7480 gの抽出物を得た。この抽出物935g
を5倍量の水に懸濁し、この懸濁液の5倍量のエタノー
ルを加えて一晩放置した。析出した沈澱物を濾過により
除去し、上清液を減圧濃縮した。得られた減圧濃縮物を
、その重量の1.5倍量のセライトに吸着させ、該セラ
イトの10倍量のセライトとともにカラムに充填し、カ
ラムクロマトグラフィーを行った。溶離液としてカラム
充填物容量の3倍量のヘキサン、クロロホルムおよびク
ロロホルム−メタノール(4: 1)に次いで、5倍量
のメタノールを順次カラムに流すことにより、溶出を行
った。このうち、クロロホルム−メタノール(4: 1
)により溶出された両分を減圧濃縮し、57gの濃縮物
を得た。この濃縮物は下記の検定により、肝保護作用を
有することが明らかとなった。さらに、この濃縮物を薄
層クロマトグラフィーにより確認すると、サポニンとは
異なる位置にスポットが認められ、非サポニン性の物質
であることが判明した。
加え、70℃にて1時間加熱・抽出し、抽出液を一過し
た。濾過残滓にさらに50%エタノール水溶液720
を加え、上記と同様の加熱・抽出および濾過操作を繰
り返した。得られたP液を先のr液と合わせ、減圧濃縮
して7480 gの抽出物を得た。この抽出物935g
を5倍量の水に懸濁し、この懸濁液の5倍量のエタノー
ルを加えて一晩放置した。析出した沈澱物を濾過により
除去し、上清液を減圧濃縮した。得られた減圧濃縮物を
、その重量の1.5倍量のセライトに吸着させ、該セラ
イトの10倍量のセライトとともにカラムに充填し、カ
ラムクロマトグラフィーを行った。溶離液としてカラム
充填物容量の3倍量のヘキサン、クロロホルムおよびク
ロロホルム−メタノール(4: 1)に次いで、5倍量
のメタノールを順次カラムに流すことにより、溶出を行
った。このうち、クロロホルム−メタノール(4: 1
)により溶出された両分を減圧濃縮し、57gの濃縮物
を得た。この濃縮物は下記の検定により、肝保護作用を
有することが明らかとなった。さらに、この濃縮物を薄
層クロマトグラフィーにより確認すると、サポニンとは
異なる位置にスポットが認められ、非サポニン性の物質
であることが判明した。
(B)肝保護作用の検定
肝保護作用の検定は、マウス初代培養細胞を用いた補体
介在性肝障害試験(木曽良信ら、 PlantaMed
、、 241.1987)に準じて、以下のようにして
行った。
介在性肝障害試験(木曽良信ら、 PlantaMed
、、 241.1987)に準じて、以下のようにして
行った。
■肝特異的抗原(tsp )の調製
肝特異的抗原(LSP)の調製は、 McFarlan
eらの方法(CIin、 Exp、 Immunol、
、 ’lj−,38H1977))に従って行った。ま
ず、 C57BL16マウスを脱血した後に肝臓を摘
出し、水冷しな0.25Mシュークロース液(PH8,
0)を加えてホモジナイズすることにより50%ホモジ
ネートを調製した。これを4℃にて105,000g、
60分間遠心分離し、得られた上滑20m1を 5e
phadex G−100カラム(900mm内径X2
5+++m)にかけた、 ld EDTAを含有する0
、1Mトリス塩酸緩衝液(pH8,0>で溶出し、10
1ずつ分取して波長280rv4こおける吸光度を測定
した。最初の吸光度ピーク画分(タンパク画分)をAm
1con pH−30膜を用いて201に濃縮し、 5
epharose 6Bカラム(900mm内径X25
mn+)にかけた、上記と同様のトリス塩酸緩衝液を用
いて10slずつ分画し、 280nmにおける最初の
吸光度ピーク画分(タンパク画分)をLSP画分とした
。
eらの方法(CIin、 Exp、 Immunol、
、 ’lj−,38H1977))に従って行った。ま
ず、 C57BL16マウスを脱血した後に肝臓を摘
出し、水冷しな0.25Mシュークロース液(PH8,
0)を加えてホモジナイズすることにより50%ホモジ
ネートを調製した。これを4℃にて105,000g、
60分間遠心分離し、得られた上滑20m1を 5e
phadex G−100カラム(900mm内径X2
5+++m)にかけた、 ld EDTAを含有する0
、1Mトリス塩酸緩衝液(pH8,0>で溶出し、10
1ずつ分取して波長280rv4こおける吸光度を測定
した。最初の吸光度ピーク画分(タンパク画分)をAm
1con pH−30膜を用いて201に濃縮し、 5
epharose 6Bカラム(900mm内径X25
mn+)にかけた、上記と同様のトリス塩酸緩衝液を用
いて10slずつ分画し、 280nmにおける最初の
吸光度ピーク画分(タンパク画分)をLSP画分とした
。
■抗旦」【la皿l
上記0項で調製したLSP画分5Bを等量のフロイント
完全アジュバント(FC^)に懸濁した。この懸濁液を
NZW系ウサギの背部に皮下投与して初回免疫し、その
3〜4週間後にLSP画分のみ5mgを皮下投与して追
加免疫した。その後、免疫二重拡散法により血中の抗L
SP抗体を測定し、該抗体が検出されるまでLSP画分
で適宜追加免疫を行った。血中に抗LSP抗体が検出さ
れたウサギについては頚動脈から全採血を行い、この血
液を0℃にて一晩放置した後に3.000rpm、 2
0分間遠心分離し、抗LSP血清を得た。抗LSP血清
の力価を酵素抗体法により測定すると約6.400倍(
6,400倍希釈まで検出可能)であった、この抗LS
P血清を56℃にて30分間インキュベートし、血清中
の補体を不活性化した非働化抗LSP血清を調製した。
完全アジュバント(FC^)に懸濁した。この懸濁液を
NZW系ウサギの背部に皮下投与して初回免疫し、その
3〜4週間後にLSP画分のみ5mgを皮下投与して追
加免疫した。その後、免疫二重拡散法により血中の抗L
SP抗体を測定し、該抗体が検出されるまでLSP画分
で適宜追加免疫を行った。血中に抗LSP抗体が検出さ
れたウサギについては頚動脈から全採血を行い、この血
液を0℃にて一晩放置した後に3.000rpm、 2
0分間遠心分離し、抗LSP血清を得た。抗LSP血清
の力価を酵素抗体法により測定すると約6.400倍(
6,400倍希釈まで検出可能)であった、この抗LS
P血清を56℃にて30分間インキュベートし、血清中
の補体を不活性化した非働化抗LSP血清を調製した。
■標的細胞の調製
C57BL16マウスの肝細胞をSeglenらの方法
(Methods Ce1l Biol、、 u、 2
9 (1976))に準じて単離した。これを10%ウ
シ胎児血清を含有するEagleMEN培地に5 X
10膜個細胞/■lの濃度で浮遊させ。
(Methods Ce1l Biol、、 u、 2
9 (1976))に準じて単離した。これを10%ウ
シ胎児血清を含有するEagleMEN培地に5 X
10膜個細胞/■lの濃度で浮遊させ。
96ウエルのマイクロタイタープレートに65μlずつ
播いて37℃にて3時間培養した。このマウス初代培養
肝細胞を標的細胞として以下の実験に用いた。
播いて37℃にて3時間培養した。このマウス初代培養
肝細胞を標的細胞として以下の実験に用いた。
■肝細胞障害抑制作用の測定
上記0項で調製した標的細胞を、上記0項で調製した非
働化抗LSP血清0.5%およびモルモットの補体20
%を含有する培地100m1に移して37℃にて2時間
培養し、該細胞に細胞障害反応を惹起させた。細胞障害
の度合の測定は、標的細胞である肝細胞中に存在する酵
素GPTの培地への漏出活性を。
働化抗LSP血清0.5%およびモルモットの補体20
%を含有する培地100m1に移して37℃にて2時間
培養し、該細胞に細胞障害反応を惹起させた。細胞障害
の度合の測定は、標的細胞である肝細胞中に存在する酵
素GPTの培地への漏出活性を。
自動分析器を用いて測定することにより行った。
上記条件下において培地中に検出されるGPT活性を対
照とし、細胞障害100%とした。
照とし、細胞障害100%とした。
次いで、上記(A)項で調製した非サポニン性画分の濃
縮物を用いて肝細胞障害抑制作用について調べた。比較
のために、既知の肝保護物質であるグリチルリチンにつ
いても同様に試験した。まず。
縮物を用いて肝細胞障害抑制作用について調べた。比較
のために、既知の肝保護物質であるグリチルリチンにつ
いても同様に試験した。まず。
非サポニン性画分の濃縮物またはグリチルリチンを、ジ
メチルスルホキシド(DMSO)に1100I1/ml
の濃度となるように溶解し、上記と同様の非働化抗LS
P血清0.5%およびモルモットの補体20%を含有す
る培地に1.000μg/mlとなるように添加した。
メチルスルホキシド(DMSO)に1100I1/ml
の濃度となるように溶解し、上記と同様の非働化抗LS
P血清0.5%およびモルモットの補体20%を含有す
る培地に1.000μg/mlとなるように添加した。
このようにして調製した培地100μlに上記0項で調
製した標的細胞を移し、37℃にて2時間培養した後、
培地中のGPT活性を測定した。結果を以下の表1に示
す、対照のGPT活性と比較した結果は。
製した標的細胞を移し、37℃にて2時間培養した後、
培地中のGPT活性を測定した。結果を以下の表1に示
す、対照のGPT活性と比較した結果は。
グリチルリチンで51±3%、そして非サポニン性画分
の濃縮物で55±2%であった。このことから。
の濃縮物で55±2%であった。このことから。
非サポニン性画分の濃縮物はグリチルリチンと同程度に
、肝細胞が障害を受けるのを抑制する作用を有すること
が明らかである。
、肝細胞が障害を受けるのを抑制する作用を有すること
が明らかである。
表!
試 料 使用濃度 肝細胞障害(μg/璽
l培地) (%) 対照 0100±2非サポニン性 成分濃縮物 1.000 55±2゜グ
リチルリチン 1.000 51±3゜(
発明の効果) 本発明によれば、このように、薬用ニンジンおよび/ま
たはその組織培養物から肝保護作用を有する新規の非サ
ポニン性成分を容易に単離する方法が提供される0本発
明方法により得られる肝保護作用物質は1例えば、肝炎
の予防薬または治療薬として広く利用され得る。
l培地) (%) 対照 0100±2非サポニン性 成分濃縮物 1.000 55±2゜グ
リチルリチン 1.000 51±3゜(
発明の効果) 本発明によれば、このように、薬用ニンジンおよび/ま
たはその組織培養物から肝保護作用を有する新規の非サ
ポニン性成分を容易に単離する方法が提供される0本発
明方法により得られる肝保護作用物質は1例えば、肝炎
の予防薬または治療薬として広く利用され得る。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、(a)薬用エンジンもしくはその組織培養物、また
はそれらの乾燥物を水性有機溶媒で抽出する工程; (b)得られた抽出物を有機溶媒による沈澱処理に供し
、上清を採取する工程;および (c)該上清を吸着クロマトグラフィー用担体を充填し
たカラムクロマトグラフィーに供し、有機溶媒系の溶離
液にて溶出する工程; を包含する、肝保護作用物質の製造法。 2、前記薬用エンジンがオタネニンジン(¥Panax
¥ginseng¥C.A.Meyer)、トチバニン
ジン(¥Panax¥¥japonicus¥C.A.
Meyer)、アメリカニンジン(¥Panax¥¥q
uinquefolium¥L.)、サンシチニンジン
(¥Panax¥¥notoginseng¥(Bur
k.)F.H.Chen)、ヒマラヤニンジン(¥Pa
nax¥¥pseudo−ginseng¥Wall.
subsp.himalaicusHara)、珠子エ
ンジン(¥Panax¥¥japonicus¥C.A
.Meyervar.major(Burk)C.Y.
WuetK.M.Feng)、姜状三七(¥Panax
¥¥zingibere−¥¥nesis¥C.Y.W
uetK.M.Feng)、屏辺三七(¥Panax¥
¥stipuleanatus¥TsaietFeng
)および狭葉竹節参(¥Panax¥¥japonic
us¥C.A.Meyervar.angustifo
lius(Burk)ChengetChu)でなる群
から選択される、請求項1に記載の製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1015750A JPH02196727A (ja) | 1989-01-24 | 1989-01-24 | 肝保護作用物質の製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1015750A JPH02196727A (ja) | 1989-01-24 | 1989-01-24 | 肝保護作用物質の製造法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH02196727A true JPH02196727A (ja) | 1990-08-03 |
Family
ID=11897447
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP1015750A Pending JPH02196727A (ja) | 1989-01-24 | 1989-01-24 | 肝保護作用物質の製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH02196727A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2000143526A (ja) * | 1998-11-13 | 2000-05-23 | Asuke Yakuhin Kk | 田七人参、霊芝、アガリクス茸を主成分とする糖尿・高血圧・肝機能改善剤およびこれの製造方法 |
-
1989
- 1989-01-24 JP JP1015750A patent/JPH02196727A/ja active Pending
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2000143526A (ja) * | 1998-11-13 | 2000-05-23 | Asuke Yakuhin Kk | 田七人参、霊芝、アガリクス茸を主成分とする糖尿・高血圧・肝機能改善剤およびこれの製造方法 |
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