JPH02151765A - 固相免疫検定用哺乳類細胞の乾燥法及びその物品 - Google Patents
固相免疫検定用哺乳類細胞の乾燥法及びその物品Info
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Abstract
め要約のデータは記録されません。
Description
に使用する固相支持体に吸着ぜれる哺乳類細胞を乾爆す
る方法および固体支持体を組み込んだ物品に関する。
に行える高感度で特異の免役検定法を提供するために開
発されてきた。固相検定法において、抗原または抗体の
ような免疫反応の一成分は固相支持体の表面に固定化さ
れる。抗体または抗原は技術的に周知の1−IB−の方
法によって固相支持体上に直接固定化される。抗原や抗
体の外に、赤血球、白血球、リンパ球、血小板筐たは他
の哺乳類細胞のような細胞は全て、かかる細胞に特定の
免疫検定を行うために固相支持体の表面へ固定化するこ
とができる。こハらの種類の細胞の各々は分析せんとす
る生物流体試料中の抗体を検出するために使用すること
ができる抗原をその細胞表面に提供する。特定の抗原ま
たは抗体は別の形式の免疫検定法のために細胞の表面に
吸着させることできる。従って、前記型式の細胞を含む
免疫検定法は、血液群および感染性病原体、特に血液の
細胞成分に直接作用するものの検定法において抗原また
は抗体の存在を決定するために開発されてきた・ 全細胞が固相免疫法に利用されるとき、こハらの細胞を
固相支持体へ固定化するために用いる現在の方法は細胞
の表面上の官能基を固相支持体の表面上の官能基へ矯か
けづせる化学剤を使用する。
ドおよびジメチル・スペルイミダーテである。
使用に伴う第1の問題点は、化学剤は細胞を支持体へ固
定化するが、それらはまた抗原活性に対して責任のある
反応性基のいくつか全ブロックすることである。細胞の
表面に見られる抗原子が極めて複雑で多数あるために、
細胞膜の抗原性に影響を与えない単一の化学槁かは剤は
見出さf″1ていない。単一または少しの抗原決定子の
みを保持すればよい場合の免疫検定においては、化学椙
かけ剤は有効に利用することができる。しかしながら、
患者の血清中の不規則抗体を検出するために用いる赤血
球単分子層を利用する検定の場合のように、抗原決定子
の全てを保持しなければ・ならない場合には、それらは
潜在的反応性基のいくつかをブロックする□ また、全11i乳類細胞は細胞から水を抜き取る化学剤
によって固定化することもできる。細胞から水を抜き取
る、または細胞内の水を置換する典型的な化学剤はメタ
ノール、アセトンおよびジメチル・スルホキシドである
。メタノールおよびアセトンは顕倣夜模食用絹織切片を
固定するために使用されてきたが、それらは細胞、特に
赤血球の表面上の抗原を破壊する傾向にあるために赤血
球。
することができない。メタノールおよびアセトンのよう
な化学剤に伴う別の問題点は、危険な廃棄物処理の必要
条件−それらの蒸気が研究室に漏れた場合の可燃性およ
び毒性を伴う間浄である。細胞内の水と置換するジメチ
ル・スルホキシド、糖およびアミノ酸のような剤は懸濁
細胞の保存用にも使用されてきたが、これらの細胞は凍
結して貯蔵すると共に使用前に洗浄しなげねばならない
。
ル中に細胞膜を破壊し、従って細胞をロスする開−があ
ることである。細胞の凍結を含む方法に伴う別の間馳は
凍結器のコスト、研究室スペースの損失および使用前の
細胞の解凍および洗浄をしなければならない不便さであ
る。
おいては、哺乳類7則胞の単分子層を乾燥または免疫検
定用の固相支持体へ固定化する方法の必要がある。
な抗原性を維持すると共に、乾燥した細胞の単層を有す
る固相支持体を室温で貯蔵して氷点下の温度における貯
蔵の開動を回避するように。
哺乳類細胞の単層を乾燥する方法を提供することにある
。
Iiにおいて少なくとも6ケ月貯蔵することができると
共に高感度で免役検定を行うことができるところの固相
免疫検定法に使用する物品を提供することにある。
すことによって免疫検定に含まれるコストを下げるとこ
ろの免疫検定法に使用する固相支持体上に吸着された哺
乳類細胞の単層を乾燥する方法を提供することにある。
、かつ分析の性能を妨害しないところの免疫検定法に使
用する固体支持体上に吸M芒れた哺乳類細胞の単層を乾
燥する方法を提供することにある。
ところの免疫検定法に使用する固相支持体上の赤血球、
リンパ球、白血球および血小板のような哺乳類細胞の単
層を乾燥する方法を提供することである。
となるであろう。
含有する適当な低張性の塩溶液を使用して、細胞の完全
な抗原活性を維持しなから固相支持体上に固定化した赤
血球、白血球、リンパ球および血小板の単層を保存でき
ることを見出した。
余り失うことなく室温で少なくとも6ケ月貯蔵すること
ができるゆ主題の細胞を固相支持体へ固定化する好適な
方法は正味正電荷を有する有機染料で前もって染色した
固体支持体へ#Iff、=lを吸着させる方法である。
リトールの望捷しい濃度範囲は、0.1〜5.0モル/
lである。乾燥用m液における塩の望ましい範囲は50
〜377ミリモル/jである。
リウムおよびリン酸ナトリウムのような他の塩類も同一
の効果および適当さをもって利用できる。いずれの単糖
類、二糖知、三糖類またはシクリトールも利用できるが
、好適な物質はデキストロースまたはD l−1グルコ
ースである。そして望ましい乾燥用溶液はLOモル/j
のデキストロースと15キミリモル/lのNaCJから
なる。
利用する。その支持体はしばしば試験管。
・フレートの形をとる。本発明の目的全実施するのに他
の型式の支持体または支持体の形も有用であって、同様
に適用できる。
またはナイロンのような有機重合体製にすることができ
る。さらに、哺乳類細胞の単J曽を結合することができ
る材料1例えばガラスも同様に適用することができる。
ぼみを有するミクロタイター・プレートである。そのミ
クロタイター・プレートは有機重合体から成ることが望
ましく、最適にはポリスチレン製である。
類細胞の完全な抗原性をそのままにして置くように固相
支持体表面へ吸着させることが望ましい。これは有機染
料を有機重合体の表面へ吸着させることによって最適に
達成される。各々が正味負の表面電荷を帯びるヒトの赤
血球、リンパ球、白血球または血小板を固定化づせるた
めに。
と物理的に接触しているとき、細胞は非イオン結合、水
素結合、ファンデルワールス力および疎水性力のような
非結合相互作用によって染料へ吸着されることによって
固定化でれることになる。このように、被固定化細胞の
単層が得られ、続いて非結合細胞が洗い落される。次に
その細胞の単層は、固相赤血球付着のように免疫検定に
使用して、固定化された細胞の表面上に見られる抗原に
対する抗体の検出をする。生物試験溶液中の特定の抗原
を検出するために、細胞単層の上へ特定の抗体を吸着さ
せることもできる。
った染料は正味正電荷を有しかつ疎水性芳香族環構造を
有する有機染料である。かかる正味正電荷を有し固相支
持体へ付滑する疎水性芳香族環構造金有する染料は全て
赤血球、リンパ球。
とがわかった。適用できる特定の染料および該染料を固
相支持体へ吸着させる方法は、 1988年7月5日
付は米国特許第215.0111、発明の名称: An
Article for PerformingIm
munological As5ays Utiliz
ing OrganicDyes and Metho
d for Producing Utilizing
Same) において検討されている。
よびアルシアン・イエローであることがワカった。アル
シアン・ブルーはフタロシアニンでありアルシアン・イ
エローはアゾ染料であり、それぞれ正味正電荷ヲ1する
。使用可能である正味正電荷を有する他の染料はジアゾ
染料、ポリアゾ染料、゛ジアゾニウムおよびテトラゾニ
ウム塩類。
またはアクリジン、キノリン染料、チアゾール、インダ
ミン、アジン、アミノアジン、サフロニン、チアジンお
よびフタビシアニンを含む・アルシアン・ブルーを使用
する場合には、それを最初に等張塩類溶液に1μII/
nl〜1 tz / extの濃度で溶解させる。望ま
しい濃度はO,l ml/ / Nであって、固相支持
体を完全に覆うべくその有機重合体の支持体に50〜2
50μ!を冷布する。その染料は固相支持体に十分な接
触をさせたま\にした後、過剰の染料を洗い落す。大部
分の染料に必要な接触時間は即時接触でよいが、他の染
料のあるものには染料を固相支持体へ吸着きせるために
長時間を必要とする。アルシアン・ブルーを使用する場
合には、それは水溶液に可溶性でないから100%メタ
ノールの十分な量に溶解させなければならない。次に等
体積の等張塩類溶液を溶解したアルシアン・イエローに
添加して1μy/ml〜1y/mξ最適にはO,l 1
19 / 111の最終濃度範囲にする。再び50〜2
50μlのアルシアン・イエロー溶液を固相支持体、望
ましくはミクロタイター・プレートに塗布して、固相支
持体上に染料を吸着させる。
細胞の単層を作るために、固定化させる細胞は最初汚染
するタンパク質を含まないように洗浄しなけtばならな
い。赤血球に適当な洗浄溶液は等張塩類溶液、試薬赤血
球希釈剤(Immucor社製品)、またはリン酸塩緩
衝化塩類溶液(pH)である。血小板には、オルシーパ
ー溶液または改良オルシーバー溶液、或いは血小板洗浄
および貯蔵溶液(Immucor社製品)を使用するこ
とができる。
ら得られる。#1胞を洗浄後、典型的にそれらは等張塩
類溶液に懸濁させる。本発明の目的のための懸濁液中の
細胞の濃度は0.1〜0.11%(v/v)である。最
も有用な範囲は0.1%〜0.2%(V/V )の範囲
内である。
して、細胞を沈降させる。または遠心分離さすことによ
って染料と接触させる。適当な期間、細胞を有機染料と
結合させた後、過剰の細胞溶液をデカントして、染料を
塗布した固相支持体へ固定化しfc細胞の単層を後に残
す。遠心分離法を用いる場合には、典型的に1〜5分を
必要とし。
を要する。血小板のような小細砲金使用するときには、
完全接触と細胞の均一単層の形成を確実にするためには
それらを1晩沈降づせることが最良である。
発明の乾燥用溶液を利用して細胞を乾燥または固相支持
体へ固定化させる。赤血球を細胞の単層として利用する
とき、乾燥用溶液の添加前に単層からなる細胞全適当な
溶解溶液で溶解させることによって、さらに良好な結果
が得られることがわかった。血小板、リンパ球および白
血球に対しては、その溶解工程は必要ない。
びシフIJ )−ルから成る群から選んだ糖を含有する
水溶液から成る。本発明に有用な単糖類、三糖類、三糖
類せたはシクリトールはD−(剖ラフィノース、L−(
−)ソルボース、D−(−H)レバロース、D−(+1
キシロース、D−(−1グルコース、D−(−1ソルビ
トール、スクロース、L−(+1アラビノース、D−(
−1セロビノース、D−(−1フルクトース−D−(+
lガラクトース、ミローイソシトール(シクリトール)
、α−ラクトース、D−(+lリキオース、マルトース
およびD−(+1マンノースから成る群から選ぶことが
できる。さらに詳しくは。
スクロース、D−(−1ソルビトール ース,ミオーイソシトールーD−(+1セロビオースお
よヒL−(−1ソルボースである。上記群からの最適の
糖はデキストロースまたはD−(−1グルコース(これ
はFisherによれば化学式C6H1□06・H2O
を有する)である。上記の対応する鏡像体糖類も利用で
きると考えられる。乾燥用溶液は単糖類、三糖類,三糖
類またはシクリトールの濃度0. 1〜5、0モル/j
を有するように調製嘔れる。最適濃度はLOMのテキス
トロースであって,この濃度は赤血球および血小板細胞
の単層で最良に作用するO 本発明に有用な塩類は塩化ナトリウム(NaC!j)。
る群からのものを含む。乾燥用溶液中の塩の望ましい濃
度範囲は50ミリモル/!〜5 7 7 ミIJモル/
jである。望ましい塩は151imMの濃度で乾燥用溶
液に存在する塩化ナトリウムである。
ク質を回避するためにきれいなガラス器具中において蒸
留水または脱イオン水で調製する。
に望ましくは凹所(くぼみ)を有するミクロタイター・
プレートのような細胞単層を含む固相支持体の表面へ添
加する。ミクロタイター・プレートの凹所を被覆するた
めに添加する必要のある乾燥用溶液の体積は細胞単層を
完全に被覆するのに十分なものでなければならない,2
5〜150μlが十分な量であるが、100μノが好適
な量である。乾燥用溶液を細胞単層上に装置する最適時
間および最適渇置扁度は試験する細胞単層の種類毎に決
める必要がある。最適の時間および瀧置渇度を決定する
ために利用できる1つの方法は。
液を各凹所へ添加し,接触直後から11時間までの腐I
Mに至るデカンティングの範囲内の時間間隔でそれらの
井戸状凹所を検定のために除去ζせることである。他の
全てのパラメーターが一定に維持できるならば、検定結
果の評価が最適の結果を得るのに必要な最適の温置峙間
を与える。同様の試験を高度のみを変えて行うことがで
きる。
血球の単層に深加するのに最適の温置時間および温度は
、室温で乾燥用溶液の即時の添加およびデカンティング
である。乾燥用溶液は流しの上へのフリツキングまたは
真空吸引によって細胞の単層から最良に除去される。乾
燥用溶液を除去する他の方法も同様に適用できる。
乾燥剤を備えた基パウチまたはパケットに入れて、密封
する。パウチは極少または全く水を透過しないようにし
、試験管またはミクロタイター・プレート内の水は全て
乾燥剤によって吸着させなければならない。この目的に
望ましい乾燥材料は工業的に尚知の供給源から得られる
分子ふるい乾燥剤である。けい藻土およびシリカ粒子の
ような他の乾燥材料や真空乾燥も使用できるが。
在する量より多い水量を吸収する容量を有する前である
。容量が21の分子ふるい乾燥剤を使用する場合には、
2〜3の該パケットの添加で十分である。密封パウチ内
の乾燥剤による固相支持体上の水の吸収に必要な高度お
よび時間の許容範囲は2〜8℃の温度において3〜8日
、最適には5〜7日であることがわかった。ヒトの赤血
球。
8℃において7日である。この吸収期間を過ぎた後、密
封固相支持体は室温または室温以下の温度で検定の精度
または効率2下げることなく少、なくとも6ケ月間貯蔵
することができる。
るために乾燥溶液の添加前に赤血球単層を溶解すること
が望ましい。こハは、乾燥溶液を細胞の内部へよりアク
セスさせることによって乾燥処理を助ける。溶解溶液は
脱イオン水の溶液から120 mM Nap/塩溶液に
選ぶことができる。
きる。最適の溶解溶液は80 mMのNa0jである。
の細胞溶液をデカントし、溶解溶液を細胞単層へ直接添
加して、1〜30分間潟置さ装る。高置時間は赤血球の
場合1分であることがわかった。溶解溶液をデカントし
て、品物を等張溶液で2回洗浄する。次に乾燥用溶液を
前述のように添加する。
リス(ヒドロキシメチル)アミノメタン(TRIS)お
よび組織培地のようなNaC1以外の塩溶液も溶解溶液
用に使用できる。
を使用するために、パウチを開けて、試験する生物流体
を試験管またはミクロタイター・プレートの井戸状凹所
へ添加する。典型的に生物流体はヒトの血清又は血漿で
ある。低イオン強度の添加物1例えば、約19#/jの
グリシン溶液全この時点でその凹所に添加する。そのグ
リシン溶液はさらにチメロサールのような保存剤と染料
を含有することができる。適当な温画期間の後に、試験
管またはミクロタイター・プレートの凹所を洗浄して未
結合の血漿または血清成分を除去する。
射線免疫検定法、酵素結合免疫吸収剤検定法(gL I
5A)−免疫検定法または固相赤血球粘着法のような
多数の既知方法によって検出される。
またはヒトの血小板へ向けられた予測づれない抗体の検
出をする抗体スクリーニング、種々の既知抗原パターン
を有する赤血球または血小板のパネルを使用することに
よって生物試料中の抗体の同一性を決定する抗体スクリ
ーニング、逆ABOグループ分け、正ABOグループ分
け、D−型決定、赤血球表現型決定および哺乳類の組織
細胞に向けられた抗体の検出法を含む広範囲の免疫検定
法に用途を有する。
定する性格を有するものではない。
されない抗体を検出する免疫検定を行うために、複数の
井戸状凹所を備えたミクロタイター・プレートを最初に
全ての凹所がアルシアン・イエロー溶液で檀われるよう
にアルシアン・イエローの十分な量で0.1 xg /
mlの濃度において処理する。アルシアン・イエロー
溶液をミクロタイター・プレートと約う0分間接触させ
た1ままして、過剰の染料溶液を除去する。それぞれの
井戸状凹所当り塩溶液または試薬赤血球希釈液中にヒト
のRBOの0.2%(v/v)懸濁液100μ!を添加
することによって染色されたプレート上にヒトの赤血球
の単層が形成される。赤血球は室温で1時間重力によっ
て沈降させる。それらの細胞は次に80■kJa01の
凹所当り100μlを添加することによって溶解させる
。その溶解溶液は凹所内で室温において1分間扁首させ
て1次に吸込によって除去する。そのミクロタイター・
プレートは自動洗浄装置または手動法によって等張塩溶
液で少なくとも2回洗浄して未結合の赤血球を除去する
。
mMの塩化ナトリウムを含有する乾燥用溶液100μj
を添加する。乾燥用溶液の添加後直ちに、各凹所を吸
引して過剰の乾燥用溶液を全て除去する。そのミクロタ
イター・プレートは次に少なくとも21の容量の分子ふ
るい乾燥剤パケットを内蔵する基パウチまたはパケット
に逆さまに入れる。そのパウチを熱で密封して2〜8℃
で7日間乾燥する。
、基パウチを開けて、血清または血漿或いは対照試料の
ような生物流体1滴を各凹所へ添加する。保存剤および
着色用染料と共にグリシンの191/l溶液2滴も各凹
所へ添加する。これらの溶液をう7℃で15分間そ九ら
の凹所内で温酋させる。濡置後、ミクロタイター・プレ
ートの凹所を望ましくは自動洗浄装置(例えば、B10
Tek EL−1402型)によって塩溶液で5回洗
浄する。次にその各凹所へ抗−IjlGコーテッド指示
薬の赤血球を添加する。そのミクロタイター・プレート
を1J50xGで1分間遠心分離する。そのプレートは
次に赤血球単層への指示薬赤血球の付着性または非付着
性を検査する。反応表面上への指示薬赤血球の付着によ
って陽性反応が見られる。
成して、付着を示さない。
けた場合には、それは赤血球の単層に結合する。抗−I
jl()コーテッド指示赤血球が同様にそれらが凹所へ
添加されるときに結合される抗体へ結合する。これは前
記の陽性反応を示す。赤血球へ向けられた抗体が試験す
る生物流体に存在しない場合には、抗−工IGコーテッ
ド指示赤血球は結合する相補的免疫成分をもたなくて、
前記のように別個のボタンとして凹所の底部に集まるこ
とになる。上記の方法および固相支持体を利用する免疫
検定法は常に標準のチューブ・テストによって得られる
結果よりも高感度の結果を与える。
々の凹所へ吸着されることを除いて1本質的に実施例1
のように調製でれる。赤血球は実施例1で記載したよう
に溶解、洗浄そして乾燥される。試験血清または血漿試
料において予想されない抗体の検出および検出される特
定抗体の決定のために、かかる血清または血漿の1滴を
ミクロタイター・プレート上の乾燥した赤血球の各パネ
ル凹所へ添加する。検定は実施例1で記載したように行
なう、そして次にそれぞれの凹所において陽性反応をも
たらす試料中の抗体の特異性は陽性反応を示す個々の凹
所のパネル構成員の表現型の判定によって決定される。
のために検定用抗体パネルを有するミクロタイター・プ
レートt−調製することに利用することができる。ミク
ロタイター・プレートは、既知で種々の血液型抗原表現
型をもったヒトの赤面本発明はヒトの血小板に向けられ
た予想ぜhない抗体の検出のために抗体スクリーンとし
て有用なミクロタイター・プレートの調製に利用するこ
とができる。ミクロタイター・プレートは実施例1で記
載したようにアルシアン・イエローで染色される。血小
板細胞の単層はミクロタイター・プレートの各凹所へ血
小板と改良されたオルシーバー溶液の0.1%(V/v
)懸濁液100μlを添加することによって形成される
。血小板は2〜8℃で21i時間重力によって沈降させ
る。過剰の血小板溶液をデカントして、そのプレート全
等張塩溶液で2回洗浄する。LOMデキストロースと1
54mM NaCj から成る乾燥用溶液100μl
を各凹所に添加して直ちにデカントする。そのプレート
を分子ふるい乾燥剤を備えた箔バックに入れて、2〜8
℃で7日間乾燥尽せる。ヒトの生物流体中の予測されな
い抗体を試験するために一各凹所へ血清、血漿または対
揮試料の1滴を添加して凹所において37℃で15分間
扁装する。それらの凹部を等張塩#液で5回洗浄し、各
凹所へ指示赤血球を1滴を添加する。そのプレートを9
00xGで1分間遠心分離した後、指示赤血球の血小板
単層への付滑性または非付漕性全検査する。陽性反応は
凹所表面への指示赤血球の付着を示す。陰性反応は凹所
の底部における指示赤血球の別個のボタンを形成する。
合には、それは血小板の単層へ結合する。
は凹所の底部に集まる。上記の方法および固相支持体を
利用する検定法は常に標阜のチューブ試験で得られる結
果より高感度の結果を与える。
トの血小板へ向けられた予測されない抗体の検出するた
めの抗体パネルを調製するために使用することができる
。この検定法は、既知で種々の抗原表現型をもったヒト
の血小板のパネルをミクロタイター・プレートの個々の
凹所に調製することを除いて実施例5で記載した免疫検
定法と同一である。そのミクロタイター・プレートは実
施例5で記載した方法で乾燥用溶液全添加することによ
って洗浄および乾燥を行った。そのミクロタイター・プ
レートは、乾燥した血小板の個々の凹所へ1滴の血清ま
たは血漿を添加することによって免疫検定に利用する。
をもたらす個々の凹所における試料中の抗体の特異性は
1個々のパネル構成員の表現型を判定することによって
決定することができる。
クロロキン除去によってHLA以外の特異の血小板抗体
の同定に利用することができる。実施例4に示した方法
を次のように改良するニー旦、血小板の単層を調製して
、各凹所毎に20mMのMES緩衝溶1(pH6,0)
中に100冨9/1のクロロキン100μlを添加する
。対照の凹所は20mMのMES緩衝溶液のみを含有す
る。ミクロタイター・プレートはう7℃で1時間温首し
て、塩溶液で4回洗浄する。実施例4で記載した乾燥用
溶液を添加し、ミクロタイター・プレートの最終調製お
よび検定を実施例4で記載したように行なう。
相支持体の調製に利用することができる。
アン・イエローで染色し、A1の0,2%(v/v)懸
濁液および塩溶液または試薬赤血球希釈液中のB赤血球
の類似懸濁液の100μ7e初数の個々の凹所へ添加す
る。その赤血球を室温で++0〜60分間重力によって
沈降させる。各凹所へ80mMの塩化ナトリウム100
μlf:添加して赤血球を箔屑する。溶解溶液を凹所に
おいて室温で1分間淘首させた後、吸引によって除去す
る。
用して等張塩溶液で2回洗浄する。LOモル/11のデ
キストロースと154ミリモル/lの塩化ナトリウムか
ら成る乾燥用溶液100μlf:各凹所へ添加する。乾
燥用溶液はそれ全凹所へ添加した直後に吸引によって除
去し、マイクロタイター・プレートを分子ふるい乾燥剤
を内蔵する基パウチに逆さ1に入れる。そのパウチを熱
で密封して、2〜8℃で5日間乾爆させる。
けて血清、血漿または対胛試料の1滴を各凹所に添加し
て、57℃で15分間扁置きせた。
用してう回洗浄した。A、B指示赤血球細胞の1滴を各
凹所へ添加する。そのミクロタイター・プレー)’kl
150xoで1分間遠心分離にかけて、該プレーIf検
査し指示赤血球の赤血球細胞単層への付着または非付着
全判定する。患者の生物流体試料がA、型赤血球の抗体
を有すると、それらはAI型型面血球単層有する凹所へ
結合する、そして陽性反応が指示細胞の反応表面上への
付着によって見られる。同様に、患者の血清または血漿
がB型赤血球の抗体を有すると、それらはB型光血球細
胞単層を有する凹所へ結合する。陰性反応が付着を示づ
ない凹所の底部に指示赤血球の別個のボタンを形成する
。
ための検定を行うのに有用な固相支持体の調製に利用さ
れる。実施例1で記載したようにアルシアン・イエロー
で染色したミクロタイター・プレートを調製して、塩溶
液中にA1.Bおよび0−Rh陽性赤血球のそhぞれ0
.2 % (v/v )懸濁液iooμIfそれぞれの
凹所へ添加する。赤血球を室温で1時間重力によって沈
降嘔せる。細胞を沈降させた後、過剰の細胞溶液をプレ
ートからデカントさせる。次に細胞の単層を抗−八、抗
−Bおよび抗−りの適当な希釈液100μlを凹所に添
加することによって増感させる。その凹所中で抗血清を
37℃で60分間濡装して、過剰の抗血清を吸引によっ
て除去する。次に溶解用溶液として80mMの塩化ナト
リウム1αOμIf各凹所へ添加して、室温で1分間l
晶給させる。過剰の溶解用溶液は吸引で除去し、ミクロ
タイター・プレートは等張塩溶液で2回洗浄する。10
モル/lのデキストロースおよび151iミリモル/l
の塩化ナトリウムの100μlから成る乾燥用溶液ヲ0
.5%プロメラインと共に各凹所へ添加する。
除去し、ミクロタイター・プレートを分子ふるい乾燥剤
を有する箔パケットに逆さまに入れる。その箔パケット
は熱で密封し、2〜8℃で7日間乾爆させる。
て正ABOグループ分けおよびD型化を行うために、塩
溶液中で希釈した試験用赤血球の0.2〜0.3%(v
/v )懸濁液1滴全各凹所へ添加して、37℃で15
分間扁置きせる。次にミクロタイター・プレートはn
50xGで1分間遠心分離させる。そのプレート(r検
査して試験赤血球の増感赤血球単層への付着または非付
着を判定する。試験赤血球が抗〜A抗血清を有するA、
赤施球を含有する凹所へ付着するならば、試験赤血球は
八−型細胞である。試験細胞がB型であると。
ことになる。AB型赤血球は抗−Aおよび抗−B増感細
胞へ結合し、0型赤血球はいずれの+ 細胞にも付着しない。D である試験赤血球は抗−Di
有する凹所へ結合するが、D である細胞は結合しない
。陰性反応は付着を示さない凹所の底部に赤血球の別個
のボタンを形成する。
持体の調製に利用される。ミクロタイター・プレートを
実施例1で記載したようにアルシアン・イエローで再び
染色し、財知抗原血液型衣現型をもった塩溶液中の赤血
球の個々の溶液の1%(v/v )懸濁液100μ!の
添加によって、個々の凹所に細胞の単層を調製する。そ
れらの細胞懸濁液は室温で1時間重力によって沈降させ
る。
で増感して、57℃で60分間淘置市る。問題の抗血清
は単JWIを形成する細胞上の特定既知抗原に特異の抗
体である。次に細胞単層は130 m Mの塩化ナトリ
ウム100μj/凹所を添加するととによって溶解させ
る、そして過剰の溶解用溶液は室淘で1分間の装置に吸
引によって除去する。
回洗浄する。次にLOモル/jデキストロースと154
ミリモル/l塩化ナトリウムから成る乾燥用溶液100
μ!を各凹所へ添加する。乾燥用溶液は直ちに吸引によ
って除去し、ミクロタイター・プレート’を分子ふるい
乾燥剤2有する箔パケットに逆さまに入れる。そのパケ
ットを熱で密封して、4℃で7日間乾燥させる。
レートラ箔バックから取り出し、塩溶液中で予め希釈し
た試験赤血球の0.2〜0.3%(v/v )懸濁液の
1滴を各凹所へ添加して、57℃で15分間渇装置る。
遠心分離した後、そのプレートを検査して試験赤血球の
赤血球細胞単層への付着または非付着を判定する。陽性
反応は反応表面上への細胞の付着によって見られ、試験
赤血球が細胞単層へ増感された抗体に相補的抗原を含む
こと金示す。陰性反応は付着ヲ示さない凹所の底部にお
ける赤血球の別個のボタンを形成する。このように、試
験赤血球の表現型が決定される。
よってヒトの赤血球へ向けられた予測されない抗体の検
出のだめのミクロタイター・プレートの調製に利用する
ことができる。そのミクロプレートは実施例1のように
調製する。試験血清または血漿試料中の予測されない抗
体を検出するために、かかる血清または血漿の1滴を乾
燥した赤血球の各凹所へ添加し、続いて低イオン強度溶
液2滴を添加する。こrrらの溶液を凹所内で57℃に
おいて115分間渇置装置る。温置後、ミクロタイター
・プレートの凹所全塩溶液で、望ましくは自動洗浄装置
によって4回洗浄する。各凹所へアルカリ性のホスファ
ターゼ共役抗−ヒ) IjlG溶液を添加する。その酵
素共役−IjlG溶液全う7℃で1時間扁置する。共役
抗−ヒトIjlGはこれらの凹所で免疫学的に結合する
。試験試料からのI、90は乾燥化赤血球単層に結合し
ている( Is性試験)そして次の洗浄工程で洗い落さ
れる。陰性凹所における共役抗−ヒ)IyG(試験試料
からのHIGはいずれも乾燥化赤血球単層へ結合してい
ない)は結合しなくて1次の洗浄工程で洗い落される。
ジェタノール−dH20中にp−ニトロフェノール・ホ
スフI−ト(PNPP)の1− Oyxg /rtrl
から成る酵素基質の溶液100μ!を凹所へ添加する。
の吸光度ラミクロプレート分光光度計で測定する。陽性
凹所において抗−ヒ) I、9Gへ共役されたアルカリ
性ホスファターゼ酵素はPNPP基質を酵素的に分解し
て、目で見ることができる黄緑色をもたらす。陰性凹所
(アルカリ性ホスファターゼ共役抗−IjlGが存在し
ない)においては−PNPP基質は酵素で分解さhない
で透明に見える。
のに適したものであることがわかる。
施態様が可能であるから、本明細に示した全ての事項は
説明のためのものであって、限定を意図するものではな
い。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、哺乳類細胞を固相支持体へ固定化する工程; 前記固定化された細胞に乾燥用溶液を接触させることに
よつて、前記固相支持体へ固定化された細胞を乾燥する
工程;および 前記固定化された細胞との接触から前記乾燥用溶液を取
り除く工程、から成ることを特徴とする固相免疫検定に
使用する固相支持体上の哺乳類細胞を乾燥溶液の使用を
介して乾燥する方法。 2、前記乾燥工程の前に、前記固定化された細胞を溶解
する工程を含む特許請求の範囲第1項記載の方法。 3、前記溶解が、前記固定化された細胞へ溶解用溶液を
添加することによつて行われる特許請求の範囲第2項記
載の方法。 4、前記溶解用溶液が脱イオン水又は塩溶液である特許
請求の範囲第3項記載の方法。 5、前記固相支持体が有機ポリマーまたはガラス製であ
る特許請求の範囲第1項記載の方法。 6、前記乾燥用溶液が単糖類、二糖類、三糖類、および
シクリトールからなる群から選択した1つの構成員と塩
との混合体からなる特許請求の範囲第1項記載の方法。 7、前記単糖類、二糖類、三糖類又はシクリトールはD
−(−)グルコース、スクロース、D−(−)D−(+
)リキソース、ミオ−イノシトール、D−(+)セロビ
オース、およびL−(−)−ソルボースからなる群から
選ぶ特許請求の範囲第6項記載の方法。 8、前記単糖類がD−(−)グルコースである特許請求
の範囲第7項記載の方法。 9、前記混合体における前記単糖類、二糖類、三糖類ま
たはシクリトールが0.1M〜3.0Mの濃度を有する
特許請求の範囲第6項記載の方法。 10、前記混合体中の塩が50mM〜377mMの濃度
で存在する特許請求の範囲第6項記載の方法。 11、前記塩は塩化ナトリウム、塩化カリウムまたはリ
ン酸ナトリウムからなる群から選ぶ特許請求の範囲第1
0項記載の方法。 12、前記混合体中の塩が154mMの塩化ナトリウム
である特許請求の範囲第11項記載の方法。 13、前記乾燥用溶液は前記固相支持体へ前記固定化細
胞を完全にカバーする量を添加する特許請求の範囲第1
項記載の方法。 14、前記取り除き工程がさらに、 前記固相支持体から前記乾燥溶液をデカントする工程;
および 前記固相支持体を乾燥剤を内蔵した密封容器に入れる工
程からなる特許請求の範囲第1項記載の方法。 15、前記哺乳類細胞は赤血球、血小板、白血球、リン
パ球および組織細胞から成る群から選ぶ特許請求の範囲
第1項記載の方法。 16、前記哺乳類細胞が赤血球又は血小板である特許請
求の範囲第1項記載の方法。 17、固相支持体; 正味正電荷および前記支持体に吸着された疎水性芳香族
環構造を有する有機染料の被膜;および 前記有機染料に固定化された免疫反応性成分の乾燥単分
子層から成ることを特徴とする固相免疫検定を行うため
の物品。 18、前記免疫反応性成分は哺乳類細胞から成る群から
選ぶ特許請求の範囲第17項記載の方法。 19、前記哺乳類細胞は赤血球、リンパ球、白血球、血
小板および組織細胞から成る群から選ぶ特許請求の範囲
第18項記載の方法。 20、前記哺乳類細胞が赤血球または血小板である特許
請求の範囲第19項記載の方法。 21、前記有機染料はアゾ染料、ジアゾニウム塩類、テ
トラアゾニウム塩類、テトラゾリウム塩類、トリフェニ
ルメタン、キサンテン、アクリジン、キノリン、チアゾ
ール、インダミン、アジン、アミノアジン、チアジンお
よびフタロシアニンから成る群から選択する特許請求の
範囲第17項記載の方法。 22、前記固相支持体が有機ポリマー製である特許請求
の範囲第21項記載の方法。 23、前記支持体がガラス製である特許請求の範囲第2
1項記載の方法。 24、前記支持体は試験管、ミクロタイター・プレート
、ビード、シートまたは膜から成る群から選択する特許
請求の範囲第22項記載の方法。 25、前記支持体は複数の井戸状凹所を有するミクロタ
イター・プレートである特許請求の範囲第24項記載の
方法。 26、固定化および乾燥され、細胞表面に抗原を提供す
る哺乳類細胞の単層を提供する固相表面を設ける工程; 生物流体に存在する場合の免疫反応性成分を前記哺乳類
細胞上の抗原へ結合させるように、該生物流体と前記固
定化および乾燥化細胞の単層とを接触させる工程; 前記細胞に結合した免疫反応性成分は全てそのままにし
ながら、前記細胞との接触から前記生物流体を除去する
工程;および 固体支持体を分析して前記免疫反応成分の前記細胞への
付着又は非付着を判定する工程、 から成ることを特徴とする固体表面へ固定化および乾燥
された哺乳類細胞に対して生物流体中の免疫反応性成分
の存在を試験するために固相検定を行う方法。 27、前記哺乳類細胞が赤血球または血小板である特許
請求の範囲第26項記載の方法。 28、前記固体表面を提供する工程が、複数の凹所を有
するプレートを提供することから成り、前記哺乳類細胞
の単層が赤血球または血小板の単層から成る特許請求の
範囲第26項記載の方法。 29、前記接触工程が前記生物流体を前記凹所における
細胞の単層と接触させることから成る特許請求の範囲第
28項記載の方法。 30、前記接触工程が血漿、血清、赤血球溶液または血
小板溶液を前記固定化および乾燥化細胞単層へ接触させ
ることから成る特許請求の範囲第26項記載の方法。 31、既知抗血清を前記細胞表面上の相補的抗原へ結合
させるために、前記接触工程の前に前記固定化および乾
燥化細胞単層を既知抗血清で増感させる工程を含む特許
請求の範囲第26項記載の方法。 32、前記分析工程が、赤血球付着法、酵素−結合免疫
吸着検定法、放射線免疫検定法または免疫螢光法によつ
て前記付着または非付着を検出することから成る特許請
求の範囲第26項記載の方法。
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