JPH0129560B2 - - Google Patents
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- JPH0129560B2 JPH0129560B2 JP18175186A JP18175186A JPH0129560B2 JP H0129560 B2 JPH0129560 B2 JP H0129560B2 JP 18175186 A JP18175186 A JP 18175186A JP 18175186 A JP18175186 A JP 18175186A JP H0129560 B2 JPH0129560 B2 JP H0129560B2
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
(産業上の利用分野)
本発明は、抗生物質の修飾剤をはじめ、医薬、
農薬の中間体として有用なD−アミノ酸の生化学
的製造法に関する。 (従来技術および問題点) 従来、生化学的にD−アミノ酸を製造する方法
は、5−置換ヒダントイン類に微生物の有するヒ
ダントイナーゼを作用させる方法(特開昭55−
104890)、α−アミノ酸のアミドに微生物の有す
るアミダーゼを作用させる方法(特開昭60−
184392)、N−アシル−DL−アミノ酸にアシラー
ゼを作用させて、L−アミノ酸を光学分割し、残
つたN−アシル−D−アミノ酸に酸を作用させる
方法(特公昭41−22380)などが知られている。 しかしながら、これらの方法は高価な基質を必
要とし、かつ反応系も複雑であることから工業的
生産の方法として不利な点を有している。一方、
N−アシル−DL−アミノ酸にストレプトミセス
属に属する微生物の有するD−アミノアシラーゼ
を作用させてD−アミノ酸を得る方法(特公昭53
−36035)やフアカルタテイブ・メタノール資化
性菌の生産するD−アミノアシラーゼを作用させ
てD−アミノ酸を得る方法(特公昭60−31477)
は、反応工程も短くD−アミノ酸の工業的生産方
法としてはすぐれた方法の1つではあるが、これ
らの微生物はL−アミノアシラーゼをも同時に生
産することから、高い光学純度のD−アミノ酸を
得難いという欠点を有する。 また、本発明者らはストレプトミセス属に属す
るD−アミノアシラーゼ生産菌を改良し、L−ア
ミノアシラーゼ生産能の極めて低い菌株を見出し
この菌株を用いて光学純度の高いD−アミノ酸を
得る方法(特願昭60−265860)を発明したが、こ
れは先に挙げたD−アミノアシラーゼによるD−
アミノ酸の製法に比べ、非常に光学純度の高いD
−アミノ酸を得られる方法ではあるが、基質濃度
を高くすると、菌体中に微量に存在するL−アミ
ノアシラーゼの影響で生成するD−アミノ酸の光
学純度が低下するという問題点が生じる。 (問題点を解決するための手段) 本発明者らは、光学純度の点で十分満足のいく
D−アミノ酸を特に高濃度基質から工業的に有利
に製造する方法の開発を目的に鋭意検討した結
果、ストレプトミセス属に属する微生物の生産す
るD−アミノアシラーゼの作用により、N−アシ
ル−DL−アミノ酸またはその塩のN−アシル基
を加水分解してD−アミノ酸を生成する反応を、
EDTAの存在下で行なうことにより、非常に光
学純度の高いD−アミノ酸を工業的に有利に高収
率で得られることを見出し、これに基づいて本発
明を完成した。 即ち本発明は一般式
農薬の中間体として有用なD−アミノ酸の生化学
的製造法に関する。 (従来技術および問題点) 従来、生化学的にD−アミノ酸を製造する方法
は、5−置換ヒダントイン類に微生物の有するヒ
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104890)、α−アミノ酸のアミドに微生物の有す
るアミダーゼを作用させる方法(特開昭60−
184392)、N−アシル−DL−アミノ酸にアシラー
ゼを作用させて、L−アミノ酸を光学分割し、残
つたN−アシル−D−アミノ酸に酸を作用させる
方法(特公昭41−22380)などが知られている。 しかしながら、これらの方法は高価な基質を必
要とし、かつ反応系も複雑であることから工業的
生産の方法として不利な点を有している。一方、
N−アシル−DL−アミノ酸にストレプトミセス
属に属する微生物の有するD−アミノアシラーゼ
を作用させてD−アミノ酸を得る方法(特公昭53
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性菌の生産するD−アミノアシラーゼを作用させ
てD−アミノ酸を得る方法(特公昭60−31477)
は、反応工程も短くD−アミノ酸の工業的生産方
法としてはすぐれた方法の1つではあるが、これ
らの微生物はL−アミノアシラーゼをも同時に生
産することから、高い光学純度のD−アミノ酸を
得難いという欠点を有する。 また、本発明者らはストレプトミセス属に属す
るD−アミノアシラーゼ生産菌を改良し、L−ア
ミノアシラーゼ生産能の極めて低い菌株を見出し
この菌株を用いて光学純度の高いD−アミノ酸を
得る方法(特願昭60−265860)を発明したが、こ
れは先に挙げたD−アミノアシラーゼによるD−
アミノ酸の製法に比べ、非常に光学純度の高いD
−アミノ酸を得られる方法ではあるが、基質濃度
を高くすると、菌体中に微量に存在するL−アミ
ノアシラーゼの影響で生成するD−アミノ酸の光
学純度が低下するという問題点が生じる。 (問題点を解決するための手段) 本発明者らは、光学純度の点で十分満足のいく
D−アミノ酸を特に高濃度基質から工業的に有利
に製造する方法の開発を目的に鋭意検討した結
果、ストレプトミセス属に属する微生物の生産す
るD−アミノアシラーゼの作用により、N−アシ
ル−DL−アミノ酸またはその塩のN−アシル基
を加水分解してD−アミノ酸を生成する反応を、
EDTAの存在下で行なうことにより、非常に光
学純度の高いD−アミノ酸を工業的に有利に高収
率で得られることを見出し、これに基づいて本発
明を完成した。 即ち本発明は一般式
【式】
(ただし、Rは、低級アルキル基、置換低級アル
キル基、フエニル基、置換フエニル基、フリル
基、ピリジル基、チアゾリル基、イミダゾリル基
又はインドリル基を表わす。R′は直鎖状もしく
は分枝状のアシル基を表わす。XはH、Na、K、
NH4を表わす。)で表わされるN−アシル−DL
−アミノ酸もしくはその塩に、EDTAの存在下、
ストレプトミセス属に属しN−アシル基加水分解
能力を有する微生物菌体もしくは菌体処理物を作
用させることを特徴とするD−アミノ酸の製造法
である。 本発明の一般式で示されるN−アシル−DL−
アミノ酸およびその塩の例として、たとえばN−
アセチル−DL−バリンおよびそのカリウム、ナ
トリウム、アンモニウム塩、N−アセチル−DL
−フエニルグリシンおよびそのカリウム、ナトリ
ウム、アンモニウム塩等が挙げられる。このほか
N−アシル−DL−アミノ酸を構成するアミノ酸
として、フエニルアラニン、アラニン、メチオニ
ン、システイン、アスパラギン酸等が挙げられ
る。 本発明に使用される微生物はストレプトミセス
属に属するものであり、その代表例として、スト
レプトミセス・ツイルス0−33(微工研菌寄第
8446号)が挙げられる。 微生物の培養は通常は振盪培養、あるいは通気
撹拌培養などの好気的条件下で行なう。培養温度
は、20〜37℃の範囲で可能であるが、好ましくは
25〜30℃である。培養PHは5〜9の範囲で可能で
あるが、好ましくはPH6.5〜8.5である。 培地に使用する栄養源は、使用可能なものなら
ば、何れの種類のものを用いてもよい。即ち、炭
素源としては、グルコース、マルトース、でんぷ
ん、糖蜜などの炭水化物、更にグリセリンなども
使用できる。窒素源としては、ペプトン、酵母エ
キス、肉エキス、コーンステイプリカーなどの有
機窒素源、さらに硫酸アンモニウム、酢酸アンモ
ニウム等の無機、有機アンモニウム塩なども使用
できる。更にDL−バリン等のDL−アミノ酸を
0.01〜1%、好ましくは0.1〜0.5%濃度で培地に
添加しておくと本反応に関与する酵素が誘導され
好適である。 本発明の反応はEDTAの存在下で行なわれる
が、予め微生物の培養菌体をEDTAで処理し、
あるいは培養菌体または菌体を破砕して得られる
無細胞抽出液を含む反応液中にEDTAを添加し
て反応が行なわれる。また予めEDTAで処理し
た菌体を固定化して使用することもできる。 本発明の反応においてEDTAの使用量は、基
質濃度、酵素量、その他の諸条件によつて好適な
値を適宜選択すればよいが、例えば反応液中の濃
度が0.005〜0.5%の範囲になるように添加され
る。反応に使用する基質であるN−アシル−DL
−アミノ酸の濃度に特に制限はないが、通常0.1
〜30%の濃度が用いられ、反応温度は10〜60℃、
好ましくは20〜40℃、反応PHは4〜10、好ましく
は6〜9である。 反応終了後、反応液中からのD−アミノ酸の単
離は、直接晶析法、イオン交換樹脂処理等により
行なうことができる。 (発明の効果) 本発明の方法により、高濃度、高収率でかつ光
学純度の高いD−アミノ酸を工業的に安価に製造
することができ、産業上の効果は極めて大きい。 (実施例) 以下実施例により本発明を更に詳述するが、本
発明はこれらの実施例のみに限定されるものでは
ない。 実施例 1 ストレプトミセス・ツイルス0−33(微工研菌
寄第8446号)を第1表に示した寒天斜面培地で培
養した後、第2表に示した液体培地を500ml振盪
フラスコ中に100ml加え、そこに一白金耳接種し、
28℃振盪培養を行なつた。 培養終了後、遠心集菌し、100mlの生理食塩水
で洗浄した後再び、遠心集菌した。この菌体を
0.1Mリン酸緩衝液(PH7.0)100mlに懸濁して菌
体懸濁液とした。この菌体懸濁液10ml、20%N−
アセチル−DL−バリンのナトリウム塩溶液10ml、
およびEDTA5mgを混合した後、30℃で15時間撹
拌しながら反応させた。反応終了後、遠心分離し
て除菌した後、反応生成物の分析をHPLCで行な
つた。分析方法は、キラルモービルフエイズ法
(J.Am.Chem.Soc.102、5115(1980))で行なつ
た。その結果、15時間反応後、N−アセチル−D
−バリンの92.2%がD−バリンに変換した。光学
純度100%であつた。 第1表 酵母エキス 1g 肉エキス 1g NZアミンタイプA 2g マルトース 10g 寒 天 20g 蒸留水 1 PH7.3 第2表 可溶性でんぷん 20g ペプトン 10g 酵母エキス 5g 食 塩 5g DL−バリン 5g 蒸留水 1 PH7.0 実施例 2 実施例1と同様にして得た菌体を、NaOHで
PH7.0に調整した0.025%EDTA水溶液100mlに懸
濁し、室温30分放置した後遠心集菌した。この
EDTA処理菌体を蒸留水100mlに懸濁して菌体懸
濁液とした。この菌体懸濁液10mlとNaOHでPH
7.0にした20%N−アセチル−DL−バリンのナト
リウム塩溶液10mlを混合した後、30℃で15時間撹
拌しながら反応させた。反応終了後、遠心分離し
て除菌した後、6規定塩酸でPH1とした。遠心分
離して析出したN−アセチル−L−バリンを除
き、上清を活性炭処理した後再びPHを7.0とし、
H+型強酸性陽イオン交換体(アンバーライトIR
−120B)に加え、5%アンモニア水溶液で脱着
した。脱着物を80℃で減圧乾燥することによりD
−バリン0.687gを得た。収率93.3%、〔α〕20 D:−
28.3° (C=86N HCl)、光学純度100%であつ
た。 また、新たに同様の方法で反応を行ない、一定
時間ごとに反応液をサンプリングし、生成物の分
析をHPLCで行なつた。分析方法はキラルモービ
ルフエイズ法で行なつた。この反応の経時変化を
図1に示した。 比較例 1 実施例1と同様にして得た菌体懸濁液10mlと、
20%N−アセチル−DL−バリンのナトリウム塩
溶液10mlを混合した後、30℃で15時間撹拌しなが
ら反応させた。一定時間ごとに反応液をサンプリ
ングし生成物の分析をHPLCで行なつた。分析方
法はキラルモービルフエイズ法で行なつた。この
反応の経時変化を図2に示した。 実施例 3 第2表に示した液体培地100mlにストレプトミ
セス・ツイルス0−33(微工研菌寄第8446号)の
胞子を一白金耳接種し28℃で振盪培養を行なつ
た。培養終了後遠心集菌し、生理食塩水で十分洗
浄した後、0.1Mリン酸緩衝液(PH7.0)100mlに
懸濁し、超音波破砕器で細胞を破砕した。遠心分
離で細胞の破片を除去して、D−アミノアシラー
ゼの粗酵素液を得た。20%N−アセチル−DL−
バリンのナトリウム塩1.25ml、粗酵素液2.5ml、
0.5Mリン酸緩衝液(PH7.0)1.25mlおよび
EDTA1.25mgを混合した後、30℃で25時間撹拌し
ながら反応させた。一定時間ごとに反応液をサン
プリングし、生成物の分析をHPLCで行なつた。
分析方法は、キラルモービルフエイズ法で行なつ
た。この反応の経時変化を図3に示した。 比較例 2 実施例3と同様の方法で粗酵素液を調整し、20
%N−アセチル−DL−バリンのナトリウム塩
1.25ml、粗酵素液2.5mlおよび0.5Mリン酸緩衝液
(PH7.0)1.25mlを混合した後、30℃で25時間撹拌
しながら反応させた。一定時間ごとに反応液をサ
ンプリングし、生成物の分析をHPLCで行なつ
た。分析方法は、キラルモービルフエイズ法で行
なつた。この反応の経時変化を図4に示した。
キル基、フエニル基、置換フエニル基、フリル
基、ピリジル基、チアゾリル基、イミダゾリル基
又はインドリル基を表わす。R′は直鎖状もしく
は分枝状のアシル基を表わす。XはH、Na、K、
NH4を表わす。)で表わされるN−アシル−DL
−アミノ酸もしくはその塩に、EDTAの存在下、
ストレプトミセス属に属しN−アシル基加水分解
能力を有する微生物菌体もしくは菌体処理物を作
用させることを特徴とするD−アミノ酸の製造法
である。 本発明の一般式で示されるN−アシル−DL−
アミノ酸およびその塩の例として、たとえばN−
アセチル−DL−バリンおよびそのカリウム、ナ
トリウム、アンモニウム塩、N−アセチル−DL
−フエニルグリシンおよびそのカリウム、ナトリ
ウム、アンモニウム塩等が挙げられる。このほか
N−アシル−DL−アミノ酸を構成するアミノ酸
として、フエニルアラニン、アラニン、メチオニ
ン、システイン、アスパラギン酸等が挙げられ
る。 本発明に使用される微生物はストレプトミセス
属に属するものであり、その代表例として、スト
レプトミセス・ツイルス0−33(微工研菌寄第
8446号)が挙げられる。 微生物の培養は通常は振盪培養、あるいは通気
撹拌培養などの好気的条件下で行なう。培養温度
は、20〜37℃の範囲で可能であるが、好ましくは
25〜30℃である。培養PHは5〜9の範囲で可能で
あるが、好ましくはPH6.5〜8.5である。 培地に使用する栄養源は、使用可能なものなら
ば、何れの種類のものを用いてもよい。即ち、炭
素源としては、グルコース、マルトース、でんぷ
ん、糖蜜などの炭水化物、更にグリセリンなども
使用できる。窒素源としては、ペプトン、酵母エ
キス、肉エキス、コーンステイプリカーなどの有
機窒素源、さらに硫酸アンモニウム、酢酸アンモ
ニウム等の無機、有機アンモニウム塩なども使用
できる。更にDL−バリン等のDL−アミノ酸を
0.01〜1%、好ましくは0.1〜0.5%濃度で培地に
添加しておくと本反応に関与する酵素が誘導され
好適である。 本発明の反応はEDTAの存在下で行なわれる
が、予め微生物の培養菌体をEDTAで処理し、
あるいは培養菌体または菌体を破砕して得られる
無細胞抽出液を含む反応液中にEDTAを添加し
て反応が行なわれる。また予めEDTAで処理し
た菌体を固定化して使用することもできる。 本発明の反応においてEDTAの使用量は、基
質濃度、酵素量、その他の諸条件によつて好適な
値を適宜選択すればよいが、例えば反応液中の濃
度が0.005〜0.5%の範囲になるように添加され
る。反応に使用する基質であるN−アシル−DL
−アミノ酸の濃度に特に制限はないが、通常0.1
〜30%の濃度が用いられ、反応温度は10〜60℃、
好ましくは20〜40℃、反応PHは4〜10、好ましく
は6〜9である。 反応終了後、反応液中からのD−アミノ酸の単
離は、直接晶析法、イオン交換樹脂処理等により
行なうことができる。 (発明の効果) 本発明の方法により、高濃度、高収率でかつ光
学純度の高いD−アミノ酸を工業的に安価に製造
することができ、産業上の効果は極めて大きい。 (実施例) 以下実施例により本発明を更に詳述するが、本
発明はこれらの実施例のみに限定されるものでは
ない。 実施例 1 ストレプトミセス・ツイルス0−33(微工研菌
寄第8446号)を第1表に示した寒天斜面培地で培
養した後、第2表に示した液体培地を500ml振盪
フラスコ中に100ml加え、そこに一白金耳接種し、
28℃振盪培養を行なつた。 培養終了後、遠心集菌し、100mlの生理食塩水
で洗浄した後再び、遠心集菌した。この菌体を
0.1Mリン酸緩衝液(PH7.0)100mlに懸濁して菌
体懸濁液とした。この菌体懸濁液10ml、20%N−
アセチル−DL−バリンのナトリウム塩溶液10ml、
およびEDTA5mgを混合した後、30℃で15時間撹
拌しながら反応させた。反応終了後、遠心分離し
て除菌した後、反応生成物の分析をHPLCで行な
つた。分析方法は、キラルモービルフエイズ法
(J.Am.Chem.Soc.102、5115(1980))で行なつ
た。その結果、15時間反応後、N−アセチル−D
−バリンの92.2%がD−バリンに変換した。光学
純度100%であつた。 第1表 酵母エキス 1g 肉エキス 1g NZアミンタイプA 2g マルトース 10g 寒 天 20g 蒸留水 1 PH7.3 第2表 可溶性でんぷん 20g ペプトン 10g 酵母エキス 5g 食 塩 5g DL−バリン 5g 蒸留水 1 PH7.0 実施例 2 実施例1と同様にして得た菌体を、NaOHで
PH7.0に調整した0.025%EDTA水溶液100mlに懸
濁し、室温30分放置した後遠心集菌した。この
EDTA処理菌体を蒸留水100mlに懸濁して菌体懸
濁液とした。この菌体懸濁液10mlとNaOHでPH
7.0にした20%N−アセチル−DL−バリンのナト
リウム塩溶液10mlを混合した後、30℃で15時間撹
拌しながら反応させた。反応終了後、遠心分離し
て除菌した後、6規定塩酸でPH1とした。遠心分
離して析出したN−アセチル−L−バリンを除
き、上清を活性炭処理した後再びPHを7.0とし、
H+型強酸性陽イオン交換体(アンバーライトIR
−120B)に加え、5%アンモニア水溶液で脱着
した。脱着物を80℃で減圧乾燥することによりD
−バリン0.687gを得た。収率93.3%、〔α〕20 D:−
28.3° (C=86N HCl)、光学純度100%であつ
た。 また、新たに同様の方法で反応を行ない、一定
時間ごとに反応液をサンプリングし、生成物の分
析をHPLCで行なつた。分析方法はキラルモービ
ルフエイズ法で行なつた。この反応の経時変化を
図1に示した。 比較例 1 実施例1と同様にして得た菌体懸濁液10mlと、
20%N−アセチル−DL−バリンのナトリウム塩
溶液10mlを混合した後、30℃で15時間撹拌しなが
ら反応させた。一定時間ごとに反応液をサンプリ
ングし生成物の分析をHPLCで行なつた。分析方
法はキラルモービルフエイズ法で行なつた。この
反応の経時変化を図2に示した。 実施例 3 第2表に示した液体培地100mlにストレプトミ
セス・ツイルス0−33(微工研菌寄第8446号)の
胞子を一白金耳接種し28℃で振盪培養を行なつ
た。培養終了後遠心集菌し、生理食塩水で十分洗
浄した後、0.1Mリン酸緩衝液(PH7.0)100mlに
懸濁し、超音波破砕器で細胞を破砕した。遠心分
離で細胞の破片を除去して、D−アミノアシラー
ゼの粗酵素液を得た。20%N−アセチル−DL−
バリンのナトリウム塩1.25ml、粗酵素液2.5ml、
0.5Mリン酸緩衝液(PH7.0)1.25mlおよび
EDTA1.25mgを混合した後、30℃で25時間撹拌し
ながら反応させた。一定時間ごとに反応液をサン
プリングし、生成物の分析をHPLCで行なつた。
分析方法は、キラルモービルフエイズ法で行なつ
た。この反応の経時変化を図3に示した。 比較例 2 実施例3と同様の方法で粗酵素液を調整し、20
%N−アセチル−DL−バリンのナトリウム塩
1.25ml、粗酵素液2.5mlおよび0.5Mリン酸緩衝液
(PH7.0)1.25mlを混合した後、30℃で25時間撹拌
しながら反応させた。一定時間ごとに反応液をサ
ンプリングし、生成物の分析をHPLCで行なつ
た。分析方法は、キラルモービルフエイズ法で行
なつた。この反応の経時変化を図4に示した。
図1−1、図1−2および図1−3は、実施例
2におけるD−体の反応率(D−バリンへの転化
率)、L−体の反応率(L−バリンへの転化率)
およびD−体の光学過剰率(e.e.)の経時変化を
表わす。図2−1、図2−2および図2−3は、
比較例1におけるD−体の反応率(D−バリンへ
の転化率)、L−体の反応率(L−バリンへの転
化率)およびD−体の光学過剰率(e.e.)の経時
変化を表わす。図3−1、図3−2および図3−
3は、実施例3におけるD−体の反応率(D−バ
リンへの転化率)、L−体の反応率(L−バリン
への転化率)およびD−体の光学過剰率(e.e.)
の経時変化を表わす。図4−1、図4−2および
図4−3は、比較例2におけるD−体の反応率
(D−バリンへの転化率)、L−体の反応率(L−
バリンへの転化率)およびD−体の光学過剰率
(e.e.)の経時変化を表わす。
2におけるD−体の反応率(D−バリンへの転化
率)、L−体の反応率(L−バリンへの転化率)
およびD−体の光学過剰率(e.e.)の経時変化を
表わす。図2−1、図2−2および図2−3は、
比較例1におけるD−体の反応率(D−バリンへ
の転化率)、L−体の反応率(L−バリンへの転
化率)およびD−体の光学過剰率(e.e.)の経時
変化を表わす。図3−1、図3−2および図3−
3は、実施例3におけるD−体の反応率(D−バ
リンへの転化率)、L−体の反応率(L−バリン
への転化率)およびD−体の光学過剰率(e.e.)
の経時変化を表わす。図4−1、図4−2および
図4−3は、比較例2におけるD−体の反応率
(D−バリンへの転化率)、L−体の反応率(L−
バリンへの転化率)およびD−体の光学過剰率
(e.e.)の経時変化を表わす。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 一般式 【式】 (ただし、Rは、低級アルキル基、置換低級アル
キル基、フエニル基、置換フエニル基、フリル
基、ピリジル基、チアゾリル基、イミダゾリル基
又はインドリル基を表わす。R′は直鎖状もしく
は分枝状のアシル基を表わす。XはH、Na、K、
NH4を表わす。)で表わされるN−アシル−DL
−アミノ酸もしくはその塩に、EDTAの存在下、
ストレプトミセス属に属しN−アシル基加水分解
能力を有する微生物菌体もしくは菌体処理物を作
用させることを特徴とするD−アミノ酸の製造
法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP18175186A JPS6339598A (ja) | 1986-08-01 | 1986-08-01 | D−アミノ酸の製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP18175186A JPS6339598A (ja) | 1986-08-01 | 1986-08-01 | D−アミノ酸の製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6339598A JPS6339598A (ja) | 1988-02-20 |
JPH0129560B2 true JPH0129560B2 (ja) | 1989-06-12 |
Family
ID=16106247
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP18175186A Granted JPS6339598A (ja) | 1986-08-01 | 1986-08-01 | D−アミノ酸の製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS6339598A (ja) |
-
1986
- 1986-08-01 JP JP18175186A patent/JPS6339598A/ja active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS6339598A (ja) | 1988-02-20 |
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
EXPY | Cancellation because of completion of term |