JPH01285858A - 抗酸菌の核酸配列測定用試薬およびこの試薬を用いる核酸配列測定法 - Google Patents
抗酸菌の核酸配列測定用試薬およびこの試薬を用いる核酸配列測定法Info
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- JPH01285858A JPH01285858A JP11472088A JP11472088A JPH01285858A JP H01285858 A JPH01285858 A JP H01285858A JP 11472088 A JP11472088 A JP 11472088A JP 11472088 A JP11472088 A JP 11472088A JP H01285858 A JPH01285858 A JP H01285858A
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Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
[)I+′業1.の利用分野]
未発1!1は、抗酸菌から核酸を抽出し配列を測定−i
るための試薬署・びにこの試薬の使用に関するものであ
る、 更に+ii L (は、臨床検査領域等における結核菌
に代表、ぎれる抗酸菌の同定、あるいjf検出に4f
ttJな核酸の抽出試薬、および試験に関するものであ
る。
るための試薬署・びにこの試薬の使用に関するものであ
る、 更に+ii L (は、臨床検査領域等における結核菌
に代表、ぎれる抗酸菌の同定、あるいjf検出に4f
ttJな核酸の抽出試薬、および試験に関するものであ
る。
[従来技術]
遺伝イの分析にあたっては、一般に細胞からの核酸の抽
出が必要となる。中でも臨床検査領域等を中心として実
用化されている病原性の微生物やウィルス、あるいは発
癌遺伝f−に代表される異常遺伝子等の核酸ハイブリダ
イゼーションアッセイ(以下DNA−HAと略す)等に
おいては、細胞からの核酸抽出効率が分析感度を左右す
る。
出が必要となる。中でも臨床検査領域等を中心として実
用化されている病原性の微生物やウィルス、あるいは発
癌遺伝f−に代表される異常遺伝子等の核酸ハイブリダ
イゼーションアッセイ(以下DNA−HAと略す)等に
おいては、細胞からの核酸抽出効率が分析感度を左右す
る。
特に一般の細菌や真核細胞等に比べて構造[、核酸の抽
出が困難な結核菌に代表される抗酸菌の核酸分析では、
核酸の抽出が大きな問題となる。従来より一般細菌を対
象としてプロテアーゼ等の酵素類、ドデシル硫酩ナトリ
ウム、トリトン等W面活性剤を用いる抽出法が知られて
いる。抗酸菌の場合もこれらの方法が試みられたが、収
率に関しては必ずしも満足できるものではなかった。
出が困難な結核菌に代表される抗酸菌の核酸分析では、
核酸の抽出が大きな問題となる。従来より一般細菌を対
象としてプロテアーゼ等の酵素類、ドデシル硫酩ナトリ
ウム、トリトン等W面活性剤を用いる抽出法が知られて
いる。抗酸菌の場合もこれらの方法が試みられたが、収
率に関しては必ずしも満足できるものではなかった。
収率の向トを[1的として、海砂やビーズ等の微粒子押
体と細胞とを拐突させこれを粉砕する方法や、超gf波
処理による抽出、あるいは両名の併用(特開昭62−2
36478)1が報告されている。現在臨床検査用に市
販されているキン)の使用にあt−っでも、検体からの
核酸抽出のために超T%波処理装置を併用しているのが
実情である。
体と細胞とを拐突させこれを粉砕する方法や、超gf波
処理による抽出、あるいは両名の併用(特開昭62−2
36478)1が報告されている。現在臨床検査用に市
販されているキン)の使用にあt−っでも、検体からの
核酸抽出のために超T%波処理装置を併用しているのが
実情である。
しか]2微粒子−但体の使用は煩雑であり、超音波処理
においては場合により抽出された核酸が壊れてしまうこ
ともある[ザルター等(5alter D、W。
においては場合により抽出された核酸が壊れてしまうこ
ともある[ザルター等(5alter D、W。
et、al、)ブリデイツシュ ジャーナル オブ ニ
、−1・ライジョン(Br1tish Journal
of Nutローtion )jl、531−539
(1984)] 、このように、現在知られている抗酸
菌の核酸抽出技術はそれぞれ問題C,IN、を右してお
り、迅速で簡便な核酸抽出技術の開発がq;まれている
。
、−1・ライジョン(Br1tish Journal
of Nutローtion )jl、531−539
(1984)] 、このように、現在知られている抗酸
菌の核酸抽出技術はそれぞれ問題C,IN、を右してお
り、迅速で簡便な核酸抽出技術の開発がq;まれている
。
[発1!1の目的1
本発明は、これまで困難とされていた抗酸菌の核酸抽出
を容易に行ないうる試薬と、これを用いる核酸配列測定
法の提供を1−1的としている。
を容易に行ないうる試薬と、これを用いる核酸配列測定
法の提供を1−1的としている。
[発明の構成]
本発明は、核酸抽出用試薬としてリゾチームを含んでな
ることを特徴とする抗酸菌の核酸配列測定用試薬、およ
び抗酸菌にリッヂ−1、をf1用、させて核酸を抽出し
これを試料として用いることを特徴とする核酸配列測定
法である。
ることを特徴とする抗酸菌の核酸配列測定用試薬、およ
び抗酸菌にリッヂ−1、をf1用、させて核酸を抽出し
これを試料として用いることを特徴とする核酸配列測定
法である。
本発明の核酸配列測定用試薬および核酸配列測定法にお
いて用いられるリゾデームは、その由来が特に限定され
るものではなく、いづれのリゾチームも使用可能である
。
いて用いられるリゾデームは、その由来が特に限定され
るものではなく、いづれのリゾチームも使用可能である
。
本発明による核酸配列測定用試薬は、少なくともリゾチ
ームを含んでいれば使用することができるが、リゾチー
ムの他に好適な反応条ヂ]を与えることを目的として緩
衝剤等を含有することもできる。また試薬の安定化を図
るために、公知の酵素安定剤を加えることもできる。こ
れらの試薬成分は溶液状態で供給してもよいし、凍結乾
帰することにより乾燥状態で供給することもできる。
ームを含んでいれば使用することができるが、リゾチー
ムの他に好適な反応条ヂ]を与えることを目的として緩
衝剤等を含有することもできる。また試薬の安定化を図
るために、公知の酵素安定剤を加えることもできる。こ
れらの試薬成分は溶液状態で供給してもよいし、凍結乾
帰することにより乾燥状態で供給することもできる。
次いで本発明による核酸測定〃、について説明する。本
発明においては、微粒子担体や超ン″Y波処理装置等を
用いることなく、実質的にリゾチームの作用のみによっ
て核酸の抽出が行なわれる。このときのリソf−ムの使
用条件は酵素の特性に合わせて設定されるものであり、
特定の範囲に限定されるものではないが特に好ましい条
件を例示すると市販きれている卵白由来の精製品を使う
場合p+(70〜80、酵素濃度は2〜8mg/ml程
度が挙げられる。
発明においては、微粒子担体や超ン″Y波処理装置等を
用いることなく、実質的にリゾチームの作用のみによっ
て核酸の抽出が行なわれる。このときのリソf−ムの使
用条件は酵素の特性に合わせて設定されるものであり、
特定の範囲に限定されるものではないが特に好ましい条
件を例示すると市販きれている卵白由来の精製品を使う
場合p+(70〜80、酵素濃度は2〜8mg/ml程
度が挙げられる。
このようにして得られたリゾチーム処理試料は公知の核
酸配列測定法に供される。好ましい核酸配列測定法とし
ては、・\イドロキシルアパタイトや各種固相を利用し
たDNA−HAを挙げることができる。中でも本願出願
人が先に出願した強塩基性ポリアミノ酸被覆ビーズを利
用する方法と本発明法の組み合わせは、より簡便でより
迅速なアンセイ系を可能とするものである。
酸配列測定法に供される。好ましい核酸配列測定法とし
ては、・\イドロキシルアパタイトや各種固相を利用し
たDNA−HAを挙げることができる。中でも本願出願
人が先に出願した強塩基性ポリアミノ酸被覆ビーズを利
用する方法と本発明法の組み合わせは、より簡便でより
迅速なアンセイ系を可能とするものである。
[発明の作用]
未発1!I+にかかる核酸配列測定用試薬並びに核酸配
列測定法におけるリゾチームは、抗酸菌の膜構造を破壊
し核酸の溶出を促准する作用を有するものである。リソ
チーI・は溶菌酵素としては知られ−Cいるか、抗酸菌
の核酸配列測定用試料の調製のために使用しうることは
知られていない。
列測定法におけるリゾチームは、抗酸菌の膜構造を破壊
し核酸の溶出を促准する作用を有するものである。リソ
チーI・は溶菌酵素としては知られ−Cいるか、抗酸菌
の核酸配列測定用試料の調製のために使用しうることは
知られていない。
以下実施例に基づいて、本発明を更に詳しく説明する。
[実施例]
実施例1.結核菌の核酸抽出並びにDNA−HAO核酸
抽出液 25IIMトリスー塩酸M#i液(pH7,0)にリゾ
チーI、(和光純薬工業輛製)を4mg/+il加えて
核酸抽出液とした。
抽出液 25IIMトリスー塩酸M#i液(pH7,0)にリゾ
チーI、(和光純薬工業輛製)を4mg/+il加えて
核酸抽出液とした。
○核酸の抽出
1%小川用11!!(栄研化学■製)表面の被検菌コロ
ニーをかき取って滅菌水に浮遊さぜ、ナンバー1マクフ
アーランドスタンダードで菌数が試験管1本当り 3X
105〜3X 10”となるように調整した。
ニーをかき取って滅菌水に浮遊さぜ、ナンバー1マクフ
アーランドスタンダードで菌数が試験管1本当り 3X
105〜3X 10”となるように調整した。
この菌体浮遊液100−に核酸抽出液100 ppを加
え、室温で1時間反応させて菌体内の核酸を溶出させ試
料溶液とした。
え、室温で1時間反応させて菌体内の核酸を溶出させ試
料溶液とした。
なお被検菌は結核菌としてマイコバクテリウムを、に、
l jgjとしてでイコ・ヘクテリウム・アビウム(N
ヶ−VすI−!り夕明いた。
l jgjとしてでイコ・ヘクテリウム・アビウム(N
ヶ−VすI−!り夕明いた。
0−ドIl −L−1・ごユ・被覆に−ズの調製0 1
M) ” 2 j!j 酸緩#M (pH7
,3) LmI011g/ml Q10r’fリ−
■、−リ・ン〉・(以ドP L Lと略す)114M鳴
(No、P−1399,ジグマンI製)を溶がし、この
中にボリスチ[・7′ヒーズ(1/4 ・インチ−1活
水化学丁業昧Sj)を浸清り、て室温で1時間感恰させ
た。これG、 0.025M ) ’J ス−11xl
’1lfi液(PH7,4) −c洗浄り、テP L
L被覆上−ズを得た。
M) ” 2 j!j 酸緩#M (pH7
,3) LmI011g/ml Q10r’fリ−
■、−リ・ン〉・(以ドP L Lと略す)114M鳴
(No、P−1399,ジグマンI製)を溶がし、この
中にボリスチ[・7′ヒーズ(1/4 ・インチ−1活
水化学丁業昧Sj)を浸清り、て室温で1時間感恰させ
た。これG、 0.025M ) ’J ス−11xl
’1lfi液(PH7,4) −c洗浄り、テP L
L被覆上−ズを得た。
0標識イ11−、ブ
プローブDNAとして25+merオリゴヌクレオー1
1・合成プローブ(1木鎖)を塩化タリウムを用い−C
N a 1:′’Iで標識し、標識プローブとした。
1・合成プローブ(1木鎖)を塩化タリウムを用い−C
N a 1:′’Iで標識し、標識プローブとした。
なお合俵4プローグは、アプライドバイオシステムを乃
1.I S A合成機を使−〕て〕β−シアノエチルア
ミダイトにより合l&シたものを用いた。
1.I S A合成機を使−〕て〕β−シアノエチルア
ミダイトにより合l&シたものを用いた。
○D N A −HA
前記試本1溶液中を2規定の水醇化ナトリウム水溶靜2
0μpによりアルカ1)処理した後2規定の1′1!酎
で中和し、これにPLL被覆ビーズを侵漬I7て、65
℃で1峙間放置してRNAを固定後0.025M )リ
スーI′!!醇緩衝液(pH7,4)300i117で
洗節した。このPL L被覆ビーズの入った試験管へ、
標識プローブを含むハイブリダイゼーション溶液200
u ヲ分111ッた。
0μpによりアルカ1)処理した後2規定の1′1!酎
で中和し、これにPLL被覆ビーズを侵漬I7て、65
℃で1峙間放置してRNAを固定後0.025M )リ
スーI′!!醇緩衝液(pH7,4)300i117で
洗節した。このPL L被覆ビーズの入った試験管へ、
標識プローブを含むハイブリダイゼーション溶液200
u ヲ分111ッた。
ハイブリダイゼーション溶液の組成は。
6X S S C’
10膓ME D T A
5XPM 傘ψ
0゜5%SDS傘會赤
傘:1XSSCの組成は0.15M食塩、0.15Mク
エン酸ナトリウムである ”:lXPMの組成は0.02%ポリビニルピロリドン
、0.02%フィコール、および’0.02%ウシ血清
アルブミンである 一#−:S D SはFデシル硫酸すトリウム水溶液で
ある。また標識プローブは試験管1本当り 3×+05
cps (S、A、: 8X 10’ cps/K ・
DNA)となるように加えた。
エン酸ナトリウムである ”:lXPMの組成は0.02%ポリビニルピロリドン
、0.02%フィコール、および’0.02%ウシ血清
アルブミンである 一#−:S D SはFデシル硫酸すトリウム水溶液で
ある。また標識プローブは試験管1本当り 3×+05
cps (S、A、: 8X 10’ cps/K ・
DNA)となるように加えた。
65°Cで1時間ハイブリダイズさぜた後ハイブリダイ
ゼーション溶液を除去し、更に0.1%SDS含イIO
,1Xssc溶液300μρで洗MI L、γ−カウン
ターでPLL被覆ビーズ上の標識プローブに由来する放
射縁縫を、11数した。結果は第1図に示すとおりであ
る。
ゼーション溶液を除去し、更に0.1%SDS含イIO
,1Xssc溶液300μρで洗MI L、γ−カウン
ターでPLL被覆ビーズ上の標識プローブに由来する放
射縁縫を、11数した。結果は第1図に示すとおりであ
る。
実施例2.結核菌の核酸抽出並びにDNA−HA核酎耐
出液とし、て、次のものを用いる他は、実施例1と同様
の操れにより核酸抽出とDNA−HAを行なった。
出液とし、て、次のものを用いる他は、実施例1と同様
の操れにより核酸抽出とDNA−HAを行なった。
O核酸抽出液
50mM )リス−塩酸緩衝液(pH7,5)にリゾチ
ーム(和光紬薬[−業■製)を4mg/ml加えて核酸
抽出液とした。
ーム(和光紬薬[−業■製)を4mg/ml加えて核酸
抽出液とした。
結果は第2図に示した。
実施例3.結核菌の核酸抽出管ひにDNA−HA○核酎
の耐出 実施例1と同様の核酸抽出液および被検菌を用い、同一
の操作に従って試料溶液を得た。
の耐出 実施例1と同様の核酸抽出液および被検菌を用い、同一
の操作に従って試料溶液を得た。
0DNA−HA
前記試料溶液に、試験管1本当り IX 105cps
(S、A、: 8X 10’ cp+*/lJg−DN
A)となるように標識プローブを混ぜたハイブリダイゼ
ーション溶液を加え、65°Cで1時間ハイブリダイズ
させた。なおハイブリダイゼーション溶液は、実施例1
と同じものを用いた。
(S、A、: 8X 10’ cp+*/lJg−DN
A)となるように標識プローブを混ぜたハイブリダイゼ
ーション溶液を加え、65°Cで1時間ハイブリダイズ
させた。なおハイブリダイゼーション溶液は、実施例1
と同じものを用いた。
反応終了後、1%ハイトロキシルアパタイトを含む0.
2Mリン酸緩衝液(pH7,0) 1mlを加え、2分
間攪拌した後1分間遠心分離した。上清を吸引除去した
後0.005%SDS含有0.08Mリン酸緩IT液(
pH7,0) 1mlで洗浄し、沈渣の放射線鼠をカウ
ントして次の式に従ってB/T%を決定した。結果は第
3図に示した。
2Mリン酸緩衝液(pH7,0) 1mlを加え、2分
間攪拌した後1分間遠心分離した。上清を吸引除去した
後0.005%SDS含有0.08Mリン酸緩IT液(
pH7,0) 1mlで洗浄し、沈渣の放射線鼠をカウ
ントして次の式に従ってB/T%を決定した。結果は第
3図に示した。
プローブの総カウント数
実施例4.リゾチームの作用条件の検討A 、 p)l
の検討 緩檜剤としてトリス−塩酸緩衝液を用いた場合における
リゾチーム作用時のpHについて、次のような方法によ
り検討を行なった。
の検討 緩檜剤としてトリス−塩酸緩衝液を用いた場合における
リゾチーム作用時のpHについて、次のような方法によ
り検討を行なった。
実施例1における25mM1リス−塩酸緩衝液のpHを
50〜8.0とし菌数を試験管1本当り 1XlOi
と1−る他は、実施例1と同様の操作に従って結核菌の
核酸抽出並びにDNA−HAを行なった。なお被検菌と
してはマイコバクテリウム・ラベルクロシスを用いた。
50〜8.0とし菌数を試験管1本当り 1XlOi
と1−る他は、実施例1と同様の操作に従って結核菌の
核酸抽出並びにDNA−HAを行なった。なお被検菌と
してはマイコバクテリウム・ラベルクロシスを用いた。
結果は第4図に示すとおりpH7,0〜 80の範囲に
おいて、最も高い抽出効率が?j) 1′)ねt−0 B 、緩衝剤濃1&の検、ト1 リンチー1、を竹田させるときの緩衝剤としてト11ス
ー塩醜緩衝液を用いた場合の緩衝剤濃度について、次の
ような方法により検討を行なった。
おいて、最も高い抽出効率が?j) 1′)ねt−0 B 、緩衝剤濃1&の検、ト1 リンチー1、を竹田させるときの緩衝剤としてト11ス
ー塩醜緩衝液を用いた場合の緩衝剤濃度について、次の
ような方法により検討を行なった。
実施例1におけるトリス−1ム酸緩酌液(pH7,0)
のin Iffを 0−100mMとし菌数を試験管1
本当りlXl0Iと1−る他は、実施例1と同様の操作
に従って結核菌の核酸抽出並びにDNA−HAを行な、
った6なお被検菌としては、マイコバクテリウド・ラベ
ルクロシスを用いた。結果は第5図に示すとおり25〜
75mMの範囲において、最も高い抽出効率か得られた
。
のin Iffを 0−100mMとし菌数を試験管1
本当りlXl0Iと1−る他は、実施例1と同様の操作
に従って結核菌の核酸抽出並びにDNA−HAを行な、
った6なお被検菌としては、マイコバクテリウド・ラベ
ルクロシスを用いた。結果は第5図に示すとおり25〜
75mMの範囲において、最も高い抽出効率か得られた
。
C作用時間の検討
緩衝剤として2511M)リスーj!!酸緩術液を用い
た場合におけるリゾチームの作用時間について、次のよ
うな方法により検討を行なった。
た場合におけるリゾチームの作用時間について、次のよ
うな方法により検討を行なった。
実施例1におけるリゾチームの作用時間を10−180
分間、並びに1晩とし菌数を試験管1本当り+x 1o
ノとする他は、実施例Iと同様の操f’li、:従って
結核菌の核酸抽出並びにDNA−HAを行なった。なお
被検菌としてはマイコバクテリウム・ラベルクロシスを
用いた。結果は、第6図にrj< #ように作用時間6
0分で抽出効果のプラトーに達1゜ている。
分間、並びに1晩とし菌数を試験管1本当り+x 1o
ノとする他は、実施例Iと同様の操f’li、:従って
結核菌の核酸抽出並びにDNA−HAを行なった。なお
被検菌としてはマイコバクテリウム・ラベルクロシスを
用いた。結果は、第6図にrj< #ように作用時間6
0分で抽出効果のプラトーに達1゜ている。
[発151の効果]
本発明によれば、伺帯操作や特殊な装置を用いることな
く核酸配列測定に供する抗酸菌より核酸の抽出を行ない
うる。すなわちリッチ−I、以閃の特別な試薬やあるい
は超音波処理装置等が不夛であるため、従来技術に比べ
舒済的に有利である。
く核酸配列測定に供する抗酸菌より核酸の抽出を行ない
うる。すなわちリッチ−I、以閃の特別な試薬やあるい
は超音波処理装置等が不夛であるため、従来技術に比べ
舒済的に有利である。
また1本の試験管内で菌体からの核酸抽出からDN A
−HAまでを行ないうるため操作性の点でも右利である
。ことに先に述へた強塩基性ポリアミノ酩被覆ビーズを
用いるDNA−HAと本発明との組み合わせは、簡便H
の点において非常に有利なものであり、抗酸菌のDNA
−HAの臨床応用に大きな有用性をゲえるものと考えら
れる。
−HAまでを行ないうるため操作性の点でも右利である
。ことに先に述へた強塩基性ポリアミノ酩被覆ビーズを
用いるDNA−HAと本発明との組み合わせは、簡便H
の点において非常に有利なものであり、抗酸菌のDNA
−HAの臨床応用に大きな有用性をゲえるものと考えら
れる。
・力、従来技術では抗酸菌のように強固な外膜を右する
微生物の核酸抽出は困難であり、特殊な抽出操竹を要す
るのみならず、抽出効率そのものが満riで、きない場
合もあった。しかし本発明によれば高い収率の維持が可
能であり、したがって少%の検体から[1的とする抗酸
菌を高感度で検出することがrIf能となる。
微生物の核酸抽出は困難であり、特殊な抽出操竹を要す
るのみならず、抽出効率そのものが満riで、きない場
合もあった。しかし本発明によれば高い収率の維持が可
能であり、したがって少%の検体から[1的とする抗酸
菌を高感度で検出することがrIf能となる。
更に未発1!IIにおけるリッチ〜J・は、抗酸菌の膜
構造に作用するため、超音波処理の際にみられるような
核酸への影響を回避できる。
構造に作用するため、超音波処理の際にみられるような
核酸への影響を回避できる。
第1図は実施例1の結果を、第2図は実施例2の結果を
゛示]グラフである。図中、縦軸は試験管l本当りのP
L L被覆ビーズ[−の標識プローブに由来1− ;
!N放射線椿の計数値を、横軸は試験管l本当りの細胞
数を示す。 第3図は実施例3の結果を示すグラフである。 図中、縦軸はB/T%を、横軸は試験管1本当りの細胞
数を示す。 第4図〜第6図は実施例4の結果を示すグラフである。 図中、縦軸は試験管1本当りのF T= L被覆ビーズ
トの標識プローブに由来する放射線¥の計数イ4を、横
軸はp)l(第4図)、]・]リスー塩酎緩衝剤濃度第
5図)または作用時間(第6図)を示す。 特 許 出 順 大 栄研化学株式会ン1 第1図 第2図 第3図 (ビB、、1..1 / tub(:q第4図 第5図 作用時間(分)
゛示]グラフである。図中、縦軸は試験管l本当りのP
L L被覆ビーズ[−の標識プローブに由来1− ;
!N放射線椿の計数値を、横軸は試験管l本当りの細胞
数を示す。 第3図は実施例3の結果を示すグラフである。 図中、縦軸はB/T%を、横軸は試験管1本当りの細胞
数を示す。 第4図〜第6図は実施例4の結果を示すグラフである。 図中、縦軸は試験管1本当りのF T= L被覆ビーズ
トの標識プローブに由来する放射線¥の計数イ4を、横
軸はp)l(第4図)、]・]リスー塩酎緩衝剤濃度第
5図)または作用時間(第6図)を示す。 特 許 出 順 大 栄研化学株式会ン1 第1図 第2図 第3図 (ビB、、1..1 / tub(:q第4図 第5図 作用時間(分)
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1)核酸抽出用試薬としてリゾチームを含んでなること
を特徴とする抗酸菌の核酸配列測定用試薬 2)抗酸菌にリゾチームを作用させて核酸を抽出しこれ
を試料として用いることを特徴とする核酸配列測定法 3)リゾチームとして卵白リゾチームを用い、pH7.
0〜8.0の範囲内で抗酸菌に作用させることを特徴と
する請求項2に記載の核酸配列測定法
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP11472088A JPH01285858A (ja) | 1988-05-13 | 1988-05-13 | 抗酸菌の核酸配列測定用試薬およびこの試薬を用いる核酸配列測定法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP11472088A JPH01285858A (ja) | 1988-05-13 | 1988-05-13 | 抗酸菌の核酸配列測定用試薬およびこの試薬を用いる核酸配列測定法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH01285858A true JPH01285858A (ja) | 1989-11-16 |
Family
ID=14644933
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP11472088A Pending JPH01285858A (ja) | 1988-05-13 | 1988-05-13 | 抗酸菌の核酸配列測定用試薬およびこの試薬を用いる核酸配列測定法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH01285858A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH07140132A (ja) * | 1993-04-06 | 1995-06-02 | Boehringer Mannheim Gmbh | 試料液中の分析物の測定 |
US5595876A (en) * | 1993-08-13 | 1997-01-21 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | In situ extraction of microbial DNA |
-
1988
- 1988-05-13 JP JP11472088A patent/JPH01285858A/ja active Pending
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH07140132A (ja) * | 1993-04-06 | 1995-06-02 | Boehringer Mannheim Gmbh | 試料液中の分析物の測定 |
US5595876A (en) * | 1993-08-13 | 1997-01-21 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | In situ extraction of microbial DNA |
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