JPH01148183A - 組み換えワクチニアウイルス - Google Patents
組み換えワクチニアウイルスInfo
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- JPH01148183A JPH01148183A JP62306980A JP30698087A JPH01148183A JP H01148183 A JPH01148183 A JP H01148183A JP 62306980 A JP62306980 A JP 62306980A JP 30698087 A JP30698087 A JP 30698087A JP H01148183 A JPH01148183 A JP H01148183A
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- C07—ORGANIC CHEMISTRY
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- C12N2740/10011—Retroviridae
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- C12N2740/16211—Human Immunodeficiency Virus, HIV concerning HIV gagpol
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は組み換えワクチニアウィルスに関し、更に詳し
くは、ワクチニアウィルスの増殖に非必須なゲノムDN
A領域にヒト免疫不全症候群ウィルス(llusan
lm5unodeficiency Virus) H
I V(HTLV−Iff/LAV)由来のoag遺伝
子等をコードするcDNAが組み込まれた組み換えワク
チニアウィルスに関する。
くは、ワクチニアウィルスの増殖に非必須なゲノムDN
A領域にヒト免疫不全症候群ウィルス(llusan
lm5unodeficiency Virus) H
I V(HTLV−Iff/LAV)由来のoag遺伝
子等をコードするcDNAが組み込まれた組み換えワク
チニアウィルスに関する。
(従来の技術)
最近、後天性免疫不全症候群(エイズ)の発症、蔓延が
世界的に憂慮されており、その予防、治療対策が緊急課
題となっている。
世界的に憂慮されており、その予防、治療対策が緊急課
題となっている。
数年前より、その原因ウィルスと考えられる種種のレト
ロウィルスが生離され、同定されている(例えGj H
T L V −DI、LAV、ARV)、 そ(7)後
、これらの遺伝子の全塩基配列が決定され、これらは、
同類又は同一であるらしいと報告されるようになり、そ
してヒト免疫不全症候群ウィルスHI V (Huma
n Immunodeficiency Virus)
と総称されるようになった。
ロウィルスが生離され、同定されている(例えGj H
T L V −DI、LAV、ARV)、 そ(7)後
、これらの遺伝子の全塩基配列が決定され、これらは、
同類又は同一であるらしいと報告されるようになり、そ
してヒト免疫不全症候群ウィルスHI V (Huma
n Immunodeficiency Virus)
と総称されるようになった。
HI V G、?、約10kb(キロベース)のRNA
から成るゲノムを有するレトロウィルスであると考えら
れている。このウィルス粒子は、多くの蛋白質で構成さ
れているが、これらの蛋白質は、外皮糖蛋白env−(
Jg)160 (前駆体)[apH0〜120及びap
41 (スパイク)1、逆転写酵素pol蛋白p65及
びp51、核蛋白aaa−p55 (前駆体)[p17
、p24及びp15]等と命名されている。また、HI
Vに独特なものと言われるウィルス遺伝子発現を調節す
るウィルス蛋白(3’ orfltat、、ar″t/
lrs及び5or)等も知られている。
から成るゲノムを有するレトロウィルスであると考えら
れている。このウィルス粒子は、多くの蛋白質で構成さ
れているが、これらの蛋白質は、外皮糖蛋白env−(
Jg)160 (前駆体)[apH0〜120及びap
41 (スパイク)1、逆転写酵素pol蛋白p65及
びp51、核蛋白aaa−p55 (前駆体)[p17
、p24及びp15]等と命名されている。また、HI
Vに独特なものと言われるウィルス遺伝子発現を調節す
るウィルス蛋白(3’ orfltat、、ar″t/
lrs及び5or)等も知られている。
エイズ感染の診断を行なうためには、そのウィルス固有
の抗原蛋白を効率的に生産することが必要である。また
、効果的なエイズワクチンを得ようとする場合には、そ
れはウィルスを中和し得る抗体を誘導するのに適当な抗
原を含んでいることが必要である。現在までのところ、
外皮糖蛋白特にGE)120がその最有力候補として選
ばれ、この抗原蛋白をコードする遺伝子を、大WA菌に
組み換える遺伝子操作技術によって産生ずる研究(例え
ば、雑誌「サイエンス(5cience ) J 22
8巻93〜96頁1985年)、酵母に組み換える遺伝
子操作技術によって産生ずる研究(例えば、特開昭61
−173,782号公報)、哺乳動物細胞を宿主として
組み換え体を発現産生する研究(例えば、特開昭61−
233.700号公報及び雑誌「サイエンス(Scie
nce ) J 233巻、209頁1986年)、及
びワクチニアウィルスに組み換える遺伝子操作によって
産生ずる?ill究が既に行われている(例えば雑誌「
ネーチャー(Nature) J 320巻、535〜
537頁1986年、及び雑誌「バイオ/テクノロジー
(Bio /Technology) J 4巻、79
0〜795頁1986年)。また、逆転写酵素pol蛋
白を大腸菌に組み換え遺伝子操作によって産生ずる研究
(例えば、雑誌[サイエンス(Science ) J
236巻305〜308頁1987年)、核蛋白ga
a−p55やp24などを組み換え多角体ウィルスの系
で産生ずる研究も行われている(Virology、
158 。
の抗原蛋白を効率的に生産することが必要である。また
、効果的なエイズワクチンを得ようとする場合には、そ
れはウィルスを中和し得る抗体を誘導するのに適当な抗
原を含んでいることが必要である。現在までのところ、
外皮糖蛋白特にGE)120がその最有力候補として選
ばれ、この抗原蛋白をコードする遺伝子を、大WA菌に
組み換える遺伝子操作技術によって産生ずる研究(例え
ば、雑誌「サイエンス(5cience ) J 22
8巻93〜96頁1985年)、酵母に組み換える遺伝
子操作技術によって産生ずる研究(例えば、特開昭61
−173,782号公報)、哺乳動物細胞を宿主として
組み換え体を発現産生する研究(例えば、特開昭61−
233.700号公報及び雑誌「サイエンス(Scie
nce ) J 233巻、209頁1986年)、及
びワクチニアウィルスに組み換える遺伝子操作によって
産生ずる?ill究が既に行われている(例えば雑誌「
ネーチャー(Nature) J 320巻、535〜
537頁1986年、及び雑誌「バイオ/テクノロジー
(Bio /Technology) J 4巻、79
0〜795頁1986年)。また、逆転写酵素pol蛋
白を大腸菌に組み換え遺伝子操作によって産生ずる研究
(例えば、雑誌[サイエンス(Science ) J
236巻305〜308頁1987年)、核蛋白ga
a−p55やp24などを組み換え多角体ウィルスの系
で産生ずる研究も行われている(Virology、
158 。
248−250 (1987))。
ところで、種々の患者や感染者から分離されたHIVの
ゲノム塩基配列の解析結果より、HIVのenvll伝
子は極めて変異が激しい事が明らかとなり(Sci、
Am、253.84−93 (1985))、この部位
を利用する手法ではすべてのHIVに対応できない懸念
がある。
ゲノム塩基配列の解析結果より、HIVのenvll伝
子は極めて変異が激しい事が明らかとなり(Sci、
Am、253.84−93 (1985))、この部位
を利用する手法ではすべてのHIVに対応できない懸念
がある。
これに反し、ウィルス粒子の骨組みとなるタンパク質の
産生に関与するgagや主として逆転写酵素をコードし
ているpol遺伝子はenv遺伝子とは異なり変異の起
こる確率が低い可能性もありそれだけ有利とも言える。
産生に関与するgagや主として逆転写酵素をコードし
ているpol遺伝子はenv遺伝子とは異なり変異の起
こる確率が低い可能性もありそれだけ有利とも言える。
しかしながら、QaQやpol遺伝子産物を大腸菌等の
バクテリアや酵母、あるいは、昆虫ウィルスなどの系を
用いて産生させた場合、例えば、HIVの感染防御ある
いはヒト免疫不全症候群(エイズ)又はエイズ1!13
!症候群(ARC)の発症予防を目的にする場合には異
物の混入を避けるため複雑な精製工程が必要となってく
る。これに反し、QaQあるいはpol遺伝子をコード
するCDNAを遺伝子操作によって種痘ワクチン株ウィ
ルスに組み込んだ場合には、直接生体に接種できる可能
性があり、それだけ有利と言えるが、ワクチニアウィル
スにこれらcDNAを組み込んで遺伝子産物を生産させ
た例は未だ知られていない。
バクテリアや酵母、あるいは、昆虫ウィルスなどの系を
用いて産生させた場合、例えば、HIVの感染防御ある
いはヒト免疫不全症候群(エイズ)又はエイズ1!13
!症候群(ARC)の発症予防を目的にする場合には異
物の混入を避けるため複雑な精製工程が必要となってく
る。これに反し、QaQあるいはpol遺伝子をコード
するCDNAを遺伝子操作によって種痘ワクチン株ウィ
ルスに組み込んだ場合には、直接生体に接種できる可能
性があり、それだけ有利と言えるが、ワクチニアウィル
スにこれらcDNAを組み込んで遺伝子産物を生産させ
た例は未だ知られていない。
(発明が解決しようとする問題点)
本発明は、ヒト免疫不全症候群ウィルス(tlusan
Iavunodeficiency Virus)
l−11V(HTLV−111/LAV)由来のaaa
311伝子、あるいはgag、po1両方の遺伝子をコ
ードするCDNAを、ワクチニアウィルスの増殖に非必
須なゲノム領域に組み込んだ組み換えワクチニアウィル
スを発現され、各遺伝子産物を生産する技術を提供しよ
うとするものである。
Iavunodeficiency Virus)
l−11V(HTLV−111/LAV)由来のaaa
311伝子、あるいはgag、po1両方の遺伝子をコ
ードするCDNAを、ワクチニアウィルスの増殖に非必
須なゲノム領域に組み込んだ組み換えワクチニアウィル
スを発現され、各遺伝子産物を生産する技術を提供しよ
うとするものである。
本発明において組み換えウィルスの作製に供されるウィ
ルスはワクチニアウィルスに分類されるウィルスであれ
ばいかなるものでもよく、例えばWR株(ジャーナル
オブ ヴイロロジ−49゜857、(1984)、リス
ター株、リスター株の温度感受性変異株(米国特許第4
,567.147号、特開昭62−44178号参照)
)、New York Board or 1leal
th株、1016m8株などの種痘ワクチン株(ワクチ
ン抗原用ベクターとしてのワクチニアウィルス“vac
cinia virusesaS V13CtOrS
for Vaccine Antigens ”
pp、87−100.ジエイ、 キンナン(J、 o
utnnan、 )編アムステルダム、ニューヨークお
よびオックスフォード:エルセバー社) (Eisev
ier)版)などが例示される。
ルスはワクチニアウィルスに分類されるウィルスであれ
ばいかなるものでもよく、例えばWR株(ジャーナル
オブ ヴイロロジ−49゜857、(1984)、リス
ター株、リスター株の温度感受性変異株(米国特許第4
,567.147号、特開昭62−44178号参照)
)、New York Board or 1leal
th株、1016m8株などの種痘ワクチン株(ワクチ
ン抗原用ベクターとしてのワクチニアウィルス“vac
cinia virusesaS V13CtOrS
for Vaccine Antigens ”
pp、87−100.ジエイ、 キンナン(J、 o
utnnan、 )編アムステルダム、ニューヨークお
よびオックスフォード:エルセバー社) (Eisev
ier)版)などが例示される。
またQaQ遺伝子、あるいはgag、po1両方の遺伝
子をコードするCDNAは、例えばpNL43 (Jo
urnal of Virolooy、 Vo159.
tkx2.284.1986)などのように、エイズ
患者の染色体にプロウィルスの形で組み込まれた)11
Vを一旦λファージ等を用いてクローニングし、その後
プラスミドに移してHIVの全cDNAを含むプラスミ
ドを構築するか、あるいは、患者より分離したHIVの
RNAゲノムを逆転写してCDNAに変換し、その後プ
ラスミドに移してHIVの全CDNAを含むプラスミド
を構築し、得られたプラスミドを適当な制限酵素で切断
し、QaQ、あるいは、gag、po1両方のコード領
域を含むDNA断片を調製することによって得られる。
子をコードするCDNAは、例えばpNL43 (Jo
urnal of Virolooy、 Vo159.
tkx2.284.1986)などのように、エイズ
患者の染色体にプロウィルスの形で組み込まれた)11
Vを一旦λファージ等を用いてクローニングし、その後
プラスミドに移してHIVの全cDNAを含むプラスミ
ドを構築するか、あるいは、患者より分離したHIVの
RNAゲノムを逆転写してCDNAに変換し、その後プ
ラスミドに移してHIVの全CDNAを含むプラスミド
を構築し、得られたプラスミドを適当な制限酵素で切断
し、QaQ、あるいは、gag、po1両方のコード領
域を含むDNA断片を調製することによって得られる。
本発明を実施するに当たっては、まずワクチニアウィル
スの増殖に非必須なりNA領領域組み込んだ第一の組み
換えベクターが作製される。同領域にワクチニアウィル
ス内で機能するプロモーターが含まれているものが好ま
しい。ここで言う増殖に非必須なりNA領領域は、例え
ばワクチニアウィルスのチミジンキナーゼ(TK)m伝
子、血球凝集素(HA)遺伝子、ワクチニアウィルスW
R株DNAのHindl[l切断F7ラグメント、Mフ
ラグメント、Nフラグメント(ウィルス11(1)、2
3−33.(1986))など、外来性DNAの挿入に
よる変異を受けても実質上ウィルスの増殖に影響を及ぼ
さない領域を言う。
スの増殖に非必須なりNA領領域組み込んだ第一の組み
換えベクターが作製される。同領域にワクチニアウィル
ス内で機能するプロモーターが含まれているものが好ま
しい。ここで言う増殖に非必須なりNA領領域は、例え
ばワクチニアウィルスのチミジンキナーゼ(TK)m伝
子、血球凝集素(HA)遺伝子、ワクチニアウィルスW
R株DNAのHindl[l切断F7ラグメント、Mフ
ラグメント、Nフラグメント(ウィルス11(1)、2
3−33.(1986))など、外来性DNAの挿入に
よる変異を受けても実質上ウィルスの増殖に影響を及ぼ
さない領域を言う。
また、ワクチニアウィルス内で機能するプロモーターと
は、合成φ天然を問わずワクチニアウィルスが保有する
転写の系でプロモーターとして有効に機能しえるものな
らいかなる塩基配列のものでも良く、その具体例として
は例えばジャーナルオブ ヴイロロジ−662−669
(1984)に示されるようなりクチニアウィルスのプ
ロモーター、具体的には7.5にポリペプチドをコード
するワクチニアウィルス遺伝子のプロモーター、19に
ポリペプチドをコードするワクチニアウィルス遺伝子の
プロモーター、42にポリペプチドをコードするワクチ
ニアウィルス遺伝子のプロモーター、チミジンキナーゼ
をコードするワクチニアウィルス遺伝子のプロモータ、
28にポリペプチドをコードするワクチニアウィルス遺
伝子のプロモーターなどが例示される。
は、合成φ天然を問わずワクチニアウィルスが保有する
転写の系でプロモーターとして有効に機能しえるものな
らいかなる塩基配列のものでも良く、その具体例として
は例えばジャーナルオブ ヴイロロジ−662−669
(1984)に示されるようなりクチニアウィルスのプ
ロモーター、具体的には7.5にポリペプチドをコード
するワクチニアウィルス遺伝子のプロモーター、19に
ポリペプチドをコードするワクチニアウィルス遺伝子の
プロモーター、42にポリペプチドをコードするワクチ
ニアウィルス遺伝子のプロモーター、チミジンキナーゼ
をコードするワクチニアウィルス遺伝子のプロモータ、
28にポリペプチドをコードするワクチニアウィルス遺
伝子のプロモーターなどが例示される。
第一の組み換えベクターの作製については常法(例えば
特開昭58−129971号、特公表昭60−5005
18号、特開昭62−44178号など)に従えば良く
、例えばワクチニアウィルスの増殖に非必須なりNA断
片を適当なベクターに組み込んだ後、必要に応じて該断
片中に存在する制限酵素切断点を利用しその下流に制限
酵素切断配列を付加したプロモーターを組み込めば良い
。
特開昭58−129971号、特公表昭60−5005
18号、特開昭62−44178号など)に従えば良く
、例えばワクチニアウィルスの増殖に非必須なりNA断
片を適当なベクターに組み込んだ後、必要に応じて該断
片中に存在する制限酵素切断点を利用しその下流に制限
酵素切断配列を付加したプロモーターを組み込めば良い
。
用いられるベクターの具体例として、例えばpBR32
2,pBR325,pBR327゜pBR328,pU
C7,g)UO3,pUc9゜pUc19などのごとき
プラスミド、λファージ、M13ファージなどのどと゛
きファージ、pHC79(ジーン、1ユ、291.19
80年)などのごときコスミドが例示される。
2,pBR325,pBR327゜pBR328,pU
C7,g)UO3,pUc9゜pUc19などのごとき
プラスミド、λファージ、M13ファージなどのどと゛
きファージ、pHC79(ジーン、1ユ、291.19
80年)などのごときコスミドが例示される。
本発明においては、次いで、第一の組み換えベクターの
プロモーターの下流にHIV由来のcDNAを挿入して
第二の組み換えベクターが作製される。挿入方法もまた
常法(例えば前記各公報参照)に従えば良く、例えば第
1のベクターのプロモーターの下流に予め設けられた制
限酵素切断点を利用してHIV由来のcDNA断片を挿
入ずれば良い。
プロモーターの下流にHIV由来のcDNAを挿入して
第二の組み換えベクターが作製される。挿入方法もまた
常法(例えば前記各公報参照)に従えば良く、例えば第
1のベクターのプロモーターの下流に予め設けられた制
限酵素切断点を利用してHIV由来のcDNA断片を挿
入ずれば良い。
これら第−及び第二の組み換えベクターの構築に当たっ
ては遺伝子操作の容易な大lll菌の系を用いれば良く
、使用するプラスミドベクターも目的にかなうものであ
る限り特に限定されるものではない。
ては遺伝子操作の容易な大lll菌の系を用いれば良く
、使用するプラスミドベクターも目的にかなうものであ
る限り特に限定されるものではない。
本発明においては、次に、予めワクチニアウィルスを感
染させた動物培養細胸に第二の組み換えベクターを移入
し、ベクターDNAとウイルスゲツムDNAの間に相同
組み換えを起こさせ、組み換えワクチニアウィルスを構
築する。ここで用いられる動物培養細胞はワクチニアウ
ィルスが増殖可能なものであればよく、その具体例とし
て、例えばTK 143(ヒト骨肉腫由来)、FL(
ヒト羊膜由来)、)lela(ヒト子宮頚部癌由来)、
KB(ヒト鼻咽喉癌由来)、CV−1(サル腎由来)、
B10−1(サル腎由来)、RK13(ウサギ腎由来)
、L929(マウス結合組織由来)、CE(鶏胚)a胞
、DEF(鶏胎児繊維芽細胞)などが例示される。
染させた動物培養細胸に第二の組み換えベクターを移入
し、ベクターDNAとウイルスゲツムDNAの間に相同
組み換えを起こさせ、組み換えワクチニアウィルスを構
築する。ここで用いられる動物培養細胞はワクチニアウ
ィルスが増殖可能なものであればよく、その具体例とし
て、例えばTK 143(ヒト骨肉腫由来)、FL(
ヒト羊膜由来)、)lela(ヒト子宮頚部癌由来)、
KB(ヒト鼻咽喉癌由来)、CV−1(サル腎由来)、
B10−1(サル腎由来)、RK13(ウサギ腎由来)
、L929(マウス結合組織由来)、CE(鶏胚)a胞
、DEF(鶏胎児繊維芽細胞)などが例示される。
組み換えワクチニアウィルスの構築に当たっては常法に
従えば良く、例えば、DNAクーロニング第2巻(D
N Ac1onino Volus+eI[) 、実際
的なアプローチ(a practical appro
ach) D l) 、 191−211、デイ、エム
、グローバー(OHGlover)編、(IRLブレス
、オックスフォード。
従えば良く、例えば、DNAクーロニング第2巻(D
N Ac1onino Volus+eI[) 、実際
的なアプローチ(a practical appro
ach) D l) 、 191−211、デイ、エム
、グローバー(OHGlover)編、(IRLブレス
、オックスフォード。
ワシントン)の記述に準じてワクチニアウィルスを感染
させたCV−1細胞にリン酸カルシウム共沈法により処
理した第二の引み換えベクターを移入させ、得られる組
み換えウィルスを含むウィルス集団をEaale M
E M上に培養されたTK陰性細胞に感染させBUdR
存在下生育してくるプラークを選択し、組み換えウィル
ス候補株とすれば良い。これら候補株の内からHIVの
gag遺伝子、あるいは、gag、po 1両方の遺伝
子をコードするcDNA断片が組み込まれたウィルスを
選択する方法については、候補株をプラーク純化したの
ち、該DNAをプローブとするハイブリダイゼーション
法を利用するか、あるいは、抗HIV抗体を用いるイム
ノアッセイを利用すれば良い。
させたCV−1細胞にリン酸カルシウム共沈法により処
理した第二の引み換えベクターを移入させ、得られる組
み換えウィルスを含むウィルス集団をEaale M
E M上に培養されたTK陰性細胞に感染させBUdR
存在下生育してくるプラークを選択し、組み換えウィル
ス候補株とすれば良い。これら候補株の内からHIVの
gag遺伝子、あるいは、gag、po 1両方の遺伝
子をコードするcDNA断片が組み込まれたウィルスを
選択する方法については、候補株をプラーク純化したの
ち、該DNAをプローブとするハイブリダイゼーション
法を利用するか、あるいは、抗HIV抗体を用いるイム
ノアッセイを利用すれば良い。
(発明の効果)
かくして本発明によれば、ワクチニアウィルスの増殖に
非必須なゲノム領域にHIV(トITLV−II/LA
V)由来のgag遺伝子、あるいは、gag、po1両
方の遺伝子をコードするCDNAがプロモータ機能を有
するDNAと共に発現可能な形で組み込まれた組み換え
ワクチニアウィルスが得られる。
非必須なゲノム領域にHIV(トITLV−II/LA
V)由来のgag遺伝子、あるいは、gag、po1両
方の遺伝子をコードするCDNAがプロモータ機能を有
するDNAと共に発現可能な形で組み込まれた組み換え
ワクチニアウィルスが得られる。
この組み換えウィルスを前記のごとき動物培養細胞に感
染させ、常法に従ってウィルスを増殖させると、感染細
胞中にgag遺伝子産物、あるいは、gag、po1両
方の遺伝子産物が生産される。得られた遺伝子産物はヒ
ト免疫不全症候群ウィルスHIV感染の診断に用いるこ
とができ、またヒト免疫不全症候群ウィルスHIVの抗
原又は抗体陽性者のヒト免疫不全症候群(エイズ)又は
エイズ関連症候群(ARC>の発症の予防に有用である
ことが期待できる。
染させ、常法に従ってウィルスを増殖させると、感染細
胞中にgag遺伝子産物、あるいは、gag、po1両
方の遺伝子産物が生産される。得られた遺伝子産物はヒ
ト免疫不全症候群ウィルスHIV感染の診断に用いるこ
とができ、またヒト免疫不全症候群ウィルスHIVの抗
原又は抗体陽性者のヒト免疫不全症候群(エイズ)又は
エイズ関連症候群(ARC>の発症の予防に有用である
ことが期待できる。
(実施例)
以下に実施例を挙げて本発明をさらに具体的に説明する
。
。
実施例1
(1) ワクチニアウィルスチミジンキナーゼ(TK
)遺伝子を含む第1の組み換えベクター(pUHK)の
作製(第1図参照) pUc9をE c o RI及びpstlで消化後、ポ
リメラーゼで処理し、切断端を平滑末端したのち、連結
し、ECOR1部位の欠損したE)UO3を作製した。
)遺伝子を含む第1の組み換えベクター(pUHK)の
作製(第1図参照) pUc9をE c o RI及びpstlで消化後、ポ
リメラーゼで処理し、切断端を平滑末端したのち、連結
し、ECOR1部位の欠損したE)UO3を作製した。
このEcoR1部位欠損puc9をHindlllで切
断後、ワクチニアウィルスTK遺伝子を含むワクチニア
ウィルスWR株のトfind111J断片に連結し、第
1の組み換えベクターptJHKを得た。
断後、ワクチニアウィルスTK遺伝子を含むワクチニア
ウィルスWR株のトfind111J断片に連結し、第
1の組み換えベクターptJHKを得た。
(2) ポリリンカー及びワクチニアウィルス7.5
にプロモーターが挿入されたワクチニアウィルスTK遺
伝子を含む第二の組み換えベクターpNZ68に2の作
製(第2図参照) ワクチニアウィルスWR株の7.5にプロモーター(モ
スら、セル125.p、805〜813゜1981年)
をpUc19(ファルマシア社製)の+tncm部位に
挿入したのち、ト1indllとECORIで順次切断
して7.5にプロモーターの前後にポリリンカ一部位を
有するDNA断片(約350 bp)を得た。
にプロモーターが挿入されたワクチニアウィルスTK遺
伝子を含む第二の組み換えベクターpNZ68に2の作
製(第2図参照) ワクチニアウィルスWR株の7.5にプロモーター(モ
スら、セル125.p、805〜813゜1981年)
をpUc19(ファルマシア社製)の+tncm部位に
挿入したのち、ト1indllとECORIで順次切断
して7.5にプロモーターの前後にポリリンカ一部位を
有するDNA断片(約350 bp)を得た。
このDNAli片(第2図参照)及び(1)で得たプラ
スミド1)UHKのECORI消化物をポリメラーゼで
処理したのち、連結し、得られた組み換えプラスミドを
pN268に2と命名した。
スミド1)UHKのECORI消化物をポリメラーゼで
処理したのち、連結し、得られた組み換えプラスミドを
pN268に2と命名した。
(3)7.5にプロモーターの下流にHIVQaQ及び
po13!I伝子を挿入した第二の組み換えプラスミド
(W−QaG)の作製(第3図参照)HIVの全CDN
Aを含むpNL43をBal■とECORIで消化後、
低融点アガロース電気泳動で約5.1kbpの断片を分
離し、フェノール抽出によりその断片を回収した。
po13!I伝子を挿入した第二の組み換えプラスミド
(W−QaG)の作製(第3図参照)HIVの全CDN
Aを含むpNL43をBal■とECORIで消化後、
低融点アガロース電気泳動で約5.1kbpの断片を分
離し、フェノール抽出によりその断片を回収した。
このようにして得た断片中には、第3図に示すようにC
JaQ及びpol遺伝子領域が含まれている。
JaQ及びpol遺伝子領域が含まれている。
次に(2で得たpNZ68に2をBamHIとECOR
Iで消化し先に調製したgag及びpol遺伝子を含む
DNA断片とライゲーションしてw−a a aを得た
。
Iで消化し先に調製したgag及びpol遺伝子を含む
DNA断片とライゲーションしてw−a a aを得た
。
なお、第3図にはenu蛋白質、tat蛋白質、ウィル
スの増殖に関与するA、B、Rなどのその他の遺伝子を
コードする領域をも表示しているが、それらの名称及び
機能についてはセル、471(OCt、10.1986
HC記載されティる。
スの増殖に関与するA、B、Rなどのその他の遺伝子を
コードする領域をも表示しているが、それらの名称及び
機能についてはセル、471(OCt、10.1986
HC記載されティる。
(4) 組換えワクチニアライスルの作出25α2の
カルチャーボトルに培養されたCV−1細胞にワクチニ
アウィルスWR株(0,1Dru/細胞)を接種し、4
5分後、前記の組換えプラスミドw−aaaを2.2m
の減菌水で溶かし、樋高ら(白質、核酸、酵素、27,
340゜1985)の方法によってDNA−リン酸カル
シウム共沈物をつくり、その0.5dを感染Cv−1細
胞上に滴下した。30分間37℃、5%CO2インキュ
ベーターに静置し、5%牛脂児血清を含むEaole
MEM4 、5dを加えた。その3時間後培養液を交換
し、48時間後、培養細胞ごと3度凍結融解し、聴音被
処理(30秒)した。
カルチャーボトルに培養されたCV−1細胞にワクチニ
アウィルスWR株(0,1Dru/細胞)を接種し、4
5分後、前記の組換えプラスミドw−aaaを2.2m
の減菌水で溶かし、樋高ら(白質、核酸、酵素、27,
340゜1985)の方法によってDNA−リン酸カル
シウム共沈物をつくり、その0.5dを感染Cv−1細
胞上に滴下した。30分間37℃、5%CO2インキュ
ベーターに静置し、5%牛脂児血清を含むEaole
MEM4 、5dを加えた。その3時間後培養液を交換
し、48時間後、培養細胞ごと3度凍結融解し、聴音被
処理(30秒)した。
組み換え体のqaq及びpol′si伝子挿入を確認す
るため、6cMのベトリ皿に培養されたTK陰性(TK
)14311111に上記プラーク形成ウィルスを
接種し、45分後、1%寒天、12%牛脂児血清、25
μg/5eBUdR711Eaole MEMを積層し
、3日間培養後感染IIl胞を0.01%中性紅で染色
した。形成されたプラークをパスツールピペットで単離
しEaale M E M中に希釈する。単離したプラ
ークにつき、再度同様の操作を繰り返しプラークを純化
した。純化したプラークより得られたウィルスを増殖さ
せ、増殖ウィルスよりDNAを調製し、gag及びpo
l遺伝子をコードするCDNAをプローブとするドット
プ自ットハイプリダイゼーションにより、得られた組み
換えワクチニアウィルスがHIV由来の9dg及びpo
l遺伝子をコードするDNAとゲノム内に持つ組み換え
ウィルスであることを確認し、V−20−1−8と命名
した。
るため、6cMのベトリ皿に培養されたTK陰性(TK
)14311111に上記プラーク形成ウィルスを
接種し、45分後、1%寒天、12%牛脂児血清、25
μg/5eBUdR711Eaole MEMを積層し
、3日間培養後感染IIl胞を0.01%中性紅で染色
した。形成されたプラークをパスツールピペットで単離
しEaale M E M中に希釈する。単離したプラ
ークにつき、再度同様の操作を繰り返しプラークを純化
した。純化したプラークより得られたウィルスを増殖さ
せ、増殖ウィルスよりDNAを調製し、gag及びpo
l遺伝子をコードするCDNAをプローブとするドット
プ自ットハイプリダイゼーションにより、得られた組み
換えワクチニアウィルスがHIV由来の9dg及びpo
l遺伝子をコードするDNAとゲノム内に持つ組み換え
ウィルスであることを確認し、V−20−1−8と命名
した。
(5) 組換え体の細胞での発現
組織培養用チャンバースライドに培養したCv−111
胞に、m、o、i、1又は0.1の本発明ウィルス株V
−20−1−8を接種し、37℃、1時間感染後ウィル
ス液を友ぎとり、mrIiをEaa!e M E Mで
洗浄し、5%牛脂児血清、40μg/−シトシンアラビ
ノシド加Eaale M E Mを加えた。16時間後
、Eagle M E Mを除き、軽くPBS (リン
FIi!!衝生理食塩水)で洗い、軽く風乾した後、−
20℃アセトン中5分間処理し細胞を固定し、−次抗体
として抗GaG−1)24モノクロナ一ルマウス抗体を
、二次抗体としてビオチン椋式抗マウスI(JGウマ抗
体を、発色方法としてアビジン化パーオキシダーゼと7
ミノエチルカルバゾール(AEC)を用いる系を利用す
る酵素抗体法で、QaQ遺伝子産物の産生を確認した。
胞に、m、o、i、1又は0.1の本発明ウィルス株V
−20−1−8を接種し、37℃、1時間感染後ウィル
ス液を友ぎとり、mrIiをEaa!e M E Mで
洗浄し、5%牛脂児血清、40μg/−シトシンアラビ
ノシド加Eaale M E Mを加えた。16時間後
、Eagle M E Mを除き、軽くPBS (リン
FIi!!衝生理食塩水)で洗い、軽く風乾した後、−
20℃アセトン中5分間処理し細胞を固定し、−次抗体
として抗GaG−1)24モノクロナ一ルマウス抗体を
、二次抗体としてビオチン椋式抗マウスI(JGウマ抗
体を、発色方法としてアビジン化パーオキシダーゼと7
ミノエチルカルバゾール(AEC)を用いる系を利用す
る酵素抗体法で、QaQ遺伝子産物の産生を確認した。
さらに、感染細胞をSDSで可容化後、ポリアクリルア
ミドゲル電気泳動で分画しニトロセルロースフィルター
にプロッティング後(Analyt。
ミドゲル電気泳動で分画しニトロセルロースフィルター
にプロッティング後(Analyt。
Biochem、112.195〜203 (1981
) )、検出法として■ ラベルプロティンAを利用
する言わゆるウェスターンブロッティング法によっても
このgacll伝子産物の発現が確認され、■−20−
1−8感染細胞は、第4図に示す通り分子間約55.0
00ダルトンのgag遺伝子産物相当の分子量を持った
蛋白質ならびにその分解物を産生じていることが判明し
た。
) )、検出法として■ ラベルプロティンAを利用
する言わゆるウェスターンブロッティング法によっても
このgacll伝子産物の発現が確認され、■−20−
1−8感染細胞は、第4図に示す通り分子間約55.0
00ダルトンのgag遺伝子産物相当の分子量を持った
蛋白質ならびにその分解物を産生じていることが判明し
た。
(6) マウスに対するワクチニアウィルス組換え体
の接種 1flffi、t14i U;J 108P、F、U
) ヲ1 !I間隔テ?ウス(Ba l b/c)に2
回接種し、接種1週間後に採血し血清を分離した。この
血清を抗HIV抗体を検出できるウェスタンプロットア
ッセイキット(BIG−RAD Ig+−unoblo
t As5ay forDetection or A
ntibOdV to HIV )ならびに■ ラ
ベルプロティンAを利用して検定したところ抗QaQ遺
伝子産物抗体の存在が確認され、接種した組み換え体が
QaQ遺伝子産物に対する抗体産生訓導能を有すること
が判明した。
の接種 1flffi、t14i U;J 108P、F、U
) ヲ1 !I間隔テ?ウス(Ba l b/c)に2
回接種し、接種1週間後に採血し血清を分離した。この
血清を抗HIV抗体を検出できるウェスタンプロットア
ッセイキット(BIG−RAD Ig+−unoblo
t As5ay forDetection or A
ntibOdV to HIV )ならびに■ ラ
ベルプロティンAを利用して検定したところ抗QaQ遺
伝子産物抗体の存在が確認され、接種した組み換え体が
QaQ遺伝子産物に対する抗体産生訓導能を有すること
が判明した。
第1図はpUHK、m2図はpNZ68に2、第3め−
20−1−8の41築手順を示す。第4図はV−20−
1−8感染細胞のウェスタンブロッティングの結果を示
す。
20−1−8の41築手順を示す。第4図はV−20−
1−8感染細胞のウェスタンブロッティングの結果を示
す。
Claims (3)
- (1)ワクチニアウイルスの増殖に非必須なゲノムDN
A領域にヒト免疫不全症候群ウィルスHIV(HTLV
−III/LAV)由来のgag遺伝子をコードするCD
NAを組み込んだ組み換えワクチニアウイルス。 - (2)該CDNAがプロモーターの支配下にある特許請
求の範囲第1項記載の組み換えワクチニアウイルス。 - (3)該cDNAがgag遺伝子及びpol遺伝子をコ
ードするものである特許請求の範囲第1項または第2項
記載の組み換えワクチニアウイルス。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62306980A JPH01148183A (ja) | 1987-12-04 | 1987-12-04 | 組み換えワクチニアウイルス |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62306980A JPH01148183A (ja) | 1987-12-04 | 1987-12-04 | 組み換えワクチニアウイルス |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH01148183A true JPH01148183A (ja) | 1989-06-09 |
Family
ID=17963572
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP62306980A Pending JPH01148183A (ja) | 1987-12-04 | 1987-12-04 | 組み換えワクチニアウイルス |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH01148183A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2012137071A2 (en) | 2011-04-06 | 2012-10-11 | Biovaxim Limited | Pharmaceutical compositions for preventing and/or treating an hiv disease in humans |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS60500518A (ja) * | 1982-11-30 | 1985-04-18 | アメリカ合衆国 | 外来性遺伝子発現のためのポックスウイルス組換え体の製造方法 |
JPS61501957A (ja) * | 1984-04-25 | 1986-09-11 | トランスジ−ン ソシエテ アノニム | 狂犬病に対するワクチン及びその製造法 |
JPS62164696A (ja) * | 1986-01-06 | 1987-07-21 | エフ.ホフマン ― ラ ロシュ アーゲー | HTLV−3gag遺伝子の発現 |
-
1987
- 1987-12-04 JP JP62306980A patent/JPH01148183A/ja active Pending
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS60500518A (ja) * | 1982-11-30 | 1985-04-18 | アメリカ合衆国 | 外来性遺伝子発現のためのポックスウイルス組換え体の製造方法 |
JPS61501957A (ja) * | 1984-04-25 | 1986-09-11 | トランスジ−ン ソシエテ アノニム | 狂犬病に対するワクチン及びその製造法 |
JPS62164696A (ja) * | 1986-01-06 | 1987-07-21 | エフ.ホフマン ― ラ ロシュ アーゲー | HTLV−3gag遺伝子の発現 |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2012137071A2 (en) | 2011-04-06 | 2012-10-11 | Biovaxim Limited | Pharmaceutical compositions for preventing and/or treating an hiv disease in humans |
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