JPH01102027A - 抗アレルギー剤の製造法 - Google Patents
抗アレルギー剤の製造法Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
買産業上の利用分野）
本発明はマスト細胞脱顆粒抑制成分を植物組織培養物も
しくは培養根から抽出する■型アレルギー症治療薬の製
造方法に関する。
しくは培養根から抽出する■型アレルギー症治療薬の製
造方法に関する。
（従来の技術）
スギやブタフサの花粉、ダニ、ハウスダストなどが原因
となるアレルギー性鼻炎やアトピー性皮膚炎；特定食物
に関するアレルギー症（例えば葦麻疹）などは、Ｉ型ア
レルギー症として知られる。
となるアレルギー性鼻炎やアトピー性皮膚炎；特定食物
に関するアレルギー症（例えば葦麻疹）などは、Ｉ型ア
レルギー症として知られる。
この■型アレルギー症は９例えば次のようにして起こる
と考えられる。まず細胞表面に受動的に結合した抗体に
抗原が結合し、その結果、特定の活性物質が分泌される
。この活性物質は、血管周囲。
と考えられる。まず細胞表面に受動的に結合した抗体に
抗原が結合し、その結果、特定の活性物質が分泌される
。この活性物質は、血管周囲。
皮膚、粘膜などに広（存在する肥満細胞（マスト細胞）
に作用し、マスト細胞に含有される顆粒成分が放出され
る。この顆粒成分にはヒスタミンなどの即時型アレルギ
ー反応を引き起こす物質が含まれるため、その結果、上
記各種アレルギー症が引き起こされる。
に作用し、マスト細胞に含有される顆粒成分が放出され
る。この顆粒成分にはヒスタミンなどの即時型アレルギ
ー反応を引き起こす物質が含まれるため、その結果、上
記各種アレルギー症が引き起こされる。
このような■型アレルギーによる疾病の患者は年々増加
の傾向にある。それに対する治療法としては、薬剤（抗
ヒスタミン剤やステロイド剤）投与法、特異的減感作療
法、および非特異的療法（変調療法）が挙げられる。し
かし、これらの方法のうち、薬剤投与法は各種の副作用
（例えば抗ヒスタミン剤による眠気）を引き起こすとい
う欠点がある。特異的減惑作療法による根治率は７０％
前後であり、非特異的療法による根治率はそれ以下であ
る。このようにＩ型アレルギー症の有効な治療法は見出
されていないのが現状である。
の傾向にある。それに対する治療法としては、薬剤（抗
ヒスタミン剤やステロイド剤）投与法、特異的減感作療
法、および非特異的療法（変調療法）が挙げられる。し
かし、これらの方法のうち、薬剤投与法は各種の副作用
（例えば抗ヒスタミン剤による眠気）を引き起こすとい
う欠点がある。特異的減惑作療法による根治率は７０％
前後であり、非特異的療法による根治率はそれ以下であ
る。このようにＩ型アレルギー症の有効な治療法は見出
されていないのが現状である。
（発明が解決しようとする問題点）
本発明は上記従来の問題を解決するものでありその目的
とするところは、■型アレルギー症に有効であり副作用
を引き起こさない抗アレルギー剤を提供することにある
。本発明り他の目的は、マスト細胞から顆粒成分が放出
されるのを抑制する成分を含有する抗アレルギー剤を提
供することにある。
とするところは、■型アレルギー症に有効であり副作用
を引き起こさない抗アレルギー剤を提供することにある
。本発明り他の目的は、マスト細胞から顆粒成分が放出
されるのを抑制する成分を含有する抗アレルギー剤を提
供することにある。
（問題点を解決するための手段）
発明者らは、マスト細胞脱顆粒抑制成分を含有する植物
について検討を行った結果、該植物の組織培養物や培養
根からマスト細胞脱顆粒抑制成分を効果的に採取し得る
ことを見出し１本発明を完成゛するに至った。
について検討を行った結果、該植物の組織培養物や培養
根からマスト細胞脱顆粒抑制成分を効果的に採取し得る
ことを見出し１本発明を完成゛するに至った。
本発明の抗アレルギー剤の製造法は、クスノキ科、シソ
科、マオウ科、之モクレン科、ウマノスズフサ科、マメ
科およびセリ科に属する植物の群から選択される少なく
とも１種の植物の組織を培養する工程、および得られる
培養物からマスト細胞脱顆粒抑制成分を採取する工程を
包含し、そのことにより上記目的が達成される。
科、マオウ科、之モクレン科、ウマノスズフサ科、マメ
科およびセリ科に属する植物の群から選択される少なく
とも１種の植物の組織を培養する工程、および得られる
培養物からマスト細胞脱顆粒抑制成分を採取する工程を
包含し、そのことにより上記目的が達成される。
本発明の抗アレルギー剤の製造法は、クスノキ科、シソ
科、マオウ科、モクレン科、ウマノスズクサ科、マメ科
およびセリ科に属する植物の群から選択される少なくと
も１種の植物にアグロバクテリウム リゾゲネス（ハ皿
崩ｃｔｅｒｉｕｍ 助ｎ」並用）を感染させる工程、
該感染植物から生じる誘発根を培養する工程、および該
誘発根培養物からマスト細胞脱顆粒抑制成分を採取する
工程を包含し。
科、マオウ科、モクレン科、ウマノスズクサ科、マメ科
およびセリ科に属する植物の群から選択される少なくと
も１種の植物にアグロバクテリウム リゾゲネス（ハ皿
崩ｃｔｅｒｉｕｍ 助ｎ」並用）を感染させる工程、
該感染植物から生じる誘発根を培養する工程、および該
誘発根培養物からマスト細胞脱顆粒抑制成分を採取する
工程を包含し。
そのことにより上記目的が達成される。
本発明の抗アレルギー剤を得るための組織培養物は、ク
スノキ科、シソ科、マオウ科、モクレン科、ウマノスズ
クサ科、マメ科およびセリ科に属する植物に由来する。
スノキ科、シソ科、マオウ科、モクレン科、ウマノスズ
クサ科、マメ科およびセリ科に属する植物に由来する。
これらの植物のうちクスノキ科に属する植物としてはニ
ラケイ（ＣｉｎｎａｍｏｍｕｍＣａｓｓｉａ）などがあ
り、シソ科に属する植物とじてはシソ（Ｐｅｒｉｌｌａ
ｆｒｕｔｅｓｃｅｎｓ）＋ハツカ（Ｍｅｎｔｈａａ
ｒｖｅｎｓｉｓ） 、ウツボグサ（Ｐｒｕｎｅｌｌａ
胆り肛ｎ）およびコガネバナ（Ｓｃｕｔｅｌｌａｒｉ
ａ ｂａｉｃａｌｅｎｓｉｓ）などがあり；マオウ科
に属する植物としては、マオウ−ＣＥ ｈｅｄｒａｓｉ
ｎｉｃａ）などがあり；モクレン科に属する植物として
はモクレン（ハ■１圏 月１■士Ｖ鱒−などがあり；ウ
マノスズクサ科に属する植物としてはウスバサイシン（
＾ｓｉａｓａｒｕｍ ５ｉｅｂｏｌｄｉ）などがあり
：マメ科に属する植物としては、クズ（Ｐｕｅｒａｒｉ
ａ １ｏｂａｔａ）＋エンジュ（初枦氏ｐ−Ｄ〃旦ｃ
ａ） ＋カンソウ（虹匹■止η虹 社畦ｒａ）＋クララ
（扮ｈ ｏ ｒ ａａｎ ｕｓｔｉｆｏｌｉａ）などが
あり、そして、セリ科に属する植物としては、トウキ（
Ｆｏｅｎｉｃ岨ｙ−μｄ劃側い−。
ラケイ（ＣｉｎｎａｍｏｍｕｍＣａｓｓｉａ）などがあ
り、シソ科に属する植物とじてはシソ（Ｐｅｒｉｌｌａ
ｆｒｕｔｅｓｃｅｎｓ）＋ハツカ（Ｍｅｎｔｈａａ
ｒｖｅｎｓｉｓ） 、ウツボグサ（Ｐｒｕｎｅｌｌａ
胆り肛ｎ）およびコガネバナ（Ｓｃｕｔｅｌｌａｒｉ
ａ ｂａｉｃａｌｅｎｓｉｓ）などがあり；マオウ科
に属する植物としては、マオウ−ＣＥ ｈｅｄｒａｓｉ
ｎｉｃａ）などがあり；モクレン科に属する植物として
はモクレン（ハ■１圏 月１■士Ｖ鱒−などがあり；ウ
マノスズクサ科に属する植物としてはウスバサイシン（
＾ｓｉａｓａｒｕｍ ５ｉｅｂｏｌｄｉ）などがあり
：マメ科に属する植物としては、クズ（Ｐｕｅｒａｒｉ
ａ １ｏｂａｔａ）＋エンジュ（初枦氏ｐ−Ｄ〃旦ｃ
ａ） ＋カンソウ（虹匹■止η虹 社畦ｒａ）＋クララ
（扮ｈ ｏ ｒ ａａｎ ｕｓｔｉｆｏｌｉａ）などが
あり、そして、セリ科に属する植物としては、トウキ（
Ｆｏｅｎｉｃ岨ｙ−μｄ劃側い−。
ウィキョウ（ｕ■■旦堕ａｃｕｔｉｌｏｂａｍ）、ミシ
マサイコ（ｈ鮭剋匹Ｌｆａｌｃａｔｕｍ）などがある。
マサイコ（ｈ鮭剋匹Ｌｆａｌｃａｔｕｍ）などがある。
本発明方法により抗アレルギー剤（マスト細胞脱顆粒抑
制成分）を得るには、まず、上記植物からカルスの誘導
を行う。例えば、上記植物の芽生え（幼植物）の根、胚
軸、子葉；成熟植物の根。
制成分）を得るには、まず、上記植物からカルスの誘導
を行う。例えば、上記植物の芽生え（幼植物）の根、胚
軸、子葉；成熟植物の根。
茎９葉、花、花粉など２の細胞群または組織片を出発原
料として採取する。上記細胞群または組織片としていず
れの部分を選択しても、カルス誘導の難易の差はあるが
、いずれもカルスが誘導され得る。これらの細胞群また
は組織片を９例えば適当な培地を用いて無菌的に培養す
ることによりカルスが生じる。使用される培地としては
、植物の組織培養に使用される培地がいずれも使用され
得る。
料として採取する。上記細胞群または組織片としていず
れの部分を選択しても、カルス誘導の難易の差はあるが
、いずれもカルスが誘導され得る。これらの細胞群また
は組織片を９例えば適当な培地を用いて無菌的に培養す
ることによりカルスが生じる。使用される培地としては
、植物の組織培養に使用される培地がいずれも使用され
得る。
これには例えば、ムラシゲ−スクーグ（Ｍｕｒａｓｈｉ
−ｇｅ−Ｓｋｏｏｇ）の培地、ホワイト（％１ｈｉｔｅ
）の培地、ガンボーグ（Ｇａｍｂｏｒｇ）の培地、ヘラ
−（ｔｌｅｌｌｅｒ）の培地。
−ｇｅ−Ｓｋｏｏｇ）の培地、ホワイト（％１ｈｉｔｅ
）の培地、ガンボーグ（Ｇａｍｂｏｒｇ）の培地、ヘラ
−（ｔｌｅｌｌｅｒ）の培地。
ニラチューニラチエ（Ｎｉｔｃｈ−Ｎｉｔｃｈ）の培地
などがある。固体培地、液体培地のいずれもが利用され
るが１通常、寒天を含む固体培地が好適に用いられる。
などがある。固体培地、液体培地のいずれもが利用され
るが１通常、寒天を含む固体培地が好適に用いられる。
上記培地中には９通常、カルスの誘導を促進するために
植物ホルモン、特にオーキシンが含有される。オーキシ
ン類としては、２．４−ジクロロフェノキシ酢酸（２，
４−Ｄ）、ナフタレン酢酸（ＮＡ＾）。
植物ホルモン、特にオーキシンが含有される。オーキシ
ン類としては、２．４−ジクロロフェノキシ酢酸（２，
４−Ｄ）、ナフタレン酢酸（ＮＡ＾）。
２．４．５−１−ジクロロフェノキシ酢酸（２，４，５
−Ｔ）。
−Ｔ）。
インドール酢酸（Ｉ＾＾）などがある、植物ホルモンと
して、サイトカイニン類が含有されていてもよく、それ
には、ゼアチン、６−ベンジルアデニン。
して、サイトカイニン類が含有されていてもよく、それ
には、ゼアチン、６−ベンジルアデニン。
カイネチン、リボシルゼアチン、イソペンテニルアデニ
ンなどがある。植物ホルモンは、上記オーキシン類が１
０４Ｍ以下２通常、１０１〜１０−％−の割合で、サイ
トカイニン類が１０１Ｍ以下９通常、 １０−”〜１０
−’Ｈの割合で培地中に含有される。例えば。
ンなどがある。植物ホルモンは、上記オーキシン類が１
０４Ｍ以下２通常、１０１〜１０−％−の割合で、サイ
トカイニン類が１０１Ｍ以下９通常、 １０−”〜１０
−’Ｈの割合で培地中に含有される。例えば。
オーキシン類とサイトカイニン類とを含む寒天培地上で
、 ２０〜３０℃の暗所にてｌＯ〜３０日間培゛養を行
うとカルスが形成される。
、 ２０〜３０℃の暗所にてｌＯ〜３０日間培゛養を行
うとカルスが形成される。
このようにして誘導されたカルスは、固体もしくは液体
培地を用いて継代培養がなされる。液体培地を用いた振
盪培養が有利である。例えば、上記組成の液体培地にカ
ルスを加え、′２０〜３０″Ｃ９好ましくは２７°Ｃ前
後で５０〜１５Ｑｒｐｍ、好ましくは１１Ｑｒｐ＋ｍ前
後の割合で振盪培養が行われる。光は照射してもしなく
てもよい６通常週１回の割合で新しい培地に植え継ぎ継
代培養が行われる。後述の方法によりマスト細胞脱顆粒
抑制能力の高いセルラインを選択して継代培養を行う。
培地を用いて継代培養がなされる。液体培地を用いた振
盪培養が有利である。例えば、上記組成の液体培地にカ
ルスを加え、′２０〜３０″Ｃ９好ましくは２７°Ｃ前
後で５０〜１５Ｑｒｐｍ、好ましくは１１Ｑｒｐ＋ｍ前
後の割合で振盪培養が行われる。光は照射してもしなく
てもよい６通常週１回の割合で新しい培地に植え継ぎ継
代培養が行われる。後述の方法によりマスト細胞脱顆粒
抑制能力の高いセルラインを選択して継代培養を行う。
得られたカルスは、必要に応じて適当な手段で乾燥して
乾燥カルスとされる。生のままのもしくは乾燥したカル
スから適当な溶媒を用いて目的とするマスト細胞脱顆粒
抑制成分が抽出される。溶媒としては、水、エタノール
、メタノールなどが用いられる。これらのうちエタノー
ル−水混合溶媒が好適に用いられる。抽出溶液はそのま
までマスト細胞脱顆粒抑制剤として用いられ得るが、必
要に応じて逆相シリカゲルを用いたカラムクロマトグラ
フィーなどにより精製される。得られたマスト細胞脱顆
粒抑制成分は、粗抽出液、粗抽出液濃縮物、精製物、精
製物を適当な溶媒に溶解させた溶液など種々の形態で抗
アレルギー剤として利用される。このような抗アレルギ
ー剤は経口もしくは非経口投与により用いられる。上記
粗抽出液や精製物のマスト細胞脱顆粒抑制能力は２例え
ば。
乾燥カルスとされる。生のままのもしくは乾燥したカル
スから適当な溶媒を用いて目的とするマスト細胞脱顆粒
抑制成分が抽出される。溶媒としては、水、エタノール
、メタノールなどが用いられる。これらのうちエタノー
ル−水混合溶媒が好適に用いられる。抽出溶液はそのま
までマスト細胞脱顆粒抑制剤として用いられ得るが、必
要に応じて逆相シリカゲルを用いたカラムクロマトグラ
フィーなどにより精製される。得られたマスト細胞脱顆
粒抑制成分は、粗抽出液、粗抽出液濃縮物、精製物、精
製物を適当な溶媒に溶解させた溶液など種々の形態で抗
アレルギー剤として利用される。このような抗アレルギ
ー剤は経口もしくは非経口投与により用いられる。上記
粗抽出液や精製物のマスト細胞脱顆粒抑制能力は２例え
ば。
中込らの方法（微生物工業技術研六所研究報告第６３号
、 １３ （１９８５））により測定される。この方法
は。
、 １３ （１９８５））により測定される。この方法
は。
マスト細胞に、マスト細胞の脱顆粒を引き起こすことが
知られている化合物と本発明で得られる成分（検体）を
加え、マスト細胞が脱顆粒するか否かを位相差顕微鏡に
より観察する方法である。
知られている化合物と本発明で得られる成分（検体）を
加え、マスト細胞が脱顆粒するか否かを位相差顕微鏡に
より観察する方法である。
抗アレルギー剤を製造する本発明の第２の方法としては
、特定の植物の植物体にアグロバクテリウム リゾゲネ
ス（ガ旦あ狡棟口？−負旦趙叩競）を感染させて、得ら
れる誘発根を培養し、得られる培養根からマスト細胞脱
顆粒抑制成分を得る方法がある。このような方法に用い
られる植物は。
、特定の植物の植物体にアグロバクテリウム リゾゲネ
ス（ガ旦あ狡棟口？−負旦趙叩競）を感染させて、得ら
れる誘発根を培養し、得られる培養根からマスト細胞脱
顆粒抑制成分を得る方法がある。このような方法に用い
られる植物は。
クスノキ科、マオウ科、モクレン科、ウマノスズクサ科
、マメ科およびセリ科に属する植物である。
、マメ科およびセリ科に属する植物である。
これらに分類される植物としては、上記植物の組織培養
についての説明で述べられた植物が挙げられる。
についての説明で述べられた植物が挙げられる。
この方法に用いられるアグロバクテリウム リゾゲネス
は特定の菌株に限定されない。例えば。
は特定の菌株に限定されない。例えば。
アグロバクテリウム リゾゲネスＡ４株、 １５８３４
株、 １８５５株、 ２６５９株、 ８１９６株（いず
れもＭｏ１． Ｇｅｎ。
株、 １８５５株、 ２６５９株、 ８１９６株（いず
れもＭｏ１． Ｇｅｎ。
Ｇｅｎｅｔ、、（１９８３）、 Ｖｏｌ、１９０．２０
４〜２１４に記載）が用いられる。使用される菌は１通
常、肉汁培地。
４〜２１４に記載）が用いられる。使用される菌は１通
常、肉汁培地。
ＹＭＢ培地（Ｊ、 Ｇｅｎ、 Ｍｉｃｐｏｂｉｏｌ、、
Ｖｏｌ、９８．４７７−４８４（１９７７） ）など
に植菌され前培養される。例えば。
Ｖｏｌ、９８．４７７−４８４（１９７７） ）など
に植菌され前培養される。例えば。
２５〜２８°Ｃにて２０〜３０時間振盪培養を行うこと
により対数増殖期の培養菌液が得られる。この培養菌液
は、そのまま、もしくは遠心分離操作により集菌し、こ
れを適当な緩衝液に懸濁して、後述の感染工程に用いら
れる。菌体を凍結乾燥し、これを使用時に適当な緩衝液
に懸濁してもよい。菌体を含む緩衝液を用いる場合には
、菌の濃度は通常！０−３〜１０− ”個／ｄである。
により対数増殖期の培養菌液が得られる。この培養菌液
は、そのまま、もしくは遠心分離操作により集菌し、こ
れを適当な緩衝液に懸濁して、後述の感染工程に用いら
れる。菌体を凍結乾燥し、これを使用時に適当な緩衝液
に懸濁してもよい。菌体を含む緩衝液を用いる場合には
、菌の濃度は通常！０−３〜１０− ”個／ｄである。
・
本発明のこの第２の方法によりマスト細胞脱顆粒抑制成
分を得るには、まず、上記植物体にアグロバクテリウム
リゾゲネスを感染させる。例えば、植物の茎２葉、根
などの組織を無菌的に固体培地に採取し、該植物組織の
切口に上記菌体や菌体懸濁液を付着させる。栄養物を貯
蔵する根茎部を有する植物においては、その貯蔵板や貯
蔵茎を輪切りにしてディスクを得、その断面に上記菌体
や菌体懸濁液を塗布した後、寒天培地上で培養する方法
が好適に用いら株る。さらに、上記植物体からカルスを
得る本発明の第１の方法と同様にカルスを誘導し、これ
に上記菌体や菌体懸濁液を接触させて感染させる方法も
有効である。上記アグロバクテリウム リゾゲネスの感
染により１〜３週間で上記植物体、植物組織もしくはカ
ルスからは誘発根が発生する。このようにして得られる
誘発根を切り取り、上記カルスを培養する第１の方法に
−準じ、培地を用いて培養を行う。使用される培地には
、ショ糖が３％程度含有されることが好ましい。植物ホ
ルモンは実質的に含有されないことが必須条件である。
分を得るには、まず、上記植物体にアグロバクテリウム
リゾゲネスを感染させる。例えば、植物の茎２葉、根
などの組織を無菌的に固体培地に採取し、該植物組織の
切口に上記菌体や菌体懸濁液を付着させる。栄養物を貯
蔵する根茎部を有する植物においては、その貯蔵板や貯
蔵茎を輪切りにしてディスクを得、その断面に上記菌体
や菌体懸濁液を塗布した後、寒天培地上で培養する方法
が好適に用いら株る。さらに、上記植物体からカルスを
得る本発明の第１の方法と同様にカルスを誘導し、これ
に上記菌体や菌体懸濁液を接触させて感染させる方法も
有効である。上記アグロバクテリウム リゾゲネスの感
染により１〜３週間で上記植物体、植物組織もしくはカ
ルスからは誘発根が発生する。このようにして得られる
誘発根を切り取り、上記カルスを培養する第１の方法に
−準じ、培地を用いて培養を行う。使用される培地には
、ショ糖が３％程度含有されることが好ましい。植物ホ
ルモンは実質的に含有されないことが必須条件である。
培養は２５〜２８°Ｃにて暗所にて行われ、固体、液体
の培地のいずれもが用いられ得る。通常は２発生した誘
発根を固体培地に移して培養し、増殖能力の高い誘発根
を選抜する。
の培地のいずれもが用いられ得る。通常は２発生した誘
発根を固体培地に移して培養し、増殖能力の高い誘発根
を選抜する。
例えば、まず、上記発生した誘発根の先端を含む５〜１
０＋ｎｍの長さの部分を切り取り、寒天培地上に静置し
、２〜４週間の培養を行う。生長の速い（通常、この段
階で２倍以上に生長した）誘発根を選抜し、この誘発根
の先端部を含む５〜１０ｍｍの長さの部分を切り取り、
同様の培地を用いてさらに２〜４週間培養を続ける。こ
の誘発根は伸長し。
０＋ｎｍの長さの部分を切り取り、寒天培地上に静置し
、２〜４週間の培養を行う。生長の速い（通常、この段
階で２倍以上に生長した）誘発根を選抜し、この誘発根
の先端部を含む５〜１０ｍｍの長さの部分を切り取り、
同様の培地を用いてさらに２〜４週間培養を続ける。こ
の誘発根は伸長し。
分岐して生長するので、この分岐数を増殖能力の指標と
して誘発根の増殖力を判断する。増殖能力の低い誘発根
は１０ｃｍあたりせいぜい５個程度の分岐を有するのみ
であるが、増殖能力の高い誘発根は１ ｃｍあたり少な
くとも１個１通常２個以上である。このようにして増殖
能力の高い誘発根が選択される。この培養の段階で、誘
発根の導管部にはアグロバクテリウム リゾゲネスがコ
ロニーを形成している場合があるが、この菌が存在しな
い生長点を含む先端部を切り取って無菌的に培養するこ
とにより無菌状態の誘発根が得られる。アグロバクテリ
ウム リゾゲネスを含む誘発根をカルベニシリン、バン
コマイシンなどの抗生物質を含む培地で培養し、菌を死
滅させて無菌状態の誘発根を得ることも可能である。
して誘発根の増殖力を判断する。増殖能力の低い誘発根
は１０ｃｍあたりせいぜい５個程度の分岐を有するのみ
であるが、増殖能力の高い誘発根は１ ｃｍあたり少な
くとも１個１通常２個以上である。このようにして増殖
能力の高い誘発根が選択される。この培養の段階で、誘
発根の導管部にはアグロバクテリウム リゾゲネスがコ
ロニーを形成している場合があるが、この菌が存在しな
い生長点を含む先端部を切り取って無菌的に培養するこ
とにより無菌状態の誘発根が得られる。アグロバクテリ
ウム リゾゲネスを含む誘発根をカルベニシリン、バン
コマイシンなどの抗生物質を含む培地で培養し、菌を死
滅させて無菌状態の誘発根を得ることも可能である。
上記方法で得られた増殖能力の高い誘発根は。
植物培養培地を用いて継代培養される。使用される培地
は、上記カルスを用いる本発明の第１の方法に用いられ
る培地がいずれも使用され得るが。
は、上記カルスを用いる本発明の第１の方法に用いられ
る培地がいずれも使用され得るが。
植物ホルモンは含有されない。固体培地、液体培地のい
ずれもが使用され得るが、液体培地による振盪培養が有
利である。培養温度、振盪方法などの培養条件はカルス
を用いる方法とほぼ同様である。上記第１の方法と同様
に誘発根に含まれるマスト細胞脱顆粒抑制成分の量をチ
エツクし、マスト細胞脱顆粒抑制活性の高い誘発根のセ
ルラインが選抜される。得られた誘発根からのマスト細
胞脱顆粒抑制成分の抽出はカルスを用いる本発明の第１
の方法に準じて行われる。
ずれもが使用され得るが、液体培地による振盪培養が有
利である。培養温度、振盪方法などの培養条件はカルス
を用いる方法とほぼ同様である。上記第１の方法と同様
に誘発根に含まれるマスト細胞脱顆粒抑制成分の量をチ
エツクし、マスト細胞脱顆粒抑制活性の高い誘発根のセ
ルラインが選抜される。得られた誘発根からのマスト細
胞脱顆粒抑制成分の抽出はカルスを用いる本発明の第１
の方法に準じて行われる。
（実施例）
以下に本発明を実施例につき説明する。
尖搭拠上
ニラケイ（Ｃｉｎｎａｍｏｍｕｍ Ｃａ５ｓｉａ）の
根部を採取し、常法に従って、エタノールおよびアンチ
ホルミンで滅菌後、５ｍｍ角の細片に裁断した。２．４
−りを２．０Ｘ１０−’Ｍ、カイネチンを５．０Ｘ１０
−’Ｍの割合で含有するＭｕｒａｓｈｉｇｅ−３ｋｏｏ
ｇ（ＭＳ）の寒天培地に。
根部を採取し、常法に従って、エタノールおよびアンチ
ホルミンで滅菌後、５ｍｍ角の細片に裁断した。２．４
−りを２．０Ｘ１０−’Ｍ、カイネチンを５．０Ｘ１０
−’Ｍの割合で含有するＭｕｒａｓｈｉｇｅ−３ｋｏｏ
ｇ（ＭＳ）の寒天培地に。
上記根部細片を置床し２０〜３０’Ｃにて培養してカル
スを誘導した。誘導されたカルスを同一組織の新たな培
地を用いて３回継代培養を行った。
スを誘導した。誘導されたカルスを同一組織の新たな培
地を用いて３回継代培養を行った。
次に、オーキシンとして、 ＮＡＡを２．０Ｘ１０−’
Ｍ。
Ｍ。
サイトカイニンとして６−ベンジルアデニンを１．ＯＸ
ＩＯ−ｈＭの割合で含有するＭＳ液体培地２００ｍを入
れた５００ａｄ！容マイヤーフラスコに、上記カルス１
０ｇ（湿重量）を移植し、１週間にわたり１１０ｒｐ＋
ｍで振盪培養を行った。得られたカルスを６０°Ｃにて
８時間乾燥し、乾燥カルス３ｇを得た。
ＩＯ−ｈＭの割合で含有するＭＳ液体培地２００ｍを入
れた５００ａｄ！容マイヤーフラスコに、上記カルス１
０ｇ（湿重量）を移植し、１週間にわたり１１０ｒｐ＋
ｍで振盪培養を行った。得られたカルスを６０°Ｃにて
８時間乾燥し、乾燥カルス３ｇを得た。
この乾燥カルス３ｇを、 １０倍量（３０ｍ）の５０％
エタノール水を用い、１０℃にて８時間にわたり抽出し
た。ロータリーエバポレーターで濃縮乾固し１ｇの抽出
物（乾燥品）を得た。
エタノール水を用い、１０℃にて８時間にわたり抽出し
た。ロータリーエバポレーターで濃縮乾固し１ｇの抽出
物（乾燥品）を得た。
この抽出物を用い、中込らの方法に従いマスト細胞脱顆
粒抑制活性の測定を行った。まず、ウィスター系ラット
由来のマスト細胞浮遊液（１０’個／ｄ）１０μｆｆｉ
とＰＢＳ （Ｄｕｌｂｅｃｃｏ塩類緩衝液）に溶解さ
せた試料（上記抽出物）溶液（５０μｇ／ｒｄ、 １０
０μｇ／ｄおよび２００μｇ／ｄ）１０μ２を加え、
１００分間インキュベートた。これに脱顆粒作用物質と
してｃｏ＋ａｐｏｕｎｄ４Ｂ／８０溶液（１０μｇ／Ｉ
ｄ）を５μ！加えて５分間インキュベートした。ここで
ＣＯＷρｏｕｎｄ４８／８０とは、Ｎ−メチル−ｐ−メ
トキシフェネチルアミンとホルムアルデヒドとの縮合物
であり。
粒抑制活性の測定を行った。まず、ウィスター系ラット
由来のマスト細胞浮遊液（１０’個／ｄ）１０μｆｆｉ
とＰＢＳ （Ｄｕｌｂｅｃｃｏ塩類緩衝液）に溶解さ
せた試料（上記抽出物）溶液（５０μｇ／ｒｄ、 １０
０μｇ／ｄおよび２００μｇ／ｄ）１０μ２を加え、
１００分間インキュベートた。これに脱顆粒作用物質と
してｃｏ＋ａｐｏｕｎｄ４Ｂ／８０溶液（１０μｇ／Ｉ
ｄ）を５μ！加えて５分間インキュベートした。ここで
ＣＯＷρｏｕｎｄ４８／８０とは、Ｎ−メチル−ｐ−メ
トキシフェネチルアミンとホルムアルデヒドとの縮合物
であり。
ヒスタミンリリーサ−である。インキュベート後に位相
差顕微鏡（倍率４００倍）を用いて細胞の脱顆粒状態を
観察した。コントロールとしては。
差顕微鏡（倍率４００倍）を用いて細胞の脱顆粒状態を
観察した。コントロールとしては。
ｃｏＢｏｕｎｄ４８／８０溶液の代わりにＰＢＳ溶液を
使用した。マスト細胞の膜がはっきり見えて顆粒が中央
に固まっている状態を陰性（脱顆粒が起こっていない状
態）とし、膜の輪郭がぼやけて脱顆粒がはっきり起こり
細胞外に顆粒が浮遊しているものを陽性（脱顆粒状態）
とした。上記抽出物は１１００ｔＩ／ｄの濃度でマスト
細胞脱顆粒抑制活性を示した。
使用した。マスト細胞の膜がはっきり見えて顆粒が中央
に固まっている状態を陰性（脱顆粒が起こっていない状
態）とし、膜の輪郭がぼやけて脱顆粒がはっきり起こり
細胞外に顆粒が浮遊しているものを陽性（脱顆粒状態）
とした。上記抽出物は１１００ｔＩ／ｄの濃度でマスト
細胞脱顆粒抑制活性を示した。
この値を初期値とした。
上記方法によりニラケイ根部から誘導した種々のカルス
を継代培養し、それぞれについて上記方法によりマスト
細胞脱顆粒抑制活性を測定した。
を継代培養し、それぞれについて上記方法によりマスト
細胞脱顆粒抑制活性を測定した。
活性の高いカルスを選び、１週間間隔で継代培養を２０
回にわたり続けたところ、初期値の２０倍の活性（５，
０μｇ ／ｄ）を持つセルラインを得た。
回にわたり続けたところ、初期値の２０倍の活性（５，
０μｇ ／ｄ）を持つセルラインを得た。
実ｍヱｊ
種々の植物を用い、実施例１に準じてカルスを誘導・培
養し、このカルスからマスト細胞脱顆粒抑制成分を抽出
してその活性を測定した。それらの結果を、実施例１の
結果とあわせて表１に示す。
養し、このカルスからマスト細胞脱顆粒抑制成分を抽出
してその活性を測定した。それらの結果を、実施例１の
結果とあわせて表１に示す。
表１の培地組成の項において、Ａ−Ｄは次の組成を示す
。
。
Ａ？ＭＳ培地（ＮＡ＾を２．ＯＸ １０−に、そして６
−ベンジルアデニンを１．０Ｘ１０−’Ｈの割合で含む
）Ｂ：ＭＳ培地（ＮＡＡを５．０Ｘ１０−’Ｍ 、そし
て６−ベンジルアデニンを２．０Ｘ１０−’Ｈの割合で
含む）Ｃ：ＭＳ培地（ＮＡＡを５．０Ｘ１０−’Ｍ 、
そしてカイネチンを５．０Ｘ１０−”Ｈの割合で含む）
Ｄ：ＭＳ培地（ＩＢ＾を５．０Ｘ１０−’Ｍ 、そして
カイネチンを５．０Ｘ１０−”Ｍの割合で含む）（以下
余白） 実新ｌ町玉 ニラケイの根茎部を採取し、常法によりエタノールとア
ンチホルミンで滅菌し、無菌水で洗浄した。この根茎部
から、無菌的に採取した内部組織をＭＳ培地（植物生長
ホルモンを含まない）に移し。
−ベンジルアデニンを１．０Ｘ１０−’Ｈの割合で含む
）Ｂ：ＭＳ培地（ＮＡＡを５．０Ｘ１０−’Ｍ 、そし
て６−ベンジルアデニンを２．０Ｘ１０−’Ｈの割合で
含む）Ｃ：ＭＳ培地（ＮＡＡを５．０Ｘ１０−’Ｍ 、
そしてカイネチンを５．０Ｘ１０−”Ｈの割合で含む）
Ｄ：ＭＳ培地（ＩＢ＾を５．０Ｘ１０−’Ｍ 、そして
カイネチンを５．０Ｘ１０−”Ｍの割合で含む）（以下
余白） 実新ｌ町玉 ニラケイの根茎部を採取し、常法によりエタノールとア
ンチホルミンで滅菌し、無菌水で洗浄した。この根茎部
から、無菌的に採取した内部組織をＭＳ培地（植物生長
ホルモンを含まない）に移し。
アグロバクテリウム リゾゲネス（Ａ ｒｏｂａｃｔｅ
ｒｉｕｍ−ｒｈｉｚ■ｅｎｅｓ）（ＡＴＣＣ１９３５８
株）を接種した。これを暗所にて２５°Ｃで２〜４週間
培養して誘発根を発生させた。ｌＯ〜２０ｍｍ程度に伸
長した誘発根から、各々その先端を含めた約５ｍｍ長の
切片を約１０００本切り出した。これをＷｈｉｔｅ固体
培地（植物生長ホルモンを含まない）上に移し、暗所で
３週間培養を行った。得られた培養根のうち、長さが３
ｃｍ以上に増殖しバクテリアなどの付着しそいないもの
を５００本選びだし、各々から先端を含む５ｎｍ長の切
片を切り出し、同様の新たな培地上に移して培養を行っ
た。さらにこのような操作を１回繰り返した。
ｒｉｕｍ−ｒｈｉｚ■ｅｎｅｓ）（ＡＴＣＣ１９３５８
株）を接種した。これを暗所にて２５°Ｃで２〜４週間
培養して誘発根を発生させた。ｌＯ〜２０ｍｍ程度に伸
長した誘発根から、各々その先端を含めた約５ｍｍ長の
切片を約１０００本切り出した。これをＷｈｉｔｅ固体
培地（植物生長ホルモンを含まない）上に移し、暗所で
３週間培養を行った。得られた培養根のうち、長さが３
ｃｍ以上に増殖しバクテリアなどの付着しそいないもの
を５００本選びだし、各々から先端を含む５ｎｍ長の切
片を切り出し、同様の新たな培地上に移して培養を行っ
た。さらにこのような操作を１回繰り返した。
上記操作によりアグロバクテリウム リゾゲネスが存在
しない無菌の培養根が得られた。その中から分岐数がＩ
ＣＩＩあたり約７〜８個の高増殖性培養根を３０本選び
出した。このような高増殖性培養根１０ｇ（生重量）を
植物生長ホルモンを含まない１１ｅｌｌａｒ液体培地２
００＃ｄ！ （５００ｍ容マイヤーフラスコ中）に移植
し、２５°Ｃにて暗所で２週間培養した。
しない無菌の培養根が得られた。その中から分岐数がＩ
ＣＩＩあたり約７〜８個の高増殖性培養根を３０本選び
出した。このような高増殖性培養根１０ｇ（生重量）を
植物生長ホルモンを含まない１１ｅｌｌａｒ液体培地２
００＃ｄ！ （５００ｍ容マイヤーフラスコ中）に移植
し、２５°Ｃにて暗所で２週間培養した。
得られた培養根を６０℃にて８時間乾燥し、乾燥培養根
２ｇを得た。この乾燥培養根を用い、実施例１に準じて
抽出およびマスト細胞脱顆粒抑制活性の測定を行った。
２ｇを得た。この乾燥培養根を用い、実施例１に準じて
抽出およびマスト細胞脱顆粒抑制活性の測定を行った。
マスト細胞脱顆粒抑制活性の初期値は３０μｇ／ｄであ
った０次に実施例１に準じて種々の培養根のマスト細胞
脱顆粒抑制活性を測定し活性の高い培養根を選抜した。
った０次に実施例１に準じて種々の培養根のマスト細胞
脱顆粒抑制活性を測定し活性の高い培養根を選抜した。
２週間隔で継代を２０回続けたところ、高活性のセルラ
インが得られた。その抽出物は２．５ｇｇ／ｌでマスト
細胞脱顆粒抑制活性を示した。
インが得られた。その抽出物は２．５ｇｇ／ｌでマスト
細胞脱顆粒抑制活性を示した。
ス崖Ｕ二匹
種々の植物を用い、実施例１６に準じて誘発根を誘導・
培養し、この培養根からマスト細胞脱顆粒抑制成分を抽
出してその活性を測定した。それらの結果をあわせて表
２に示す。
培養し、この培養根からマスト細胞脱顆粒抑制成分を抽
出してその活性を測定した。それらの結果をあわせて表
２に示す。
立前ＪＬＩ−
ニラケイの幹皮（生薬名：桂皮）を６０°Ｃで８時間乾
燥し、乾燥物２ｇを得た。これを用い、実施例１に準じ
て０．８ｇの抽出物（乾燥物）を得た。
燥し、乾燥物２ｇを得た。これを用い、実施例１に準じ
て０．８ｇの抽出物（乾燥物）を得た。
実施例１と同様の方法でマスト細胞脱顆粒抑制活性を測
定すると、抽出物１００μｇ／ｄでマスト細胞脱顆粒抑
制活性を示した。
定すると、抽出物１００μｇ／ｄでマスト細胞脱顆粒抑
制活性を示した。
且較■ｌ二■
ニラケイの代わりに種々の植物を用い、比較例１に準じ
て、これを乾燥し抽出物を得て、マスト細胞脱顆粒抑制
活性を測定した。それらの結果を表３に示す。
て、これを乾燥し抽出物を得て、マスト細胞脱顆粒抑制
活性を測定した。それらの結果を表３に示す。
（以下余白）
（発明の効果）
本発明によれば、このように、所定の植物組繊から誘導
されたカルスもしくは誘発根からアスト細胞脱顆粒抑制
成分が効果的に得られる。このマスト細胞脱顆粒抑制成
分は■形アレルギーに対する抗アレルギー剤として作用
する。このようなマスト細胞脱顆粒抑制成分を含む抗ア
レルギー剤は。
されたカルスもしくは誘発根からアスト細胞脱顆粒抑制
成分が効果的に得られる。このマスト細胞脱顆粒抑制成
分は■形アレルギーに対する抗アレルギー剤として作用
する。このようなマスト細胞脱顆粒抑制成分を含む抗ア
レルギー剤は。
経口もしくは非経口投与型の製剤として利用される。
以上
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 １、クスノキ科、シソ科、マオウ科、モクレン科、ウマ
ノスズクサ科、マメ科およびセリ科に属する植物の群か
ら選択される少なくとも１種の植物の組織を培養する工
程、および 得られる培養物からマスト細胞脱顆粒抑制成分を採取す
る工程、 を包含する抗アレルギー剤の製造法。 ２、前記クスノキ科に属する植物がニッケイ（￥Ｃｉｎ
ｎａｍｏｍｕｍ￥￥Ｃａｓｓｉａ￥）である特許請求の
範囲第１項に記載の製造法。 ３、前記シソ科に属する植物がシソ（￥Ｐｅｒｉｌｌａ
￥￥ｆｒｕｔｅｓｃｅｎｓ￥）、ハッカ（￥Ｍｅｎｔｈ
ａ￥￥ａｒｖｅｎｓｉｓ￥）、ウツボグサ（￥Ｐｒｕｎ
ｅｌｌａ￥￥ｖｕｌｇａｒｉｓ￥）およびコガネバナ（
￥Ｓｃｕｔｅｌｌａｒｉａ￥￥ｂａｉｃａｌｅｎｓｉｓ
￥）でなる群から選択される少なくとも１種である特許
請求の範囲第１項に記載の製造法。 ４、前記マオウ科に属する植物がマオウ（￥Ｅｐｈｅｄ
ｒａｓｉｎｉｃａ￥）である特許請求の範囲第１項に記
載の製造法。 ５、前記モクレン科に属する植物がモクレン（￥Ｍａｇ
ｎｏｌｉａ￥￥ｌｉｌｉｆｌｏｒａ￥）である特許請求
の範囲第１項に記載の製造法。 ６、前記ウマノスズクサ科に属する植物がウスバサイシ
ン（￥Ａｓｉａｓａｒｕｍ￥￥ｓｉｅｂｏｌｄｉ￥）で
ある特許請求の範囲第１項に記載の製造法。 ７、前記マメ科に属する植物がクズ（￥Ｐｕｅｒａｒｉ
ａ￥￥ｌｏｂａｔａ￥）、エンジュ（￥Ｓｏｐｈｏｒａ
￥￥ｊａｐｏｎｉｃａ￥）、カンゾウ（￥Ｇｌｙｃｙｒ
ｒｈｉｚａ￥￥ｇｌａｂｒａ￥）およびクララ（￥Ｓｏ
ｐｈｏｒａ￥￥ａｎｇｕｓｔｉｆｏｌｉａ￥）でなる群
から選択される少なくとも１種である特許請求の範囲第
１項に記載の製造法。 ８、前記セリ科に属する植物がトウキ（￥Ｆｏｅｎｉｃ
ｕｌｕｍ￥￥ｖｕｌｇａｒｅ￥）、ウイキョウ（￥Ｌｉ
ｇｕｓｔｉｃｕｍ￥￥ａｃｕｔｉｌｏｂａｍ￥）および
ミシマサイコ（￥Ｂｕｐｌｅｕｒｕｍ￥￥ｆａｌｃａｔ
ｕｍ￥）でなる群から選択される少なくとも１種である
特許請求の範囲第１項に記載の製造法。 ９、クスノキ科、シソ科、マオウ科、モクレン科、ウマ
ノスズクサ科、マメ科およびセリ科に属する植物の群か
ら選択される少なくとも１種の植物に、アグロバクテリ
ウムリゾゲネス（￥Ａｇｒｏ￥−￥ｂａｃｔｅｒｉｕｍ
￥￥ｒｈｉｚｏｇｅｎｅｓ￥）を感染させる工程、該感
染植物から生じる誘発根を培養する工程、および 該誘発根培養物からマスト細胞脱顆粒抑制成分を採取す
る工程、 を包含する抗アレルギー剤の製造法。 １０、前記クスノキ科ニッケイ属に属する植物がニッケ
イ（￥Ｃｉｎｎａｍｏｍｕｍ￥￥Ｃａｓｓｉａ￥）であ
る特許請求の範囲第９項に記載の製造法。 １１、前記マオウ科に属する植物がマオウ（￥Ｅｐｈｅ
ｄｒａ￥￥ｓｉｎｉｃａ￥）である特許請求の範囲第９
項に記載の製造法。 １２、前記モクレン科に属する植物がモクレン（￥Ｍａ
ｇｎｏｌｉａ￥￥ｌｉｌｉｆｌｏｒａ￥）である特許請
求の範囲第９項に記載の製造法。 １３、前記ウマノスズクサ科に属する植物がウスバサイ
シン（￥Ａｓｉａｓａｒｕｍ￥￥ｓｉｅｂｏｌｄｉ）で
ある特許請求の範囲第９項に記載の製造法。 １４、前記マメ科に属する植物がクズ（￥Ｐｕｅｒａｒ
ｉａ￥￥ｌｏｂａｔａ￥）、エンジュ（￥Ｓｏｐｈｏｒ
ａ￥￥ｊａｐｏｎｉｃａ￥）、カンゾウ（￥Ｇｌｙｃｙ
ｒｒｈｉｚａ￥￥ｇｌａｂｒａ￥）およびクララ（￥Ｓ
ｏｐｈｏｒａ￥￥ａｎｇｕｓｔｉｆｏｌｉａ￥）でなる
群から選択される少なくとも１種である特許請求の範囲
第９項に記載の製造法。 １５、前記セリ科に属する植物がトウキ（￥Ｆｏｅｎｉ
ｃｕｌｕｍ￥￥ｖｕｌｇａｒｅ￥）、ウイキョウ（￥Ｌ
ｉｇｕｓｔｉｃｕｍ￥￥ａｃｕｔｉｌｏｂａｍ￥）およ
びミシマサイコ（￥Ｂｕｐｌｅｕｒｕｍ￥￥ｆａｌｃａ
ｔｕｍ￥）でなる群から選択される少なくとも１種であ
る特許請求の範囲第９項に記載の製造法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP62260336A JPH01102027A (ja) | 1987-10-15 | 1987-10-15 | 抗アレルギー剤の製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP62260336A JPH01102027A (ja) | 1987-10-15 | 1987-10-15 | 抗アレルギー剤の製造法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH01102027A true JPH01102027A (ja) | 1989-04-19 |
Family
ID=17346574
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP62260336A Pending JPH01102027A (ja) | 1987-10-15 | 1987-10-15 | 抗アレルギー剤の製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH01102027A (ja) |
Cited By (13)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH0423967A (ja) * | 1990-05-18 | 1992-01-28 | Lotte Co Ltd | 抗アレルギー飲食物 |
| FR2677248A1 (fr) * | 1991-06-04 | 1992-12-11 | Lvmh Rech Gie | Composition cosmetique ou pharmaceutique, notamment dermatologique, contenant un extrait de brunelle. |
| JPH0987189A (ja) * | 1995-09-19 | 1997-03-31 | Ichimaru Pharcos Co Ltd | エンメイソウ、ボタンピ、シソ、アルニカ含有抗アレルギー剤 |
| WO1998004276A1 (fr) * | 1996-07-30 | 1998-02-05 | L'oreal | Utilisation dans une composition d'un extrait d'au moins une labiee |
| JP2000044481A (ja) * | 1998-07-30 | 2000-02-15 | Sunstar Inc | 皮膚外用剤 |
| JP2000297044A (ja) * | 1999-04-13 | 2000-10-24 | Sunstar Inc | 皮膚外用貼付剤 |
| JP2001064192A (ja) * | 1999-08-25 | 2001-03-13 | Sunstar Inc | ランゲルハンス細胞の遊走抑制剤及び抗原提示抑制剤 |
| KR100527912B1 (ko) * | 2002-05-25 | 2005-11-09 | 황충연 | 항알레르기 추출물 제조방법 |
| JP2008031095A (ja) * | 2006-07-28 | 2008-02-14 | Kao Corp | Ｓｃｆ結合阻害剤 |
| US7384656B2 (en) | 2004-02-05 | 2008-06-10 | Access Business Group International Llc | Anti-allergy composition and related method |
| KR100895280B1 (ko) * | 2006-11-17 | 2009-04-29 | 동아대학교 산학협력단 | 5-하이드록시메틸-2-푸랄데하이드의 생산 방법 |
| JP2016060718A (ja) * | 2014-09-18 | 2016-04-25 | 二村 芳弘 | エラスチン産生作用を呈するケルセチン誘導体及びその製造方法 |
| JP2017002028A (ja) * | 2015-06-11 | 2017-01-05 | 御木本製薬株式会社 | Ｃｔｉｐ２遺伝子発現増強剤 |
-
1987
- 1987-10-15 JP JP62260336A patent/JPH01102027A/ja active Pending
Cited By (15)
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| FR2751878A1 (fr) * | 1996-07-30 | 1998-02-06 | Oreal | Utilisation dans une composition d'un extrait d'au moins une labiee |
| JP2000044481A (ja) * | 1998-07-30 | 2000-02-15 | Sunstar Inc | 皮膚外用剤 |
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| JP2017002028A (ja) * | 2015-06-11 | 2017-01-05 | 御木本製薬株式会社 | Ｃｔｉｐ２遺伝子発現増強剤 |
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