JP7780552B2 - ヒドロゲルビーズを用いるｄｎａ配列決定 - Google Patents

ヒドロゲルビーズを用いるｄｎａ配列決定

Info

Publication number
JP7780552B2
JP7780552B2 JP2024000232A JP2024000232A JP7780552B2 JP 7780552 B2 JP7780552 B2 JP 7780552B2 JP 2024000232 A JP2024000232 A JP 2024000232A JP 2024000232 A JP2024000232 A JP 2024000232A JP 7780552 B2 JP7780552 B2 JP 7780552B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
dna
hydrogel
flow cell
beads
cell device
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
JP2024000232A
Other languages
English (en)
Other versions
JP2024032734A (ja
Inventor
イア－シュアン・ウー
フィリズ・ゴルペ－ヤサル
タルン・クマール・クラナ
ビクトリア・ポピック
エリック・ビー・イェガー
モスタファ・ロナギ
Original Assignee
イルミナ インコーポレイテッド
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=65576697&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=JP7780552(B2) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by イルミナ インコーポレイテッド filed Critical イルミナ インコーポレイテッド
Publication of JP2024032734A publication Critical patent/JP2024032734A/ja
Application granted granted Critical
Publication of JP7780552B2 publication Critical patent/JP7780552B2/ja
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10—Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • C12N15/1034—Isolating an individual clone by screening libraries
    • C12N15/1068—Template (nucleic acid) mediated chemical library synthesis, e.g. chemical and enzymatical DNA-templated organic molecule synthesis, libraries prepared by non ribosomal polypeptide synthesis [NRPS], DNA/RNA-polymerase mediated polypeptide synthesis
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L3/00—Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers
    • B01L3/50—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes
    • B01L3/508—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes rigid containers not provided for above
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L7/00—Heating or cooling apparatus; Heat insulating devices
    • B01L7/52—Heating or cooling apparatus; Heat insulating devices with provision for submitting samples to a predetermined sequence of different temperatures, e.g. for treating nucleic acid samples
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10—Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • C12N15/1034—Isolating an individual clone by screening libraries
    • C12N15/1065—Preparation or screening of tagged libraries, e.g. tagged microorganisms by STM-mutagenesis, tagged polynucleotides, gene tags
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6806—Preparing nucleic acids for analysis, e.g. for polymerase chain reaction [PCR] assay
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813—Hybridisation assays
    • C12Q1/6834—Enzymatic or biochemical coupling of nucleic acids to a solid phase
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6869—Methods for sequencing
    • C12Q1/6874—Methods for sequencing involving nucleic acid arrays, e.g. sequencing by hybridisation
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2200/00—Solutions for specific problems relating to chemical or physical laboratory apparatus
    • B01L2200/14—Process control and prevention of errors
    • B01L2200/141—Preventing contamination, tampering
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2200/00—Solutions for specific problems relating to chemical or physical laboratory apparatus
    • B01L2200/16—Reagents, handling or storing thereof
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2300/00—Additional constructional details
    • B01L2300/12—Specific details about materials
    • B01L2300/123—Flexible; Elastomeric
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2330/00—Production
    • C12N2330/30—Production chemically synthesised
    • C12N2330/31—Libraries, arrays
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2525/00—Reactions involving modified oligonucleotides, nucleic acids, or nucleotides
    • C12Q2525/10—Modifications characterised by
    • C12Q2525/191—Modifications characterised by incorporating an adaptor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2563/00—Nucleic acid detection characterized by the use of physical, structural and functional properties
    • C12Q2563/149—Particles, e.g. beads
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2563/00—Nucleic acid detection characterized by the use of physical, structural and functional properties
    • C12Q2563/159—Microreactors, e.g. emulsion PCR or sequencing, droplet PCR, microcapsules, i.e. non-liquid containers with a range of different permeability's for different reaction components

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Clinical Laboratory Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Computational Biology (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Macromonomer-Based Addition Polymer (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Compositions Of Macromolecular Compounds (AREA)

Description

技術分野
本明細書に記載のシステム、方法および組成物は、ポリヌクレオチドの配列の決定および関連するライブラリー作製に用いるための、ヒドロゲルビーズ、およびヒドロゲルビーズ内に長いＤＮＡを封入する方法に関する。
背景
次世代シークエンサーは、１回のシークエンシングランで大量のゲノムデータを産生する強力なツールである。この大量のデータを解釈および分析することは、困難な場合がある。１塩基合成（Sequencing by synthesis：ＳＢＳ）技術は、高品質のシークエンシング（配列決定）データを提供する。しかしながら、ショートリード（最大リード長が２×３００ｂｐである）が、現在のＳＢＳケミストリーの１つの限界である。最近では、一塩基多型（single nucleotide variants：ＳＮＰ）、挿入／欠失、および構造変異をより良好に捕捉するため、および改善されたゲノム識別のために、より長いＤＮＡ分子をシークエンシングすることの重要性が増している。
概要
本明細書に記載されるいくつかの態様は、ＤＮＡ反応を実施するためのヒドロゲルビーズに関する。ある態様において、ヒドロゲルビーズは、ヒドロゲルポリマー前駆体、架橋剤、およびヒドロゲルビーズ内に配置されたＤＮＡを含む。ある態様において、該ビーズは、ＤＮＡを保持しつつ、ビーズからの反応剤の拡散を可能にする細孔を含む。ある態様において、ＤＮＡは５０，０００塩基対以上の長いＤＮＡ分子である。
本明細書に記載のある態様は、ＤＮＡ配列決定を実施するためのフローセル装置に関する。ある態様において、フローセル装置は、固体支持体を含む。ある態様において、固体支持体は、そこに配置されたＤＮＡを封入する分解性ヒドロゲルを有する表面を含む。ある態様において、該分解性ヒドロゲルは、ヒドロゲルからの反応剤の拡散を可能にするが、ＤＮＡが通過するにはサイズが小さい細孔を含む。
本明細書に記載されるいくつかの態様は、ＤＮＡ配列決定のためのシステムに関する。ある態様において、該システムは、フローセル装置を保持するように構成されたステージ、フローセル装置、およびシークエンシングデータを取得するための検出器を含む。
本明細書に記載されるいくつかの態様は、ＤＮＡ配列決定法に関する。ある態様において、該方法は、本明細書に記載のＤＮＡを封入しているビーズを得ることを含む。ある態様において、該方法は、本明細書に記載のフローセル装置を提供することを含む。ある態様において、該方法は、ヒドロゲル内に封入されたＤＮＡを増幅させること、ヒドロゲル内に封入されたＤＮＡにタグメンテーションを実施すること、またはＤＮＡを配列決定することをさらに含む。ある態様において、該方法は、ヒドロゲル内に封入されたＤＮＡライブラリーを生成することをさらに含む。
本発明のさらなる態様を、以下に記載する：
［項１］
ヒドロゲルポリマー前駆体；
架橋剤；および
ヒドロゲルビーズ内に配置されたＤＮＡを含む、ＤＮＡ反応を実施するためのヒドロゲルビーズであって、ここで、該ビーズが、ＤＮＡを保持しながらビーズを通しての反応剤の拡散を可能にする細孔を含む、ヒドロゲルビーズ。
［項２］
約５０μｍから約１５０μｍの直径を有する、項１に記載のビーズ。
［項３］
ヒドロゲルポリマーが、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）－チオール／ＰＥＧ－アクリレート、アクリルアミド／Ｎ,Ｎ’－ビス（アクリロイル）シスタミン（ＢＡＣｙ）、ＰＥＧ／ポリプロピレンオキシド（ＰＰＯ）、ポリアクリル酸、ポリ（メタクリル酸ヒドロキシエチル）（ＰＨＥＭＡ）、ポリ（メタクリル酸メチル）（ＰＭＭＡ）、ポリ（Ｎ－イソプロピルアクリルアミド）（ＰＮＩＰＡＡｍ）、ポリ（乳酸）（ＰＬＡ）、ポリ（乳酸－コ－グリコール酸）（ＰＬＧＡ）、ポリカプロラクトン（ＰＣＬ）、ポリ（ビニルスルホン酸）（ＰＶＳＡ）、ポリ（Ｌ－アスパラギン酸）、ポリ（Ｌ－グルタミン酸）、ポリリシン、寒天、アガロース、アルギン酸塩、ヘパリン、硫酸アルギン酸塩、硫酸デキストラン、ヒアルロン酸、ペクチン、カラギーナン、ゼラチン、キトサン、セルロース、またはコラーゲンを含む、項１または２に記載のビーズ。
［項４］
架橋剤が、ビスアクリルアミド、ジアクリレート、ジアリルアミン、トリアリルアミン、ジビニルスルホン、ジエチレングリコールジアリルエーテル、エチレングリコールジアクリレート、ポリメチレングリコールジアクリレート、ポリエチレングリコールジアクリレート、トリメチロールプロパントリメタクリレート、エトキシ化トリメチロールトリアクリレート、またはエトキシ化ペンタエリスリトールテトラアクリレートを含む、項１から３のいずれか一項に記載のビーズ。
［項５］
ＤＮＡが、５０，０００塩基対以上の長いＤＮＡ分子である、項１から４のいずれか一項に記載のビーズ。
［項６］
反応剤が、酵素、化合物および５０塩基対未満のサイズを有するプライマーを含む、項１から５のいずれか一項に記載のビーズ。
［項７］
反応剤が、リゾチーム、プロテイナーゼＫ、ランダムヘキサマー、ポリメラーゼ（Φ２９ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔａｑポリメラーゼ、Ｂｓｕポリメラーゼ）、トランスポザーゼ（Ｔｎ５）、プライマー（Ｐ５およびＰ７アダプター配列）、リガーゼ、触媒酵素、デオキシヌクレオチド三リン酸、緩衝剤、または二価陽イオンを含む、項１から６のいずれか一項に記載のビーズ。
［項８］
そこに配置されたＤＮＡを封入する分解性ヒドロゲルを有する表面を含む固体支持体を含む、ＤＮＡ配列決定を実施するためのフローセル装置であって、ここで、該分解性ヒドロゲルが、ヒドロゲルからの反応剤の拡散を可能にするが、ＤＮＡが通過するには小さすぎるサイズの細孔を含む、フローセル装置。
［項９］
固体支持体が表面ポリマーで官能化されている、項８に記載のフローセル装置。
［項１０］
表面ポリマーが、ポリ（Ｎ－（５－アジドアセトアミジルペンチル）アクリルアミド－コ－アクリルアミド）（ＰＡＺＡＭ）またはシラン不含有アクリルアミド（ＳＦＡ）である、項９に記載のフローセル装置。
［項１１］
フローセルがパターン化表面を含む、項８から１０のいずれか一項に記載のフローセル装置。
［項１２］
パターン化表面がウェルを含む、項１１に記載のフローセル装置。
［項１３］
ウェルが、直径約１０μｍから約５０μｍ、例えば直径１０μｍ、１５μｍ、２０μｍ、２５μｍ、３０μｍ、３５μｍ、４０μｍ、４５μｍ、または５０μｍ、あるいは該値のいずれか２つにより定義される範囲内の直径であり、かつ深さ０．５μｍから約１μｍ、例えば０．５μｍ、０．６μｍ、０．７μｍ、０．８μｍ、０．９μｍ、または１μｍ、あるいは該値のいずれか２つにより定義される範囲内の深さである、項１２に記載のフローセル装置。
［項１４］
ウェルが疎水性材料で構成されている、項１１または１２に記載のフローセル装置。
［項１５］
疎水性材料が、ＣＹＴＯＰ、Ｆｌｕｏｒｏｐｅｌ（登録商標）、またはＴｅｆｌｏｎ（登録商標）などの非晶質フルオロポリマーを含む、項１４に記載のフローセル装置。
［項１６］
分解性ヒドロゲルが、ヒドロゲルビーズまたはヒドロゲル層である、項８から１５のいずれか一項に記載のフローセル装置。
［項１７］
ヒドロゲルビーズが、直径約５０μｍから約１５０μｍである、項１６に記載のフローセル装置。
［項１８］
ヒドロゲルが、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）－チオール、ＰＥＧ－アクリレート、アクリルアミド、Ｎ,Ｎ’－ビス（アクリロイル）シスタミン（ＢＡＣｙ）、ＰＥＧ、ポリプロピレンオキシド（ＰＰＯ）、ポリアクリル酸、ポリ（メタクリル酸ヒドロキシエチル）（ＰＨＥＭＡ）、ポリ（メタクリル酸メチル）（ＰＭＭＡ）、ポリ（Ｎ－イソプロピルアクリルアミド）（ＰＮＩＰＡＡｍ）、ポリ（乳酸）（ＰＬＡ）、ポリ（乳酸－コ－グリコール酸）（ＰＬＧＡ）、ポリカプロラクトン（ＰＣＬ）、ポリ（ビニルスルホン酸）（ＰＶＳＡ）、ポリ（Ｌ－アスパラギン酸）、ポリ（Ｌ－グルタミン酸）、ポリリシン、寒天、アガロース、アルギン酸塩、ヘパリン、硫酸アルギン酸塩、デキストラン硫酸塩、ヒアルロン酸、ペクチン、カラギーナン、ゼラチン、キトサン、セルロース、コラーゲン、ビスアクリルアミド、ジアクリレート、ジアリルアミン、トリアリルアミン、ジビニルスルホン、ジエチレングリコールジアリルエーテル、エチレングリコールジアクリレート、ポリメチレングリコールジアクリレート、ポリエチレングリコールジアクリレート、トリメチロールプロパントリメタクリレート、エトキシ化トリメチロールトリアクリレート、エトキシ化ペンタエリトリトールテトラアクリレート、あるいはそれらの組合せまたは混合物を含む、項８から１７のいずれか一項に記載のフローセル装置。
［項１９］
ヒドロゲルが、ＰＥＧ－チオール／ＰＥＧ－アクリレート、アクリルアミド／Ｎ,Ｎ’－ビス（アクリロイル)シスタミン（ＢＡＣｙ）、またはＰＥＧ／ＰＰＯを含む、項１８に記載のフローセル装置。
［項２０］
ＤＮＡが、５０，０００塩基対以上の長いＤＮＡ分子である、項８から１９のいずれか一項に記載のフローセル装置。
［項２１］
反応剤が、酵素、化合物および５０塩基対未満のサイズを有するプライマーを含む、項８から２０のいずれか一項に記載のフローセル装置。
［項２２］
反応剤が、リゾチーム、プロテイナーゼＫ、ランダムヘキサマー、ポリメラーゼ（Φ２９ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔａｑポリメラーゼ、Ｂｓｕポリメラーゼ）、トランスポザーゼ（Ｔｎ５）、プライマー（Ｐ５およびＰ７アダプター配列）、リガーゼ、触媒酵素、デオキシヌクレオチド三リン酸、緩衝液、または二価陽イオンを含む、項８から２１のいずれか一項に記載のフローセル装置。
［項２３］
項８から２２のいずれか一項に記載のフローセル装置を保持するように構成されたステージ；
項８から２２のいずれか一項に記載のフローセル装置；および
配列決定データを取得するための検出器
を含む、ＤＮＡ配列決定のためのシステム。
［項２４］
項１から７のいずれか一項に記載のＤＮＡを封入しているビーズを得るか、または項８から２３のいずれか一項に記載のフローセル装置を提供し；
ヒドロゲル内に封入されたＤＮＡを増幅させ；
ヒドロゲル内に封入されたＤＮＡに対してタグメンテーションを実施し；そして
ＤＮＡの配列を決定し、それによりヒドロゲル内に封入されたＤＮＡライブラリーを作製することを含む、
ＤＮＡ配列決定法。
［項２５］
ＤＮＡが５０，０００塩基対以上の長いＤＮＡ分子である、項２４に記載の方法。
［項２６］
タグメンテーションを実施する前に、ヒドロゲル内に封入されたＤＮＡに対してＤＮＡ増幅反応を行うことをさらに含む、項２４または２５に記載の方法。
［項２７］
ＤＮＡ増幅反応が多重置換増幅（ＭＤＡ）を含む、項２６に記載の方法。
［項２８］
タグメンテーションが、遺伝物質を、アダプター配列およびトランスポソームを含むトランスポザーゼ混合物と接触させることを含む、項２４から２７のいずれか一項に記載の方法。
［項２９］
固体支持体上にＤＮＡライブラリーをシーディングすることをさらに含む、項２４から２８のいずれか一項に記載の方法。
［項３０］
該シーディングが、ヒドロゲルを切断して、該ヒドロゲルからＤＮＡライブラリーを放出させることを含む、項２９に記載の方法。
［項３１］
該ヒドロゲルが、ヒドロゲルと開裂酵素ミックスを接触させるか、またはヒドロゲルを約９０℃に加熱することにより切断されてＤＮＡライブラリーを放出する、項３０に記載の方法。
［項３２］
開裂酵素ミックスが、ジチオスレイトール（ＤＴＴ）、トリス（２－カルボキシエチル）ホスフィン（ＴＣＥＰ）、またはトリス（３－ヒドロキシプロピル）ホスフィン（ＴＨＰ）を含む、項３１に記載の方法。
［項３３］
固体支持体がフローセル装置である、項２９から３２のいずれか一項に記載の方法。
図１Ａは、フローセル上のライブラリー作製およびシーディングによる、長いＤＮＡの空間インデックス付けの１態様を示す概略図である。 図１Ｂは、長いＤＮＡ分子を封入しているヒドロゲルビーズを用いた空間インデックス付けを示す概略図である。反応剤をヒドロゲルビーズに用いて、フローセル表面上にライブラリーを空間的に産生することができる。 図２は、ヒドロゲルビーズ内に長いＤＮＡを封入し、該ヒドロゲルビーズ内でライブラリーを作製し、それをフローセル装置上でクラスター化および配列決定することができる方法を示すフローチャートである。 図３は、約１００ｋｂのＤＮＡ断片（多重置換増幅（ＭＤＡ）工程を含まない（パネル（ａ））か、またはタグメンテーションの前にＭＤＡ工程を含む（パネル（ｂ）））および約１０－２０ｋｂのＤＮＡ断片（パネル（ｃ））を含む、ヒドロゲルビーズ内に封入された長いＤＮＡのＤＮＡ配列決定のワークフローを示す概略図である。 図４は、ＭＤＡを含まない１００ｋｂのＤＮＡ断片からの長いＤＮＡヒドロゲル空間インデックス付け配列決定データのストローブリード（strobed read）を示すグラフである。 図５は、ＭＤＡを含む１００ｋｂのＤＮＡ断片の長いＤＮＡヒドロゲル空間インデックス付けのロングリード（linked read）の線グラフを示す。 図６は、ＭＤＡを含む１０ｋｂのＤＮＡ断片の長いＤＮＡヒドロゲル空間インデックス付けのロングリードの線グラフを示す。
図７Ａおよび７Ｂは、ヒドロゲルビーズ内に封入された長いＤＮＡの空間的リード（spatial read）の線グラフを示す。図７Ａは、ヒドロゲルビーズ内に封入された細胞の空間的リードを示し、挿入図は、ヒドロゲルビーズ内の細胞を示す顕微鏡写真である。図７Ｂは、ヒドロゲルビーズ内に封入された長いＤＮＡ断片の空間的リードを示し、挿入図は、該ビーズ内に封入された該断片を示す顕微鏡写真である。 図８は、ヒドロゲルビーズ内に封入された微生物種の同定を示す顕微鏡写真を示す。ヒドロゲルビーズは種々の微生物種を封入し、空間的シークエンシングリードを実施して、該微生物種を同定した。 図９は、ヒドロゲルビーズ内に封入されている長いＤＮＡのバーコードリードの分布を示すグラフを示す。 図１０Ａは、ヒドロゲルビーズ内に封入された大腸菌細胞の単回ランからのショートリードおよびロングリードを示すグラフを示す。図に示すように、ロングリードはリピート領域に跨っており、新しい（de novo）配列アセンブリを改善できる。図１０Ｂは、空間的なロングリードおよび間質性ショートリードを示す顕微鏡写真を示す。
詳細な説明
以下の詳細な説明では、本明細書の一部を形成する添付の図面を参照する。図面中、同様の記号は、一般的に、これと異なる記載がない限り、同様の成分を示している。詳細な説明、図面および特許請求の範囲に記載される例示的態様は、限定することを意図していない。本明細書に記載される主題の精神または範囲を逸脱することなく、他の態様を利用すること、および他の変更を加えることが可能である。本明細書に一般的に記載され、図面に示される本開示の側面は、多種多様な異なる構成での配置、置き換え、組み合わせ、分離、および設計が可能であることは容易に理解され、それらの全てが本明細書で明示的に企図されている。
複数の態様は、ビーズ中に長いＤＮＡ断片を封入させて、ＤＮＡ断片のヌクレオチド配列を決定するための、組成物、システムおよび方法に関する。これにより、以下に記載するように、比較的長いＤＮＡ断片を配列決定する信頼できるハイスループットな方法を創出できる。本明細書に記載の方法およびシステムは、改良された配列決定およびゲノムＤＮＡの識別を可能にする単一ビーズ内に封入された長いＤＮＡ断片の配列決定に関する。ある態様において、この方法は、ヒドロゲルビーズ内にＤＮＡ断片のサンプルを封入すること、ＤＮＡ断片のサンプルを封入しているヒドロゲルビーズをフローセル装置上にローディングすること、ライブラリーを作製すること、作製したライブラリーをフローセル装置の表面上にリリースすること、およびリリースされたライブラリーをクラスター化および配列決定することを含む。
ある態様において、ライブラリー作製は、封入されたＤＮＡのタグメンテーションを含む。封入されたＤＮＡのタグメンテーションは、長いＤＮＡ配列を短いタグメンテーションフラグメントに切断して、それを用いてフローセルの表面上にＤＮＡクラスターを作製する。クラスターは、長いＤＮＡのタグメンテーションフラグメントの産物であり、各々が、例えば、ＳＢＳシークエンシングを用いて配列決定され得る。単一の長いＤＮＡ分子からのクラスター群は、本明細書中、長いＤＮＡアイランド（island）と呼ばれる。ある態様において、単一のヒドロゲルビーズは、単一の長いＤＮＡ分子または複数の長いＤＮＡ分子を封入し得る。各長いＤＮＡ分子は、単一の長いＤＮＡアイランドを産生する。単一のヒドロゲルビーズ内の全ての長いＤＮＡアイランドのクラスターは、本明細書中、クラスタークラウドと呼ばれる。従って、クラスタークラウドは、単一のヒドロゲルビーズ内の全てのクラスターを表し、多くの長いＤＮＡアイランド（長いＤＮＡアイランドのそれぞれが単一の長いＤＮＡ分子を表す）を含んでいてよく、各長いＤＮＡアイランドは、複数のクラスターを含む。
ビーズは、長いＤＮＡ分子または長いＤＮＡ分子を含む供給源の存在下で混合されて、該ＤＮＡ分子を封入しているヒドロゲルビーズを形成する、ヒドロゲルポリマーおよび架橋剤を含み得る。ある態様において、長いＤＮＡ供給源は細胞である。ヒドロゲルビーズは、ビーズ内に長いＤＮＡを保持しつつ、ヒドロゲルビーズからの反応剤の拡散を可能にし、それにより各ビーズ内で反応が起こるのを可能にする細孔を含み得る。
ある態様は、長いＤＮＡを封入しているビーズを用いて核酸反応を起こす方法、例えば、長いＤＮＡ分子のハイスループット空間インデックス付けを含む方法を含む。図１Ａに示すように、長いＤＮＡ分子からのライブラリー作製は、表面上の“クラスターパッチ（cluster patch）”としての単一の長いＤＮＡ分子からの複数のクラスターをクラスタリングおよびシーディングすることにより容易に調製することができ、次いで読み出し、空間的にマッピングすることができる。本明細書で用いる用語“長いＤＮＡ”は、３００塩基対より長いＤＮＡ断片を含んでいてよい。本明細書で用いる、長いＤＮＡ断片は、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０、６０、７０、８０、９０、１００、２００、３００、４００または５００ｋｂ以上などの１ｋｂ、２．５ｋｂ、５ｋｂ以上の長さのＤＮＡを意味し、上記の数値のいずれか２つで定義される範囲内の長さが含まれる。
理論は別にして、本明細書に記載の方法、システムおよび組成物は、現在のライブラリー作製技術と比べて幾つかの利点が挙げられる。例えば、ある態様において、この方法は、単一ビーズを用いてサンプル調製を可能とし、ゲノムサンプルを一連の長いＤＮＡフラグメントに断片化することが可能である。次に、その単一ビーズを、長いＤＮＡ断片が各々、フローセル表面上で互いに隣接して配置されるように該長いＤＮＡ断片を配するフローセル上の１つの特定の位置に付着させることができる。次いで、システムは、各長いＤＮＡ断片からヌクレオチド配列を決定する。それらはフローセル表面で互いに隣接しているため、システムは、この空間位置データを用いて、元のゲノムＤＮＡの最終配列をより効率的に再構築することができる。システムは、単一細胞、長いＤＮＡ断片または染色体から直接空間的に同じ位置に配置されたリードを沈積（deposit）させることができる。ある態様において、この方法は、ライブラリー作製のための入力を減らし、ＰＣＲなしの手順を可能にする。ある態様において、この方法は、分子バーコード化の必要なく実施され得る。ある態様において、この方法は、簡素化された手順の自動化を可能にする。ある態様において、この方法は、種々の核酸アッセイおよび手順に適合する。
ある態様は、長いＤＮＡを封入するヒドロゲルビーズを調製する方法に関する。ある態様において、長いＤＮＡを封入しているヒドロゲルビーズを用いて、細胞ゲノムを処理して、ビーズ内でＤＮＡライブラリー作製を実施するのを可能し得る。ある態様において、長いＤＮＡ断片を封入しているヒドロゲルビーズは、単一の細胞を包含し、それを用いて、細胞ゲノムＤＮＡを処理し、ビーズ内での全長ＤＮＡライブラリー作製を行うことを可能にする。
ある態様において、ヒドロゲルビーズの細孔サイズは、長いＤＮＡ断片および作製されたＤＮＡライブラリーが処理中にヒドロゲルビーズ内に保持され得るように、長い核酸（＞３００ｂｐｓ）を保持しつつ、酵素、化合物および小さいサイズのプライマー（＜５０ｂｐ）の拡散を可能にするように、操作され得る。ある態様において、特定のプライマーをヒドロゲルビーズマトリックス内で化学的に連結して、特定のゲノムＤＮＡをハイブリダイズおよび処理することができる。次いで、単一細胞からのＤＮＡライブラリーは、特定の領域に、例えば、ライブラリーシーディングのためにフローセル表面上に放出され得る。その後、これにより、封入された長いＤＮＡ断片に由来するフローセル上の“ＤＮＡクラスター”の空間分布が得られ、後処理中のリードアライメントが簡素化される。
本明細書で用いる用語“反応剤”は、反応、相互作用、希釈、またはサンプルへの添加に有用な１つの反応材または２以上の反応材の混合物を記載し、例えば緩衝液、化合物、酵素、ポリメラーゼ、５０塩基対未満のサイズを有するプライマー、鋳型核酸、ヌクレオチド、標識、色素、またはヌクレアーゼを含む、核酸反応に用いられる反応材を含み得る。ある態様において、反応剤としては、リゾチーム、プロテイナーゼＫ、ランダムヘキサマー、ポリメラーゼ（例えば、Φ２９ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔａｑポリメラーゼ、Ｂｓｕポリメラーゼ）、トランスポザーゼ（例えば、Ｔｎ５）、プライマー（例えば、Ｐ５およびＰ７アダプター配列）、リガーゼ、触媒酵素、デオキシヌクレオチド三リン酸、緩衝液または二価カチオンが挙げられる。
遺伝物質を封入しているヒドロゲルビーズ
一態様は、ヒドロゲルポリマーおよび遺伝物質を含むビーズを含む。本明細書で用いる用語“ヒドロゲル”は、有機ポリマー(天然または合成）が共有結合、イオン結合、または水素結合により架橋されて、水分子を閉じ込めてゲルを形成する、３次元の開放格子構造を形成するときに形成される物質を意味する。ある態様において、ヒドロゲルは、生体適合性ヒドロゲルであり得る。本明細書で用いる用語“生体適合性ヒドロゲル”は、生細胞に毒性がなく、閉じ込められた細胞への酸素および栄養素の十分な拡散を可能にして生存率を維持するゲルを形成するポリマーを意味する。ある態様において、ヒドロゲルポリマーは、６０－９０％の液体、例えば水、および１０－３０％のポリマーを含む。ある態様において、ヒドロゲルの含水量は約７０－８０％である。
ヒドロゲルは、親水性バイオポリマーまたは合成ポリマーを架橋することにより調製され得る。従って、ある態様において、ヒドロゲルは、架橋剤を含んでいてよい。本明細書で用いる用語“架橋剤”は、適切なベースモノマーと反応したときに３次元ネットワークを形成できる分子を意味する。１以上の架橋剤を含んでよいヒドロゲルポリマーの例としては、ヒアルロン酸、キトサン、寒天、ヘパリン、硫酸、セルロース、アルギネート（硫酸化アルギン酸（alginate sulfate）を含む)、コラーゲン、デキストラン（デキストラン硫酸塩を含む）、ペクチン、カラギーナン、ポリリシン、ゼラチン（ゼラチンタイプＡを含む）、アガロース、（メタ）アクリレート－オリゴラクチド－ＰＥＯ－オリゴラクチド－（メタ）アクリレート、ＰＥＯ－ＰＰＯ－ＰＥＯコポリマー（Pluronics）、ポリ（ホスファゼン）、ポリ（メタアクリレート）、ポリ（Ｎ－ビニルピロリドン）、ＰＬ（Ｇ）Ａ－ＰＥＯ－ＰＬ（Ｇ）Ａコポリマー、ポリ（エチレンイミン）、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）－チオール、ＰＥＧ－アクリレート、アクリルアミド、Ｎ，Ｎ’－ビス（アクリロイル）シスタミン、ＰＥＧ、ポリプロピレンオキシド（ＰＰＯ）、ポリアクリル酸、ポリ（メタクリル酸ヒドロキシエチル）（ＰＨＥＭＡ）、ポリ（メタクリル酸メチル）（ＰＭＭＡ）、ポリ（Ｎ－イソプロピルアクリルアミド）（ＰＮＩＰＡＡｍ）、ポリ（乳酸）（ＰＬＡ）、ポリ（乳酸－コ－グリコール酸）（ＰＬＧＡ）、ポリカプロラクトン（ＰＣＬ）、ポリ（ビニルスルホン酸）（ＰＶＳＡ）、ポリ（Ｌ－アスパラギン酸）、ポリ（Ｌ－グルタミン酸）、ビスアクリルアミド、ジアクリレート、ジアリルアミン、トリアリルアミン、ジビニルスルホン、ジエチレングリコール ジアリルエーテル、エチレングリコールジアクリレート、ポリメチレングリコールジアクリレート、ポリエチレングリコールジアクリレート、トリメチロールプロパントリメタクリレート、エトキシ化トリメチロールトリアクリレート、またはエトキシ化ペンタエリトリトールテトラアクリレート、あるいはそれらの組合せが挙げられるが、これらに限定されない。従って、例えば、組合せは、ポリマーおよび架橋剤、例えばポリエチレングリコール（ＰＥＧ）－チオール／ＰＥＧ－アクリレート、アクリルアミド／Ｎ,Ｎ’－ビス（アクリロイル)シスタミン（ＢＡＣｙ）、またはＰＥＧ／ポリプロピレンオキシド（ＰＰＯ）を含み得る。
ある態様において、架橋剤は、ヒドロゲルポリマー中でジスルフィド結合を形成し、それによってヒドロゲルポリマーを連結する。ある態様において、ヒドロゲルポリマーは、細孔を有するヒドロゲルマトリックス（例えば、多孔性ヒドロゲルマトリックス）を形成する。これらの細孔は、ヒドロゲルビーズ内に十分大きな遺伝物質、例えば長いＤＮＡ断片を保持することができるが、反応剤などの小さな物質が該細孔を通過し、それによりヒドロゲルビーズへの出入りを可能にする。ある態様において、ポリマーの濃度と架橋剤の濃度の比を変えることにより、細孔を微調整する。ある態様において、ポリマーと架橋剤の比は、３０：１、２５：１、２０：１、１９：１、１８：１、１７：１、１６：１、１５：１、１４：１、１３：１、１２：１、１１：１、１０：１、９：１、８：１、７：１、６：１、５：１、４：１、３：１、２：１、１：１、１：２、１：３、１：４、１：５、１：６、１：７、１：８、１：９、１：１０、１：１５、１：２０、または１：３０であるか、あるいは上記の比率のいずれか２つによって定義される範囲内の比率である。ある態様において、ＤＮＡプライマーまたは荷電化学材のような更なる官能材をポリマーマトリックスに移植して、多様な適用の要請を満たすことができる。
本明細書で用いる用語“多孔率”は、開口スペース、例えば開口孔または他の開口部で構成されているヒドロゲルの体積率（fractional volume (dimension-less)）を意味する。従って、多孔率は、材料内の空隙を測定し、０から１００％の間の割合として、全体積に対する空隙の体積の割合である（または０から１の間）。ヒドロゲルの多孔率は、０．５から０．９９の範囲、約０．７５から約０．９９の範囲、または約０．８から約０．９５の範囲であり得る。
ヒドロゲルは、任意の細孔径を有し得る。本明細書で用いる用語“細孔サイズ”は、孔の断面の直径または有効径を意味する。用語“細孔サイズ”はまた、複数の孔の測定値に基づく、細孔の断面の平均直径または平均有効直径を意味し得る。円形ではない断面の有効直径は、非円形断面と同じ断面積を有する円形断面の直径に等しい。ある態様において、ヒドロゲルが水和されると、ヒドロゲルが膨潤され得る。次いで、細孔のサイズは、ヒドロゲルの含水量に応じて変化し得る。ある態様において、ヒドロゲルの孔は、ヒドロゲル内に遺伝物質を保持するが反応剤は通過させるのに十分なサイズの細孔を有し得る。
ある態様において、架橋剤は可逆性架橋剤である。ある態様において、可逆性架橋剤は、ヒドロゲルポリマーを可逆的に架橋することができ、切断剤（cleaver）の存在下で架橋を切断することができる。ある態様において、架橋剤は、還元剤の存在により、高温により、または電場により切断され得る。ある態様において、可逆性架橋剤は、Ｎ，Ｎ’－ビス（アクリロイル)シスタミン、ポリアクリルアミドゲルの可逆性架橋剤であり得、適切な還元剤の存在下でジスルフィド結合が破壊され得る。ある態様において、架橋剤と還元剤の接触は、架橋剤のジスルフィド結合を切断し、ヒドロゲルビーズを分解する。ヒドロゲルビーズは分解し、その中に保持された核酸などの内容物を放出する。ある態様において、架橋剤は、５０、５５、６０、６５、７０、７５、８０、８５、９０、９５または１００℃を超えるまで温度を上昇させることにより切断される。ある態様において、架橋剤は、ヒドロゲルビーズを還元剤と接触させることにより切断される。ある態様において、還元剤としては、ホスフィン化合物、水溶性ホスフィン、窒素含有ホフィンならびにその塩および誘導体、ジチオエリスリトール（ＤＴＥ）、ジチオスレイトール（ＤＴＴ）（２，３－ジヒドロキシ－１，４－ジチオールブタンのそれぞれシスおよびトランス異性体)、２－メルカプトエタノールまたはβ－メルカプトエタノール（ＢＭＥ）、２－メルカプトエタノールまたはアミノエタンチオール、グルタチオン、チオグリコール酸またはチオグリコール酸、２，３－ジメルカプトプロパノール、トリス（２－カルボキシエチル)ホスフィン（ＴＣＥＰ）、トリス（ヒドロキシメチル）ホスフィン（ＴＨＰ）、またはＰ－［トリス（ヒドロキシメチル）ホスフィン］プロピオン酸（ＴＨＰＰ）が挙げられる。
ある態様において、温度を上げて拡散を増やすかまたは架橋剤を分解する還元剤と接触させることにより、ヒドロゲルビーズから封入された遺伝物質を放出させる。
ある態様において、架橋剤の架橋形成は、ヒドロゲルビーズ内に複数の細孔を確立する。ある態様において、ヒドロゲルビーズにおける該細孔のサイズは調節可能であり、遺伝物質、例えば約５０００塩基対以上のＤＮＡ断片を封入するが、より小さな粒子、例えば反応剤、または約５０塩基対未満の小さいサイズの核酸、例えばプライマーが細孔を通過するのを可能にするように整形される（図１Ｂに示す）。ある態様において、反応剤には、遺伝物質を処理するための反応剤、例えば、核酸を細胞から単離するための反応剤、核酸を増幅、バーコード化または配列決定するための反応剤、あるいは核酸ライブラリーを製造するための反応剤が含まれる。ある態様において、反応剤は、例えば、リゾチーム、プロテイナーゼＫ、ランダムヘキサマー、ポリメラーゼ（例えば、Φ２９ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔａｑポリメラーゼ、Ｂｓｕポリメラーゼ）、トランスポザーゼ（例えば、Ｔｎ５）、プライマー（例えば、Ｐ５およびＰ７アダプター配列）、リガーゼ、触媒酵素、デオキシヌクレオチド三リン酸、緩衝剤、または二価のカチオンを含む。
ある態様において、長いＤＮＡは、ゲノムＤＮＡ、ウイルス核酸、細菌核酸、または哺乳動物核酸を含む。ある態様において、ヒドロゲルビーズは、長いＤＮＡの供給源、例えば細胞を含む。ある態様において、細胞は、原核細胞または真核細胞を含む単一細胞である。ある態様において、細胞は哺乳動物細胞である。ある態様において、細胞はヒト細胞である。ある態様において、細胞は細菌細胞である。従って、図７Ａおよび７Ｂに示すように、この方法は、いずれかまたは両方がヒドロゲルビーズで封入されている、長いＤＮＡ断片または細胞上で行われてもよい。
ビーズの作製方法
本明細書で提供されるいくつかの態様は、長いＤＮＡ断片を封入するビーズを作製する方法に関する。ある態様において、ヒドロゲルビーズは、ボルテックス（vortex）攪拌処理によるエマルジョンにより調製される。本明細書で用いる、ボルテックス攪拌処理によるエマルジョンとは、チューブ、バイアルまたは反応容器などの容器内でヒドロゲルポリマーを長いＤＮＡ断片または長いＤＮＡ断片の供給源と共にボルテックスすることを意味する。複数の成分が、たとえば手動または機械的なボルテックスまたは振とうによって混合され得る。ある態様において、手動混合により、直径２、３、４、５、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０、５５、６０、６５、７０、７５、８０、８５、９０、９５、１００、１１０、１２０、１３０、１４０または１５０μｍのサイズ、あるいは該値のいずれか２つで定義される範囲内のサイズを有する遺伝物質を封入するヒドロゲルビーズが得られる。ある態様において、ビーズのサイズは不均一であり、それ故に、ビーズのサイズには種々の直径のビーズが含まれる。
ある態様において、ビーズは、マイクロ流体による液滴形成により調製される。図１Ｂに示すように、マイクロ流体による液滴生成には、ゲルエマルジョン生成を補助するためのマイクロ流体デバイスの使用が含まれる。ある態様において、マイクロ流体デバイスは、所望のサイズのヒドロゲルビーズを形成するように構成され、ビーズごとに選択された量の遺伝物質を封入するように構成されたマイクロチャネルを含む。ある態様において、マイクロ流体デバイスは、５０、６０、７０、８０、９０、１００、１１０、１２０、１３０、１４０、１５０、１６０、１７０、１８０、１９０、または２００μｍの高さ、あるいは該値のいずれか２つによって定義される範囲内の高さを有する。ある態様において、マイクロ流体デバイスは、１以上のチャネルを含む。ある態様において、マイクロ流体デバイスは、水溶液流用のチャネルおよび非混和流体用のチャネルを含む。ある態様において、１以上のチャネルの幅は同一である。ある態様において、１以上のチャネルの幅は異なる。ある態様において、１以上のチャネルの幅は、２０、３０、４０、４５、５０、５５、６０、６５、７０、７５、８０、８５、９０、９５、１００、１０５、１１０、１１５、１２０、１２５、１３０、１３５、１４０、１４５または１５０μｍであるか、または該値のいずれか２つによって定義される範囲内の幅である。ある態様において、水溶液チャネルの幅は７５μｍである。ある態様において、不混和流体チャネルの幅は７８μｍである。当業者は、ビーズのサイズを微調整するために幅を変えることができることを認識し得る。マイクロ流体デバイスのサイズおよびチャネルの幅に加えて、水溶液チャネルおよび不混和流体チャネルの流速もヒドロゲルビーズのサイズに影響を与える可能性がある。
ある態様において、水溶液チャネルにおける溶液の流速は、１、２、５、１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０、１００、１１０、１２０、１３０、１４０または１５０μＬ／分であるか、あるいは前記値のいずれか２つにより定義される範囲内の流速である。ある態様において、不混和流体チャネルにおける不混和流体の流速は、２０、３０、５０、８０、１００、１５０、１６０、１７０、１８０、１９０、２００、２２５、２５０、２７５、３００、３２５、３５０、３７５または４００μＬ／分であるか、あるいは前記値のいずれか２つにより定義される範囲内の流速である。ある態様において、水相中の溶液はヒドロゲルポリマー、架橋剤および遺伝物質を含み、水溶液チャネルを通過して不混和流体、例えば担体オイルに、不混和流体の流速よりも遅い流速で流れ込み、それにより液滴を形成する。ある態様において、不混和流体は、鉱油、炭化水素油、シリコン油またはポリジメチルシロキサン油、あるいはそれらの混合物などのオイルである。ある態様において、遺伝物質を含むヒドロゲル液滴は、均一なサイズ分布で製剤される。ある態様において、ヒドロゲルビーズのサイズは、マイクロ流体デバイスのサイズ、１以上のチャネルのサイズ、あるいは水溶液または不混和流体のいずれかまたは両方の流速を調整することにより微調整される。ある態様において、得られるヒドロゲルビーズは、２から１５０μｍの範囲、例えば２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０、５５、６０、６５、７０、７５、８０、８５、９０、９５、１００、１１０、１２０、１３０、１４０または１５０μｍ、あるいは前記値のいずれか２つにより定義される範囲内の直径を有する。
ある態様において、遺伝物質を封入しているヒドロゲルビーズのサイズおよび均一性は、ビーズ形成前にヒドロゲルポリマーを、イソプロピルアルコールを含むアルコールなどの流体改質剤と接触させることにより、さらに制御することができる。
ある態様において、ビーズ内に封入された長いＤＮＡ断片の量は、投入（inputted）サンプル内の長いＤＮＡ断片を希釈または濃縮することにより制御できる。長いＤＮＡ断片を含むサンプルは、ヒドロゲルポリマーと共に混合され、該長いＤＮＡ断片を含むヒドロゲルポリマーは、本明細書に記載の、ボルテックス攪拌エマルジョンまたはマイクロ流体滴生成に付される。
ある態様において、ヒドロゲルビーズは、ヌクレオチドで官能化(functionalize)されている。ある態様において、ヌクレオチドは、オリゴヌクレオチドまたはポリＴヌクレオチドである。ある態様において、ヌクレオチドは、ヒドロゲルビーズに結合され、官能化されたビーズは、目的のヌクレオチドの標的化された捕捉に用いられ得る。
ヒドロゲルビーズ内の長いＤＮＡ断片の処理方法
いくつかの態様は、ヒドロゲルビーズにおいて長いＤＮＡ分子を調製および処理するためのフロー図を示す図２に示されるように、ビーズ内で長いＤＮＡ断片を処理する方法を含む。第一工程において、例えばゲノムデータまたは細胞由来のＤＮＡサンプルを、ヒドロゲルビーズ内に封入する。ある態様において、長いＤＮＡ断片は、ヒドロゲルビーズ内に保持され、反応剤はヒドロゲルビーズの細孔を通過できる。ある態様において、反応剤としては、溶解剤、核酸精製剤、タグメンテーション剤、ＰＣＲ反応剤、または遺伝物質の処理に用いられる他の反応剤が挙げられ得る。従って、ヒドロゲルビーズは、反応剤に対するバリアをヒドロゲルビーズの内外に通過可能にする一方で、長いＤＮＡ断片をビーズ内に保持する、ヒドロゲルビーズ内の長いＤＮＡ断片の制御された反応のための微小環境を提供する。ＤＮＡがビーズ内に封入されると、該プロセスは、サンプルをフローセルにロードして、ライブラリー作製プロセスで長いＤＮＡ断片を作製できる次の段階に進む。
本明細書で用いる用語“タグメンテーション”は、トランスポゾン末端配列を含むアダプターと結合されたトランスポザーゼ酵素を含むトランスポソームによるＤＮＡの修飾を意味する。タグメンテーションの結果、ＤＮＡの断片化および二本鎖フラグメントの両鎖の５’末端へのアダプターのライゲーションが同時に起こる。トランスポザーゼ酵素を除去するための精製工程の後、さらなる配列が、例えば、ＰＣＲ、ライゲーション、または当業者に知られている何らかの他の好適な方法により、適合断片の末端に付加され得る
ある態様において、全体のＤＮＡライブラリー作製は、ヒドロゲルマトリックス内にｇＤＮＡおよびそのライブラリー産物を保持しながら、多孔質を通してヒドロゲルを通過させることにより、複数の反応剤交換と共に、フローセルに結合されたヒドロゲルビーズの内部でシームレスに行うことができる。ヒドロゲルは、様々な生化学反応をサポートするために９５℃までの高温に数時間耐えることができる。
プロセスの次のステップでは、前記ライブラリー作製からの長いＤＮＡ断片を封入したヒドロゲルビーズを処理して、該ビーズから長いＤＮＡ断片を放出、精製および分離する。したがって、例えば、ヒドロゲルビーズを溶解緩衝液と接触させる。本明細書で用いる“溶解”とは、細胞ＲＮＡまたはＤＮＡへのアクセスまたは放出を促進する細胞壁またはウイルス粒子の崩壊（perturbation）または変化を意味する。細胞壁の完全な破壊も分解も、溶解に不可欠な要件ではない。用語“溶解緩衝液”とは、少なくとも１つの溶解剤を含む緩衝液を意味する。一般的な酵素溶解剤には、リゾチーム、グルコラーゼ、ザイモロース、リチカーゼ、プロテイナーゼＫ、プロテイナーゼＥ、ならびにウイルスエンドリシンおよびエキソリシンが含まれるが、これらに限定されない。従って、例えば、ビーズ中の細胞の溶解は、リゾチームおよびプロテイナーゼＫなどの溶解剤をヒドロゲルビーズ内に導入することにより、行うことができる。ここで、細胞からのｇＤＮＡは、ビーズ内に含まれる。ある態様において、溶解処理後、単離された核酸は、ヒドロゲルビーズ内に保持され、さらなる処理に用いられ得る。
本明細書で用いる用語“単離された（isolated）”、“単離する（to isolate）”、“単離（isolation）”、“精製された（purified）”、“精製する（to purify）”、“精製（purification）”ならびに文法的に等価な用語は、本明細書で用いられるとき、他にこれと異なる記載がされない限り、そこから物質が単離される、サンプルまたは供給源（例えば、細胞）からの少なくとも１つの汚染物質（例えばタンパク質および／または核酸配列）の量の減少を意味する。従って、精製の結果、“富化”、例えば、サンプル中の所望のタンパク質および／または核酸配列の量の増加がもたらされる。
ある態様において、封入された核酸は、ヒドロゲルビーズ内で完全にまたは一部分配列決定される。封入された核酸は、何らかの好適な配列決定法、例えば、合成による配列決定、ライゲーションによる配列決定、ハイブリダイゼーションによる配列決定、ナノポアシークエンシングなどを含む直接的配列決定により配列決定され得る。
本明細書で提供されるいくつかの態様は、長いＤＮＡ断片に対して有効な１塩基合成（sequencing-by-synthesis (SBS)）法に関する。ＳＢＳにおいて、核酸鋳型（例えば、ターゲット核酸またはそのアンプリコン）に沿った核酸プライマーの伸長が、鋳型内のヌクレオチドの配列を決定するためにモニターされる。基礎となる化学プロセスは、ポリマー化であり得る（例えば、ポリメラーゼ酵素により触媒される）。特定のポリメラーゼベースのＳＢＳ態様において、蛍光標識されたヌクレオチドが、プライマーに追加されたヌクレオチドの順序とタイプの検出を用いて、該鋳型の配列を決定できるように、鋳型に依存する方法でプライマーに付加される（それにより、プライマーを延長する）。
１以上の増幅され封入された核酸を、サイクルでの反応剤の反復送達を伴う、ＳＢＳまたは他の検出技術に供することができる。例えば、最初のＳＢＳサイクルを開始するために、１以上の標識されたヌクレオチド、ＤＮＡポリメラーゼなどを、１以上の増幅された核酸分子を含むヒドロゲルビーズに／を通して流すことができる。プライマーの伸長により標識ヌクレオチドが取り込まれる部位を検出することができる。要すれば、ヌクレオチドは、ヌクレオチドがプライマーに添加されると、さらなるプライマー伸長を終結させる可逆的終結特性をさらに含み得る。例えば、可逆的ターミネーター部分を有するヌクレオチド類縁体を、その部分を除去するために脱ブロッキング剤が送達されるまで後続の伸長が生じないように、プライマーに付加することができる。従って、可逆的終結を用いる態様では、脱ブロッキング剤がフローセルに送達され得る（検出を行う前後に）。種々の送達工程間で洗浄が行われ得る。次いで、サイクルをｎ回繰り返して、プライマーをｎヌクレオチド伸長し、それにより長さｎの配列を検出することができる。本発明の方法により生成されるアンプリコンでの使用に容易に適合させることができる例示的なＳＢＳ法、流体システムおよび検出プラットフォームは、例えば、Bentleyらの、Nature 456:53-59 (2008)、ＷＯ０４/０１８４９７；米国特許第７，０５７，０２６号；ＷＯ９１/０６６７８；ＷＯ０７/１２３７４４；米国特許第７，３２９，４９２号；米国特許第７，２１１，４１４号；米国特許第７，３１５，０１９号；米国特許第７，４０５，２８１号、およびＵＳ２００８/０１０８０８２（各文献は引用により本明細書中に包含される）に記載されている。
パイロシークエンス法などの循環式反応を用いる他の配列決定法を用いることができる。パイロシークエンス法は、特定のヌクレオチドが新生核酸鎖に組み込まれているため、無機ピロホスフェート（ＰＰｉ）の放出を検出する（Ronaghi, et al., Analytical Biochemistry 242(1), 84-9 (1996); Ronaghi, Genome Res. 11(1), 3-11 (2001); Ronaghi et al. Science 281(5375), 363 (1998);米国特許第６，２１０，８９１号;米国特許第６，２５８，５６８号および米国特許第６，２７４，３２０号、各文献は引用により本明細書中に包含される）。パイロシークエンス法において、放出されたＰＰｉは、ＡＴＰスルフリラーゼによってアデノシン三リン酸（ＡＴＰ）に直ちに変換されることにより検出され得て、精製されたＡＴＰのレベルは、ルシフェラーゼにより生成されたフォトン（光子）により検出され得る。従って、配列決定反応は、発光検出システムによりモニターできる。蛍光ベースの検出システムに用いられる励起放射線源は、パイロシークエンス法には必要ない。本明細書の記載に従って生成されたアンプリコンへのパイロシークエンスの適用に適合させることができる有用な流体システム、検出器および手順は、例えば、ＷＩＰＯ特許出願番号ＰＣＴ／ＵＳ１１／５７１１１、ＵＳ ２００５／０１９１６９８ Ａ１、米国特許第７，５９５，８８３号、および米国特許第７，２４４，５５９号(各文献は引用により本明細書中に包含される）に記載されている。
いくつかの態様は、ＤＮＡポリメラーゼ活性のリアルタイムモニタリングを含む方法に有用であり得る。例えば、ヌクレオチドの取り込みは、フルオロフォアを担持するポリメラーゼとγ－リン酸標識ヌクレオチドとの間の蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）相互作用により、またはゼロモード導波路（zero mode waveguides (ZMW)）を用いて検出できる。ＦＲＥＴベースの配列決定のための技術および反応剤は、例えば、Leveneらの、Science 299, 682-686 (2003); Lundquistらの、Opt. Lett. 33, 1026-1028 (2008); Korlachらの、Proc. Natl. Acad. Sci. USA 105, 1176-1181 (2008)（これらの文献の開示内容は引用により本明細書中に包含される）に記載されている。
いくつかのＳＢＳの態様には、伸長産物へのヌクレオチドの取り込みの際に放出される陽子（プロトン）の検出が含まれる。例えば、放出されたプロトンの検出に基づく配列決定では、市販の電気検出器（electrical detector）および関連技術を用いることができる。そのような配列決定システムの例は、パイロシークエンシング（例えば、Rocheの子会社である454 Life Sciencesから市販のプラットフォーム）、γ-リン酸標識ヌクレオチドを用いるシークエンシング（例えば、Pacific Biosciencesから市販のプラットフォーム）およびプロトン検出を用いるシークエンシング（例えば、Life Technologiesの子会社であるIon Torrentから市販のプラットフォーム）、あるいはＵＳ ２００９／００２６０８２ Ａ１；ＵＳ ２００９／０１２７５８９ Ａ１；ＵＳ ２０１０／０１３７１４３ Ａ１；またはＵＳ ２０１０／０２８２６１７ Ａ１（各文献は、引用により本明細書中に包含される）に記載されているシークエンス法およびシステムである。動的排除(kinetic exclusion)を用いて標的核酸を増幅するための本明細書に記載の方法は、プロトンの検出に用いられる基質に容易に適用することができる。より具体的には、本明細書に記載の方法を用いて、プロトンを検出するために用いられるアンプリコンのクローン集団を生成することができる。
別の配列決定技術は、ナノポアシークエンシングである（例えば、Deamer et al. Trends Biotechnol. 18, 147-151 (2000); Deamer et al. Acc. Chem. Res. 35:817-825 (2002); Li et al. Nat. Mater. 2:611-615 (2003)を参照のこと。それらの開示内容は引用により本明細書中に包含される）。いくつかのナノポアの態様において、標的核酸または標的核酸から除去された個々のヌクレオチドは、ナノポアを通過する。核酸またはヌクレオチドがナノポアを通過すると、孔の電気伝導度の変動を測定することにより、各ヌクレオチドタイプを特定できる（米国特許第７，００１，７９２号；Soni et al. Clin. Chem. 53, 1996-2001 (2007); Healy, Nanomed. 2, 459-481 (2007); Cockroft et al. J. Am. Chem. Soc. 130, 818-820 (2008)(それらの開示内容は引用により本明細書中に包含される）。
本明細書に記載の検出に適用することができるアレイベースの発現および遺伝子型分析の例示的な方法は、米国特許第７，５８２，４２０号；同第６，８９０，７４１号；同第６，９１３，８８４号または同第６，３５５，４３１号あるいは米国特許出願２００５/００５３９８０ Ａ１； ２００９/０１８６３４９ Ａ１またはＵＳ ２００５/０１８１４４０ Ａ１（それぞれ引用により本明細書中に包含される）に記載されている。
本明細書に記載の、核酸を単離、増幅および配列決定する方法において、種々の反応剤が核酸の単離および生成のために用いられる。かかる反応剤としては、例えば、リゾチーム、プロテイナーゼＫ、ランダムヘキサマー、ポリメラーゼ（例えば、Φ２９ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔａｑポリメラーゼ、Ｂｓｕポリメラーゼ）、トランスポザーゼ（例えば、Ｔｎ５）、プライマー（例えば、Ｐ５およびＰ７アダプター配列）、リガーゼ、触媒酵素、デオキシヌクレオチド三リン酸、緩衝液または二価のカチオン類が挙げられ得る。これらの反応剤はヒドロゲルビーズの細孔を通過するが、一方で、遺伝物質はヒドロゲルビーズ内に保持される。本明細書に記載の方法の利点は、ヒドロゲルビーズ内の核酸の処理のために封入された微小環境を提供することである。これは、標的核酸の迅速かつ効率的な単一細胞処理を可能にする。
アダプターには、シークエンシングプライマー部位、増幅プライマー部位、および複数のインデックス配列（indexes）が含まれ得る。本明細書で用いる“インデックス配列（index）”は、分子識別子および／またはバーコードとして核酸をタグ付けするために、および／または核酸の供給源を同定するために用いられ得る、ヌクレオチド配列を含み得る。ある態様において、インデックス配列を用いて単一の核酸、または核酸の亜集団を特定することができる。ある態様において、核酸ライブラリーは、ヒドロゲルビーズ内で調製され得る。ある態様において、ヒドロゲルビーズ内に封入された単一細胞は、例えば、連続性保存転位（CPTSeq）法を用いて、単一細胞のコンビナトリアルインデックス付けに用いられてもよい。ある態様において、単一細胞由来のＤＮＡは、ＷＧＡ増幅後に複数の単一細胞を、バーコード化されたトランスポゾンを担持し、それを還元剤と接触させることによりゲルマトリックスが溶解される、例えばバーコード化するためのゲノムＤＮＡを放出する別のビーズと共に封入することによりバーコード化され得る。
本明細書に記載の“空間インデックス付け”法および技術の態様は、データ分析を短縮化し、複数の単一細胞および長いＤＮＡ分子からのライブラリー作製のプロセスを簡易化する。単一細胞シークエンシングのための既存のプロトコルは、細胞を効率的に物理的に分離し、単離された各細胞を一意的にバーコード化し、すべてをプールしつつ配列決定を行う必要がある。合成された長い読み出しのための現在の方法もまた、複雑なバーコード化工程を要し、各バーコード化されたフラグメントをプールしつつ配列決定を行い、データ分析を各バーコード化された細胞からの遺伝子情報が区別できるようにする必要がある。これらの長いプロセスの間、遺伝物質の損失もあり、それは配列の脱落を引き起こす。本明細書に記載の態様は、プロセスを短縮するのみならず、複数の単一細胞のデータ解像度の向上をもたらす。さらに、本明細書に記載の態様は、新しい生物のゲノムのアセンブリを単純化する。本明細書に記載の態様は、まれな遺伝子変異および突然変異の共起（co-occurrence）を明らかにするために用いられ得る。ある態様において、放出までヒドロゲルビーズに閉じ込められたＤＮＡライブラリーは、放出プロセスおよびヒドロゲル製造を制御することにより、表面に放出されるフラグメントのサイズを制御する機会を提供する。
ある態様において、表面はフローセル装置である。ある態様において、フローセルは、ウェル、溝、またはパターンを有するカスタムフローセル装置である。ある態様において、フローセルは、パターン化表面を含む。ある態様において、パターン化表面は、ウェルを含む。ある態様において、ウェルは、約１０μｍから約５０μｍの直径、例えば１０μｍ、１５μｍ、２０μｍ、２５μｍ、３０μｍ、３５μｍ、４０μｍ、４５μｍ、または５０μｍの直径、あるいは上記値のいずれか２つにより定義される範囲内の直径であり、かつ、約０．５μｍから約１μｍの深さ、例えば０．５μｍ、０．６μｍ、０．７μｍ、０．８μｍ、０．９μｍ、または１μｍの深さ、あるいは上記値のいずれか２つにより定義される範囲内の深さであるある態様において、該ウェルは、疎水性材料で構成される。ある態様において、疎水性材料としては、非晶質フルオロポリマー、例えばＣＹＴＯＰ、Ｆｌｕｏｒｏｐｅｌ（登録商標）、またはＴｅｆｌｏｎ（登録商標）が挙げられる。
ある態様において、ライブラリーは、アダプター配列におけるプライマー部位を用いて増幅することができ、また、アダプター配列における配列決定プライマー部位を用いて配列決定することができる。ある態様において、アダプター配列は、核酸の供給源を識別するための指標を含み得る。後続の増幅工程の効率は、プライマーダイマーの形成により低下する可能性がある。後続の増幅工程の効率を高めるために、ライゲーション産物から非連結一本鎖アダプターを除去してよい。
ヒドロゲルビーズを用いた核酸ライブラリーの作製
本明細書に記載のシステム、方法および組成物のいくつかの態様は、アダプターが標的核酸に連結されている方法を含む。アダプターには、配列決定プライマー結合部位、増幅プライマー結合部位、およびインデックスを含めることができる。例えば、アダプターは、Ｐ５配列、Ｐ７配列、またはそれらの相補体を含み得る。本明細書で用いる、Ｐ５配列は、配列番号１（ＡＡＴＧＡＴＡＣＧＧＣＧＡＣＣＡＣＣＧＡ）で定義される配列を含み、Ｐ７配列は、配列番号２（ＣＡＡＧＣＡＧＡＡＧＡＣＧＧＣＡＴＡＣＧＡ）で定義される配列を含む。ある態様において、Ｐ５またはＰ７配列はさらに、スペーサーポリヌクレオチドを含んでいてよく、これは約１から２０ヌクレオチド長、例えば１から１５、または１から１０ヌクレオチド長、例えば２、３、４、５、６、７、８、９または１０ヌクレオチド長である。ある態様において、スペーサーは、１０個のヌクレオチドを含む。ある態様において、スペーサーは、ポリＴスペーサー、例えば１０Ｔスペーサーである。スペーサーヌクレオチドは、ポリヌクレオチドの５’末端に含まれていてよく、それは、ポリヌクレオチドの５’末端との結合により適当な支持体に結合され得る。結合は、ポリヌクレオチドの５’末端に存在するホスホロチオエートなどの硫黄含有求核反応剤により達成され得る。ある態様において、ポリヌクレオチドは、ポリＴスペーサーおよび５’ ホスホロチオエート基を含み得る。従って、ある態様において、Ｐ５配列は、５’ホスホロチオエート－ＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＡＡＴＧＡＴＡＣＧＧＣＧＡＣＣＡＣＣＧＡ－３’であり、ある態様において、Ｐ７配列は、５’ホスホロチオエート－ＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＣＡＡＧＣＡＧＡＡＧＡＣＧＧＣＡＴＡＣＧＡ－３’である。
インデックスは、核酸分子の供給源を特定するのに有用であり得る。ある態様において、アダプターを改変して、例えば一方または両方の末端でアダプターの伸長を防ぐブロッキング基を付加することにより、コンカテマーの形成を防ぐことができる。３’ブロッキング基の例としては、３’－スペーサーＣ３、ジデオキシヌクレオチド、および基質への付着基が挙げられる。５’ブロッキング基の例としては、脱リン酸化５’ヌクレオチド、および基質への付着基が挙げられる。
アダプターとしては、核酸、例えば一本鎖核酸が挙げられる。アダプターは、約５ヌクレオチド長、１０ヌクレオチド長、２０ヌクレオチド長、３０ヌクレオチド長、４０ヌクレオチド長、５０ヌクレオチド長、６０ヌクレオチド長、７０ヌクレオチド長、８０ヌクレオチド長、９０ヌクレオチド長、１００ヌクレオチド長未満、以上またはそれと等しい長さを有するか、あるいは上記サイズのいずれか２つに定義される範囲の長さの短い核酸を含み得る。ある態様において、アダプターは、ヒドロゲルビーズの孔を通過するのに十分小さいサイズである。標的核酸としてはＤＮＡ、例えばゲノムまたはｃＤＮＡ；ＲＮＡ、例えばｍＲＮＡ、ｓＲＮＡまたはｒＲＮＡ；あるいは、ＤＮＡとＲＮＡのハイブリッドが挙げられる。核酸は、ヒドロゲルビーズ内に封入された単一細胞から単離され得る。核酸は、ホスホジエステル結合を含んでいてよく、例えばホスホラミド、ホスホロチオエート、ホスホロジチオエート、Ｏ－メチルホスホロアミダイトおよびペプチド核酸主鎖および結合を含む、他のタイプの主鎖を含んでいてよい。核酸は、デオキシリボヌクレオチドおよびリボヌクレオチドの任意の組合せ、ならびにウラシル、アデニン、チミン、シトシン、グアニン、イノシン、キサンタニン、ヒポキサンタニン、イソシトシン、イソグアニン、およびニトロピロール（３－ニトロピロールを含む）およびニトロインドール（５－ニトロインドールを含む）などの塩基類縁体を含む塩基の任意の組合せを含んでいてよい。ある態様において、核酸は、少なくとも１つの非特異的塩基（promiscuous base）を含み得る。非特異的塩基は、２以上の異なるタイプの塩基と塩基対形成することができ、例えば、ゲノムＤＮＡサンプルなどの複雑な核酸サンプルにおけるランダムハイブリダイゼーションに用いられるオリゴヌクレオチドプライマーまたはインサートに含まれるとき、有用であり得る。非特異的塩基の例としては、アデニン、チミンまたはシトシンと対になり得るイノシンが挙げられる。他の例としては、ヒポキサンチン、５－ニトロインドール、アシル ５－ニトロインドール、４－ニトロピラゾール、４－ニトロイミダゾールおよび３－ニトロピロールが挙げられる。少なくとも２、３、４またはそれ以上の種類の塩基と塩基対を形成できる非特異的塩基を用いることができる。
方法の一例としては、後続のライゲーション工程においてコンカテマーの形成を阻止するために標的核酸の５’末端を脱リン酸化すること；リガーゼを用いて、脱リン酸化された標的の３’末端に第１のアダプターを連結すること、ここで、第１のアダプターの３’末端はブロックされている；連結された標的の５’末端を再リン酸化すること；一本鎖リガーゼを用いて、脱リン酸化された標的の５’末端に第２のアダプターを連結させること、ここで、第２のアダプターの５’末端はリン酸化されていない、を含む。
別の例としては、核酸を５’エキソヌクレアーゼで部分的に消化して、一本鎖３’オーバーハングと二本鎖核酸を形成することが挙げられる。３’ブロッキング基を含むアダプターは、３’オーバーハングを有する二本鎖核酸の３’末端に連結され得る。連結されたアダプターを含む３’オーバーハングを有する二本鎖核酸を脱ハイブリダイゼーション（dehybridized）して、一本鎖核酸を形成することができる。リン酸化されていない ５’末端を含むアダプターは、一本鎖核酸の５’末端に連結され得る。
核酸の５’ヌクレオチドなどの核酸を脱リン酸化する方法としては、核酸をホスファターゼと接触させることが挙げられる。ホスファターゼの例としては、仔ウシ腸ホスファターゼ、エビアルカリホスファターゼ、アンタークティック・ホスファターゼ（antarctic phosphatase）、およびＡＰＥＸアルカリホスファターゼ（Epicentre）が挙げられる。
核酸を連結する方法としては、核酸とリガーゼを接触させることが挙げられる。リガーゼの例としては、Ｔ４ ＲＮＡリガーゼ１、Ｔ４ ＲＮＡリガーゼ２、ＲｔｃＢリガーゼ、メタノバクテリウム属ＲＮＡリガーゼ、およびＴＳ２１２６ ＲＮＡリガーゼ（CIRCLIGASE）が挙げられる。
核酸の５’ヌクレオチドなどの核酸をリン酸化する方法としては、核酸をキナーゼと接触させることが挙げられる。キナーゼの例としては、Ｔ４ポリヌクレオチドキナーゼが挙げられる。
本明細書に記載の態様は、核酸ライブラリーが単一の反応体積で調製されるように、ヒドロゲルビーズにおける該核酸ライブラリーの作製に関する。
本明細書に記載のシステムおよび方法の態様には、遺伝物質を封入するヒドロゲルビーズを製造するための、ヒドロゲルポリマー、架橋剤または微小流体デバイスのいずれか１以上を含み、かつ細胞溶解ならびに核酸増幅および配列決定のための反応剤、あるいは本明細書に記載され、遺伝子物質のそれぞれの処理に用いられる、リゾチーム、プロテイナーゼＫ、ランダムヘキサマー、ポリメラーゼ（例えば、Φ２９ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔａｑポリメラーゼ、Ｂｓｕポリメラーゼ）、トランスポザーゼ（例えば、Ｔｎ５）、プライマー（例えば、Ｐ５およびＰ７アダプター配列）、リガーゼ、触媒酵素、デオキシヌクレオチド三リン酸、緩衝液、または二価カチオンを含む、核酸ライブラリー作製のための反応剤、を含む、遺伝物質を処理するのに有用な成分をさらに含む、キットが含まれる。
実施例
実施例１－ヒドロゲルビーズの調製
この実施例は、マイクロ流体液滴発生器を用いて長いＤＮＡ断片を封入しているヒドロゲルビーズを調製する１つの態様を示す。
液滴発生器を用いてヒドロゲルビーズを製造した。長いＤＮＡ断片を含むサンプルをポリマー前駆体と共に混合し、該混合物を、カートリッジ上のサンプルリザーバーに負荷した。２分以内に、長いＤＮＡを含む約５０，０００個のヒドロゲルビーズが各チャネルから作製された（８個の独立したサンプルに対する８チャネルを各カートリッジで処理する）。長いＤＮＡヒドロゲルビーズをフローセル上に負荷し、そこでヒドロゲルビーズをハンズフリーライブラリーの作製のために内部に固着させた（１００μｍの高さのチャネルおよび１２０μｍの直径のヒドロゲルビーズ）。Ｎｅｘｔｅｒａ酵素および反応剤をフローセルに接触させ、ヒドロゲルビーズ内に包埋された長いＤＮＡを接触させて、ライブラリーを形成した。その後、ライブラリーをフローセル上にシーディングした。ライブラリーシーディング中、ビーズ間の空隙を埋めるためにオイルを負荷し、ライブラリーの拡散を促進するためにフローセルを加熱した。オイルの存在下で、シーディングは、各ヒドロゲルビーズのフットプリントに近接して生じた（１２０μｍまでの直径のヒドロゲルビーズ、ライブラリーシーディングは、およそ１２０μｍ直径の領域に限定された）。
長いＤＮＡ分子を負荷し、ヒドロゲルビーズ（直径約１２０μｍ）中に捕捉させ、ライブラリー作製を、ヒドロゲルビーズの内部に包埋されたこれらの長いＤＮＡ分子に直接実施した。その結果、特定の長いＤＮＡ分子からの全てのＤＮＡライブラリーは、同一のヒドロゲルビーズ内に保持された。次いで、ライブラリーをヒドロゲルビーズからフローセル表面上に放出させて、該フローセル表面上のグループとしてそれらをシーディングした。フローセル上の“クラスターパッチ”として、共にグループ化された長いＤＮＡ分子からクラスターを放出させた。単一の長いＤＮＡ分子からの単一のパッチを内部に有するクラスターは、高い精度およびより少ない足場ギャップを有するゲノムの再構築を簡易化する。
実施例２－長いＤＮＡ空間インデックス
この実施例は、ＭＤＡを有する、または有しないヒドロゲルビーズ内に封入された１００ｋｂの長いＤＮＡ断片のストローブ・リードの１つの態様を示す。
ヒドロゲルビーズを、約１００ｋｂのCorriell ゲノムＤＮＡの存在下でポリマーを混合し、微小液滴発生器を用いてヒドロゲルビーズを形成することにより調製した。ＤＮＡ断片を、封入している形成されたヒドロゲルビーズをフローセル装置上に配置して、フローセルを反応剤と接触させることにより、ＤＮＡに空間インデックス配列決定を行った。ビーズは分解され、フローセル装置上にクラスターが形成された。図５に示すように、長いＤＮＡアイランド当たりの平均クラスターは約３３であって、平均の長いＤＮＡアイランドのサイズは、６４０００塩基対であり、ビーズ当たり約４０５個の長いＤＮＡアイランドがあった。
ヒドロゲルビーズの第２のセットを、約１００ｋｂのCorriell ゲノムＤＮＡの存在下でポリマーを混合し、微小液滴発生器を用いてヒドロゲルビーズを形成することにより調製した。ＤＮＡ断片を封入している形成されたヒドロゲルビーズをフローセル装置上に配置して、フローセルを反応剤と接触させることにより、ＤＮＡに空間インデックス配列決定を行った。ＭＤＡをタグメンテーション前に行った。ビーズは分解され、フローセル装置上にクラスターが形成された。図６に示すように、長いＤＮＡアイランド当たりの平均クラスターは約８５に増加し、平均の長いＤＮＡアイランドサイズは５８０００塩基対であって、ビーズ当たり約１６６の長いＤＮＡアイランドがあった。
ヒドロゲルビーズの第３のセットを、約１０ｋｂのCorriell ゲノムＤＮＡの存在下でポリマーを混合し、微小液滴発生器を用いてヒドロゲルビーズを形成することにより調製した。ＤＮＡ断片を封入している形成されたヒドロゲルビーズをフローセル装置上に配置して、フローセルを反応剤と接触させることにより、空間インデックス配列決定を実施した。ＭＤＡをタグメンテーション前に行った。ビーズは分解され、フローセル装置上にクラスターが形成された。図７に示すように、長いＤＮＡアイランド当たりの平均クラスターは約５７であって、平均の長いＤＮＡアイランドサイズは１０４６１塩基対であって、ビーズ当たり約８５の長いＤＮＡアイランドがあった。
実施例３－微生物種の複合混合物におけるメタゲノム
この実施例は、ヒドロゲル内に封入された単一細胞微生物を同定する１つの態様を示す。
ヒドロゲルビーズを、微小液滴発生器を用いて本明細書に記載のとおりに調製した。ポリマー材を、Ｌ．ガセリ菌、黄色ブドウ球菌、セレウス菌、バクテロイデス属菌、アシネトバクター・バウマニー、Ａ群溶血性レンサ球菌、およびアクネス菌を含む多数の微生物を含むサンプルと混合した。その後、封入された細胞を溶解し、ライブラリー作製を行い、それにより、ヒドロゲルビーズが分解され、ライブラリーが表面上に沈積した。図９に示す通り、フローセル装置上でのその空間的な区画化により、各微生物を同定することが可能であった。従って、封入反応および後続の核酸反応により、ミニ－メタゲノムアッセイにおいてリード区画化を用いて複合混合物中の微生物種の菌株レベルの識別が可能となる。
実施例４－フローセル空間インデックス付け
この実施例は、フローセル上の空間インデックスの１つの態様を実証する。
フローセル装置を入手し、２００μｌのＰＲ２で洗浄した。プロセシングのためのビーズもＰＲ２で洗浄した。希釈したヒドロゲルをＰＲ２中で調製した。希釈度を上げると、ヒドロゲル間の間隔が増した。ヒドロゲルをフローセル上に埋め込み、該フローセルへの気泡の導入を回避した。２００μｌ ＰＲ２を該フローセルに流して、ビーズが固定されたままで該工程を実施するのを可能にした。１００μｌのＲＳＢを、フローセルを通して流した。
タグメンテーションミックスを、２５μｌのタグメンテーション剤、２３μｌのＲＳＢ、および２μｌの酵素を混合することにより調製した。タグメンテーションミックスを狭いチャネルに導入して、注入口の気泡発生の可能性を除去した。次いで、タグメンテーションミックスをゆっくりと注入口に注いだ。フローセルを密封し、５５℃にて１０分間インキュベートした。
反応停止緩衝液ミックスを、２５μｌのタグメンテーション緩衝液、２５μｌのＲＳＢ、および１０μｌの停止緩衝液を混合することにより調製した。該停止緩衝液ミックスを、ゆっくりと気泡を発生させることなくフローセル上に流し、室温にて５分間インキュベートした。インキュベーション後、２００μｌのＰＲ２を、該装置に流した。
ＮＰＭを、１７５μｌのＲＳＢおよび７５μｌのＮＰＭを混合することにより調製した。ＮＰＭミックスをゆっくりと気泡を生じさせることなくフローセル装置上に流し、室温にて３分間インキュベートした。２００μｌの界面活性剤含有オイルをフローセル装置に流した。顕微鏡写真から、ヒドロゲルはＮＰＭミックスおよびオイルで囲まれていることが明らかであった。フローセルを密封し、ギャップ充填反応のために７２℃にて３分間インキュベートした。
２０－３０μｌの界面活性剤含有オイルおよびＤＴＴ含有オイル（２９／２比）をフローセル装置に流し、該装置を密封した。開始温度放出プロセスは、９０℃で３分間、６０℃で５分間、４０℃で２分間、および２０℃で２分間であった。フローセルを４００μｌのＰＲ２および２００μｌのＣＬＭで洗浄した。次いで、フローセルを４００μｌのＰＲ２で洗浄した。ここで、ｐｈｉｘシーディングが望まれ、Ｐｈｉｘは２－３ｐＭ濃度で調製され、ｐｈｉｘライブラリーを装置上に流し、室温で５分間インキュベートした。フローセルを２００μｌのＰＲ２で洗浄した。１００－２００μｌのＡＭＸを１回目の伸長のために流し、５０℃にて５分間インキュベートした。フローセルをＰＲ２で洗浄し、２４または３０サイクルの増幅を行った。
本明細書に記載の態様、実施例および図面は、溶解からライブラリー作製までのプロセス中に遺伝物質を物理的に閉じ込められた空間に保存するための組成物、方法、およびシステムを提供する。いくつかの態様は、限られたスペース内のフローセルの表面上に放出されると、単一の長いＤＮＡ分子または単一の細胞からそれに由来するライブラリーを提供する。一旦、個々のコンパートメントにおいて単一のＤＮＡ分子または単一細胞からライブラリーがフローセルの表面上に放出されると、各コンパートメントからの該ライブラリーは、互いに近接してシーディングされる。
本明細書で用いる用語“含む（comprising）”は、“含有する（including）”、“包含（containing）”または“によって特徴付けられる（characterized by）”と同様の意味を有し、包括的またはオープンエンドであり、さらなる、列挙されなかった要素または方法の工程を排除しない。
本明細書は本発明のいくつかの方法および材料を開示している。本発明は、方法および材料の修飾、ならびに製造方法および装置の変更の影響を受けやすい。かかる修飾は、本明細書に記載の詳細な説明の考察または本発明の実施から当業者に明らかである。従って、本発明は、本明細書に記載された特定の態様に限定されることを意図するものではなく、本発明の真の範囲および精神内にあるすべての修飾および代替を網羅するものである。
公開および未公開特許出願、特許および参考文献を含むが、これらに限定されない、本明細書に引用される全ての文献は、それらの内容全体を引用により本明細書中に包含され、それにより本明細書の一部を構成している。引用により包含させる刊行物および特許または特許出願が、本明細書に包含される開示と矛盾する場合は、本明細書は、そのような矛盾する資料に優先し、および／または優先することを意図される。

Claims (29)

  1. ポリアクリルアミドであるヒドロゲルポリマー；
    還元剤の存在下で切断される可逆性ポリマー架橋剤Ｎ，Ｎ’－ビス(アクリロイル)シスタミン（ＢＡＣｙ）；および
    ヒドロゲルビーズ内に配置された、３００塩基対以上の長さのＤＮＡ
    を含む、核酸反応を実施するためのヒドロゲルビーズであって、ここで、該ビーズが、ＤＮＡを保持しながらビーズを通しての反応剤の拡散を可能にする細孔を含む、ヒドロゲルビーズ。
  2. ５０μｍから１５０μｍの直径を有する、請求項１に記載のビーズ。
  3. ＤＮＡが、５０，０００塩基対以上の長いＤＮＡ分子である、請求項１または２に記載のビーズ。
  4. 反応剤が、酵素、化合物および５０塩基対未満のサイズを有するプライマーを含む、請求項１から３のいずれか一項に記載のビーズ。
  5. 反応剤が、リゾチーム、プロテイナーゼＫ、ランダムヘキサマー、ポリメラーゼ、トランスポザーゼ、５０塩基対未満のサイズを有するプライマー、リガーゼ、触媒酵素、デオキシヌクレオチド三リン酸、緩衝剤、または二価陽イオンを含む、請求項１から４のいずれか一項に記載のビーズ。
  6. 還元剤が、ジチオエリスリトール（ＤＴＥ）、ジチオスレイトール（ＤＴＴ）、２－メルカプトエタノールまたはβ－メルカプトエタノール（ＢＭＥ）、２－メルカプトエタノール、グルタチオン、チオグリコール酸、２，３－ジメルカプトプロパノール、トリス（２－カルボキシエチル)ホスフィン（ＴＣＥＰ）、トリス（ヒドロキシメチル）ホスフィン（ＴＨＰ）またはＰ－［トリス（ヒドロキシメチル）ホスフィン］プロピオン酸（ＴＨＰＰ）である、請求項１から５のいずれか一項に記載のビーズ。
  7. そこに配置されたＤＮＡを封入している請求項１から６のいずれか一項に記載の分解性ヒドロゲルビーズを有する表面を含む固体支持体を含む、ＤＮＡ配列決定を実施するためのフローセル装置であって、ここで、該分解性ヒドロゲルビーズが、ヒドロゲルからの反応剤の拡散を可能にするが、ＤＮＡが通過するには小さすぎるサイズの細孔を含む、フローセル装置。
  8. 固体支持体が表面ポリマーで官能化されている、請求項７に記載のフローセル装置。
  9. 表面ポリマーが、ポリ（Ｎ－（５－アジドアセトアミジルペンチル）アクリルアミド－コ－アクリルアミド）（ＰＡＺＡＭ）またはシラン不含有アクリルアミド（ＳＦＡ）である、請求項８に記載のフローセル装置。
  10. フローセルがパターン化表面を含む、請求項７から９のいずれか一項に記載のフローセル装置。
  11. パターン化表面がウェルを含む、請求項１０に記載のフローセル装置。
  12. ウェルが、直径約１０μｍから約５０μｍ、例えば直径１０μｍ、１５μｍ、２０μｍ、２５μｍ、３０μｍ、３５μｍ、４０μｍ、４５μｍ、または５０μｍ、あるいは該値のいずれか２つにより定義される範囲内の直径であり、かつ深さ０．５μｍから約１μｍ、例えば０．５μｍ、０．６μｍ、０．７μｍ、０．８μｍ、０．９μｍ、または１μｍ、あるいは該値のいずれか２つにより定義される範囲内の深さである、請求項１１に記載のフローセル装置。
  13. ウェルが疎水性材料で構成されている、請求項１１または１２に記載のフローセル装置。
  14. 疎水性材料が、ＣＹＴＯＰ、Ｆｌｕｏｒｏｐｅｌ（登録商標）、またはＴｅｆｌｏｎ（登録商標）などの非晶質フルオロポリマーを含む、請求項１３に記載のフローセル装置。
  15. ヒドロゲルビーズが、直径５０μｍから１５０μｍである、請求項７から１４のいずれか一項に記載のフローセル装置。
  16. ＤＮＡが、５０，０００塩基対以上の長いＤＮＡ分子である、請求項７から１５のいずれか一項に記載のフローセル装置。
  17. 反応剤が、酵素、化合物および５０塩基対未満のサイズを有するプライマーを含む、請求項７から１６のいずれか一項に記載のフローセル装置。
  18. 反応剤が、リゾチーム、プロテイナーゼＫ、ランダムヘキサマー、ポリメラーゼ、トランスポザーゼ、５０塩基対未満のサイズを有するプライマー、リガーゼ、触媒酵素、デオキシヌクレオチド三リン酸、緩衝液、または二価陽イオンを含む、請求項７から１７のいずれか一項に記載のフローセル装置。
  19. 請求項７から１８のいずれか一項に記載のフローセル装置を保持するように構成されたステージ；
    請求項７から１８のいずれか一項に記載のフローセル装置；および
    配列決定データを取得するための検出器
    を含む、ＤＮＡ配列決定のためのシステム。
  20. 請求項１から６のいずれか一項に記載のＤＮＡを封入しているビーズを得る工程；
    ヒドロゲル内に封入されたＤＮＡを増幅させる工程；
    ヒドロゲル内に封入されたＤＮＡに対してタグメンテーションを実施する工程；および
    ＤＮＡの配列を決定し、それによりヒドロゲル内に封入されたＤＮＡライブラリーを作製する工程
    を含む、ＤＮＡ配列決定法。
  21. ＤＮＡが５０，０００塩基対以上の長いＤＮＡ分子である、請求項２０に記載のＤＮＡ配列決定法。
  22. タグメンテーションを実施する前に、ヒドロゲル内に封入されたＤＮＡに対してＤＮＡを増幅させる工程を行うことをさらに含む、請求項２０または２１に記載のＤＮＡ配列決定法。
  23. ＤＮＡを増幅させる工程が多重置換増幅（ＭＤＡ）を含む、請求項２２に記載のＤＮＡ配列決定法。
  24. タグメンテーションが、ＤＮＡを、トランスポザーゼおよびアダプター配列を含むトランスポソーム複合体と接触させることを含む、請求項２０から２３のいずれか一項に記載のＤＮＡ配列決定法。
  25. 固体支持体上にＤＮＡライブラリーをシーディングすることをさらに含む、請求項２０から２４のいずれか一項に記載のＤＮＡ配列決定法。
  26. 該シーディングが、ヒドロゲルを切断して、該ヒドロゲルからＤＮＡライブラリーを放出させることを含む、請求項２５に記載のＤＮＡ配列決定法。
  27. 該ヒドロゲルが、ヒドロゲルと開裂酵素ミックスを接触させることにより切断されてＤＮＡライブラリーを放出する、請求項２６に記載のＤＮＡ配列決定法。
  28. 開裂酵素ミックスが、ジチオスレイトール（ＤＴＴ）、トリス（２－カルボキシエチル）ホスフィン（ＴＣＥＰ）、またはトリス（３－ヒドロキシプロピル）ホスフィン（ＴＨＰ）を含む、請求項２７に記載のＤＮＡ配列決定法。
  29. 固体支持体がフローセル装置である、請求項２５に記載のＤＮＡ配列決定法。
JP2024000232A 2018-02-13 2024-01-04 ヒドロゲルビーズを用いるｄｎａ配列決定 Active JP7780552B2 (ja)

Applications Claiming Priority (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US201862630175P 2018-02-13 2018-02-13
US62/630,175 2018-02-13
PCT/US2019/017521 WO2019160820A1 (en) 2018-02-13 2019-02-11 Dna sequencing using hydrogel beads
JP2019568595A JP7027459B2 (ja) 2018-02-13 2019-02-11 ヒドロゲルビーズを用いるｄｎａ配列決定
JP2022021757A JP7457044B2 (ja) 2018-02-13 2022-02-16 ヒドロゲルビーズを用いるｄｎａ配列決定

Related Parent Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2022021757A Division JP7457044B2 (ja) 2018-02-13 2022-02-16 ヒドロゲルビーズを用いるｄｎａ配列決定

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2024032734A JP2024032734A (ja) 2024-03-12
JP7780552B2 true JP7780552B2 (ja) 2025-12-04

Family

ID=65576697

Family Applications (3)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2019568595A Expired - Fee Related JP7027459B2 (ja) 2018-02-13 2019-02-11 ヒドロゲルビーズを用いるｄｎａ配列決定
JP2022021757A Active JP7457044B2 (ja) 2018-02-13 2022-02-16 ヒドロゲルビーズを用いるｄｎａ配列決定
JP2024000232A Active JP7780552B2 (ja) 2018-02-13 2024-01-04 ヒドロゲルビーズを用いるｄｎａ配列決定

Family Applications Before (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2019568595A Expired - Fee Related JP7027459B2 (ja) 2018-02-13 2019-02-11 ヒドロゲルビーズを用いるｄｎａ配列決定
JP2022021757A Active JP7457044B2 (ja) 2018-02-13 2022-02-16 ヒドロゲルビーズを用いるｄｎａ配列決定

Country Status (11)

Country Link
US (2) US11180752B2 (ja)
EP (3) EP4083225A1 (ja)
JP (3) JP7027459B2 (ja)
KR (2) KR102773714B1 (ja)
CN (1) CN111094589A (ja)
AU (2) AU2019220559B2 (ja)
CA (2) CA3186025A1 (ja)
DK (1) DK3752634T3 (ja)
ES (1) ES2927304T3 (ja)
SG (1) SG11201911985UA (ja)
WO (1) WO2019160820A1 (ja)

Families Citing this family (25)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104812671B (zh) 2014-03-27 2017-03-01 深圳市大疆创新科技有限公司 起飞辅助
KR20240116531A (ko) 2015-02-09 2024-07-29 슬링샷 바이오사이언시즈 인코포레이티드 튜닝가능한 광 특성을 갖는 하이드로겔 입자 및 이를 사용하기 위한 방법
WO2019160820A1 (en) 2018-02-13 2019-08-22 Illumina, Inc. Dna sequencing using hydrogel beads
SG11201911961RA (en) 2018-04-20 2020-01-30 Illumina Inc Methods of encapsulating single cells, the encapsulated cells and uses thereof
KR20250134701A (ko) * 2018-10-26 2025-09-11 일루미나, 인코포레이티드 Dna 가공을 위한 중합체 비드의 조절
TWI857001B (zh) 2019-01-29 2024-10-01 美商伊路米納有限公司 定序套組
TWI857000B (zh) 2019-01-29 2024-10-01 美商伊路米納有限公司 流體槽以及將複合物引入至流體槽之方法
EP3921418A4 (en) 2019-02-06 2023-02-08 Singular Genomics Systems, Inc. Compositions and methods for nucleic acid sequencing
MX2021012015A (es) 2019-12-11 2022-01-18 Illumina Inc Inmovilizacion en celdas de flujo.
WO2021116371A1 (en) * 2019-12-12 2021-06-17 Keygene N.V. Semi-solid state nucleic acid manipulation
PH12021552315A1 (en) * 2019-12-16 2022-07-04 Illumina Cambridge Ltd Kits and flow cells
TW202141019A (zh) 2020-01-24 2021-11-01 美商史林夏特生化公司 類細胞校正粒子之組合物與方法
AU2021266702A1 (en) 2020-05-04 2022-11-10 Slingshot Biosciences, Inc. Compositions and methods for passive optical barcoding for multiplexed assays
KR20230142832A (ko) 2021-01-08 2023-10-11 셀라노메, 인크. 생물학적 샘플을 분석하기 위한 디바이스 및 방법
KR20230137394A (ko) * 2021-02-04 2023-10-04 일루미나, 인코포레이티드 트랜스포좀 결합된 비드 상의 긴 인덱싱된-연결된 판독 생성
EP4423250A1 (en) 2021-10-29 2024-09-04 Slingshot Biosciences, Inc. Hydrogel particles as feeder cells and as synthetic antigen presenting cells
KR20250018496A (ko) 2022-05-05 2025-02-06 슬링샷 바이오사이언시즈 인코포레이티드 혈액학을 위한 적혈구 모방체로서의 조작된 입자 및 이를 함유하는 조성물
CN114874353B (zh) * 2022-05-09 2023-01-17 常州大学 基于壳寡糖的非病毒基因药物载体及其制备方法
US20230383332A1 (en) * 2022-05-31 2023-11-30 Bio-Rad Laboratories, Inc. Methods and hydrogel compositions for partitioning biological samples
CA3257621A1 (en) * 2022-06-02 2023-12-07 Slingshot Biosciences, Inc. APOPTOTIC CELL MIMETIC
WO2024092161A2 (en) 2022-10-26 2024-05-02 Slingshot Biosciences, Inc. Size-tunable synthetic particles with tunable optical properties and methods for using the same for immune cell activation
AU2024282145A1 (en) * 2023-05-27 2025-12-18 Droplet Genomics, Uab Direct loading
AU2024311047A1 (en) * 2023-06-30 2025-12-11 Illumina, Inc. Using flowcell spatial coordinates to link reads for improved genome analysis
US12461007B2 (en) 2023-08-29 2025-11-04 Slingshot Biosciences, Inc. CD34 stem cell mimics
CN120818235B (zh) * 2025-09-19 2025-12-05 中南大学湘雅医院 一种高分子复合水凝胶及其制备方法

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2016517281A (ja) 2013-03-15 2016-06-16 ラリアット・バイオサイエンシズ・インコーポレイテッド Ｄｎａを取り扱うためのマイクロ流体法

Family Cites Families (74)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CA1323293C (en) 1987-12-11 1993-10-19 Keith C. Backman Assay using template-dependent nucleic acid probe reorganization
CA1341584C (en) 1988-04-06 2008-11-18 Bruce Wallace Method of amplifying and detecting nucleic acid sequences
WO1989009835A1 (en) 1988-04-08 1989-10-19 The Salk Institute For Biological Studies Ligase-based amplification method
US5130238A (en) 1988-06-24 1992-07-14 Cangene Corporation Enhanced nucleic acid amplification process
WO1989012696A1 (en) 1988-06-24 1989-12-28 Amgen Inc. Method and reagents for detecting nucleic acid sequences
DE68926504T2 (de) 1988-07-20 1996-09-12 David Segev Verfahren zur amplifizierung und zum nachweis von nukleinsäuresequenzen
US5185243A (en) 1988-08-25 1993-02-09 Syntex (U.S.A.) Inc. Method for detection of specific nucleic acid sequences
EP0450060A1 (en) 1989-10-26 1991-10-09 Sri International Dna sequencing
US5573907A (en) 1990-01-26 1996-11-12 Abbott Laboratories Detecting and amplifying target nucleic acids using exonucleolytic activity
AU635105B2 (en) 1990-01-26 1993-03-11 Abbott Laboratories Improved method of amplifying target nucleic acids applicable to both polymerase and ligase chain reactions
US5455166A (en) 1991-01-31 1995-10-03 Becton, Dickinson And Company Strand displacement amplification
CA2182517C (en) 1994-02-07 2001-08-21 Theo Nikiforov Ligase/polymerase-mediated primer extension of single nucleotide polymorphisms and its use in genetic analysis
CA2185239C (en) 1994-03-16 2002-12-17 Nanibhushan Dattagupta Isothermal strand displacement nucleic acid amplification
US5958451A (en) 1996-09-03 1999-09-28 Yung Shin Pharm Ind. Co., Ltd. Process for producing porous, controlled-release capsules and encapsulated composition
GB9620209D0 (en) 1996-09-27 1996-11-13 Cemu Bioteknik Ab Method of sequencing DNA
GB9626815D0 (en) 1996-12-23 1997-02-12 Cemu Bioteknik Ab Method of sequencing DNA
WO1998044151A1 (en) 1997-04-01 1998-10-08 Glaxo Group Limited Method of nucleic acid amplification
AR021833A1 (es) 1998-09-30 2002-08-07 Applied Research Systems Metodos de amplificacion y secuenciacion de acido nucleico
US20050191698A1 (en) 1999-04-20 2005-09-01 Illumina, Inc. Nucleic acid sequencing using microsphere arrays
US20060275782A1 (en) 1999-04-20 2006-12-07 Illumina, Inc. Detection of nucleic acid reactions on bead arrays
US6355431B1 (en) 1999-04-20 2002-03-12 Illumina, Inc. Detection of nucleic acid amplification reactions using bead arrays
US6274320B1 (en) 1999-09-16 2001-08-14 Curagen Corporation Method of sequencing a nucleic acid
US7244559B2 (en) 1999-09-16 2007-07-17 454 Life Sciences Corporation Method of sequencing a nucleic acid
US6913884B2 (en) 2001-08-16 2005-07-05 Illumina, Inc. Compositions and methods for repetitive use of genomic DNA
US7582420B2 (en) 2001-07-12 2009-09-01 Illumina, Inc. Multiplex nucleic acid reactions
DE60136166D1 (de) 2000-02-07 2008-11-27 Illumina Inc Nukleinsäure-nachweisverfahren mit universellem priming
US7611869B2 (en) 2000-02-07 2009-11-03 Illumina, Inc. Multiplexed methylation detection methods
US7001792B2 (en) 2000-04-24 2006-02-21 Eagle Research & Development, Llc Ultra-fast nucleic acid sequencing device and a method for making and using the same
AU8288101A (en) 2000-07-07 2002-01-21 Visigen Biotechnologies Inc Real-time sequence determination
EP1354064A2 (en) 2000-12-01 2003-10-22 Visigen Biotechnologies, Inc. Enzymatic nucleic acid synthesis: compositions and methods for altering monomer incorporation fidelity
US7057026B2 (en) 2001-12-04 2006-06-06 Solexa Limited Labelled nucleotides
WO2003061585A2 (en) 2002-01-22 2003-07-31 The Penn State Research Foundation Drug candidate screening systems based on micropatterned hydrogels and microfluidic systems
EP1488006B1 (en) * 2002-03-20 2008-05-28 InnovativeBio.Biz Microcapsules with controlable permeability encapsulating a nucleic acid amplification reaction mixture and their use as reaction compartments for parallels reactions
EP1530578B1 (en) 2002-08-23 2013-03-13 Illumina Cambridge Limited Modified nucleotides for polynucleotide sequencing
US7595883B1 (en) 2002-09-16 2009-09-29 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Biological analysis arrangement and approach therefor
EP1636337A4 (en) 2003-06-20 2007-07-04 Illumina Inc METHODS AND COMPOSITIONS USEFUL FOR THE AMPLIFICATION AND GENOTYPING OF THE GENOME
US7302146B2 (en) 2004-09-17 2007-11-27 Pacific Biosciences Of California, Inc. Apparatus and method for analysis of molecules
WO2006125458A1 (en) 2005-05-27 2006-11-30 ETH Zürich Parallel sequencing of transformed nucleic acids in encapsulated cells
US7405281B2 (en) 2005-09-29 2008-07-29 Pacific Biosciences Of California, Inc. Fluorescent nucleotide analogs and uses therefor
EP3373174A1 (en) 2006-03-31 2018-09-12 Illumina, Inc. Systems and devices for sequence by synthesis analysis
WO2008051530A2 (en) 2006-10-23 2008-05-02 Pacific Biosciences Of California, Inc. Polymerase enzymes and reagents for enhanced nucleic acid sequencing
US8349167B2 (en) 2006-12-14 2013-01-08 Life Technologies Corporation Methods and apparatus for detecting molecular interactions using FET arrays
US8262900B2 (en) 2006-12-14 2012-09-11 Life Technologies Corporation Methods and apparatus for measuring analytes using large scale FET arrays
JP5622392B2 (ja) 2006-12-14 2014-11-12 ライフ テクノロジーズ コーポレーション 大規模ｆｅｔアレイを用いた分析物測定のための方法および装置
US9029085B2 (en) 2007-03-07 2015-05-12 President And Fellows Of Harvard College Assays and other reactions involving droplets
US9345809B2 (en) 2007-11-28 2016-05-24 Fziomed, Inc. Carboxymethylcellulose polyethylene glycol compositions for medical uses
EP2291533B2 (en) 2008-07-02 2020-09-30 Illumina Cambridge Limited Using populations of beads for the fabrication of arrays on surfaces
US20100137143A1 (en) 2008-10-22 2010-06-03 Ion Torrent Systems Incorporated Methods and apparatus for measuring analytes
EP2632593B1 (en) 2010-10-27 2021-09-29 Illumina, Inc. Flow cells for biological or chemical analysis
US9429567B2 (en) 2011-06-22 2016-08-30 Toshihiro Nakajima Method for screening substances having weight-regulating action
KR101336552B1 (ko) * 2011-08-26 2013-12-03 포항공과대학교 산학협력단 전립선암 특이적 ｓｉＲＮＡ 전달체
WO2013181265A1 (en) 2012-05-29 2013-12-05 The Johns Hopkins University Eukaryotic transposase mutants and transposon end compositions for modifying nucleic acids and methods for production and use in the generation of sequencing libraries
US9512422B2 (en) * 2013-02-26 2016-12-06 Illumina, Inc. Gel patterned surfaces
US10059989B2 (en) 2013-05-23 2018-08-28 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Transposition of native chromatin for personal epigenomics
US20160231324A1 (en) 2013-09-24 2016-08-11 The Regents Of The University Of California Encapsulated sensors and sensing systems for bioassays and diagnostics and methods for making and using them
WO2015088299A1 (en) 2013-12-09 2015-06-18 Vilnius University Method for production of biopolymer-based droplets and particles in a microfluidic system
CN110075308B (zh) 2013-12-09 2023-05-23 港大科桥有限公司 稳定化的全水乳液及其制备和使用方法
JPWO2015147147A1 (ja) 2014-03-26 2017-04-13 国立大学法人北海道大学 生物学的試料をハイドロゲルで高速固定する方法及びそのための装置
EP3161160B1 (en) 2014-06-26 2021-10-13 10X Genomics, Inc. Methods of analyzing nucleic acids from individual cells or cell populations
EP3164505B1 (en) * 2014-07-02 2018-06-27 Life Technologies Corporation Methods for loading a sensor substrate
KR20170135834A (ko) 2015-02-10 2017-12-08 일루미나, 인코포레이티드 세포 성분을 분석하기 위한 방법 및 조성물
US9968558B2 (en) 2015-03-20 2018-05-15 Saint Louis University Fabrication of hydrogel microsphere delivery vehicles through electrospraying and timed gelation
GB201512725D0 (en) 2015-07-20 2015-08-26 Life Technologies As Polymeric particles
WO2017040024A1 (en) 2015-09-03 2017-03-09 The University Of Massachusetts Stabilized polymeric nanocapsules, dispersions comprising the nanocapsules, and methods for the treatment of bacterial biofilms
US11092607B2 (en) 2015-10-28 2021-08-17 The Board Institute, Inc. Multiplex analysis of single cell constituents
KR102466814B1 (ko) 2015-12-08 2022-11-11 버클리 라잇츠, 인크. 미세유체 디바이스들 및 키트들 및 그것의 사용을 위한 방법들
WO2018071448A1 (en) 2016-10-11 2018-04-19 The Regents Of The University Of California Systems and methods to encapsulate and preserve organic matter for analysis
EP3571308A4 (en) 2016-12-21 2020-08-19 The Regents of The University of California GENOMIC SEQUENCING OF SINGLE CELLS USING HYDROGEL-BASED DROPS
CN117512066A (zh) 2017-01-30 2024-02-06 10X基因组学有限公司 用于基于微滴的单细胞条形编码的方法和系统
WO2018200867A1 (en) * 2017-04-26 2018-11-01 10X Genomics, Inc. Mmlv reverse transcriptase variants
CN107281497B (zh) * 2017-07-10 2020-08-04 上海交通大学 基于dna水凝胶的功能性核酸保护性载体及其制备方法、应用
WO2019028047A1 (en) * 2017-08-01 2019-02-07 Illumina, Inc SPATIAL INDEXING OF GENETIC MATERIAL AND PREPARATION OF PHARMACOTOQUE USING HYDROGEL BALLS AND FLOW CELLS
EP4488382A3 (en) * 2017-08-01 2025-01-22 Illumina, Inc. Hydrogel beads for nucleotide sequencing
WO2019160820A1 (en) 2018-02-13 2019-08-22 Illumina, Inc. Dna sequencing using hydrogel beads

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2016517281A (ja) 2013-03-15 2016-06-16 ラリアット・バイオサイエンシズ・インコーポレイテッド Ｄｎａを取り扱うためのマイクロ流体法

Also Published As

Publication number Publication date
JP2024032734A (ja) 2024-03-12
WO2019160820A1 (en) 2019-08-22
JP2020532948A (ja) 2020-11-19
US20190249171A1 (en) 2019-08-15
AU2019220559A1 (en) 2020-01-02
EP3752634B8 (en) 2023-10-11
AU2019220559B2 (en) 2021-10-28
JP7457044B2 (ja) 2024-03-27
CA3067140A1 (en) 2019-08-22
ES2927304T3 (es) 2022-11-04
CN111094589A (zh) 2020-05-01
CA3186025A1 (en) 2019-08-22
JP2022069461A (ja) 2022-05-11
US11180752B2 (en) 2021-11-23
EP3752634A1 (en) 2020-12-23
CA3067140C (en) 2023-03-21
KR20200024170A (ko) 2020-03-06
US20220106588A1 (en) 2022-04-07
JP7027459B2 (ja) 2022-03-01
EP4253562A3 (en) 2023-10-25
EP4253562A2 (en) 2023-10-04
EP3752634B1 (en) 2022-08-31
SG11201911985UA (en) 2020-01-30
AU2022200446A1 (en) 2022-02-17
EP4083225A1 (en) 2022-11-02
DK3752634T3 (da) 2022-10-24
KR102773714B1 (ko) 2025-02-27
KR20220123327A (ko) 2022-09-06
KR102437660B1 (ko) 2022-08-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP7780552B2 (ja) ヒドロゲルビーズを用いるｄｎａ配列決定
US11999945B2 (en) Modulating polymer beads for DNA processing
US20220411859A1 (en) Hydrogel beads for nucleotide sequencing
HK40082688A (en) Dna sequencing using hydrogel beads
HK40032720B (en) Dna sequencing using hydrogel beads
HK40032720A (en) Dna sequencing using hydrogel beads

Legal Events

Date Code Title Description
A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20240202

A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20240202

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20250422

A601 Written request for extension of time

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A601

Effective date: 20250715

A601 Written request for extension of time

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A601

Effective date: 20250919

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20251003

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20251104

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20251121

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Ref document number: 7780552

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150