JP7543656B2 - 心毒性評価方法 - Google Patents
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Description
ここで、表面自由エネルギーとは、インク等がプラスチックや金属の表面にどれだけ接着するかを測定することにより判断される基準である。単位は、mN/mで表され、表面自由エネルギーの値が高いほど接着性が高い。
このようにすることで、心筋細胞を含む培地で形成される液滴が足場に安定して接着するため、液滴がくずれることがない。そのため、一定の細胞密度を保持した状態の液滴ごとに薬剤スクリーニング等の試験や分析を行うことができる。
このようにすることで、例えば、培養面がマルチウェルプレート(例えば、96ウェルプレート)の1ウェルである場合に、1つのウェル内に複数の足場を互いに接触しないように形成して、各足場に液滴を配置することにより、液滴ごとに複数の試験を行うことができる。これにより、1つのウェル内で、多重試験を行うことができる。
このようにすることで、心筋細胞の種類に応じて細胞の足場を設計でき、培養面に対する心筋細胞の接着効率を高めることができる。
脂環構造含有重合体は疎水性表面を有する(所定の表面自由エネルギーを有する)ことから、ペプチド配列を有する材料または心筋細胞を含む水溶液をはじくため、狙った箇所以外に液滴が広がることない。そのため、液滴の培養面への付着を安定させることができる。
本発明の方法は、心筋細胞の拍動数変化を測定するにあたって、培養面に足場を形成してその上に心筋細胞を含む培地の液滴を接着させ、培養容器内面における細胞が接する面(以下、「培養面」という)の表面自由エネルギーが特定の範囲であり、培養面が脂環構造含有重合体で構成される培養容器を用いる点に特徴がある。
このようにすることで、培養面に足場を介して付着した液滴単位で試験を行うことができ、これにより、少ない細胞数であっても正確に心毒性評価を行うことができる。また、細胞数が十分にある場合も、同じ細胞量で試験数(n数)を何倍にも増やすことができる。
足場は、脂環構造含有重合体(特に、ノルボルネン系開環重合体水素化物)に親和性のあるペプチド配列を有する材料により形成されることが好ましい。具体的には、例えば、国際公開第2018/117242号に記載される方法により探索されるオリゴペプチドを使用することが好ましい。使用されるオリゴペプチドは、例えば、Thr-Val-Asp-Ser-Cys-Leu-Thr(配列番号1)のアミノ酸配列を含むオリゴペプチド等が挙げられるが、これに限定されない。
足場材料として使用される場合、上記オリゴペプチドの濃度は、細胞の接着性が良好であることから、1~500μg/mLが好ましく、10~100μg/mLがより好ましい。
上記培地には、添加剤を配合することもできる。添加剤としては、ミネラル、金属、ビタミン成分等が挙げられる。
これらの添加剤は一種単独で、あるいは二種以上を組み合わせて用いることができる。
培養容器のうち、少なくとも培養面が脂環構造含有重合体で構成されていればよい。例えば、96ウェルプレートの場合、各ウェルの内側の底面が脂環構造含有重合体で形成されていればよい。バッグの場合、例えば、異なるポリマー材料からなるフィルムの積層体で構成されているものは、最内層(バッグ内面)が脂環構造含有重合体からなるフィルムにより形成されていればよい。
あるいは、培養容器全体が脂環構造含有重合体からなることとしてもよい。例えば、培養ディッシュ、フラスコ、または複数のウェルを有するプレートであれば、脂環構造含有重合体でこれらの容器全体を成形することにより、容器全体を脂環構造含有重合体で構成することができる。
ノルボルネン系重合体は、ノルボルネン骨格を有する単量体であるノルボルネン系単量体を重合してなるものであり、開環重合によって得られるものと、付加重合によって得られるものに大別される。
トリシクロ[4.3.01,6.12,5]デカ-3,7-ジエン(慣用名ジシクロペンタジエン)、2-メチルジシクロペンタジエン、2,3-ジメチルジシクロペンタジエン、2,3-ジヒドロキシジシクロペンタジエン等の3環式単量体;
テトラシクロ[4.4.0.12,5.17,10]-3-ドデセン(テトラシクロドデセン)、テトラシクロ[4.4.0.12,5.17,10]-3-ドデセン、8-メチルテトラシクロ[4.4.0.12,5.17,10]-3-ドデセン、8-エチルテトラシクロ[4.4.0.12,5.17,10]-3-ドデセン、8-エチリデンテトラシクロ[4.4.0.12,5.17,10]-3-ドデセン、8,9-ジメチルテトラシクロ[4.4.0.12,5.17,10]-3-ドデセン、8-エチル-9-メチルテトラシクロ[4.4.0.12,5.17,10]-3-ドデセン、8-エチリデン-9-メチルテトラシクロ[4.4.0.12,5.17,10]-3-ドデセン、8-メチル-8-カルボキシメチルテトラシクロ[4.4.0.12,5.17,10]-3-ドデセン、7,8-ベンゾトリシクロ[4.3.0.12,5]デカ-3-エン(慣用名メタノテトラヒドロフルオレン:1,4-メタノ-1,4,4a,9a-テトラヒドロフルオレンともいう)、1,4-メタノ-8-メチル-1,4,4a,9a-テトラヒドロフルオレン、1,4-メタノ-8-クロロ-1,4,4a,9a-テトラヒドロフルオレン、1,4-メタノ-8-ブロモ-1,4,4a,9a-テトラヒドロフルオレン等の4環式単量体;等が挙げられる。
これらの単量体は、置換基を1種または2種以上有していてもよい。置換基としては、アルキル基、アルキレン基、アリール基、シリル基、アルコキシカルボニル基、アルキリデン基等が挙げられる。
これらの単量体は、置換基を1種または2種以上有していてもよい。置換基としては、アルキル基、アルキレン基、アリール基、シリル基、アルコキシカルボニル基、アルキリデン基等が挙げられる。
ノルボルネン系単量体の開環重合体水素化物は、通常、上記開環重合体の重合溶液に、ニッケル、パラジウムなどの遷移金属を含む公知の水素化触媒を添加し、炭素-炭素不飽和結合を水素化することにより得ることができる。
単環の環状オレフィン系重合体としては、例えば、シクロヘキセン、シクロヘプテン、シクロオクテンなどの、単環の環状オレフィン系単量体の付加重合体を用いることができる。
(3)環状共役ジエン系重合体
環状共役ジエン系重合体としては、例えば、シクロペンタジエン、シクロヘキサジエンなどの環状共役ジエン系単量体を1,2-または1,4-付加重合した重合体およびその水素化物などを用いることができる。
(4)ビニル脂環式炭化水素重合体
ビニル脂環式炭化水素重合体としては、例えば、ビニルシクロヘキセン、ビニルシクロヘキサンなどのビニル脂環式炭化水素系単量体の重合体およびその水素化物;スチレン、α-メチルスチレンなどのビニル芳香族系単量体の重合体の芳香環部分の水素化物;などが挙げられる。ビニル脂環式炭化水素重合体は、これらの単量体と共重合可能な他の単量体との共重合体であってもよい。
本発明における脂環構造含有重合体のガラス転移温度は、JIS K 7121に基づいて測定されたものである。
また、脂環構造含有重合体には、熱可塑性樹脂材料で通常用いられている配合剤、例えば、軟質重合体、酸化防止剤、紫外線吸収剤、光安定剤、近赤外線吸収剤、離型剤、染料や顔料などの着色剤、可塑剤、帯電防止剤、蛍光増白剤などの配合剤を、通常採用される量、添加することができる。
また、脂環構造含有重合体には、軟質重合体以外のその他の重合体(以下、単に「その他の重合体」という)を混合しても良い。脂環構造含有重合体に混合されるその他の重合体の量は、脂環構造含有重合体100質量部に対して、通常200質量部以下、好ましくは150質量部以下、より好ましくは100質量部以下である。
脂環構造含有重合体に対して配合する各種配合剤やその他の重合体の割合が多すぎると細胞が浮遊し難くなるため、いずれも脂環構造含有重合体の性質を損なわない範囲で配合することが好ましい。
脂環構造含有重合体と配合剤やその他の重合体との混合方法は、ポリマー中に配合剤が十分に分散する方法であれば、特に限定されない。また、配合の順番に格別な制限はない。配合方法としては、例えば、ミキサー、一軸混練機、二軸混練機、ロール、ブラベンダー、押出機などを用いて樹脂を溶融状態で混練する方法、適当な溶剤に溶解して分散させた後、凝固法、キャスト法、または直接乾燥法により溶剤を除去する方法などが挙げられる。
二軸混練機を用いる場合、混練後は、通常は溶融状態で棒状に押出し、ストランドカッターで適当な長さに切り、ペレット化して用いられることが多い。
滅菌処理の方法に格別な制限はなく、高圧蒸気法や乾熱法などの加熱法;γ線や電子線などの放射線を照射する放射線法や高周波を照射する照射法;酸化エチレンガス(EOG)などのガスを接触させるガス法;滅菌フィルタを用いる濾過法;など、医療分野で一般的に採用される方法から、成形体の形状や用いる細胞に応じて、選択することができる。なかでも、培養面の表面自由エネルギーを特定の範囲に維持しやすいことから、ガス法が好ましい。
具体的な表面自由エネルギーの測定方法としては、例えば、まず38mN/m程度の値のインクを使用し、測定面に線を引き、インクの線が水滴にならず2秒間変わらなければ表面自由エネルギーは38mN/mと同じかそれ以上ということである。この場合、次に、40mN/m程度のインクを使って同様の測定を行う。インクの線が水滴にならず2秒間変わらなければ、このような測定を、2秒以内にインクの線が水滴に変わるまで、さらに値の高いインクを使用して行う。
上記の測定において、38mN/m程度のインクで既に水滴に変わるようであれば、38mN/mよりも低い値のインクを使って同様の測定を行う。例えば、35mN/m程度の値のインクで測定面に線を引き、2秒以内にインクの線が水滴にならず2秒間変わらなければ、表面自由エネルギーの値は2つの値の間(35~38mN/m)となる。
脂環構造含有重合体として、ゼオノア(登録商標)1060R(日本ゼオン社製、ノルボルネン系開環重合体水素化物:以下、単に「1060R」という)を用いて、射出成形法により、0.32cm2の底面積を有する円筒形状のウェルを96個含むウェルプレートを培養容器として得た。その後、当該培養容器について酸化エチレンガスによる滅菌処理を行った(以下、この培養容器を「1060R製96ウェルプレート」という。)。1060R製96ウェルプレートのウェル内底面(細胞と接触する面、すなわち培養面)における表面自由エネルギーは34mN/mであった。ここで、上記表面自由エネルギーは、表面エネルギー値評価インク(Arcotest社製)を用いて測定した。
1060R製96ウェルプレートの各ウェルに対して、LaboJet(登録商標)-500Bio(マイクロジェットジェット社製)を用いて、滅菌水を用いて100μg/mLに調製した、ノルボルネン系開環体水素化物に対して親和性のある合成ペプチド水溶液を直径600μm、中心点間距離800μmで1060R製プレートの底面にドット状に塗布し、心筋細胞の足場をドット状に形成した。ペプチド水溶液を乾燥させた後、付属の心筋細胞用解凍培地を使用して、iCell(登録商標)Cardiomyocytes2(Cellular Dynamics International社製、型番CMC-100-012-001)を4.4×105cells/mLに調製し、上記LaboJet(登録商標)-500Bioを用いて、32.4nL/液滴の量で、1ドット(足場)あたり54液滴の細胞懸濁液を播種し、5%CO2雰囲気下、37℃の条件で4時間培養を行った。
その後、1060R製96ウェルプレートの各ウェルに新たに心筋細胞用維持培地を100μL加え、5%CO2雰囲気下37℃の条件で培養を行った。
心筋細胞を播種してから2日後に1060R製96ウェルプレートの各ウェル内の心筋細胞用維持培地を半量交換した。心筋細胞を播種してから3日後に1060R製ウェルプレートの各ウェルから培養上清を10μLずつ採取した。次に、1060R製ウェルプレートの各ウェルにジメチルスルホキシド(DMSO)(ナカライテスク社製、型番13435-35)を用いてアミオダロン(Amiodarone Hydrochloride)(東京化成工業株式会社製、型番A2530)、ニフェジピン(Nifedipine)(東京化成工業株式会社製、型番N0528)、シクロスポリンA(Cyclosporin A)(東京化成工業株式会社製、型番C2408)およびドキソルビシン(Toronto Research Chemical社製、型番D558000)の各薬剤化合物の溶液を100μMに希釈し、1060R製96ウェルプレートに10μLずつ添加した。このとき各ウェルの薬剤濃度は10μMであった。
薬剤化合物を添加してから18時間後に、Cal-520AM(ATT Bioquest社製、型番21130)を用いて、1060R製プレートの各ウェルの心筋細胞をカルシウム染色した。その後、共焦点定量イメージサイトメーターCellVoyager(登録商標)CQ1(横河電機株式会社製)を用いて各ウェルの心筋細胞のカルシウム流入シグナルを拍動数として観察した。また、コントロールとして、10μLのDMSOを添加したウェルを用いた。
各薬剤化合物の添加有無における、心筋細胞の拍動数の変化を図1のグラフに示す(図1の「COP」)。図1のグラフでは、上記の各薬剤化合物あたりn=3の試験数の平均からの標準偏差を表すエラーバーとともに各足場上の心筋細胞塊の1分あたりの拍動数をプロットした。
実施例1で使用した1060R製96ウェルプレートの代わりに、ポリスチレン製96ウェルプレート(ファルコン(登録商標)、コーニング社製、型番353916;表面自由エネルギー:43mN/m)を用いたこと以外は、実施例1と同様に、細胞培養、アミオダロン、ニフェジピン、シクロスポリンAおよびドキソルビシンの添加を行い、薬剤化合物を添加してから18時間後の心筋細胞の拍動数をそれぞれ測定し、同様にグラフにプロットした(図1の「ポリスチレン」)。
これにより、既に心毒性を有することが分かっている化合物について、その毒性を正確に測定できる。そのため、本発明の評価方法を利用して、例えば、ドキソルビシンをポジティブコントロールとしつつ、別の新規薬剤の毒性を評価することが可能となり、ひいては、毒性を低減しつつ薬効を最大限に引き出すための当該薬剤の投与量を決定することも可能となる。
Claims (5)
- 心筋細胞を含む培地で形成される液滴を付着させるための足場を培養面に対して形成し、その後、前記液滴を前記足場の上に吐出して前記液滴を前記培養面に付着させることにより心筋細胞を培地とともに培養容器に播種し、
前記培養容器内に薬剤を添加して、該薬剤を前記心筋細胞に接触させ、その後、
前記心筋細胞の拍動数変化を測定して前記薬剤の心毒性を評価する、心毒性評価方法であって、
前記培養容器の少なくとも培養面がノルボルネン系重合体およびその水素化物で構成され、かつ、前記培養面の表面自由エネルギーが30~37mN/mである、心毒性評価方法。 - 前記心筋細胞が多能性幹細胞由来心筋細胞である、請求項1に記載の心毒性評価方法。
- 前記足場が、1つの培養面に対してドット状に複数形成される、請求項1または2に記載の心毒性評価方法。
- 前記足場が、前記ノルボルネン系重合体およびその水素化物に親和性のあるペプチド配列を有する材料により形成される、請求項1~3のいずれかに記載の心毒性評価方法。
- 前記ノルボルネン系重合体およびその水素化物がノルボルネン系開環重合体水素化物である、請求項1~4のいずれかに記載の心毒性評価方法。
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