JP7531865B2 - 新規のアッカーマンシア・ムシニフィラak32菌株の発見および腸損傷の予防または治療のための応用 - Google Patents
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Description
実験例1-1.マウス準備
本発明の実施例で使用された全ての動物は、8~10週齢の雌マウスであり、無菌食品と水を自由に摂食した。C57BL/6マウスは、OrientBio(Korea)から購入した。マウスは、アサン病院(Korea)の動物施設に収容し、特定の病原体のない条件で飼育した。全ての動物実験は、Asan Medical Centerの機関動物管理および使用委員会(承認番号2019-12-251)から承認を受けた。全ての実験は、関連指針および規定によって行われた。
A.muciniphilaの新しい11個の菌株を32人の支援者健康人の便から分離した。便をPBSで溶解し、GasPak 100システム(BD Bioscience)を使用して嫌気性条件下で37℃でデキストロースが含まれていない0.4%ムチン添加BHI寒天培地(KisanBio)に分注した。A.muciniphilaを単離し、プライマーセット5’-CAGCACGTGAAGGTGGGGAC-3’(配列番号1)および5’-CCTTGCGGTTGGCTTCAGAT-3’(配列番号2)を使用してPCRで確認した。
A.muciniphila(ATCC BAA-835T)および新しく分離したA.muciniphila AK32菌株を0.4%mucin(Sigma)が補充された脳心臓注入培地(BD Bioscience)で培養し、37℃でGasPak100システム(BD Bioscience)を使用して嫌気性培養した。培養した培養物を濃縮させ、嫌気性PBSに懸濁させた後、経口用Zondeニードルで4週間毎日マウス(容量当たり8×108CFU)に投与した。
小腸(Small intestinal,SI)を縦方向に開放し、PBSで洗浄した。陰窩を分離するために、組織をPBS中の1mM EDTAで4℃で30分間インキュベートし、PBSで洗浄した後、4℃でさらに1時間の間インキュベートするために、PBSで5mM EDTAに移した。次に、サンプルをPBSに懸濁させた後、70μm細胞ストレーナー(BD Falcon)でろ過した。
オルガノイド培養のために、ウェル当たり200~500個の陰窩をMatrigel(Corning)に浮遊させた(suspended)。
小腸回腸を除去し、縦方向に開放した。次に、スイスロールにより組織を製造し、4%パラホルムアルデヒド(PFA)に固定させた後、パラフィンに包埋させた。組織セクションは、ヘマトキシリン-エオシン(H&E)またはPeriodic acid-Schiff(PAS)で染色した。
各100mgの盲腸内容物を1mlの無血清DMEM/F12(Gibco)培地に希釈し、1時間の間ボルテックスで回転させた。内容物を4,000rpmで10分間遠心分離し、培養する前に上清液を0.22μm注射器フィルター(Pall Corporation)を通過させた。盲腸内容物の構成に対する効果を扱うために、高級DMEM/F12で浮遊された盲腸内容物の0.01%上清液でENR培地を補充した。Gpr43拮抗剤(GLPG0974、0.1μM、Tocris)およびGpr41拮抗剤(βヒドロキシブチラート、3mM、Sigma)を使用した。
アガロースゲル電気泳動を実行して、gDNAの完全性を点検し、Quant-IT PicoGreen(Invitrogen)を使用してgDNAを定量化した。次に、配列ライブラリーは、PacBio DNAテンプレート準備キット1.0を使用するBluePippin(登録商標)サイズ選択システムを使用した20kbテンプレート製剤の指針書によって製造した。ライブラリーは、Quant-IT PicoGreenを使用して定量化し、高感度DNAチップ(Agilent Technologies)を使用して検証した。次に、ライブラリーをPacBio RSIIの8ウェル-SMART cell v3でPacBio P6C4 chemistryを使用してシーケンシングした。AK32のゲノムは、新しいPacBioシーケンシングデータで構築された。次に、Chunlab,Inc.でシーケンシング分析を行った。PacBioシーケンシングデータは、HGAP2プロトコル(Pacific Biosciences)を使用してPacBio SMRT Analysis 2.3.0で収集した。PacBioシーケンシングデータから得られた結果物は、サーキュレーター1.4.0(Sanger Institute)を使用して円形化した。全ゲノムの遺伝子検索および機能注釈パイプライン(functional annotation pipeline)は、EzbioCloudゲノムデータベースを使用した。タンパク質コーディング配列は、Prodigal 2.6.2によって予測された。tRNAをコードする遺伝子をtRNAscan-SE 1.3.1を使用して検索した。rfamおよびその他非コーディングRNAは、Rfam 12.0データベースで検索した。比較全ゲノムは、平均ヌクレオチド同一性塩基BLAST(ANIb)で研究した。ANIb値は、Kostas lab(http://enve-omics.ce.gatech.edu/ani)のANI計算機で計算した。
小腸およびオルガノイドからのトータルRNAをRNeasyミニキット(Qiagen)を使用して抽出し、cDNAをSupercriptII逆転写酵素およびオリゴdTプライマー(Thermo Fisher Scientific)を使用して合成した。A.muciniphilaのトータルRNAは、Trizol(Thermo Fisher Scientific)を使用して抽出した。バクテリアRNAを使用したcDNA合成のために、gDNAリムーバー(Toyobo)とReverTra Ace qPCR RT Master Mixを使用した。cDNAは、Real-time PCRシステム(Applied Biosystems)でSYBRグリーン化学(Affymetrix)を使用して行われたReal-time PCRの鋳型として使用された。
代謝産物の分析のための全ての試薬および溶媒は、Sigmaから購入した。マウス盲腸内容物の場合、10~20mgの盲腸内容物を400μlの内部標準溶液(1mMのプロピオン酸(C3)-d6、100μMの酪酸(C4)-d7)で激烈に均質化させた。菌培養上清液の分析のために、100μlの培養上清液を200μlの内部標準溶液と混合した。遠心分離後、上清液をろ過除去した。AABD-SH(20μl、20mM)、TPP(Triphenylphosphine、20μl、20mM)およびDPDS(2,2-dipyridyl disulfide、20μl)が含まれたジクロロメタンをろ液に添加した。ボルテックスしながら、前記溶液を室温で10分間培養し、真空乾燥させた。サンプルを80μLメタノールで再構成し、LC-MS/MS分析を準備した。1290 HPLC(Agilent Technologies,Denmark)、Qtrap 5500(ABSciex)および逆相カラム(Pursuit 5 C18 150×2.0mM,Agilent Technologies)が装着されたLC-MS/MSシステムを使用した。各代謝産物に対する特定転移に該当する抽出されたイオンクロマトグラム(EIC,Extracted ion chromatogram)を定量に使用した。各EICの曲線下面積は、内部標準のEIC面積で正規化した。それぞれの代謝産物:内部標準物のピーク面積比をサンプルでの血清体積または組織重量を使用して標準化した後、相対的比較のために使用した。
統計分析は、プリズムソフトウェア(GraphPad,La Jolla,CA)を使用して行った。Pairwiseおよび2個の独立的なグループの比較のためにtwo-tailed t-testを使用した。データは、平均±SEMで提示し、p<0.05、p<0.01、p<0.001は、統計的に有意なものと見なした。
ISC媒介上皮発達で一般的に使用される類型菌株(すなわち、ATCC BAA-835T)よりさらに良いA.muciniphila菌株を発見するために、健康人の便からA.muciniphilaを分離した。選択的培地および種特異的PCRを使用して、3個のA.muciniphila菌株(AK14、AK21、AK32)を収得した。
まず、AK32により増加したISC媒介上皮発達がSCFAに依存するか否かを確認するために、Gpr41/43拮抗剤を採択した。
微生物由来代謝産物は、腸の恒常性を維持するための主な要因の1つであるから、A.muciniphila AK32およびBAA-835菌培養液におけるSCFAを比較し、マウスに4週間経口投与後、盲腸内容物でSCFAの量を比較した。
Claims (10)
- アッカーマンシア・ムシニフィラAK32(Akkermansia muciniphila AK32)(受託番号:KCTC 14172BP)菌株。
- 前記アッカーマンシア・ムシニフィラAK32菌株は、腸損傷を予防または改善することを特徴とする請求項1に記載の菌株。
- 前記アッカーマンシア・ムシニフィラAK32菌株は、配列番号3に記載のアミノ酸配列を含むMMD(methylmalonylCoA/oxaloacetate decarboxylase beta subunit)酵素を生産することを特徴とする請求項1に記載の菌株。
- 前記アッカーマンシア・ムシニフィラAK32菌株は、腸上皮細胞の増殖を促進することを特徴とする請求項1に記載の菌株。
- 請求項1に記載のアッカーマンシア・ムシニフィラAK32菌株またはその培養液を有効成分として、有効な量を、非ヒト被検体に投与する工程を含む、腸損傷の予防または治療方法。
- 請求項1に記載のアッカーマンシア・ムシニフィラAK32菌株またはその培養液を有効成分として含む、腸損傷の予防、改善、または治療用組成物。
- 前記腸損傷は、放射線照射による腸損傷、薬物による腸損傷、アルコール性腸損傷および炎症性腸疾患による腸損傷からなる群から選ばれた1つ以上であることを特徴とする請求項6に記載の組成物。
- 前記炎症性腸疾患は、十二指腸潰瘍、腸閉塞症、急性消化管出血、クローン病(Crohn’s desease)、腸管型ベーチェット病、回腸嚢炎(pouchitis)、過敏性大腸症候群、および潰瘍性大腸炎からなる群から選ばれた1つ以上であることを特徴とする請求項7に記載の組成物。
- 医薬組成物、食品組成物、整腸用医薬組成物、プロバイオティクス製品組成物、または食品添加物である、請求項6に記載の組成物。
- 請求項1に記載のアッカーマンシア・ムシニフィラAK32菌株またはその培養液の、腸損傷の予防、改善又は治療の為の薬剤を製造するための使用。
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