JP7478720B2 - 条件付き再プログラム化細胞から動物モデルを得るための方法および抗腫瘍薬のスクリーニングのための動物モデルの使用 - Google Patents
条件付き再プログラム化細胞から動物モデルを得るための方法および抗腫瘍薬のスクリーニングのための動物モデルの使用 Download PDFInfo
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Description
a)0.01~1.0mg/Lのヒドロコルチゾン、
b)1.0~10.0mg/Lのインスリン、
c)1.0~20.0μg/Lのコレラトキシン、
d)2.0~50.0mg/Lのアデニン、
e)1.0~30.0μg/LのEGF、
f)1.0~30.0μmol/LのY-27632、
g)ペニシリン/ストレプトマイシン、
h)2~20%のFBS、
i)F12培地、
j)高グルコースDMEM、および任意で
k)非必須アミノ酸溶液、
l)GlutaMAX添加剤
を含む組成物中で培養する工程(1)と、前記工程(1)で得た原発腫瘍細胞を動物に移植する工程(2)とを含む。実施の形態において、本発明の方法の工程(1)の組成物は、下記成分:
a)0.3~0.5mg/L、好ましくは0.4mg/Lのヒドロコルチゾン、
b)4~6mg/L、好ましくは5mg/Lのインスリン、
c)7~9μg/L、好ましくは8.3μg/Lのコレラトキシン、
d)20~30mg/L、好ましくは24.2mg/Lのアデニン、
e)8~12μg/L、好ましくは10μg/LのEGF、
f)8~12μmol/L、好ましくは10μmol/LのY-27632、
g)ペニシリン/ストレプトマイシン、
h)8~12%、好ましくは10%のFBS、
i)F12培地、
j)高グルコースDMEM、および任意で
k)非必須アミノ酸溶液、
l)GlutaMAX添加剤を含む。
a)0.01~1.0mg/Lのヒドロコルチゾン、
b)1.0~10.0mg/Lのインスリン、
c)1.0~20.0μg/Lのコレラトキシン、
d)2.0~50.0mg/Lのアデニン、
e)1.0~30.0μg/LのEGF、
f)1.0~30.0 μmol/LのY-27632、
g)ペニシリン/ストレプトマイシン、
h)2~20%のFBS、
i)F12培地、
j)高グルコースDMEM、および任意で
k)非必須アミノ酸溶液、
l)GlutaMAX添加剤
を含む組成物中で培養する工程(1)と、前記工程(1)で得た原発腫瘍細胞を動物に移植する工程(2)とを含む方法を提供する。実施の形態において、腫瘍生検試料は針生検試料である。実施の形態において、針生検で得られた試料中の腫瘍細胞の濃度は約2×10 6 /ml未満である。
a)0.3~0.5mg/L、好ましくは0.4mg/Lのヒドロコルチゾン、
b)4~6mg/L、好ましくは5mg/Lのインスリン、
c)7~9μg/L、好ましくは8.3μg/Lのコレラトキシン、
d)20~30mg/L、好ましくは24.2mg/Lのアデニン、
e)8~12μg/L、好ましくは10μg/LのEGF、
f)8~12μmol/L、好ましくは10 μmol/LのY-27632、
g)ペニシリン/ストレプトマイシン、
h)8~12%、好ましくは10%のFBS、
i)F12培地、
j)高グルコースDMEM、および任意で
k)非必須アミノ酸溶液、
l)GlutaMAX添加剤.
を含む組成物中で培養する工程(1)と、前記工程(1)で得た原発腫瘍細胞を動物に移植する工程(2)とを含む方法を提供する。実施の形態において、腫瘍生検試料は針生検試料である。実施の形態において、針生検で得られた試料中の腫瘍細胞の濃度は約2×10 6 /ml未満、約1.9×10 6 /ml未満、約1.8×10 6 /ml未満、約1.7×10 6 /ml未満、約1.6×10 6 /ml未満、約1.5×10 6 /ml未満、約1.4×10 6 /ml未満、約1.3×10 6 /ml未満、約1.2×10 6 /ml未満、約1.1×10 6 /ml未満、約1.0×10 6 /ml未満、約0.9×10 6 /ml未満、約0.8×10 6 /ml未満、約0,7×10 6 /ml未満、約0.6×10 6 /ml未満、約0.5×10 6 /ml未満、約0.4×10 6 /ml未満、約0.3×10 6 /ml未満、約0.2×10 6 /ml未満、約0.1×10 6 /ml以下、例えば、約2×10 6 /ml未満、約1.7×10 6 /ml未満、約0.8×10 6 /ml未満、約0.64×10 6 /ml未満、約0.59×10 6 /ml未満である。実施の形態において、原発腫瘍細胞は、工程(1)の組成物中でフィーダー細胞と共に培養され、具体的にはフィーダー細胞はマウス胎児繊維芽(MEF)細胞である。実施の形態において、MEF細胞はマイトマイシンCで処理されたものである。
培地は、以下の原料を含む。
・ 375mLのF12培地(市販品)、125mLの高グルコースDMEM(市販品)、25mL(即ち10%)のFBS(市販品)、5mLのヒドロコルチゾン、5mLのインスリン、5mLのコレラトキシン、5mLのアデニン、5mLのペニシリン/ストレプトマイシン(市販品)、5mLのEGF、1mLのY-27632。
・ 任意の原料:非必須アミノ酸溶液(市販品)、およびGlutaMAX添加剤(市販品)。
以下の原料を調製した。
・ ヒドロコルチゾン:25mgの市販のヒドロコルチゾンを5mLの冷たい100%エタノールに溶解して、5mg/mL溶液を作る。0.8mLの当該5mg/mL溶液を100mLの、5%ウシ胎仔血清(FBS)を含むHBESに加える。ろ過滅菌し、10mL等量を-20℃で保存する。ヒドロコルチゾンの最終濃度は0.4mg/Lである。
・ コレラトキシン:1.2mLの滅菌水を1mgのコレラトキシン(市販品)を含むバイアルに添加して、10μM溶液を得る。50μLの当該10μM溶液を50mLの、0.1%ウシ胎仔血清(FBS)を含むHBESで希釈する。ろ過滅菌し、10mL等量を4℃で保存する。コレラトキシンの最終濃度は8.3μg/Lである。
・ インスリン:12.5mgの市販のインスリンを25mLの0.005MのHCLに溶解する。FBSで予め湿らせたシリンジフィルターでろ過滅菌する。インスリンの最終濃度は5mg/Lである。
・ アデニン:121mgの市販のアデニンを50mLの0.05MのHClに加えて1時間撹拌して溶解する。ろ過滅菌し、10mL等量を-20℃で保存する。アデニンの最終濃度は24.2mg/Lである。
・ 上皮成長因子(EGF):100μgの市販のEGFを10mLの滅菌水に溶解する。90mLの、0.1%ウシ血清アルブミンを含むHBESを添加する。ろ過滅菌し、10mL等量を-20℃で保存する。EGFの最終濃度は10μg/Lである。
・ Y-27632:最終濃度はDMSO中で10μmol。市販品。
培地は使用のために冷たい場所に適宜保管した。
MEF(マウス胎児繊維芽)細胞を、C57マウスのe13.5胚から単離し、10%FBS添加DMEMで増殖させた。3~5継代後の単離MEF細胞をマイトマイシンC(10μg/ml)で2時間処理し、PBSで洗浄した。処理後のMEFを回収し、フィーダー細胞として凍結保存した。
1. 材料
1.1 条件付き再プログラミングのための腫瘍
MDX079、MDX083、MDX095、MDX107、MDX123の条件付き再プログラミング細胞はそれぞれ個別に回収した。MDX079は女性肺癌患者由来であり、MDX083モデルは27歳男性腺様嚢胞癌患者由来であり、MDX095モデルは54歳男性悪性腹膜中皮腫患者由来であり、MDX107モデルは54歳男性神経膠芽腫患者由来であり、MDX123モデルは53歳男性結腸直腸癌患者由来であった。
1.2.1 Balb/cヌードマウス、雌、上海ラボラトリー動物センター(Shanghai Laboratory Animal Center)(中国、上海、Lingchang、SCXK(SH)2013~0018)
週齢:6~8週
性別:雌
体重:18~22g
マウスは、定温、定湿のSPF室内で、各ケージに3匹を飼育した。
温度:20~26℃
湿度:40~70%
明暗サイクル:明環境を12時間、暗環境を12時間
飼料:研究期間全体を通じて、動物は照射滅菌済みの乾燥粒状飼料を自由に食べることができた。
逆相顕微鏡DMIL、LEICA社製。バランスALC-310.3、Acclulab社製。マイクロバランスBSA224S、Sartorius社製。遠心分離機5810R、Eppendorf社製。
2.1 細胞培養
腫瘍組織試料を緩衝溶液で洗浄し、バイオセーフティキャビネット内ですべての非腫瘍組織および壊死した腫瘍組織を除去する。腫瘍を1~3mm3の断片に切断し、ペレットを1×コラーゲナーゼ溶液に懸濁し、37℃で1~2時間インキュベートする。単一細胞を70uMのストレイナーによって回収し、腫瘍細胞濃度を求めるために細胞数を計数する(切除および生検/針生検腫瘍試料より得た試料の腫瘍細胞数の計数を参照)。細胞を条件付き再プログラミング培地で培養し、腫瘍細胞の増殖後に条件付き再プログラミング細胞を回収する。
細胞懸濁液でミニ-PDXデバイスを満たし、デバイスをNu/Nu-ヌードマウスの両側面に皮下接種してミニ-PDXモデルを確立した。接種日を0日とした。体重に基づきマウスをランダムに群に分け、0日に処置を開始した。各研究群における試験品の投与およびミニ-PDXデバイス番号を下記実験計画表に示した。
本研究におけるプロトコルおよびその変更点または動物の飼育と使用に関わる手順は、実施の前に上海LIDEの学内動物飼育および使用検討会(Institutional Animal Care and Use Committee、IACUC)の承認を得た。研究の際には、動物の飼育および使用を実験動物ケア評価認証協会(Association for Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Care、AAALAC)の規定に沿って実施した。接種後、動物の罹患率および死亡率について毎日チェックした。日々のモニタリングの時に、正常な行動、例えば、運動性、飼料および水の消費、体重の増減(体重は週2回または1日おきに測定)、目/毛の乾燥に対する腫瘍成長および処置の影響、及びその他の異常な影響についてくまなくチェックした。各副群内の動物数に基づき、死亡および観察された臨床所見を記録した。
2.4.1 体重を毎日測定し、本研究の処置期間は7日とし、最終日には全マウスを賭殺し、CTG(細胞生存率)アッセイのためにミニ-PDXデバイスを取り出した。相対腫瘍増殖速度(%)は抗腫瘍活性の指標である。
MDX079ミニ-PDXモデルにおいて、ドセタキセルおよびカルボプラチンの組み合わせ処置(T/C%=-21%)は、腫瘍細胞生存率の有意な低下をもたらし得るものであり、ゲムシタビンおよびカルボプラチンの組み合わせ処置(T/C%=55%)も抗腫瘍活性を示し、ペメトレキセドおよびカルボプラチンの組み合わせ処置(T/C%=103%)処置、ペメトレキセド、カルボプラチンおよびベバズリマブの組み合わせ処置(T/C%=119%)、エトポシドおよびカルボプラチンの組み合わせ処置(T/C%=114%)は、抗腫瘍活性を示さなかった。
5. 材料
5.1 条件付き再プログラミングのための腫瘍
MDX133、MDX154、MDX164、MDX165、MDX168、MDX169、MDX174、MDX186、MDX189、MDX203 の条件付き再プログラミング細胞はそれぞれ個別に回収した。MDX133は45歳男性胃癌患者由来であり、MDX154モデルは女性胆嚢癌患者由来であり、MDX164モデルは43歳男性神経膠芽腫患者由来であり、MDX165モデルは64歳男性神経膠芽腫患者由来であり、MDX168モデルは66歳女性胆嚢癌患者由来であり、MDX169モデルは52歳男性肺癌患者由来であり、MDX174モデルは59歳男性肺癌患者由来であり、MDX186モデルは54歳女性膵臓癌患者由来であり、MDX189モデルは44歳男性食道癌患者由来であり、MDX203モデルは61歳男性胆嚢癌患者由来であった。
5.2.1 Balb/cヌードマウス、雌、上海ラボラトリー動物センター(中国、上海、Lingchang、上海、中国、SCXK(SH)2013~0018)
週齢: 6~8週
性別: 雌
体重: 18~22g
マウスは、定温、定湿のSPF室内で、各ケージに3匹を飼育した。
温度: 20~26℃
湿度: 40~70%
明暗サイクル: 明環境を12時間、暗環境を12時間
飼料: 研究期間全体を通じて、動物は照射滅菌済みの乾燥粒状飼料を自由に食べることができた。
水: 動物は、滅菌済飲料水自由に飲むことができた。
ケージの識別: 各ケージの識別ラベルは以下の情報を含んでいた:動物の数、性別、種、受取日、処置、研究番号、群番号、および処置開始日。
動物の識別: 動物は耳へのコード付けによって印を付けた。
逆相顕微鏡DMIL、LEICA社製。バランスALC-310.3、Acclulab社製。マイクロバランスBSA224S、Sartorius社製。遠心分離機5810R、Eppendorf社製。
6.1 細胞培養
腫瘍組織試料を緩衝溶液で洗浄し、バイオセーフティキャビネット内ですべての非腫瘍組織および壊死した腫瘍組織を除去する。腫瘍を1~3mm3の断片に切断し、ペレットを1×コラーゲナーゼ溶液に懸濁し、37℃で1~2時間インキュベートする。単一細胞を70uMのストレイナーによって回収し、腫瘍細胞濃度を求めるために細胞数を計数する (切除および生検/針生検腫瘍試料より得た試料の腫瘍細胞数の計数を参照)。細胞を条件付き再プログラミング培地で培養し、腫瘍細胞の増殖後に条件付き再プログラミング細胞を回収する。
細胞懸濁液でミニ-PDXデバイスを満たし、デバイスをNu/Nuーヌードマウスの両側面に皮下接種してミニ-PDXモデルを確立した。接種日を0日とした。体重に基づきマウスをランダムに群に分け、0日に処置を開始した。各研究群における試験品の投与およびミニ-PDXデバイス番号を下記実験計画表に示した。
本研究におけるプロトコルおよびその変更点または動物の飼育と使用に関わる手順は、実施の前に上海LIDEの学内動物飼育および使用検討会(IACUC)の承認を得た。研究の際には、動物の飼育および使用を実験動物ケア評価認証協会(AAALAC)の規定に沿って実施した。接種後、動物の罹患率および死亡率について毎日チェックした。日々のモニタリングの時に、正常な行動、例えば、運動性、飼料および水の消費、体重の増減(体重は週2回または1日おきに測定)、目/毛の乾燥に対する腫瘍成長および処置の影響、及びその他の異常な影響についてくまなくチェックした。各副群内の動物数に基づき、死亡および観察された臨床所見を記録した。
6.4.1 体重を毎日測定し、本研究の処置期間は7日とし、最終日には全マウスを賭殺し、CTG(細胞生存率)アッセイのためにミニ-PDXデバイスを取り出した。相対腫瘍増殖速度(%)は抗腫瘍活性の指標である。
MDX133ミニ-PDXモデルにおいては、パクリタキセル処置(T/C%=52%)は、腫瘍細胞生存率の低下をもたらし得るものであり、イリノテカン処置(T/C%=72%)、S-1処置(T/C%=86%)、オキサリプラチン処置(T/C%=89%)も少量の抗腫瘍活性を示し、5-Fu処置(T/C%=103%)は抗腫瘍活性を示さなかった。
MDX164ミニ-PDXモデルにおいて、テモゾロミド処置(T/C%=102%)は抗腫瘍活性を示さなかった。
公知の方法によって腫瘍細胞数を計数し、懸濁液中の腫瘍細胞濃度に変換した。M:×10 6 /ml。
Claims (9)
- 抗腫瘍薬のスクリーニングのための動物モデルを得るための方法であって、
患者の腫瘍試料から得た原発腫瘍細胞を、下記成分:
a)0.4mg/Lのヒドロコルチゾン、
b)5mg/Lのインスリン、
c)8.3μg/Lのコレラトキシン、
d)24.2mg/Lのアデニン、
e)10μg/LのEGF、
f)10μmol/LのY-27632、
g)ペニシリン/ストレプトマイシン、
h)10%のFBS、
i)F12培地、
j)高グルコースDMEM、
k)非必須アミノ酸溶液、
l)GlutaMAX添加剤、および
m)マイトマイシンCで処理したマウス胎児繊維芽細胞
を含む組成物中で培養する工程(1)と、
前記工程(1)で得た原発腫瘍細胞を動物に移植する工程(2)と
を含み、
前記動物はヒト以外の動物である、方法。 - 前記腫瘍試料が切除試料または生検試料である、請求項1に記載の方法。
- 前記腫瘍試料の原発腫瘍細胞の濃度は、2×106/ml未満、1.9×106/ml未満、1.8×106/ml×106/ml未満、1.7×106/ml未満、1.6×106/ml未満、1.5×106/ml未満、1.4×106/ml未満、1.3×106/ml未満、1.2×106/ml未満、1.1×106/ml未満、1.0×106/ml未満、0.9×106/ml未満、0.8×106/ml未満、0,7×106/ml未満、0.6×106/ml未満、0.5×106/ml未満、0.4×106/ml未満、0.3×106/ml未満、0.2×106/ml未満、または0.1×106/ml以下である、請求項1に記載の方法。
- 前記動物がマウスまたはラットである、請求項1に記載の方法。
- 前記原発腫瘍細胞を動物に移植する工程(2)の前に、前記工程(1)で培養によって得られた原発腫瘍細胞を中空繊維内に封入することをさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 前記中空繊維が前記動物の皮下に移植される、請求項5に記載の方法。
- 前記抗腫瘍薬のスクリーニングが、前記動物に候補薬を投与することを含む、請求項1~6のいずれか一項に記載の方法。
- 前記候補薬を動物に経口投与または非経口投与する、請求項7に記載の方法。
- 前記抗腫瘍薬のスクリーニングが、前記候補薬を前記動物に投与した後に、前記動物における腫瘍細胞成長を測定することをさらに含む、請求項7に記載の方法。
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