JP7369414B2 - 分析物の検出 - Google Patents
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Description
(i)コアと、
(ii)前記コアから半径方向に延在する孔と、
(iii)分析物を結合するための結合剤と、
(iv)前記孔内に固定化された検出剤と
を含むことによって、前記分析物を検出する。
(i)コアと、
(ii)前記コアから半径方向に延在する孔と、
(iii)分析物を結合するための結合剤と、
(iv)前記孔内に固定化された検出剤と、
(v)使用のための説明書とを含む。
(i)金属またはメタロイド供給源を提供するステップと、
(ii)液体環境において、金属またはメタロイド供給源を塩基および任意には界面活性剤と接触させるステップと、
(iii)ステップ(ii)の生成物をアンカー基を示す化合物と接触させるステップと
を含むことによって、アンカー基を示すナノ粒子を生成する。
(i)コアと、
(ii)前記コアから半径方向に延在する孔と、
(iii)前記孔内に固定化された複数の量子ドットとを含む。
(i)光源と、
(ii)第4の態様の組成物を含み、かつ光源に光学的に結合された発光層と、
(iii)発光層から放射された光を少なくとも部分的に受取るためのディスプレイとを含む。
(i)陰極と、
(ii)陰極の上の電子輸送層と、
(iii)電子輸送層の上に形成された発光層であって、この発光層は第4の態様の組成物を含む、発光層と、
(iv)発光層の上の正孔輸送層と、
(v)正孔輸送層の上に形成された陽極とを含む。
(i)電子伝導体層と、
(ii)第4の態様の組成物を含み、かつ電子伝導体層に結合された電子放出層とを含む。
(i)第4の態様の任意の1つの組成物を含む発光層を提供するステップと、
(ii)発光層内の量子ドットの1つまたはそれ以上による吸収が可能な周波数の電磁放射線によって発光層を励起するステップと
を含むことによって発光する。
(i)第4の態様の任意の1つの組成物を含む電子放出層を提供するステップと、
(ii)電子放出層内の量子ドットの1つまたはそれ以上による吸収のために好適な周波数の電磁放射線によって電子放出層を励起するステップと
を含むことによって電子を放出する。
(i)金属またはメタロイド供給源を提供するステップと、
(ii)液体環境において、金属またはメタロイド供給源を塩基および任意には界面活性剤と接触させるステップと、
(iii)ステップ(ii)の生成物をアンカー基を示す化合物と接触させるステップと、
(iv)ステップ(iii)の生成物を前記量子ドットと接触させるステップと
を含むことによって、固定化された複数の量子ドットを有するナノ粒子を生成する。
(i)コアと、
(ii)前記コアから半径方向に延在する孔と、
(iii)分析物を結合するための結合剤と、
(iv)前記孔内に固定化された検出剤と
を含むことによって、前記分析物を検出する。
(a)分析物を検出するためのナノ粒子を含み、このナノ粒子は
(i)コアと、
(ii)前記コアから半径方向に延在する孔と、
(iii)分析物を結合するための結合剤と、
(iv)前記孔内に固定化された検出剤とを含み、このキットはさらに
(b)使用のための説明書を含む。
(i)金属またはメタロイド供給源を提供するステップと、
(ii)液体環境において、金属またはメタロイド供給源を塩基および任意には界面活性剤と接触させるステップと、
(iii)ステップ(ii)の生成物をアンカー基を示す化合物と接触させるステップと
を含むことによって、アンカー基を示すナノ粒子を生成する。
(i)コアと、
(ii)前記コアから半径方向に延在する孔と、
(iii)前記孔内に固定化された複数の量子ドットとを含む。
本態様の量子ドットは、前述されたとおりのものであってもよいことが認識されるだろう。
(i)光源と、
(ii)前述された組成物を含み、かつ光源に光学的に結合された発光層と、
(iii)ディスプレイとを含む。
(i)陰極と、
(ii)陰極の上の電子輸送層と、
(iii)電子輸送層の上に形成された発光層であって、この発光層は前述された組成物を含む、発光層と、
(iv)発光層の上の正孔輸送層と、
(v)正孔輸送層の上に形成された陽極とを含む。
(i)電子伝導体層と、
(ii)前述された組成物を含み、かつ電子伝導体層に結合された電子放出層とを含む。
(i)前述された組成物を含む発光層を提供するステップと、
(ii)発光層内の量子ドットの1つまたはそれ以上による吸収が可能な周波数の電磁放射線によって発光層を励起するステップと
を含むことによって発光する。
(i)前述された組成物を含む電子放出層を提供するステップと、
(ii)電子放出層内の量子ドットの1つまたはそれ以上による吸収のために好適な周波数の電磁放射線によって電子放出層を励起するステップと
を含むことによって電子を放出する。
(i)金属またはメタロイド供給源を提供するステップと、
(ii)液体環境において、金属またはメタロイド供給源を塩基および任意には界面活性剤と接触させるステップと、
(iii)ステップ(ii)の生成物をアンカー基を示す化合物と接触させるステップと、
(iv)ステップ(iii)の生成物を前記量子ドットと接触させるステップと
を含むことによって、固定化された複数の量子ドットを有するナノ粒子を生成する。
この実施例においては、注意深く設計したメソポーラスシリカナノ粒子(DMSN)の使用を通じた、信号増幅による2000倍の感度増強を有する高感度ELISA(ELISA+)の開発について示す。容易にアクセス可能な樹状孔チャネルを有するDMSN(図1を参照)を酵素装填マトリックスとして適用して、次の利点を伴って超低濃度インスリンを検出した。(1)HRPを装填するために大きい表面積(484m2g-1)、大きい孔体積(1.39cm3g-1)、および大きい孔径(14.5nm)を有するDMSNを使用することによって、超高度の酵素装填を達成する。(2)大きく開いた樹状チャネルは、基質分子が酵素と反応するための容易にアクセス可能な空間を可能にし、これが超高活性をもたらす。(3)超高度のHRP装填および容易にアクセス可能な孔チャネルによって、試験した市販のELISAキットと比較して血清中のインスリン検出感度の2000倍の増強を達成する。
化学物質
セチルメチルアンモニウムクロリド(CTAC:Cetyltrimethylammonium chloride)溶液(25wt%H2O溶液)、テトラエチルオルトシリケート(TEOS:tetraethylorthosilicate)、トリエタノールアミン(TEA:triethanolamine)、3-アミノプロピルトリエトキシシラン(APTES:3-aminopropyltriethoxysilane)、リン酸緩衝食塩水(PBS:phosphate buffered saline)、グルタルアルデヒド(50wt%H2O溶液)、シクロヘキサン、クロロベンゼン、西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)、およびトルエンをシグマアルドリッチ(Sigma-Aldrich)より購入した。モルモットポリクローナル対インスリン(二次抗体)をアブカム・オーストラリア社(Abcam Australia Pty Ltd.)に発注した。ヒトインスリンELISAキットをライフテクノロジーズ(Life Technologies)(オーストラリア Pty Ltd)より購入した。すべての化学物質を受取った状態のまま精製せずに用いた。すべての実験に用いた脱イオン(Deionized)水(DI水)(18.2mVcm)は、Milli-Qシステム(ミリポア(Millipore)、ベッドフォード(Bedford)、MA)から得た。
DMSN-1[15]の合成:100mLの丸底フラスコ内で、24mLのCTAC溶液(25wt%)と、0.18gのTEAと、36mLの水とを混合し、60℃にて1h撹拌した。次いで4mLのTEOSと、16mLのシクロヘキサン(20v/v%)とを混合して、溶液に加えた。溶液を150rpm(12h)の撹拌速度の下で60℃に保った。550℃にて5hの焼成後に生成物を得た。
77KにおけるMicromeritics Tristar II 3020システムによって、サンプルの窒素吸着等温線を得た。測定前に、未修飾/アミノ修飾サンプルを真空中で100/80℃にて少なくとも8h脱気した。DMSN-2および3に対するバレット・ジョイナー・ハレンダ(BJH)法と、DMSN-1[15]に対する密度関数理論(DFT:density functional theory)法とによって、孔径分布を算出した。典型的なブルナウアー-エメット-テラー(BET:Brunauer-Emmett-Teller)法を用いることによって、総孔体積および表面積を算出した。炭素フィルムで覆ったCuグリッド上にサンプルを分散させることによって、100kVにて動作するJEOL 1010顕微鏡によってTEM画像を直接取った。ジェントルビームモードを用いて1kVにて動作するJEOL JSM 7800電界放出走査型電子顕微鏡(FE-SEM:field-emission scanning electron microscope)を用いて、SEM画像を得た。サンプルをエタノール中に分散させ、次いでアルミニウム箔片に落とし、伝導性炭素テープに付着させた。次に、サンプルを真空中で60℃にて12時間乾燥した。マルバーン・インスツルメンツ(Malvern Instruments)からのZetasizer Nano-ZSを用いて、25℃にてζ電位測定を行った。島津(Shimadzu)UV-2450ダブルビーム分光光度計によって、UV-vis透過スペクトルを測定した。HRPおよび抗インスリンの吸光度は、それぞれ401nmおよび278nmにおけるものである。
1gのDMSNを30mLのAPTES(4mmol)トルエン溶液に分散させて、110℃にて18h還流した。生成物を遠心分離によって集め、エタノールで3回洗浄した。粉末を室温にて一晩乾燥した。
HRP固定化法を過去の文献[7、14]から修正した。2mgのDMSNを1mLのPBS緩衝液(pH7.4)に懸濁し、次いで1mLの2.5%グルタルアルデヒドを加え、混合物を室温にて1h撹拌した。混合物を遠心分離し、PBSで3回洗浄して余分な試薬を除去した。次のステップにおいて、沈殿物をPBSに再懸濁し、2mgのHRPを加えた。23h撹拌した後、溶液を遠心分離し、沈殿物を洗浄して未結合HRPを除去した。HRP濃度を測定するためのUV試験のために、すべての上清を集めた。結果として得たサンプルをDMSN-1-H、DMSN-2-H、およびDMSN-3-Hと名付けた。
基質としてTMB/H2O2を用いて固定化HRPの活性測定を行い、その結果を遊離HRPと比較した。異なるHRP濃度(0~0.25μgmL-1)を有するDMSN-HのPBS溶液を調製した。次いでそれらを96ウェルマイクロプレートにおいてTMB/H2O2と混合し(総体積50μLを与える)、25℃にて10分間インキュベートした。次いで、50μLの1M HClを加えて反応を停止した。マイクロプレートリーダーによって、450nmにおける光学濃度(O.D.:optical density)を読取った。
超低濃度(市販のELISAキットのLODの1~1/2000倍=6.86~3.43×10-3pgmL-1)を有する標準インスリン溶液を新しく調製した。それらは、ELISAキットの標準溶液(ヒト血清中に168pgmL-1のインスリンを含有する)から段階希釈した。
DMSNの合成および特徴付け
HRP装填およびELISA+感度に対する孔径の影響を調べるために、類似の構造だが異なる孔径を有する3つのMSNを選択した[15、16]。孔径の増加とともに、3つのMSNをDMSN-1(6.9nm)、DMSN-2(16nm)、およびDMSN-3(40nm)と表示した。HRP固定化のためにDMSN内に-NH2をグラフトするためにアミノ修飾を行い(ESMにおけるスキームS1)、機能化の後に3つのDMSNのメソ構造が維持されることを示した。DMSNの構造を特徴付けるために、TEMおよびSEMを用いる。図7のTEM画像は、アミノ修飾の前(図7(a、c、e)および後(図7(b、d、f))のDMSNの球状構造および孔チャネルを表示する。特に、DMSN-2の開放孔チャネルを図2のTEMおよびSEM画像によって明らかにしている。
図6[7]に示した十分に開発された方法を用いて共有結合を通じてHRPの固定化を行い、結合剤としてグルタルアルデヒドを使用した。共有結合は、感度の低下をもたらし得るELISAプロセス中のHRPの漏出を回避するだろう。結果として得た材料をDMSN-1-H、DMSN-2-H、およびDMSN-3-Hと名付け、これらはそれぞれ283、390、および382mgg-1の装填量を有した。DMSN-2(390mgg-1)と比べて、DMSN-1の孔径(4.9nm、NH2修飾有)はHRP(6*5*4nm)よりもわずかに小さく、このためHRPがメソ細孔に入る可能性が低くなるため、装填量は少なくなる(283mgg-1)。アミノ修飾DMSN-3の大きい表面積および孔体積は高い装填容量を与えるが、非常に大きい孔径(40nm)はHRPに対する捕捉効果が少ないため、その相乗効果の結果得られるHRP装填量は382mgg-1であり、これはもっと小さい表面積および孔体積を有するDMSN-2(390mgg-1)と類似した量である。
固定化HRPの活性を知るために、その触媒特性を遊離HRPと比較した。図3は、HRPの濃度と450nmにおける光学濃度(A450)との線形的関係を示す。各線形回帰曲線の傾斜から算出したDMSN-Hの活性は、DMSN-1-H、DMSN-2-H、およびDMSN-3-Hに対して5%、87%、および85%である。MSN-1におけるHRPの超低活性は、HRPと類似したサイズの小さいメソ細孔によって制限される、装填HRPと基質との限られた反応の結果によるものであろう。DMSN-2-HおよびDMSN-3-Hにおける87%および85%の触媒特性は、容易にアクセス可能な孔チャネルを伴う大きい孔径が高い酵素活性に対して有益であることを示唆する。
固定化HRPの酵素活性の大部分を維持できることを確かめた後に、超高感度ELISA+に対する標識としてHRPおよび二次抗インスリン抗体の両方を有するDMSN(DMSN-1-H-A、DMSN-2-H-A、およびDMSN-3-H-Aと示す)を開発した。HRPの装填後に、DMSN上の残りの-CHO基を共有結合に用いて二次抗体の固定化を行い、そのプロセスはHRP装填(スキームS1)と同様である。この条件におけるHRPの装填量は上記と同様である。57、60、55mgg-1(表3)の二次抗体を、それぞれDMSN-1、DMSN-2、およびDMSN-3に接合した。二次抗体の装填量に対するDMSN間の有意差は観察せず、これは供給比率(100mg抗体:1g DMSN)が小さいことによるものであろう。
HRPおよび二次抗体の両方を有する機能性DMSNを、ヒト血清における超高感度インスリン検出に適用した。市販のELISAキットの説明書に示唆されるとおり7.7pgml-1の検出限界(LODC)を有する標準溶液を希釈することによって、すべてのインスリンサンプル(3.85fgml-1~7.7pgml-1の範囲)を新たに調製する。色信号を増幅するためにDMSN-2-H-AおよびDMSN-3-H-Aを用いるとき(図4)、検出限界は3.85fgml-1に下がり、これはLODCの1/2000に等しい。DMSN-2-H-AおよびDMSN-3-H-Aは同じ検出限界を有するが、前者の方が高いOD強度を与えるため、これが3つのDMSNのうちで最良の信号増幅候補である。一方、DMSN-1-H-Aの最低検出可能濃度は7.7fgml-1(LODCの1/1000)であり、これは他の2つのDMSNよりも高い。これはHRPの装填が少ないことおよび低活性のためである。
色信号増幅のための高HRP装填および容易にアクセス可能な樹状孔チャネルを有するDMSNを用いることによって、超高感度ELISA+の開発に成功した。市販のELISAキットと比べて、血清中の検出感度の2000倍の増強を達成する。この研究は、色増幅のためにDMSNを用いることによってELISAの効率を改善するという素晴らしいアイデアを提案する。さらに、他のタンパク質の超高感度検出のためにELISA+を広く使用できる。さらに、ELISA+を現在の技術と結合させて優れた性能を達成できる可能性が高い。
材料および方法:(チオール)
化学物質:テトラエチルオルトシリケート(TEOS)、トリエタノールアミン(TEA)、(3-メルカプトプロピル)トリメトキシシラン(MPTMS)、サリチル酸ナトリウム、セチルトリメチルアンモニウムブロミド(CTAB)、エタノール、および塩酸(37%wt)をシグマアルドリッチより購入した。実験全体にわたり、実験室精製システムから得た二重蒸留水を用いた。すべての実験において、使用前に水を超音波槽内で脱酸素し、次いでN2ガスを10分間通気した。
直径4nmのCdSe量子ドットを10mg/mLの濃度で1mLのCHCl3に分散させた。これに実施例2で合成したT-MSN粒子の分散物(1mLエタノール中に1mg)を加えた。T-MSN粒子を量子ドットとともに数分間振とうし、得られた混合物を遠心分離してEtOHで数回洗浄した。T-MSN1グラム当り0.6gの量子ドットの装填量にて、T-MSN粒子への量子ドットの装填を成功させた。
方法。この実施例においては、ストーバー(Stoeber)合成条件によるワンポットの無界面活性剤プロセスによって、単分散メソポーラスシリカナノ粒子を合成した。典型的には、撹拌下でエタノール(40mL)と、蒸留水(10mL)と、水酸化アンモニウム(1.56mL)と、エチレンジアミン(ethylenediamine)溶液(EDA、0.225mL)とを混合することによって、アルコール水溶液を調製した。その後、上述の溶液に3-アミノフェノール(0.412g)、ホルムアルデヒド溶液(0.9mL)、TEOS(1.56mL)を加えた。次いで、混合物を5h強く撹拌した。こうして合成した複合体を、遠心分離、エタノール洗浄、および乾燥によって集めた。最後に、空気中での焼成後に単分散メソポーラスシリカナノ粒子を収集した。
Claims (24)
- サンプル中の分析物を検出するための方法であって、前記方法は前記分析物をインビトロでナノ粒子と接触させてその結合を促進するステップを含み、前記ナノ粒子は
(i)コアと、
(ii)前記コアから半径方向に延在し、前記ナノ粒子の前記コアから放射状に広がる樹状スパイクのアレイの間に存在する多孔性で構成される複数の孔であって、かつ10nmから20nmの平均孔径を有する複数の孔と、
(iii)前記分析物をインビトロで結合するための結合剤と、
(iv)前記複数の孔内に固定化された検出剤と
を含むことによって、前記分析物を検出する、方法。 - 前記ナノ粒子はシリカナノ粒子である、請求項1に記載の方法。
- 前記複数の孔は円錐形である、請求項1若しくは2に記載の方法。
- 前記ナノ粒子は50nmから250nmの平均粒径を有する、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記結合剤は抗体またはその機能性フラグメントである、請求項1~4のいずれか一項に記載の方法。
- 前記検出剤は生物発光剤、化学発光剤、および/もしくは蛍光剤であるか、またはそれらを含む、請求項1~5のいずれか一項に記載の方法。
- 前記検出剤は量子ドットであるか、またはそれを含む、請求項6に記載の方法。
- 前記検出剤は西洋ワサビペルオキシダーゼであるか、またはそれを含む、請求項6に記載の方法。
- 前記検出剤からレポーター信号を生成するステップをさらに含む、請求項1~7のいずれか一項に記載の方法。
- 前記レポーター信号を生成するステップは、前記検出剤と基質とを接触させることによってそこからの前記レポーター信号の生成を促進するステップを含む、請求項9に記載の方法。
- 前記レポーター信号を生成するステップは、前記検出剤に電磁波を照射することによってそこからの前記レポーター信号の生成を促進するステップを含む、請求項9に記載の方法。
- 前記レポーター信号を検出するステップをさらに含む、請求項9~11のいずれか一項に記載の方法。
- 診断キットであって、
(a)分析物をインビトロで検出するためのナノ粒子であって、
(i)コアと、
(ii)前記コアから半径方向に延在し、前記ナノ粒子の前記コアから放射状に広がる樹状スパイクのアレイの間に存在する多孔性で構成される複数の孔であって、かつ10nmから20nmの平均孔径を有する複数の孔と、
(iii)前記分析物をインビトロで結合するための結合剤と、
(iv)前記複数の孔内に固定化された検出剤と
を含む、ナノ粒子と、
(b)使用のための説明書と
を含む、診断キット。 - 前記ナノ粒子はシリカナノ粒子である、請求項13に記載のキット。
- 前記複数の孔は円錐形である、請求項13若しくは14に記載のキット。
- 前記ナノ粒子は50nmから250nmの平均粒径を有する、請求項13~15のいずれか一項に記載のキット。
- 前記結合剤は抗体またはその機能性フラグメントである、請求項13~16のいずれか一項に記載のキット。
- 前記検出剤は生物発光剤、化学発光剤、および/もしくは蛍光剤であるか、またはそれらを含む、請求項13~17のいずれか一項に記載のキット。
- 前記検出剤は量子ドットであるか、またはそれを含む、請求項18に記載のキット。
- 前記検出剤は西洋ワサビペルオキシダーゼであるか、またはそれを含む、請求項18に記載のキット。
- 基体の中および/または上に分散されたナノ粒子を含む組成物であって、前記ナノ粒子は
(i)コアと、
(ii)前記コアから半径方向に延在し、前記ナノ粒子の前記コアから放射状に広がる樹状スパイクのアレイの間に存在する多孔性で構成される複数の孔であって、かつ10nmから20nmの平均孔径を有する複数の孔と、
(iii)前記複数の孔内に固定化された複数の量子ドットと
を含む、組成物。 - 前記ナノ粒子はシリカナノ粒子である、請求項21に記載の組成物。
- 前記複数の孔は円錐形である、請求項21または請求項22に記載の組成物。
- 前記ナノ粒子は100nmから250nmの平均粒径を有する、請求項21~23のいずれか一項に記載の組成物。
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