JP7353663B2 - Gabaa受容体リガンド - Google Patents
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Description
本発明は、GABA受容体モジュレータとして有用な2-(3-(3-(2,4-ジメトキシピリミジン-5-イル)フェニル)-3H-イミダゾ[4,5-b]ピリジン-6-イル)プロパン-2-オールに関する。一実施形態において、前記化合物は、疼痛、神経因性疼痛および/または掻痒の処置において有用である。
GABAは、侵害受容線維が終止する脊髄後角第II層を含むCNS内の主な阻害性神経伝達物質である。脊髄における阻害性神経伝達は、疼痛伝達において非常に重要であり、阻害の増大は、鎮痛に導く(Zeilhofer HU. et. al. (2009), Trends in pharmacological science)。
主要な態様において、本発明は、式1で表された2-(3-(3-(2,4-ジメトキシピリミジン-5-イル)フェニル)-3H-イミダゾ[4,5-b]ピリジン-6-イル)プロパン-2-オール(化合物1)に関係する。
一態様において、本発明は、式1で表された2-(3-(3-(2,4-ジメトキシピリミジン-5-イル)フェニル)-3H-イミダゾ[4,5-b]ピリジン-6-イル)プロパン-2-オールに関係する。
本発明の化学化合物は、医薬的に(即ち、生理学的に)許容できる塩をはじめとする意図する投与に適した任意の形態で提供されてもよい。医薬的に許容できる付加塩の例としては、塩酸塩、臭化水素塩、硝酸塩、過塩素酸塩、リン酸塩、硫酸塩、ギ酸塩、酢酸塩、アコナート(aconate)、アスコルビン酸塩、ベンゼンスルホン酸塩、安息香酸塩、桂皮酸塩、クエン酸塩、エンボン酸塩、エナント酸塩、フマル酸塩、グルタミン酸塩、グリコール酸塩、乳酸塩、マレイン酸塩、マロン酸塩、マンデル酸塩、メタンスルホン酸塩、ナフタレン-2-スルホン酸塩、フタル酸塩、サリチル酸塩、ソルビン酸塩、ステアリン酸塩、コハク酸塩、酒石酸塩、トルエン-p-スルホン酸塩および同様のものなどの非毒性の無機および有機酸付加塩が挙げられるが、これらに限定されない。そのような塩は、当該技術分野で周知の記載された手順により形成されてもよい。医薬的に許容できると見なされ得ないシュウ酸などの他の酸が、本発明の化学化合物およびその医薬的に許容できる酸付加塩を得る際に中間体として有用な塩の調製において有用になる場合がある。
本発明の化学化合物は、標識または非標識形態で用いられてもよい。本発明の文脈において、標識された化合物は、通常は天然に見出される原子質量または質量数と異なる原子質量または質量数を有する原子により置き換えられた原子を1種または複数有する。この標識は、前記化合物の容易な定量的検出を可能にするであろう。
本発明の化学化合物は、化学合成のための従来法、例えば実用例に記載されたものにより調製されてもよい。本出願に記載された工程の出発原料は公知であるか、または市販の化学薬品から従来法により即座に調製されてもよい。
本発明はまた、化合物1またはその医薬的に許容できる塩の治療有効量を、少なくとも1種の医薬的に許容できる担体、賦形剤または希釈剤と共に含む医薬組成物を提供する。
本発明の化合物1は、GABAA受容体複合体のモジュレーションが可能であり、α3サブユニットと、わずかな程度にα2およびα5サブユニットを含有するGABAA受容体のポジティブアロステリックモジュレータ(PAM)であることが実証される。化合物1は、急性および慢性処置後に神経因性疼痛のラットモデルにおいて機械的アロディニアを回復させ、それは、掻痒を誘導する化合物で処置されたマウスの引っ掻きを好転させており、鎮痛に加え鎮痒効果が示唆される。化合物1は、ラットの探索的自発運動およびロータロッドパフォーマンスでの測定で、鎮静の易罹病性および運動障害的影響を示さない。
化合物1は、GABAA受容体のリガンドであるため、ヒトをはじめとする生存する身体の障害の処置、予防および/または緩和に有用である。好ましくは化合物1は、神経因性疼痛などの疼痛および/または掻痒の処置、予防、および/または緩和において使用される。
一態様において、本発明は、神経因性疼痛の処置、予防、および/または緩和における式1で表される2-(3-(3-(2,4-ジメトキシピリミジン-5-イル)フェニル)-3H-イミダゾ[4,5-b]ピリジン-6-イル)プロパン-2-オールの使用に関係する。
一態様において、本発明は、掻痒の処置、予防、および/または緩和における、式1で表された2-(3-(3-(2,4-ジメトキシピリミジン-5-イル)フェニル)-3H-イミダゾ[4,5-b]ピリジン-6-イル)プロパン-2-オールの使用に関係する。
実施例1:2-(3-(3-(2,4-ジメトキシピリミジン-5-イル)フェニル)-3H-イミダゾ[4,5-b]ピリジン-6-イル)プロパン-2-オール(1)の調製
0℃の無水テトラヒドロフラン(750mL)中の6-クロロ-5-ニトロ-ニコチン酸 2(100g、461.72mmol)の撹拌された溶液に、N,N-ジイソプロピルエチルアミン(120.6mL、692.58mmol)を、続いて3-ブロモアニリン 3(55ml、494.1mmol)を滴加した。反応混合物を窒素雰囲気下、周囲温度で24時間撹拌した。反応物をTLCおよびUPLCによりモニタリングした。反応混合物を減圧下で初期容量の半量まで濃縮した。石油エーテル(800mL)を反応混合物に添加し、この懸濁液を1時間撹拌した。出現した橙色固体を吸引濾過し、石油エーテル(300mLで8回)で徹底して洗浄し、メチル6-((3-ブロモフェニル)アミノ)-5-ニトロニコチナート 4(132g、81%)を橙色固体として供給した。
1H NMR (400 MHz, DMSO-d6): δ = 10.31 (s, 1H, 交換可能なプロトン), 8.94 (s, 1H), 8.82 (s, 1H), 7.92 (s, 1H), 7.63 (d, J = 7.60 Hz, 1H), 7.41-7.36 (m, 2H), 3.88 (s, 3H); LCMS (ESI): m/z: 352.9 (M+H)+。
エタノール:THF[1:1;(2600mL)]の混合物中のメチル6-((3-ブロモフェニル)アミノ)-5-ニトロニコチナート 4(485g;1377.28mmol)の冷却された(0℃)懸濁液に、塩化スズ二水和物(932.3g;4131.8mmol)を0℃で少量ずつ添加し、放置して反応混合物の温度を周囲温度にしながら、反応混合物を窒素雰囲気下で20時間撹拌した。反応の進行をTLCおよびUPLCによりモニタリングした。20時間後に、反応混合物を減圧濃縮し、得られた残渣を水(1000mL)で希釈した。水性混合物を5℃で固体重炭酸ナトリウムにより塩基性にした(pHがおよそ9~10になるまで)。その後、クロロホルム(1500mL)を水性部分に添加し、15分間撹拌し、出現した不溶性無機物をCeliteのベッドで濾過した。ベッドをクロロホルム(500mLで5回)で徹底して洗浄した。有機層を分離し、飽和ブライン溶液(800mL)で洗浄し、無水硫酸ナトリウムで脱水し、濾過して濃縮し、メチル5-アミノ-6-((3-ブロモフェニル)アミノ)ニコチナート 5(350g、78.88%)を灰色がかった固体として産出した。
1H NMR (400 MHz, DMSO-d6): δ = 8.38 (s, 1H, 交換可能なプロトン), 8.13 (s, 1H), 8.06 (s, 1H), 7.70 (d, J = 10.00 Hz, 1H), 7.42 (s, 1H), 7.27-7.22 (m, 1H), 7.13-7.10 (m, 1H), 5.31 (s, , 2H, 交換可能なプロトン), 3.80 (s, 3H); LCMS (ESI): m/z: 324.0 (M+H)+。
無水THF(3000mL)中のメチル5-アミノ-6-((3-ブロモフェニル)アミノ)ニコチナート 5(350g、1086.41mmol)の撹拌された溶液に、オルトギ酸トリメチル(172.94g、1629.6mmol)を、続いてp-トルエンスルホン酸(pTSA)(61.99g、325.92mmol)を一度に添加し、反応塊を窒素雰囲気下で80℃まで加熱した。反応の進行をTLCおよびUPLCによりモニタリングした。3時間後に、反応混合物を放置して周囲温度に到達させ、溶媒を減圧除去した。得られた粗製物を水(1000mL)で希釈し、室温で撹拌しながら、水性部分を重炭酸ナトリウムでpHがおよそ9~10になるまで塩基性にした。撹拌をさらに1時間継続した。出現した固体を吸引濾過し、真空下で完全に乾燥させて、粗製の塊状物(380g、105.3%物質収支)をオフホワイト色の固体として供給した。粗製物をクロロホルム(5000mL)に溶解し、ブラインで洗浄して、Na2SO4で脱水し、濾過して減圧濃縮し、メチル3-(3-ブロモフェニル)-3H-イミダゾ[4,5-b]ピリジン-6-カルボキシラート 6(335g、92.83%)をオフホワイト色の固体として供給した。
1H NMR (400 MHz, DMSO-d6): δ = 9.12 (s, 1H), 9.03 (d, J = 2.00 Hz, 1H), 8.67 (d, J = 2 Hz, 1H), 8.27-8.26 (m, 1H), 8.04-8.01 (m, 1H), 7.73-7.71 (m, 1H), 7.63-7.59 (m, 1H), 3.94 (s, 3H); LCMS (ESI): m/z: 334.0 (M+H)+。
-20℃の無水THF(600mL)中のメチル3-(3-ブロモフェニル)-3H-イミダゾ[4,5-b]ピリジン-6-カルボキシラート 6(50g、150.53mmol)の撹拌された懸濁液に、MeMgCl溶液[(72mL、143.92mmol);THF中の2M]を窒素雰囲気下で30分の期間に滴加した。反応混合物を-20℃~0℃の反応温度に保持しながら、窒素雰囲気下で3.5時間撹拌した。反応の進行をTLCおよびUPLCによりモニタリングした。3.5時間後に、反応塊を飽和塩化アンモニウム溶液(1500mL)でクエンチし、水層を酢酸エチル(1000mLで3回)で抽出して、ひとまとめにした有機層を飽和ブライン溶液(500mL)で洗浄し、無水硫酸ナトリウムで脱水し、濾過して濃縮し、粗製の塊状物(51g、102%物質収支)を褐色ガム状物として供給した。粗製物を、ヘキサン中の20%酢酸エチルを溶離液として用いた中性アルミナのベッドのフラッシュカラムにより精製して、所望の生成物2-(3-(3-ブロモフェニル)-3H-イミダゾ[4,5-b]ピリジン-6-イル)プロパン-2-オール 7(22g、44%)を褐色ガム状物として供給した。
1H NMR (400 MHz, DMSO-d6): δ = 8.95 (s, 1H), 8.62 (s, 1H), 8.33 (s, 1H), 8.23 (s, 1H), 8.06 (d, J = 8.00 Hz, 1H), 7.65 (d, J = 8.00 Hz, 1H), 7.59-7.55 (m, 1H), 5.32 (s, 1H, 交換可能なプロトン), 1.55 (s, 6H); LCMS (ESI): m/z: 334.0 (M+H)。
1,2-ジメトキシエハン(ehane):水[2:1;(45mL)]の混合物中の2-(3-(3-ブロモフェニル)-3H-イミダゾ[4,5-b]ピリジン-6-イル)プロパン-2-オール 7(0.75g、2.25mmol)の撹拌された溶液に、2,4-ジメトキシピリミジン-5-ボロン酸 8(0.456g、2.48mmol)を、続いてNa2CO3(0.478g、4.51mmol)を添加した。混合物を窒素ガスで25分間脱気した。ビス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(II)二塩酸塩(0.079g、0.112mmol)を上記反応混合物に添加して、窒素雰囲気下で90℃まで加熱した。反応の進行をTLCおよびUPLCによりモニタリングした。15時間後に、反応混合物を放置して周囲温度に到達させ、冷水(75mL)でクエンチした。水性部分を酢酸エチル(200mLで3回)で抽出し、ひとまとめにした有機層をブライン(50mLで2回)で洗浄して、無水硫酸ナトリウムで脱水し、濾過して濃縮し、粗製物(0.865g;物質収支97.8%)を褐色ガム状物として供給した。粗製物を、ヘキサン中の50%酢酸エチルを溶離液として用いたフラッシュカラムにより精製して、所望の生成物(0.575g)をオフホワイト色の固体として供給し、さらに研和して、吸引により濾過および乾燥させ、2-(3-(3-(2,4-ジメトキシピリミジン-5-イル)フェニル)-3H-イミダゾ[4,5-b]ピリジン-6-イル)プロパン-2-オール(1)(0.5g、56.62%)をオフホワイト色の固体として供給した。
1H NMR (400 MHz, DMSO-d6): δ = 8.94 (s, 1H), 8.60 (d, J = 2.00 Hz, 1H), 8.54 (s, 1H), 8.24 (d, J = 2.00 Hz, 1H), 8.13-8.12 (m, 1H), 8.01-7.98 (m, 1H), 7.70-7.63 (m, 2H), 5.3 (s, 1H, 交換可能なプロトン), 3.98 (d, J = 4.00 Hz, 6H), 1.55 (s, 6H); LCMS (ESI): m/z: 392.3 (M+H)+、MR:86.0℃~93.4℃。
組換えGABA α3β3γ2受容体の安定した発現を有するHEK-293細胞株を、Ultraglutamine 1、4500mg/l D-グルコース、10%ウシ胎仔血清を有し、以下の抗生物質:zeocin(0.1mg/ml)、ハイグロマイシンB(0.15mg/ml)およびG418(0.5mg/ml)を含有するダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)中で培養した(37℃、5%CO2)。
実験の当日、膜調製物を室温で解凍して、2℃および27,000×gで10分間遠心分離した。ペレットをTrisクエン酸塩緩衝液(50mM、pH7.1)中でUltra-Turraxホモジナイザーを利用して30~150μgタンパク質/アッセイに再懸濁させ、その後、結合アッセイに用いた。細胞懸濁液のアリコット0.5mlを検査溶液25μlおよび3H-フルマゼニル(1nM最終濃度)25μlに添加して混合し、二重測定として2℃で40分間インキュベートした。非特異的結合を、クロナゼパム(1μM最終濃度)を使用して決定した。
2-(3-(3-(2,4-ジメトキシピリミジン-5-イル)フェニル)-3H-イミダゾ[4,5-b]ピリジン-6-イル)プロパン-2-オール(1)は、0.015μMのKi値および0.038μMのIC50値を有することが見出された。
ここで報告されるアッセイは、主な脳GABAA受容体サブタイプでのPAMのインビトロ機能的能力および有効性を決定するために実施される。これを確定するために、全濃度応答プロファイルを、アフリカツメガエル卵母細胞内で発現されるα1β2γ2、α2β2γ2、α3β2γ2およびα5β2γ2受容体からの最大GABA誘導性応答の5~20%を発生するGABA濃度で決定した。
コラゲナーゼで濾胞除去されたアフリカツメガエル卵母細胞を、Ecocyte Bioscienceから得た。注射のために、卵母細胞を改変バース溶液(90mM NaCl、1mM KCl、0.66mM NaNO3、2.4mM NaHCO3、0.74mM CaCl2、0.82mM MgCl2、100μg/mlゲンタマイシンおよびpH7.55に調整された10mM HEPES)中で注文設計されたチャンバー内に配置し、Pico Pump(WPI)を用いてcRNA混合物25~50nlと共に注射した。cRNA混合物は、3:1:3比および総濃度0.5μg/μlのGABAARサブユニットαx、β2およびγ2sを含有している。注射に続いて、卵母細胞を改変バース溶液中、18℃で1~5日間保持した。
アフリカツメガエル卵母細胞の電気生理学的応答を、二電極電圧クランプ法を利用して測定した。単一の卵母細胞を、2ml/分より多量のOR2(90mM NaCl、2.5mM KCl、2.5mM CaCl2、1mM MgCl2および5mM HEPES pH7.4)で継続的に灌流される注文設計の記録チャンバーに配置した。実験アッセイ溶液は、およそ180mOsmの測定モル浸透圧濃度を有する標準のOR2緩衝溶液であった。記録電極は、DMZ-Universalプラー(Zeitz Instrument)を用いてフィラメント(Sutter BF150-110-10)付きのホウケイ酸ガラス管から組み立て、2M KClを埋め戻し、OR2溶液に沈積されると、電極抵抗が0.5~1MΩの範囲内であった。手動のマイクロマニピュレータを用いて卵母細胞を突き刺し、少なくとも1分間-50mV~-80mVの保持電位で平衡にさせて、実験が開始する前に最大漏洩電流が確実に100nAになるようにした。保持電位は通常、典型的な静止電位-25mVよりも有意に低い-60mVに設定した。電流振幅が卵母細胞のバッチで低くなった場合、漏洩電流が100nAを超えないことを条件に、-80mVの保持電位を利用した。電流をGeneclamp 500B増幅器(Axon)により増幅し、20Hzでローパスフィルターにかけて、Digidata 1322A(Axon)により200Hzでデジタル化し、その後、pClamp9スイート(Axon)を用いてPC(Compaq Evo)により記録および解析した。
各実験データセットで、所与のGABAA受容体サブタイプの組み合わせのためのEC5-EC20誘発電流を発生することが知られる濃度(0.5~5μM)のOR2に、GABAを溶解し、その後、この溶液を対照に、そして該化合物を溶解して実験で検査するための原液に用いた。完全な実験セットは、GABAの4種の対照トレースと、参照の0.5μMジアゼパムトレースと、10種のGABA対照トレースと、最後に上昇濃度の検査化合物のトレースと、を含有した。個々の卵母細胞は、1つの実験セットの後に廃棄された。
濃度応答プロファイルから理解され得る通り、化合物1および9によるモジュレーションは、特にα1β2γ2受容体のモジュレーションに関係して、変動する。重要なこととして、α1β2γ2受容体のモジュレーションは、化合物1の場合には0に近似しているが、それは、化合物9では明確に負である。この実施例はまた、2分子間の相対的に小さな構造的差異が生物活性に大きな影響を有することを実証している。
動物:
雄SPRDラット(Taconic)、手術時に140~160グラム
麻酔を誘導して、酸素(30%)および酸化窒素(68%)と組み合わせた2.5%イソフルランにより保持した。坐骨神経を、坐骨神経三枝分岐の近位の大腿中部で露出させた。血管供給が明らかに損なわれないように、4本のクロムガット結紮糸(4/0)(Ethicon、ニュージャージー州ニューブランズウィック所在)で、神経の周囲を1~2mm離して緩く結紮した。上に横たわる筋肉は、4/0合成吸収性縫合糸で筋層を閉創した。皮膚は、1~2個のクリップで閉創した。
手術の3~14日後に、動物を機械的アロディニアの存在についてモニタリングした。評定の前に、個々のラットをホームケージから取り出し、損傷された後足の足底表面に接近できるように高架された金属格子の上に配置された開口部で通気される15×20cm白色Plexiglass検査ケージの中で、ラットを60分間放置して順化させた。機械的アロディニアの存在を、一連の目盛り付きvon Freyヘア(下限=0.1および上限=26g、Stoelting Co、イリノイ州ウッドデール所在)を用いて評定し、その際、ヘアを足底表面に適用して、用いられた個々のフィラメントがちょうど曲がり始めるまで力を加えていった。フィラメントを1~2秒の期間適用し、1~2秒間隔で5回繰り返した。5回の適用のうち3回で足逃避を誘導したフィラメントを、機械的アロディニアの応答が起こる足の閾値(paw threshold threshold)(PWT)を表すと見なした。明らかな神経因性疼痛の行動(アロディニア)を示したそれらの動物のみを、薬物検査の実験に含めた。両側の足で4g以下のPWTを示した動物および対側の足で8g以上のPWTを示した動物を、アロディニアであると見なした。薬物検査の当日、実験担当者には処置について伏せた。薬物処置は、手術後15日目に実施された。
急性薬物効果:
化合物1:経口投与あたり1、3、10mg/kg、10ml/kg。
前処置:2時間
モルヒネ塩酸塩:6mg/kg遊離塩基重量、1ml/kgの皮下投与。
前処置:30分
化合物1およびモルヒネのビヒクル:水中の5%DMSO+30%(2-ヒドロキシプロピル)-β-シクロデキストリン(HPBCD)。
統計学的評価:一元配置分散分析、続いて多重比較のためのフィッシャーLSD検定。
化合物1:経口投与あたり1、3、10mg/kg、10ml/kgを1日1回7日間。
モルヒネ塩酸塩:6mg/kg遊離塩基重量、1ml/kgの皮下投与を1日1回7日間。8日目に、von Freyフィラメントを適用することにより機械的アロディニアをモニタリングし(「基礎レベル」)、その後、ラットに化合物1またはモルヒネ塩酸塩を投与して、投与2時間後および3時間後(化合物1)、または投与30分後(モルヒネ塩酸塩)に再度、von Freyフィラメントにより機械的アロディニアをモニタリングした。
ビヒクル:5%DMSO+30%HPBCD(水中)
統計学的評価:一元配置分散分析、続いて多重比較のためのフィッシャーLSD検定。
化合物1の急性投与は、von Freyヘアを用いて機械的アロディニアをモニタリングすることによる評定では、神経因性疼痛行動の有意な好転をもたらした。最低検査用量の1mg/kgおよび3mg/kgは、処置2時間後および3時間後のモニタリングで、ビヒクル処置に比較して足逃避閾値を有意に増大しており、図2を参照されたい(2時間後:p<0.01、3時間後:p<0.05、一元配置分散分析、続いてフィッシャーLSD事後検定)。ただ10mg/kgでは、統計学的有意性に達することができなかった。モルヒネ塩酸塩6mg/kgもまた、処置2時間後および3時間後にビヒクル処置に比較して足逃避閾値が有意に増大した(それぞれビヒクルに対してp<0.05およびp<0.001)。化合物1の7日の連日投与後、検査の3時間前に1~3、および10mg/kgを前処置された後(それぞれビヒクルに対してp<0.05、0.01および0.01)、そして検査の2時間前に10mg/kg投与された後(ビヒクルに対してp<0.001)に、足逃避閾値の有意な増大が保持された(一元配置分散分析、続いてフィッシャーLSD事後検定)。これに反して、急性薬物投与前のモルヒネでの慢性処置は、アロディニアへの効果を完全に消滅させており、耐性発現が示された(図2)。
この実施例は、化合物1が急性薬物投与後に神経因性疼痛行動を好転させること、およびその効果が慢性薬物投与後に保持されることを実証し、耐性発現がないことを示している。これに反して、オピオイドであるモルヒネ塩酸塩の効果は、耐性発現により慢性投与後に完全に消失する。
動物:
雄CD-1マウス(22~30g)(InterVivo Solutions、カナダ所在)
動物に以下の処置の1つを施した:化合物1、ビヒクル(陰性対照)またはジフェンヒドラミン塩酸塩(陽性対照);N=マウス8匹/群。検査の30分前に、化合物1をビヒクル(水中の5%DMSO+30%HPBCD)中の3、10および30mg/kgの濃度で強制経口投与により投与した。ジフェンヒドラミン塩酸塩は、検査の60分前に蒸留水(BEW=1.14)中の5%Tween 80の中の60mg/kgの用量で強制経口投与により投与した。処置は全て、10ml/kgの投与容量で施された。コンパウンド48/80は、生理食塩水中の50μg/0.02mlで頸部に皮内投与された。
30分にわたる引っ掻き回数の視覚的観察。視覚的評定は、処置について伏せられて実施された。
一元配置分散分析、続いて事後比較のためのフィッシャーLSD検定。
化合物1は、ビヒクル処置に比較した引っ掻き回数で評定すると、最小有効用量を10mg/kgで掻痒を有意に軽減し(それぞれ10および30mg/kgでビヒクル処置に対してp<0.01/0.001、一元配置分散分析、続いて事後比較のためのフィッシャーLSD検定)、図3を参照されたい。
この実施例は、化合物1がマウスにおける引っ掻き行動を有意に好転させることを実証し、掻痒に及ぼすプラスの効果を示している。
動物:
雄SDラット(180~250グラム、NTac:SD、Taconic、デンマーク所在)
動物に以下の処置の1つを施した:検査の120分前に、ビヒクル(水中の5%DMSO+30%HPBCD)または化合物1(経口投与あたり3、10、30mg/kg、10ml/kg)。n=6~7匹/用量群。
投与の2時間後に、おがくずの床敷を減らした新規な標準ホームケージにラットを個別に配置した。フォトセルおよびビームを具備したフレームの中にケージを配置して、自発行動の自動記録を可能にした(TSE MoTil、ドイツ所在)。探索的自発運動を、30分間記録した。
一元配置分散分析、続いて事後比較のためのフィッシャーLSD検定。
化合物1は、検査された最高用量(30mg/kg)では雄SDラットにおける探索的自発運動へのいずれの影響も発揮しておらず(一元配置分散分析、続いて事後比較のためのフィッシャーLSD検定)、図4を参照されたい。
この実施例では、化合物1が検査された用量でラットにおける探索的自発運動に影響を及ぼさなかったことが実証され、鎮静を引き起こす傾向がないことが示される。
動物:
雄SDラット(150~180グラム、NTac:SD、Taconic、デンマーク所在)
動物に以下の処置の1つを施した:それぞれ検査の120分前または60分前に、ビヒクル(水中の5%DMSO+30%HPBCD)、化合物1(経口投与あたり3、10、30mg/kg、10ml/kg)またはジアゼパム10mg/kg(経口投与あたり10ml/kg)。n=6~7匹/用量群。
ラットを、加速するロータロッド(4~40rpm、PanLab)で、薬物検査前の2日間、1日あたり5分間の1トライアルにより訓練した。訓練の2日後に、90秒より長く回転ロッド上に留まることができたラットのみを、この試験に含めた。検査当日に、ラットを回転ロッド上に配置し、4~40rpm/5分の速度で加速し、ロッド上で過ごすことが可能な最小時間を0秒とし、ロッド上で過ごす最大時間を300秒に設定した。化合物1は検査の2時間前に投与したが、陽性対照であるジアゼパムは検査の60分前に投与した。
一元配置分散分析、続いて事後比較のためのフィッシャーLSD検定。
落下までの潜時としての測定で、ビヒクル処置ラットに比較して検査された最高用量(30mg/kg)では、化合物1は加速するロッド上でバランスをとるラットの能力に影響を及ぼさなかった。これに反して、ジアゼパムは、ロッドから落下するまでの時間を有意に短縮させており(ビヒクル処置に対してp<0.05)(一元配置分散分析、続いて事後比較のためのフィッシャーLSD検定)、図5を参照されたい。
この実施例では、化合物1が検査された用量では加速するロッド上でバランスを維持するラットの能力を損なわないことが実証され、運動障害を引き起こす傾向がないことが示される。
このアッセイの目的は、検査化合物が血漿タンパク質に結合する度合いを決定することである。
迅速平衡透析法(RED)のデバイス:
透析膜(MWCO約8000)の垂直円筒により分離された2つの並列チャンバー(血漿および緩衝液)で構成されたディスポーザブルインサートを用いた。REDデバイスをTeflon製ベースプレート内に配置して、100rpmに設定されたHeidolphインキュベータにおいて37℃で4時間インキュベートした。
このアッセイは、以下のアッセイ記述に従ってリキッドハンドリングシステムで実施した:
・スパイクされた血漿の調製
・Teflon製ベースプレート内に関連の数のREDデバイスを配置して、プレートをインキュベータ上で予備加熱する。
・血漿400μlを血漿チャンバーに添加し、PBS緩衝液600μlを緩衝液チャンバーに添加する。
・140rpmに設定されたHeidolphインキュベータ上で37℃で4時間インキュベートする。
・インキュベーション後に、血漿チャンバーの50μlをエッペンドルフ管に移して、PBS緩衝液50μlを添加する。
・相応に、緩衝液チャンバーの50μlをエッペンドルフ管に移して、血漿50μlを添加する。
・試料の全てをMeCN 300μlで沈殿させる。
・5℃および14000rpm(16000g)で25分間遠心分離する。
・上清を同容量のMilliQ水と共にHPLCバイアルに移す。
・LC-MS/MSおよびSRM検出により分析する。
蛋白質結合を、以下の式を利用して計算した。
(式中、
Abufferは、緩衝液チャンバーからの試料についてLC-MS/MSにより決定された面積である。
Aplasmaは、血漿チャンバーからの試料についてLC-MS/MSにより決定された面積である。)
化合物1は、薬理学的効果を発揮するほど豊富に血漿中で遊離している。
この実施例の目的は、迅速平衡透析(RED)法を利用したラット脳ホモジネートへの化合物1のタンパク質結合を評価することである。
ラット脳ホモジネート
ラット脳タンパク質画分を、成体ウィスターラットから単離された新鮮な脳組織から調製した。雄ウィスターラット(Harlan、オランダ所在)を安楽死させて(認可された方法により)、直ちに脳組織を回収した。白質を解離して、組織ホモジネート(10%w/v)をリン酸緩衝生理食塩水pH7.4で調製した。この画分を脳ホモジネートと呼び、この実験で使用した。
Teflon製ベースプレートの調製
Teflon(登録商標)製ベースプレートのウェルを20%エタノールで10分間すすいだ。エタノールを除去し、ウェルを蒸留水で2回すすぎ、その後、プレートを使用前に放置して乾燥させた。
化合物1(100%DMSO中の2mM 保存液)1μlを脳抽出液200μlに添加した(最終濃度10μM)。試料200μlを試料チャンバー内に入れた。10mM PBS 350μlを緩衝液チャンバー内に添加した。この装置をシーリングテープで覆い、およそ350rpmのオービタルシェーカにおいて37℃で4時間インキュベートして、平衡にした。その後、緩衝液チャンバーと抽出液チャンバーの両方から同容量を取り出し、別のマイクロ遠沈管に入れた。
各透析後試料50μlを、緩衝液チャンバーおよび抽出液チャンバーから別のマイクロ遠沈管へピペットで移した。抽出液50μlを緩衝液試料に添加し、同様に同容量のPBSを回収された抽出試料に添加した。沈殿緩衝液(90/10 アセトニトリル:0.1%ギ酸含有水+内部標準、つまりトルブタミドまたはイブプロフェン、5μg/ml)300μlを添加してタンパク質を沈殿させ、化合物を放出させて、ボルテックス処理し、13,000~15,000gでの10分の遠心分離の前に氷上で30分間インキュベートした。その後、上清をバイアルまたは96ウェルプレートに移して、LC/MS/MSによる定量測定を実施した。緩衝液チャンバーおよび抽出液チャンバー中の化合物1の濃度を、内部標準に相対的なピーク面積から決定した。
非結合画分(fu)を、以下の式を利用して計算した:
(式中、
Abufferは、緩衝液チャンバーからの試料についてLC-MS/MSにより決定された面積である。
Abrain homogenateは、脳ホモジネートチャンバーからの試料についてLC-MS/MSにより決定された面積である。)
化合物1は、薬理学的効果を発揮するほど豊富に脳内で遊離している。
この実施例の目的は、薬物動態データを得ることである。血漿試料は、典型的には6~8のタイムポイントで採取した(N=3~4)。試料を、10の標準を用い、長い標準曲線を利用して分析した。血漿試料をタンパク質沈殿させて、LC-MS/MSを用いた分析後にリキッドハンドリングシステムを利用して希釈した。
標準の調製
2つの各標準セットを、典型的には以下の濃度レベルで調製した:1、3、10、100、300、1,000、3,000、5,000および10,000ng/ml。第一の標準セットを、実行の開始時に分析し、較正に使用した。第二の標準セットは、実行の終了時に分析し、QCとして使用した。
・血漿50μlをアセトニトリル中の内部標準150μlで沈殿させた。
・次に、5℃および16,000g(Eppendorf管)または3,000gマイクロタイタープレート(MTP)で25分間遠心分離。
・上清50μlおよび150Milli-Q水をHPLCバイアル/MTPに移した。
承認基準
検量線上の各ポイントは、公称値から15%変動することが許容される(LLOQは、20%変動し得る)。ポイントがより大きく変動する場合、それは除外され得る。標準曲線は、最低でも5ポイント含まなければならず、2つの連続するポイントを除外してはならない。QCは、検量線の中では標準と同じ承認基準を有する。
化合物1は、ラットにおいて長い半減期および低いクリアランスを示す。化合物1はまた、用量直線性(Cmax)、高い血漿暴露および高い暴露を示す。
このアッセイでは、化合物1を凍結保存された肝細胞と共に異なるタイムポイントでインキュベートして、化合物1の消失をLC-MS/MSによりモニタリングした。このアッセイで用いられた条件を、以下に要約する。
・アッセイでの化合物濃度:1μM
・肝細胞とのインキュベーションの時間:37℃および5%CO2で0、15、30、60、90および120分
・肝細胞の細胞密度:106細胞/ml
・アッセイ容量:500μl
・測定の重複数:2
・参照化合物:テストステロン(高クリアランス)
化合物1は、ヒトおよびラット肝細胞において低クリアランスを有する。
Claims (12)
- 式1:
- 請求項1に記載の化合物の治療有効量を含む医薬組成物。
- 薬品中での使用のための、請求項1に記載の化合物。
- 神経因性疼痛の処置における使用のための、請求項1に記載の化合物。
- 前記神経因性疼痛が、アロディニアである、請求項4に記載の使用のための化合物。
- 掻痒の処置における使用のための、請求項1に記載の化合物。
- 前記掻痒が、皮膚掻痒症である、請求項6に記載の使用のための化合物。
- 前記掻痒が、皮膚病により引き起こされる、請求項6に記載の使用のための化合物。
- 前記皮膚病が、乾癬である、請求項8に記載の使用のための化合物。
- 前記皮膚病が、湿疹である、請求項8に記載の使用のための化合物。
- 請求項1に記載の化合物を含む、神経因性疼痛および/または掻痒の処置における使用のための組成物。
- 神経因性疼痛および/または掻痒の処置のための医薬の製造における、請求項1に記載の化合物の使用。
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