JP7290305B2 - 例外的なスプライシング活性を有するスプリットインテイン - Google Patents
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Description
本出願は、2016年1月29日に出願された米国仮出願第62/288,661号の優先権を主張し、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。
本発明の特許請求の範囲に記載されている実施形態の分野は、インテイン、スプリットインテイン、インテインを含んでなる組成物、およびタンパク質エンジニアリングのためのそれらの使用方法に関する。
タンパク質スプライシングは、隣接するポリペプチド配列(エクステイン)が通常のペプチド結合を介して一緒にライゲーションされるように、インテインと呼ばれる介在タンパク質ドメインが宿主タンパク質から無傷で自己切断される翻訳後自己分解事象である1。タンパク質スプライシングは、典型的には、連続したポリペプチドの翻訳後に自発的に起こるが、いくつかのインテインは分割された形態で自然に存在する1。スプリットインテインの2つの断片は別々に発現され、それらの相補的なパートナーに遭遇するまで不活性のままであり、遭遇したら協調的に折り畳まれてトランススプライシングされる。この活性は、インビトロおよびインビボの両方でタンパク質の構造および活性の制御を提供する多数のタンパク質エンジニアリング方法において利用されている1。シアノバクテリアSynechocystis種PCC6803(Ssp)およびNostoc punctiforme PCC73102(Npu)から特徴付けられる最初の2つのスプリットインテインは、DNAポリメラーゼIII(DnaE)のα-サブユニットに挿入された天然に存在するオルソログである2-4。Npuは、タンパク質トランス-スプライシング(PTS)(30℃でt1/2=50秒)の顕著に速い速度のために特に注目に値する5。この半減期は、Ssp(30℃でt1/2=80分)の半減期よりもかなり短いことから、PTSの適用範囲が広がることになる1。
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGL(配列番号1)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるスプリットインテインN断片が含まれる。
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGLDLKQVDGLP(配列番号2)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるスプリットインテインN断片が含まれる。
VKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号3)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるスプリットインテインC断片が含まれる。
MVKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号4)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるスプリットインテインC断片が含まれる。
VKIISRKSLGTQNVYDIGVGEPHNFLLKNGLVASN(配列番号389)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるスプリットインテインC断片が含まれる。
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGL(配列番号1)または
下記配列:
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGLDLKQVDGLP(配列番号2)
に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるスプリットインテインN断片と、
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号3)、
下記配列:
MVKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号4)または
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVGEPHNFLLKNGLVASN(配列番号389)
に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列と
を含むスプリットインテインC断片と
を含んでなる組成物が含まれる。
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGL(配列番号1)または
下記配列:
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGLDLKQVDGLP(配列番号2)
に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるスプリットインテインN断片をコードするヌクレオチド配列を含んでなるヌクレオチドプラスミドが含まれる。
VKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号3)、
下記配列:
MVKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号4)または
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVGEPHNFLLKNGLVASN(配列番号389)
に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるスプリットインテインC断片をコードするヌクレオチド配列を含んでなるヌクレオチドプラスミドが含まれる。
下記配列:
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGL(配列番号1)または
下記配列:
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGLDLKQVDGLP(配列番号2)
に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなり、かつスプリットインテインC断片は、
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号3)、
下記配列:
MVKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号4)または
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVGEPHNFLLKNGLVASN(配列番号389)
に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなる。
下記配列:
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGL(配列番号1)または
下記配列:
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGLDLKQVDGLP(配列番号2)
に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなり、かつスプリットインテインC断片は、
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号3)、
下記配列:
MVKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号4)または
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVGEPHNFLLKNGLVASN(配列番号389)
に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなる。
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGLDLKQVDGLPVKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号390)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるインテインが含まれる。
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGL(配列番号1)または
下記配列:
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGLDLKQVDGLP(配列番号2)
に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるスプリットインテインN断片;
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号3)、
下記配列:
MVKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号4)または
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVGEPHNFLLKNGLVASN(配列番号389)
に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるスプリットインテインC断片;
スプリットインテインN断片のスプリットインテインC断片への結合を可能にしてインテイン中間体を形成するための試薬;および求核剤
を含んでなる、キットが含まれる。
下記配列:
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGL(配列番号1)または
下記配列:
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGLDLKQVDGLP(配列番号2)
に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなり、かつスプリットインテインC断片は、
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号3)、
下記配列:
MVKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号4)または
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVGEPHNFLLKNGLVASN(配列番号389)
に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなる。
下記配列:
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGL(配列番号1)を含んでなる第1のインテイン断片(スプリットインテインN断片)のアミノ酸配列をコードする第1のヌクレオチド配列を、
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号3)を含んでなる第2のインテイン断片(スプリットC断片)のアミノ酸配列をコードする第2のヌクレオチド配列と融合させる工程。
下記配列:
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGL(配列番号1)または
下記配列:
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGLDLKQVDGLP(配列番号2)
に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなり、かつスプリットインテインC断片は、
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号3)、
下記配列:
MVKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号4)または
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVGEPHNFLLKNGLVASN(配列番号389)
に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなる。
VKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号3)を含んでなる第2のインテイン断片(スプリットインテインC断片)のアミノ酸配列をコードする第2のヌクレオチド配列と融合してなる、
下記配列:
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGL(配列番号1)を含んでなる第1のインテイン断片(スプリットインテインN断片)のアミノ酸配列をコードする第1のヌクレオチド配列を含んでなる遺伝子融合物が含まれる。
下記配列:
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGL(配列番号1)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%もしくは100%の配列同一性を有するアミノ酸配列、または
下記配列:
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGLDLKQVDGLP(配列番号2)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%もしくは100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなる。
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号3)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%もしくは100%の配列同一性を有するアミノ酸配列、
下記配列:
MVKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号4)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%もしくは100%の配列同一性を有するアミノ酸配列、または
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVGEPHNFLLKNGLVASN(配列番号389)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%もしくは100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなる。デンドリマーは、下記構造を有する化合物であってもよい:
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号3)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%もしくは100%の配列同一性を有するアミノ酸配列、
下記配列:
MVKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号4)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%もしくは100%の配列同一性を有するアミノ酸配列、または
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVGEPHNFLLKNGLVASN(配列番号389)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%もしくは100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなる。
本発明の実施形態を以下に詳細に説明する。分かりやすくする意味で、実施形態を説明する際には特定の用語を使用する。しかしながら、本発明は、そのように選択された特定の用語に限定されることを意図するものではない。当業者であれば、本発明の精神および範囲から逸脱することなく、他の均等部分を用いて、他の方法を開発できることを認識するであろう。本明細書に引用される全ての参考文献は、各々が個々に組み込まれているかのように、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGL(配列番号1)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるスプリットインテインN断片が含まれる。
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGLDLKQVDGLP(配列番号2)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるスプリットインテインN断片が含まれる。
VKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号3)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるスプリットインテインC断片が含まれる。
MVKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号4)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるスプリットインテインC断片が含まれる。
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGL(配列番号1)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるスプリットインテインN断片と、
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号3)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるスプリットインテインC断片と
を含んでなる組成物が含まれる。
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGL(配列番号1)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるスプリットインテインN断片をコードするヌクレオチド配列を含んでなるヌクレオチドプラスミドが含まれる。
VKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号3)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるスプリットインテインC断片をコードするヌクレオチド配列を含んでなるヌクレオチドプラスミドが含まれる。
インテイン中間体を反応させて第1の化合物と第2の化合物とのコンジュゲートを形成する工程を少なくとも含んでなる、2つの複合体をスプライシングするための方法が含まれ、ここで、前記スプリットインテインN断片は、
下記配列:
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGL(配列番号1)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなり、かつ、前記スプリットインテインC断片は、
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号3)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなる。いくつかの実施形態において、インテイン中間体を反応させることは、インテイン中間体と求核剤とを接触させることを含む。いくつかの実施形態において、前記第1の化合物はポリペプチドである。いくつかの実施形態において、前記第1の化合物は抗体である。
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGLDLKQVDGLPVKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号390)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるインテインが含まれる。
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGL(配列番号1)
に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるスプリットインテインN断片;
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号3)に対して少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、99%または100%の配列同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるスプリットインテインC断片;
スプリットインテインN断片のスプリットインテインC断片への結合を可能にしてインテイン中間体を形成するための試薬;および
求核剤を含んでなる、キットが含まれる。
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGL(配列番号1)を含んでなる第1のインテイン断片のアミノ酸配列をコードする第1のヌクレオチド配列を、
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号3)を含んでなる第2のインテイン断片のアミノ酸配列をコードする第2のヌクレオチド配列と融合させる工程を少なくとも含んでなることを特徴とする方法が含まれる。
VKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号3)を含んでなる第2のインテイン断片のアミノ酸配列をコードする第2のヌクレオチド配列と融合してなる、
下記配列:
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGL(配列番号1)を含んでなる第1のインテイン断片のアミノ酸配列をコードする第1のヌクレオチド配列を含んでなる遺伝子融合物が含まれる。
いくつかの実施形態において、最初の2つの特徴付けられたスプリットインテインであるNpuおよびSspの比較研究を通じて、速やかなタンパク質スプライシングの基礎を調べた。これらの2つのタンパク質間のスプライシング速度の実質的差異は、それらの非常に類似した配列(63%の同一性)およびほぼ重ね合わせることができる活性部位構造を考慮に入れると、特に判別しにくい。NpuおよびSspに関する以前の突然変異誘発研究は、2つの間の活性の差異が、単一の部位ではなく、いくつかの残基の複合効果に起因する可能性が高いことを示唆している6,8。しかしながら、速い反応速度と緩慢な反応速度に関与する残基の数や、その延長線上で考えて、これらの「アクセラレータ」残基がタンパク質スプライシングプロセス全体の個々の化学的ステップに等しく寄与しているかどうかは、はっきりしないままである。したがって、これらの疑問点を調査し、これがPTSシステム改善の出発点を提供するという期待を抱いて研究を開始した。
材料
オリゴヌクレオチドおよび合成遺伝子は、Integrated DNA Technologies(Coralville,IA)から購入した。QuickChange XL II部位特異的突然変異誘発キットおよびPfu Ultra II Hotsart融合ポリメラーゼは、Agilent(La Jolla、CA)から購入した。全ての制限酵素および2x Gibson Assembly Master Mixは、New England Biolabs(Ipswich、MA)から購入した。クローニングおよびタンパク質発現に使用した「インハウス」の高コンピテンシー細胞は、Invitrogen(Carlsbad、CA)から購入したOne Shot Bl21(DE3)ケミカリーコンピテント大腸菌およびサブクローニング効率DH5αコンピテント細胞から生成した。ダルベッコ変法イーグル培地(DMEM)、リポフェクタミン2000、および低IgGウシ胎児血清は、Invitrogenからも購入した。DNA精製キットはQiagen(Valencia、CA)から購入した。全てのプラスミドは、GENEWIZ(South Plainfield、NJ)により配列決定した。N,N-ジイソプロピルエチルアミン(DIPEA)、Luria Bertani(LB)培地、および全ての緩衝塩は、Fisher Scientific(Pittsburgh、PA)から購入した。ジメチルホルムアミド(DMF)、ジクロロメタン(DCM)、クマシーブリリアントブルー、トリイソプロピルシラン(TIS)、β-メルカプトエタノール(BME)、DL-ジチオスレイトール(DTT)、2-メルカプトエタンスルホン酸ナトリウム(MESNa)、テトラキス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(0)Pd(PPh3)4)、および5(6)-カルボキシフルオレセインは、Sigma-Aldrich(Milwaukee、WI)から購入し、さらに精製することなく使用した。トリス(2-カルボキシエチル)ホスフィン塩酸塩(TCEP)およびイソプロピル-β-D-チオガラクトピラノシド(IPTG)は、Gold Biotechnology(St.Louis、MO)から購入した。使用したプロテアーゼインヒビターは、Roche Completeプロテアーゼインヒビター(Roche、Branchburg、NJ)であった。ニッケル-ニトリロトリ酢酸(Ni-NTA)樹脂は、Thermo scientific(Rockford、IL)から購入した。Fmocアミノ酸は、Novabiochem(Darmstadt、Germany)またはBachem(Torrance、CA)から購入した。(7-アザベンゾトリアゾール-1-イルオキシ)トリピロリジノホスホニウムヘキサフルオロホスフェート(PyAOP)およびO-(ベンゾトリアゾール-1-イル)-N,N,N‘,N’-テトラメチルウロニウムヘキサフルオロホスフェート(HBTU)は、Genscript(Piscataway、NJ)から購入した。Rink Amide-ChemMatrix樹脂は、Biotage(Charlotte、NC)から購入した。トリフルオロ酢酸(TFA)は、Halocarbon(North Augusta、SC)から購入した。イムノブロットPVDF膜(0.2μm)およびCriterion XTビス-トリスゲル(12%ポリアクリルアミド)は、Bio-Rad(Hercules、CA)から購入した。MES-SDSランニングバッファーは、Boston Bioproducts(Ashland、MA)から購入した。抗マウスIgG二次抗体(Licorマウス800)およびマウスαActin一次抗体は、Li-COR biotechnology(Lincoln、NE)から購入した。
分析用RP-HPLCは、C18Vydacカラム(5μm、4.6×150mm)を備えたHewlett-Packard 1100および1200シリーズ装置で流速1mL/分で行った。分取RP-HPLCは、Waters 2545 Binary Gradient ModuleおよびWaters 2489 UV検出器からなるWaters prep LCシステムで行った。精製は、18mL/分の流速でC18Vydac 218TP1022カラム(10μM;22×250mm)で行った。全ての分析は、水(溶媒A)中0.1%TFA(トリフルオロ酢酸)および0.1%TFAを含む水(溶媒B)中90%アセトニトリルを使用した。特に明記しない限り、ペプチドおよびタンパク質は、以下のグラジエントを使用して分析した:2分間で0%B(アイソクラティック)、続けて30分間にわたり0~73%B。エレクトロスプレーイオン化質量分析(ESI-MS)は、Bruker Daltonics MicroTOF-Q II質量分析計で行った。サイズ排除クロマトグラフィーは、Superdex S75 16/60(CV=125mL)カラムを使用して、AKTA FPLCシステム(GE Healthcare)で行った。クーマシー染色されたゲルおよびウェスタンブロットをLI-CORオデッセイ赤外線画像装置を用いて画像化した。蛍光ゲルは、GE ImageQuant LAS 4000 Imagerを用いて画像化した。スプライシング依存性大腸菌増殖アッセイは、Molecular DevicesからのVersaMaxチューナブルマイクロプレートリーダーで行った。細胞溶解は、S-450D Branson Digital Sonifierを用いて行った。
大腸菌発現のための全てのN-インテイン構築物を、予め使用したpETおよびpTXB1ベクターにクローニングした1。WT pet30-His6-SUMO-AEY-SspN、pet30-His6-SUMO-AEY-NpuN、pTXB1-SspC-MxeGyrA His6、およびpTXB1-NpuC-MxeGyrA-His6プラスミドをコードするプラスミドを、前述のようにクローニングし、以下のタンパク質配列をコードする。SUMO切断(N-インテイン)またはチオール開裂(C-インテイン)後のタンパク質産物は、全てのプラスミドについて太字で示す。
WT Ssp N :pet30-His 6 -SUMO-AEY-Ssp N
MGSSHHHHHHGSGLVPRGSASMSDSEVNQEAKPEVKPEVKPETHINLKVSDGSSEIFFKIKKTTPLRRLMEAFAKRQGKEMDSLRFLYDGIRIQADQTPEDLDMEDNDIIEAHREQIGGAEYCLSFGTEILTVEYGPLPIGKIVSEEINCSVYSVDPEGRVYTQAIAQWHDRGEQEVLEYELEDGSVIRATSDHRFLTTDYQLLAIEEIFARQLDLLTLENIKQTEEALDNHRLPFPLLDAGTIK(配列番号361)
WT Npu N :pet30-His 6 -SUMO-AEY-Np uN
MGSSHHHHHHGSGLVPRGSASMSDSEVNQEAKPEVKPEVKPETHINLKVSDGSSEIFFKIKKTTPLRRLMEAFAKRQGKEMDSLRFLYDGIRIQADQTPEDLDMEDNDIIEAHREQIGGAEYALSYETEILTVEYGLLPIGKIVEKRIECTVYSVDNNGNIYTQPVAQWHDRGEQEVFEYCLEDGSLIRATKDHKFMTVDGQMLPIDEIFERELDLMRVDNLPN(配列番号362)
WT Ssp C :pTXB1-Ssp C -MxeGyrA-His 6
MVKVIGRRSLGVQRIFDIGLPQDHNFLLANGAIAANCITGDALVALPEGESVRIADIVPGARPNSDNAIDLKVLDRHGNPVLADRLFHSGEHPVYTVRTVEGLRVTGTANHPLLCLVDVAGVPTLLWKLIDEIKPGDYAVIQRSAFSVDCAGFARGKPEFAPTTYTVGVPGLVRFLEAHHRDPDAQAIADELTDGRFYYAKVASVTDAGVQPVYSLRVDTADHAFITNGFVSHAHHHHHH(配列番号363)
WT Npu C :pTXB1-Npu C -MxeGyrA-His 6
MIKIATRKYLGKQNVYDIGVERDHNFALKNGFIASNCITGDALVALPEGESVRIADIVPGARPNSDNAIDLKVLDRHGNPVLADRLFHSGEHPVYTVRTVEGLRVTGTANHPLLCLVDVAGVPTLLWKLIDEIKPGDYAVIQRSAFSVDCAGFARGKPEFAPTTYTVGVPGLVRFLEAHHRDPDAQAIADELTDGRFYYAKVASVTDAGVQPVYSLRVDTADHAFITNGFVSHAHHHHHH(配列番号364)
バッチ1:Pet30-His 6 -SUMO-AEY-Ssp N (R73K,L75M,Y79G,L81M)
MGSSHHHHHHGSGLVPRGSASMSDSEVNQEAKPEVKPEVKPETHINLKVSDGSSEIFFKIKKTTPLRRLMEAFAKRQGKEMDSLRFLYDGIRIQADQTPEDLDMEDNDIIEAHREQIGGAEYCLSFGTEILTVEYGPLPIGKIVSEEINCSVYSVDPEGRVYTQAIAQWHDRGEQEVLEYELEDGSVIRATSDHKFMTTDGQMLAIEEIFARQLDLLTLENIKQTEEALDNHRLPFPLLDAGTIK(配列番号365)
Ssp N R73K:Pet30-His 6 -SUMO-AEY-Ssp N (R73K)
MGSSHHHHHHGSGLVPRGSASMSDSEVNQEAKPEVKPEVKPETHINLKVSDGSSEIFFKIKKTTPLRRLMEAFAKRQGKEMDSLRFLYDGIRIQADQTPEDLDMEDNDIIEAHREQIGGAEYCLSFGTEILTVEYGPLPIGKIVSEEINCSVYSVDPEGRVYTQAIAQWHDRGEQEVLEYELEDGSVIRATSDHKFLTTDYQLLAIEEIFARQLDLLTLENIKQTEEALDNHRLPFPLLDAGTIK(配列番号366)
Ssp N R73K Y79G:Pet30-His 6 -SUMO-AEY-Ssp N (R73K、Y79G)
MGSSHHHHHHGSGLVPRGSASMSDSEVNQEAKPEVKPEVKPETHINLKVSDGSSEIFFKIKKTTPLRRLMEAFAKRQGKEMDSLRFLYDGIRIQADQTPEDLDMEDNDIIEAHREQIGGAEYCLSFGTEILTVEYGPLPIGKIVSEEINCSVYSVDPEGRVYTQAIAQWHDRGEQEVLEYELEDGSVIRATSDHKFLTTDGQLLAIEEIFARQLDLLTLENIKQTEEALDNHRLPFPLLDAGTIK(配列番号367)
Ssp N R73K Y79G L81M:Pet30-His 6 -SUMO-AEY-Ssp N (R73K、Y79G、L81M)
MGSSHHHHHHGSGLVPRGSASMSDSEVNQEAKPEVKPEVKPETHINLKVSDGSSEIFFKIKKTTPLRRLMEAFAKRQGKEMDSLRFLYDGIRIQADQTPEDLDMEDNDIIEAHREQIGGAEYCLSFGTEILTVEYGPLPIGKIVSEEINCSVYSVDPEGRVYTQAIAQWHDRGEQEVLEYELEDGSVIRATSDHKFLTTDGQMLAIEEIFARQLDLLTLENIKQTEEALDNHRLPFPLLDAGTIK(配列番号368)
バッチ2:Pet30-His 6 -SUMO-AEY-Ssp N (L56F、S70K、A83P、E85D)
MGSSHHHHHHGSGLVPRGSASMSDSEVNQEAKPEVKPEVKPETHINLKVSDGSSEIFFKIKKTTPLRRLMEAFAKRQGKEMDSLRFLYDGIRIQADQTPEDLDMEDNDIIEAHREQIGGAEYCLSFGTEILTVEYGPLPIGKIVSEEINCSVYSVDPEGRVYTQAIAQWHDRGEQEVFEYELEDGSVIRATKDHRFLTTDYQLLPIDEIFARQLDLLTLENIKQTEEALDNHRLPFPLLDAGTIK(配列番号369)
Ssp N A83P:Pet30-His 6 -SUMO-AEY-Ssp N (A83P)
MGSSHHHHHHGSGLVPRGSASMSDSEVNQEAKPEVKPEVKPETHINLKVSDGSSEIFFKIKKTTPLRRLMEAFAKRQGKEMDSLRFLYDGIRIQADQTPEDLDMEDNDIIEAHREQIGGAEYCLSFGTEILTVEYGPLPIGKIVSEEINCSVYSVDPEGRVYTQAIAQWHDRGEQEVLEYELEDGSVIRATSDHRFLTTDYQLLPIEEIFARQLDLLTLENIKQTEEALDNHRLPFPLLDAGTIK(配列番号370)
Ssp N S70K A83P:Pet30-His 6 -SUMO-AEY-Ssp N (S70K、A83P)
MGSSHHHHHHGSGLVPRGSASMSDSEVNQEAKPEVKPEVKPETHINLKVSDGSSEIFFKIKKTTPLRRLMEAFAKRQGKEMDSLRFLYDGIRIQADQTPEDLDMEDNDIIEAHREQIGGAEYCLSFGTEILTVEYGPLPIGKIVSEEINCSVYSVDPEGRVYTQAIAQWHDRGEQEVLEYELEDGSVIRATKDHRFLTTDYQLLPIEEIFARQLDLLTLENIKQTEEALDNHRLPFPLLDAGTIK(配列番号371)
Ssp N L56,S70K,A83P:Pet30-His 6 -SUMO-AEY-Ssp N (L56F、S70K、A83P)
MGSSHHHHHHGSGLVPRGSASMSDSEVNQEAKPEVKPEVKPETHINLKVSDGSSEIFFKIKKTTPLRRLMEAFAKRQGKEMDSLRFLYDGIRIQADQTPEDLDMEDNDIIEAHREQIGGAEYCLSFGTEILTVEYGPLPIGKIVSEEINCSVYSVDPEGRVYTQAIAQWHDRGEQEVFEYELEDGSVIRATKDHRFLTTDYQLLPIEEIFARQLDLLTLENIKQTEEALDNHRLPFPLLDAGTIK(配列番号372)
バッチ3:Pet30-His 6 -SUMO-AEY-Ssp N (S23E、E24K、E25R、N27E)
MGSSHHHHHHGSGLVPRGSASMSDSEVNQEAKPEVKPEVKPETHINLKVSDGSSEIFFKIKKTTPLRRLMEAFAKRQGKEMDSLRFLYDGIRIQADQTPEDLDMEDNDIIEAHREQIGGAEYCLSFGTEILTVEYGPLPIGKIVEKRIECSVYSVDPEGRVYTQAIAQWHDRGEQEVLEYELEDGSVIRATSDHRFLTTDYQLLAIEEIFARQLDLLTLENIKQTEEALDNHRLPFPLLDAGTIK(配列番号373)
バッチ4:Pet30-His 6 -SUMO-AEY-Ssp N (P35N、E36N、R38N、V39I)
MGSSHHHHHHGSGLVPRGSASMSDSEVNQEAKPEVKPEVKPETHINLKVSDGSSEIFFKIKKTTPLRRLMEAFAKRQGKEMDSLRFLYDGIRIQADQTPEDLDMEDNDIIEAHREQIGGAEYCLSFGTEILTVEYGPLPIGKIVSEEINCSVYSVDNNGNIYTQAIAQWHDRGEQEVLEYELEDGSVIRATSDHRFLTTDYQLLAIEEIFARQLDLLTLENIKQTEEALDNHRLPFPLLDAGTIK(配列番号374)
バッチ5:pTXB1-Ssp C -MxeGyrA-His 6 (V103I、V105I、I106A、G107T)
MIKIATRRSLGVQRIFDIGLPQDHNFLLANGAIAANCITGDALVALPEGESVRIADIVPGARPNSDNAIDLKVLDRHGNPVLADRLFHSGEHPVYTVRTVEGLRVTGTANHPLLCLVDVAGVPTLLWKLIDEIKPGDYAVIQRSAFSVDCAGFARGKPEFAPTTYTVGVPGLVRFLEAHHRDPDAQAIADELTDGRFYYAKVASVTDAGVQPVYSLRVDTADHAFITNGFVSHAHHHHHH(配列番号375)
バッチ6:pTXB1-Ssp C -MxeGyrA-His 6 (R115N、I116V、F117Y)
MVKVIGRRSLGVQNVYDIGLPQDHNFLLANGAIAANCITGDALVALPEGESVRIADIVPGARPNSDNAIDLKVLDRHGNPVLADRLFHSGEHPVYTVRTVEGLRVTGTANHPLLCLVDVAGVPTLLWKLIDEIKPGDYAVIQRSAFSVDCAGFARGKPEFAPTTYTVGVPGLVRFLEAHHRDPDAQAIADELTDGRFYYAKVASVTDAGVQPVYSLRVDTADHAFITNGFVSHAHHHHHH(配列番号376)
バッチ7:pTXB1-Ssp C -MxeGyrA-His 6 (L121V、P122E、Q123R)
MVKVIGRRSLGVQRIFDIGVERDHNFLLANGAIAANCITGDALVALPEGESVRIADIVPGARPNSDNAIDLKVLDRHGNPVLADRLFHSGEHPVYTVRTVEGLRVTGTANHPLLCLVDVAGVPTLLWKLIDEIKPGDYAVIQRSAFSVDCAGFARGKPEFAPTTYTVGVPGLVRFLEAHHRDPDAQAIADELTDGRFYYAKVASVTDAGVQPVYSLRVDTADHAFITNGFVSHAHHHHHH(配列番号377)
バッチ8:pTXB1-Ssp C -MxeGyrA-His 6 (L128A、A130K、A133F)
MVKVIGRRSLGVQRIFDIGLPQDHNFALKNGFIAANCITGDALVALPEGESVRIADIVPGARPNSDNAIDLKVLDRHGNPVLADRLFHSGEHPVYTVRTVEGLRVTGTANHPLLCLVDVAGVPTLLWKLIDEIKPGDYAVIQRSAFSVDCAGFARGKPEFAPTTYTVGVPGLVRFLEAHHRDPDAQAIADELTDGRFYYAKVASVTDAGVQPVYSLRVDTADHAFITNGFVSHAHHHHHH(配列番号378)
Ssp C A136S:pTXB1-Ssp C -MxeGyrA-His 6 (A136S)
MVKVIGRRSLGVQRIFDIGLPQDHNFLLANGAIASNCITGDALVALPEGESVRIADIVPGARPNSDNAIDLKVLDRHGNPVLADRLFHSGEHPVYTVRTVEGLRVTGTANHPLLCLVDVAGVPTLLWKLIDEIKPGDYAVIQRSAFSVDCAGFARGKPEFAPTTYTVGVPGLVRFLEAHHRDPDAQAIADELTDGRFYYAKVASVTDAGVQPVYSLRVDTADHAFITNGFVSHAHHHHHH(配列番号379)
Cfa N :pET30-His 6 -SUMO-AEY-Cfa N
MGSSHHHHHHGSGLVPRGSASMSDSEVNQEAKPEVKPEVKPETHINLKVSDGSSEIFFKIKKTTPLRRLMEAFAKRQGKEMDSLRFLYDGIRIQADQTPEDLDMEDNDIIEAHREQIGGAEYCLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGLDLKQVDGLP(配列番号381)
Cfa C :pTXB1-Cfa C -MxeGyrA-H6
MVKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASNCITGDALVALPEGESVRIADIVPGARPNSDNAIDLKVLDRHGNPVLADRLFHSGEHPVYTVRTVEGLRVTGTANHPLLCLVDVAGVPTLLWKLIDEIKPGDYAVIQRSAFSVDCAGFARGKPEFAPTTYTVGVPGLVRFLEAHHRDPDAQAIADELTDGRFYYAKVASVTDAGVQPVYSLRVDTADHAFITNGFVSHAHHHHHH(配列番号382)
C-エクステインの+2位でのスプライシングの依存性をスクリーニングするために使用されるCfaプラスミドは、スプリットアミノグリコシドホスホトランスェラーゼ(KanR)遺伝子の二重発現系を含む予め生成されたプラスミド2中への制限クローニングを用いて生成した。Cfa二重発現構築物を以下に示す:
[KanRプロモーター]-[RBS]-[KanR N ]-[Cfa N ]-[iRBS]-[Cfa C -[CXN-KanR C ]
プロモーター配列に続いて、このベクター(RBSおよびiRBS)には2つの別個の大腸菌リボソーム結合部位が存在する。各RBSには、分割されたKanR-インテイン構築物の半分が続き、そのタンパク質配列を以下に示す(Cfaインテインは太字で強調している)。
MEQKLISEEDLSHIQRETSCSRPRLNSNMDADLYGYKWARDNVGQSGATIYRLYGKPDAPELFLKHGKGSVANDVTDEMVRLNWLTEFMPLPTIKHFIRTPDDAWLLTTAIPGKTAFQVLEEYPDSGENIVDALAVFLRRLHSIPVCNCPFNSDRVFRLAQAQSRMNNGLVDASDFDDERNGWPVEQVWKEMHKLLPFCLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGLDLKQVDGLP(配列番号384)
MVKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASNCXNSVVTHGDFSLDNLIFDEGKLIGCIDVGRVGIADRYQDLAILWNCLGEFSPSLQKRLFQKYGIDNPDMNKLQFHLMLDEFF(配列番号385)
αDEC205抗体軽鎖(LC)、重鎖(HC)、およびHC-インテイン融合体(HC-NpuN、HC-MchtN、HC-AvaN)を含むpCMVプラスミドを前述のようにして得た3。哺乳動物細胞発現のためのコドン最適化Cfa DnaE配列を、JCAT4を用いて生成し、IDT DNAによるgBlockとして取得した。配列を以下に示す:
HC-Cfa N :pCMV-HC-Cfa N
MGWSCIILFLVATATGVHSEVKLLESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFNDFYMNWIRQPPGQAPEWLGVIRNKGNGYTTEVNTSVKGRFTISRDNTQNILYLQMNSLRAEDTAIYYCARGGPYYYSGDDAPYWGQGVMVTVSSATTKGPSVYPLAPGSAAQTNSMVTLGCLVKGYFPEPVTVTWNSGSLSSGVHTFPAVLQSDLYTLSSSVTVPSSTWPSETVTCNVAHPASSTKVDKKIVPRDCGCKPCICTVPEVSSVFIFPPKPKDVLTITLTPKVTCVVVAISKDDPEVQFSWFVDDVEVHTAQTQPREEQFNSTFRSVSELPIMHQDWLNGKEFKCRVNSAAFPAPIEKTISKTKGRPKAPQVYTIPPPKEQMAKDKVSLTCMITDFFPEDITVEWQWNGQPAENYKNTQPIMDTDGSYFVYSKLNVQKSNWEAGNTFTCSVLHEGLHNHHTEKSLSHSPGKASGGCLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGLDLKQVDGLPGHHHHHHG(配列番号387)
C-エクステインリンカーを有するCfa C-インテインを含むプラスミドを、逆PCRによりプラスミド21中にクローニングし、以下に示すタンパク質配列をコードする:
Cfa C -link:pTXB1-H6-Cfa C -CFNSGG-MxeGyrA-H6
MGHHHHHHSGVKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASNCFNSGGCITGDALVALPEGESVRIADIVPGARPNSDNAIDLKVLDRHGNPVLADRLFHSGEHPVYTVRTVEGLRVTGTANHPLLCLVDVAGVPTLLWKLIDEIKPGDYAVIQRSAFSVDCAGFARGKPEFAPTTYTVGVPGLVRFLEAHHRDPDAQAIADELTDGRFYYAKVASVTDAGVQPVYSLRVDTADHAFITNGFVSHAHHHHHH(配列番号388)
大腸菌BL21(DE3)細胞をN-インテインプラスミドにより形質転換し、50μg/mLのカナマイシンを含む1LのLBに37℃で増殖させた。培養液がOD600=0.6に達したら、0.5mM IPTGを添加して発現を誘導した(最終濃度0.5mM、37℃で3時間)。細胞を遠心分離(10,500rcf、30分)によりペレット化し、-80℃で保存した。
バッチ突然変異誘発のためのN-インテイン構築物の精製
Roche Completeプロテアーゼインヒビターカクテルを含有する30mLの溶解バッファー(50mMリン酸塩、300mM NaCl、5mMイミダゾール、pH8.0)に細胞ペレット(プラスミド1、2、5~14の発現由来)を再懸濁した。次いで、再懸濁した細胞を氷上で超音波処理(35%振幅、8×20秒のパルスオン時間/30秒のオフ時間)して溶解させた。N-インテインを含む不溶性封入体を遠心分離(35,000rcf、30分)により回収した。上清を捨て、ペレットを30mLのトリトン洗浄バッファー(0.1%トリトンX-100を含む溶解バッファー)に再懸濁し、室温で30分間インキュベートした。次いで、トリトン洗浄剤を35,000rcfで30分間遠心分離した。上清を捨て、6M尿素を含む30mLの溶解バッファー中に封入体ペレットを再懸濁し、懸濁液を4℃で一晩インキュベートし、タンパク質を抽出および再可溶化した。次いで、この混合物を35,000rcfで30分間遠心分離した。
Roche Completeプロテアーゼインヒビターカクテルを含有する30mLの溶解バッファー(50mMリン酸塩、300mM NaCl、5mMイミダゾール、pH8.0)に細胞ペレット(プラスミド20の発現由来)を最初に再懸濁した。次いで、細胞を超音波処理(35%振幅、8×20秒のパルスオン時間/30秒のオフ時間)により溶解し、溶解物を遠心分離(35,000rcf、30分間)によりペレット化した。
上清を4mLのNi-NTA樹脂と共に4℃で30分間インキュベートして、可溶性CfaNタンパク質を濃縮した。次いで、スラリーをフリット処理済みカラムに充填し、カラムを20mLの洗浄バッファー1(溶解バッファー)、続けて20mLの洗浄バッファー2(25mMイミダゾールを含む溶解バッファー)により洗浄した。最後に、タンパク質を4×1.5CVの溶出バッファー(溶解バッファー+250mMイミダゾール)によりカラムから溶出した。
大腸菌BL21(DE3)細胞を適切なpTXB1-IntC-GyrA-H6プラスミド(プラスミド3、4、15~19、21)により形質転換し、37℃でアンピシリン(100μg/mL)を含有する2LのLB培地に37℃で増殖させた。培養液がOD600=0.6に達したら、IPTG(0.5mM、3時間、37℃)を添加して発現を誘導した。遠心分離(10,500rcf、30分)により細胞ペレットを採取し、溶解バッファーに再懸濁し、氷上で(35%振幅、10×20秒のパルスオン時間/30秒のオフ時間)して溶解させた。可溶性画分中のタンパク質を遠心分離(35,000rcf、30分)により単離し、次いでNi-NTA精製(ビーズ4mL、N-インテイン構築物について記載したとおり行った)により濃縮した。250mMイミダゾールを含む溶解バッファーに溶出した後、イミダゾールを透析により新しい溶解バッファーに除去した。次いで、10mM TCEP、Roche Completeプロテアーゼインヒビターカクテル、100mM MESNa、5mM EDTA、および5mM CFN-NH2(pH7.0)を添加して、室温で一晩ライゲーションを行った。ライゲーションされたIntC-CFNペプチドを0.5%TFAにより酸性化し、C18分取カラム:グラジエント=10分間(アイソクラティック)で10%B、続けて60分間にわたり20~60%BでRP-HPLCにより精製した。各タンパク質の純度を分析用RP-HPLCにより決定し、その同一性をESI-MSにより確認した。
インテイン-デンドリマー融合体の半合成に使用されるCfaC-link-MESNaペプチドは、IntC-CFN構築物(プラスミド27からの発現)について上記で記載したとおり正確に発現および精製した。しかしながら、最終的なライゲーションステップの間にトリペプチドは添加せず、代わりにインテインのチオール開裂およびα-チオエステルの形成が生じた。次いで、このCfaC-MESNaα-チオエステルを分取RP-HPLCにより精製した。画分をESI-MSにより分析し、合一し、凍結乾燥した。
スプライシング反応は、上述のプロトコルから適合させて行った1。簡潔に述べると、N-およびC-インテイン(15μMIntN、10μMIntC)を個々にスプライシングバッファー(100mMリン酸ナトリウム、150mM NaCl、1mM EDTA、pH7.2)に2mM TCEPと共に15分間プレインキュベートした。他に指示がない限り、全てのスプライシング反応は30℃で行った。指示された濃度の尿素または塩酸グアニジンを用いて、カオトロピック剤に対するNpuおよびCfaの耐性を比較するスプライシング反応を行った。等しい容量のN-およびC-インテインを、指示された時間に取り出したアリコートと混合し、8Mグアニジン塩酸塩、4%TFA(3:1v/v)の添加によりクエンチすることにより、スプライシングを開始した。NpuC-CFNまたはCfaC-CFNのいずれかを含む全てのスプライシング反応について、反応の進行をRP-HPLCによりモニターした。SspC-CFNを含む全てのスプライシング反応では、予め見られた各状態のクロマトグラフィー分離度が低いため、ESI-MS(注入前にZipTipにより脱塩したサンプル)により反応の進行をモニターした1。80℃でのバッチ3およびCfa(15分間のプレインキュベーション)のスプライシングは両方とも非効率的であり、約50%の完了に達することが観察された。これはN-インテインの凝集(および不活性化)に起因する可能性が高い。注:80℃でのCfaのプレインキュベーションが短くなると、スプライシングがより効率的になる。
動態分析は、上述のとおり行った1。簡潔に述べると、5つの種(1~5)をRP-HPLCにより分離し、ピーク面積を決定する。ESI-MSの場合、ピーク面積は1~4の種について計算する。個々のピークは、全ての合わせたピークの合計面積に対して正規化し、反応進行曲線をプロットした(n=3)。次いで、データは、スリーステート動態スプライシングモデルのための結合された微分速度方程式に対する解析解にProFitに適合させた。このアッセイを用いて出発物質を線状チオエステルから分離することはできないので、スリーステート動態モデルは結合ステップおよびスプライシング反応の最初の2つのステップを1つの平衡に崩壊させる。各スプライシング反応は、各複製を別々に分析して三重反復で行った。全ての値(n=3)の平均および標準偏差を報告する。
NpuおよびCfaを比較する全てのスプライシング反応はRP-HPLCにより分離し、ピーク面積はメーカーのソフトウェアを使用してもう一度計算した。これらの反応について、出発物質および分岐状中間体(種1および2)および産物(種3、4、5)のピーク面積を計算した。次に、GraphPad Prismソフトウェアを使用して、データを一次速度式に適合させた。
Npu DnaEのホモログは、Npu DnaEタンパク質配列を用いたNCBI6(ヌクレオチドコレクション)およびJGI7データベースのBLAST5検索により同定した。これにより、>60%の配列同一性を有する105のタンパク質を同定した。長いC-末端尾部を有するN-インテインについて、タンパク質はNpuの長さである102の残基に切断した。JGIデータベースからのN-インテインについて、切断点はBLASTプログラムの結果により決定した(Blast検索で同定された最後の残基を切断点として選択した)。次に、Jalview(図7A)の全ての105のインテインの融合配列(すなわち、C-インテインに連結されたN-インテイン)の多配列アライメント(MSA)を生成した8。迅速にスプライシングされると予想されるインテインについてMSAを精製するために、K70、M75、M81、およびS136を含有しない全ての配列(「アクセラレータ」残基)をアライメントから除去し、高速スプライシング動態を有すると予想される73のインテインを残した(図7B)。高速インテイン(Cfa)のこの精製されたアライメントのコンセンサス配列は、各位置で最も頻繁に現れるアミノ酸を決定することによりJalviewで計算した。アライメントにおいて相同性の欠如ゆえにコンセンサス残基は位置98および102で同定されなかったので、コンセンサス配列は101のアミノ酸に切断し、位置98はNpu DnaEに見出される残基に固定した。次いで、このコンセンサス配列をJalviewのNpu DnaEと整列させて、その同一性の割合を計算した。非同一残基は、Npu DnaE(pdb=4K15)の結晶構造上にマッピングした(図1)。
前述のとおり、タンパク質スプライシングカップリングカナマイシン耐性(KanR)アッセイを行った2.9。簡潔に述べると、C-エクステインの+2位(プラスミド22~25)に存在するF、G、RまたはEのいずれかを有するスプリットインテイン(Cfa)に融合した断片化アミノグリコシドホスホトランスフェラーゼをコードするプラスミドを、DH5αコンピテント細胞に形質転換し、スターター培養液において一晩培養した(LBブロス、100μg/mLアンピシリン、18時間)。次いで、これらの培養液を96ウェルプレートに20倍に希釈し、大腸菌の増殖を種々の濃度のカナマイシン(100μg/mLアンピシリンを含む2.5、10、25、50、100、250、1000μg/mLのカナマイシン)で測定した。24時間の終点で650nm(OD650)における細胞の光学密度を、可変傾斜を有する用量反応曲線に適合させた。
His6-Sumo-CfaN発現(プラスミド20)を含む大腸菌封入体を再懸濁し、6M尿素を含む溶解バッファーに4℃で一晩抽出した。遠心分離(35,000rcf、30分)後、上清を除去し、タンパク質を変性条件下でNi-NTAにより濃縮した(上記のとおり)。しかしながら、タンパク質をリフォールディングする代わりに、CfaC-CFN(10μMCfaC、2mM TCEP、2mM EDTA、2時間、室温)の添加によりトランススプライシングを直接開始した。反応の進行をSDS-PAGEでモニターした。
HC-NpuN、HC-MchtN、HC-AvaN、HC-CfaNの試験発現
全てのmAb構築物の発現は、上述のとおり行った3。簡潔に述べると、αDec205-LCおよびαDec205-HC-IntNをコードするプラスミドをHEK293T細胞に同時トランスフェクションし、96時間(5%CO2)インキュベートした。細胞をスピンダウン(5分、1,000rcf)し、各インテイン融合のための培地15μLを5μLの4×ローディング色素と混合し、MES-SDSランニングバッファー中の12%ビス-トリスゲル上で泳動させた(50分で170V)。次いで、タンパク質をウェスタンブロットにより分析した(PVDF膜に転写し、αMouse IgGに対してブロッティングした)。発現収量は、デンシトメトリーにより決定した培地中のHC-IntNの量として測定した。様々な細胞増殖および生存を説明するために、HEK293T細胞溶解物のα-アクチンブロット(5秒の超音波、35%振幅、1×ローディング色素中)を用いて収量を正規化し、HC-CfaNの発現と比較して表した。この試験発現の4回の反復を行い、標準偏差として表される誤差を用いて平均値を計算した。
上記のmAB-AvaNおよびmAB-CfaN構築物の37℃での96時間の発現の後、培地をスピンダウンした(1,000rcf、5分間)。次いで、上清をCfaC-CFNペプチド(発現プラスミド21の半合成)と混合し、室温(2μMCfaC-CFN、2mM TCEP、2mM EDTA)で2時間インキュベートした。スプライシング反応を、SDS-PAGE(170Vで50分間MES-SDSランニングバッファー中での12%ビス-トリスの泳動)により分析し、続けてウェスタンブロット(αMouse IgG)により分析した。
Cys-Gly-Lys(フルオレセイン)。このペプチドは、前で公開した手順に従ってRink Amide樹脂上に試薬を手動で添加することによって合成した2。
化合物3を天然のケミカルライゲーション(スキーム2)により合成した。化合物2をライゲーションバッファーに溶解し、5当量のCys-Gly-Lys(フルオレセイン)(1mM 2、5mMペプチド、4Mグアニジン、100mMリン酸塩、150mM NaCl、100mM MPAA、20mM TCEP、pH7.0)で希釈し、室温で一晩反応させた。次いで、0.1Mメトキシアミン(最終濃度)の添加およびライゲーションバッファーのpHを4.0(一晩、室温)まで低下させることにより、チアゾリジンの脱保護を達成した。
化合物1は発現されたタンパク質ライゲーションによって合成した。化合物3をライゲーションバッファーに溶解し、1.5当量のCfaC-MESNaチオエステル(100μM3、150μMCfaC-MESNa、4Mグアニジン、100mMリン酸塩、150mM NaCl、20mM TCEP、100mM MPAA)と混合した。反応を室温で一晩進行させた。次いで、ライゲーションされた産物をセミ分取RP-HPLCによって精製した。所望の画分をプールし、凍結乾燥した。予想される質量:9860.8Da.実測値:9860.3Da。
そのC-末端に融合したCfaNを有するαDec205mAbを上記のとおり発現させた。96時間の発現の後、培地をAmicon 30K濃縮器(0.5mL)中で10倍に濃縮した。化合物1をスプライシングバッファー(100mMリン酸塩、150mM NaCl、1mM EDTA、pH7.2)に溶解し、次いで濃縮培地(2μM化合物1、2mM TCEP、1mM EDTA)と混合し、反応を室温で2時間進行させた。次いで、スプライシング混合物をSDS-PAGE(170Vで50分間、MES-SDSランニングバッファーに12%ビス-トリスを泳動)により分析し、蛍光画像装置で画像化した。これに続いて、PVDF膜への転写およびウェスタンブロット分析(αMouse IgG)を行った。
スプライシングに基づく方法に対する主な注意点は、全ての特徴付けられたインテインがスプライス部位に隣接するエクステイン残基に配列優先を示すことである。+1位に必須の触媒性Cys、Ser、またはThr残基(すなわち、C-エクステイン内の第1残基)に加えて、ネイティブ挿入部位に見出される近位N-およびC-エクステイン配列に似ている残基の偏りがある。この好ましい配列の文脈からの逸脱は、スプライシング活性の著しい低下につながり、PTSに基づく方法の適用性を制限する23,24。したがって、その活性が局所配列環境によって最小限に影響されるスプリットインテインが必要である。DnaEインテインについて、エクステイン配列の選択は、+1位の触媒システインおよび+2位で好ましい大きな疎水性残基に大きく限定されている25。
本発明の一つの実施形態による、より「乱雑な」活性を付与する「GEP」突然変異を有するCfaC-インテインは:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVGEPHNFLLKNGLVASN(配列番号389)である。
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGLDLKQVDGLPVKIISRKSLGTQNVYDIGVGEPHNFLLKNGLVASN(配列番号390)である。
(1)Shah,N.H.;Muir,T.W.Chem.Sci.2014,5,15.
(2)Wu,H.;Hu,Z.;Liu,X.Q.Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.1998,95,9226.
(3)Iwai,H.;Zuger,S.;Jin,J.;Tam,P.H.FEBS Lett.2006,580,1853.
(4)Zettler,J.;Schutz,V.;Mootz,H.D.FEBS Lett.2009,583,909.
(5)Shah,N.H.;Eryilmaz,E.;Cowburn,D.;Muir,T.W.J.Am.Chem.Soc.2013,135,5839.
(6)Shah,N.H.;Dann,G.P.;Vila-Perello,M.;Liu,Z.;Muir,T.W.J.Am.Chem.Soc.2012,134,11338.
(7)Carvajal-Vallejos,P.;Pallisse,R.;Mootz,H.D.;Schmidt,S.R.J.Biol.Chem 2012,287,28686.
(8)Wu,Q.;Gao,Z.;Wei,Y.;Ma,G.;Zheng,Y.;Dong,Y.;Liu,Y.Biochem.J.2014,461,247.
(9)Aranko,A.S.;Oeemig,J.S.;Kajander,T.;Iwai,H.Nat.Chem.Biol.2013,9,616.
(10)Pietrokovski,S.Protein Sci.1994,3,2340.
(11)Dearden,A.K.;Callahan,B.;Roey,P.V.;Li,Z.;Kumar,U.;Belfort,M.;Nayak,S.K.Protein Sci.2013,22,557.
(12)Du,Z.;Shemella,P.T.;Liu,Y.;McCallum,S.A.;Pereira,B.;Nayak,S.K.;Belfort,G.;Belfort,M.;Wang,C.J.Am.Chem.Soc.2009,131,11581.
(13)Lehmann,M.;Kostrewa,D.;Wyss,M.;Brugger,R.;D’Arcy,A.;Pasamontes,L.;van Loon,A.P.Protein Eng.2000,13,49.
(14)Steipe,B.Methods Enzymol.2004,388,176.
(15)Altschul,S.F.;Gish,W.;Miller,W.;Myers,E.W.;Lipman,D.J.J.Mol.Biol.1990,215,403.
(16)Grigoriev,I.V.;Nordberg,H.;Shabalov,I.;Aerts,A.;Cantor,M.;Goodstein,D.;Kuo,A.;Minovitsky,S.;Nikitin,R.;Ohm,R.A.;Otillar,R.;Poliakov,A.;Ratnere,I.;Riley,R.;Smirnova,T.;Rokhsar,D.;Dubchak,I.Nucleic Acids Res.2012,40,D26.
(17)Tatusova,T.;Ciufo,S.;Fedorov,B.;O’Neill,K.;Tolstoy,I.Nucleic Acids Res.2014,42,D553.
(18)Shah,N.H.;Eryilmaz,E.;Cowburn,D.;Muir,T.W.J.Am.Chem.Soc.2013,135,18673.
(19)Mohlmann,S.;Bringmann,P.;Greven,S.;Harrenga,A.BMC Biotechnol.2011,11,76.
(20)Barbuto,S.;Idoyaga,J.;Vila-Perello,M.;Longhi,M.P.;Breton,G.;Steinman,R.M.;Muir,T.W.Nat.Chem.Biol.2013,9,250.
(21)Vila-Perello,M.;Liu,Z.;Shah,N.H.;Willis,J.A.;Idoyaga,J.;Muir,T.W.J.Am.Chem.Soc.2013,135,286.
(22)Shah,N.D.;Parekh,H.S.;Steptoe,R.J.Pharm.Res.2014,31,3150.
(23)Iwai,H.;Zuger,S.;Jin,J.;Tam,P.H.FEBS Lett.2006,580,1853.
(24)Amitai,G.;Callahan,B.P.;Stanger,M.J.;Belfort,G.;Belfort,M.Proc Natl Acad Sci USA 2009,106,11005.
(25)Cheriyan,M.;Pedamallu,C.S.;Tori,K.;Perler,F.J Biol Chem 2013,288,6202.
Claims (30)
- 下記配列:
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGL(配列番号1)
に対して少なくとも98%、99%または100%の配列同一性を有し、1位のCys残基(Cys1)、70位のLys残基(Lys70)、72位のHis残基(His72)、75位のMet残基(Met75)および81位のMet残基(Met81)が保存されているアミノ酸配列を含んでなる、スプリットインテインN断片。 - 下記配列:
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGLDLKQVDGLP(配列番号2)
に対して少なくとも98%、99%または100%の配列同一性を有し、1位のCys残基(Cys1)、70位のLys残基(Lys70)、72位のHis残基(His72)、75位のMet残基(Met75)および81位のMet残基(Met81)が保存されているアミノ酸配列を含んでなる、請求項1に記載のスプリットインテインN断片。 - 請求項1または2に記載のスプリットインテインN-断片と化合物とを含んでなる複合体であって、前記化合物がペプチドもしくはポリペプチドであるか、または、ペプチドもしくはポリペプチドを含むものである、複合体。
- 前記化合物が抗体鎖である、請求項3に記載の複合体。
- 前記化合物が抗体重鎖である、請求項3に記載の複合体。
- 下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号3)
に対して少なくとも98%、99%または100%の配列同一性を有し、16位のAsp残基(Asp16)、23位のHis残基(His23)、34位のSer残基(Ser34)および35位のAsn残基(Asn35)が保存されているアミノ酸配列を含んでなる、スプリットインテインC断片。 - 前記C断片の前記アミノ酸配列が、下記配列:
MVKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号4)
に対して少なくとも98%、99%または100%配列同一性を有し、17位のAsp残基(Asp17)、24位のHis残基(His24)、35位のSer残基(Ser35)および36位のAsn残基(Asn36)が保存されているアミノ酸配列を含むものである、請求項6に記載のスプリットインテインC断片。 - 下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVGEPHNFLLKNGLVASN(配列番号389)
に対して少なくとも98%、99%または100%の配列同一性を有し、16位のAsp残基(Asp16)、23位のHis残基(His23)、34位のSer残基(Ser34)および35位のAsn残基(Asn35)が保存されているアミノ酸配列を含んでなる、スプリットインテインC断片。 - R1、R2、R3およびR4が、それぞれ色素分子である、請求項9に記載の複合体。
- 前記化合物が、ペプチドに結合してなる1,2-アミノチオールである、請求項9に記載の複合体。
- 前記化合物が、ペプチドに結合してなる1,2-アミノアルコールである、請求項9に記載の複合体。
- 請求項1または2に記載のスプリットインテインN断片と、
請求項6、7または8のいずれか一項に記載のスプリットインテインC断片と
を含んでなる組成物。 - 請求項1または2に記載のスプリットインテインN断片をコードするヌクレオチド配列を含んでなるヌクレオチドプラスミド。
- 請求項6、7または8のいずれか一項に記載のスプリットインテインC断片をコードするヌクレオチド配列を含んでなるヌクレオチドプラスミド。
- 2つの複合体をスプライシングするための方法であって、
第1の化合物と、請求項1または2に記載のスプリットインテインN断片とを含む第1の複合体と、第2の化合物と、請求項6、7または8のいずれか一項に記載のスプリットインテインC断片とを含む第2の複合体とを接触させ、当該接触が、前記スプリットインテインN断片と前記スプリットインテインC断片とを結合させてインテイン中間体を形成する条件下で実施されることを特徴とする工程と、
前記インテイン中間体を反応させて前記第1の化合物と前記第2の化合物とのコンジュゲートを形成する工程と
を少なくとも含んでなることを特徴とし、
前記第1の化合物が、ペプチドであるか、または、ペプチドを含むものであり、
前記第2の化合物が、
・ 下記構造:
を有するデンドリマーであるか、または
・ ペプチドであるか、または、ペプチドを含むものである、方法。 - 第1の化合物と、請求項1または2に記載のスプリットインテインN断片とを含む第1の複合体と、第2の化合物と、請求項6、7または8のいずれか一項に記載のスプリットインテインC断片とを含む第2の複合体とを接触させ、当該接触が、前記スプリットインテインN断片と前記スプリットインテインC断片とを結合させてインテイン中間体を形成する条件下で実施されることを特徴とする工程と、
前記インテイン中間体と求核剤とを反応させて前記第1の化合物と前記求核剤とのコンジュゲートを形成する工程と
を少なくとも含んでなることを特徴とする方法であって、
前記第1の化合物が、ペプチドもしくはポリペプチドであるか、または、ペプチドもしくはポリペプチドを含むものであり、
前記第2の化合物が、
・ 下記構造:
を有するデンドリマーであるか、または
・ ペプチドであるか、または、ペプチドを含むものである、方法。 - 前記第1の化合物が、ポリペプチドまたは抗体である、請求項21に記載の方法。
- 前記第2の化合物が、デンドリマーまたはポリペプチドである、請求項21に記載の方法。
- 下記配列:
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGLDLKQVDGLPVKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号390)
に対して少なくとも98%、99%または100%の配列同一性を有し、1位のCys残基(Cys1)、70位のLys残基(Lys70)、72位のHis残基(His72)、75位のMet残基(Met75)、81位のMet残基(Met81)、117位のAsp残基(Asp117)、124位のHis残基(His124)、135位のSer残基(Ser135)および136位のAsn残基(Asn136)が保存されているアミノ酸配列を含んでなるインテイン。 - 2つの複合体を一緒にスプライシングするためのキットであって、
請求項1または2に記載のスプリットインテインN断片と、
請求項6、7または8のいずれか一項に記載のスプリットインテインC断片と、
前記スプリットインテインN断片と前記スプリットインテインC断片とを結合させてインテイン中間体を形成するための試薬と、
求核剤と
を含んでなる、キット。 - 請求項1または2に記載のスプリットインテインN断片のアミノ酸配列をコードする第1のヌクレオチド配列と、請求項6、7または8のいずれか一項に記載のスプリットインテインC断片のアミノ酸配列をコードする第2のヌクレオチド配列とを融合させ、前記第1のヌクレオチド配列と前記第2のヌクレオチド配列との融合物が隣接インテインをコードするようにする工程を少なくとも含んでなることを特徴とする方法。
- 請求項26に記載の方法であって、
下記配列:
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGL(配列番号1)
を含んでなるスプリットインテインN断片のアミノ酸配列をコードする第1のヌクレオチド配列と、
下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号3)
を含んでなるスプリットインテインC断片のアミノ酸配列をコードする第2のヌクレオチド配列と
を融合させ、前記第1のヌクレオチド配列と前記第2のヌクレオチド配列との融合物が隣接インテインをコードするようにする工程を少なくとも含んでなることを特徴とする、方法。 - 請求項6、7または8のいずれか一項に記載のスプリットインテインC断片のアミノ酸配列をコードする第2のヌクレオチ配列と融合してなる、請求項1または2に記載のスプリットインテインN断片のアミノ酸配列をコードする第1のヌクレオチド配列を含んでなる遺伝子融合物。
- 下記配列:
VKIISRKSLGTQNVYDIGVEKDHNFLLKNGLVASN(配列番号3)
を含んでなる、スプリットインテインC断片のアミノ酸配列をコードする第2のヌクレオチド配列と融合してなる、
下記配列:
CLSYDTEILTVEYGFLPIGKIVEERIECTVYTVDKNGFVYTQPIAQWHNRGEQEVFEYCLEDGSIIRATKDHKFMTTDGQMLPIDEIFERGL(配列番号1)
を含んでなる、スプリットインテインN断片のアミノ酸配列をコードする第1のヌクレオチド配列を含んでなる、請求項28に記載の遺伝子融合物。 - 請求項1に記載のスプリットインテインN断片または請求項6~8のいずれか一項に記載のスプリットインテインC断片をコードするポリヌクレオチド。
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