JP7230130B2 - マイコプラズマ・ヒオリニス感染を予防治療する組成物及びその活性成分を生産するための発現ベクター及び方法 - Google Patents

Description

本発明は、マイコプラズマ・ヒオリニス感染を予防治療する組成物に関し、特にマイコプラズマ・ヒオリニス感染を予防治療するサブユニットワクチンに関する。

マイコプラズマ・ヒオプニューモニアエ（Mycoplasm hyopneumoniae）とマイコプラズマ・ヒオリニス（Mycoplasma hyorhinis）は、豚マイコプラズマ性肺炎（swine enzootic pneumonia、ＳＥＰ）を引き起こす主要な病原である。マイコプラズマ・ヒオリニスは、多発性漿膜炎（polyserositis）又は関節炎（arthritis）の発生にも関する。豚がマイコプラズマ・ヒオプニューモニアエ又はマイコプラズマ・ヒオリニスに感染すると、飼料要求率が低下し、成長が遅くなり、かつ他のウイルス性又は細菌性病原の二次感染を引き起こし、更に養豚業者に経済的損失をもたらす。全世界動物用ワクチンメーカーは、養豚産業で使用するためにマイコプラズマ・ヒオプニューモニアエ不活化死菌ワクチンを開発したが、未だマイコプラズマ・ヒオリニスワクチンは市販されていない。マイコプラズマ・ヒオプニューモニアエ不活化死菌ワクチンの投与は、マイコプラズマ・ヒオプニューモニアエの感染を防ぐことしかできず、マイコプラズマ・ヒオリニスの感染を回避することができない。

ワクチン保護範囲が不足する問題を解決するために、マイコプラズマ・ヒオリニスワクチンを開発する必要がある。従来のワクチンの開発は、主に不活化死菌ワクチンを主とするが、マイコプラズマは、培養が困難であり、使用する培地が高価であり、培養した菌体の濃度が高くないため、マイコプラズマ・ヒオリニス不活化死菌ワクチンの製造コストが高くなる可能性がある。従って、生産が容易で安全性が高いサブユニットワクチンは、ワクチン開発のもう１つの選択肢である。これまでに、この分野では未だマイコプラズマ・ヒオリニスサブユニットワクチンに適用する抗原を完全に提示する研究報告がない。そこで、本発明の主たる目的は、養豚産業の防疫作業全体をより完備させるために、低コストで効果的なマイコプラズマ・ヒオリニスサブユニットワクチンを開発することにある。

本発明の１つの目的は、養豚産業の疾病予防治療を完備させるために、マイコプラズマ・ヒオリニス感染を予防治療するサブユニットワクチンを提供することである。
本発明のもう１つの目的は、サブユニットワクチンを生産するコストを低下させるために、抗原発現ベクター、及び原核細胞発現系で上記発現ベクター中の抗原遺伝子を発現させることによりサブユニットワクチンを生産する方法を提供することである。

上記目的を達成するために、本発明は、マイコプラズマ・ヒオリニス感染により引き起こされる病徴を回避するための組成物であって、ＸｙｌＦ、ＤｎａＫ、Ｐ７２、又はそれらの組み合わせを含む活性成分と、アジュバントとを含み、上記ＸｙｌＦが、配列番号１で示される配列を含み、上記ＤｎａＫが、配列番号２で示される配列を含み、上記Ｐ７２が、配列番号３で示される配列を含み、上記病徴が、腹膜炎、胸膜炎、心膜炎、及び関節腫脹から選択される少なくとも一種である、組成物を提供する。

好ましくは、上記活性成分が、ＸｙｌＦ、ＤｎａＫ、及びＰ７２からなる群から選択される少なくとも２種である。より好ましくは、上記活性成分が、ＸｙｌＦ、ＤｎａＫ、及びＰ７２の組み合わせである。

好ましくは、上記活性成分の濃度が、上記組成物の総体積を基に、５０～３００μｇ／ｍＬである。
好ましくは、上記アジュバントが、フロイント完全又は不完全アジュバント、アルミゲル、界面活性剤、アニオン性ポリマー、ペプチド、油エマルジョン又はそれらの組み合わせを含む。

好ましくは、上記活性成分がＸｙｌＦである場合、上記病徴は腹膜炎、胸膜炎、又はそれらの組み合わせである。
好ましくは、上記活性成分がＤｎａＫである場合、上記病徴は腹膜炎である。

好ましくは、上記活性成分がＰ７２である場合、上記病徴は胸膜炎である。
好ましくは、上記組成物の制限条件として、上記病徴が腹膜炎、胸膜炎、心膜炎、及び関節腫脹である場合、上記活性成分はＸｙｌＦ、ＤｎａＫ、及びＰ７２の組み合わせである。

本発明は、原核細胞発現系で上記組成物中の上記活性成分を生産するための発現ベクターであって、上記発現ベクターは、プロモーター及びリボソーム結合部位を含む発現エレメントと、上記ＸｙｌＦ、上記ＤｎａＫ、上記Ｐ７２、又はそれらの組み合わせにエンコードされるヌクレオチド配列と、融合パートナー配列とを含み、上記ヌクレオチド配列は、配列番号４、配列番号５、配列番号６、又はそれらの組み合わせで示される配列を含む、発現ベクターを更に提供する。

好ましくは、融合パートナーは、大腸菌ＤｓｂＣ、大腸菌ＭｓｙＢ、大腸菌ＦｋｌＢ、又はそれらの組み合わせである。より好ましくは、上記ヌクレオチド配列がＸｙｌＦにエンコードされる場合、上記融合パートナーは大腸菌ＤｓｂＣであり、上記ヌクレオチド配列がＤｎａＫにエンコードされる場合、上記融合パートナーは大腸菌ＭｓｙＢであり、又は上記ヌクレオチド配列がＰ７２にエンコードされる場合、上記融合パートナーは大腸菌ＦｋｌＢである。

好ましくは、上記発現ベクターが、ヒスチジンタグ（His-tag）の配列、グルタチオンＳ－トランスフェラーゼ（Glutathione S-transferase、ＧＳＴ）タグの配列、又はそれらの組み合わせを更に含む。

好ましくは、上記発現ベクターが、配列番号７、配列番号８、又は配列番号９で示される配列を含む。
好ましくは、上記原核細胞発現系が大腸菌発現系である。

本発明は、可溶性タンパク質を生産する方法であって、上記可溶性タンパク質は、ＸｙｌＦ、ＤｎａＫ、Ｐ７２、又はそれらの組み合わせであり、上記方法は、（１）原核細胞発現系を提供する工程と、（２）上記原核細胞発現系で上記発現ベクターの抗原遺伝子を発現させる工程とを含む方法を更に提供する。

好ましくは、上記方法は、上記工程（２）で得られた生成物をニッケルイオンアフィニティーカラム又はグルタチオンＳアフィニティーカラムに通して上記可溶性タンパク質を取得する工程を更に含む。

上述したとおり、本発明は、マイコプラズマ・ヒオリニス感染により引き起こされる病徴を回避する目的を達成するために、マイコプラズマ・ヒオリニス感染を予防治療する組成物を提供する。本発明は、上記組成物の生産コストを低下させるために、原核細胞発現系で上記組成物の活性成分を生産するのに必要な抗原発現ベクター及び方法を開示する。

タンパク質電気泳動によって実施例３における本発明の組換え抗原の可溶性を観察した結果である（Ｔは、全細胞溶解物（total cell lysates）を表し、Ｓは、全細胞溶解物において可溶性を有する部分を表す）。 タンパク質電気泳動によって実施例３における本発明の組換え抗原の精製を観察した結果である。

産業においてマイコプラズマ・ヒオリニス（M. hyorhinis）感染を予防治療する組成物が欠乏することに鑑み、本発明の研究では、ＸｙｌＦ、ＤｎａＫ及びＰ７２の単体又はそれらの組み合わせがマイコプラズマ・ヒオリニス感染により引き起こされる病徴を回避する組成物の活性成分として用いることができることが実証されている。本文に記載の「マイコプラズマ・ヒオリニス感染により引き起こされる病徴」は、腹膜炎、胸膜炎、心膜炎、及び関節腫脹から選択される少なくとも一種である。実施可能な一つの実施例において、上記「マイコプラズマ・ヒオリニス感染により引き起こされる病徴を回避する」とは、Ｍａｇｎｕｓｓｏｎらが提案した方法（Ｖｅｔ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｐａｔｈｏｌ．，６１：８３～９６，１９９８）で評価する。

一つの実施例において、本発明の実験結果は、ＸｙｌＦを本発明の組成物の活性成分とすることが、腹膜炎、胸膜炎又はそれらの組み合わせの病徴を軽減するのに特に有用であることを示している。別の実施例において、本発明の実験結果は、ＤｎａＫを本発明の組成物の活性成分とすることが、腹膜炎の病徴を軽減するのに特に有用であることを示している。更に別の実施例において、本発明の実験結果は、Ｐ７２を本発明の組成物の活性成分とすることが、胸膜炎の病徴を軽減するのに特に有用であることを示している。更に別の実施例において、本発明の実験結果は、軽減したい病徴が腹膜炎、胸膜炎、心膜炎、及び関節腫脹である場合、ＸｙｌＦ、ＤｎａＫ、及びＰ７２の組み合わせを活性成分とすることが特に有用であることを示している。

本発明の一つの態様は、マイコプラズマ・ヒオリニス感染により引き起こされる病徴を回避するための組成物を提供する。上記組成物は、活性成分とアジュバントとを含む。上記活性成分とは、主に上記組成物の応用目的を提供する成分である。上記活性成分は、ＸｙｌＦ、ＤｎａＫ、Ｐ７２、又はそれらの組み合わせを含み、かつ上記ＸｙｌＦは、配列番号１で示される配列を含み、上記ＤｎａＫは、配列番号２で示される配列を含み、上記Ｐ７２は、配列番号３で示される配列を含む。

実施可能な一つの実施例において、上記活性成分は、ＸｙｌＦ、ＤｎａＫ、及びＰ７２からなる群から選択される１つである。実施可能な一つの実施例において、上記活性成分は、ＸｙｌＦ、ＤｎａＫ、及びＰ７２からなる群から選択される２つである。好ましい実施例において、上記活性成分は、ＸｙｌＦ、ＤｎａＫ、及びＰ７２の組み合わせである。当業者は、上記ＸｙｌＦ、ＤｎａＫ、又はＰ７２のエピトープの構造に影響を与えない前提で、上記活性成分が、同時に上記ＸｙｌＦ、ＤｎａＫ、及びＰ７２からなる群から選択される少なくとも２種のタンパク質のアミノ酸配列を含む組換えタンパク質であってもよいことを理解すべきである。別の実施可能な一つの実施例において、上記組成物は、上記ＸｙｌＦ、ＤｎａＫ、及びＰ７２からなる群から選択される少なくとも２種のタンパク質を混合した活性成分混合物を含んでもよい。

当業者は、１つのワクチンに２種以上の活性成分を使用する場合、特に上記２種以上の活性成分が同種病原の感染を予防治療するためのものである場合、上記２種以上の活性成分が相互干渉の不具合を引き起こす可能性があるため、その効果は予期できないことを理解すべきである。逆に、上記２種以上の活性成分の組み合わせが相互干渉の不具合を引き起こさなくても、上記２種以上の活性成分の組み合わせがより好ましい効果（例えば、より良い免疫誘導効果）を提供できない場合、経済的な考慮から、上記２種以上の活性成分を１つのワクチンに混合する動機がない。これにより、１つのワクチンに２種以上の活性成分を使用することは、上記２種以上の活性成分の組み合わせがより好ましい効果を提供できる限り、産業上の利益がある。どのような種類の潜在的な活性成分を組み合わせるべきであるか、又は組み合わせた後により好ましい効果を生じることができるか否かは、いずれも試験の前に予期できるものではない。

実施可能な一つの実施例において、上記組成物中の上記活性成分の濃度は、上記組成物の総体積を基に、５０～３００μｇ／ｍＬである。好ましい一つの実施例において、上記組成物中の上記活性成分は、ＸｙｌＦ、ＤｎａＫ、及びＰ７２の組み合わせであり、かつ上記ＸｙｌＦ、ＤｎａＫ、及びＰ７２の濃度は、それぞれ上記組成物の総体積を基に、１００μｇ／ｍＬである。当業者は、上記濃度が使用目的に応じて変更できるものであることを理解すべきである。例えば、輸送及び貯蔵を容易にするために、当業者は、高濃度の活性成分を有する上記組成物を調製し、実際に使用する前に希釈することができる。

本文に記載のアジュバントは、医薬分野／ワクチン分野で熟知されている定義である。例えば、上記アジュバントは、上記活性成分の免疫誘導効果を向上させるため及び／又は上記活性成分を安定化させるためのものである。上記アジュバントは、例えば、フロイント完全又は不完全アジュバント、アルミゲル、界面活性剤、アニオン性ポリマー、ペプチド、油エマルジョン又はそれらの組み合わせであるが、これに限らない。実施可能な一つの実施例において、上記アジュバントは、アルミゲルである。

本発明の別の態様は、抗原発現ベクターを提供する。組換え抗原を大量に生成すべきであるというニーズを満たすために、上記抗原発現ベクターを構築する目的は、原核細胞発現系で本発明の組成物の上記活性成分を発現させるためである。この分野では、原核細胞発現系によって所望のタンパク質を発現させる経験が多いが、生物分野の多変性により、異なるタンパク質が異なる発現条件を必要とする可能性があるので、依然として大量の試験によって抗原発現テストを行う必要がある。これにより、本発明の研究は、原核細胞発現系で組換え抗原を発現可能な発現ベクターを構築することに成功し、好ましくは、大腸菌発現系で組換え抗原を発現可能な発現ベクターである。本発明の大腸菌発現系で組換え抗原を発現可能な発現ベクターに基づき、当業者は、本発明の発現ベクターを修飾して他の原核細胞発現系で組換え抗原を発現させることができる。

一方、原核細胞発現系で上記活性成分を発現させる上での１つの支障は、上記原核細胞発現系から発現した上記活性成分を精製することである。原核細胞発現系において発現した組換えタンパク質は、通常可溶性を有しないため、精製工程の難しさ及びコストが増加する。これに鑑み、本発明の抗原発現ベクターの１つの特徴は、可溶性を有する組換え抗原を発現することにあり、これにより、精製工程を簡略化し、且つそのコストを下げることができる。

本発明の発現ベクターは、発現エレメントと、ヌクレオチド配列と、融合パートナー配列とを含み、上記ヌクレオチド配列は、上記ＸｙｌＦ、上記ＤｎａＫ、上記Ｐ７２、又はそれらの組み合わせのタンパク質にエンコードされることができる。実施可能な一つの実施例において、上記ヌクレオチド配列は、配列番号４、配列番号５、配列番号６、又はそれらの組み合わせで示される配列を含む。選択された原核細胞発現系のコドン選好に基づき、上記ヌクレオチド配列が依然として上記ＸｙｌＦ、上記ＤｎａＫ、上記Ｐ７２、又はそれらの組み合わせのタンパク質にエンコードされる限り、当業者は上記ヌクレオチド配列を変更することもできる。

好ましい一つの実施例において、原核細胞発現系で取得した組換えタンパク質に可溶性を持たせるために、本発明の研究は、大腸菌ＤｓｂＣ、大腸菌ＭｓｙＢ、大腸菌ＦｋｌＢ、又はそれらの組み合わせが、本発明の上記ＸｙｌＦ、上記ＤｎａＫ、上記Ｐ７２、又はそれらの組み合わせのタンパク質を発現させるための好ましい融合パートナーであることを実証した。好ましい一つの実施例において、精製工程を容易にするために、上記発現ベクターは、ヒスチジンタグ（His-tag）の配列、グルタチオンＳ－トランスフェラーゼタグ（GST-tag）の配列、又はそれらの組み合わせを更に含んでもよく、これによりニッケルイオンアフィニティーカラム又はグルタチオンＳアフィニティーカラムを介して得られた組換えタンパク質を精製することができる。

実施可能な一つの実施例において、上記発現エレメントは、転写及び／又は翻訳を行うために、少なくともプロモーター及びリボソーム結合部位を含む。別の実施可能な一つの実施例において、遺伝子工学上の操作を容易にするために、上記発現ベクターは、制限酵素切断部位からなる多重クローニング部位、スクリーニングマーカー、又はそれらの組み合わせを更に含んでもよい。上記スクリーニングマーカーは、抗生物質耐性遺伝子又は栄養要求性スクリーニング遺伝子であってもよい。

本発明の別の態様は、上記ＸｙｌＦ、ＤｎａＫ、Ｐ７２、又はそれらの組み合わせである可溶性タンパク質を生産する方法を提供する。本発明の方法は、（１）原核細胞発現系を提供する工程と、（２）上記原核細胞発現系で本発明の発現ベクターの抗原遺伝子を発現させる工程とを含む。本文に記載の「可溶性」とは、上記タンパク質が水溶液に溶ける傾向がある特性である。本文に記載の「発現」とは、上記原核細胞発現系で、いずれかの手段によって上記発現ベクターで発現したい遺伝子の転写及び翻訳を誘導するものである。上記手段は、例えば、イソプロピル－β－Ｄ－チオガラクトシド（isopropyl-β-D-thiogalactoside、ＩＰＴＧ）を上記原核細胞発現系に添加するものであるが、これに限らない。

実施例１：本発明の組成物の活性成分として適切なタンパク質を探す。
（１）マイコプラズマ・ヒオリニス不活化ワクチンの調製：
この分野で熟知されているＦｒｉｉｓ培地でマイコプラズマ・ヒオリニス（ＡＴＩＴ－７）を培養し、中国台湾発明専利第Ｉ２３８７２１号に開示された方法でマイコプラズマ・ヒオリニス不活化ワクチンを調製した。

（２）マイコプラズマ・ヒオリニス抗血清の調製：
農業科学技術研究所の動物科学技術研究所の第２世代ＳＰＦ豚舎から４週齢のＳＰＦ豚を３匹購入した。全ての豚を同じ飼育条件でＳＰＦ実験豚舎に飼育して使用に備える。実験豚を３２、４６及び６０日齢飼育した時に、上記マイコプラズマ・ヒオリニス不活化ワクチン２ｍＬを筋肉注射により注射した。その後、実験豚を７４日齢まで飼育し続け、更に頚静脈から採血し、採取した血液を室温（約２５℃）で１時間置く。次に、上記血液を４℃で置く。翌日に１，１０７×ｇの条件で３０分間遠心分離し、上澄液（即ち、抗血清）を清潔な遠心管に入れ、－２０℃で保存して使用に備える。

（３）マイコプラズマ・ヒオリニスの全タンパク質の抽出：
タンパク質抽出キット（ＲｅａｄｙＰｒｅｐ（商標）ｐｒｏｔｅｉｎ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ｋｉｔ；Ｂｉｏ－Ｒａｄ、米国）でマイコプラズマ・ヒオリニスの全タンパク質の抽出を行う。まず、Ｆｒｉｉｓ培地で培養したマイコプラズマ・ヒオリニスを遠心分離（１０，０００×ｇ、２０分）することにより菌体部分を収集した。次に、低塩緩衝液（１００ｍＭ Ｔｒｉｓベース、２５０ｍＭショ糖、ｐＨ８．０）で菌体を三回洗浄した後、菌体を１ｍＬのサンプル緩衝液（ｃｏｍｐｌｅｔｅ ２－Ｄ ｒｅｈｙｄｒａｔｉｏｎ／ｓａｍｐｌｅ ｂｕｆｆｅｒ １）に懸濁し、１０μＬのＴＢＰ還元試薬（ＲｅａｄｙＰｒｅｐ（商標）ＴＢＰ ｒｅｄｕｃｉｎｇ ａｇｅｎｔ）、適量のＢｉｏ－Ｌｙｔｅ ３／１０両性電解質（ａｍｐｈｏｌｙｔｅ；最終濃度０．２％）及び適量のプロテアーゼ阻害剤を加えた。そして、超音波破砕機で菌体を破砕した後、遠心分離により細胞破砕物を除去し、マイコプラズマ・ヒオリニスの全タンパク質を含有する上澄液を保留する。

次に、タンパク質分析キット（ＲＣ ＤＣ（商標）Ｐｒｏｔｅｉｎ Ａｓｓａｙ Ｋｉｔ；Ｂｉｏ－Ｒａｄ、米国）で菌体の全タンパク質の濃度を測定した。１００μＬの上記全タンパク質を含有する上澄液と５００μＬのＲＣ試薬Ｉ（RC reagent I）とを均一に混合した後、室温（約２５℃）で置いて１分間反応させた。次に、５００μＬのＲＣ試薬ＩＩ（RC reagent II）を加えて均一に混合した後、遠心分離（１５，０００×ｇ、５分間）して沈殿物部分を収集した。そして、沈殿物と５１０μＬの試薬Ａ’を均一に混合した後、沈殿物が完全に溶解するまで室温（約２５℃）で置いて５分間反応させた。その後、４ｍＬの試薬Ｂを加え、更に室温（約２５℃）で置いて１５分間反応させた。そして、分光光度計で波長７５０ｎｍでの溶液の吸光度を測定した。ウシ血清タンパク質（bovine serum albumin、ＢＳＡ）を標準品としてタンパク質濃度の標準曲線を作成した。サンプルの吸光度と標準曲線とを比較することにより、上記上澄液中の全タンパク質の濃度を換算して取得し、後続のタンパク質電気泳動に供することができる。

（４）タンパク質二次元電気泳動：
タンパク質二次元電気泳動は、等電点電気泳動（isoelectric focusing、ＩＥＦ）とドデシル硫酸ナトリウム－ポリアクリルアミドゲル電気泳動（sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis、ＳＤＳ－ＰＡＧＥ）の２つの操作工程に分かれる。操作工程は、後述する段落で説明する。

等電点電気泳動
等電点電気泳動は、タンパク質の等電点が異なる特性を利用してタンパク質を分離する技術である。まず、マイコプラズマ・ヒオリニスの全タンパク質を含有する上澄液１ｍｇと適量の水和緩衝液（hydration buffer）とを混合して総体積が４００μＬ混合物となる。次に、この混合物をフォーカシングトレイ（focusing tray）（Ｂｉｏ－Ｒａｄ、米国）のサンプルセルに入れた。再蒸留水で湿潤された濾紙２枚を正及び負の電極の上方に置いた。上記濾紙は、サンプル中の不純物及び塩類を吸着することができ、これにより不純物及び塩類が後続の実験に影響を及ぼすこと、及び電極を損壊することを回避する。そして、ＲｅａｄｙＳｔｒｉｐ（商標）ＩＰＧ ｓｔｒｉｐストリップ（ｐＨ５－８／１７ｃｍ）を緩やかにフォーカシングトレイに入れた。サンプルが蒸発して後続の実験に影響を与えることを回避するように、２．５ｍＬの鉱油を均一にＩＰＧストリップに加えた。フォーカシングトレイの上カバーを覆い、ＰＲＯＴＥＡＮ ＩＥＦ ｃｅｌｌなどの電気フォーカシング電気泳動装置（Ｂｉｏ－Ｒａｄ、米国）に置いた。ＰＲＯＴＥＡＮ ＩＥＦ ｃｅｌｌ内のプログラムの設定が完了した後、５段階で一次元電気泳動を行った。第１段階は、水和反応（hydration）であり、その目的はサンプルをＩＰＧ ｓｔｒｉｐストリップに吸入させることであり、その設定条件は５０Ｖで１２時間行うことである。第２段階の目的は塩類イオン及び不純物を除去することであり、その設定条件は２５０Ｖで１５分間行うことである。第３段階は、電圧上昇の段階であり、その設定条件は４時間であり、リニアモードによって電圧をフォーカシング電圧１０，０００Ｖまで上昇させる。第４段階は、等電点フォーカシングの工程であり、その設定条件は５０，０００Ｖ^＊ｈｒである。第５段階は、電圧維持の段階であり、その設定条件は５００Ｖであり、これにより過剰な反応を回避する。一次元電気泳動が終了した後、ＩＰＧストリップを－８０℃で保存して使用に備えるか又は平衡処理（equilibration）した後にＳＤＳ－ＰＡＧＥを行うことができる。

ドデシル硫酸ナトリウム－ポリアクリルアミドゲル電気泳動
ドデシル硫酸ナトリウム－ポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ－ＰＡＧＥ）は、タンパク質の分子量が異なる特性を利用してタンパク質を分離する技術である。まず、ＩＰＧストリップを脱イオン水で洗い流した後、濾紙で接着面の鉱油及び水を吸引除去し、そしてＩＰＧストリップを使い捨て式水和トレイに置いた。次に、６ｍＬの平衡緩衝液Ｉ（６Ｍ尿素、２％ ＳＤＳ、０．３７５Ｍ Ｔｒｉｓ、２０％グリセロール、１３０ｍＭ ＤＴＴ、ｐＨ８．８）を加え、室温で２０分間振とうした。その後、ＩＰＧストリップを取り出し、濾紙で接着面の平衡緩衝液Ｉを吸引除去し、更にＩＰＧ ｓｔｒｉｐストリップを使い捨て式水和トレイに置いた。そして、６ｍＬの平衡緩衝液ＩＩ（６Ｍ尿素、２％ ＳＤＳ、０．３７５Ｍ Ｔｒｉｓ、２０％グリセロール、１３５ｍＭヨードアセトアミド、ｐＨ８．８）を加え、室温で２０分間振とうした。上記のＩＰＧストリップの平衡処理を完成した後、ＳＤＳ－ＰＡＧＥを行うことができる。

まず、１２．５％の分離ゲル（separation gel）を調製した。更に、ＩＰＧストリップを分離ゲルの上縁に置き、適量の溶解したアガロース（ＲｅａｄｙＰｒｅｐ（商標）Ｏｖｅｒｌａｙ Ａｇａｒｏｓｅ、Ｂｉｏ－Ｒａｄ、米国）を加えた。タンパク質の分子量の判定を容易にするために、タンパク質分子量標準品が滴下された濾紙をＩＰＧストリップの隣に置いた。アガロースが凝固した後、ストリップとタンパク質分子量標準品付きの濾紙を分離ゲルの上方に固定することができる。そして、電気泳動フィルムを電気泳動セル機器（Ｂｉｏ－Ｒａｄ、米国）に入れ、電気泳動緩衝液（２５ｍＭ Ｔｒｉｓ、１９２ｍＭグリシン、０．１％ ＳＤＳ、ｐＨ８．３）を注入した。２６ｍＡの電流で１５時間電気泳動を行い、分子量が異なるタンパク質を分離した。

（５）ウェスタンブロット法
タンパク質の電気泳動後の上記フィルムを転写緩衝液［２５ｍＭ Ｔｒｉｓベース、１９２ｍＭ ｇｌｙｃｉｎｅ、１０％（ｖ／ｖ）ｍｅｔｈａｎｏｌ、ｐＨ８．３］に浸漬した。適切なサイズのＰＶＤＦ膜を切り出し、メタノールに数秒間浸漬した後、脱イオン水で１回洗い流し、更に転写緩衝液に浸漬した。上記ゲルと上記ＰＶＤＦ膜を転写緩衝液に１５分間浸漬した後、濾紙、フィルム、ＰＶＤＦ膜、濾紙をこの順にトランスブロットセルに入れ、１，３００ｍＡの電流で１．５時間転写した。

転写が完了した後、室温で上記ＰＶＤＦ膜をブロッキング緩衝液［ｂｌｏｃｋｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒ；２０ｍＭ Ｔｒｉｓベース、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、５％（ｗ／ｖ）スキムミルク、ｐＨ７．４］に１時間浸漬した。そして、適量の上記実験で調製されたマイコプラズマ・ヒオリニス抗血清（１，０００倍希釈）を加え、室温で１時間振とうした。その後、ブロッキング緩衝液を除去し、適量のＴＢＳＴ緩衝液［２０ｍＭ Ｔｒｉｓベース、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、０．０５％（ｖ／ｖ）Ｔｗｅｅｎ（登録商標）－２０、ｐＨ７．４］で上記ＰＶＤＦ膜を３回（５分間／回）洗浄した後、アルカリ性ホスファターゼ結合ヤギ抗豚抗体［ａｌｋａｌｉｎｅ ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ－ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ ｇｏａｔ ａｎｔｉ－ｐｉｇ ＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）、（２，０００倍希釈）］を含有するブロッキング緩衝液を加えた。暗所で１時間振とうした後、ＴＢＳＴ緩衝液で上記ＰＶＤＦ膜を三回洗浄し、ＮＢＴ／ＢＣＩＰ溶液（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、米国）を加えて呈色反応を行うことができる。

（６）タンパク質のアイデンティティの同定：
上記ウェスタンブロット法の呈色反応の結果に呈色した点（合計１７個の呈色点、図示せず）があり、これらの点は、マイコプラズマ・ヒオリニスにおける上記マイコプラズマ・ヒオリニス抗血清と反応したタンパク質である。上記呈色反応結果とタンパク質電気泳動が行われた上記フィルムの相対位置とを比較すると、マイクロピペットで当該相対位置でのフィルムを切り出して質量分析を行った。そして、得られたアミノ酸配列をタンパク質配列ライブラリーで検索して比較することにより、タンパク質のアイデンティティを同定した。上記１７個の呈色点で表されるタンパク質のアミノ酸配列をタンパク質配列ライブラリーで比較した後、そのうちの３つのタンパク質はそれぞれＸｙｌＦ、ＤｎａＫ及びＰ７２であり、それぞれ配列番号１、配列番号２、及び配列番号３で示される配列を有することが確認された。本発明は、この３つのタンパク質を使用して後続の研究を行う。

実施例２：本発明の発現ベクターを構築する。
（１）部位特異的突然変異及びクローニング：
米・国立生物工学情報センター（National Center for Biotechnology Information、ＮＣＢＩ）の資料によると、上記ＸｙｌＦ、ＤｎａＫ及びＰ７２の遺伝子配列は、それぞれ４個、１個、及び８個のＴＧＡコドンを有する。ＴＧＡコドンは、大腸菌発現系で終止コドン（stop codon）と見なされる。大腸菌発現系で全長タンパク質を生産することができないことを回避するために、更にポリメラーゼ連鎖反応で抗原遺伝子配列中のＴＧＡをＴＧＧに突然変異させる。

マイコプラズマ・ヒオリニスゲノムの抽出
ＤＮＡ精製キット（Ｔｉｓｓｕｅ＆Ｃｅｌｌ Ｇｅｎｏｍｉｃ ＤＮＡ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｋｉｔ；ＧＭｂｉｏｌａｂ、台湾）でマイコプラズマ・ヒオリニスゲノムを抽出した。まず、４．５ｍＬの培養菌液を遠心管に取り、遠心分離（５，８７０×ｇ、５分間）した後、上澄液を除去し、菌体部分を収集した。次に、２０μＬのプロテイナーゼＫ（ｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ Ｋ；１０ｍｇ／ｍＬ）及び２００μＬの抽出試薬を加え、５６℃で３時間作用させた。その後、２００μＬの結合試薬（binding solution）を加え、７０℃で１０分間作用させた。反応終了後、２００μＬの無水アルコールをマイクロ遠心管に加えて均一に混合し、全ての溶液（沈殿物を含む）をスピンカラム（spin column）に吸い込み、スピンカラムを収集チューブ（collection tube）の中に置いた。２分間遠心分離（１７，９７０×ｇ）した後、流出液を除去し、更に３００μＬの結合試薬をスピンカラムに加えた。２分間遠心分離（１７，９７０×ｇ）した後、流出液を除去した。その後、７００μＬの洗浄試薬（wash solution）をスピンカラムに加え、２分間遠心分離（１７，９７０×ｇ）した後、流出液を除去し、上記の工程を１回繰り返した。最後に１７，９７０×ｇの条件で５分間遠心分離し、残留アルコールを除去した。スピンカラムを滅菌されたマイクロ遠心管に入れ、適量の無菌脱イオン水を加えてゲノムＤＮＡを排出させた。

ＸｙｌＦ抗原遺伝子の部位特異的突然変異
まず、ＸｙｌＦ抗原遺伝子に対して増幅プライマーＸｙｌＦ／ＸｙｌＲ及び変異プライマーＸｙｌＭ１～ＸｙｌＭ８を設計し、プライマー配列は、以下の表１で示される。

マイコプラズマ・ヒオリニスゲノムをテンプレートとして、ＸｙｌＦ／ＸｙｌＭ２、ＸｙｌＭ１／ＸｙｌＭ４、ＸｙｌＭ３／ＸｙｌＭ６、ＸｙｌＭ５／ＸｙｌＭ８、ＸｙｌＭ７／ＸｙｌＲなどのプライマー群でそれぞれＤＮＡ断片の増幅を行った。５０μＬのＰＣＲ反応混合物には、１倍のＧＤＰ－ＨｉＦｉ ＰＣＲ緩衝液Ｂ、２００μＭのｄＮＴＰ（ｄＡＴＰ、ｄＴＴＰ、ｄＧＴＰ及びｄＣＴＰ）、１μＭ増幅プライマー、２００ｎｇマイコプラズマ・ヒオリニスゲノム及び１Ｕ ＧＤＰ－ＨｉＦｉ ＤＮＡポリメラーゼを含有する。ＰＣＲ反応条件は、９６℃で５分間反応し（１工程）、９４℃で３０秒間反応し、５５℃で３０秒間反応し、６８℃で３０秒間反応し（３５サイクル）、６８℃で５分間反応する（１工程）ことである。

ＰＣＲ反応終了後、アガロースゲル電気泳動によって予測サイズのＤＮＡ断片の有無が確認された。ゲル抽出キット（Ｇｅｌ－Ｍ（商標）ｇｅｌ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ｓｙｓｔｅｍ ｋｉｔ）でＰＣＲ生成物を回収した。更に、回収した５つのＰＣＲ生成物をテンプレートとして、ＸｙｌＦ／ＸｙｌＲプライマーの組み合わせで遺伝子の増幅を行った。ＰＣＲ反応条件は、９６℃で２分間反応し（１工程）、９４℃で３０秒間反応し、５５℃で３０秒間反応し、６８℃で４５秒間反応し（３５サイクル）、６８℃で５分間反応する（１工程）ことである。このＰＣＲ反応は、部位特異的突然変異のＸｙｌＦ遺伝子を得ることができる。最後に、ＰＣＲ－Ｍ（商標）Ｃｌｅａｎ Ｕｐ ｓｙｓｔｅｍ ｋｉｔでＰＣＲ生成物を回収した。シーケンシング結果によれば、本発明のＸｙｌＦ遺伝子は、配列番号４で示される配列を有する。

ＤｎａＫ抗原遺伝子の部位特異的突然変異
まず、ＤｎａＫ抗原遺伝子に対して増幅プライマーＤｎａＫＦ／ＤｎａＫＲ及び変異プライマーＤｎａＫＭ１～ＤｎａＫＭ２を設計し、プライマー配列は、以下の表２で示される。

マイコプラズマ・ヒオリニスゲノムをテンプレートとして、ＤｎａＫＦ／ＤｎａＫＭ２及びＤｎａＫＭ１／ＤｎａＫＲなどのプライマー群でそれぞれＤＮＡ断片の増幅を行った。５０μＬのＰＣＲ反応混合物に、１倍のＧＤＰ－ＨｉＦｉ ＰＣＲ緩衝液Ｂ、２００μＭのｄＮＴＰ（ｄＡＴＰ、ｄＴＴＰ、ｄＧＴＰ及びｄＣＴＰ）、１μＭ増幅プライマー、２００ｎｇマイコプラズマ・ヒオリニスゲノム及び１Ｕ ＧＤＰ－ＨｉＦｉ ＤＮＡポリメラーゼを含有する。ＰＣＲ反応条件は、９６℃で５分間反応し（１工程）、９４℃で３０秒間反応し、５５℃で３０秒間反応し、６８℃で３０秒間反応し（３５サイクル）、６８℃で５分間反応する（１工程）ことである。

ＰＣＲ反応終了後、アガロースゲル電気泳動によって予測サイズのＤＮＡ断片の有無が確認された。Ｇｅｌ－Ｍ（商標）ｇｅｌ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ｓｙｓｔｅｍ ｋｉｔでＰＣＲ生成物を回収した。その後、回収した２つのＰＣＲ生成物をテンプレートとして、ＤｎａＫＦ／ＤｎａＫＲプライマーの組み合わせで遺伝子の増幅を行った。ＰＣＲ反応条件は、９６℃で２分間反応し（１工程）、９４℃で３０秒間反応し、５５℃で３０秒間反応し、６８℃で４５秒間反応し（３５サイクル）、６８℃で５分間反応する（１工程）ことである。このＰＣＲ反応は、部位特異的突然変異のＤｎａＫ遺伝子を得ることができる。最後に、ＰＣＲ－Ｍ（商標）Ｃｌｅａｎ Ｕｐ ｓｙｓｔｅｍ ｋｉｔでＰＣＲ生成物を回収した。シーケンシング結果によれば、本発明のＤｎａＫ遺伝子は、配列番号５で示される配列を有する。

Ｐ７２抗原遺伝子の部位特異的突然変異
まず、Ｐ７２抗原遺伝子に対して増幅プライマーＰ７２Ｆ／Ｐ７２Ｒ及び変異プライマーＰ７２Ｍ１～Ｐ７２Ｍ１６を設計し、プライマー配列は、以下の表３で示される。

マイコプラズマ・ヒオリニスゲノムをテンプレートとして、Ｐ７２Ｆ／Ｐ７２Ｍ２、Ｐ７２Ｍ１／Ｐ７２Ｍ４、Ｐ７２Ｍ３／Ｐ７２Ｍ６、Ｐ７２Ｍ５／Ｐ７２Ｍ８、Ｐ７２Ｍ７／Ｐ７２Ｍ１０、Ｐ７２Ｍ９／Ｐ７２Ｍ１２、Ｐ７２Ｍ１１／Ｐ７２Ｍ１４、Ｐ７２Ｍ１３／Ｐ７２Ｍ１６、Ｐ７２Ｍ１５／Ｐ７２Ｒなどのプライマー群でそれぞれＤＮＡ断片の増幅を行った。５０μＬのＰＣＲ反応混合物に、１倍のＧＤＰ－ＨｉＦｉ ＰＣＲ緩衝液Ｂ、２００μＭのｄＮＴＰ（ｄＡＴＰ、ｄＴＴＰ、ｄＧＴＰ及びｄＣＴＰ）、１μＭ増幅プライマー、２００ｎｇマイコプラズマ・ヒオリニスゲノム及び１Ｕ ＧＤＰ－ＨｉＦｉ ＤＮＡポリメラーゼを含有する。ＰＣＲ反応条件は、９６℃で５分間反応し（１工程）、９４℃で３０秒間反応し、５５℃で３０秒間反応し、６８℃で３０秒間反応し（３５サイクル）、６８℃で５分間反応する（１工程）ことである。

ＰＣＲ反応終了後、アガロースゲル電気泳動によって予測サイズのＤＮＡ断片の有無が確認された。Ｇｅｌ－Ｍ（商標）ｇｅｌ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ｓｙｓｔｅｍ ｋｉｔでＰＣＲ生成物を回収した。その後、回収した９つのＰＣＲ生成物をテンプレートとして、Ｐ７２Ｆ／Ｐ７２Ｒプライマーの組み合わせで遺伝子の増幅を行った。ＰＣＲ反応条件は、９６℃で２分間反応し（１工程）、９４℃で３０秒間反応し、５５℃で３０秒間反応し、６８℃で１分間反応し（３５サイクル）、６８℃で５分間反応する（１工程）ことである。このＰＣＲ反応は、部位特異的突然変異のＰ７２遺伝子を得ることができる。最後に、ＰＣＲ－Ｍ（商標）Ｃｌｅａｎ Ｕｐ ｓｙｓｔｅｍ ｋｉｔでＰＣＲ生成物を回収した。シーケンシング結果によれば、本発明のＰ７２遺伝子は、配列番号６で示される配列を有する。

（２）本発明のマイコプラズマ・ヒオリニス抗原発現プラスミドの構築：
異なる融合パートナー（fusion partner）遺伝子を含有するプラスミドを骨格としてマイコプラズマ・ヒオリニス抗原発現プラスミドの構築を行った。融合パートナー遺伝子は、それぞれ大腸菌ＤｓｂＣ、ＭｓｙＢ及びＦｋｌＢのＤＮＡ配列である。発現プラスミドの構築の流れは、以下のとおりである。

ＢａｍＨＩ及びＳａｌＩでそれぞれ上記実験で調製された本発明のＸｙｌＦ遺伝子、ＤａｎＫ遺伝子、及びＰ７２遺伝子を切り出し、更にそれぞれＴ４ ＤＮＡ ｌｉｇａｓｅでＤＮＡ断片を同じ制限酵素で切り出したＤｓｂＣ融合発現プラスミド、ＭｓｙＢ融合発現プラスミド、及びＦｋｌＢ融合発現プラスミドに結合した。そして、結合生成物を大腸菌ＥＣＯＳ ９－５に形質転換した。コロニーポリメラーゼ連鎖反応で形質転換体をスクリーニングした。ＤＮＡ電気泳動によって予測サイズのＤＮＡ断片の有無が確認された。形質転換体中の組換えプラスミドが外挿したＤＮＡを有することが確認された後、形質転換体中のプラスミドを抽出してＤＮＡシーケンシングを行った。ＤＮＡ配列が正しいプラスミドをそれぞれｐＥＴ－ＤｓｂＣ－ＸｙｌＦ（配列番号７）、ｐＥＴ－ＭｙｓＢ－ＤｎａＫ（配列番号８）、及びｐＥＴ－ＦｋｌＢ－Ｐ７２（配列番号９）と命名した。

実施例３：本発明のサブユニットワクチンの調製及び応用。
（１）本発明の発現ベクターで組換え抗原を発現させる：
マイコプラズマ・ヒオリニス抗原発現プラスミドをＥ．ｃｏｌｉ ＢＬ２１（ＤＥ３）に形質転換した。菌株を発現させる単一のコロニーを選択し、カナマイシン（kanamycin）（最終濃度３０μｇ／ｍＬ）を含有するＬＢ培地１２ｍＬに接種し、３７℃及び１８０ｒｐｍの条件で一晩培養した。そして、この培養菌液１０ｍＬを取り出してカナマイシン（最終濃度３０μｇ／ｍＬ）を含有するＬＢ培地１Ｌに加え、ＯＤ６００が約０．４～０．６程度になるまで振とう培養（３７℃、１８０ｒｐｍ）した。次に、２８℃下で０．１ｍＭのイソプロピル－β－Ｄ－チオガラクトシドを加えて発現を誘導した。４時間誘導した後、遠心分離（１０，０００×ｇ、１０分間、４℃）して菌体部分を収集した。更に、菌体を１０ｍＬのリン酸緩衝溶液（２０ｍＭリン酸ナトリウム、５００ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ７．４）に懸濁し、超音波破砕機で菌体を破砕した後、遠心分離（３０，９６６×ｇ、３０分間）して上澄液部分を収集した。最後に、０．２２μｍの濾過膜で収集した上澄液を濾過した。タンパク質電気泳動によって組換え抗原の発現状況及び可溶性を観察した。実験結果を図１に示す。図１の結果から、本発明の組換え抗原の大腸菌発現系での発現状況が良好であることが観察された。また、本発明の組換え抗原は、いずれも優れた可溶性を有し、本発明が適切な融合パートナーを選択したことを示している。

そして、組換え抗原がＨｉｓ ｔａｇを有して、ニッケル又はコバルトイオンと配位共有結合を形成できる特性を利用して、固定化金属イオンアフィニティークロマトグラフィー（immobilized-metal ion affinity chromatography）でタンパク質精製を行った。組換え抗原の精製の方式として、タンパク質液体クロマトグラフィーシステムＡＥＫＴＡ ｐｒｉｍｅ ｐｌｕｓ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ、スウェーデン）で５ｍＬ ＨｉＴｒａｐ（商標）Ｎｉ ｅｘｃｅｌカラム（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ、スウェーデン）を使用する。まず、２５ｍＬのリン酸緩衝溶液でカラムを平衡させた後、上記上澄液をＨｉＴｒａｐ（商標）Ｎｉ ｅｘｃｅｌカラムに注入した。サンプル注入が完了した後、３０ｍＭのイミダゾール（imidazole）を含有する洗浄緩衝液（２０ｍＭリン酸ナトリウム、５００ｍＭ ＮａＣｌ、３０ｍＭイミダゾール、ｐＨ７．４）１００ｍＬで非特異的に結合したタンパク質を洗浄除去した。最後に、２５０ｍＭのイミダゾールを含有する溶離緩衝液（２０ｍＭリン酸ナトリウム、５００ｍＭ ＮａＣｌ、２５０ｍＭイミダゾール、ｐＨ７．４）１５０ｍＬで樹脂での組換え抗原を溶離し、その原理は、高濃度のイミダゾールで組換え抗原と樹脂結合部位を競争させることにより、組換え抗原を樹脂から溶離するものである。精製した抗原溶液をＡｍｉｃｏｎ（商標）ｕｌｔｒａ－１５ ｕｌｔｒａｃｅｌ－３０Ｋ遠心管（Ｍｅｒｃｋ Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ、米国）に入れ、４℃、２，６００×ｇで適切な体積に遠心分離した後、４℃で貯蔵して使用に備える。精製結果を図２に示す。図から、本実験では純度の優れた本発明の組換え抗原が得られたことが分かった。

（２）本発明のサブユニットワクチンを調製してその免疫保護効果をテストする：
後続の段落で示される表の調製条件に従って、上記実験で調製された本発明の組換え抗原とアジュバント（アルミゲル）とを均一に混合することで、それぞれ単一抗原を含有する複数種のサブユニットワクチン及び複数種の抗原を含有するカクテルワクチンを調製した。ワクチン１回分の投与量は２ｍＬであり、その含まれる各組換え抗原の含有量は２００μｇである。

試験１：単一抗原の免疫保護効果をテストする
本実験は、家畜衛生試験所動物用薬品検定分所遺伝子改造製品（genetically modified organisms、ＧＭＯｓ）動物舍で行った。マイコプラズマ・ヒオリニス抗体検出結果が陰性である３週齢の豚を１２匹選択し、ランダムに群分けし、合計でＡ～Ｄ群に分ける。各群の豚の数は３匹であり、そのうち、Ａ～Ｃ群は実験群であり、Ｄ群は対照群である。Ａ～Ｃ群の豚は、３及び５週齢にそれぞれ筋肉注射によって本実験のワクチン（投与量２ｍＬ）を１回注射した。Ｄ群には、注射を行っていない。ワクチン成分を以下の表４に示す。

次に、７週齢（即ち免疫後２週間）の時に、マイコプラズマ・ヒオリニスの野生型分離株ＡＴＩＴ－２の培養液で腹腔誘発試験を行った。豚が１０週齢（即ち誘発試験後３週間）になる時に、病理解剖学検査を行った。腹膜炎、胸膜炎、心膜炎及び関節腫脹などの病変を引き起こす豚のパーセンテージを計算した。肉眼病変評価は、Ｍａｇｎｕｓｓｏｎらが提案した方法に従って行う（Ｖｅｔ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｐａｔｈｏｌ．，６１：８３～９６，１９９８）。

実験結果を以下の表５に示す。ＸｙｌＦで調製されたサブユニットワクチンは、豚の腹膜炎及び胸膜炎の発生を減少させることができ、かつ免疫化された豚の平均病変スコアは非免疫化された対照群よりも低いため、ＸｙｌＦは明らかな免疫保護反応を誘導することができることを示している。ＤｎａＫ及びＰ７２で調製されたサブユニットワクチンは、それぞれ腹膜炎及び胸膜炎の発生を減少させることができる。

なお、表５のデータは、ＸｙｌＦで調製されたサブユニットワクチンが腹膜炎及び胸膜炎の軽減にのみ有利であるとは解釈することができず、ＸｙｌＦで調製されたサブユニットワクチンは実験を行う間に他の病徴に対する効果が顕著でないことしか示すことができない。同様に、表５のデータは、ＤｎａＫ又はＰ７２で調製されたサブユニットワクチンがそれぞれ腹膜炎又は胸膜炎の軽減にのみ有利であると解釈することができず、ＤｎａＫ又はＰ７２で調製されたサブユニットワクチンが実験を行う間に他の病徴に対する効果が顕著でないことしか示すことができない。

試験２：カクテルワクチンの免疫保護効果をテストする
本実験は、家畜衛生試験所動物用薬品検定分所遺伝子改造製品動物舍で行った。マイコプラズマ・ヒオリニス抗体検出結果が陰性である４週齢の豚を２４匹選択し、ランダムに群分けし、合計で免疫群（Ｅ群）及び対照群（Ｆ群）２つの群に分ける。各群の豚の数は１２匹である。免疫群の豚は、４及び６週齢にそれぞれ筋肉注射によって本実験のワクチン（投与量２ｍＬ）を１回注射した。対照群には、免疫処理が行われていない。ワクチン成分を以下の表６に示す。

実験結果を以下の表７に示す。本発明のカクテルワクチン（この実験で本発明の組換え抗原を３種混合したもの）は、腹膜炎、胸膜炎、心膜炎及び関節腫脹などのマイコプラズマ・ヒオリニス感染の臨床症状を顕著に減少させることができ、その効果は単一抗原サブユニットワクチン（上記表５のような）の効果よりも良い。

Claims (11)

1. 原核細胞発現系で、マイコプラズマ・ヒオリニス（Mycoplasma hyorhinis）感染により引き起こされる病徴を回避するための組成物中の活性成分を生産するための発現ベクターであって、前記発現ベクターは、
   プロモーター及びリボソーム結合部位を含む発現エレメントと、
   Ｐ７２、ＸｙｌＦ、ＤｎａＫ、又はそれらの組み合わせをコードするヌクレオチド配列と、
   融合パートナーをコードする配列とを含み、
   前記ヌクレオチド配列は、配列番号６、配列番号４、配列番号５、又はそれらの組み合わせで示される配列を含み、
   前記融合パートナーが、大腸菌ＤｓｂＣ、大腸菌ＭｓｙＢ、大腸菌ＦｋｌＢ、又はそれらの組み合わせであり、
   前記ヌクレオチド配列がＸｙｌＦをコードする場合、前記融合パートナーは大腸菌ＤｓｂＣであり、
   前記ヌクレオチド配列がＤｎａＫをコードする場合、前記融合パートナーは大腸菌ＭｓｙＢであり、又は
   前記ヌクレオチド配列がＰ７２をコードする場合、前記融合パートナーは大腸菌ＦｋｌＢである、発現ベクター。
2. ヒスチジンタグの配列、グルタチオンＳ－トランスフェラーゼタグの配列、又はそれらの組み合わせを更に含む、請求項１に記載の発現ベクター。
3. 原核細胞発現系で、マイコプラズマ・ヒオリニス（Mycoplasma hyorhinis）感染により引き起こされる病徴を回避するための組成物中の活性成分を生産するための発現ベクターであって、前記発現ベクターは、
   プロモーター及びリボソーム結合部位を含む発現エレメントと、
   Ｐ７２、ＸｙｌＦ、ＤｎａＫ、又はそれらの組み合わせをコードするヌクレオチド配列と、
   融合パートナーをコードする配列とを含み、
   前記ヌクレオチド配列は、配列番号６、配列番号４、配列番号５、又はそれらの組み合わせで示される配列を含み、
   前記ヌクレオチド配列はさらに、配列番号７、配列番号８、又は配列番号９で示される配列を含む、発現ベクター。
4. 前記原核細胞発現系が、大腸菌発現系である、請求項１に記載の発現ベクター。
5. 可溶性タンパク質を生産する方法であって、
   前記可溶性タンパク質は、Ｐ７２、ＸｙｌＦ、ＤｎａＫ、又はそれらの組み合わせであり、
   前記方法は、
   （１）原核細胞発現系を提供する工程と、
   （２）前記原核細胞発現系で請求項１～４のいずれか一項に記載の発現ベクター中の前記ヌクレオチド配列を発現させる工程とを含む、方法。
6. 前記工程（２）で得られた生成物をニッケルイオンアフィニティーカラム又はグルタチオンＳアフィニティーカラムに通して前記可溶性タンパク質を取得する工程を更に含む、請求項５に記載の方法。
7. マイコプラズマ・ヒオリニス（Mycoplasma hyorhinis）感染により引き起こされる病徴を回避するための組成物であって、
   Ｐ７２を含む活性成分と、
   アジュバントとを含み、
   前記Ｐ７２が、配列番号３で示される配列を含み、
   前記病徴が胸膜炎を含む、組成物。
8. 前記活性成分が、ＤｎａＫをさらに含み、前記ＤｎａＫが、配列番号２で示される配列を含む、請求項７に記載の組成物。
9. 前記活性成分の濃度が、前記組成物の総体積を基に、５０～３００μｇ／ｍＬである、請求項７又は８に記載の組成物。
10. 前記アジュバントが、フロイント完全又は不完全アジュバント、アルミゲル、界面活性剤、アニオン性ポリマー、ペプチド、油エマルジョン又はそれらの組み合わせを含む、請求項７～９のいずれか一項に記載の組成物。
11. 前記病徴は腹膜炎をさらに含む、請求項８に記載の組成物。

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