JP7219491B2 - 天然抗菌物質の製造方法及び該製造方法により製造された天然抗菌物質を含む抗菌剤 - Google Patents

天然抗菌物質の製造方法及び該製造方法により製造された天然抗菌物質を含む抗菌剤 Download PDF

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Description

本発明は、天然抗菌物質の製造方法及び該製造方法により製造された天然抗菌物質を含む抗菌組成物に関する。
抗菌物質は、他の微生物の成長を防げる薬物であり、バクテリア、カビまたはウィルスなどを取り除くために用いられる。
現在、抗菌剤は、１３０余種類が開発されており、これらの抗菌剤は、合成抗菌剤と天然抗菌剤とに分けられるが、合成抗菌剤が天然抗菌剤の約５～６倍ほどの市場規模を形成している。
現在、合成抗菌剤は、自体の毒性により使用量が制限されている。このような合成抗菌剤の欠点を補うために、化学的な抗菌剤を天然抗菌剤に取って代えようとする動きが盛んになっている。
大韓民国登録特許公報第２１２４５９２号
本発明は、天然物質から抽出した抗菌物質を提供することを目的としている。
本発明の一実施形態に係る天然抗菌物質の製造方法は、ウイキョウ抽出物水溶液とアイ（藍）抽出物水溶液に有機溶媒を混合してウイキョウ抽出物高次分画物とアイ抽出物高次分画物を得るステップと、前記得られたウイキョウ抽出物高次分画物とアイ抽出物高次分画物に超音波刺激を加えて、ナノ化されたウイキョウ抽出物分画物とナノ化されたアイ抽出物分画物を得るステップと、前記ナノ化されたウイキョウ抽出物分画物とナノ化されたアイ抽出物分画物に電気刺激を加えるステップと、を含んでいてもよい。
また、前記ウイキョウ抽出物水溶液、前記アイ抽出物水溶液、前記有機溶媒の重量比は、１：１．５：７～１：２：８であってもよい。
本発明の一実施形態に係る抗菌剤は、上記の製造方法により製造された天然抗菌物質と糖アルコールとを含む天然抗菌物質を含んでいてもよい。
さらに、前記抗菌剤は、前記ウイキョウ抽出物１０～３０重量部、アイ抽出物２０～３０重量部、ソルビトール１０～２０重量部、マルチトール２０～４０重量部を含んでいてもよい。
本発明の一実施形態に係る非人体用抗菌剤は、抗菌剤を多重光触媒水またはｐＨ２．７～６．５の次亜塩素酸水に０．１～５％の濃度で添加してもよい。
本発明の一実施形態に係る人体用抗菌剤は、抗菌剤を多重光触媒水またはｐＨ２．７～６．５の次亜塩素酸水に０．１～０．５％の濃度で添加してもよい。
本発明の一実施形態に係る天然抗菌物質は、ヒトの細胞膜には安全でありながらも、細菌の細胞膜構造を乱して抗菌、抗塵、抗ウィルスの効能を極大化させるというメリットがある。
異なる濃度で添加された天然抗菌物質にメチシリン耐性黄色ブドウ球菌（ＭＲＳＡ）を混合して培養した後、固体培養皿を写真撮影したものである。 異なる濃度で添加された天然抗菌物質にメチシリン耐性黄色ブドウ球菌（ＭＲＳＡ）を混合して培養した後、固体培養皿を写真撮影したものである。 異なる濃度で添加された天然抗菌物質にメチシリン耐性黄色ブドウ球菌（ＭＲＳＡ）を混合して培養した後、固体培養皿を写真撮影したものである。 異なる濃度で添加された天然抗菌物質にメチシリン耐性黄色ブドウ球菌（ＭＲＳＡ）を混合して培養した後、固体培養皿を写真撮影したものである。 異なる濃度で添加された天然抗菌物質にメチシリン耐性黄色ブドウ球菌（ＭＲＳＡ）を混合して培養した後、固体培養皿を写真撮影したものである。 異なる濃度で添加された天然抗菌物質にメチシリン耐性黄色ブドウ球菌（ＭＲＳＡ）を混合して培養した後、固体培養皿を写真撮影したものである。 異なる濃度で添加された天然抗菌物質にカルバペネマーゼ産生腸内細菌科細菌（ＣＰＥ）を混合して培養した後、固体培養皿を写真撮影したものである。 異なる濃度で添加された天然抗菌物質にカルバペネマーゼ産生腸内細菌科細菌（ＣＰＥ）を混合して培養した後、固体培養皿を写真撮影したものである。 異なる濃度で添加された天然抗菌物質にカルバペネマーゼ産生腸内細菌科細菌（ＣＰＥ）を混合して培養した後、固体培養皿を写真撮影したものである。 異なる濃度で添加された天然抗菌物質にカルバペネマーゼ産生腸内細菌科細菌（ＣＰＥ）を混合して培養した後、固体培養皿を写真撮影したものである。 、異なる濃度で添加された天然抗菌物質にカルバペネマーゼ産生腸内細菌科細菌（ＣＰＥ）を混合して培養した後、固体培養皿を写真撮影したものである。 異なる濃度で添加された天然抗菌物質にカルバペネマーゼ産生腸内細菌科細菌（ＣＰＥ）を混合して培養した後、固体培養皿を写真撮影したものである。 本発明の一実施形態に係る天然抗菌物質１％においてＭＲＳＡの抗菌力が持続するかどうかを実験したことを示すものである。 質量分析器を用いて、黄色ブドウ球菌と黄色ブドウ球菌に蒸留水を添加して同定したデータである。 質量分析器を用いて、黄色ブドウ球菌と黄色ブドウ球菌に７０％エタノールを添加して同定したデータである。 質量分析器を用いて、黄色ブドウ球菌と黄色ブドウ球菌にファブリーズ（登録商標）を添加して同定したデータである。 質量分析器を用いて、黄色ブドウ球菌と黄色ブドウ球菌に本発明の天然抗菌物質０．１％を添加して同定したデータである。 質量分析器を用いて、黄色ブドウ球菌と黄色ブドウ球菌に本発明の天然抗菌物質０．５％を添加して同定したデータである。 質量分析器を用いて、黄色ブドウ球菌と黄色ブドウ球菌に本発明の天然抗菌物質１％を添加して同定したデータである。 質量分析器を用いて、緑膿菌と緑膿菌に本発明の天然抗菌物質０．０５％を添加して同定したデータである。 質量分析器を用いて、緑膿菌と緑膿菌に本発明の天然抗菌物質０．１％を添加して同定したデータである。 質量分析器を用いて、緑膿菌と緑膿菌に本発明の天然抗菌物質０．５％を添加して同定したデータである。 質量分析器を用いて、緑膿菌と緑膿菌に本発明の天然抗菌物質１％を添加して同定したデータである。
＜天然抗菌物質の製造方法＞
本発明において、「抗菌」とは、菌を取り除くことだけではなく、カビ、ウィルス、寄生虫及びバクテリアのいずれか一つを取り除けることを意味する。したがって、本発明において指し示す抗菌剤とは、菌、カビ、ウィルス、バクテリアのいずれか一つを取り除ける物質のことを意味し、必ずしも辞書的な意味の「抗菌」に制限するものであるとは限らない。
本発明の一実施形態に係る天然抗菌物質の製造方法は、洗浄及び精選された天然植物性成分を発酵させた後、抽出溶媒で還流抽出して抽出液を得るステップ（Ｓ１０）、抽出液をろ過し、かつ、濃縮及び凍結乾燥して粉末化するステップ（Ｓ２０）、粉末を蒸留水に分散させた後、有機溶媒を用いて高次分画物を得るステップ（Ｓ３０）、高次分画物を混合し、超音波刺激を加えてナノ化するステップ（Ｓ４０）、ナノ化された天然植物性成分が互いに浸透されるように電気刺激を加えるステップ（Ｓ５０）、前記電気刺激の加えられたナノ化された天然植物性成分を加熱した後、真空乾燥するステップ（Ｓ６０）を含んでいてもよい。
１．抽出液収得ステップ（Ｓ１０）
ウイキョウとアイをきれいに洗浄し、それぞれエタノールを抽出溶媒として用いて１時間ずつ２回還流抽出してウイキョウ抽出液とアイ抽出液を得る。
２．粉末化ステップ（Ｓ２０）
次いで、ウイキョウ抽出液とアイ抽出液を通常の方法でろ過し、ろ過されたウイキョウ抽出液とアイ抽出液を回転式減圧濃縮器で濃縮し、濃縮されたウイキョウ抽出液とアイ抽出液をそれぞれ凍結乾燥して粉末化する。
３．高次分画物収得ステップ（Ｓ３０）
次いで、ウイキョウ抽出粉末とアイ抽出粉末のそれぞれに蒸留水を混合してウイキョウ抽出物粉末とアイ抽出物粉末を蒸留水に分散させ、有機溶媒を投入してウイキョウ抽出物高次分画物とアイ抽出物高次分画物を得る。ここで、有機溶媒としては、ヘキサン（ｈｅｘａｎｅ）、クロロホルム（ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍ）、酢酸エチル（ｅｔｈｙｌ ａｃｅｔａｔｅ）、ブタノール（ｂｕｔａｎｏｌ）のうちから選ばれるいずれか１種または２種以上により組成されたものが用いられる。
好ましくは、ウイキョウ抽出物粉末と蒸留水の重量比は、アイ抽出物粉末と蒸留水の重量比と同様である。好ましくは、粉末と蒸留水の重量比は、１：３～１：４であってもよい。
また、蒸留水に分散されたウイキョウ抽出物粉末（以下、ウイキョウ抽出物水溶液と称する。）、蒸留水に分散されたアイ粉末（以下、アイ抽出物水溶液と称する。）、有機溶媒の重量比は、１：１．５：７～１：２：８であってもよい。
好ましくは、ウイキョウ抽出物水溶液２０重量部、アイ抽出物水溶液３０重量部、有機溶媒１５０重量部を混合した後、３～５分間ボルテックスで混合してもよい。
４．ナノ化ステップ（Ｓ４０）
次いで、得られたウイキョウ抽出物高次分画物とアイ抽出物高次分画物がナノ化されるように超音波刺激を加える。前記超音波刺激は、３５０００Ｈｚ～５００００Ｈｚの周波数の超音波で３分間刺激した後、ｌｉｐｏｓｏｆａｓｔ（Ａｖｅｓｔｉｎ，Ｃａｎａｄａ）ナノエクストルーダー（ｎａｎｏ ｅｘｔｒｕｄｅｒ）を活かして２分間安定化させる過程を合計で１２回繰り返し行ってもよい。これにより、ナノ化されたウイキョウ抽出物分画物とアイ抽出物分画物が得られる。
５．電気刺激ステップ（Ｓ５０）
次いで、ナノ化されたウイキョウ分画物がナノ化されたアイ分画物に浸透されるように電気刺激を加える。ここで、電気刺激は、８０～１１０Ｖ、５０～６５ｍＡにて１０分～３０分間１回刺激してもよく、５０～１１０Ｖ、３０～５０ｍＡにて１０分～２０分間２回刺激してもよい。この過程において、ナノ化されたウイキョウ抽出物分画物がナノ化されたアイ抽出物分画物に浸透したり、逆に、ナノ化されたアイ分画物がナノ化されたウイキョウ分画物に浸透したりできる。
６．加熱及び真空乾燥ステップ（Ｓ６０）
次いで、電気刺激が加えられたウイキョウ及びアイ分画物を９００℃～１，１００℃で２５分～３５分間加熱した後、７時間真空乾燥して天然抗菌物質を得てもよい。
前記天然抗菌物質には、ウイキョウ抽出物とアイ抽出物が含まれる。好ましくは、前記ウイキョウ抽出物とアイ抽出物の重量比は、１：０．１～１：５であってもよい。
上述した天然抗菌物質は、ナノ化されたウイキョウ抽出物とアイ抽出物がイオン反応により互いに浸透されながら細菌の細胞膜構造を乱してしまうという特殊な構造を形成して抗菌効能を極大化させることができる。また、前記特殊構造は、ヒトの細胞膜には安全であるというメリットがある。
＜天然抗菌物質を含む抗菌剤＞
本発明の一実施形態に係る抗菌剤は、天然抗菌物質と糖アルコールとを含んでいてもよい。前記糖アルコールは、ソルビトール、キシリトール（Ｘｙｌｉｔｏｌ）、マンニトール（Ｍａｎｎｉｔｏｌ）、エリスリトール（Ｅｒｉｔｈｒｉｔｏｌ）、ラクチトール（Ｌａｃｔｉｔｏｌ）の少なくとも一種を含んでいてもよい。
本発明の一実施形態に係る天然抗菌物質を含む抗菌剤は、ウイキョウ抽出物、アイ抽出物、ソルビトール、マルチトールを含んでいてもよい。
一実施形態によれば、前記抗菌剤は、前記ウイキョウ抽出物０．１～３０重量部、アイ抽出物２～３０重量部、ソルビトール４～２０重量部、マルチトール５～４０重量部を含んでいてもよい。
好ましくは、ウイキョウ抽出物１～３０重量部、アイ抽出物５～３０重量部、ソルビトール１０～２０重量部、マルチトール２０～４０重量部を含んでいてもよい。
前記ウイキョウ抽出物と前記アイ抽出物は、上述した天然抗菌物質の製造方法により製造されたものであり、ナノ化されたウイキョウ抽出物とナノ化されたアイ抽出物が互いに浸透されて既存の植物抽出濃縮液よりも抗菌性を有する有効成分の結合部位への馴染み性を高めて抗菌機能を高めることができる。
本発明のマルチトールとソルビトールは、菌株の代謝を妨げて菌を死滅させることができる。なお、マルチトールはマンノース（ｍａｎｎｏｓｅ）に転換され、ソルビトールはグルコース（Ｇｌｕｃｏｓｅ）などのグリカン物質に転換されてもよい。このようにして転換されたグリカンは、細菌とウィルスを囲んでいる構成物質であって、細菌と細菌との間、またはウィルスと宿主との間の相互作用に影響を及ぼして細菌とウィルスの活性を阻害する。
また、ソルビトールとマルチトールは、韓国において食品添加物として許容されている程度に人体に無害であるというメリットがある。
＜抗菌効能テスト１＞
（１）抗生剤耐性スーパーバクテリアであるメチシリン耐性黄色ブドウ球菌（ＭＲＳＡ：Ｍｅｔｈｉｃｉｌｌｉｎ－ｒｅｓｉｓｔａｎｔ Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ）を液体培養液に接種する（Ｓ１）。
（２）前記液体培養液に接種されたＭＲＳＡと上述した天然抗菌物質を含む抗菌剤（ＮＸ２０２０と示される。）を各濃度別に混合して３７℃の培養器で１２時間液体培養する（Ｓ２）。
（３）各濃度別に１２時間液体培養された培養液を固体培養皿（血液寒天（ＢＡＰ）培地）に５０μｌずつ塗抹する（Ｓ３）。
（４）３７℃の培養器で６時間以上培養する。
図１ａは、前記ステップＳ２において抗菌剤成分を含まない液体培養液を３７℃の培養器で１２時間液体培養した後、前記ステップＳ３～Ｓ４を経たものを写真撮影したものである。
図１ｂは、前記ステップＳ２において多重光触媒水に混合された前記抗菌剤の濃度が１％である溶液に前記ＭＲＳＡ液体培養液を混合した後、３７℃の培養器で１２時間液体培養した後、前記ステップＳ３～Ｓ４を経たものを写真撮影したものである。
図１ｃは、前記ステップＳ２において多重光触媒水に混合された前記抗菌剤の濃度が０．５％である溶液に前記ＭＲＳＡ液体培養液を混合した後、３７℃の培養器で１２時間液体培養した後、前記ステップＳ３～Ｓ４を経たものを写真撮影したものである。
図１ｄは、前記ステップＳ２においてｐＨ５の次亜塩素酸水（Ｈｙｐｏｃｈｌｏｒｏｕｓ Ａｃｉｄ Ｗａｔｅｒ）に混合された前記抗菌剤の濃度が１％である溶液に前記ＭＲＳＡ液体培養液を混合した後、３７℃の培養器で１２時間液体培養した後、前記ステップＳ３～Ｓ４を経たものを写真撮影したものである。
図１ｅは、前記ステップＳ２においてｐＨ５の次亜塩素酸水（Ｈｙｐｏｃｈｌｏｒｏｕｓ Ａｃｉｄ Ｗａｔｅｒ）に混合された前記抗菌剤の濃度が０．５％である溶液に前記ＭＲＳＡ液体培養液を混合した後、３７℃の培養器で１２時間液体培養した後、前記ステップＳ３～Ｓ４を経たものを写真撮影したものである。
図１ｆは、対照群として、前記ステップＳ２において１％ファブリーズ溶液と前記ＭＲＳＡ液体培養液を混合した後、３７℃の培養器で１２時間液体培養した後、前記ステップＳ３～Ｓ４を経たものを写真撮影したものである。
図１ｂから図１ｅは、いずれも９９．９％の抗菌効能を示している。
＜抗菌効能テスト２＞
（１）抗生剤耐性スーパーバクテリアであるカルバペネマーゼ産生腸内細菌科細菌（ＣＰＥ：Ｃａｒｂａｐｅｎｅｍａｓｅ Ｐｒｏｄｕｃｉｎｇ Ｅｎｔｅｒｏｂｏａｃｔｅｒｉａｃｅａｅ）を液体培養液に接種する（Ｓ５）。
（２）前記液体培養液に接種されたＣＰＥと上述した天然抗菌物質を含む抗菌剤（ＮＸ２０２０と示される。）を各濃度別に混合して３７℃の培養器で１２時間液体培養する（Ｓ６）。
（３）各濃度別に１２時間液体培養されたＣＰＥ培養液を固体培養皿（ＢＡＰ培地）に５０μｌずつ塗抹する（Ｓ７）。
（４）３７℃の培養器で６時間以上培養する（Ｓ８）。
図２ａは、前記ステップＳ６において抗菌剤成分を含まない液体培養液を３７℃の培養器で１２時間液体培養した後、前記ステップＳ７～Ｓ８を経たものを写真撮影したものである。
図２ｂは、前記ステップＳ６において多重光触媒水に混合された前記抗菌剤の濃度が１％である溶液に前記ＣＰＥ液体培養液を混合した後、３７℃の培養器で１２時間液体培養した後、前記ステップＳ７～Ｓ８を経たものを写真撮影したものである。
図２ｃは、前記ステップＳ６において多重光触媒水に混合された前記抗菌剤の濃度が０．５％である溶液に前記ＣＰＥ液体培養液を混合した後、３７℃の培養器で１２時間液体培養した後、前記ステップＳ７～Ｓ８を経たものを写真撮影したものである。
図２ｄは、前記ステップＳ６においてｐＨ５の次亜塩素酸水（Ｈｙｐｏｃｈｌｏｒｏｕｓ Ａｃｉｄ Ｗａｔｅｒ）に混合された前記抗菌剤の濃度が１％である溶液に前記ＣＰＥ液体培養液を混合した後、３７℃の培養器で１２時間液体培養した後、前記ステップＳ７～Ｓ８を経たものを写真撮影したものである。
図２ｅは、前記ステップＳ６においてｐＨ５の次亜塩素酸水（Ｈｙｐｏｃｈｌｏｒｏｕｓ Ａｃｉｄ Ｗａｔｅｒ）に混合された前記抗菌剤の濃度が０．５％である溶液に前記ＣＰＥ液体培養液を混合した後、３７℃の培養器で１２時間液体培養した後、前記ステップＳ７～Ｓ８を経たものを写真撮影したものである。
図２ｆは、対照群として、前記ステップＳ６において１％ファブリーズ溶液と前記ＭＲＳＡ液体培養液を混合した後、３７℃の培養器で１２時間液体培養した後、前記ステップＳ７～Ｓ８を経たものを写真撮影したものである。
図２ｂから図２ｅは、いずれも９９．９％の抗菌効能を示している。
前記多重光触媒水とは、多重光触媒に水を添加したものを意味する。ここで、多重光触媒とは、光の有無を問わずに光触媒反応が起きるものであり、好ましくは、リン酸チタン化合物、二酸化チタン化合物、チタン、マンガン、二酸化マンガンの少なくとも一種を含んでいてもよい。水に多重光触媒を投入する場合に、水の中で活性酸素が生じて細菌、カビ、ウィルスなどの人体に有害な微生物を取り除くことができる。
＜抗菌効能テスト３＞
図３は、本発明の一実施形態に係る天然抗菌物質１％においてＭＲＳＡの抗菌力が持続するかどうかを実験したことを示すものである。図３を参照すると、天然抗菌物質１％においてＭＲＳＡの抗菌力が３ヵ月間持続することが分かる。
以下、天然抗菌物質ｎ％とは、多重光触媒水またはｐＨ５の次亜塩素酸水に本発明の天然抗菌物質が溶解されて濃度がｎ％となったことを意味する。
＜抗菌効能テスト４－黄色ブドウ球菌の除菌＞
図４から図９は、質量分析器を用いて、黄色ブドウ球菌と黄色ブドウ球菌に特定の物質を添加して同定したデータである。
図４を参照すると、黄色ブドウ球菌に蒸留水を添加した場合に質量分析器のスペクトルが保持されて黄色ブドウ球菌と細菌名が同定されたため、蒸留水では黄色ブドウ球菌が取り除けなかったことが分かる。
図５は、質量分析器を用いて、黄色ブドウ球菌と黄色ブドウ球菌に７０％エタノールを添加して同定したデータである。図５を参照すると、黄色ブドウ球菌に７０％エタノールを添加した場合に質量分析器のスペクトルが保持されて黄色ブドウ球菌と細菌名が同定されたため、７０％エタノールでは黄色ブドウ球菌が取り除けなかったことが分かる。
図６は、質量分析器を用いて、黄色ブドウ球菌と黄色ブドウ球菌にファブリーズを添加して同定したデータである。図６を参照すると、黄色ブドウ球菌にファブリーズを添加した場合に質量分析器のスペクトルが一部流失され、かつ、変形されて細菌名の同定に失敗したため、ファブリーズでは黄色ブドウ球菌が取り除かれたことが分かる。
図７は、質量分析器を用いて、黄色ブドウ球菌と黄色ブドウ球菌に本発明の天然抗菌物質０．１％を添加して同定したデータである。図７を参照すると、黄色ブドウ球菌に本発明の天然抗菌物質０．１％を添加した場合に質量分析器のスペクトルが一部流失され、かつ、変形されて細菌名の同定に失敗し、強度（ｉｎｔｅｎｓｉｔｙ）もまた３６９０から４５１へと大幅に下がったため、本発明の天然抗菌物質０．１％では黄色ブドウ球菌が取り除かれたことが分かる。
図８は、質量分析器を用いて、黄色ブドウ球菌と黄色ブドウ球菌に本発明の天然抗菌物質０．５％を添加して同定したデータである。図８を参照すると、黄色ブドウ球菌に本発明の天然抗菌物質０．５％を添加した場合に質量分析器のスペクトルが変形されて細菌名の同定に失敗し、強度もまた６９８１．６から６７.８へと大幅に下がったため、本発明の天然抗菌物質０．５％では黄色ブドウ球菌が取り除かれたことが分かる。
図９は、質量分析器を用いて、黄色ブドウ球菌と黄色ブドウ球菌に本発明の天然抗菌物質１％を添加して同定したデータである。図９を参照すると、黄色ブドウ球菌に本発明の天然抗菌物質１％を添加した場合に質量分析器のスペクトルが変形されて細菌名の同定に失敗し、強度もまた６９８１．６から１２．９へと大幅に下がったため、本発明の天然抗菌物質１％では黄色ブドウ球菌が最も多く取り除かれたことが分かる。
＜抗菌効能テスト５－緑膿菌の除菌＞
図１０は、質量分析器を用いて、緑膿菌と緑膿菌に本発明の天然抗菌物質０．０５％を添加して同定したデータである。図１０を参照すると、緑膿菌に本発明の天然抗菌物質０．０５％を添加した場合に強度が１３９２．８から３００４．６へと上がったものの、質量分析器のスペクトルが変形されて細菌名の同定に失敗したため、本発明の天然抗菌物質０．０５％では緑膿菌が取り除かれたことが分かる。
図１１は、質量分析器を用いて、緑膿菌と緑膿菌に本発明の天然抗菌物質０．１％を添加して同定したデータである。図１１を参照すると、緑膿菌に本発明の天然抗菌物質０．１％を添加した場合に質量分析器のスペクトルが変形されて細菌名の同定に失敗し、強度もまた１３９２．８から３１２．８へと下がったため、本発明の天然抗菌物質０．1％では緑膿菌が取り除かれたことが分かる。
図１２は、質量分析器を用いて、緑膿菌と緑膿菌に本発明の天然抗菌物質０．５％を添加して同定したデータである。図１２を参照すると、緑膿菌に本発明の天然抗菌物質０．５％を添加した場合に質量分析器のスペクトルが変形されて細菌名の同定に失敗し、強度もまた１３９２．８から７６．３へと下がったため、本発明の天然抗菌物質０．５％では緑膿菌が取り除かれたことが分かる。
図１３は、質量分析器を用いて、緑膿菌と緑膿菌に本発明の天然抗菌物質１％を添加して同定したデータである。図１３を参照すると、緑膿菌に本発明の天然抗菌物質１％を添加した場合に質量分析器のスペクトルが変形されて細菌名の同定に失敗し、強度もまた１３９２．８から５１へと最も大きく下がったため、本発明の天然抗菌物質１％では緑膿菌が最も多く取り除かれたことが分かる。
＜非人体用抗菌剤＞
上述した天然抗菌物質を含む抗菌剤を多重光触媒水またはｐＨ２．７～６．５の次亜塩素酸水に０．５～５％の濃度で添加して非人体用殺菌剤を製作してもよい。前記非人体用殺菌剤は、医薬品製造施設、化粧品製造施設、食品製造施設に完璧な抗菌効能を保証するための用途に利用可能である。
＜人体用抗菌剤＞
上述した天然抗菌物質を含む抗菌剤を多重光触媒水または次亜塩素酸水に０．１～０．５％の濃度で添加して人体用殺菌剤を製作してもよい。前記人体用殺菌剤は、既存の７０％エタノール入り人体用殺菌剤に取って代わって肌の刺激が極力抑えられて接触性皮膚炎などを防ぐことができるというメリットがある。
このとき、上述した天然抗菌物質を含む抗菌剤を０．１％未満の濃度で添加する場合には殺菌効果が乏しく、０．５％を超える濃度で添加する場合には肌への刺激を低減することができる。
前記人体用殺菌剤は、手洗浄用ゲル、手洗浄用スプレイ、化粧品、シャンプ、歯磨き粉、コンタクトレンズ用洗浄剤、手洗浄用ティッシュの少なくとも一つを含んでいてもよい。

Claims (2)

  1. ウイキョウ抽出物水溶液とアイ抽出物水溶液に有機溶媒を、重量比が１：１．５：７～１：２：８になるように混合してウイキョウ抽出物高次分画物とアイ抽出物高次分画物を得るステップと、
    前記得られたウイキョウ抽出物高次分画物とアイ抽出物高次分画物に３５０００Ｈｚ～５００００Ｈｚの周波数の超音波刺激を加えた後、安定化させる過程を１２回繰り返して、ナノ化されたウイキョウ抽出物分画物とナノ化されたアイ抽出物分画物を得るステップと、
    前記ナノ化されたウイキョウ抽出物分画物とナノ化されたアイ抽出物分画物に５０～１１０Ｖ にて電気刺激を加えるステップと、を含むことにより製造された天然抗菌物質と、
    菌株の代謝を妨げて菌を死滅させるソルビトール及びマルチトールを、含む天然抗菌剤とを、
    多重光触媒水またはｐＨ２．７～６．５の次亜塩素酸水に０．１～５％の濃度で添加する、非食用用抗菌剤の製造方法であって、
    前記天然抗菌剤において、前記ソルビトールは１０～２０重量部であり、前記マルチトールは２０～４０重量部である、非食用用抗菌剤の製造方法。
  2. ウイキョウ抽出物水溶液とアイ抽出物水溶液に有機溶媒を、重量比が１：１．５：７～１：２：８になるように混合してウイキョウ抽出物高次分画物とアイ抽出物高次分画物を得るステップと、
    前記得られたウイキョウ抽出物高次分画物とアイ抽出物高次分画物に３５０００Ｈｚ～５００００Ｈｚの周波数の超音波刺激を加えた後、安定化させる過程を１２回繰り返して、ナノ化されたウイキョウ抽出物分画物とナノ化されたアイ抽出物分画物を得るステップと、
    前記ナノ化されたウイキョウ抽出物分画物とナノ化されたアイ抽出物分画物に５０～１１０Ｖ にて電気刺激を加えるステップと、を含むことにより製造された天然抗菌物質と、
    菌株の代謝を妨げて菌を死滅させるソルビトール及びマルチトールを、含む抗菌剤とを、
    多重光触媒水またはｐＨ２．７～６．５の次亜塩素酸水に０．１～０．５％の濃度で添加する、非食用用抗菌剤の製造方法であって、
    前記抗菌剤において、前記ソルビトールは１０～２０重量部であり、前記マルチトールは２０～４０重量部である、非食用用抗菌剤の製造方法。
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