JP7218947B2 - 特定の臍帯間葉細胞集団を含む組成物を得る方法およびその使用 - Google Patents

Description

本発明は、医学の分野に含まれる。特に、本発明は、特定の臍帯間葉細胞集団を得る方法を提供し、心不全患者の駆出不全の処置および／または予防するための組成物を得ること；関節摩耗の問題を抱える患者の疼痛を緩和し、機能を改善すること；呼吸器障害および皮膚病変を処置することに役立つ。

ヒト多能性間質細胞（ｈ－ＭＳＣ）は、「Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｆｏｒ Ｃｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｙ」［１］で定義されているように、特定の免疫表現型の提示、異なる細胞株への接着および分化などの特定の特性を有する間質細胞である。これらの細胞が有する他の特徴の中には、これらの細胞がアロ反応性Ｔリンパ球の応答を阻害できるため、免疫反応能力がある。

この背景を考慮すると、ｈ－ＭＳＣは新しい細胞療法のために考慮されてきた。細胞療法は、自己または同種異系のいずれであっても、パーキンソン病、筋萎縮性側索硬化症、多発性硬化症、放射線誘発腸損傷、炎症性腸疾患、肝疾患、デュシェンヌ型筋ジストロフィーおよび糖尿病などの様々な疾患および状態において広く研究されており、異なる結果を示している［２，３］。

ｈ－ＭＳＣの供給源は、臍帯から得られた細胞である。しかし、これらの細胞は異種であり、異なる表面マーカーを発現し、異なる分化能力を有しており、このため、ｈ－ＭＳＣを選択する必要がある。現在、科学界にはｈ－ＭＳＣ細胞を定義するためのコンセンサスがあり、これは、表面マーカーの発現プロファイルに基づいて、同一性および純度基準を考慮するものである。具体的には、細胞が間葉系幹細胞とみなされるには、マーカー：ＣＤ７３、ＣＤ９０およびＣＤ１０５を発現しなければならず、一方、マーカーＣＤ４５、ＣＤ１４、ＣＤ１９は存在してはならない。この発現パターンを有する細胞の選択は、他の種類の細胞の混入を防ぐために行われる。また、造血前駆体の混入を除外するために使用されるマーカーであるＣＤ３４の陰性発現によって選択することもできる。さらに、可能性のある免疫応答の予測因子である主要組織適合遺伝子性複合体分子クラスＩＩの１つであるＨＬＡ－ＤＲは存在しないはずである［１］。

また、間葉細胞と呼ばれるためには、脂肪細胞、軟骨芽細胞および骨芽細胞に分化する能力（３つの系統への分化）が必要である。最近、ｈ－ＭＳＣは、脂肪組織、胎盤、歯髄および臍帯などの様々な組織から得ることができることが発見された。したがって、これらの細胞は、３つの系統の伝統的な分化を有することに加えて、非伝統的な系統にも分化して、筋細胞、内皮細胞、肝細胞および神経細胞などの細胞を産生することができるという結果になった。ｈ－ＭＳＣの自己再生および分化の機構は、一連の成長因子、受容体、細胞内シグナル伝達分子および転写因子によって条件付けられていると考えられる。したがって、これらの因子は、これらの因子が特定の系統についてｈ－ＭＳＣの群をとることを同定するのに有用であり得る。

既に述べたように、ｈ－ＭＳＣは、他の供給源の中でも骨髄、脂肪組織および歯髄を含む成体組織から単離することができる、免疫原性の低い多能性細胞である。ｈ－ＭＳＣの特性が微小環境の変化によって大きく影響される可能性があるため、起源のニッチは、細胞型間の生物学的差異の評価における必須因子を表す。ほとんどの実験的および臨床研究は、骨髄由来のＭＳＣを使用してきたが、これらの細胞は、細胞を得るための侵襲的手順、ならびにドナーの年齢および併存疾患に直接関係する増殖および分化の可能性の低下など、臨床応用に不利な点を有する。対照的に、ｈ－ＭＳＣ臍帯は容易に入手可能であり、インビトロでの増殖が可能であり、加えて、細胞の老化が少なく、それらを入手することは倫理的な懸念が少ない。

本発明は、心不全患者における特定の細胞療法、駆出不全の処置および／または予防のための臍帯ｈ－ＭＳＣを得ることに関し、関節の摩耗の問題を有する患者における疼痛を緩和し、機能を改善するためにも使用することができ、肺病変などの呼吸器障害を処置するため、ならびに慢性創傷および潰瘍などの皮膚病変を処置するためにも有用である。

細胞療法は、１０年以上にわたって駆出率の減少を伴う心不全（ＨＦｒＥＦ）の処置法として評価されてきた。実験的研究では、分化転換、細胞融合およびパラクリン調節などの機構を介して、心機能の改善および損傷した心臓組織の再生が報告されている。最近の総説では、細胞療法は安全であり、ＨＦｒＥＦ患者の生存、左心室機能および生活の質における中程度の臨床的ベネフィットに関連することが示唆されている。虚血性および非虚血性心疾患患者において、異なる生成物および細胞型ならびに投与経路を用いて、様々な臨床研究が行われている。これらの中には、骨髄単核細胞および間葉系幹細胞（ＭＳＣ）が見出される可能性があり、これらは自己または同種異系であり得る。これらは、心筋内、冠動脈内注射により、および例外的に静脈内注射により投与されてきた。

心不全の左室駆出率（ＬＶＥＦ）を処置するための臨床研究がいくつかある。Ｌｕｎｄｅ Ｋらが実施した、心筋梗塞の患者１００名を対象とした臨床研究では、冠動脈内注射によって投与された自己骨髄単核細胞（ＢＭＣ）が使用された。その結果、ＬＶＥＦに関して対照群と処置群の間に差は見られなかった［４］。Ｐｅｒｉｎ ＥＣらはまた、心不全患者のＢＭＣ細胞を用いたランダム化試験を行ったが、対照と比較してＢＭＣで処置した患者のＬＶＥＦの改善は認められなかった［５］。Ｈａｒｅ Ｊらは、骨髄由来の同種異系間葉系幹細胞を使用して急性心筋梗塞の患者を処置する臨床研究を行った。ＬＶＥＦは研究の結果の１つとして測定され、処置開始の３ヵ月後、３．６％の有意でないＬＶＥＦの改善が処置患者で観察されたが、この利点は６ヵ月の追跡後に消失する。［６］。

別の研究では、虚血性心筋症による慢性心不全の患者がＢＭＣで処置された。６０ヵ月の追跡後、ＢＭＣで処置された患者は駆出率の改善を示した［８］。Ｓｅｔｈらは、骨髄細胞を使用して、３年間の追跡後、「Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ Ｈｅａｒｔ Ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ」の機能的ＩＩＩ型クラスに属する患者の７６％が、対照に対して駆出率が５．４％改善したことを報告した［９］。

したがって、数十年に及ぶ基礎研究および臨床研究の後、細胞の全体的なベネフィットならびに最良の細胞供給源および投与経路は未解決のままである。

関節摩耗の問題の中で、変形性関節症（ＯＡ）は最も一般的なタイプの関節疾患であり、慢性疼痛、障害、生活の質の悪化および死亡率の増加を引き起こす変性および進行性障害である。膝は最も一般的に影響を受ける部位の１つであり、現在、世界的な健康問題を表している。一方では、この疾患の進行が遅いにもかかわらず、疾患修飾性変形性関節症薬（ＤＭＯＡＤ）はなく、その罹患率は、人口の高齢化のために増加しており、７５歳以上の人々の３５％に影響を及ぼしている。一方では、この疾患は、膝関節全置換術の漸進的増加および早期退職を含む、高い医療費に起因する重要な経済的負担を表す。

ｈ－ＭＳＣに基づく細胞療法は、その軟骨形成分化能力および抗炎症特性により、変形性関節症の有用な生物学的ツールを提供することができる［１０］。

前臨床研究では、軟骨分解を回避、妨害または回復することを目的とした、異なる動物モデルにおけるＭＳＣ移植後の陽性の結果を示している。臨床的観点から、軟骨局所欠損（ＣＤＦ）および半月板の問題など、ＯＡの素因となる状態に主に集中した一連の証拠が実証されている。様々なプロトコルで、ＣＤＦ患者は、磁気共鳴画像法により観察される疼痛スコア、組織学的側面および形態の改善を示すことが観察されている［１１］。ＭＳＣで処置された部分的な半月板切除術を受けた患者は、変性変化を発症するリスクが３．５少ない。局所投与に関して、いくつかの研究は、平均５年間の追跡後に重篤な有害事象が生じなかったことを示している［１２］。

特に変形性膝関節症に関しては、近年、３つのパイロット研究により、６ヵ月の追跡で安全性および臨床的有効性の初期の証拠が示された。これらのプロトコルは、骨髄ＭＳＣ（ＢＭ）または脂肪組織（ＡＤ）を使用した自己療法に基づいている［１３］。

しかし、これまでのところ、変形性膝関節症の処置に最適な細胞の供給源を示す証拠はほとんどない。したがって、本発明の組成物など、この疾患の有効な処置および／または予防のための組成物が依然として必要とされている。

前述の背景を考慮して、本発明者らは、臍帯から間葉細胞の特定の集団を得る方法を開発し、これは、心不全患者における心臓の駆出量の改善、疼痛の緩和および関節摩耗損傷における機能の改善など、また、肺病変などの呼吸器障害の処置、ならびに創傷および潰瘍など皮膚病変の処置のいずれにおいて、安全で有効な細胞療法のために使用されることを可能にする特定の特徴を有する。

解剖学的区画を示すヒト臍帯の横断図である。 臍帯断面である。（Ａ）：羊膜および羊膜下層が除去された後の３つ長軸方向の切断を表す。（Ｂ）：動脈および静脈が除去された後の結合組織の表示。（Ｃ）：培養培地を用いてプレート上に組織を配置する方法の表示。 Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｏｆ Ｃｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｙのガイドラインに従った細胞の特徴付け。臍帯由来細胞組成物は、すべての一般的なＭＳＣマーカーを発現し、軟骨形成、骨形成および脂肪生成系統に分化する能力を示した。（Ａ）：細胞組成物をフローサイトメトリーにより分析し、臍帯からのサンプルを、既知のＭＳＣ表面マーカー（青色）およびそれぞれのアイソタイプ（赤色）に対して標識されたモノクローナル抗体で染色した。すべての臍帯由来細胞組成物は、ＣＤ１０５、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ４４、ＣＤ１４６およびＣＤ４９ａについて陽性であったが、ＣＤ１４、ＣＤ３４、ＣＤ３１、ＣＤ４５およびＨＬＡＤＲについて陰性であった。（Ｂ）：特定の誘導および染色後の臍帯由来細胞組成物の分化の代表的な画像：脂肪細胞（オイルレッドＯ）、骨細胞（アリザリンレッド）および軟骨細胞（サフラニンＯ）。目盛り付きバー＝２００ｍｍ。すべてのデータは、最低４名のドナーの平均値±ＳＥＭ（ｎ＝３）として示される。 ＵＣ－ＭＳＣおよびＢＭ－ＭＳＣは、パラクリン因子において異なるプロファイルを示した。ＴＧＦβ３発現をＲＴ－ｑＰＣＲにより定量化し、ＨＧＦをＥＬＩＳＡにより測定した。臍帯の異なる供給源からのＨＧＦは、選択方法として使用される対象であるＢＭ－ＭＳＣよりも分泌量が多い。＊＊＊ｐ＜０．００１、＋ｐ＜０．０５、＋＋ｐ＜０．００１ ＵＣ－ＭＳＣ－１、２、３と比較したＵＣ－ＭＳＣ－４ 特別なマーカー、承認された細胞（ロットＣＵ－１０８－６）による亜集団の特徴付けは、マーカーＣＤ４４、ＣＤ５６、ＣＤ１０５、ＣＤ２５４（ＲＡＮＫＬ）およびＣＤ３２５（Ｎ－カドヘリン）を有する。 ＵＣ－ＭＳＣおよびＢＭ－ＭＳＣは、炎症性Ｔ細胞阻害と同じ抑制能力を示す。ＣＦＳＥで標識された心不全および駆出率低下（ＨＦｒＥＦ）を伴う拡張型心筋症患者から得られたＰＨＡ活性化ｈＰＢＭＣを、ＭＳＣの有無にかかわらず１：１０の比率（ＭＳＣ：ｈＰＢＭＣ）で共培養した。（Ａ）：培養後７２時間でＣＦＳＥの強度を低下させることによりＴ細胞増殖を評価し、左側のグラフは、ＣＦＳＥの代表的な増殖パネルを表している（淡色のヒストグラムは活性化ＰＢＭＣを表し、暗色のヒストグラムはＭＳＣと共培養された活性化ＰＢＭＣを表す）。（Ｂ）：ＰＢＭＣおよびＭＳＣの共培養からのＴｈ１、Ｔｈ２、ＣＤ８および制御性Ｔ細胞の分析。結果は、ｈＰＢＭＣに対する少なくとも３つの異なるドナー（健康なドナー患者およびＤＣＭ）、ＵＣ－ＭＳＣ、およびＢＭ－ＭＳＣを使用した少なくとも３つの独立した実験の平均±ＳＥＭとして表される。＊＊＊ｐ＜０．００１ ＰＨＡに関するＵＣ－ＭＳＣまたはＢＭ－ＭＳＣ。 臍帯由来細胞組成物は、ＢＭ－ＭＳＣと比較して優れた遊走能力を有する。これらの細胞型の遊走能力を、１６時間後のＨＦＲＥＦ患者の血清に応答するトランスウェルアッセイによって評価した。画像は紫色結晶による代表的な染色を示し、グラフは遊走細胞の％の定量化を示す。グラフに示されているデータは、少なくとも３名の血清ドナー、ＵＣ－ＭＳＣおよびＢＭ－ＭＳＣを含む平均値±ＳＥＭに対応している。＊Ｐ＜０．０５ ＵＣ－ＭＳＣ対ＢＭ－ＭＳＣ。 研究した群における、処置後１２ヵ月までのベースラインからの心臓磁気共鳴測定値の変化。（Ａ）：左心室の駆出率（ＬＶＥＦ）。（Ｂ）：左心室の拡張終期容量（ＬＶＥＤＶ）。（Ｃ）：左心室の収縮終期容量（ＬＶＥＳＶ）。実線は、臍帯由来細胞組成物で処理された群を表す（プロトコルごとにｎ＝１４）。点線はプラセボ群を表す（プロトコルごとにｎ＝１３、１名の患者からの同意の撤回）。統計分析は、各群についての参照測定値と追跡測定値との間の混合効果の最大尤度の回帰、および群間の変動性に基づいた。 例「大腿骨、膝蓋骨および脛骨の相互作用問題を有する患者」の研究および患者集団の設計。 例２「大腿骨、膝蓋骨および脛骨の相互作用問題を有する患者の臨床研究」からの患者の疼痛についてのＷＯＭＡＣチャート。 例Ｎｏ．２「大腿骨、膝蓋骨および脛骨の相互作用問題を有する患者の臨床研究」の患者機能の評価についてのＷＯＭＡＣチャート。 例Ｎ°２「大腿骨、膝蓋骨および脛骨の相互作用問題を有する患者の臨床研究」の患者についての総Ｗｏｍａｃ指数グラフ。 例Ｎ°２「大腿骨、膝蓋骨および脛骨の相互作用問題を有する患者の臨床研究」の患者についてのＯＭＥＲＡＣＴ－ＯＡＲＳＩ反応指数。 例２「大腿骨、膝蓋骨および脛骨の相互作用問題を有する患者の臨床研究」の患者についての総ＷＯＲＭＳによる構造的結果。 Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｏｆ Ｃｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｙのガイドラインに従った細胞の特徴付け。臍帯由来のＣＵ－９８９－６細胞組成物は、すべての一般的なＭＳＣマーカーを発現し、軟骨形成、骨形成および脂肪生成系統に分化する能力を示した。（Ａ）：細胞組成物ＣＵ－９８９－６をフローサイトメトリーにより分析し、臍帯からのサンプルを、既知のＭＳＣ表面マーカーおよびそれぞれのアイソタイプに対するモノクローナル抗体で染色した。すべての臍帯由来細胞組成物は、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ１０５について陽性であり、ＣＤ４５、ＣＤ３４、ＣＤ１４、ＣＤ１９およびＨＬＡ－ＤＲについて陰性であった。（Ｂ）：上記のマーカーの存在の割合に加えて、マーカーＣＤ４４、ＣＤ５６、ＣＤ１０５、ＲＡＮＫＬおよびＮ－カドヘリンについて本特許において提示される選択基準のマーカーを有する表。（Ｃ）：特定の誘導および染色後の臍帯由来細胞組成物の分化の代表的な画像：骨細胞（アリザリンレッド）、脂肪細胞（オイルレッドＯ）および軟骨細胞（サフラニンＯ）。 Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｏｆ Ｃｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｙのガイドラインに従った細胞の特徴付け。臍帯由来のＣＵ－７４５－３細胞組成物は、すべての一般的なＭＳＣマーカーを発現し、軟骨形成、骨形成および脂肪生成系統に分化する能力を示した。（Ａ）：ＣＵ－７４５－３細胞組成物をフローサイトメトリーにより分析し、臍帯からのサンプルを、既知のＭＳＣ表面マーカーおよびそれぞれのアイソタイプに対するモノクローナル抗体で染色した。すべての臍帯由来細胞組成物は、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ１０５について陽性であり、ＣＤ４５、ＣＤ３４、ＣＤ１４、ＣＤ１９およびＨＬＡ－ＤＲについて陰性であった。（Ｂ）：上記のマーカーの存在の割合に加えて、マーカーＣＤ４４、ＣＤ５６、ＣＤ１０５、ＲＡＮＫＬおよびＮ－カドヘリンについて本特許において提示される選択基準のマーカーを有する表。（Ｃ）：特定の誘導および染色後の臍帯由来細胞組成物の分化の代表的な画像：骨細胞（アリザリンレッド）、脂肪細胞（オイルレッドＯ）および軟骨細胞（サフラニンＯ）。 Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｏｆ Ｃｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｙのガイドラインに従った細胞の特徴付け。臍帯由来のＣＵ－１０８－６細胞組成物は、すべての一般的なＭＳＣマーカーを発現し、軟骨形成、骨形成および脂肪生成系統に分化する能力を示した。（Ａ）：ＣＵ－１０８－６細胞組成物をフローサイトメトリーにより分析し、臍帯からのサンプルを、既知のＭＳＣ表面マーカーおよびそれぞれのアイソタイプに対するモノクローナル抗体で染色した。すべての臍帯由来細胞組成物は、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ１０５について陽性であり、ＣＤ４５、ＣＤ３４、ＣＤ１４、ＣＤ１９およびＨＬＡ－ＤＲについて陰性であった。（Ｂ）：上記のマーカーの存在の割合に加えて、マーカーＣＤ４４、ＣＤ５６、ＣＤ１０５、ＲＡＮＫＬおよびＮ－カドヘリンについて本特許において提示される選択基準のマーカーを有する表。（Ｃ）：特定の誘導および染色後の臍帯由来細胞組成物の分化の代表的な画像：骨細胞（アリザリンレッド）、脂肪細胞（オイルレッドＯ）および軟骨細胞（サフラニンＯ）。 Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｏｆ Ｃｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｙのガイドラインに従った細胞の特徴付け。臍帯由来のＣＵ－６６８－Ｋ細胞組成物は、すべての一般的なＭＳＣマーカーを発現し、軟骨形成、骨形成および脂肪形成の系統に分化する能力を示した。（Ａ）：細胞組成物ＣＵ－６６８－Ｋをフローサイトメトリーにより分析し、臍帯のサンプルを、既知のＭＳＣ表面マーカーおよびそれぞれのアイソタイプに対するモノクローナル抗体で染色した。すべての臍帯由来細胞組成物は、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ１０５について陽性であり、ＣＤ４５、ＣＤ３４、ＣＤ１４、ＣＤ１９およびＨＬＡ－ＤＲについて陰性であった。（Ｂ）：上記のマーカーの存在の割合に加えて、マーカーＣＤ４４、ＣＤ５６、ＣＤ１０５、ＲＡＮＫＬおよびＮ－カドヘリンについて本特許において提示される選択基準のマーカーを有する表。（Ｃ）：特定の誘導および染色後の臍帯由来細胞組成物の分化の代表的な画像：骨細胞（アリザリンレッド）、脂肪細胞（オイルレッドＯ）および軟骨細胞（サフラニンＯ）。 Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｏｆ Ｃｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｙのガイドラインに従った細胞の特徴付け。臍帯由来のＣＵ－８３７－８細胞組成物は、すべての一般的なＭＳＣマーカーを発現し、軟骨形成、骨形成および脂肪形成の系統に分化する能力を示した。（Ａ）：細胞組成物ＣＵ－８３７－８をフローサイトメトリーにより分析し、臍帯のサンプルを、既知のＭＳＣ表面マーカーおよびそれぞれのアイソタイプに対するモノクローナル抗体で染色した。すべての臍帯由来細胞組成物は、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ１０５について陽性であり、ＣＤ４５、ＣＤ３４、ＣＤ１４、ＣＤ１９およびＨＬＡ－ＤＲについて陰性であった。（Ｂ）：上記のマーカーの存在の割合に加えて、マーカーＣＤ４４、ＣＤ５６、ＣＤ１０５、ＲＡＮＫＬおよびＮ－カドヘリンについて本特許において提示される選択基準のマーカーを有する表。（Ｃ）：特定の誘導および染色後の臍帯由来細胞組成物の分化の代表的な画像：骨細胞（アリザリンレッド）、脂肪細胞（オイルレッドＯ）および軟骨細胞（サフラニンＯ）。 細胞組成物ＣＵ－７４５－３による４名の患者の処置の結果。処置前のベースライン状態と処置後３ヵ月の評価との比較について、Ｉｎｄｅｘ ｔｈｅ Ｗｅｓｔｅｒｎ Ｏｎｔａｒｉｏ ａｎｄ ＭｃＭａｓｔｅｒ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｉｅｓ Ｏｓｔｅｏａｒｔｈｒｉｔｉｓ Ｉｎｄｅｘ（ＷＯＭＡＣ）に従って提示した結果。 細胞組成物ＣＵ－７４５－３による３名の患者の処置の結果。処置３ヵ月での患者の状態と処置６ヵ月での評価の比較について、Ｉｎｄｅｘ ｔｈｅ Ｗｅｓｔｅｒｎ Ｏｎｔａｒｉｏ ａｎｄ ＭｃＭａｓｔｅｒ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｉｅｓ Ｏｓｔｅｏａｒｔｈｒｉｔｉｓ Ｉｎｄｅｘ（ＷＯＭＡＣ）に従って提示した結果。 １年間の細胞組成物ＣＵ－１０８－６およびＣＵ－７４５－３による３名の患者の処置の結果。心室駆出率の割合に従って提示された結果。 急性呼吸窮迫症候群の処置のための細胞療法の有効性。（Ａ）：本明細書に記載の方法を用いて得られた細胞組成物で処置される前の急性呼吸窮迫症候群に罹患している患者のコンピューター化胸部断層撮影（気管切片）。（Ｂ）本発明の方法で選択された細胞組成物で処置された１３日後の患者の胸部コンピューター断層撮影（気管切片）。 本明細書に記載の方法により選択された細胞組成物１０８－６および７４５－３の使用による皮膚再生の改善の評価。（Ａ）：様々な時点で評価された創傷の代表的な画像。（Ｂ）：様々な時点での創傷閉鎖の割合であり、創傷閉鎖の割合はソフトウェアＩｍａｇｅ Ｊを使用して計算した。（Ｃ）：１４日後の生検における血管新生の定量化であり、分析はソフトウェアＶｅｓＳｅｇ－Ｔｏｏｌを使用して展開した。その値は、平均±標準誤差を表し、細胞組成群と生理食塩水群の有意性を比較するために、ｔ検定（マンホイットニー）、＊ｐ≦０．０５を使用した。ＵＣ－ＭＳＣ：本発明の方法により得られた細胞組成物。

本発明は、臍動脈、静脈、および羊膜下組織の内面に存在する結合組織から必要に応じて選択されてもよい、臍帯間葉系幹細胞の亜集団を得る方法に関する。特定の細胞のこの集団を含む組成物は、駆出率が低下した患者の心臓駆出流に関する問題など、細胞療法に使用される薬剤を調製するのに有用である。同時に、この亜集団は、疼痛を緩和、関節摩耗の機能を回復させる薬剤を調製するのに有用である。また、肺病変などの呼吸器障害の処置、ならびに慢性創傷および潰瘍などの皮膚病変の処置に有用である。

臍帯間葉細胞の特定の集団を含む組成物を得る方法であって、以下の段階を含む：
ａ）臍帯間葉細胞の培養および増殖、
ｂ）Ｎ－カドヘリン、ＣＤ４４、ＲＡＮＫＬ、ＣＤ１０５およびＣＤ５６マーカーのうち、少なくとも３種の存在によるそれらの選択。

必要に応じて、段階ｂ）後に、肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）の産生により前選択が行われ、培地中に１０００ｐｇ／ｍＬを超えるＨＧＦ；好ましくは１５００ｐｇ／ｍＬを超えるＨＧＦ、または２０００ｐｇ／ｍＬを超えるＨＧＦ、とりわけ２５００ｐｇ／ｍＬを超えるＨＧＦを分泌する培養物を選択する。

さらに、必要に応じて、工程ｂ）後に、ＴＧＦ－β３発現により任意の選択が行われ、評価されたサンプルと比較して最高レベルの相対発現を発現する培養物を選択する。

好ましい実施形態では、必要に応じて、臍帯間葉細胞は、動脈および臍静脈を取り囲み、羊膜下層の内面に隣接する結合組織細胞から特異的に得られてもよい。この実施形態では、羊膜および羊膜下層は、臍帯において最初に除去され、第２に、３つ長軸方向および平行な切断により、静脈および動脈露出させ、それらを組織から除去するように、動脈および臍静脈を通して行われる。動脈および静脈を除いて得られた切片を、静脈および動脈に隣接していた結合組織が培養プレートと直接接触するように、培地に塗布する。

一方では、必要に応じて、工程ａ）で、細胞を少なくとも８日間、または少なくとも１０日間培養する。

間葉細胞を得るために、９５％超のＣＤ１０５、ＣＤ７３およびＣＤ９０を発現し、同時に発現しない、すなわち２％未満のＣＤ４５、ＣＤ３４、ＣＤ１４、およびＨＬＡ－ＤＲを発現するものを間葉細胞として選択することにより、培養細胞をそれらのマーカーに従ってサイトメトリーによって選択する。その後、選択された間葉細胞を、段階ｂ）で確立されたものに従って増殖し、分離する。

最後に、工程ｂ）では、細胞は、Ｎ－カドヘリン、およびＣＤ１０５、ＣＤ４４、ＲＡＮＫＬまたはＣＤ５６のうち、少なくとも２種のマーカーを発現するために選択される。より詳細には、細胞は、Ｎ－カドヘリン、ＲＡＮＫＬ、およびＣＤ１０５、ＣＤ４４、またはＣＤ５６のうち、少なくとも１種のマーカーを発現するために選択される。好ましくは、細胞は、Ｎ－カドヘリン、ＲＡＮＫＬ、およびＣＤ１０５、ＣＤ４４、またはＣＤ５６のうち、少なくとも２種のマーカーを発現するために選択され、最も好ましくは、細胞は、Ｎ－カドヘリン、ＲＡＮＫＬ、ＣＤ１０５、ＣＤ４４、およびＣＤ５６を発現するために選択される。

Ｎ－カドヘリン、およびＣＤ１０５、ＣＤ４４、ＲＡＮＫＬまたはＣＤ５６のうち、少なくとも２種のマーカーを発現する間葉細胞を含む臍帯間葉細胞の特定の集団を含み、本発明の方法により得られる、組成物。

本発明はまた、細胞療法に有用な薬剤を調製するために、記載された方法に従って得られた臍帯間葉細胞の特定の集団からの細胞を含む組成物の使用を目的とする。特に、心臓駆出流の問題を処置するために有用な薬剤を調製することである。より詳細には、静脈内投与される、心臓駆出流の問題を処置するために有用な薬剤を調製することである。この場合、心不全の処置に有用な薬剤を調製するために有用であることが好ましい。

別の実施形態では、本発明の方法により得られる組成物は、疼痛を処置し、関節摩耗の問題に関連する機能を改善するために有用な薬剤を調製するのに有用である。特に、大腿骨、脛骨、および膝蓋骨間の相互作用における摩耗を処置するため；または大腿骨頭と寛骨臼との間の摩耗を処置するため；または距骨、脛骨および腓骨の間との摩耗を処置するため；または橈骨、手根骨／手根骨、または膝関節の摩耗を処置するためである。すなわち、本発明の組成物は、足首、腰、膝、手首、肩、指、肘首および脊椎の関節の摩耗を処置するのに有用な薬剤を調製するのに有用である。

一方、本発明の方法により得られる組成物は、肺病変などの呼吸器障害、急性呼吸窮迫症候群などの急性肺病変の処置、および慢性創傷および潰瘍などの皮膚病変の処置に有用な薬剤を調製するのに有用である。

定義
本発明の文脈では、用語「間葉系幹細胞」（「ＭＳＣ」）は、組織中胚葉に由来する多能性前駆細胞を指す。脂肪、骨、軟骨および筋組織を構成する細胞に分化する能力を有している。Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｏｆ Ｃｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｙによって確立された最小基準では、ＭＳＣ細胞の同一性を確保するために、ＣＤ７３、ＣＤ９０およびＣＤ１０５マーカーについて陽性であり、ＣＤ４５、ＣＤ３４およびＣＤ１４マーカーについて陰性でなければならないことを提示する。ＭＳＣは、人体のほぼすべての組織に見られる。

本出願で使用される場合、「薬学的に許容される担体」または「薬学的に許容される希釈剤」は、薬学的投与に適合する、ありとあらゆる溶媒、分散媒、コーティング、抗菌剤および抗真菌剤、等張剤ならびに吸収遅延剤を意味する。薬学的に活性な物質のためのそのような媒体および薬剤の使用は、当技術分野で周知である。許容される溶剤、賦形剤または安定剤は、使用される用量および濃度で受容体に対して毒性がなく、本発明の範囲を制限することなく、以下を含む：追加の緩衝剤；防腐剤；共溶剤；アスコルビン酸およびメチオニンを含む酸化防止剤；ＥＤＴＡなどのキレート剤；金属錯体（例えば、Ｚｎタンパク質錯体）；ポリエステルなどの生分解性ポリマー；ナトリウム、多価糖アルコールなどの塩形成対イオン；アラニン、グリシン、グルタミン、アスパラギン、ヒスチジン、アルギニン、リジン、オルニチン、ロイシン、２－フェニルアラニン、グルタミン酸およびトレオニンなどのアミノ酸；ラクチトール、スタキオース、マンノース、ソルボース、キシロース、リボース、リビトール、ミオイニシトース、ミオイニシトール、ガラクトース、ガラクチトール、グリセロール、シクロゾール（例えば、イノシトール）、ポリエチレングリコールなどの有機糖または糖アルコール；尿素、グルタチオン、チオクト酸、チオグリコール酸ナトリウム、チオグリセロール、α－モノチオグリセロールおよびチオ硫酸ナトリウムなどの硫黄含有還元剤；ヒト血清アルブミン、ウシ血清アルブミン、ゼラチンまたは他の免疫グロブリンなどの低分子量タンパク質；ならびにポリビニルピロリドンなどの親水性ポリマー。

本出願で使用される用語「処置」および「療法」は、健康問題を改善する目的で疾患および／または症状を治癒および／または緩和することを意図して使用される、一連の衛生的、薬理学的、外科的および／または物理的手段を指す。用語「処置」および「療法」は、両方が個体または動物の健康を維持および／または回復することを目的としているため、予防的、治癒的および緩和的方法が含まれる。症状、疾患および障害の原因にかかわらず、健康上の問題を軽減および／または治癒するための適切な薬剤の投与は、本出願の文脈における処置または療法の形態として解釈されるべきである。

本出願で使用される用語「予防」は、疾患および／または症状の発症および／または発生を予防するために使用される、一連の衛生的、薬理学的、外科的および／または物理的手段を指す。用語「予防」は、動物または個体の健康を維持するために使用されるため、予防的方法を包含する。

用語「個体」、「患者」または「被験者」は、本出願では互換的に使用され、決して限定することを意図していない。「個体」、「患者」または「被験者」は、あらゆる年齢、性および健康状態のものであってもよい。

用語「治療有効量」は、治療効果を有し、疾患および／または損傷を予防および／または処置することができる活性成分および／または細胞の量を指す。

用語「心不全」は、心臓がその要件に対応できないこと、具体的には、心臓が正常な効率で血液を送り出すことができないことを指す。好ましい実施形態では、心不全は、駆出率が低下した慢性心不全である。

用語「駆出率が低下した心不全」は、心臓によって排出される血液量の欠乏に罹患している心疾患を指し、通常、心エコー検査で左室駆出率が４０％以下であると記録される。

用語「慢性」は、長期間持続する、または絶えず繰り返される状態および／または疾患を指す。

本発明者らは、臍帯から細胞集団を得る方法を開発し、これは、心室駆出の問題、および関節の摩耗の問題、特に大腿骨、膝蓋骨および脛骨の相互作用による摩耗の問題の処置に特に適している。また、肺病変などの呼吸器障害の処置、ならびに慢性創傷および潰瘍などの皮膚病変の処置に有用である。

一般的に言えば、本発明の方法は、動脈および臍静脈を取り囲み、臍帯の羊膜下層の内面に隣接する結合組織細胞を特異的に得ること；得られた細胞を培養および増殖させ、これらが間葉細胞であり、また、細胞がＮ－カドヘリン、ＣＤ４４、ＲＡＮＫＬ、ＣＤ１０５およびＣＤ５６マーカーのうち、少なくとも３種に応答することを確認することを含む。必要に応じて、しかし好ましくは、示されたマーカーによる選択後、肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）の産生により選択を行い、１０００ｐｇ／ｍＬ超のＨＧＦを分泌する細胞培養物を選択する。この最終段階と並行して、ＴＧＦ－β３の発現の評価をＲＴ－ｑＰＣＲにより行う。

本発明の背景で示されるように、増殖因子および表面マーカー（ＣＤ）などの異なるタンパク質発現パターンは、例えば細胞療法で使用される場合、これらの細胞の分化および能力に関連する。本発明者らは、以下に詳述するように、臍帯内の結合組織の特定の領域から得られる間葉細胞が、Ｎ－カドヘリン、ＣＤ４４、ＲＡＮＫＬ、ＣＤ１０５およびＣＤ５６から選択される５種のマーカーのうち、少なくとも３種を同時に発現し、および必要に応じて、大量の肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）を分泌し、ＴＧＦ－β３発現は、異なる細胞療法において使用される場合に、より良好な結果を有することを決定した。具体的には、これらの細胞は、心室駆出の問題、関節摩耗の改善においてより良い結果を提供するため、呼吸器障害を処置するため、および皮膚病変を処置するための療法に有用である。

本発明の細胞の亜集団のマーカーとして選択されたこれらの分子は、分化系統を誘導またはブロックすることができる：
－Ｎ－カドヘリンは、細胞間コミュニケーションに役割を果たす膜貫通タンパク質である。このタンパク質はまた、細胞接着に関連しており、心筋分化に関与している［１４］。また、発現プロファイルの変化により、骨髄由来の間葉系幹細胞の骨形成のための重要なモジュレーターとして記載されている［１５，１６］。

－ＣＤ４４は、ｈ－ＭＳＣの細胞増殖、生存および分化に関与するタンパク質のマーカーである［１７］。この分子は、ヒアルロン酸と相互作用する３Ｄマトリックスの軟骨形成経路の活性化の候補として提示されている［１８］。

－ＲＡＮＫＬは、破骨細胞形成における重要なタンパク質として関連付けられており、したがって、存在する場合、骨形成経路を阻害することができる［１９］。

－ＣＤ１０５は、ｈ－ＭＳＣの標準的マーカーであるにもかかわらず、β型組織（ＴＧＦ－β）のトランスフォーミング因子をシグナル伝達するための重要な共受容体であり、心臓間質細胞による血管新生のパラクリン刺激にも関連している［２０］。

－ＣＤ５６は、表面タンパク質であり、ＭＳＣＡ－１などの他のマーカーと組み合わせて、存在しない場合よりも軟骨形成および膵臓経路への分化の可能性が高くなることが報告されている。このタンパク質はまた、細胞遊走、細胞間相互作用および細胞－マトリックス相互作用に関与している。この分子が心臓において有する発現プロファイルは、この分子が異なる細胞型間の相互作用などの異なる事象を調節している可能性があることを示唆する。

さらに、これらの５種のマーカーはまた、呼吸器障害に関する問題を改善するのに役立つ細胞を選択するために有用である。細胞亜集団のマーカーとして選択されたこれらの分子は、以下のように応答を調節することができる：
－ＣＤ４４：急性呼吸窮迫症候群（ＡＲＤＳ）などの呼吸障害モデルを処置するために、抗炎症反応および高い食作用活性を促進するように間葉細胞により使用される細胞外小胞に存在するマーカーである［２７］。

－ＲＡＮＫＬ：間葉細胞におけるＲＡＮＫＬの発現は、炎症反応を妨害する主要組織適合遺伝子複合体（ＭＨＣ ＩＩ）のクラスＩＩ分子を調節することが記載されている［２８］。

－ＣＤ１０５：研究により、ＡＬＩまたはそのより重篤なＡＲＤＳ形態などの呼吸器病変の処置のためのＣＤ１０５陽性細胞の使用を検証した［２９］。さらに、血管新生、内皮細胞増殖および血管系発達においてこのマーカーが果たす役割が示されており［３０］；これは、ＡＲＤＳに罹患した患者におけるガス交換インターフェースの修復に不可欠である［３１］。

－ＣＤ５６：注入されたＭＳＣ細胞の分布を考慮すると、ＣＤ５６は、これらの細胞を主に肺に収容し［３２］、ＣＤ５６は、細胞間および細胞－マトリックス相互作用に関連する間葉系幹細胞によって発現されるマーカーであり［３３］、このマーカーの存在は、肺における罹患組織との相互作用を促進する。

－Ｎ－カドヘリン：間葉細胞について、Ｎ－カドヘリンは、血管の形成（血管新生）における重要な因子である血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）の調節に関与することが記載されている［３４］。さらに、肺病変を処置するためのＶＥＧＦによるＭＳＣの処置的重要性が記載されている［３５］。したがって、ＭＳＣにおけるＮ－カドヘリンマーカーの存在は、肺病変の処置に役割を果たしている。

さらに、これらの５種のマーカーはまた、皮膚創傷の問題を改善するのに役立つ細胞を選択するのに有用である。細胞亜集団のマーカーとして選択されたこれらの分子は、以下のように応答を調節することができる：
－ＣＤ４４：幹細胞を同定するために使用されている細胞表面接着受容体であり［３６］、具体的には、このマーカーの発現は、細胞遊走による皮膚創傷の組織再生に重要な役割を果たしている［３７，３８］。

－ＲＡＮＫＬ：間葉細胞におけるＲＡＮＫＬの発現は、主要組織適合遺伝子複合体（ＭＨＣ ＩＩ）のクラスＩＩ分子を調節することが記載されている［２８］。この複合体は、創傷修復の機構と直接相互作用する［３９］。

－ＣＤ１０５：このマーカーは、血管新生、内皮細胞の増殖および血管系の発達［３０］、創傷の処置に不可欠な要素に関連している。具体的には、これは、長期的に、炎症期および造血細胞の再増殖を調節するために幹細胞によって使用されるマーカーである［４０］。

－ＣＤ５６：細胞間および細胞－マトリックス相互作用を介した細胞接着に関連する間葉系幹細胞によって発現されるマーカーであり［３３］、したがって、このマーカーの存在は、患部へのＭＳＣ接着を促進する。

－Ｎ－カドヘリン：間葉細胞について、Ｎ－カドヘリンは、組織再生のための血管の形成（血管新生）における重要な因子であるＶＥＧＦの調節に関与することが記載されている［３．４］。したがって、ＭＳＣにおけるＮ－カドヘリンマーカーの存在は、創傷処置に役割を果たしている。

ヒトＭＳＣは、肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）を分泌することができ、このタンパク質はパラクリンまたはオートクリンとして作用することができ、様々な種類の細胞および組織の細胞増殖、運動性および形態形成を調節することができる［２１］。ＨＧＦは、前駆体の形態で合成および分泌され、とりわけ肝臓、腎臓、肺および胃などの一部の組織への損傷に応答してタンパク質分解的に活性化され、したがって、組織修復および再生に関与し、血液凝固および線溶系に関連する［２１］。例えば、ＨＧＦは、創傷治癒および心保護における応答の媒介に存在することが記載されている［２３］。

さらに、ヒトＭＳＣはまた、トランスフォーミング増殖因子β３（ＴＧＦ－β３）を産生することができ、この因子は、胚形成、発生および細胞分化に関与するサイトカインファミリーのタンパク質である。研究により、ＴＧＦ－β３の存在が、軟骨細胞のＩＩ型コラーゲンおよびグリコソアミノグリカン（ＧＡＧ）の合成を改善し、この合成が、ＵＣ－ＭＳＣを軟骨細胞に分化させるのを助けることが示された［２４］。一方、ＴＧＦ－β３はまた、その抗線維化活性［２５］および組織再生における役割［２６］が知られている。

選択されたマーカーはすべて公知であるが、これらの特性を有する細胞の亜集団を取得する方法を予測する文献は現在なく、また、Ｎ－カドヘリン、ＣＤ４４、ＲＡＮＫＬ、ＣＤ１０５およびＣＤ５６マーカーのうち、少なくとも３種の存在が、特に心不全患者の駆出不全の処置および／または予防において、これらの細胞を用いる処置におけるより大きな有効性と相関し、関節摩耗の問題を有する患者の疼痛を緩和し；肺損傷などの呼吸器障害、急性呼吸窮迫症候群などの急性肺損傷を処置し、ならびに慢性創傷および潰瘍などの皮膚病変を処置するために使用することができることも明らかでない。

臍帯処理
本発明の方法を行うために、臍帯は、インフォームドコンセント後に帝王切開により抽出され、健康なドナーから得られ、抗生物質緩衝溶液中で無菌的に保存された、全段階のヒト胎盤から得られる。

臍帯は、ハンクス重炭酸緩衝液またはリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）などの滅菌緩衝液に保存される。より好ましくは、臍帯は、ＰＢＳ溶液に保存される。

示されるように、臍帯は、それぞれ５０～３００ユニット／ｍｌおよび５０～３００μｇ／ｍｌの濃度で、ペニシリンおよびストレプトマイシンなどの抗生物質で処理される。より好ましくは、臍帯は、それぞれ１００ユニット／ｍｌおよび１００μｇ／ｍｌで、ペニシリンおよびストレプトマイシンで処理される。

好ましい実施形態では、本発明の方法に従って臍帯を切断し、５時間を超えない時間で緩衝液および抗生物質で洗浄する必要がある。より好ましくは、手順は４時間を超えてはならない。より好ましくは、切断および洗浄手順は３時間を超えてはならない。

任意の実施形態では、本発明の対象組織は、図１に示すように、臍動脈、臍静脈の周囲に存在する層内に位置し、結合組織の外面は、羊膜下層と接触していた。臍帯が８～１０ｃｍの小さな切片に切断されると、羊膜および羊膜下層が除去され、静脈および臍動脈を含む結合組織が露出する。

図２Ａに示すように、結合組織の３つの平行な長軸方向の切断を通して、図２Ｂに示すように静脈および臍動脈を露出させ、除去し、次いで、これらの動脈および臍静脈を取り囲む層を培養プレートに播種し、図２Ｃに示すように、安定化培養培地中で維持する。対象組織が培養プレートと直接接触していることが重要である。

安定化培養培地は、以下の要素、細胞培養培地、糖、抗生物質、抗真菌剤およびアミノ酸などのいずれかで構成されてもよい。好ましくは、培養培地は、ＤＭＥＭ－Ｆ１２、高グルコース濃度を有するまたは有さないＤＭＥＭ、高グルコース濃度を有するまたは有さないα－ＭＥＭ、ペニシリンおよびストレプトマイシンなどの抗生物質、アンホテリシンなどの抗真菌剤、ならびにＬ－グルタミンなどのアミノ酸などの培養培地を含むべきである。より好ましくは、培養物は、１０ｍｌのイーグル最小必須培地（ＭＥＭ）、１０％熱不活化ウシ胎児血清（ＦＢＳ；Ｇｉｂｃｏ、米国）を添加した高グルコース連結を有するα改変体（α－ＭＥＭ）（Ｇｉｂｃｏ、グランアイランド、米国）、１％ペニシリン／ストレプトマイシンおよび２ｍＭ Ｌ－グルタミン（ＬＧ）（Ｇｉｂｃｏ、グランアイランド、米国）を含むべきである。

外植片による細胞亜集団の単離
臍動脈および静脈を取り囲む層内に存在する細胞集団を得るために、図２Ｃに示すように、組織を培養プレートに播種し、動脈および臍静脈を取り囲む層を底部内部プレートに入れなければならない。この外植技術により、結合組織からプラークに移動して接着することができる細胞集団を得ることができる。１０～１５日の細胞接着の標準時間では、プレートに移動して接着することができる細胞集団は、すべての結合組織に由来する。異なるアプローチでは、本発明で提示される技術の目的は、臍動脈および静脈を取り囲む層内に存在する細胞集団のみを得ることであり、したがって、遊走／接着時間は通常の外植技術よりも短くなければならない。好ましい実施形態では、細胞が結合組織から移動してプラークの内側底部に付着するのを可能にする時間は、１０日を超えてはならない。より好ましくは、細胞遊走および接着の時間は８日を超えてはならない。

最初の４８時間以内に、動脈および臍静脈を取り囲む組織がプラークに付着する可能性があり、これが生じると、安定化培養培地を３日ごとに新鮮な培地と交換し、３継代目まで培養を継続的に分けるべきである。

臍動脈および静脈を取り囲む層内に存在する細胞集団を得るためのこの手順は、羊膜下組織によって取り囲まれた結合組織の外面の組織内に存在する細胞を得るために同じ方法で繰り返す必要がある。

細胞培養物が７０～８０％のコンフルエンスに達すると、細胞をプラークから分離し、それが得られた組織セグメントに従って別々のボトルに再播種する必要がある。好ましい実施形態では、細胞は、ＴｒｙｐＬＥ（商標）Ｅｘｐｒｅｓｓ（Ｇｉｂｃｏ、グランアイランド、米国）によりプレートから分離され、続いて、５００ｃｍ^２フラスコ（Ｎｕｎｃ、デンマーク）中に１ｃｍ^２あたり２，５００細胞の密度で播種され得、それが抽出された組織のセグメントを同定する。

細胞培養物は、Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｏｆ Ｃｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｙのガイドラインに従って後に特徴付けられるように、３継代目まで行われる必要がある［１］。
Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｏｆ Ｃｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｙのガイドラインに従った特徴付け

好ましい実施形態では、特徴付けは、図３に示すように、マーカーＣＤ１０５、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ４５、ＣＤ３４、ＣＤ１４、ＨＬＡ－ＤＲのサイトメトリーならびに骨芽細胞、脂肪細胞および軟骨芽細胞におけるインビトロ分化を使用して、Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｏｆ Ｃｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｙのガイドラインに従って行われる必要がある。

好ましい実施形態では、組成物中の細胞の少なくとも９０％がＣＤ１０５陽性である。好ましくは、細胞の少なくとも９１、９２、９３または９４％がＣＤ１０５陽性である。より好ましくは、細胞の９５％以上がＣＤ１０５陽性である。

好ましい実施形態では、組成物中の細胞の少なくとも９０％がＣＤ７３陽性である。好ましくは、細胞の少なくとも９１、９２、９３または９４％がＣＤ７３陽性である。より好ましくは、細胞の９５％以上がＣＤ７３陽性である。

好ましい実施形態では、組成物中の細胞の少なくとも９０％がＣＤ９０陽性である。好ましくは、細胞の少なくとも９１、９２、９３または９４％がＣＤ９０陽性である。より好ましくは、細胞の９５％以上がＣＤ９０陽性である。

好ましい実施形態では、組成物中の細胞の少なくとも９０％がＣＤ１０５、ＣＤ７３およびＣＤ９０陽性である。好ましくは、細胞の少なくとも９１、９２、９３または９４％がＣＤ１０５、ＣＤ７３およびＣＤ９０陽性である。より好ましくは、細胞の９５％以上がＣＤ１０５、ＣＤ７３およびＣＤ９０陽性である。

好ましい実施形態では、組成物中の細胞の１０％未満がＣＤ４５陽性である。好ましくは、細胞の１０、９、８、７、６、５、４または３％未満がＣＤ４５陽性である。より好ましくは、細胞の２％以下がＣＤ４５陽性である。

好ましい実施形態では、組成物中の細胞の１０％未満がＣＤ３４陽性である。好ましくは、細胞の１０、９、８、７、６、５、４または３％未満がＣＤ３４陽性である。より好ましくは、細胞の２％以下がＣＤ３４陽性である。

好ましい実施形態では、組成物中の細胞の１０％未満がＣＤ１４陽性である。好ましくは、細胞の１０、９、８、７、６、５、４または３％未満がＣＤ１４陽性である。より好ましくは、細胞の２％以下がＣＤ１４陽性である。

好ましい実施形態では、組成物中の細胞の１０％未満がＨＬＡ－ＤＲ陽性である。好ましくは、細胞の１０、９、８、７、６、５、４または３％未満がＨＬＡ－ＤＲ陽性である。より好ましくは、細胞の２％以下がＨＬＡ－ＤＲ陽性である。

好ましい実施形態では、組成物中の細胞の１０％未満がＣＤ４５、ＣＤ３４、ＨＬＡ－ＤＲおよび／またはＣＤ１４陽性である。好ましくは、細胞の１０、９、８、７、６、５、４または３％未満がＣＤ４５、ＣＤ３４、ＨＬＡ－ＤＲおよび／またはＣＤ１４陽性である。より好ましくは、細胞の２％以下がＣＤ４５、ＣＤ３４、ＨＬＡ－ＤＲおよび／またはＣＤ１４陽性である。

好ましい実施形態では、組成物中の細胞の少なくとも７０％が生存可能である。好ましくは、細胞の少なくとも７１、７２、７３、７４、７５、７６、７７、７８または７９％が生存可能である。より好ましくは、細胞の８０％以上が生存可能である。

好ましい実施形態では、組成物は、肉眼的な凝集体、病原性微生物（細菌、マイコプラズマ、梅毒、ＨＢＶ、ＨＣＶ、ＨＩＶ、ＣＭＶおよび真菌）による汚染ならびに０．５ＥＵ／ｍｌ超のエンドトキシン濃度を含まない。

この手順により得られた細胞は、細胞療法に適した間葉細胞とみなすことができる。

ＭＳＣ亜集団の特徴付け
細胞が間葉細胞として検証されると、本発明者らは、サイトメトリーによる５種のマーカーに基づく細胞培養物の選択を開発した。これらの細胞培養物は、マーカーＣＤ１０５、ＣＤ５６、ＣＤ４４、ＲＡＮＫＬ、およびＮ－カドヘリンのうち、少なくとも３種の存在によって選択される。本発明者らは、これらのマーカーに応答する細胞が、心室駆出の問題、ならびに例えば大腿骨、膝蓋骨および脛骨の相互作用における関節摩耗の問題の処置；肺損傷などの呼吸器障害、急性呼吸窮迫症候群などの急性肺損傷の処置、ならびに慢性創傷および潰瘍などの皮膚病変の処置に特に適していることを確立した。

本発明者らは、これらの細胞を詳細に特徴付け、以下の特徴のいずれかを有する細胞は、心臓の心室駆出不全の処置ならびに疼痛の緩和ならびに大腿骨、膝蓋骨および脛骨の相互作用において生じる摩耗の機能の回復；肺損傷などの呼吸器障害、急性呼吸窮迫症候群などの急性肺損傷の処置、ならびに慢性創傷および潰瘍などの皮膚病変の処置において、より有効である可能性が高い。

亜集団の特徴付け手順を開始するために、ＭＳＣ検証から得られた細胞培養物を洗浄、再懸濁、およびインキュベートする必要がある。最も好ましくは、細胞培養物は、ｐＨ７．３および４°Ｃで、滅菌ＰＢＳを用いて連続して４回洗浄する必要がある。

洗浄が終了したら、細胞培養物を再懸濁する必要があり、好ましい実施形態では、細胞培養物を、ｐＨ７．３の滅菌ＰＢＳを含む１×１０^６溶液の濃度で再懸濁する。

混合後、細胞培養物は、好ましい実施形態でインキュベートし、Ｎ－カデリン、ＣＤ４４、ＲＡＮＫＬ、ＣＤ１０５および／またはＣＤ５６に対する一次抗体の混合物と共に、氷上および暗所で３０分間インキュベートする必要がある。

サンプルをサイトメーターに配置するために、細胞培養物は、滅菌１２ｘ７５ｍｍプロピレンチューブにおいて、ｐＨ７．３の滅菌ＰＢＳ１０ｍｌで再懸濁する必要がある。

サイトメトリーには、より好ましくはＢＤ ＦＡＣＳ Ｃａｎｔｏ ＩＩフローサイトメーターを使用する必要がある。最も好ましくは、亜集団は、ＣＤ４４、ＣＤ５６、ＣＤ１０５、Ｎ－カドヘリンおよびＲＡＮＫＬ、またはこれらのマーカーの組み合わせを発現する必要がある。

好ましい実施形態では、承認される細胞培養物について、組成物中の細胞の少なくとも１０％がＣＤ４４陽性である。好ましくは、細胞の少なくとも１０、１１、１２、１３または１４％がＣＤ４４陽性である。より好ましくは、細胞の１５％以上がＣＤ４４陽性である。

好ましい実施形態では、承認される細胞培養物について、組成物中の細胞の少なくとも１５％がＣＤ５６陽性である。好ましくは、細胞の少なくとも１５、１６、１７、１８または１９％がＣＤ５６陽性である。より好ましくは、細胞の２０％以上がＣＤ５６陽性である。

好ましい実施形態では、承認される細胞培養物について、組成物中の細胞の少なくとも５０％がＣＤ１０５陽性である。好ましくは、細胞の少なくとも９１、９２、９３または９４％がＣＤ１０５陽性である。より好ましくは、細胞の９５％以上がＣＤ１０５陽性である。

好ましい実施形態では、承認される細胞培養物について、組成物中の細胞の少なくとも１０％がＮ－カドヘリン陽性である。好ましくは、細胞の少なくとも１０、１１、１２、１３または１４％がＮ－カドヘリン陽性である。より好ましくは、細胞の１５％以上がＮ－カドヘリン陽性である。

好ましい実施形態では、承認される細胞培養物について、組成物中の細胞の少なくとも１％がＲＡＮＫＬ陽性である。好ましくは、細胞の少なくとも１、２、３または４％がＲＡＮＫＬ陽性である。より好ましくは、細胞の５％以上がＲＡＮＫＬ陽性である。

好ましい実施形態では、承認される細胞培養物について、組成物中の細胞の少なくとも１０％がマーカーＣＤ４４、ＣＤ５６、ＣＤ１０５、Ｎ－カドヘリンおよびＲＡＮＫＬのうち、少なくとも３種に対して陽性である。好ましくは、少なくとも１１、１２、１３、１４％の細胞がマーカーＣＤ４４、ＣＤ５６、ＣＤ１０５、Ｎ－カドヘリンおよびＲＡＮＫＬのうち、少なくとも３種に対して陽性である。より好ましくは、細胞の１５％以上がマーカーＣＤ４４、ＣＤ５６、ＣＤ１０５、Ｎ－カドヘリンおよびＲＡＮＫＬのうち、少なくとも３種に対して陽性である。

Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｏｆ Ｃｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｙおよび上記の亜集団のマーカー群の要件を承認する細胞培養物は、続いて、細胞外産物およびそれらのＲＮＡ発現を特徴付けることにより評価することができる。

分泌因子レベルに応じた亜集団の特徴付け
好ましい実施形態では、図４に示すように、異なる細胞培養物からの上清を収集し、肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）の分泌レベルを測定する必要がある。より多くのＨＧＦを分泌する細胞培養物を選択する。

好ましい実施形態では、異なる上清を、ＥＬＩＳＡ ＤｕｏＳｅｔ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ Ｓｙｓｔｅｍ（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ、ミネアポリス、ミネソタ州）を使用して測定する必要がある。

好ましい実施形態では、培養培地中に１０００ｐｇ／ｍｌ超の肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）を分泌する細胞培養物を選択する必要がある。好ましくは、培養培地中に１０００、１１００、１２００、１３００、１４００、１５００、１６００、１７００、１８００、１９００、２０００、２１００、２２００、２３００、２４００、２５００、２６００、２７００、２８００または２９００ｐｇ／ｍｌ超のＨＧＦを分泌する細胞培養物を選択する必要がある。より好ましくは、培地中に２５００ｐｇ／ｍｌ超のＨＧＦを分泌する細胞培養物を選択する必要がある。最も好ましくは、培地中に３０００ｐｇ／ｍｌ以上を分泌する細胞培養物を選択する必要がある。

遺伝子発現レベルに応じた亜集団の特徴付け
好ましい実施形態では、図４に示すように、各細胞培養物のサンプルを採取し、ＲＴ－ｑＰＣＲによりＴＧＦ－β３の発現を評価する必要がある。より多くのＴＧＦ－β３を発現する培養物を選択する。

好ましい実施形態では、ＴＧＦ－β３発現を、Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ ＳＹＢＲ Ｇｒｅｅｎ Ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ ＰＣＲ Ｐｒｏｔｏｃｏｌ（メルク）ＲＴ－ｑＰＣＲキットを使用して測定する必要がある。

前述の特徴付けを承認する細胞培養物が混在する。

細胞混合物の最終溶液が分類されると、その溶液は、「臍帯由来細胞組成物」と呼ばれ、この溶液はすぐに使用するか、後で使用するために凍結保存することができる。保存された細胞組成物を使用する必要がある場合、各処理に必要な細胞の数に応じて、凍結保存されたバイアルを解凍し、増殖させなければならない。好ましい実施形態では、凍結保存されたバイアルは、５％ヒト血小板溶解物（ｈＰＬ）を添加したα－ＭＥＭを使用して解凍し、５～６継代目まで増殖させる必要がある。

例
例１．本発明の細胞の亜集団の取得。
本発明の細胞の亜集団を得るために、臍帯サンプルを、全段階のヒト胎盤から採取し、この胎盤を健康なドナーのインフォームドコンセント後に帝王切開により抽出し；「臍帯処理」の節において詳細に記載されるように、抗生物質を含む緩衝液中で無菌的に保存した。

続いて、図２Ａに示すモデルに従って、臍帯を８～１０ｃｍのセグメントに切断し、次いで、図２Ｂに示すように、３つの長軸方向の切断を行って、静脈および臍動脈を露出させ、除去した。図２Ｃに示すように、動脈および静脈を取り囲む内面を、培養プレートの底部と接触するように配置する。プレートに移動および接着した細胞を、「外植片による細胞亜集団の単離」の節で詳述した培地を用いて、３継代目まで増殖させた。

得られた異なるプレートを、「ＭＳＣの亜集団の特徴付け」の節に記載されているプロトコルを使用して検証した。マーカーＣＤ１０５、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ４５、ＣＤ３４、ＣＤ１４、ＨＬＡ－ＤＲならびに骨芽細胞、脂肪細胞および軟骨芽細胞のインビトロ分化について得られた結果を図３に示す。ほとんどのプレートがこの検証を承認し、ＣＤ１０５、ＣＤ７３、ＣＤ９０については９８％超であり、ＣＤ４５、ＣＤ３４、ＣＤ１４、ＨＬＡ－ＤＲについては１％未満であった。

さらに、Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｏｆ Ｃｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｙのガイドラインに従って承認された細胞培養物を、マーカーＣＤ１０５、ＣＤ５６、ＣＤ４４、ＲＡＮＫＬおよびＮ－カドヘリンの群に従って評価した。評価された細胞培養物は、評価されたすべてのマーカーについて存在を示し、それを用いて次の検証に進むことが承認された。さらに、この場合、図５に示すように、評価された培養物が少なくとも３種のマーカーについて１５％を超えて示されたという要件も満たした。

承認された培養物について、図４に示すように、異なる細胞培養物の上清におけるＨＧＦの分泌を評価した。ＨＧＦレベルは、評価された細胞培養物のほとんどで２５００ｐｇ／ｍｌ超であった。

並行して、図４に示すように、ＴＧＦ－β３の発現をＲＴ－ｑＰＣＲで評価した。上記の評価に従って承認された培養物は、ＴＧＦ－β３の高発現を示した。

最後に、すべての試験に合格した細胞培養物を最終的な臍帯由来の細胞組成物中で混合し、この溶液を後に使用するために凍結保存した。組成物を使用した場合、細胞を、５％ヒト血小板溶解物（ｈＰＬ）を添加したα－ＭＥＭを使用して６継代目まで増殖させた。

例２．駆出量が減少した患者
上記の組成物のいずれかを使用して、以下に記載する患者のいずれかを処置することができる。本発明者らは、患者の特定のサブグループに対する効果的な処置および／または予防処置を開発した。

好ましい実施形態では、患者は、心室腔の駆出量の減少を伴う慢性心不全に罹患している。

組み入れ基準
好ましい実施形態では、患者は、表１に示すように、心エコー評価により左室駆出率が４０％以下で定義される収縮期心室機能不全を伴う拡張駆出率が低下した慢性心不全に罹患している。

ＢＭＩ：ボディマスインデックス。ＡＣＥＩ：アンジオテンシン変換酵素阻害剤。ＡＲＢ：アンジオテンシンＩＩ受容体遮断薬。ＮＹＨＡ：ニューヨーク心臓協会。ＧＦＲ：ＣＫＤ－ＥＰＩ式による糸球体濾過率。ＬＢＢＢ：左脚ブロック。ＬＡＦＢ：左脚前枝ブロック。ＲＢＢＢ：右脚ブロック。ＬＶＥＦ：左室駆出率。ＬＶＥＳＶ：左心室の収縮終期容量。ＬＶＥＤＶ左心室の拡張終期容量。ＮＳ：ｐ＞０．０５（群間）。

好ましい実施形態では、患者は、駆出率が低下した末期心不全に罹患していてはならない。別の実施形態では、患者は、再発性心筋虚血に罹患していてはならない。別の実施形態では、患者は、制御されていない心室性頻拍に罹患していてはならない。別の実施形態では、患者は、平均余命が１年未満である悪性疾患に罹患していてはならない。別の実施形態では、患者は、顕性心室非同期性に罹患していてはならない。別の実施形態では、患者は、血液疾患に罹患していてはならない。別の実施形態では、患者は、過去３ヵ月間で発生している最近の脳血管疾患に罹患していてはならない。別の実施形態では、患者は、２００μＭ以下の血清クレアチニンレベルを有さなければならない。別の実施形態では、患者は、心房細動に罹患していてはならず、心房細動では、患者は過去３ヵ月間で心拍数の最適な制御を受けていない。

好ましい実施形態では、患者は、以下の群から選択される疾患のいずれにも罹患していてはならない：駆出率が低下した末期心不全、再発性心筋虚血、制御されていない心室性頻拍、悪性疾患（患者の余命は１年未満である）、顕性心室非同期性、血液疾患、最近の脳血管疾患（疾患は過去３ヵ月間で発生している）および心房細動（患者は過去３ヵ月間に最適な周波数制御心臓を有していない）。

好ましい実施形態では、患者は、２００μＭ以下の血清クレアチニンレベルを有する必要がある。好ましい実施形態では、患者は、うっ血性心不全に罹患していてはならない。好ましい実施形態では、患者は、男性でなければならない。

投与
上記の任意の組成物は、下記の任意の手段を介して、上記の任意の患者に投与することができる。

組成物は、任意の公知の方法により投与することができる。例えば、組成物は、静脈内、病変内、血管内、動脈内、皮下、脳内、筋内、腹腔内または脳室内に投与することができる。好ましい実施形態では、組成物は、静脈内、動脈内、または脳室内に投与される。より好ましくは、組成物は、静脈内に投与される。

投与量が治療有効量を含む限り、任意の量の細胞を患者に投与することができる。好ましい実施形態では、患者の体重１キログラム（ｋｇ）あたり少なくとも１×１０^５個の細胞が投与される。好ましくは、患者の体重１ｋｇあたり少なくとも１ｘ１０^５、２ｘ１０^５、３ｘ１０^５、４ｘ１０^５、５ｘ１０^５、６ｘ１０^５、７ｘ１０^５、８ｘ１０^５または９ｘ１０^５個の細胞が投与される。より好ましくは、患者の体重１ｋｇあたり約１ｘ１０^６個の細胞が投与される。用語「約」は、±１０％の変動を指す。

ヒドロコルチゾンは、任意の型のアレルギー反応を予防するために投与することができる。好ましい実施形態では、組成物の投与前に、少なくとも５０ｍｇのヒドロコルチゾンを患者に投与する。好ましくは、少なくとも６０、７０、８０または９０ｍｇのヒドロコルチゾンを患者に投与する。より好ましくは、組成物の投与の前に、１００ｍｇのヒドロコルチゾンを患者に投与する。

クロルフェナミンは、輸血反応を予防するために投与することができる。好ましい実施形態では、組成物の投与前に、少なくとも５ｍｇのクロルフェナミンを患者に投与する。好ましくは、少なくとも６、７、８または９ｍｇのクロルフェナミンを患者に投与する。より好ましくは、組成物の投与前に、１０ｍｇのクロルフェナミンを患者に投与する。

好ましい実施形態では、組成物の投与前に、少なくとも５０ｍｇのヒドロコルチゾンおよび／または少なくとも５ｍｇのクロルフェナミンを患者に投与し、ヒドロコルチゾンおよび／またはクロルフェナミンの投与の少なくとも１０分後に組成物を投与する。好ましくは、ヒドロコルチゾンおよび／またはクロルフェナミンの投与の少なくとも１５、２０または２５分後に組成物を投与する。より好ましくは、ヒドロコルチゾンおよび／またはクロルフェナミンの投与の少なくとも３０分後に組成物を投与する。

好ましい実施形態では、組成物の投与前に、１００ｍｇのヒドロコルチゾンおよび１０ｍｇのクロルフェナミンを患者に投与し、ヒドロコルチゾンおよび／またはクロルフェナミンの投与の少なくとも３０分後に組成物を投与する。好ましい実施形態では、注入反応を避けるために、ヒドロコルチゾンおよび／またはクロルフェナミンを処置の開始時に一度投与する。

好ましい実施形態では、組成物は、アンジオテンシン変換酵素阻害剤、アンジオテンシンＩＩ受容体遮断薬、β遮断薬、利尿薬、アルドステロン拮抗薬、変力薬およびジゴキシンからなる群から選択される１つまたは複数の治療薬との併用療法において、および／または冠状動脈バイパス手術、心臓弁の修復もしくは置換、埋め込み型除細動器、心臓再同期療法、両心室刺激、ポンプ心臓および心臓移植からなる群から選択される外科的介入もしくは医療デバイスと組み合わせて使用される。

アンジオテンシン変換酵素阻害剤の例としては、ベナゼプリル、カプトプリル、エナラプリル、フォシノプリル、リシノプリル、モエキシプリル、ペリンドプリル、キナプリル、ラミプリル、シラザプリル、デラプリル、ペリンドプリル、モエキシプリル、スピラプリル、テモカプリル、イミラプリルおよびトランドラプリルが挙げられる。

アンジオテンシンＩＩ受容体遮断薬の例としては、ロサルタン、カンデサルタン、テルミサルタン、オルメサルタン、バルサルタン、イルベサルタン、エプロサルタン、タトサルタンおよびアジレサルタンが挙げられる。

β遮断薬の例としては、アセブトロール、アテノロール、ベタキソロール、フマル酸ビソプロロール、カルテオロール、カルベジロール、エスモロール、ラベタロール、酒石酸塩およびコハク酸塩の形態のメトプロロール、ナドロール、ネビボロール、ペンブトロール、ピンドロール、プロパノロール、ソタロール、レボブノロール、メトロロロール、セリプロロール、ブシンドロールおよびチモロールが挙げられる。

利尿薬の例としては、クロロチアジド、クロルタリドン、インダパミド、ヒドロクロロチアジド、メチロチアジド、メトラゾン、ブメタニド、フロセミド、エタクリナート、トルセミド、アミロライド塩酸塩およびトリアムテレンが挙げられる。

アルドステロン拮抗薬の例としては、スピロノラクトン、エプレレノン、インスプラ、カンレノン、カンレノン酸カリウムおよびスピロノラクトンが挙げられる。

変力薬の例としては、ドブタミン、イソプレナリン、エノキシモン、ミルリノン、アムリノン、プレナルテロール、ドーパミン、レボシメンダン、ジゴキシン、ノルエピネフリン、アドレナリン、エフェドリン、メトキサミン、フェニレフリン、イボパミン、ドペキサミン、グルカゴン、カルシウム、サルブタモール、ピルブタノール、ピルブタンが挙げられる。

好ましい実施形態では、組成物は１回投与される必要があり、および／または２回以上投与されてもよい。好ましい実施形態では、患者は、処置の開始時に患者にある用量を投与する治療計画を受ける。好ましい実施形態では、処置は１２ヵ月以下継続する必要がある。

研究の期待される結果
予想される安全性の結果には、臍帯由来細胞組成物またはプラセボの静脈内注入後の即時有害事象；世界的な死亡率、主要な心血管事象（心血管死、非代償性心不全（ＨＦ）による入院、致命的でない心筋梗塞の複合転帰によって定義される）ならびに心臓発作、持続性心室不整脈および悪性事象を含む他の有害事象の発生が含まれる。

有効性の予想される主要評価基準は、心エコー検査における左室駆出率（ＬＶＥＦ）の変化である。さらに、心エコー検査によって評価されたＬＶＥＦの絶対的な５％の増加は、治療に対する臨床的に有意な反応とみなされた。二次的有効性評価基準には、心エコー検査での左心室の収縮終期容量（ＬＶＥＳＶ）および拡張終期容量（ＬＶＥＤＶ）の変化；心臓磁気共鳴画像法（ＣＭＲ）におけるＬＶＥＦ、ＬＶＥＳＶおよびＬＶＥＤＶ；ニューヨーク心臓協会（ＮＹＨＡ）の機能分類；生活の質に関するアンケートの一般的スコア；心肺運動負荷試験により評価される最大酸素消費量ピーク（ＶＯ２ピーク）および換気効率（ＶＥ／ＶＣＯ２ペンディング）；脳性ナトリウム利尿ペプチド（ＢＮＰ）および高感度Ｃ反応性タンパク質（ＨＳＣＲＰ）が含まれる。

例２．１：研究設計および患者数
試験は、第１／２相、無作為化、二重盲検、プラセボ対照臨床試験であった。研究は、チリのＣｌｉｎｉｃａ Ｓａｎｔａ ＭａｒｉａおよびＣｌｉｎｉｃａ Ｄａｖｉｌａで行った。参加者は、これらの民間医療センターまたは公立病院から紹介され、２０１２年１２月から２０１４年６月までの間に無作為に割り当てられた。実験デザインは、参加している保健センターの倫理委員会およびチリのメトロポリタン保健サービスによって承認された。登録前に、すべての患者は参加することに同意し、治験審査委員会によって承認されたインフォームドコンセントに署名した。この研究は、Ｃｌｉｎｉｃａｌｔｒｉａｌｓ．ｇｏｖ（ＮＣＴ０１７３９７７７）で登録された。

適格な患者は、臍帯由来細胞組成物またはプラセボの静脈内注入に対する１：１無作為化に登録した。ランダム化リストは、研究に関係のない人によってコンピューターで生成された。すべての患者を、ベースラインと、３、６、および１２ヵ月の事前に設定された追跡ポイントで評価した。これらの評価は、ＮＹＨＡの有害事象の臨床的評価および機能分類；ミネソタ心不全質問表（ＭＬＨＦＱ）およびカンザスシティ心筋症質問表（ＫＣＣＱ）；全血球算定、肝機能および腎機能試験、脳性ナトリウム利尿ペプチド（ＢＮＰ）、高感度Ｃ反応性タンパク質（ＨＳＣＲＰ）を含む実験室分析；安静時心電図、平均シグナル心電図、２４時間ホルター心電図モニタリング；経胸壁心エコー検査、心臓磁気共鳴画像法（ＣＭＲ）および心肺運動負荷試験で構成されていた。臨床研究者、研究看護師および患者は、処置の割り当てを知らされていなかった。

臍帯由来細胞組成物患者およびプラセボ患者のベースライン特性は、人口統計学的変数、心血管リスク因子、ＮＹＨＡクラスおよび心電図の点でに関して異ならなかった（表１）。虚血性心筋症は、ＨＦｒＥＦの主要な病因であった（２１名の患者、７０％）。心臓リモデリングを修正する療法薬に関して、群間に差はなかった。埋め込み型心臓電子デバイスを有する患者はいなかった。発症時に明白な心室非同期性を示した患者はいなかったが、各群の１名の患者は脚ブロックを残していた。プラセボで処置された患者は、ベースラインでＢＮＰレベルが高く、ＬＶＥＤＶが２５％高かった（ｐ＜０．０５）。

例２．２ 臍帯由来細胞組成物の調製、特徴付けおよび注入。
臍帯由来細胞組成物に基づく治療はＦＤＡガイド「Ｇｕｉｄａｎｃｅ ｆｏｒ Ｉｎｄｕｓｔｒｙ：Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｇｏｏｄ Ｔｉｓｓｕｅ Ｐｒａｃｔｉｃｅ（ＣＧＴＰ）ａｎｄ Ａｄｄｉｔｉｏｎａｌ Ｒｅｑｕｉｒｅｍｅｎｔｓ ｆｏｒ Ｍａｎｕｆａｃｔｕｒｅｒｓ ｏｆ Ｈｕｍａｎ Ｃｅｌｌｓ，Ｔｉｓｓｕｅｓ，ａｎｄ Ｃｅｌｌｕｌａｒ ａｎｄ Ｔｉｓｓｕｅ－Ｂａｓｅｄ Ｐｒｏｄｕｃｔｓ（ＨＣＴ／Ｐｓ）」に従う条件下で、医薬品製造管理および品質管理に関する基準（ＧＭＰ）の下で開発された。臍帯は、健康なドナーのインフォームドコンセントの後、帝王切開によりヒト胎盤から得た。臍帯は、本明細書の「発明を実施するための形態」の節に記載されている方法として処理した。

例２．３：パラクリン因子。
ＢＭ－ＭＳＣと臍帯由来細胞組成物との間の成長因子分泌レベルを比較するために、３Ｘ１０^４個の細胞を６ウェルプレート中の無血清培地に播種した。２４時間のインキュベーション後、条件培地を収集し、ＤｕｏＳｅｔ ＥＬＩＳＡ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ Ｓｙｓｔｅｍ（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ、ミネアポリス、ミネソタ州）を使用して、血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）および肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）の分泌レベルを測定した。さらに、ＲＮＡ抽出用のＲＮｅａｓｙ ｍｉｎｉ ｋｉｔ（キアゲン、米国）を使用して、ＴＧＦβ１の相対発現を測定し、ＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔ ＩＩＩ Ｆｉｒｓｔ－Ｓｔｒａｎｄ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｆｏｒ ＲＴ－ＰＣＲ（インビトロジェン、米国）を使用して、２０μｌの反応混合物で相補的ＤＮＡを合成した。ＳＹＢＲ Ｇｒｅｅｎ Ｒｅａｇｅｎｔｓ（ＱＰＣＲ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ、アジレント・テクノロジー）を使用して、ＲＴ－ｑＰＣＲを行った。スプリッタのすべてのセットは、有効性について予め選択され、それらの配列は、以下のとおりであった：Ｂ２Ｍ（Ｆ：５’ＴＴＣＡＧＴＴＴＡＣＴＣＡＣＧＴＣＡＴＣＣ ３’、Ｒ：５’ ＡＣＡＣＧＧＣＡＧＧＣＡＴＡＣＴＣＡＴＣ ３’）、ＴＧＦβ１（Ｆ：５’ＡＣＡＡＴＴＣＣＴＧＧＣＧＡＴＡＣＣＴＣＡＧＣＡ３’、Ｆ：５’ＴＧＣＡＧＴＧＴＧＴＣＴＣＣＴＧＴＣＴＣＣＴＧＣＡＴＴ ’）。

図４に示すように、臍帯由来細胞組成物は、ＢＭ－ＭＳＣと比較して、より多くのＴＧＦ－β３遺伝子発現を示した（ｐ＜０．００１）。臍帯由来細胞組成物は、ＢＭ－ＭＳＣと比較して、５５倍多いＨＧＦ発現を示し（ｐ＞０．０００１）（図４）、場合によっては、未検出レベルのＨＧＦを示したことに言及すべきである。この最後の因子は、どの臍帯および／または細胞集団を使用するかを選択するための重要な試験である。

例２．４ 免疫調節効果
図６に示すように、インビトロでのＰＨＡ刺激後の末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）の増殖反応に対する効果を評価することにより、臍帯由来細胞組成物の免疫抑制特性を分析した。

最も好ましくは、このアッセイに含まれるＨＦｒＥＦを有する４名の患者の異なるＴ細胞サブグループの増殖をインビトロで行い、臍帯由来細胞組成物およびＢＭ－ＭＳＣの免疫調節効果を評価した。単核細胞は、製造者の指示に従って、Ｆｉｃｏｌｌ－Ｐａｑｕｅ Ｐｌｕｓ（ＧＥヘルスケア、アマシャム、ＲＵ）（１，０７７ｇ／ｍｌ）の密度勾配により、ヒト末梢血から分離した。

ＰＢＭＣ細胞を、製造者のプロトコルに従って、カルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル（ＣＦＳＥ、ライフテクノロジーズ、カールスバッド、カリフォルニア州）で染色し、１０％ＦＢＳ、１％ＬＧ、１％非必須アミノ酸（シグマアルドリッチ、米国）、１００ｍＭピルビン酸ナトリウム（シグマ、米国）、２５ｍＭβ－メルカプトエタノール（Ｇｉｂｃｏ、ニューヨーク州）および１５ｍｇ／ｍｌのフィトヘマグルチニン（ＰＨＡ）（シグマ、米国）を添加した培地ＲＰＭＩ（ロズウェルパーク記念研究所培地）（シグマアルドリッチ、米国）中、９６ウェルプレートを用いて、ＭＳＣと１：１０の比率（ＭＳＣ：ｈＰＢＭＣ）で共培養した。

７２時間後、ＰＢＭＣを、ブレフェルジンＡ（Ｂｉｏｌｅｇｅｎｄ、サンディエゴ、カリフォルニア州）の存在下で、５０ｎｇ／ｍｌホルムボルミステロテート（ＰＭＡ）（シグマアルドリッチ）および１μｇ／ｍｌイオノマイシン（シグマアルドリッチ）で４時間刺激した。

表面染色のために、細胞をヒトＣＤ４、ＣＤ８、ＣＤ３およびＣＤ２５（ＢＤバイオサイエンス、米国）に対する抗体と共に、４℃で３０分間暗所でインキュベートした。細胞内染色は、ＢＤ Ｃｙｔｏｆｉｘ／Ｃｙｔｏｐｅｒｍ溶液を使用して、製造者のプロトコルに従って、ヒトＩＬ－１７、ＩＬ４およびＩＦＮγに対する抗体（ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ、米国）を用いて行った。転写因子の評価のために、製造者のプロトコルに従って、染色緩衝液および特定の抗体（ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ、米国）を用いて、ＦｏｘＰ３発現を評価した。ＦＡＣＳ Ｃａｎｔｏ ＩＩフローサイトメーター（ＢＤバイオサイエンス）を使用して細胞を取得し、図６に示すように、ＣＦＳＥ蛍光の減少によって計算される表現型および増殖についてＦｌｏｗＪｏソフトウェア（Ｔｒｉｓｔａｒ、Ｓｔａｎｆｏｒｄ）で分析した。

臍帯由来細胞組成物は、１：１０の比率でＢＭ－ＭＳＣと比較して、Ｔ細胞増殖に対して同様の阻害効果を示し、阻害の割合は、ＭＳＣの非存在下でのＰＨＡ誘導性増殖に関して、ＵＣ－ＭＳＣおよびＢＭ－ＭＳＣについて２１．５３％±３．８５％および２３．９６％±４．５０％であった（ｐ＜０．００５対対照）（図６Ａ）。協働Ｔ細胞１、協働Ｔ細胞２および細胞傷害性Ｔ細胞は、臍帯由来細胞組成物またはＢＭ－ＭＳＣと共培養した後、増殖を減少させる傾向を示した（ｐ＞０．０５）。調節性Ｔ細胞の増殖に対する臍帯由来細胞組成物の共培養の効果は観察されなかった（図６Ｂ）。

例２．５ 遊走プロファイル
遊走実験では、図７に示すように、８μｍポアポリカーボネート膜を用いたＴｒａｎｓｗｅｌｌ ２チャンバー細胞培養法（コーニング、ケンブリッジ、マサチューセッツ州）で細胞遊走アッセイを行った。Ｔｒａｎｓｗｅｌｌ膜の上側を、ＰＢＳ（シグマアルドリッチ、セントルイス、ミズーリ州）中の０．１％ゼラチンで３７°Ｃで２時間コーティングした。臍帯由来細胞組成物およびＢＭ－ＭＳＣを、Ｔｒａｎｓｗｅｌｌ装置の上部チャンバーに、１％ＤＭＥＭ Ｐ／Ｓ、０．１％ＦＢＳ１００μｌあたり１５，０００細胞の密度で別々に播種した。細胞は、ＤＭＥＭ単独またはＨＦｒＥＦ患者から分離した５％血清を含む下部チャンバー内の培地（５００μｌ）に遊走することができた。Ｔｒａｎｓｗｅｌｌシステムを、５％ＣＯ２を含む加湿雰囲気で１６時間、３７°Ｃでインキュベートした。インキュベーション後、綿棒を用いて、非遊走細胞をＴｒａｎｓｗｅｌｌインサートの上面から慎重に除去した。Ｔｒａｎｓｗｅｌｌインサートに残っている結合細胞を７０％メタノールで固定し、２０％メタノール中の１％バイオレット結晶で１時間染色した。洗浄後、膜の上部から底部に遊走した染色細胞を、倍率２０倍の明視野倒立顕微鏡でカウントした。遊走細胞の数を、対照値の変化率として表した（ＤＭＥＭのみ）。各実験は、生物学的および実験的に３回繰り返して行った。図７に示すように、遊走細胞の割合は、ＨＦｒＥＦ患者の血清に反応して、ＢＭ－ＭＳＣと比較して、臍帯由来細胞組成物において有意に高かった（４１．１８±６．５３対２９．６７±８．３５；ｐ＜０，０１）。したがって、本発明で提示された方法によって得られた細胞が高い遊走を有することを検証する。

例２．６：安全性
同種異系臍帯由来の細胞組成物の注入に対する液性免疫応答は、Ｌｕｍｉｎｅｘ２００（Ｋａｓｈｉ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ Ｉｎｃ、ポートランド）を用いた療法の注入の０日目、１５日目および９０日目に、１２名の患者（ＵＣ－ＭＳＣで処置した７名、プラセボを受けた５名）の群において評価した。

同種異系臍帯由来細胞組成物またはプラセボの注入に関連した急性有害事象はなかった。評価された個体のいずれも、注入後の同種抗原に対する抗体を産生しなかった。臍帯由来細胞組成物の注入前に、５２の異なるＨＬＡ特異性でベースライン反応性を有する患者が、９０日目にこれらの特異性のうちの１６つの反応性を失ったことは注目に値する。さらに、注入された細胞が分類されたので、臍帯投与細胞組成物に存在する特異性の１００％とは対照的に、臍帯投与細胞組成物において発現されない特異性の２１％のみが消失したことを検出することが可能であった（ｐ＝０．００４）。結果は、臍帯由来細胞組成物に対する体液性免疫反応がないことを確認するだけでなく、文献から知られているように、ＭＳＣがそれ自体のＨＬＡ分子に対する反応性を優先的に抑制することも確認する。

例２．７：臨床的に関連するイベント
１２ヵ月の追跡期間中の臨床的に関連するイベントを表２に示す。プラセボ群の死亡した患者は、追跡の５ヵ月で急性心筋梗塞を生じた。臍帯由来細胞組成物の患者は、臍帯由来細胞組成物の静脈内注入の５ヵ月後に急性リンパ球性白血病を発症し、ベースラインおよび３ヵ月の追跡で白血病を示唆する臨床的および実験的要素を欠いていた。プラセボ群の患者が悪性黒色腫を発症した。主要な心血管イベントに関しては、プラセボ群の３名の患者およびＵＣ－ＭＳＣの１名が心不全の代償不全により入院し、プラセボ群では１名の患者のみが急性冠症候群を経験した。急性虚血性脳卒中を呈した患者はいなかった。追跡中に新たに発生した上室性不整脈、持続性心室性不整脈、房室ブロックまたは脚ブロックは診断されず、ホルター心電図モニタリングでは何も観察されなかった。Ｌｏｗｎ分類の平均に変化はなかったが、追跡時にプラセボ群では２４時間心電図モニタリングにおいて心室期外収縮の量の増加があった。追跡において、時間領域または頻度に有意な変動は観察されなかった。この研究の完了時に、ＣＭＲで胸部異所性組織形成は観察されなかった。モニタリングポイント中に、全血球算定、腎機能および肝機能に有意な異常は観察されなかった。

例２．８：心臓画像
ベースラインおよび追跡において評価された心エコー指標を表３に示す。ベースラインと比較して、臍帯由来細胞組成物で処置した群では、ＬＶＥＦの改善が見られ、追跡の３ヵ月で始まり（＋３．７１±５．０１％、ｐ＝０．０１０）、６ヵ月（＋５．４３±４．９９％、ｐ＝０．００１）および１２ヵ月（＋７．０７±６，２２％、ｐ＝０．００１）続いた。左心室の容積に変化はなかった。プラセボ群では、これらの変数に大きな違いは見られなかった。ベースラインから１２ヵ月目までのＬＶＥＦの変化は、両群で有意に異なっていた（＋７．０７±６．２２％対＋１．８５±５．６０％、ｐ＝０．０２８）。処置に対する反応に関して、臍帯由来細胞組成物群の患者１１名およびプラセボ群の患者３名が、臨床的に関連するＬＶＥＦの改善を示した（７８．６％対３５．７％；ｐ＝０．０５４）。臍帯由来細胞組成物群における応答者は、６ヵ月で＋６．７３±４．８２％（ベースラインと比較してｐ＝０．００５）、１２ヵ月で＋９．１８±５．１５％（ベースラインと比較してｐ＝０．００２）の平均増加を有した。さらに、１４名の患者のうち７名が、臍帯由来細胞組成物の投与後１２ヵ月でＬＶＥＦの有意な増加およびＬＶＥＦ＞４０％を示したが、両方の条件を満たしたプラセボ群は１名のみであった（５０，０％対７．１％、ｐ＝０．０３６５）。

ＣＭＲ測定値を表３に示す。臍帯由来細胞組成物の静脈内注入で処置された患者は、ＬＶＥＦ（ｐ＝０．０００３）およびＬＶＥＤＶ（ｐ＝０．０１２）の増加を示した（図８）。ＬＶＥＦの最も顕著な改善は、６ヵ月の追跡時であった（＋４．６７±４．５１、ｐ＝０．００５）。臍帯由来細胞組成物で処置したＬＶＥＤＶは、１２ヵ月で増加した（ｐ＝０．０３３）。プラセボ群では、ＬＶＥＦまたは左室容積に変化は観察されなかった（ｎ＝１３）。プラセボ群の患者１名がＣＭＲの同意を撤回した。

ＴＴＥ：経胸壁心エコー図。ＣＭＲ：心臓磁気共鳴。ＬＶＥＦ：左室駆出率（％）。ＬＶＥＳＶ：左心室の収縮終期容量（ｍｌ）。ＬＶＥＤＶ：左心室の拡張終期容量（ｍｌ）。ＮＹＨＡ：ニューヨーク心臓協会。ＭＬＨＦＱ：「ミネソタ心不全」質問表。ＫＣＣＱ－ＣＳ：質問表「カンザスシティ心筋症質問表の臨床要約」。ＶＯ２ピーク：最大酸素消費量（ｍｌ／Ｋｇ／分）。ＶＥ／ＶＣＯ２：二酸化炭素生成比の最小換気速度。ＢＮＰ：脳性ナトリウム利尿ペプチド（ｐｇ／ｍｌ）。ＨＳＣＲＰ：高感度Ｃ反応性タンパク質（ｍｇ／Ｌ）。＊Ｐ＜０．０５対プラセボ。†ｐ＜０．０５対ベースライン条件。‡ベースライン条件に対してｐ＜０．０１６７。

例２．９：機能状態、生活の質および臨床的バイオマーカー
結果を表３に要約する。臍帯由来細胞組成物で処置された患者では、３ヵ月目から開始してＮＹＨＡクラスの実質的な改善が見られ（－０．５４±０．５６；ｐ＝０．０１１）、１２ヵ月目の追跡では依然として見られた（－０．６２±０．４６、ｐ＝０．００３）。臍帯由来細胞組成物で処置された群のみが、ベースラインからすべての追跡点までＭＬＨＦＱの改善を経験した（ｐ＜０．０５）。両群とも、３および６ヵ月の追跡でＫＣＣＱの臨床的要約の初期改善を経験し、臍帯由来細胞組成物で処置された群のみで試験の最後に改善が持続した（ｐ＝０．０１４）。臍帯由来細胞組成物で処置された患者は、１２ヵ月でＶＥ／ＶＣＯ_２の改善を示したが（－１．８９±３．１９、ベースラインと比較してｐ＝０．０２３）、ＶＯ_２のピークに差は観察されなかった。表３に示すように、ＭＥＴＳ、無酸素性閾値での酸素消費量、最大呼吸交換比および細胞療法後の運動時間を含む、運動能力の他の変数に差は見られなかった。３および１２ヵ月の追跡で、臍帯由来細胞組成物で処置された群のＢＮＰレベルがわずかに減少した。

結論
本発明により得られた細胞の亜集団の静脈内注入は、最適な医学的処置下にあるＨＦｒＥＦ患者のこの群において実行可能で安全であった。この同種異系処置は、試験された個人において体液性免疫応答を誘発しなかった。介入により、左心室機能、機能状態および生活の質が有意に改善された。したがって、この用途のために本発明に記載される臍帯由来細胞組成物の溶液の使用を検証する。

例３．大腿骨、膝蓋骨および脛骨の相互作用に問題がある患者。
上記の組成物のいずれかを使用して、以下に記載する患者を処置することができる。本発明者らは、患者の特定のサブグループに対する効果的な処置および／または予防処置を開発した。

好ましい実施形態では、患者は膝の疼痛および機能の問題を抱えている。好ましくは、患者は、大腿骨、膝蓋骨および脛骨の相互作用で生じる摩耗に起因する膝の痛みおよび機能の問題に罹患している。

組み入れ基準
好ましい実施形態では、患者は症候性変形性膝関節症（ＯＡ）に罹患しているはずである。より好ましくは、患者は包含される１２ヵ月以内に、罹患した関節における毎日の疼痛に罹患しているはずである。

表４に示すように、患者は４０～４６歳でなければならない。別の実施形態では、患者は、Ｋｅｌｌｇｒｅｎ－Ｌａｗｒｅｎｃｅスケールおよび安定した標的膝に従って、グレードＩ、ＩＩ、またはＩＩＩのＸ線撮影による変化を有さなければならない。

別の実施形態では、患者は症候性の両側膝ＯＡに罹患してはならない。別の実施形態では、患者はＭＲＩにおいて、顆または脛骨プラトーを伴う全身性骨髄浮腫に罹患してはならない。別の実施形態では、患者は Ｖａｌｇｕｓによって定義された１０°超の軸方向偏差の偏差、および／またはＶａｒｕｓに従った５°超の膝の変形を有してはならない。別の実施形態では、患者は、処置開始前の最後の６ヵ月間、ステロイドまたはヒアルロン酸の経口または静脈内投与を使用してはならない。別の実施形態では、患者は同側性股関節痛または足首痛を有してはならない。別の実施形態では、患者は局所感染または全身感染を有してはならない。別の実施形態では、患者はいかなる形態の続発性関節炎を有してはならない。別の実施形態では、患者は以前に悪性腫瘍に罹患していてはならない。

投与
上記の任意の組成物は、下記の任意の手段を介して、上記の任意の患者に投与することができる。

組成物は、任意の公知の方法により投与することができる。例えば、組成物は、静脈内、病変内、血管内、動脈内、皮下、脳内、筋内、腹腔内または脳室内に投与することができる。好ましい実施形態では、組成物は、病変内、皮下または関節内に投与される。好ましくは、組成物は、関節内に投与される。

投与量が治療有効量を含む限り、任意の量の細胞を患者に投与することができる。好ましい実施形態では、患者あたり少なくとも１×１０^６個の細胞が投与される。好ましくは、患者あたり少なくとも５ｘ１０^６、１０ｘ１０^６または１５ｘ１０^６個の細胞が投与される。より好ましくは、患者あたり少なくとも約２０×１０^６個の細胞が投与される。用語「約」は、±１０％の変動を指す。

最も好ましくは、３ｍｌの最終容量（生理食塩水、５％ＡＢ血漿）に懸濁し、５ｍｌシリンジに分注された合計２０ｘ１０^６個の細胞を、研究設計に従って１つ以上の指定用量で関節内注射する。

患者に投与される投与回数は、処置期間に関係していなければならない。好ましい実施形態では、処置の開始時に、処置のために少なくとも１用量を投与する必要があり、この処置は５２週間を超えて続いてはならない。好ましくは、５２週間を超えて続かない処置について、処置のために少なくとも２回の投与を行う必要があり、１回は処置の開始時に、１回は処置の中間に投与する必要がある。より好ましくは、５２週間を超えて続かない処置について、処置のために少なくとも２回の投与を行い、１回は処置の開始時に、１回は処置の２４週目に投与する。

研究の期待される結果
試験の主要評価基準は安全性であった。有害事象（ＥＡ）を、有害事象共通用語基準（ＣＴＣＡＥ）の分類によってコード化した。ＡＥは各来院時に記録され、重症度、発生率および関節内浸潤との関係の観点から記載された。

試験の二次的目的は有効性であった。以下の臨床エンドポイントは、Ｗｅｓｔｅｒｎ Ｏｎｔａｒｉｏ ａｎｄ Ｍｃ Ｍａｓｔｅｒ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｉｅｓ Ａｒｔｈｒｉｔｉｓ Ｉｎｄｅｘ（ＷＯＭＡＣ）、疼痛の視覚的アナログスケール（ＶＡＳ）、Ｓｈｏｒｔ－ｆｏｒｍ ３６（ＳＦ－３６）質問表による生活の質、患者による包括的評価（ＰＧＡ）およびＯＭＥＲＡＣＴ－ＯＡＲＳＩ反応指数であった。構造評価のために、ＭＲＩを、ベースラインで、ならびにその後６ヵ月目および１２ヵ月目に、公平な放射線科医によって行った。全臓器磁気共鳴画像法（ＷＯＲＭＳ）スコアを使用した。

例３．１：研究設計および患者数
この試験は、図９に見られるように、膝のＯＡにおける、臍帯由来細胞組成物の関節内注射の安全性および有効性を評価した、同種異系臍帯由来細胞組成物に対する無作為化二重盲検比較対照薬、実薬対照薬、第Ｉ／ＩＩ相試験に対応した。患者は臨床研究の前に、書面によるインフォームドコンセントを提供した。すべての被験者は、２０１５年１１月から２０１６年１月の間に、チリのロスアンデス大学臨床センターで募集された。４０名の患者を選択し、２９名の患者を処置群に連続して割り当て：ＭＳＣ－１群は、研究の開始時に注射で臍帯由来細胞組成物の投与を受けた。ＭＳＣ－２群は、研究開始時および６ヵ月後に、臍帯由来細胞組成物の順次投与を受けた。対照群（ｎ＝９）は、研究の開始時および６ヵ月後に、ヒアルロン酸（ＨＡ）を投与された。電子データ入力システムをランダム化に使用した。すべてのデータは、手順および臨床データの評価を行う人々のためにマスクされた。各群の１名の患者は、処置の実施前に研究から脱落した（図８）。この研究は、ＣｌｉｎｉｃａｌＴｒｉａｌｓ．ｇｏｖ（ＮＣＴ０２５８０６９５）に登録されており、良き臨床上の基準（ＧＣＰ）のガイドラインおよびヘルシンキ宣言に従って行われた。チリ保健省の地域倫理委員会（ＣＥＣＳＳＭＯ１３１０１５）から承認を得た。

例３．２ 臍帯由来細胞組成物の調製、特徴付けおよび注入
臍帯由来細胞組成物の製造は、Ｄａｖｉｌａ Ｃｌｉｎｉｃの倫理委員会およびＥａｓｔｅｒｎ Ｍｅｔｒｏｐｏｌｉｔａｎ Ｈｅａｌｔｈ Ｓｅｒｖｉｃｅ（ＳＳＭＯ）により承認された。臍帯由来細胞組成物に基づく処置はＦＤＡガイド「Ｇｕｉｄａｎｃｅ ｆｏｒ Ｉｎｄｕｓｔｒｙ：Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｇｏｏｄ Ｔｉｓｓｕｅ Ｐｒａｃｔｉｃｅ（ＣＧＴＰ）ａｎｄ Ａｄｄｉｔｉｏｎａｌ Ｒｅｑｕｉｒｅｍｅｎｔｓ ｆｏｒ Ｍａｎｕｆａｃｔｕｒｅｒｓ ｏｆ Ｈｕｍａｎ Ｃｅｌｌｓ，Ｔｉｓｓｕｅｓ，ａｎｄ Ｃｅｌｌｕｌａｒ ａｎｄ Ｔｉｓｓｕｅ－Ｂａｓｅｄ Ｐｒｏｄｕｃｔｓ（ＨＣＴ／Ｐｓ）」に従う条件下で、医薬品製造管理および品質管理に関する基準（ＧＭＰ）の下で開発された。臍帯は、健康なドナーのインフォームドコンセントの後、帝王切開によりヒト胎盤から得た。臍帯は、本明細書の「発明を実施するための形態」の節に記載されている方法として処理した。

例３．３：信頼性
試験中に重大な有害事象は記録されなかった。関節内注射に関連するＡＳに関しては、感染事象は生じなかった。表５に示すように、滲出評価は、注射後の第１週において中程度から中程度であり、統計的有意性に達することなくＭＳＣ群においてより高かった（１回目の注射、３４％ＭＳＣ１、３３％ＭＳＣ２対２５％ＨＡ、ｐ＝０．６４および２回目の注射ＭＳＣ２、４１％対ＨＡ ３７．５％、Ｐ＝０．７６）。

例３．４：臨床結果
ベースラインからの平均変化に関して、臍帯由来細胞組成物の群のみが有意な改善を示す。３つの研究群間の比較により、図１０および図１１に示すように、臍帯由来細胞組成物の両群が、６ヵ月での疼痛および機能においてＨＡと比較して統計的優位性を有することが示された。さらに、臍帯由来細胞組成物で２回処置された患者は、図１１に示す総ＷＯＭＡＣ評価に記載されたすべての臨床結果でＨＡより優れていた（ＷＯＭＡＣ_{ｔｏｔａｌ} ＭＳＣ２ ４．４４±１．７６対ＨＡ １２．６±４，５、９５％ＣＩ ５．１、２１．３、ｐ＜０．０１）。追跡の最後に、図１３に示すように、ＯＭＥＲＡＣＴ－ＯＡＲＳＩ奏効率基準（ｐ＜０．０５）により測定したＭＳＣ連続投与群の患者の１００％と比較して、ＨＡ群の患者の６２．５％が応答者であった。

例３．５：構造的な結果
構造変化の評価について、図１４に示すように、１２ヵ月で、半月板、軟骨、滑膜炎、骨棘および関節下骨髄を含むＷＯＲＭＳスコアの１４の特性に変化は観察されなかった。

結論
本発明により得られた臍帯由来細胞組成物の関節内注射は、この患者群において実行可能であり安全である。この同種異系処置は、膝ＯＡにおける臍帯由来細胞組成物の安全性および臨床的有効性を実証し、この細胞療法をＯＡの処置のための代替療法とみなす証拠を提供する。したがって、本発明に記載される臍帯由来細胞組成物の溶液の、この適用のための使用、ならびに股関節、足首および手首のＯＡにおけるような類似の適用のための使用を検証する。より具体的には、臍帯由来細胞組成物は、大腿骨頭と寛骨臼との間、距骨－脛骨－腓骨間、および手根骨／手根骨の橈骨－尺骨間に生じる摩耗に影響を与える可能性がある。

本発明者らが知る限り、この例は、臍帯由来細胞組成物の２回の連続投与と、細胞療法の単回投与、およびヒアルロン酸などの活性比較物を比較する最初の試験である。

例４．臨床適用のための本発明の細胞の亜集団の取得。
本発明の細胞の亜集団を得るために、全段階のヒト胎盤から得られた５つの異なる臍帯サンプルを採取し、これらの胎盤を健康なドナーのインフォームドコンセント後に帝王切開により抽出し；「臍帯処理」の節において詳細に記載されるように、抗生物質を含む緩衝液中で無菌的に保存した。

続いて、図２Ａに示すモデルに従って、臍帯を８～１０ｃｍのセグメントに切断し、次いで、図２Ｂに示すように、３つの長軸方向の切断を行って、静脈および臍動脈を露出させ、除去した。図２Ｃに示すように、動脈および静脈を取り囲む内面を、培養プレートの底部と接触するように配置する。移動してプレートに接着した細胞を、「外植片による細胞亜集団の分離」の節で詳述した培地を用いて、増殖させた。

異なる細胞バッチを、「Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｏｆ Ｃｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｙのガイドラインに従った細胞の特徴付け」の節に記載されるプロトコルによって検証した。マーカーＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ１０５、ＣＤ４５、ＣＤ３４、ＣＤ１４、ＣＤ１９、ＨＬＡ－ＤＲ、ならびに骨芽細胞、脂肪細胞および軟骨芽細胞のインビトロ分化について得られた結果を図１５～図１９に示す。表６に結果を示す。

ＣＵ－９８９－６およびＣｕ－８３７－８臍帯の単離された細胞バッチのＣＤ７３マーカーの存在は９５％未満であるため、これらのバッチは、「Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｏｆ Ｃｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｙのガイドラインに従った特徴付け」の節に記載されるこの選択方法の最初の要件を満たさないため、使用することができない（Ｄｏｍｉｎｉｃｉら、２００６、多能性間葉系間質細胞を定義するための最小限の基準。Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｏｆ ｃｅｌｌｕｌａｒ Ｔｈｅｒａｐｙの声明。細胞療法Ｖｏｌ．８、Ｎｏ．４、３１５－３１７）。

細胞バッチＣＵ－７４５－３、ＣＵ－１０８－６およびＣＵ－６６８－Ｋは、間葉系幹細胞の選択基準を満たしているため、「ＭＳＣ亜集団の特徴付け」の節に記載したマーカーを分析し、結果を図１６、図１７および図１８ならびに表７に示す。

３つの異なる臍帯から分析した集団は、マーカーＣＤ４４、ＣＤ５６、ＣＤ１０５、ＲＡＮＫＬおよびＮ－カドヘリンを有し、したがって、必要な亜集団を表す。具体的には、評価した３つの細胞培養物は、ＣＤ４４、ＣＤ５６、ＲＡＮＫＬおよびＮ－カドヘリンマーカーについて低、中および高濃度を有する。したがって、本発明のマーカーの存在のみが、所望の治療結果を得るのに十分であることが実証されている。
細胞亜集団の特徴付けが承認されたら、異なるバッチを後で使用するために凍結保存した。具体的には、そのようなバッチを以下の例で使用した：
・例３ではロットＣＵ－１０８－６を使用した。例６「大腿骨、膝蓋骨および脛骨の相互作用に問題がある患者」。「駆出量が減少した患者に対する間葉系亜集団の使用」および例８「皮膚創傷を処置するための間葉系亜集団の使用」。

・例５ではロット７４５－３を使用した。「大腿骨、膝蓋骨および脛骨の相互作用に問題がある患者に対する間葉系亜集団の使用」、例６「駆出量が減少した患者に対する間葉系亜集団の使用」、および例８「皮膚創傷を処置するための間葉系亜集団の使用」。

・例７ではロットＣＵ－６６８－Ｋを使用した。「呼吸器傷害に罹患する患者に対する間葉系亜集団の使用」。

例５．変形性関節症患者に対する間葉系亜集団の使用。
本明細書に記載の選択基準「ＭＳＣ亜集団特徴付け」により承認された組成物はいずれも、本明細書に記載の適応症のいずれかに投与することができる。具体的には、例４「臨床適用のための本発明の細胞の亜集団の取得」で選択されたＣＵ－７４５－３細胞組成物を、本例の患者の処置に使用した。

本発明者らは、特定の群の適応症に対する効果的な処置および／または予防処置を開発した。

一実施形態では、本発明の処置が適用される患者は膝の痛みおよび機能の問題を抱えている。処置は、大腿骨、膝蓋骨および脛骨の相互作用で生じる変性障害に起因する疼痛および膝の機能の問題に罹患している患者に特に有用である可能性がある。

本発明の処置が適用される患者は、症候性変形性関節症に罹患している。処置は、症候性変形性関節症の原因である関節の１つまたは複数を損なう疼痛および機能的不能に罹患する患者に特に有用である可能性がある。

組み入れ基準
本発明の処置の候補は、変形性関節症（ＯＡ）に罹患している患者から選択される。および特に、組み入れ前６ヵ月以内に罹患した関節において毎日、機能的に制限された慢性疼痛を呈する患者から選択される。

Ｋｅｌｌｇｒｅｎ－ＬａｗｒｅｎｃｅスケールによるグレードＩ、ＩＩまたはＩＩＩのＸ線写真の変化がある患者も、本発明の処置の候補とみなされる。処置を受けている患者は、局所感染または全身感染を有してはならないことが重要である。同様に、候補患者は、いかなる形態の続発性関節炎も、いかなる以前の悪性疾患も有してはならない。

この例では、ロットＣＵ－７４５－３の開発された細胞組成物で示される組み入れ基準を満たす７名の患者が、本発明の選択方法を満たしたため処置された。

投与
本明細書に記載される選択基準「ＭＳＣの亜集団の特徴付け」により承認された組成物はいずれも、当技術分野で利用可能な手段のいずれか、例えば以下に記載する手段を介して、組み入れ基準を満たす患者のいずれかに投与することができる。

細胞組成物は、任意の公知の方法により投与することができる。例えば、細胞組成物は、静脈内、病変内、関節内、血管内、動脈内、皮下、側脳室内、筋内、腹腔内または脳室内に投与することができる。好ましい実施形態では、組成物は、病変内、皮下または関節内に投与される。好ましくは、組成物は、関節内に投与される。

投与量が治療有効量を含む限り、任意の量の細胞を患者に投与することができる。好ましい実施形態では、患者あたり少なくとも１×１０^６個の細胞が投与される。好ましくは、患者あたり少なくとも５ｘ１０^６、１０ｘ１０^６または１５ｘ１０^６個の細胞が投与される。より好ましくは、患者あたり少なくとも約２０×１０^６個の細胞が投与される。用語「約」は、±１０％の変動を指す。

最も好ましくは、３ｍｌの最終容量（生理食塩水、５％ＡＢ血漿）に懸濁し、５ｍｌシリンジに分注された合計２０ｘ１０^６個の細胞を、研究設計に従って１つ以上の指定用量で関節内注射する。

患者に投与される投与回数は、処置期間に関係していなければならない。好ましい実施形態では、処置の開始時に、処置のために少なくとも１用量を投与する必要があり、この処置は５２週間を超えて続いてはならない。好ましくは、５２週間を超えて続かない処置について、処置のために少なくとも２回の投与を行う必要があり、１回は処置の開始時に、１回は処置の中間に投与する必要がある。より好ましくは、５２週間を超えて続かない処置について、処置のために少なくとも２回の投与を行い、１回は処置の開始時に、１回は処置の中間に投与する。

処置の結果
治療の有効性を評価するために、患者の経過を、Ｗｅｓｔｅｒｎ Ｏｎｔａｒｉｏ ｃｌｉｎｉｃａｌ ｑｕｅｓｔｉｏｎｎａｉｒｅ ａｎｄ ｔｈｅ ＭｃＭａｓｔｅｒ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｉｅｓ Ａｒｔｈｒｉｔｉｓ Ｉｎｄｅｘ（ＷＯＭＡＣ）に基づいて分析した。この分析を２つの比較に分け、第１の比較は、患者の３ヵ月の経過に焦点を当て、これらの結果を以下の図２０に示す。

図２０に見られるように、処置の３ヵ月で、投与された細胞組成物は、総ＷＯＭＡＣ測定に従って平均４．５ポイントを超えて検証された臨床指数に従って、疼痛、こわばりを低減し、機能性を改善するのに役立つ。具体的には、３ヵ月で、それぞれ３．３ポイントおよび１．３ポイントの疼痛およびこわばりの減少が見られ、より顕著には、機能性の場合、患者の平均は、ＷＯＭＡＣ指数に従って平均１０ポイント改善する。

第２の比較は、処置後３ヵ月および６ヵ月での変化を示し、これらの結果を図２１に示す。

見てわかるように、６ヵ月で、投与された細胞組成物はまた、総ＷＯＭＡＣ指数によると、３ヵ月に対して２．３ポイント、疼痛、こわばりを減少させ、機能性を改善する。具体的には、６ヵ月で、それぞれ２ポイントおよび１．３ポイントの疼痛およびこわばりの平均的な減少が見られ、より顕著には、機能性の場合、患者の平均は、平均３．７ポイント改善する。

したがって、本明細書に記載される方法によって選択された細胞組成は、変形性関節症の患者に有益であることが実証されている。

例６．駆出量が減少した患者に対する間葉系亜集団の使用
組み入れ基準
本発明の処置のための候補は、心エコー評価により左室駆出率が４０％以下で定義される収縮期心室機能障害を伴う拡張駆出率が低下した慢性心不全に罹患している患者から選択された。

この例では、３名の患者を、本発明の選択方法に適合するロットＣＵ－１０８－６およびＣＵ－７４５－３から開発された細胞組成物で処置した。

投与
上記の任意の組成物は、下記の任意の手段を介して、上記の任意の患者に投与することができる。

組成物は、任意の公知の方法により投与することができる。例えば、組成物は、静脈内、病変内、血管内、動脈内、皮下、脳内、筋内、腹腔内または脳室内に投与することができる。好ましい実施形態では、組成物は、静脈内、動脈内、または脳室内に投与される。より好ましくは、組成物は、静脈内に投与される。

投与量が治療有効量を含む限り、任意の量の細胞を患者に投与することができる。好ましい実施形態では、患者の体重１キログラム（ｋｇ）あたり少なくとも１×１０^５個の細胞が投与される。好ましくは、患者の体重１ｋｇあたり少なくとも１ｘ１０^５、２ｘ１０^５、３ｘ１０^５、４ｘ１０^５、５ｘ１０^５、６ｘ１０^５、７ｘ１０^５、８ｘ１０^５または９ｘ１０^５個の細胞が投与される。より好ましくは、患者の体重１ｋｇあたり約１ｘ１０^６個の細胞が投与される。用語「約」は、±１０％の変動を指す。

好ましい実施形態では、組成物は、アンジオテンシン変換酵素阻害剤、アンジオテンシンＩＩ受容体遮断薬、β遮断薬、利尿薬、アルドステロン拮抗薬、変力薬およびジゴキシンからなる群から選択される１つまたは複数の治療薬との併用療法において、および／または冠状動脈バイパス手術、心臓弁の修復もしくは置換、埋め込み型除細動器、心臓再同期療法、両心室刺激、ポンプ心臓および心臓移植からなる群から選択される外科的介入もしくは医療デバイスと組み合わせて使用される。

上記処置薬の例は、例１に記載されている。

一実施形態では、本発明の組成物は１回のみ投与される。好ましくは２回以上投与される。

処置の結果
治療の有効性を評価するために、心エコー検査における左室駆出率（ＬＶＥＦ）の変化を求める。さらに、心エコー検査によって評価されたＬＶＥＦの絶対的な５％増加は、治療に対する臨床的に有意な反応とみなされた。

次に、本明細書に記載される細胞組成物で処置した３名の患者の追跡を図２２に示す。

見てわかるように、患者は３、６、および１２ヵ月で左室駆出率を改善した。絶対的な増加は１４％超であり、有意な臨床反応を示している。したがって、本明細書に記載される方法によって開発された細胞組成物は、駆出率が低下した心不全患者に有益であることが実証されている。

言及した患者では、本発明の組成物の静脈内注入後の即時有害事象；世界的な死亡率、主要な心血管事象（心血管死、非代償性心不全（ＨＦ）による入院、致命的でない心筋梗塞の複合転帰によって定義される）ならびに心臓発作、持続性心室不整脈および悪性事象を含む他の有害事象の発生は観察されなかったことに留意すべきである。

例７．呼吸器傷害に罹患する患者に対する間葉系亜集団の使用
この例は、本発明の選択方法によって選択された細胞組成物を使用して、肺損傷、急性肺損傷または急性呼吸窮迫症候群などの呼吸器障害を有する患者を処置することにある。具体的には、この例は、急性呼吸窮迫症候群を呈する患者を処置することにある。

組み入れ基準
本発明の処置の候補は、呼吸器損傷に罹患している患者から選択される。特に、任意の病因の急性呼吸窮迫症候群などの任意のタイプの急性肺損傷を有する患者から選択される。酸素血圧比対吸気酸素分率ＰＡＯ２／ＦＩＯ２（ＰＡＦＩまたはＫｉｒｂｙ 指数として知られる）が２００未満の患者も、本発明の処置の候補とみなされる。

この例では、１名の患者を、本発明の選択方法に適合するバッチＣＵ－６６８－Ｋの開発された細胞組成物で処置した。

投与
本明細書に記載の選択基準「ＭＳＣ亜集団の特徴付け」により承認された組成物はいずれも、以下に記載の手段のいずれかにより、記載の患者のいずれかに投与することができる。

組成物は、任意の公知の方法により投与することができる。例えば、組成物は、静脈内、病変内、肺内、血管内、動脈内、皮下、脳内、筋内、腹腔内または脳室内に投与することができる。好ましい実施形態では、組成物は、病変内、皮下または関節内に投与される。好ましくは、組成物は、関節内に投与される。

投与量が治療有効量を含む限り、任意の量の細胞を患者に投与することができる。好ましい実施形態では、患者１キログラムあたり少なくとも１×１０^４個の細胞が投与される。好ましくは、患者１キログラムあたり少なくとも５ｘ１０^４、１ｘ１０^５または５ｘ１０^５個の細胞が投与される。より好ましくは、患者１キログラムあたり少なくとも約８×１０^５個の細胞が投与される。用語「約」は、±１０％の変動を指す。

最も好ましくは、患者１キログラムあたり合計１ｘ１０^６個の細胞が、少なくとも１５分間かけて静脈内注射される。

一実施形態では、本発明の組成物は１回のみ投与される。好ましくは２回以上投与される。

処置の結果
治療の有効性を評価するために、本発明者らは、肺胞凝縮および胸部のＣＴスキャン上のすりガラスパターン（灰色）の可視化を特徴とする肺炎症の改善を観察しようとする。

図２３は、本明細書に記載の方法によって選択された細胞組成物を用いた急性呼吸窮迫症候群に罹患している患者の処置の結果を示す。見てわかるように、処置を受けてから１３日後に、急性肺浸潤の減少が見られる。具体的には、コンピューター断層撮影法では、肺胞凝縮およびすりガラスパターンの領域の有意な減少を視覚化することが可能であり、急性肺損傷によって引き起こされる慢性損傷に続発する肺線維症の領域の持続を伴う。この断層撮影法の改善は、ガス交換および肺コンプライアンスの改善に関連している。

したがって、本明細書に記載の方法によって選択された細胞組成物は、肺損傷、急性呼吸窮迫症候群などの急性肺損傷の処置に有効である。

例８．皮膚創傷を処置するための間葉系亜集団の使用
この例は、本明細書に記載の選択方法によって選択された細胞組成物を使用して皮膚創傷を処置することにある。このために、「マウス切除創傷副子モデル」モデル［３５］に基づく開裂創傷を有するマウスモデルを使用して、選択された細胞組成物で処置した。この例では、選択された細胞組成物の皮内注射を使用し、組成物で処置した７匹の動物を、生理食塩水で処理した９匹の動物と比較した。

この例では、本明細書に記載の方法を使用して選択した２つの細胞組成物を使用し、使用したロットは１０８－６および７４５－３であった。

投与
本明細書に記載の選択基準「ＭＳＣ亜集団の特徴付け」により承認された組成物はいずれも、以下に記載の手段のいずれかにより、記載の患者のいずれかに投与することができる。

組成物は、任意の公知の方法により投与することができる。例えば、組成物は、静脈内、皮内、病変内、関節内、血管内、動脈内、皮下、脳内、筋内、腹腔内または脳室内に投与することができる。好ましい実施形態では、組成物は、病変内、皮下または関節内に投与される。好ましくは、組成物は皮内投与される。

投与量が治療有効量を含む限り、任意の量の細胞を患者に投与することができる。好ましい実施形態では、創傷の平方センチメートルあたり少なくとも１×１０^５個の細胞が投与される。好ましくは、創傷の平方センチメートルあたり少なくとも１０×１０^５、２０×１０^５または２５×１０^５個の細胞が投与される。より好ましくは、創傷の平方センチメートルあたり少なくとも約３×１０^６個の細胞が投与される。用語「約」は、±１０％の変動を指す。

最も好ましくは、創傷の平方センチメートルあたり合計３．５×１０^６個の細胞が、パッチまたは足場として皮内注射される。

一実施形態では、本発明の組成物は１回のみ投与される。好ましくは２回以上投与される。

処置の結果
治療の有効性を評価するために、経時的な創傷の閉鎖または組織における血管の形成のいずれかにおいて、組織再生の改善が求められる。

本明細書に記載される細胞組成物の処置の結果を図２４に示す。見られるように、細胞組成物は、１４日間において良好な創傷閉鎖を示す（図２４Ａ）。具体的には、細胞組成物は、９４．６７＋／－１，１３６（ＳＥＭ、平均の標準誤差）の１４日間の閉鎖率を有するが、生理食塩水は、わずか８４．１４＋／－３，３２２（ＳＥＭ）の閉鎖率しかなく、この差は統計的に有意である（図２４Ｂ）。血管新生に関して、細胞組成物は、生理食塩水と比較して創傷における血管形成の割合がはるかに高く（図２４Ｃ）、具体的には、細胞組成物は、４９．２＋／－５，７５５（ＳＥＭ）を有する塩組成物に対して、６８．１０＋／－６．２４７（ＳＥＭ）の血管形成を有し、この差は統計的に有意である。

したがって、本明細書に記載の方法により選択された細胞組成物は、皮膚創傷の再生に有益である。

参考文献
［１］ドミニシ Ｍ、ルブラン Ｋら、（２００６年）、「多能性間葉系間質細胞を
定義するための最小限の基準」、Ｔｈｅ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｆｏｒ Ｃｅｌｌｕｌａｒ Ｔｈｅｒａｐｙの声明。細胞療法、８（４）、３１５～３１７、ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０８０／１４６５３２４０６００８５５９０５．
［２］ラーリージャーニー Ｂ、エスファハニ Ｅ．Ｎ．ら、（２０１２年）、「様々な疾患における幹細胞療法」、Ａｃｔａ Ｍｅｄ Ｉｒａｎ、５０、７９～９６、ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／２０２０２ ［ｐｉｉ］．
［３］エル・バダウィ Ａおよびエル・バドリ Ｎ、（２０１６年）、「新生糖尿病に対する幹細胞療法の臨床有効性」メタ分析、プロスワン、１１（４）、１～１６、ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１３７１／ｊｏｕｒｎａｌ．ｐｏｎｅ．０１５１９３８．
［４］ルンデ Ｋ、ソルハイム Ｓ、オークス Ｓ、アルネセン Ｈら、「急性心筋梗塞における単核骨髄細胞の冠動脈内注射」、ニューイングランド・ジャーナル・オブ・メディシン、２００６年、９月２１日；３５５（１２）：１１９９～２０９
［５］ペリン ＥＣ、シルヴァ ＧＶら、「虚血性心不全における自己骨髄単核細胞の経心内膜注射および細胞機能解析の無作為化試験（ＦＯＣＵＳ－ＨＦ）」、アメリカン・ハート・ジャーナル、２０１１年１月；１６１（６）：１０７８～８７
［６］ヘアー Ｊ、トラバース Ｊ．Ｈ．ら、（２００９）、「急性心筋梗塞後の静脈内成人ヒト間葉系幹細胞（間葉系）の無作為化二重盲検プラセボ対照用量漸増試験」、アメリカ心臓病学会のジャーナル、５４（２４）、２２７７～２２８６
［８］ストライヤー ＢＥ、ユーセフ Ｍ、シャンウェル ＣＭ、「慢性心不全を有する１９１名の患者における冠状動脈内幹細胞移植の急性および長期効果」ＳＴＡＲ－心臓研究、ヨーロピアン・ジャーナル・オブ・ハート・フェイラー、２０１０年７月；１２（７）：７２１～９
［９］セス Ｓ、バルガバ Ｂ、ナラン Ｒ、レイ Ｒ、モハンティ Ｓ、グラーティー Ｇら、「ＡＩＩＭＳ幹細胞研究グループ、ＡＢＣＤ（拡張型心筋症における自己骨髄細胞）試験長期追跡研究」、アメリカ心臓病学会のジャーナル、２０１０年４月１３日；５５（１５）：１６４３～４
［１０］バリー Ｆ、マーフィー Ｍ、「関節疾患および修復における間葉系幹細胞」、ネイチャー・レビューズ・ リューマトロジー、２０１３年；９：５８４～５９４
［１１］ヴァルマ ＨＳ、ダダリャ Ｂ、ヴィディアルティ Ａ、膝幹細胞の変形性関節症の管理における新しい方法、ジャーナル・オブ・インディアン・メディカル・アソシエーション、２０１０年；１０８：５８３～５８５
［１２］ペン Ｘ、シャンユイ Ｗ、チャン Ｌ、シュエピン Ｌ、「変形性膝関節症の管理のための間葉系幹細胞注射の有効性」システマティックレビューおよびメタ分析、国際整形外科、２０１５年；ｄｏｉ １０．１００７／ｓ００２６４－０１５－２７８５－８．
［１３］ヴァングスネス ＣＴ、ファール Ｊ、ボイド Ｊ、デラーエロ ＤＴ、ミルズ ＣＲ、ルルー－ウィリアムズ Ｍ、「成体ヒト間葉幹細胞は、部分的な内側半月切除の後に関節内注射を介して膝に送達される」無作為化二重盲検対照試験、ジャーナル・オブ・ボーン・アンド・ジョイント・サージャリー・アメリカン・ボリューム、２０１４年；９６（２）：９０～８
［１４］イシミネ Ｈら、「Ｎ－カドヘリンは、心筋細胞への分化能が高いヒト間葉系幹細胞の有望な細胞表面マーカーである」、バイオケミカル・アンド・バイオフィジカル・リサーチ・コミュニケーションズ、２０１３年９月６日；４３８（４）：７５３～９、ｄｏｉ： １０．１０１６／ｊ．ｂｂｒｃ．２０１３．０７．０８１、イーパブ２０１３年７月２７日
［１５］ディ・ベネデッタ Ａら、「歯牙由来の間葉幹細胞の骨形成分化：インテグリンおよびカドヘリンの役割」、幹細胞リサーチ、２０１５年１１月、１５巻、第３号、６１８～６２８ページ
［１６］シイ リャンリャンおよびメン ファンビオら、（２０１２年）、「Ｎ－カドヘリンは、骨形成および骨髄由来間葉系幹細胞の遊走を調節する」、分子生物学レポート、４０． １０．１００７／ｓ１１０３３－０１２－２３３４－０．
［１７］ポンタ Ｈ、シャーマン Ｌ及びヘアリッヒ Ｐ．Ａ．、（２００３年）、「ＣＤ４４：シグナル伝達調節因子に対する接着分子」、ネイチャー・レビューズ・モルキュラー・セル・バイオロジー、ｈｔｔｐ：／／ｄｘ．ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０３８／ｎｒｍ１００４．から検索
［１８］チュン Ｃ、バーディック ＪＡ、「間葉系幹細胞軟骨形成に対する３Ｄヒアルロン酸微小環境の影響」、ティッシュ・エンジニアリング・パートＡ、２００９年；１５（２）：２４３～２５４、ｄｏｉ：１０．１０８９／ｔｅｎ．ｔｅａ．２００８．００６７．
［１９］サラフ－エルディン ＷＥ、アブ－シャーバ Ｎ、マフムード Ｍ、エル－バドリ Ｎ、「破骨細胞形成に対する間葉幹細胞の調節効果」、ステム・セル・インターナショナル、２０１６年；２０１６：１９０８３６５、ｄｏｉ：１０．１１５５／２０１６／１９０８３６５．
［２０］ヴァルル Ｍ、ステイトン ＣＡ、リード ＭＷＲ、ブラウン ＮＪ、「トランスフォーミング増殖因子－βおよびエンドグリンシグナル伝達は創傷治癒を調整する」、フロンティア・イン・フィジオロジー、２０１１年；２：８９、ｄｏｉ：１０．３３８９／ｆｐｈｙｓ．２０１１．０００８９．
［２１］ノイス Ｓ、ベッヒャー Ｅ、ヴェルチェ Ｍ、ティーツェ Ｌおよびヤーネン－デチェント Ｗ、（２００４年）、「成人ヒト間葉幹細胞におけるＨＧＦおよびＨＧＦ受容体／ｃ－ｍｅｔの機能的発現は、細胞動員、組織修復、および創傷治癒における役割を示唆する」、ステム・セル、２２：４０５～４１４、ｄｏｉ：１０．１６３４／ｓｔｅｍｃｅｌｌｓ．２２－３－４０５．
［２２］ミヤザワ Ｋ、（２０１０年）、「肝細胞増殖因子アクチベーター（ＨＧＦＡ）：組織損傷を肝細胞増殖因子の活性化に関連付けるセリンプロテアーゼ」、ＦＥＢＳジャーナル、２７７：２２０８～２２１４、ｄｏｉ：１０．１１１１／ｊ．１７４２－ ４６５８．２０１０．０７６３７．
［２３］ザオ Ｌ、リウ Ｘ、チャン Ｙ、リャン Ｘ、ディン Ｙ、シイ Ｙ、チャン Ｆ、（２０１６年）、「肝細胞増殖因子を過剰発現する間葉幹細胞の細胞生存の増強およびパラクリン効果は、心筋梗塞における心臓保護を促進する」、エクスペリメンタル・セル・リサーチ、３４４（１）、３０～３９、ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０１６／ ｊ．ｙｅｘｃｒ．２０１６．０３．０２４．
［２４］ワン Ｊ、スン Ｂ、ティエン Ｌ、ホー Ｘ、 ガオ Ｑ、ウー Ｔ、モウ Ｘ、（２０１７年）、「ヒト臍帯のワルトン膠質由来の間葉幹細胞を用いた気管軟骨再生のためのｒｈＴＧＦ－β３カプセル化Ｐ（ＬＬＡ － ＣＬ）／コラーゲンナノファイバーの可能性の評価」、マテリアル・サイエンス・アンド・エンジニアリングＣ、７０、６３７～６４５、ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０１６／ｊ．ｍｓｅｃ．２０１６．０９．０４４
［２５］ウー Ｙ、ペン Ｙ、フェン Ｃ、ヤン Ｘ、リー Ｈ、ワン Ｙ、フー Ｘ、（２０１５年）、「間葉幹細胞はＴＧＦ－β３依存性活性化を介して線維芽細胞増殖を抑制し、皮膚線維症を低減する」、下肢創傷の国際雑誌、１４（１）、５０～６２、ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１７７／１５３４７３４６１４５６８３７３．
［２６］ワン Ｙ、ザオ Ｘ、フオジャア Ｍ、シイ Ｈおよびチュワン Ｙ、（２０１６年）、「形質転換増殖因子－β３はウサギにおける顔面神経損傷修復を促進する」、エクスペリメンタル・アンド・セラピューティック・メディシン、１１（３）、７０３～７０８、ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．３８９２／ｅｔｍ．２０１６．２９７２
［２７］モリソン Ｔ．Ｊ．、ジャクソン Ｍ．Ｖら、（２０１７年）、「間葉系間質細胞は細胞外小胞ミトコンドリア移動によって臨床的に関連する肺損傷モデルにおいてマクロファージを調節する」、アメリカン・ジャーナル・オブ・レスピレイトリー・アンド・クリティカル・ケア・メディシン、１９６（１０）、１２７５～１２８６、ｈｔｔｐ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１６４／ｒｃｃｍ．２０１７０１－０１７０ＯＣ
［２８］ボチェッリ－チンダル Ｃ、トレラ Ｅ、フラチェット Ａら、「ＦＧＦ２はヒト骨髄由来間葉系前駆細胞においてＲＡＮＫＬ遺伝子発現ならびにＩＬ１β調節ＭＨＣクラスＩＩを誘導する」、リウマチ性疾患の年報、２０１５年；７４：２６０～２６６、ｈｔｔｐｓ：／／ａｒｄ．ｂｍｊ．ｃｏｍ／ｃｏｎｔｅｎｔ／７４／１／２６０
［２９］ワン Ｙ．Ｙ；リー Ｘ．Ｚ．；ワン Ｌ．Ｂ．、「急性肺損傷／急性呼吸窮迫症候群における間葉系幹細胞の治療的意味」、ステム・セル・リサーチ・アンド・セラピー、４（３）：４５；２０１３年、ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１８６ ／ｓｃｒｔ１９３
［３０］フォンサッティ Ｅおよびマイオ Ｍ、（２００４年）、「エンドグリン（ＣＤ １０５）に関するハイライト：ヒト癌における臨床適用に対する基本的な知見から」、ジャーナル・オブ・トランスレーショナル・メディシン、２、１８、ｈｔｔｐ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１８６／１４７９－５８７６－２－１８
［３１］ヴォールケル Ｎ．Ｆ．、ダグラス Ｉ．Ｓ．およびニコルズ Ｍ、（２００７年）、「慢性肺疾患における血管新生」、チェスト、１３１（３）、８７４～８７９、ｈｔｔｐ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１３７８／ｃｈｅｓｔ．０６－２４５３
［３２］モリソン Ｔ、マコーリー Ｄおよびクラスノデムバスカヤ Ａ、（２０１５年）、「急性呼吸窮迫症候群の治療のための間葉系間質細胞：ストーリーの開始」、ジャーナル・オブ・ザ・インテンシヴ・ケア・ソサエティ、１６（４）、３２０～３２９、ｈｔｔｐ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１７７／１７５１１４３７１５５８６４２０
［３３］スコグ Ｍ．Ｓ．、ニーステット Ｊら、（２０１６年）、「ヒト骨髄由来間葉系間質細胞における神経細胞接着分子およびポリシアル酸の発現」、ステム・セル・リサーチ・アンド・セラピー、７、１１３、ｈｔｔｐ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１１８６／ｓ１３２８７－０１６－０３７３－５
［３４］リー Ｅ．Ｊ．、チョイら、（２０１２年）、「Ｎ－カドヘリンは心筋梗塞のラットモデルにおけるヒト臍帯血由来間葉系幹細胞の治療効果の個体差を決定する」、モレキュラー・セラピー、２０（１）、１５５～１６７、ｈｔｔｐ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０３８／ｍｔ．２０１１．２０２
［３５］アン Ｓ．Ｙ．、パーク Ｗ．Ｓ．ら、（２０１８年）、「血管内皮増殖因子は新生児高酸素性肺損傷に対する間葉系幹細胞由来細胞外ベシクルの治療効能を媒介する」、エクスペリメンタル・アンド・モレキュラー・メディシン、５０（４）、２６、ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０３８／ｓ１２２７６－０１８－００５５－８
［３６］センバンジョ Ｌ．Ｔ．、チェライア Ｍ．Ａ．、（２０１７年）、「ＣＤ４４：多機能性細胞表面接着受容体は癌細胞の進行および転移の調節因子である」、フロンティア・イン・セル・アンド・ディベロップメンタル・バイオロジー、５、１８、ｈｔｔｐ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．３３８９／ｆｃｅｌｌ．２０１７．０００１８
［３７］ワン Ｗ、リー Ｐ、リー Ｗ、ジャン Ｊ、ツイ Ｙら、（２０１７年）、「オステオポンチンは間葉系幹細胞を活性化して皮膚創傷を修復する」、プロスワン１２（９）：ｅ０１８５３４６．ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１３７１／ｊｏｕｒｎａｌ．ｐｏｎｅ．０１８５３４６
［３８］リウ Ｌ、ルオ Ｑ、スン Ｊ、ワン Ａ、シー Ｙ、ジウ Ｙ、ソン Ｇ、（２０１７年）、「ＦＡＫ－ＥＲＫ１／２シグナル伝達による核剛性の低下はオステオポンチンにより促進される骨髄由来間葉系幹細胞の遊走に必要である」、エクスペリメンタル・セル・リサーチ、３５５（２）、１７２～１８１、ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０１６／ｊ．ｙｅｘｃｒ．２０１７．０４．００４
［３９］シェイファー Ｍ。ボンガルツ Ｍ、ホフマン Ｗおよびフィーバーン Ｒ、（２００７年）、「ＭＨＣクラスＩＩ欠損は創傷治癒を損なう」、ジャーナル・オブ・サージカル・リサーチ、１３８（１）、１００～１０５、ｈｔｔｐｓ：／／ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０１６／ｊ．ｊｓｓ．２００６．０５．０２９

Claims (13)

1. 組織臍帯間葉細胞の特定の集団を含む組成物を選択する方法であって、以下の段階：
   ａ）臍帯間葉細胞の培養および増殖と、
   ｂ）Ｎ－カドヘリン、ＲＡＮＫＬ、ならびにＣＤ４４、ＣＤ１０５およびＣＤ５６のうちの少なくとも２種のマーカーの存在によるそれらの選択と
   を含む、方法。
2. 段階ｂ）の後に、肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）の産生により前選択が行われ、培地中に１０００ｐｇ／ｍＬを超えるＨＧＦを分泌する培養物を選択する、請求項１に記載の方法。
3. 臍帯間葉細胞が、動脈および臍静脈を取り囲み、羊膜下層の内面に隣接する結合組織から特異的に得られる、請求項１に記載の方法。
4. 工程ｂ）の後に、ＴＧＦ－β３発現により任意の選択が行われ、評価されたサンプルと比較して最高レベルの相対発現を発現する培養物を選択する、請求項１に記載の方法。
5. 培養細胞が、９５％を超えるＣＤ１０５、ＣＤ７３、ＣＤ９０およびＨＬＡ－ＡＢＣを発現し、同時に非発現時に、すなわち、２％未満のＣＤ４５、ＣＤ３４、ＣＤ１４およびＨＬＡ－ＤＲを発現する間葉細胞として選択するマーカーに従って、サイトメトリーによって選択される、請求項４に記載の方法。
6. 工程ｂ）で、細胞が、Ｎ－カドヘリン、ＲＡＮＫＬ、ＣＤ１０５、ＣＤ４４、およびＣＤ５６を発現することにより選択される、請求項５に記載の方法。
7. Ｎ－カドヘリン、ＲＡＮＫＬ、および、ＣＤ１０５、ＣＤ４４、またはＣＤ５６のうちの少なくとも２種のマーカーを発現する間葉細胞を含む臍帯間葉細胞の特定の集団を含む、医薬組成物。
8. 細胞療法に使用するための、請求項７に記載の組成物を含む医薬組成物。
9. 心臓駆出流の問題を処置するための、請求項７に記載の組成物を含む医薬組成物。
10. 心不全を処置するための、請求項７に記載の組成物を含む医薬組成物。
11. 疼痛を処置し、関節摩耗の問題に関連する機能を改善するための、請求項７に記載の組成物を含む医薬組成物。
12. 急性呼吸窮迫症候群を含む急性肺病変を処置するための、請求項７に記載の組成物を含む医薬組成物。
13. 慢性創傷または皮膚潰瘍を処置するための、請求項７に記載の組成物を含む医薬組成物。

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