JP7182807B2 - 14-デオキシ-11,12-デヒドロ-8,12-エポキシまたは7,8-エン-アンドログラフォライドおよびその15位置換誘導体と用途 - Google Patents
14-デオキシ-11,12-デヒドロ-8,12-エポキシまたは7,8-エン-アンドログラフォライドおよびその15位置換誘導体と用途 Download PDFInfo
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Description
R1、R2は、それぞれ水素、メチルまたはフェニル、ピリジル、フリル、チエニルまたはピロリルなどの芳香環、複素芳香環、およびそれらの一置換体または多置換体の1種であり;R1、R2は、C3-6シクロアルキル基またはC2-5アルキル基と窒素原子で構成されるシクロヘキシルやシクロペンチルなどの環状アミノ基であってもよく;R1、R2は、同一又は相異なる置換基であってもよい。R3、R4は、それぞれ水素、またはCH2CH2COOH、CH2CH2CH2CH2COOH、CH2CHCHCH2COOH、CH2CH2CH2CH2CH2CH2CH2COOHなどの1種、またはCOR5であり、R5が置換または非置換のフェニル、ピリジル、ピロリル、フリルなどの芳香族複素環またはシクロヘキシル、シクロペンチル、シクロプロピル、モルホリニル、ピペリジニルなどの炭素環式あるいは複素環式構造、および飽和または不飽和のC1-18の炭素鎖長などである。R3、R4は、同じ置換基であっても、異なる置換基であってもよい。〕
ADY:14-デオキシ-11,12-デヒドロ-8,12-エポキシ-アンドログラフォライド;
ADY-1:R1=H,R2=4-Cl-C6H4,R3=R4=H;
ADY-2:R1=H,R2=4-Br-C6H4,R3=R4=H;
ADY-3:R1=H,R2=4-F-C6H4,R3=R4=H;
ADY-4:R1=H,R2=2-Cl-C6H4,R3=R4=H;
ADY-5:R1=H,R2=C6H5,R3=R4=H;
ADY-6:R1=H,R2=3,4-ジフルオロフェニル,R3=R4=H;
ADY-7:R1=H,R2=3-CH3O-C6H4,R3=R4=H;
ADY-8:R1=H,R2=4-OH-C6H4,R3=R4=H;
ADY-9:R1=H,R2=3,4,5-トリメチルオキシフェニル,R3=R4=H;
ADY-10:R1=H,R2=3-Cl-C6H4,R3=R4=H;
ADY-11:R1=H,R2=3-F-4-[N,-メチルピペリジン]-C6H3,R3=R4=H;
ADY-12:R1=H,R2=4-CH3O-C6H4,R3=R4=H;
ADY-13:R1=H,R2=3-F-4-モルホリン-C6H3,R3=R4=H;
ADY-14:R1=H,R2=4-[N-(CH3)2]-C6H4,R3=R4=H;
ADY-15:R1=H,R2=3,4-ジフルオロフェニル,R3=R4=COR5,R5=3-ピリジル
ADY-16:R1=H,R2=C6H5,R3=R4=COR5,R5=3-ピリジル;
ADY-17:R1=H,R2=4-Cl-C6H4,R3=R4=COR5,R5=CH2CH2COOH。
ADY-1:mp197-1990C;IR3415,2931,1762,1650,1587,1491,1091,1041,1021,921cm-1;1H NMR(400MHz,CDCl3)δ7.69(d,J=8.6Hz,2H),7.36(d,J=8.6Hz,2H),7.28(d,J=1.7Hz,1H),5.93(s,1H),4.83(t,J=8.4Hz,1H),4.28(d,J=10.6Hz,1H),3.48(d,J=11.3Hz,1H),3.43ー3.34(m,1H),3.02(d,J=8.0Hz,1H),2.85(d,J=3.5Hz,1H),2.48(dd,J=13.8,8.1Hz,1H),2.23(m,1H),2.15ー2.05(m,1H),1.89ー1.72(m,3H),1.58ー1.43(m,4H),1.28(s,3H),1.13(s,3H),1.09ー0.99(m,2H),0.97(s,3H);13C NMR(100MHz,CDCl3)δ168.75,147.62,137.25,137.14,134.85,131.61,131.57(2C),129.05(2C),111.76,82.93,80.89,72.85,64.22,57.92,52.75,42.56,38.99,36.26,35.66,33.26,31.45,27.48,22.78,18.18,16.45.
R1、R2は、それぞれ水素、メチルまたはフェニル、ピリジル、フリル、チエニルまたはピロリルなどの芳香環、複素芳香環、およびそれらの一置換体または多置換体の1種であり;R1、R2は、互いに結合してシクロヘキサンやシクロペンタンなどの環状置換基を形成してもよく;R1、R2は同一でも異なっていてもよい。〕
ADC:14-デオキシ-11,12-デヒドロ-7,8-エンアンドログラフォライド;
ADC-1:R1=H,R2=4-Cl-C6H4;
ADC-2:R1=H,R2=C6H5;
ADC-3:R1=H,R2=3-Cl-C6H4;
ADC-4:R1=H,R2=4-Br-C6H4;
ADC-5:R1=H,R2=4-F-C6H4;
ADC-6:R1=H,R2=3,4-ジフルオロフェニル;
ADC-7:R1=H,R2=2-Cl-C6H4;
ADC-8:R1=H,R2=3-CH3O-C6H4;
ADC-9:R1=H,R2=4-N(CH3)2-C6H4;
ADC-10:R1=H,R2=3-F-4-(4-モルホリニル)-C6H3;
ADC-11:R1=H,R2=4-CH3O-C6H4;
ADC-12:R1=H,R2=2-HO-C6H4;
ADC-13:R1=H,R2=4-HO-C6H4;
ADC-14:R1=H,R2=3-NO2-C6H4;
ADC-15:R1=H,R2=3,4,5-トリメチルオキシフェニル;
ADC-16:R1=H,R2=2-フリル;
ADC-17:R1とR2は互いに結合してシクロヘキシルを形成する。
ADC:1H NMR(400MHz,CDCl3)δ7.21(s,1H),6.64(dd,J=15.7,10.6Hz,1H),6.17(d,J=15.8Hz,1H),5.52(s,1H),4.85(d,J=1.6Hz,2H),4.30(d,J=11.0Hz,1H),3.51(t,J=9.5Hz,2H),2.94(d,J=7.6Hz,1H),2.63(s,1H),2.44(d,J=10.8Hz,1H),2.12(d,J=17.3Hz,1H),1.97ー1.86(m,1H),1.85ー1.76(m,1H),1.75ー1.66(m,2H),1.53(s,3H),1.36(dd,J=12.4,4.6Hz,1H),1.27(s,3H),1.24ー1.14(m,1H),0.84(s,3H).13C NMR(100MHz,DMSO-d6)δ172.87,147.12,136.32,132.56,127.48,122.64,122.15,79.37,70.65,62.99,59.98,49.97,42.08,38.27,35.94,27.80,23.70,23.23,22.67,15.95.HRMS(ESI):m/z calcd for C20H28NaO4[M+Na]+,355.1880;found,355.1878.
活性スクリーニングを通じて、上記の化合物が明らかな抗臓器および組織線維化活性を有すると確認される。実験により、親化合物であるアンドログラフォライド(AD)と比較して、本発明の化合物は、肝臓、肺、腎臓および心筋の線維化抑制効果を有意に向上したことが証明された。したがって、そのような化合物を有効成分として様々な抗線維化薬の調製に用いられ、線維化疾患の治療および予防のための創薬アプローチを提供し、それにより臨床薬剤投与の選択肢を広げ、良好な応用と開発の見通しを有する。
様々な炎症性メディエーター、成長因子などのサイトカインの刺激下で、肝星細胞は損傷した肝組織の炎症部位に遊走することで、増殖して活性化し、コラーゲンなどのECM成分の合成は、肝線維化の発生や進行の鍵となる。したがって、アンドログラフォライドと比較して、ヒト肝星細胞LX-2(北京北納創聯生物技術研究院から提供された)を利用して、本発明の化合物の抗肝線維化作用をインビトロでスクラッチ法により研究した。
LX-2細胞を10%(V/V)ウシ胎児血清、100μg/mLストレプトマイシン、および100IU/mLペニシリンを含むRPMI1640培養液で培養し、体積分率5%のCO2インキュベーターに入れ、飽和湿度、37℃で培養した。アンドログラフォライドは、四川什ファン市金シン生物科技有限公司で生産(ロット番号:120822)され、純度が99%を超え;本発明の化合物は、本発明者の実験室で合成され、純度が99%を超え、以下同様である。
対数増殖期のLX-2細胞を0.25%(W/V)トリプシンで消化した後、10%(V/V)ウシ胎児血清を含むRPMI1640培地で3.5×104/mLの細胞懸濁液に希釈し、それを96ウェルプレートの各ウェルに200μLずつ播種し、体積分率5%のCO2インキュベーターで37℃,24時間培養し、異なる濃度の薬剤を含む培地を加え、薬剤の最終濃度が最大30.00μMであり、各処理の重複ウェルを4つにした。48時間培養し続け、MTT(5mg/mL)を20μL/ウェル加え、4時間培養し、上清を捨て、150μLのDMSOを加え、10分間振とうし、マイクロプレートリーダーで吸光度を測定した。測定波長は570nm、参照波長が450nmであった。化合物作用後の細胞生存率を下式で計算した結果は、図1Aおよび図1Bに示すように平均化された。
[数1]
生存率(%)=投与群OD570-450値/対照群OD570-450値×100%
対数増殖期のLX-2細胞を0.25%(W/V)トリプシンで消化した後、10%(V/V)ウシ胎児血清を含むRPMI1640培地で1.0×105/mLの細胞懸濁液に希釈し、それを96ウェルプレートの各ウェルに200μLずつ播種した。12時間培養した後、細胞がコンフルエントな状態になったら、古い培地を捨て、0.5%(V/V)血清を含む培地を加えてから12時間同期培養させた後、引っかき傷を入れ、PBSで2回洗浄し、200μLの被験化合物を含むRPMI1640培地を加えた直後顕微鏡下で写真を撮った。重複ウェルを3つ設け、かつ対照を設けた。24時間培養した後、顕微鏡下で写真を撮って測定した。遊走抑制率を下式で計算した結果は、図2Aおよび図2Bに示すように平均化された。
[数2]
遊走抑制率=[1-(投与群の0時間の引っかき距離-24時間の引っかき距離)/(ブランク群0時間の引っかき距離-24時間の引っかき距離)]×100%
図1Aおよび図1Bの結果は、30.00μMの濃度で、細胞増殖に対する本発明の化合物ADC-8およびADC-9の阻害活性がADの阻害活性と類似しており、細胞増殖に対する残りの化合物の阻害活性が親化合物ADの阻害活性よりも著しく低いことを示している。
肺胞に存在するII型肺胞上皮細胞は、炎症性メディエーター、成長因子などのサイトカインによって刺激され、細胞の形態が丸石形状から紡錘形状へと変わり、上皮間葉転換(EMT)プロセスを完了し、間葉系細胞の機能を持ち、そしてコラーゲン線維が合成され、大量のコラーゲン線維沈着が間質性肺線維化の経過を悪化させる可能性がある。したがってアンドログラフォライドと比較して、ヒトII型肺胞上皮細胞A549を利用して、形態学的観察および細胞スクラッチ(遊走)試験により、本発明の化合物の抗肺線維化作用をインビトロで評価した。
A549細胞を10%(V/V)ウシ胎児血清、100μg/mLストレプトマイシン、および100IU/mLペニシリンを含むRPMI1640培養液で培養し、体積分率5%のCO2インキュベーターに入れ、飽和湿度、37℃で培養した。
対数増殖期のA549細胞を0.25%(W/V)トリプシンで消化した後、10%(V/V)ウシ胎児血清を含むRPMI1640培地で3.5×104/mLの細胞懸濁液に希釈し、それを96ウェルプレートの各ウェルに200μLずつ播種し、体積分率5%のCO2インキュベーターで37℃,24時間培養し、薬剤を含む培地を加え、薬剤の最終濃度が最大30.00μmol/Lであり、各処理の重複ウェルを4つにした。その他は実施例1と同じである。結果は、図3Aおよび図3Bに示すように平均化された。
対数増殖期のA549細胞を0.25%(W/V)トリプシンで消化した後、10%(V/V)ウシ胎児血清を含むRPMI1640培地で3×104/mLの細胞懸濁液に希釈し、それを96ウェルプレートの各ウェルに200μLずつ播種した。24時間培養した後、付着細胞が80%~90%に融合したら古い培地を捨て、無血清培地を24時間同期培養させた後、培地を捨て、PBSで2回洗浄し、200μLのTGF-β1(5ng/mL)および異なる濃度の被験化合物を含むRPMI1640培地を加えた直後顕微鏡下で写真を撮った(倍率100倍)。重複ウェルを3つ設け、かつ対照を設けた。48時間培養した後、顕微鏡下で写真を撮った。各化合物の濃度が同じ5つのフィールドを選択し、100個を超える細胞を測定した。photoshop CS6ソフトウェアで画像を処理し、その真円度を下式で計算した。結果は、図4Aおよび図4Bに示すように平均化された。
[数3]
(e=4π×S/C2、ここでeは真円度、Sが面積、Cが円周を表す)
対数増殖期のA549細胞を0.25%(W/V)トリプシンで消化した後、10%(V/V)ウシ胎児血清を含むRPMI1640培地で3×104/mLの細胞懸濁液に希釈し、それを96ウェルプレートの各ウェルに200μLずつ播種した。24時間培養した後、付着細胞が80%~90%に融合したら古い培地を捨て、無血清培地を24時間同期培養させた後、引っかき傷を入れ、PBSで2回洗浄し、200μLの被験化合物を含むRPMI1640培地を加えた直後顕微鏡下で写真を撮った。重複ウェルを3つ設け、かつ対照を設けた。24時間培養した後、顕微鏡下で写真を撮って測定した。結果を図5A、図5Bに示す。
[数4]
遊走距離=エッジ距離(0時間)-エッジ距離(24時間)
[数5]
遊走抑制率=[1-(TGF-β1群の遊走距離-投与群の遊走距離)/(TGF-β1群の遊走距離-ブランク群の遊走距離)]×100%
図3Aおよび図3Bの結果は、ADと比較して、ヒトA549細胞の増殖に対する本発明の化合物の阻害活性が有意に低下していることを示している。
初期の研究では、腎尿細管上皮細胞が線維芽細胞に分化転換し、そのマーカータンパク質である線維芽細胞特異的タンパク質1(FSP1,fibroblast-specific protein 1)を発現できることが分かっている。腎尿細管上皮細胞間葉細胞の分化転換は、腎間質線維化の重要な発症機序の一つである。したがって、アンドログラフォライドADと比較して、ヒト腎皮質近位尿細管上皮細胞HK-2(中国典型培養物寄託センターによって提供される)を利用し、TGF-β1刺激後の形態観察法およびスクラッチ試験を用いて 本発明の化合物のインビトロでの抗腎線維化作用を研究した。
HK-2細胞を10%(V/V)ウシ胎児血清、100μg/mLストレプトマイシン、および100IU/mLペニシリンを含むDMEM/F12培養液で培養し、体積分率5%のCO2インキュベーターに入れ、飽和湿度、37℃で培養した。
対数増殖期のHK-2細胞を0.25%(W/V)トリプシン+0.02%EDTA(W/V)で消化した後、10%(V/V)ウシ胎児血清を含むDMEM/F12培地で7.0×104/mLの細胞懸濁液に希釈し、それを96ウェルプレートの各ウェルに200μLずつ播種し、体積分率5%のCO2インキュベーターで37℃,24時間培養し、異なる濃度の薬剤を含む培地に交換し、薬剤の最終濃度が最大30.00μMであり、各処理の重複ウェルを4つにした。その他は実施例1と同じである。結果は、図6Aおよび図6Bに示すように平均化された。
対数増殖期のHK-2細胞を0.25%(W/V)トリプシン+0.02%EDTA(W/V)で消化した後、10%(V/V)ウシ胎児血清を含むDMEM/F12培地で5.0×104/mLの細胞懸濁液に希釈し、それを96ウェルプレートの各ウェルに200μLずつ播種した。24時間の培養後、細胞を単層に成長させ、古い培地を廃棄し、0.01MPBSで2回洗浄し、無血清培地を交換して同期させ、さらに24時間培養後、無血清培地を吸引除去し、200μLの異なる濃度の被験化合物および刺激因子TGF-β1(5ng/mL)を含むDMEM/F12培地を加えた。重複ウェルを3つ設け、かつ対照を設けた。48時間培養した後、顕微鏡下で写真を撮って記録した。一部の本発明の化合物が細胞に作用した後の細胞の形態学的変化を図7A、図7Bに示す。
対数増殖期のHK-2細胞を0.25%(W/V)トリプシン+0.02%EDTA(W/V)で消化した後、10%(V/V)ウシ胎児血清を含むDMEM/F12培地で2.0×104/mLの細胞懸濁液に希釈し、それを96ウェルプレートの各ウェルに200μLずつ播種した。24時間培養した後、細胞がコンフルエントな状態になったら、古い培地を捨て、0.01MPBSで2回洗浄し、無血清培地を加えて細胞を飢餓状態にして細胞周期を24時間同調させ、上清を捨て、200μLのピペットチップで引っかき傷を入れ、PBSで2回洗浄し、200μLの異なる濃度の被験化合物および刺激因子TGF-β1(5ng/mL)を含むDMEM/F12培地(2%ウシ胎児血清を含む)を加えた直後顕微鏡下で写真を撮った。重複ウェルを3つ設け、かつ対照を設けた。24時間培養した後、顕微鏡下で写真を撮って測定した。遊走抑制率を下式で計算した結果は図8Aおよび図8Bに示すように平均化された。
[数6]
遊走距離=エッジ距離(0時間)-エッジ距離(24時間)
[数7]
遊走抑制率=[1-(TGF-β1群の遊走距離-投与群の遊走距離)/(TGF-β1群の遊走距離-ブランク群の遊走距離)]×100%
図6Aおよび図6Bの結果は、化合物ADY-2、ADY-5、ADY-6、ADY-8、ADY-11およびADC-5、ADC-6、ADC-11およびADC-12を除いて、ADと比較してヒト腎皮質近位尿細管上皮細胞HK-2の増殖に対する本発明の化合物の抑制作用は、有意に向上されないことを示している。
研究により、心臓線維芽細胞は、心筋線維化の主たるエフェクター細胞で、AngIIなどの活性物質によって刺激された後、表現型に変化が現れ、遊走能が増強され、細胞外マトリックスを分泌する筋線維芽細胞に転換することが示されている。したがって、アンドログラフォライドと比較して、MTT法を用いて、初代ヒト心臓線維芽細胞HCFBの増殖・生存能力に対する本発明の化合物の影響を検出し;引っかき傷法を用いて、AngIIで誘導された初代ヒト心臓線維芽細胞の遊走に対する本発明の化合物の抑制作用を評価した。
初代ヒト心臓線維芽細胞HCFB(商城北納創聯生物科技有限公司から提供された)を、8%ウシ胎児血清、100μg/mLストレプトマイシン、および100IU/mLペニシリンを含むH-DMEM培養液の培養フラスコで培養し、体積分率5%のCO2インキュベーターに培養フラスコを置き、37℃の飽和湿度で培養した。
対数増殖期のHCFB細胞を0.25%(W/V)トリプシンで消化した後、8%ウシ胎児血清を含むH-DMEM培地で5.0×104/mLの細胞懸濁液に希釈し、それを96ウェルプレートの各ウェルに7000細胞ずつ播種し、飽和湿度、体積分率5%のCO2インキュベーターで37℃,24時間培養し、異なる濃度のADまたは本発明の化合物を含む培地を加え、48時間継続培養し、その他は実施例1と同じである。結果は、図9Aおよび図9Bに示すように平均化された。
対数増殖期のHCFB細胞を0.25%(W/V)トリプシンで消化した後、8%ウシ胎児血清を含むH-DMEM培地で細胞懸濁液に希釈し、96ウェルプレートの各ウェルに20,000細胞ずつ播種した。24時間培養した後、細胞がコンフルエントな状態になったら、古い培地を捨て、無血清培地を加えて24時間同期培養させた後、引っかき傷を入れ、PBSで2回洗浄し、200μLのピペットチップで引っかき傷を入れてから、投与群に200μLの異なる濃度の被験化合物およびAngII(10-7mol/L)を含むH-DMEM(0.5%DMSOを含む)培地を加え、0.5%DMSOを含むH-DMEM倍地をブランク群、AngIIと0.5%DMSOを含むH-DMEM培地をAngII群とし、重複ウェルを3つ設けた。それぞれ培養前(0時間)および24時間培養した後顕微鏡下で写真を撮って測定した。遊走抑制率を下式で計算した結果は図10Aおよび図10Bに示すように平均化された。
[数8]
遊走距離=エッジ距離(0時間)-エッジ距離(24時間)
[数9]
阻害率=[1-(AngII群の遊走距離-投与群の遊走距離)/(AngII群の遊走距離-ブランク群の遊走距離)]×100%
試験結果は、濃度15μmol/Lの本発明の化合物で48時間処理されたHCFB細胞は、同じ濃度のAD処理よりも細胞生存能力はより高く(図9A、図9B);試験濃度範囲内で、AngIIによって刺激されたHCFB遊走能に対する本発明の化合物の抑制作用は、ADよりも強力であることを示している(図10Aおよび図10B)。
1)実験動物および方法
体重20±2gのSPFグレードのKM雄マウスは、河南省実験動物センターから購入された[許可番号:SCXK(豫)2017-0001]。3日間自由摂食させた後、動物を偽手術対照群、モデル群、AD対照群および本発明の化合物群に無作為に割り付け、各群を6匹にした。手術の12時間前に、床敷を交換し、絶水させずに絶食させ、0.5%ペントバルビタールナトリウムを腹腔内投与して麻酔した後、仰臥位でマウスの四肢を保定し、剃毛し、皮膚をヨウ素で消毒し、穴あきドレープを覆い、腹部の正中線に沿って皮膚を上下に切り開き、胃に沿って十二指腸を見つけて引き上げ、総胆管を近位の肝門から0.5cm離して解放し、二重結紮し、4号絹糸で二重結紮し、総胆管を切離し、出血と胆汁の漏れがないことを確認し、腹部を層ごとに絹糸で連続縫合して閉創し、創部をヨウ素で消毒し、術後覚醒するまで温めさせた。偽手術群では、麻酔、開腹、総胆管の解放のみを行い、総胆管の結紮と切離を行わなかった。毎回強制経口投与は、朝、空腹時に行われた。偽手術群とモデル群の動物には、0.5質量%カルボキシメチルセルロース(CMC-Na)を強制経口投与し、他の投与群には、対応する薬剤の0.5質量%CMC-Na懸濁液を投与し、10日間投薬後実験を終了した。採血後、肝臓を迅速かつ完全に解剖し;採取した血液を37℃のインキュベーターに45分間静置した後、4℃、3500rpmで15分間遠心分離し、上部の血清を取って小分けして用意しておく。マウス肝臓の左葉を10倍量のパラホルムアルデヒド(4質量%)の固定液で固定し、24時間後に固定液を交換した。十分に固定した後、病理切片を実施し、肝臓の病理学的変化と線維化度をHEおよびシリウスレッド染色で観察し、肝臓組織の肝線維化をグレードで病理学的に評価した。その基準は次の通りであった。グレード0:線維症なし;グレード1:わずかなPF±短い繊維隔壁;グレード2:PF、線維隔壁の形成;グレード3:多数のPF、時々PP;グレード4:明らかなP-PおよびPCを伴うPF;グレード5:明らかなP-P/P-C、時折の結節;グレード:確実な肝硬変または肝硬変の可能性がある。PFは門脈域線維化、P-Pが門脈域相互の架橋性線維化、P-Cが門脈域と中心静脈の架橋性線維化である。肝臓組織のコラーゲン沈着をシリウスレッド染色で評価し、陽性の発現をImage-Pro Plusで半定量的に分析した。相対コラーゲン面積を下式で計算した結果は図11A、図11B、図12A、図12Bに示されている。
[数10]
(投与群の平均面積-偽手術群の平均面積)/(モデル群の平均面積-偽手術群の平均面積)×100%。
結果は、親化合物AD治療群の肝組織切片の線維化の病理学的な評価はモデル群の平均4.8から平均2.83(15mg/kg;ig)および2.10(40mg/kg;ig)に減少し;本発明の化合物(15mg/kg;ig)ADY-8、ADY-6、ADY、ADC-2、ADC-15および本発明の化合物(40mg/kg;ig)ADC、ADC-4、ADC-10、ADC-12治療群の動物肝組織切片の線維化の病理学的な評価は、モデル群の平均4.8から平均0.6~1.4に減少し;本発明の化合物(15mg/kg;ig)動物の肝組織切片のADY-7およびADY-12治療群の動物肝組織切片の線維化の病理学的な評価は、モデル群の平均4.25から平均0.4および1.4にそれぞれ減少し;各投薬群の動物肝組織コラーゲンの面積は、モデル群のそれよりも有意に低く、本発明の化合物の効果がADよりも有意に優れていたことを示している。
肺線維化は、多様な原因によって引き起こされる肺の損傷であり、肺線維化の病理的機序が複雑であり、様々な病原性の条件による損傷には、血管内皮細胞、肺胞上皮細胞、線維芽細胞、マクロファージなどの複数の細胞および複数のサイトカインの相互作用がある。シリカは無機質の粉塵類に属し、大量に吸入すると、重篤な珪肺症を引き起こしたり、人々の命を危険にさらしたりする可能性がある。動物実験では、シリカによる肺線維化の組織病理学的変化がヒトじん肺とよく似ていることが確認され、肺線維化を研究するための古典的なモデルとなる。
体重20±2gのSPFグレードのKM雄マウスは、河南省実験動物センターから購入された[許可番号:SCXK(豫)2017-0001]。80%シリカの粒子径範囲は、1~5μmで、Sigmaから提供された。使用前に、シリカを250℃のマッフル炉で1時間処理してエンドトキシンを除去し、密封してオートクレーブ処理した後、クリーンベンチ内にて生理食塩水で最終濃度75mg/mlの懸濁液に調製し、4℃で保存して置いた。注射前によく振り混ぜた後、30分間超音波処理した。
3日間自由摂食させた後、マウスを偽手術群、モデル群および各投与群に無作為に割り付け、各群を8匹にした。0.5%ペントバルビタールナトリウム50mg/kgを腹腔内投与して麻酔し、マウスを仰臥位に保定し、首の毛を剃り、ヨウ素による消毒と脱ヨウ化の後、首下約1cmの正中切開を行い、気管支を解放し、体重に応じて、対応するシリカの懸濁液と100ulの空気(150mg/kg)を吸収し、軟骨の隙間から気管に注入します。筋肉を元の位置に戻させた後、マウスを2分間素早く回転させてシリカを均一に分散させ、縫合して消毒した後、滅菌済ガーゼで創部を巻いた。ここで、偽手術群には等量の生理食塩水を注射した。モデリング終了24時間後に1日1回強制経口投与し、偽手術群とモデル群には0.5質量%カルボキシメチルセルロースナトリウム(CMC-Na)を強制経口投与し、他の投与群には、対応する薬剤の0.5質量%CMC-Na懸濁液を投与し、21日間連続投与後実験を終了した。マウスは最後の強制経口投与の12時間前に床敷を交換し、絶水させずに絶食させた。投与1時間後にマウス全血を採取し、採血後、頸椎脱臼によりマウスを処死し、肺を摘出し、秤量し、肺病変を観察・記録した。肺組織固定およびパラフィン切片の作製は、実施例5と同じであった。本発明の化合物による肺組織の炎症および線維化の改善をHE染色およびMasson染色により、観察および分析し、Hubnerらの方法に従って肺線維化の程度を評価した。0点:線維化なし、正常な肺胞構造;1点:軽度の肺組織線維化、肺胞中隔の肥厚≦正常値の3倍、肺胞壁が薄くなり、繊維化塊状巣なし;2点:明らかな線維の変化で、肺胞中隔の厚さが正常値の3倍を超えており、紐の結び目状の変化が見られるが相互に繋がっていない;3点:視野の主な変化は連続線維化(肺胞中隔の厚さ>正常値の3倍)であり、肺胞腔が明らかに増大し、肺胞構造が異常であり、肺胞中隔が正常群よりも薄く、肺組織に明らかな線維性変化があり;4点:肺組織線維化で、単一の明らかな病巣の出現を評価基準とする(病変範囲<10%の視野);5点:肺組織の重度損傷のグレードを付けられ、その典型的な病理学的特徴は、単一の病巣が融合して塊状になる線維性結節の形成(病変範囲は10~50%視野)であり;6点:ほとんどの肺胞中隔が消え、多数の連続した肺線維化(病変範囲>50%視野)、ほとんどの肺の形態が損傷し;7点:肺胞中隔が消え、肺胞はほとんど塊状線維化組織であり;8点:視野全体が塊状線維化組織である。
結果は、本発明の化合物の高用量(120mg/kg)および低用量(40mg/kg)が、シリカにより誘発されたKMマウスにおける肺線維化の程度を有意に改善したことを示した。ADY、ADY-6、およびADY-8治療群の動物の肺組織線維化スコアは、モデルの平均6.75から1.5~2.7に減少し;ADC-2とADC-12の低用量とADC-15の高用量の治療群の動物の肺組織線維化スコアは、平均2.2~2.7の範囲内の変動に減少した。ADY-4、ADY-7、およびADY-12治療群の動物の肺組織線維化スコアは、モデルの平均5.5から2.1~2.8の範囲内の変動に減少し;ADC-4高用量およびADC-10低用量の治療群の動物の肺組織線維化スコアは、モデルの平均5.5から平均2.1および1.9に減少した。かつ、本発明の化合物の抗肺線維化作用は、同じ用量のAD(3.8~4.9)よりも有意に優れている。肺線維化に対する一部の代表的な化合物の改善を図13Aおよび13Bに示す。
片側尿管結紮(UUO)によって誘発されたマウス腎線維化モデルは、腎線維化の古典的なモデルの1つであり、このモデルが尿細管間質の炎症細胞の蓄積、線維芽細胞の分化/増殖、ECM沈着の増加、および尿細管萎縮などを特徴とし、臨床的閉塞性腎疾患の発生・進行に似ており、モデル率が100%、病変が均一で再現性がよく、短期間で線維化を起こすことができる。したがって、UUOモデルは腎間質線維化メカニズムの研究および腎線維化を改善する治療効果の評価に広く使用されている。
体重20±2gのSPFグレードのKM雄マウスは、河南省実験動物センターから購入された[許可番号:SCXK(豫)2017-0001]。
3日間自由摂食させた後、マウスを偽手術群、モデル群および各投与群に無作為に割り付け、各群を7匹にした。術前の準備および麻酔は、実施例5と同じであり、麻酔後、マウスを左臥位に保定し、胸骨下端から後肢毛を剃り、手術用布で剃った皮膚を覆い、ヨウ素で皮膚を消毒した後、胸骨下約0.5cmの端から下へ1cm程度を縦切開し、腎臓を押し出して尿管を解放し、膀胱から尿管の長さの約1/3のところで、尿管を5号絹糸で二重結紮し、尿管を切断し、腎臓が腹腔に戻された後、5号絹糸で腹部全層を閉創し、ヨードフォア消毒後、創部を滅菌済ガーゼで巻き、最後に術後のマウスを覚醒するまで暖かい場所に送った。ここでの偽手術群は、結紮や切離をせずに尿管を解放しただけだった。モデリングの終了から24時間後、同じ時刻、同じ場所、同じ人が強制経口投与し、投与方法は実施例5と同じであり、投与7日後に実験を終了した。マウスは最後の強制経口投与の12時間前に床敷を交換し、絶水させずに絶食させた。投与1時間後、左眼球を摘出して採血し、採血後、左腎臓を迅速かつ完全に解剖し、腎臓の重量を量り、腎臓のサイズを測定し、写真を撮った後、4質量%パラホルムアルデヒド固定液で固定した。パラフィン切片作製、血清調製、HE、Masson染色方法および統計処理は、実施例5または実施例6と同じであった。解剖した腎臓の観察および病理切片のHE染色を通じて本発明の化合物による腎臓組織の炎症状態の改善を分析し、MASSON染色で本発明の化合物による腎線維化の改善を分析した。腎間質線維化の病理学的なグレード分類基準は、次の通りであった。グレード1:間質が基本的に正常で、軽度の尿細管変性と拡張があり;グレード2:間質線維化で、尿細管萎縮<20%、散在性炎症細胞が浸潤し;グレード3:間質線維で、尿細管萎縮は30%を占め、散在性および(または)びまん性炎症細胞が浸潤し;グレード4:間質線維症で、尿細管萎縮>50%、散在性および(または)びまん性炎症細胞が浸潤している。
図14A、図14B、図15A、図15Bおよび図16A、図16Bを参照すると、結果は、偽手術群のマウス腎臓組織の表面が湿って光沢があり、糸球体構造が無傷であり、尿細管がコンパクトであり、目に見える病変がないことを示している。モデル群ののマウスの腎臓組織は、腫れ上がり、中央に大量の滲出液があり、周囲の組織と癒着し、糸球体には線維増殖性組織があり、そのほとんどが壊死・脱落し、腎間質線維化物質が尿細管を圧迫することで、尿細管はびまん性に萎縮し、一部の領域の尿細管内の固有細胞がすべて脱落してタンパク質のキャストを形成し、腎間質に多数の炎症細胞が浸潤していた。モデル群と比較して、投与群の動物の腎組織損傷は様々な程度に改善され;本発明の化合物を投与した治療群の動物の腎組織損傷は大幅に改善され、腎間質線維化の病理学的なグレード分類がモデルのグレード4からグレード1~2に下げ、効果はADよりもはるかに優れている。
Claims (7)
- 活性成分として ヒトの組織または臓器の線維化の治療薬または予防薬の調製に使用されることを特徴とする、医薬品の調製における14-デオキシ-11,12-デヒドロ-7,8-エン-アンドログラフォライド(ADC)およびその構造が一般式(2)に示す15-サブユニット置換誘導体の使用。
R1、R2は、各々水素またはフェニル、メチル、2-フリル、2-メトキシフェニル、3-メトキシフェニル、4-メトキシフェニル、3,4,5-トリメチルオキシフェニル、2-ヒドロキシフェニル、3-ヒドロキシフェニル、4-ヒドロキシフェニル、2-ニトロフェニル、3-ニトロフェニル、4-ニトロフェニル、2-フルオロフェニル、2-クロロフェニル、2-ブロモフェニル、3-フルオロフェニル、3-クロロフェニル、3-ブロモフェニル、4-フルオロフェニル、4-クロロフェニル、4-ブロモフェニル、2-フルオロ-3-メトキシフェニル、3-メトキシ-4-クロロフェニル、2,4-ジフルオロフェニル、2,4-ジクロロフェニル、2,4-ジブロモフェニル、2-フルオロ-4-クロロフェニル、2-ブロモ-4-クロロフェニル、3-フルオロ-4-クロロフェニル、3-ブロモ-4-クロロフェニル、3,4-ジフルオロフェニル、3,4-ジクロロフェニル、3,4-ジブロモフェニル、2-クロロ-4-フルオロフェニル、2-ブロモ-4-フルオロフェニル、3-クロロ-4-フルオロフェニル、3-ブロモ-4-フルオロフェニル、2-フルオロ-4-ブロモフェニル、2-クロロ-4-ブロモフェニル、3-フルオロ-4-ブロモフェニル、3-クロロ-4-ブロモフェニル、2,3,4-トリクロロフェニル、2-メトキシ-4-クロロフェニル、2-ヒドロキシ-4-クロロフェニル、2-ヒドロキシ-4-メトキシフェニル、4-(N、N-ジメチルアミノ)フェニル、3-フルオロ-4-(4-モルホリニル)フェニル、3-フルオロ-4-(4-メチルピペラジニル)フェニルであり、またはR1とR2は、互いに結合してシクロヘキシル、シクロペンチルを形成し;R1、R2は同一でも異なっていてもよい。] - R1、R2のいずれか一方が水素である場合、R1、R2の他方は、メチル、2-フリル、フェニル、2-メトキシフェニル、3-メトキシフェニル、4-メトキシフェニル、2-フルオロフェニル、2-クロロフェニル、2-ブロモフェニル、3-フルオロフェニル、3-クロロフェニル、3-ブロモフェニル、4-フルオロフェニル、4-クロロフェニル、4-ブロモフェニル、2-フルオロ-3-メトキシフェニル、3-メトキシ-4-クロロフェニル、3,4,5-トリメチルオキシフェニル、2,4-ジフルオロフェニル、2,4-ジクロロフェニル、2,4-ジブロモフェニル、2-フルオロ-4-クロロフェニル、2-ブロモ-4-クロロフェニル、3-フルオロ-4-クロロフェニル、3-ブロモ-4-クロロフェニル、3,4-ジフルオロフェニル、3,4-ジクロロフェニル、3,4-ジブロモフェニル、2-クロロ-4-フルオロフェニル、2-ブロモ-4-フルオロフェニル、3-クロロ-4-フルオロフェニル、3-ブロモ-4-フルオロフェニル、2-フルオロ-4-ブロモフェニル、2-クロロ-4-ブロモフェニル、3-フルオロ-4-ブロモフェニル、3-クロロ-4-ブロモフェニル、2-メトキシ-4-クロロフェニル、4-(N、N-ジメチルアミノ)フェニル、3-フルオロ-4-(4-モルホリニル)フェニル、3-フルオロ-4-(4-メチルピペラジニル)フェニル、2-ヒドロキシフェニル、3-ヒドロキシフェニル、4-ヒドロキシフェニル、2-ニトロフェニル、3-ニトロフェニル、4-ニトロフェニルからなる群から選択され、またはR1とR2は互いに結合してシクロヘキシルを形成することを特徴とする、請求項1に記載の医薬品の調製における14-デオキシ-11,12-デヒドロ-7,8-エン-アンドログラフォライド(ADC)およびその15-サブユニット置換誘導体の使用。
- 次の通りの化合物から選択されることを特徴とする、請求項1に記載の医薬品の調製における14-デオキシ-11,12-デヒドロ-7,8-エン-アンドログラフォライド(ADC)およびその15-サブユニット置換誘導体の使用。
ADC:14-デオキシ-11,12-デヒドロ-7,8-エンアンドログラフォライド;
ADC-1:R1=H,R2=4-Cl-C6H4;
ADC-2:R1=H,R2=C6H5;
ADC-3:R1=H,R2=3-Cl-C6H4;
ADC-4:R1=H,R2=4-Br-C6H4;
ADC-5:R1=H,R2=4-F-C6H4;
ADC-6:R1=H,R2=3,4-ジフルオロフェニル;
ADC-7:R1=H,R2=2-Cl-C6H4;
ADC-8:R1=H,R2=3-CH3O-C6H4;
ADC-9:R1=H,R2=4-N(CH3)2-C6H4;
ADC-10:R1=H,R2=3-F-4-(4-モルホリニル)-C6H3;
ADC-11:R1=H,R2=4-CH3O-C6H4;
ADC-12:R1=H,R2=2-HO-C6H4;
ADC-13:R1=H,R2=4-HO-C6H4;
ADC-14:R1=H,R2=3-NO2-C6H4;
ADC-15:R1=H,R2=3,4,5-トリメチルオキシフェニル;
ADC-16:R1=H,R2=2-フリル;
ADC-17:R1とR2は互いに結合してシクロヘキシルを形成する。 - 活性成分として ヒトの組織または臓器の線維化の治療薬または予防薬の調製に使用されることを特徴とする、医薬品の調製における請求項1に記載の14-デオキシ-11,12-デヒドロ-7,8-エン-アンドログラフォライド(ADC)およびその15-サブユニット置換誘導体の使用。
- 活性成分として肝線維化、肺線維化、腎線維化、心筋線維化の治療薬または予防薬に使用されることを特徴とする、請求項1又は4に記載の医薬品の調製において、「14-デオキシ-11,12-デヒドロ-7,8-エン-アンドログラフォライド(ADC)およびその15-サブユニット置換誘導体」及び「14-デオキシ-11,12-デヒドロ-8,12-エポキシ-アンドログラフォライドおよびその15-サブユニット置換誘導体」の両者の使用。
- 活性成分または他の薬物と組み合わせて、製薬中の許容される補助成分および/または添加成分と混合された後、従来の製薬方法およびプロセスの要件に基づき、抗ヒト組織または臓器の線維化のための経口製剤、注射製剤を製造することを特徴とする、請求項5に記載の医薬品の調製において、「14-デオキシ-11,12-デヒドロ-7,8-エン-アンドログラフォライド(ADC)およびその15-サブユニット置換誘導体」及び「14-デオキシ-11,12-デヒドロ-8,12-エポキシ-アンドログラフォライドおよびその15-サブユニット置換誘導体」の両者の使用。
- 経口製剤は、錠剤、丸剤、カプセル、顆粒またはシロップなどであり;注射用製剤は、注射剤または凍結乾燥粉末注射剤であることを特徴とする、請求項6に記載の医薬品の調製において、「14-デオキシ-11,12-デヒドロ-7,8-エン-アンドログラフォライド(ADC)およびその15-サブユニット置換誘導体」及び「14-デオキシ-11,12-デヒドロ-8,12-エポキシ-アンドログラフォライドおよびその15-サブユニット置換誘導体」の両者の使用。
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