JP7169594B2 - 糖尿病合併症用マーカー - Google Patents
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Description
本発明のマーカーが有する構造以外には、糖尿病において生体含量の変動が大きいAGEs構造は世界的に例を見ない。
また、本構造自体は新規ではないが、糖尿病等の病態マーカーとして測定された報告はない。Glucoselysineは糖尿病合併症の一つである白内障で顕著に増加することが確認されたため、糖尿病合併症の有無を高い確率で評価可能とするマーカーとして有効である。
すなわち、本発明は以下に関する。
(B) (A)工程で得られたマーカー量の測定結果に基づき、糖尿病合併症の発症の有無又は発症するリスクを判定する工程、
を含む、〔1〕又は〔2〕に記載のマーカー量を指標とした、糖尿病合併症の検査方法。
〔4〕 試料を液相において塩酸等の酸を用いて処理すること、及び、液相において処理した試料を強酸性陽イオン交換樹脂に添加し、非酸性条件下で溶出する、〔3〕に記載の糖尿病合併症の検査方法。
〔5〕 液相中での処理が65~100℃で6~24時間の処理である、〔4〕に記載の糖尿病合併症の検査方法。
〔6〕 強酸性陽イオン交換樹脂から溶出された溶出液をさらに濾過処理することを含む、〔4〕~〔5〕のいずれかに記載の糖尿病合併症の検査方法。
〔7〕 マーカー量の測定を液体クロマトグラフィー-質量分析することを含む、〔3〕~〔6〕のいずれかに記載の糖尿病合併症の検査方法。
〔8〕 液体クロマトグラフィー-質量分析が、液体クロマトグラフィー-タンデム型質量分析である、〔7〕に記載の糖尿病合併症の検査方法。
〔9〕 式(1)で示される化合物又はその塩の、糖尿病合併症の検査用マーカーとしての使用。
〔10〕 式(1)で示される化合物又はその塩を検出する糖尿病合併症の検査用試薬。
〔11〕 式(1)で示される化合物又はその塩を検出する糖尿病合併症の検査用試薬の製造のための、式(1)で示される化合物又はその塩の使用。
〔12〕 〔3〕~〔8〕のいずれかに記載の糖尿病合併症の検査方法により糖尿病合併症を検査すること、及び、
糖尿病合併症と判定された患者に、糖尿病合併症の治療剤を投与することを含む、
糖尿病合併症の治療方法。
生活習慣病の一つである糖尿病の患者は、わが国では現在その予備軍も含めると2050万人にのぼり、QOLの低下及び国民総医療費を増大させる緊急の社会問題となっている。
糖尿病になると5年ないし10年程度で、網膜症、白内障、腎症、神経症など様々な合併症を発症する。
しかし、これまで血糖値のマーカーはあるものの、合併症のマーカーは存在しなかった。糖尿病合併症のマーカーは、糖尿病合併症の早期発見につながり、さらに合併症の予防薬(化学物質、食品、食品由来成分等)の開発にもつながるため、HbA1cのように、世界的に測定される可能性が大いに考えられる。
本発明者等は、健常ラットに比較して、糖尿病を誘発したラットの水晶体に蓄積が増加する物質を単離し、LC-MS/MS解析およびNMRで構造を同定した結果、Glucoselysineという構造が見いだされた。
本構造の化合物は、糖尿病を誘発したラットの血清でも検出された。すなわち、本発明者等は、これまで構造が不明で測定が困難であったAGEsを特定し、かつ病態での変動が顕著なAGEs構造を見いだした。
血中GlucoselysineをLC-MS/MSで測定することによって、今まで不可能であった糖尿病の合併症の進展を評価できる可能性が高い。また、Glucoselysineに対するモノクローナル抗体、あるいはポリクローナル抗体によって、より簡便に生体濃度を評価できる。
なお、糖尿病合併症は、ミクロアンギオパチー(微小血管障害)とマクロアンギオパチー(動脈硬化性疾患)に大別され、前者では血糖コントロールにおいて予防できることから、早期に診断できることが望ましい。ミクロアンギオパチーにおいては糖尿病性神経障害、糖尿病性網膜症、糖尿病性腎症が代表的であり、糖尿病の三大合併症とも呼ばれる。糖尿病を放置していた場合、合併症が出現する初期においては主に神経障害の割合が多く、その後に単純性網膜症の進行が認められる。その後、微量アルブミン尿、間欠の蛋白尿が見られるようになり、失明・腎不全といった重症化に至る。本発明の検査用マーカーは糖尿病の合併症全般を予見できるものであり、後述の実施例でも示される通り、眼球の異常を反映したマーカーであることから、好適には網膜症の進行を予見するマーカーとして使うことができる。また、網膜症の進行が予見できることから、本発明の一態様として、その後に現れる腎症などの合併症などへの進行も予見することに使うことができる。
なお、本発明の「糖尿病合併症の検査用マーカー」は、「糖尿病の検査用マーカー」としても利用可能であり、そのような形態も本発明に包含される。
また、本発明は、本発明のマーカーの量を指標とした、糖尿病合併症の検査方法(以下、単に「本発明の検査方法」ということがある)に関する。本発明の検査方法は、少なくとも以下の工程を含む。
(A) 被検対象より採取された試料中の、本発明のマーカー量を測定する工程;及び
(B) (A)工程で得られたマーカー量の測定結果に基づき、糖尿病合併症の発症の有無又は発症するリスクを判定する工程。
本発明の検査方法の被検対象としては、糖尿病合併症の検査を望む(又は、検査が望まれる)ヒト又はヒト以外の哺乳類が挙げられる。
本発明の検査方法に用いられる生体試料は、糖尿病合併症の検査を望む(又は、検査が望まれる)被検対象から採取されるものである。生体試料としては、生体から採取されるあらゆる細胞、組織及び体液、例えば、皮膚、筋肉、骨、脂肪組織、脳神経系、感覚器系、心臓及び血管等の循環器系、肺、肝臓、脾臓、膵臓、腎臓、消化器系、胸腺、リンパ、血液、全血、血清、血漿、リンパ液、唾液、尿、腹水、喀痰等、並びにそれらの培養物が挙げられる。このうち、全血、血清、血漿、尿が好ましく、血清、血漿がより好ましい。生体試料の調製及び処理は、その後の測定方法に応じて常法に基づいて調製及び処理することができるが、例えば、試料の処理方法として、試料を液相において塩酸等の酸を用いて処理すること、及び、液相において処理した試料を強酸性陽イオン交換樹脂に添加し、非酸性条件下で溶出することが好ましい。
また、液相中での処理が65~100℃で6~24時間の処理であることがさらに好ましい。
また、強酸性陽イオン交換樹脂から溶出された溶出液をさらに濾過処理することがさらに好ましい。
判定に用いる基準値やカットオフ値は、使用するサンプルの種類や状態、検査対象、要求される精度(信頼度)等を考慮し適宜決定できる。例えば、糖尿病合併症の発症の有無を判定する場合には、糖尿病合併症を発症していない対象の血中のマーカー量を測定し、予め基準値を決定しておく。被検対象の血中のマーカー量がこの基準値と有意な差を示したとき、糖尿病合併症を発症していると判定できる。また、例えば、糖尿病合併症の発症のリスクを判定する場合には、糖尿病合併症を発症していない対象の血中のマーカー量を測定し基準値を決定し、さらに糖尿病合併症を発症している対象の血中のマーカー量を測定し基準値を決定しておく。これら基準値の間の数値をいくつかの段階に分け、各段階毎に、例えば「糖尿病合併症を発症するリスクが高い」、「糖尿病合併症を発症するリスクが中程度」、「糖尿病合併症を発症するリスクが低い」等の判定基準を決定しておく。被検対象の血中のマーカー量に応じて、糖尿病合併症を発症するリスクを判定できる。
(LC-MS/MSによる生体(ラット)中のGlucoselysineの検出)
健常ラットに比較して、糖尿病を誘発したラットの水晶体に蓄積が増加する物質を単離し、LC-MS/MS解析(結果を図1に示す)及び1H-NMRで構造を同定した結果、以下の構造及び物性を有するGlucoselysineという構造が見いだされた。
すなわち、健常ラット及び糖尿病モデルラット(N=5)それぞれの水晶体破砕液200 μgに対し、6Nの無鉄塩酸を1mL加え、100℃で18h加熱し、加水分解を行った。加水分解後、遠心濃縮により乾固させたサンプルを1mLの蒸留水に溶解し、陽イオン交換カラムであるStrata-X-Cカラム(Phenomenex、Torrance、CA、USA)を用いて分画を行った。
カラムは1 mLのMeOHにて洗浄後、1 mLの蒸留水で平衡化した後、サンプルを全量通過させ、2%ギ酸 3 mLで洗浄、7% アンモニア3 mLで溶出した。溶出した画分を乾固し、0.1%ギ酸を含む20%アセトニトリル1mLにて溶解後、LC-MS/MS(TSQ Quantiva, Thermo Fisher)にて測定を行った。
LC-MS/MSのカラムにはZIC(登録商標)-HILIC column (150 × 2.1 mm, 5 μm) (Merck Millipore, Billerica, MA, USA)を用い、移動相は0.1%ギ酸を含む蒸留水と0.1%ギ酸を含むアセトニトリルによるグラジュエントとした。ポジティブモードのエレクトロスプレーイオン化法によってイオン化し、Glucoselysineはプリカーサーイオンm/z 309、 プロダクトイオンm/z 291(コリジョンエネルギー12V)にて測定し、内部標準である[13C6] Glucoselysineはプリカーサーイオンm/z 315、プロダクトイオンm/z 297にて測定した。
溶出位置はGlucoselysine、内部標準ともに14 min付近である。
(抗体による生体(ラット)中のGlucoselysineの検出)
Glucoselysineを認識する抗体と、CML抗体(抗CML抗体クローン6D12,コスモバイオ)とを用いて、健常ラット及び糖尿病モデルラット(N=5)それぞれの水晶体におけるGlucoselysine及びCMLの含有量を測定した。
(LC-MS/MSによる生体(マウス)中のGlucoselysineの検出)
健常マウス(N=12)及び糖尿病モデルマウス(N=20)について、実施例1の手法に基づいて、水晶体中のGlucoselysineを検出した。
(Glucoselysineの安定性の評価)
フルクトースとリジンの反応からGlucoselysine、グルコースとリジンの反応からFructoselysineを合成しHPLCで単離した。処理時間を変更した以外は実施例1の手法に基づいて、Glucoselysine及びFructoselysineについてそれぞれ塩酸加水分解を行った。塩酸加水分解後、各処理時間のサンプル中に含まれる物質をQTOF-MS(Bruker, compact)で同定した。
(TOF-MSによる生体(ヒト)中のGlucoselysineの検出)
健常者(N=3)及び糖尿病患者(N=11)より血液を採取し、血清を調製し、血清中のGlucoselysineをQTOF-MSにより分析した。
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