JP7136509B2

JP7136509B2 - 肝細胞培養膜、それを備えた薬物輸送能評価キット、及び薬物輸送能評価方法

Info

Publication number: JP7136509B2
Application number: JP2021531421A
Authority: JP
Inventors: 琢男荻原; 健太溝井; 映子松本
Original assignee: TAKASAKI UNIVERSITY OF HEALTH AND WELFARE
Current assignee: TAKASAKI UNIVERSITY OF HEALTH AND WELFARE
Priority date: 2019-12-27
Filing date: 2020-12-25
Publication date: 2022-09-13
Anticipated expiration: 2040-12-25
Also published as: JPWO2021132586A1; WO2021132586A1

Description

本発明は、投与した薬物が肝臓から血管に移行した全身循環と胆管での胆汁へ移行した胆汁排泄との何れかがどの程度優位に惹き起こされるかについての薬物輸送能を評価するために用いられる、肝細胞培養膜、それを備えた薬物輸送能評価キット、及び薬物輸送能評価方法、並びに肝細胞培養膜に血管側及び胆管側の配向性（極性）を付与する配向性増強肝細胞培地に関するものである。

体内に投与された薬物、例えば患者に経口投与された薬物は、消化管内から消化管細胞を介して吸収され門脈を経て肝臓に到達する。

生体内に投与され消化管で吸収された薬物が肝臓で抱合されずに又は抱合されたのち腸肝循環し又は全身循環する吸収、分布、代謝、排泄の状態を模式的に示した図３を参照して説明すると、肝臓に到達された薬物は、肝臓から未変化のまま胆汁とともに排泄され胆管を経て消化管に戻り（胆汁排泄）、再度消化管から吸収されたり、また一部が肝臓から血管を経て全身循環に入り、標的部位に到達する（同図（ａ））。若しくは、肝臓で抱合されて胆汁とともに排泄され胆管を経て消化管に戻ってから脱抱合されて再度消化管細胞を介して吸収されたりする（腸肝循環）。また一部が肝臓から血管を経て全身循環に入り、標的部位に到達する（同図（ｂ））。或いは肝臓で代謝され尿や胆汁中に排泄される。

体内での半減期が長い薬物、例えばモルヒネは、腸肝循環が大きく関わっている。具体的には、このような薬物は、消化管例えば腸管から吸収され、その一部が全身循環に入るもののその多くが肝臓でグルクロン酸抱合を受け、胆汁とともに腸管に排泄された後、腸内細菌によって加水分解を受けてグルクロン酸抱合がはずれ、再び腸管から吸収され、その一部が全身循環に入る。これが繰り返されることによって腸肝循環している結果、長時間の薬効発現を奏するようになる。抗生物質を併用すると腸内細菌の作用が阻害されて腸肝循環し難くなってしまう。

また、腸肝循環を起こす薬物のうち、未変化体が胆汁排泄される薬物として、アジスロマイシンやアトルバスタチンのような有機アニオン系化合物、カルベジロールやクロミフェンのような有機カチオン系化合物、テモカプリルやモキシフロキサシンのような両性化合物、ジギトキシンやプロブコールのような中性化合物が挙げられ、これらも腸肝循環が大きく関わり、糞尿への排泄に時間がかかる。

一方、分子量が３００～５００よりも小さい薬物は、胆汁排泄率が低いものが多いことが知られており、腸肝循環よりもむしろ全身循環が大きく関わっており、その分、薬効持続時間が短い。ラットでは分子量が３００～３８０付近を境に大きいほど、モルモットでは分子量が３３０～４３０付近を境に大きいほど、またウサギでは分子量が４１０～５００付近を境に大きいほど、投与量に対する胆汁排泄率が高くなることが知られている。

新規薬物の開発や既存薬物の評価の際に、それら薬物、又はそれらの代謝産物の胆汁排泄が、薬物の全体的クリアランスで重要な役割を果たすことが分かってきた。

しかし、ヒトの場合、吸収、分布、代謝、排泄の機構が一層複雑である。しかも、低分子量でも胆汁排泄され易いことがある。さらに、投与された薬物が、肝臓での胆汁排泄と、血管への全身移行との何れかが優位となるかは、薬物の物性や投与対象動物の種差、グルクロン酸抱合などの抱合の受け易さ、トランスポーターの寄与やその作用程度、胆汁でのミセルの形成の受け易さ、胆汁への移行の程度など各種要因の所為で、大きく異なる。

従来、ヒトでの胆汁排泄と全身移行との何れかが優位となるかを評価するためには、in vivoでの動物実験から類推していたが、簡易に評価するために、近年、in vitroでの実験から類推する手法が開発されている。

例えば、特許文献１に、化学実体の胆汁中排泄を特徴付けるin vitroの方法であって、ａ）少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む細胞培養物を提供するステップ、ｂ）前記細胞培養物を第１の化学実体と、前記培養物の肝細胞による前記化学実体の取り込みを可能にするのに十分な時間、接触させるステップ、ｃ）前記肝細胞を溶解させることなく前記少なくとも１つの胆細管を破壊し、前記少なくとも１つの胆細管によって放出される前記第１の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出するステップ、ならびにｄ）前記肝細胞を溶解させ、前記肝細胞によって放出される前記第１の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出するステップを含む方法が、開示されている。

また、特許文献２に、酸素透過性の基板上で肝細胞を培養して毛細胆管を形成させる方法であって培地中の酸素濃度が４．０％以上１２．５％以下である低酸素濃度中で肝細胞を培養する方法により、肝細胞を培養して毛細胆管を形成した培養肝細胞を製造し、得られた培養肝細胞を用いて化合物の輸送を評価する、化合物の輸送検定方法が、開示されている。この方法は、化合物を添加して、該毛細胆管への取り込みを行った後、洗浄液で該培養肝細胞を洗って該化合物を除去し、化合物を含まない反応液中で代謝反応に供した後、反応液（培養肝細胞外液）中及び／又は毛細胆管液中の成分を分析して、化合物の代謝特性を検定するというものである。

特許文献１及び２の何れも毛細胆管を形成させるものであり、胆細管を破壊・肝細胞を溶解して輸送能を測定すべき薬物の量を検出したり、毛細胆管へ薬物の取り込みによる量を検出したりするものである。しかし、細胞等の破壊や溶解を必要とせず、濃度の直接的な測定により、胆汁排泄と全身移行との何れかが優位となるかを評価できるモデルが求められていた。

本発明者らは、上皮細胞も肝細胞のような実質細胞も通常のシャーレで培養すると配向性を有しないが、肝細胞を多孔質プラスチックフィルム上で培養した膜状細胞層を形成した肝細胞培養膜によって、多孔質プラスチックフィルムに接している下側が血液側、多孔質プラスチックフィルムに接していない上側が胆管側となる配向性を有することを見出し、さらに、この肝細胞培養膜を有する薬物輸送能評価キット、及びそれを用いた薬物輸送能評価方法により、胆汁排泄と全身移行との何れかが優位となるかの評価モデルとなることを見出し、本発明を完成させた。

特表２０１７－５２７２８３号公報特開２０１４－２２３０６１号公報

本発明は前記の課題を解決するためになされたもので、対象薬物の吸収、分布、代謝、排泄の重要なファクターの一つとして、投与した薬物が肝臓から血管に移行した全身移行と胆管での胆汁へ移行した胆汁排泄との何れかがどの程度優位に惹き起こされるかについての薬物輸送能を、in vitroで簡易にかつ直接的に評価するのに用いられる、肝細胞培養膜、それを備えた薬物輸送能評価キット、及び薬物輸送能評価方法、並びに肝細胞培養膜に血管側及び胆管側の配向性を付与する配向性増強肝細胞培地を提供することを目的とする。

前記の目的を達成するためになされた本発明の肝細胞培養膜は、単層の膜状細胞層と多孔質プラスチックフィルムとからなるもので、肝癌細胞と、胆管癌細胞と、遊離肝細胞と、動物由来ヒト化新鮮肝細胞との少なくとも何れかの細胞が、多孔質プラスチックフィルム上で隙間なく並んで単層の膜状に培養された膜状細胞層を形成しており、前記細胞が、前記膜状細胞層の下側で血管側となり、前記膜状細胞層の上側で胆管側となる配向性を有していることを特徴とする。

前記の目的を達成するためになされた本発明の薬物輸送能評価キットは、前記肝細胞培養膜が底に設けられており第一被検液を収める肝細胞培養膜担持インサート容器と、前記肝細胞培養膜担持インサート容器が挿入されているウェルを有しており前記肝細胞培養膜が浸漬される第二被検液を収めるウェルプレートとを、備えていることを特徴とする。

この薬物輸送能評価キットは、前記多孔質プラスチックフィルムが、例えば含フッ素樹脂、ポリカーボネート、ポリオレフィン、ポリエステル、ポリウレタン、ポリアミド、ポリイミド、セルロース、及び再生セルロースから選ばれる何れかのプラスチックで形成されているというものである。

この薬物輸送能評価キットは、前記多孔質プラスチックフィルムが前記肝細胞の大きさよりも小さな多孔を有し、又は多孔質プラスチックフィルムに不透性の材質でシールしたものをパターン状に開口させたもの（パターニング）である。

この薬物輸送能評価キットは、前記多孔質プラスチックフィルムが、コラーゲン、及び／又はフィブロネクチンでコーティングされていることが好ましい。

この薬物輸送能評価キットは、前記第一被検液と、前記第二被検液との少なくとも何れかに胆汁酸が含有されていることが好ましい。

前記の目的を達成するためになされた本発明の薬物輸送能評価方法は、前記薬物輸送能評価キットを用い、前記肝細胞培養膜担持インサート容器の内部の前記第一被検液と、前記肝細胞培養膜担持インサート容器の外部にあって前記ウェルプレートの前記ウェルの内部の前記第二被検液との何れかに、測定対象薬物を加え、前記膜状細胞層と前記多孔質プラスチックフィルムとの前記肝細胞培養膜を介して、前記測定対象薬物の輸送量を経時的に測定し、輸送速度を算出することにより、薬物輸送能を評価するというものである。

前記の目的を達成するためになされた本発明の薬物輸送能評価方法は、具体的には、
第一被検液を収めるインサート容器筒の底に設けられた多孔質プラスチックフィルム上で、肝癌細胞と、胆管癌細胞と、遊離肝細胞と、動物由来ヒト化新鮮肝細胞との少なくとも何れかの細胞を、播種し、隙間なく並んだ単層の膜状に培養して、膜状細胞層にすることにより、前記膜状細胞層が、前記膜状細胞層の下側で血管側となり、前記膜状細胞層の上側で胆管側となる配向性を有している肝細胞培養膜を形成して、肝細胞培養膜担持インサート容器を調製する工程と、
前記肝細胞培養膜担持インサート容器を挿入するウェルを有しており前記肝細胞培養膜が浸漬される第二被検液を収めるウェルプレートを調製する工程と、
前記肝細胞培養膜担持インサート容器に、薬物輸送能の測定対象薬物を含有させた前記第一被検液を収め、前記ウェルプレートの前記ウェルに、前記測定対象薬物を含有しない前記第二被検液を収め、前記肝細胞培養膜を前記第二被検液に浸漬した後、前記胆管側から前記血液側への前記測定対象薬物の輸送量を測定する血液側輸送量測定工程と、
前記肝細胞培養膜担持インサート容器に、前記測定対象薬物を含有しない前記第一被検液を収め、前記ウェルプレートの前記ウェルに、前記測定対象薬物を含有させた前記第二被検液を収め、前記肝細胞培養膜を前記第二被検液に浸漬した後、前記血液側から前記胆管側への前記測定対象薬物の輸送量を測定する胆管側輸送量測定工程と、
それぞれの輸送量を経時的に測定することで輸送速度を算出する工程と、
それら血液側輸送速度及び胆管側輸送速度の比を算出して、前記測定対象薬の薬物輸送能を求める薬物輸送能算出工程とを、有しているというものである。

この薬物輸送評価方法は、前記血液側輸送量測定工程中、さらに前記第一被検液と前記第二被検液とにトランスポーターのインヒビターを添加して行い、前記胆管側輸送量測定工程中、さらに前記第一被検液と前記第二被検液とにトランスポーターのインヒビターを添加して行い、それらについても胆管側輸送量測定工程を行い、前記薬物輸送能算出工程で、インヒビター未添加でのそれら血液側輸送速度及び胆管側輸送速度の比と、インヒビター添加でのそれら血液側輸送速度及び胆管側輸送速度の比との比を算出して、前記測定対象薬の薬物輸送能を求めるというものであってもよい。

前記の目的を達成するためになされた本発明の配向性増強肝細胞培地は、肝癌細胞と、胆管癌細胞と、遊離肝細胞と、動物由来ヒト化新鮮肝細胞との少なくとも何れかの細胞を、多孔質プラスチックフィルム上で培養して膜状細胞層を形成し、前記膜状細胞層の下側で血管側となり前記膜状細胞層の上側で胆管側となる配向性を発現させるための肝細胞培地であって、培養成分と、胆汁酸とを有していることを特徴とする。

本発明の肝細胞培養膜は、肝細胞由来又は肝細胞に誘導される細胞を多孔質プラスチックフィルム上で膜状に培養した膜状細胞層を形成することによって、膜状細胞層の下側即ち多孔質プラスチックフィルム側で血管側となり膜状細胞層の上側で胆管側となる配向性を発現したものであり、単層膜となっている。そのため、通常のシャーレで培養したときのように細胞の三次元的な塊乃至複数層を形成していない。また、胆細管や毛細胆管を意図的に形成するものでもない。この肝細胞培養膜は、配向性を有しているので、測定対象薬物が胆汁排泄と全身移行との何れかが優位となるかを、検討するのに適している。

従って、肝細胞培養膜を用いれば、例えば新規薬物の開発や既存薬物の評価の際に、それら薬物又はそれらの代謝産物のような測定対象薬物が、胆汁に排泄されるか、血管（類洞）側に押し戻されるかを簡便に評価できる、簡易で再現性の良い評価系を構築することができる。

この肝細胞培養膜は、入手し易い細胞を用いて、安価に、安定した配向性を発現させることができるものである。

本発明の薬物輸送能評価キットは、配向性を有する肝細胞培養膜を有していることにより、測定対象薬物が胆細管や毛細胆管へ透過するのではなく、単層膜の膜状細胞層を透過する程度を測定することによって、測定対象薬物が胆汁排泄と全身移行との何れかが優位となるかを、評価できる。

この薬物輸送能評価キット及びそれを用いた薬物輸送能評価方法によれば、測定対象薬物の吸収、分布、代謝、排泄の重要なファクターの一つとして、測定対象薬物をヒトに投与したとき肝臓から血管に移行した全身循環と胆管での胆汁へ移行した腸肝循環との何れの循環がどの程度優位に惹き起こされるかについての薬物輸送能を、in vitroで簡易にかつ直接的に評価するのに用いられることができる。さらに、この薬物輸送能評価キット及び薬物輸送能評価方法によれば、肝細胞培養膜を用いているから肝臓の働きを反映できるので、直接的にin vivoの評価を行わなくても、間接的にin vivoでの結果を正しく推定することができる。

また、この薬物輸送能評価キット及び薬物輸送能評価方法は、肝細胞培養膜での胆管側から血液側への測定対象薬物の輸送量と、血液側から胆管側への測定対象薬物の輸送量とを比較して、簡便に薬物輸送能を評価するのに用いられる。

本発明の配向性増強肝細胞培地は、肝細胞培養膜での膜状細胞層が、下側即ち多孔質プラスチックフィルム側で血管側となり上側で胆管側となる配向性を、細胞の培養段階で増強させることができる。そのため、配向性増強肝細胞培地を用いて肝細胞培養膜を調製すれば、その肝細胞培養膜を有する薬物輸送能評価キット及びそれを用いた薬物輸送能評価方法で、測定対象薬物の物性、とりわけ肝臓から胆汁排泄に入り易いか全身移行に入り易いかについてのヒトでの薬物動態について、正しく反映したin vitroのデータから簡便かつ迅速に正確に把握することができる。

本発明を適用する肝細胞培養膜を有する薬物輸送能評価キットの模式断面図である。本発明を適用する薬物輸送能評価キットの模式断面図と、それを用いた薬物輸送能評価方法による測定結果を示すグラフである。生体内に投与され消化管で吸収された薬物が肝臓で抱合されずに又は抱合されたのち腸肝循環し又は全身循環する吸収、分布、代謝、排泄の状態を模式的に示した図である。

以下、発明を実施するための形態を詳細に説明するが、本発明の範囲はこれらの形態に限定されるものではない。

本発明の肝細胞培養膜、それを備えた薬物輸送能評価キット、及び薬物輸送能評価方法について、図１を参照しながら、詳細に説明する。

肝細胞培養膜１４は、多孔質プラスチックフィルム１３と、その上で膜状に細胞１２ａが培養された膜状細胞層１２とを有するものである。

薬物輸送能評価キット１は、膜状細胞層１２を内空側にして肝細胞培養膜１４が非透過性プラスチック製インサート容器筒１１の底に設けられて塞いでいる肝細胞培養膜担持インサート容器１０と、その肝細胞培養膜担持インサート容器１０が挿入されているウェル２１を有している非透過性プラスチック製ウェルプレート２０とを、備えている。薬物輸送能評価方法による測定時には、肝細胞培養膜担持インサート容器１０に第一被検液１５が加えられて収められ、ウェルプレート２０のウェル２１に第二被検液２５が加えられて収められる。そのとき、ウェル２１中で、肝細胞培養膜担持インサート容器１０の肝細胞培養膜１４は、第二被検液２５に浸漬される。

細胞１２ａは、例えば、肝癌細胞と、胆管癌細胞と、遊離肝細胞と、動物由来ヒト化新鮮肝細胞と、肝細胞に誘導されるｉＰＳ細胞及び／又はＥＳ細胞と、オルガノイドと、不死化細胞との少なくとも何れかの細胞が、挙げられる。分化したら肝臓様細胞になる前駆体細胞は肝オルガノイドと呼ばれている。

肝癌細胞としては、市販の肝癌細胞株、例えばヒト肝癌由来細胞株ＨｅｐＧ２（ＪＣＲＢ細胞バンク(国立研究開発法人医薬基盤・健康・栄養研究所)など）、高分化型ヒト肝芽腫由来細胞株ＨｕＨ－７（ＪＣＲＢなど）が好ましく用いられるが、ヒト肝癌由来細胞株ＨｅｐａＲＧ（株式会社ケー・エー・シー）、ＰＬＣ－ＰＲＦ－５（コスモ・バイオ株式会社など）、ヒト肝臓腺腫細胞株ＳＫ－ＨＥＰ－１（コスモ・バイオ株式会社など）を用いてもよい。
胆管癌細胞としては、市販の肝癌細胞株、例えば、胆管癌細胞株ＴＦＫ－１（国立大学法人東北大学加齢医学研究所医用細胞資源センター）、ヒト不死化胆管由来細胞株ＭＭＮＫ－１（ＪＣＲＢ）、不死化ヒト肝内皮細胞株（ＪＣＲＢ）、類洞内皮癌細胞が挙げられる。
遊離肝細胞としては、初代遊離肝細胞（プライマリー肝細胞）、例えばヒト肝細胞株Ｃｈａｎｇ－Ｌｉｖｅｒ（コスモ・バイオ株式会社など）が挙げられる。
動物由来ヒト化新鮮肝細胞としては、例えばＰＸＢ－ｃｅｌｌ（ＰｈｏｅｎｉｘＢｉｏ社）、免疫不全動物にヒト細胞が生着した動物由来肝細胞（公益財団法人実験動物中央研究所）が挙げられる。
また、肝細胞に誘導される前駆体培養細胞である場合、人工多能性幹細胞：ｉＰＳ細胞としては、例えばｉＣｅｌｌ肝細胞（富士フイルム株式会社）、Ｃｅｌｌａｒｔｉｓ（タカラバイオ株式会社）が挙げられる。

これらの肝細胞（実質細胞）は、多孔質プラスチックフィルム１３上、好ましくは水平な多孔質プラスチックフィルム１３上で、細胞を播種し、培地を用いて培養することにより、細胞が多孔質プラスチックフィルム１３上で均一に隙間なく増殖した培養細胞１２ａの単層膜となって、多孔質プラスチックフィルムを覆う。肝細胞は、内皮細胞に比べ、多孔質プラスチックフィルム上で培養しても、内皮細胞のような配向性（極性）を有する膜を形成し難く、配向性に優れた膜状細胞層１２は、知られていなかった。しかし、この膜状細胞層１２は、細胞１２ａが単層に隙間なく並んで増殖した単層膜状のものであり、各細胞が膜状細胞層１２中で、多孔質プラスチックフィルム側にて血管側のトランスポーター等を発現し、一方、多孔質プラスチックフィルムと反対側にて胆管側のトランスポーター等を発現していることにより、特定の薬物を血管側又は胆管側に優先的に移送できるようになっている。また、肝臓同様に、特定の薬物やグルコースを選択的に血管側に移送したり、特定の薬物を透過させずに吐き出したりする。これにより、肝臓と同様に、第一相（解毒系）、第二相（抱合系）、第三相（排出系）のように作用する。それにより、膜状細胞層１２の下側で血管側となり、膜状細胞層１２の上側で胆管側となる配向性を示すようになり、肝臓で吐き出しタンパクであるトランスポーターＭＲＰ２の基質であってほぼ１００％の割合にて腸肝循環に入るＢＳＰ（ブロモスルホフタレイン：胆汁排泄マーカー）のような薬物は、血管側よりも胆管側に多く移送されることから高い配向性を発現していることが示される。培養細胞１２ａは、多孔質プラスチックフィルム１３上で培養すると、とりわけ胆汁酸含有培養液で培養すると、配向性が一層顕著になる。肝細胞培養膜１４を用いることによるこのような配向性によって、胆汁中排泄、肝代謝、肝毒性について、検討することが可能である。

これらの膜状細胞層１２と多孔質プラスチックフィルム１３とからなる肝細胞培養膜１４は、肝臓からの胆汁排泄と全身移行との何れかに優位に入るか検討すべき測定対象薬物が、被検液中で、膜状細胞層１２の血液側Ｂから胆管側Ａへの向きへの輸送速度（Ｐ_ＢtoＡ）と、胆管側Ａから血液側Ｂへの向きへの輸送速度（Ｐ_ＡtoＢ）との比が、測定対象薬物によって変動し得るが、１．３以上、好ましくは１．８以上、より好ましくは２．０以上、より一層好ましくは５．０以上となっている。この比は、下記数式（１）で表される。

上記の指標のほかに、さらに加えて、インヒビター（阻害物質）例えばトランスポーターのインヒビターを添加した場合の輸送速度の比を求めるとき、血液側Ｂから胆管側Ａへの向きへの輸送速度（Ｐ_ＢtoＡ）と、胆管側Ａから血液側Ｂへの向きへの輸送速度（Ｐ_ＡtoＢ）との比を、さらに阻害物質を添加したときの血液側Ｂから胆管側Ａへの向きへの輸送速度（Ｐ_ＢtoＡ ^ｉ）と、胆管側Ａから血液側Ｂへの向きへの輸送速度（Ｐ_ＡtoＢ ^ｉ）との比で割った時の値が、測定対象薬物によって変動し得るが、１．３以上、好ましくは１．８以上、より好ましくは２．０以上、より一層好ましくは５．０以上となっていてもよい。この比は、下記数式で表される。

式（１）の値が１以上であって双方の配向性が認められるときに、インヒビターを添加して輸送速度の比（Ｐ_ＢtoＡ ^ｉ）／（Ｐ_ＡtoＢ ^ｉ）を求めた時には、その値が小さくなり配向性が認められなくなったり減少したりするので、移動を配向する方向にトランスポーターが機能していることが分かる。

一方、インヒビターを添加して輸送速度の比を求めた方が良い場合は、数式（１）の（Ｐ_ＢtoＡ）／（Ｐ_ＡtoＢ）の値が１未満となったとき、例えば測定対象薬物が血液方向へ向かい易い場合が挙げられる。具体的には、インヒビターを添加して輸送速度を測定すると、数式（２）の値が大きく得られた場合に、一見、血液方向へ向かっているように見えるが、胆汁排泄も機能していることが示される。この場合、測定対象薬物の移動を阻害するインヒビターを用いる必要がある。より具体的には、ブロモスルホフタレイン（ＢＳＰ）は、ＨｅｐＧ２細胞中で、多剤耐性関連タンパク質２（ＭＲＰ２）という胆管側に発現する排泄トランスポーターで移動するから、それを阻害するＭＫ－５７１をインヒビターとして用いる。他の例として、ＭＲＰ２でなくＰ糖タンパク質（Ｐ－ｇｐ）の場合には、ＢＳＰの代わりにローダミン１２３（Ｒｈｏ１２３）を用い、インヒビターとしてベラパミルを用いることとなる。

これらの肝細胞を、通常のシャーレ、プラスチック製ウェルプレートで培養したとしても、ランダムに存在することから、配向性を示さないばかりか、次第にコロニーを形成したり三次元的な塊乃至複数層を形成したりしてしまう。

従って、この肝細胞培養膜１４を調製するには、多孔質プラスチックフィルム１３上で肝細胞を培養することが重要である。

この肝細胞培養膜１４を調製する際、肝細胞を通常の液体培地又は固体培地、好ましくは市販の又は用時調製の液体培地、例えば培養成分として、ダルベッコ改変イーグル培地、調整成分としてＦＢＳ（ウシ胎児血清）を含有する液体培地が用いられる。液体培地として、市販のＤＭＥＭ（富士フィルム和光純薬株式会社製）が挙げられる。

このような液体培地は、添加物として、胆汁酸をさらに含有していると、肝細胞培養膜１４の配向性が一層向上するので、一層好ましい。胆汁酸は、哺乳類などの胆汁に広範に認められる四環構造のステロイドであり、コラン酸母核に１～３個のヒドロキシ基が結合した基本構造を持つもので、具体的にはコール酸やケノデオキシコール酸のような一次胆汁酸、それが腸内細菌で変換されるデオキシコール酸やリトコール酸のような二次胆汁酸、それらがグリシン又はタウリンとアミド結合した抱合胆汁酸、タウロコール酸、タウロケノデオキシコール酸、グリコデオキシコール酸、タウロウルソデオキシコール酸、及び／又はリトコール酸が挙げられる。胆汁酸は、単一種又は複数種であってもよい。

液体培地中、胆汁酸は、例えば好ましくは１μＭ～３００μＭ、一層好ましくは１００μＭの濃度で含有されている。

肝細胞培養膜１４の配向性を向上させるために、液体培地中、胆汁酸に代え、又は胆汁酸と共に、他の添加物、例えばジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、活性型ビタミンＤ、アザシチジン、コルヒチン、リファンピシン、およびデキサメタゾンのように酵素やトランスポーターを発現させる分化促進剤、配向性を誘導する添加剤、例えばビタミンＡや塩化コバルトを含有していてもよい。

肝細胞培養膜１４中の多孔質プラスチックフィルム１３の素材としては、例えばポリテトラフルオロエチレン（ＰＴＦＥ）のような含フッ素樹脂、ポリカーボネート、ポリエチレンやポリプロピレンやポリスチレンのようなポリオレフィン、ポリエチレンテレフタレートのようなポリエステル、ポリウレタン、ポリアミド、ポリイミド、セルロース、及び再生セルロースが挙げられる。多孔質プラスチックフィルム１３は、プラスチックフィルムであってもよく不織布であってもよい。

多孔質プラスチックフィルム１３の多孔は、個々の肝細胞の大きさである約１０μｍよりも小さくて肝細胞が通過できず、一方、被検液中の測定対象薬物の分子又はその水和物が透過できるようにその分子乃至水和物の分子径よりも大きな孔となっている。具体的には、その多孔の孔径は、例えば０．１～１０μｍ、好ましくは０．３～８μｍ、より好ましくは市販の空のキットに付された多孔質プラスチックフィルム１３の平均孔径０．３μｍ、０．４μｍ、１．０μｍ、３．０μｍ、５μｍ又は８．０μｍとなっている。多孔質プラスチックフィルム１３の厚さは、例えば１～１００μｍ、好ましくは１０～３０μｍである。

多孔質プラスチックフィルム１３は、細胞接着と増殖を最適化した組織培養処理済みとなっていてもよく、コラーゲン及び／又はフィブロネクチンでコーティングされていてもよい。また、多孔質プラスチックフィルムはパターニング処理されていてもよい。コラーゲンコーティング多孔質プラスチックフィルムは、コラーゲンによって細胞１２ａの接着性が向上している。

薬物輸送能評価キット１を作製するのに用いられる、筒底に多孔質プラスチックフィルム１３が貼られたインサート容器筒１１と、ウェル２１を有するウェルプレート２０とは、市販のものが用いられる。多孔質プラスチックフィルム１３は、インサート容器筒１１の筒底で熱融着又は接着剤接着によって、筒底を塞いでいる。インサート容器筒１１の上端周縁は、ウェル２１の上端縁よりも広がった鍔となっている。それによって、これらは、インサート容器筒１１が、ウェル２１に挿入された時にその真ん中にくるように吊り下げ式となっている。インサート容器筒１１は、ウェル２１側壁面との間で液体培地の毛細管現象を防ぐように、下半分が同径の円筒状で上半分が上ほど僅に広がる筒状及び／又はリブを有した筒状となっている。このような多孔質プラスチックフィルム１３が貼られたインサート容器筒１１、及びウェルプレート２０と、培養時に雑菌が混入しないように塞ぐ蓋３０としては、例えばトランズウェル、スナップウェル、ファルコンカルチャーインサート（何れもコーニング社製の商品名）、ａｄ－ＭＥＤビトリゲル（関東化学株式会社製の商品名）が挙げられる。

薬物輸送能評価キット１中、肝細胞培養膜１４中の膜状細胞層１２は、長期の保存・維持が困難である。そのため、薬物輸送能評価方法の測定の直前に、用時、肝細胞培養膜１４を調製し、薬物輸送能評価キット１を作製することが好ましい。

この薬物輸送能評価キット１を用いた薬物輸送能評価方法は、図２（ａ）を参照して説明すると、以下のようにして行われる。

薬物輸送能評価キット１中、肝細胞培養膜担持インサート容器１０の内部に、第一被検液１５を注ぎ込む。また、肝細胞培養膜担持インサート容器１０の外部にあってウェルプレート２０のウェル２１の内部に第二被検液２５を注ぎ込む。

第一被検液１５と第二被検液２５との基本組成液は、緩衝液である。緩衝液として、肝細胞培養膜を損傷しない限り特に限定されないが、ｐＨ７．４のリン酸緩衝液、ｐＨ７．４のリン酸緩衝生理食塩水、生理的等張緩衝塩溶液（ハンクス平衡塩溶液：ＨＢＳＳ－ＨＥＰＥＳ（ｐＨ７．４））が挙げられる。

薬物輸送能評価方法を行う際には、投与した薬物が胆管側での胆汁排泄に入り易いか血管側での全身移行に入り易いかを検討すべき測定対象薬物を、第一被検液１５と第二被検液２５との何れかに加え、暫時の後、膜状細胞層１２と多孔質プラスチックフィルム１３とからなる肝細胞培養膜１４を介して、測定対象薬物が移動する量を、測定する。測定には、光学的手法、例えば蛍光強度、又は紫外線のような特定の測定波長での透過率又は吸光度で濃度を測定して定量してもよく、或いは高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）や、液体クロマトグラフタンデム質量分析装置（ＬＣ－ＭＳ／ＭＳ）で測定してもよい。必要に応じて予め異なる標準濃度とそれの透過率や吸光度との検量線を用いて定量してもよい。

この薬物輸送能評価キット１を用いた薬物輸送能評価方法に関し、肝細胞培養膜１４の調製工程、薬物輸送能評価キット１の作製工程、及びその後の薬物輸送能評価工程の一連の工程の一例について、より具体的に説明すると、以下の通りである。

最初の工程は、肝細胞培養膜担持インサート容器を調製する工程である。具体的には、先ず、薬物輸送能評価の際に第一被検液１５を収めるための空のインサート容器筒１１の底に設けられた多孔質プラスチックフィルム１３、例えばトランズウェル（コーニング社製の商品名）のインサート容器筒の底にあって例えばポアサイズ３．０μｍでありコラーゲンコートされたポリテトラフルオロエチレン製のメンブレン上で、肝癌細胞例えばＨｅｐＧ２細胞のような肝細胞である細胞１２ａを、播種する。

雑菌が混入しないように蓋３０で覆いつつ、播種した細胞１２ａごと多孔質プラスチックフィルム１３上で、インサート容器筒１１の筒内部に通常の培養液、例えばＤＭＥＭを入れて、培養する。１日後、培養液を交換して、胆汁酸として例えばコール酸、デオキシコール酸、タウロコール酸、ケノデオキシコール酸、タウロケノデオキシコール酸、グリコデオキシコール酸、タウロウルソデオキシコール酸、又はリトコール酸を１００μＭの濃度で含有させたこと以外は同様な培養液で細胞１２ａを１～４週間、例えば７日目、１４日目、又は２１日目まで培養し、適宜例えば４日目、７日目、１０日目１４日目など適当な時期に同様の胆汁酸含有培養液と交換して細胞１２ａを培養し続けると、細胞１２ａは増殖しつつ多孔質プラスチックフィルム１３で、膜状細胞層１２になり、肝細胞培養膜１４が形成される。

この膜状細胞層１２は、細胞１２ａが単層に隙間なく並んで増殖した単層膜状のものである。これにより、膜状細胞層１２と多孔質プラスチックフィルム１３とからなる肝細胞培養膜１４が形成される。この膜状細胞層１２は、膜状細胞層１２の下側即ち多孔質プラスチックフィルム１３側で血管側となり、膜状細胞層１２の上側即ち多孔質プラスチックフィルム１３と反対側で胆管側となる配向性を有している。多孔質プラスチックフィルム１３は、肝臓からの胆汁排泄と全身移行との何れかに優位に入るか検討すべき測定対象薬物が溶解した被検液から、その薬物は、多孔質プラスチックフィルム１３を表裏何れでも自在に透過するが、膜状細胞層１２の配向性のために、血液側Ｂから胆管側Ａへの向きの方が胆管側Ａから血液側Ｂへの向きよりも透過し易いものとなっている。このことにより、配向性を有した肝細胞培養膜を形成した肝細胞培養膜担持インサート容器１０が、調製される。

もう一つの工程は、ウェルプレート２０を準備して調製する工程である。具体的には、肝細胞培養膜担持インサート容器１を挿入するウェル２１を有しており、薬物輸送能評価の際に肝細胞培養膜１４が浸漬される第二被検液を収めるための空のウェルプレート２０を準備する。このようなウェルプレート２０は、例えばトランズウェル（コーニング社製の商品名）の１ウェル、６ウェル、１２ウェル又は２４ウェルのような多ウェルを有する市販のウェルプレートである。

これにより、肝細胞培養膜担持インサート容器１０とウェルプレート２０とからなる薬物輸送能評価キット１が作製される。

引き続き、薬物輸送能を評価するため、血液側輸送量測定工程、及び胆管側輸送量測定工程を行ってから、薬物輸送能算出工程を行う。具体的には、薬物輸送能評価方法を行う用時となる培養７日目に、肝細胞培養膜担持インサート容器１０のインサート容器筒１１の中空に溜まった培養液を取り出す。

次いで、血液側輸送量測定工程を次のようにして行う。薬物輸送能の測定対象薬物を、緩衝液に含有させて、第一被検液１５を調製する。肝細胞培養膜担持インサート容器１０に、薬物輸送能の測定対象薬物を含有させた第一被検液１５を、膜状細胞層１２が剥がれないようにゆっくりと注ぎ込んで、収める。一方、測定対象薬物を含有しない緩衝液のみからなる第二被検液２５を調製する。ウェルプレート２０のウェル２１に、第二被検液２５を注ぎ込んで、収め、肝細胞培養膜１４を第二被検液２５に浸漬する。その後、胆管側Ａから血液側Ｂへの測定対象薬物の輸送量を測定する。測定には、第一被検液１５中の測定対象薬物の濃度と、第二被検液２５中の測定対象薬物の濃度とを、測定し、血液側への輸送量を定量する。例えば測定対象薬物が、トランスポーターＰ－ｇｐの標準的な基質であって蛍光物質であるＲｈｏ１２３であると、蛍光量から、濃度を測定する。

次いで、胆管側輸送量測定工程を次のようにして行う。同一の肝細胞培養膜担持インサート容器１０とウェルプレート２０とを用いてインサート容器筒１１の中空及びウェル２１を緩衝液で洗浄し、又は新たに別な肝細胞培養膜担持インサート容器１０とウェルプレート２０を準備する。測定対象薬物を含有しない緩衝液のみからなる別な第一被検液１５を調製し、肝細胞培養膜担持インサート容器１０に、膜状細胞層１２が剥がれないようにゆっくりと注ぎ込んで、収める。一方、薬物輸送能の測定対象薬物を、緩衝液に含有させて、別な第二被検液２５を調製する。ウェルプレート２０のウェル２１に、第二被検液２５を注ぎ込んで、収め、肝細胞培養膜１４を第二被検液２５に浸漬する。その後、血液側Ｂから胆管側Ａへの測定対象薬物の輸送量を、同様にして測定する。輸送量の測定は、濃度－面積の検量線を用いた高速液体クロマトグラフィーによる定量であってもよく、ＬＣ－ＭＳ／ＭＳを用いた定量であってもよく、比色定量例えば蛍光吸収による比色定量であってもよい。放射性同位体による測定であってもよい。測定感度は、測定方法に依る。

最後に、薬物輸送能算出工程を、次のようにして行う。胆管側Ａから血液側Ｂへの測定対象薬物の輸送量と、血液側Ｂから胆管側Ａへの測定対象薬物の輸送量の比を算出する。具体的には、複数例（例えばｎ＝３）で、胆管側Ａから血液側Ｂへの測定対象薬物の輸送量と、血液側Ｂから胆管側Ａへの測定対象薬物の輸送量とを、所定時間毎例えば１５分毎に測定し、横軸を時間、縦軸を胆管側Ａから血液側Ｂへの輸送量とする一次近似式から、傾き_ＡｔｏＢを求めて細胞の単位面積当たりの輸送速度（ｃｍ／ｓｅｃ）を算出し、一方、同様にして横軸を時間、縦軸を血液側Ｂから胆管側Ａへの輸送量とする一次近似式から傾き_ＢｔｏＡを求めて細胞の単位面積当たりの輸送速度（ｃｍ／ｓｅｃ）を算出する。それらの傾きの比即ち（傾き_ＢｔｏＡ）／（傾き_ＡｔｏＢ）を算出して、測定対象薬の薬物輸送能を求める。

以下、本発明の肝細胞培養膜、それを備えた薬物輸送能評価キットを調製し、それを用いて薬物輸送能評価方法を行った実施例について、以下に詳細に述べる。

（実施例１）
図２に示すようにして、ＨｅｐＧ２細胞（ＪＣＲＢ）を用いた例について、肝細胞培養膜1４、薬物輸送能評価キット１、薬物輸送能評価方法の具体的な実施例を以下に示す。
［材料］
試薬として、ＤＭＥＭ（ｈｉｇｈｇｌｕｃｏｓｅ）（富士フィルム和光純薬株式会社製）、ＦＢＳ（ｂｉｏｓｅｒａ社製）、デオキシコール酸（富士フィルム和光純薬株式会社製）、ＢＳＰ（ＭＰＢｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｓ社製）を用いた。
［細胞培養］
ＨｅｐＧ２は、ＤＭＥＭに１０％のＦＢＳを添加した培地で培養した。１２ウェルインサートにおよそ２×１０^５個／ｃｍ^２で播種をし、播種後１日と４日目に胆管側のみ胆汁酸１００μＭを添加した培地に交換、血管側は培地を交換した。培養７日目に以下の実験に使用した。
［輸送実験］
トランスポートバッファーはＨＢＳＳ－ＨＥＰＥＳ（ｐＨ７．４）を使用した。
基質薬物は、２４μＭＢＳＰとした。
培養したプレートを膜上細胞層形成の確認のため、ＭｉｌｌｉｃｅｌｌＥＲＭ２（ＭｅｒｃｋＭｉｌｌｉｐｏｒｅ社製）を用いて膜抵抗値を測定した。
ウェルインサートを０．９％ＮａＣｌで洗浄した。
トランスポーターの基質薬物（ＢＳＰ）を輸送物質とし、Ａ側からＢ側の輸送の場合は基質薬物を第一被検液とし、トランスポートバッファーを第二被検液とした。Ｂ側からＡ側の輸送の場合はトランスポートバッファーを第一被検液とし、基質薬物を第二被検液とした。作業は３７℃水浴上で行った。
バッファー量は１２ｗｅｌｌインサートの場合は第一被検液０．５ｍＬ、第二被検液１．５ｍＬとした。
輸送薬物を添加した反対側から、１５、３０、４５、６０分後、液量の１０％を採取した。その都度採取した等量のバッファーを添加した。
採取したサンプルについて、ＨＰＬＣ（株式会社島津製作所製、商品名：ＤＩＯＤＥＡＲＲＡＹＤＥＴＥＣＴＯＲＳＰＤ－Ｍ２０Ａを検出器とするシステム一式）を用いて濃度を測定した。
［計算法］
得られた濃度より、それぞれの輸送方向（ＡｔｏＢ，ＢｔｏＡ）の輸送速度（Ｐ（ｃｍ／ｓｅｃ））を算出し、Ｅｆｆｌｕｘｒａｔｉｏ（ＢｔｏＡのＰ／ＡｔｏＢのＰ）を算出した。計算法は以下の通りである。

（数式（３）中、Ｑ：物質量（ｍｏｌ）、ｔ：時間（ｓｅｃ）、Ａ：肝細胞培養膜面積（ｃｍ^２）、Ｃ_０：添加濃度（μＭ）である）

その結果を表１に示す。

（実施例２）
ＨｕＨ－７細胞（ＪＣＲＢ）を用いた例について、実施例１に準じて行った実施例について、以下に詳細に示す。
［材料］
試薬として、ＤＭＥＭ（ｌｏｗｇｌｕｃｏｓｅ）（ＳＩＧＭＡ社製）、Ｒｈｏ１２３（ＳＩＧＭＡ社製）、ベラパミル（富士フィルム和光純薬株式会社製）、その他の材料は、実施例１に準じた。
[細胞培養]
ＨｕＨ－７は、ＤＭＥＭ（ｌｏｗｇｌｕｃｏｓｅ）に１０％のＦＢＳを添加した培地で培養した。
２４ウェルインサートにおよそ２×１０^５個／ｃｍ^２で播種をし、播種後１日と４日目に培地交換を行った。培養７日目に以下の実験に使用した。
[輸送実験]
基質薬物は１０μＭＲｈｏ１２３とし、阻害物質は１００μＭベラパミルとした。
培養したプレートを膜上細胞層形成の確認のため、ＭｉｌｌｉｃｅｌｌＥＲＭ２（ＭｅｒｃｋＭｉｌｌｉｐｏｒｅ社製）を用いて膜抵抗値を測定した。
ウェルインサートを０．９％ＮａＣｌで洗浄した。
阻害剤無添加の場合にはトランスポートバッファーを第一被検液、第二被検液として、３７℃水浴上で１０分間インキュベートした。
その後、トランスポーターの基質薬物（Ｒｈｏ１２３）を輸送物質とし、Ａ側からＢ側の輸送の場合は基質薬物を第一被検液とし、トランスポートバッファーを第二被検液とした。Ｂ側からＡ側の輸送の場合はトランスポートバッファーを第一被検液とし、基質薬物を第二被検液とした。
阻害剤を添加する場合は、阻害物質を含む溶液を第一被検液、第二被検液として、３７℃水浴上で１０分間インキュベートした。
その後、Ａ側からＢ側の輸送の場合は基質薬物と阻害物質を含む溶液を第一被検液とし、阻害物質を含むトランスポートバッファーを第二被検液とした。Ｂ側からＡ側の輸送の場合は阻害物質を含むトランスポートバッファーを第一被検液とし、基質薬物と阻害物質を含む溶液を第二被検液とした。
すべての作業は３７℃水浴上で行った。
採取したサンプルについて蛍光プレートリーダー（ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ社製、製品名：ＡＲＶＯＭＸ）励起波長４８５ｎｍ／蛍光波長５３５ｎｍで測定した。
その他の条件は実施例１に準じた。
[計算法]
得られた濃度より、それぞれの輸送方向（ＡｔｏＢ、ＢｔｏＡ）の輸送速度（Ｐ（ｃｍ／ｓｅｃ））を算出し、Ｅｆｆｌｕｘｒａｔｉｏ（ＢｔｏＡのＰ／ＡｔｏＢのＰ）を算出した。さらに基質薬物のみのときのＥｆｆｌｕｘｒａｔｉｏ（ＥＲ_ｎ）を阻害物質存在下でのＥｆｆｌｕｘｒａｔｉｏ（ＥＲ_ｉ）で割った値を算出した。計算法は、以下の通りである。

（数式（３）中、n：インヒビター無添加、i：インヒビター添加を示す）
その結果を表１に示す。

表１から明らかな通り、実施例１及び２の肝細胞培養膜、それを備えた薬物輸送能評価キット、それを用いた薬物輸送能評価方法によれば、肝臓からの胆汁排泄と全身移行との何れかに優位に入るかについて、in vitroの実験系で、in vivo特にヒトでの動態に対応したモデルとして、適切かつ簡便で迅速に調べることができることが、確かめられた。

本発明の肝細胞培養膜、それを備えた薬物輸送能評価キット、それを用いた薬物輸送能評価方法は、薬物の体内動態を検討するのに用いられる。

１は薬物輸送能評価キット、１０は肝細胞培養膜担持インサート容器、１１はインサート容器筒、１２は膜状細胞層、１２ａは細胞、１３は多孔質プラスチックフィルム、１４は肝細胞培養膜、１５は第一被検液、２０はウェルプレート、２１はウェル、２５は第二被検液、３０は蓋、Ａは胆管側、Ｂは血管側である。

Claims

肝癌細胞と、胆管癌細胞と、遊離肝細胞と、動物由来ヒト化新鮮肝細胞との少なくとも何れかの細胞が、多孔質プラスチックフィルム上で隙間なく並んで単層の膜状に培養された膜状細胞層を形成しており、前記細胞が、前記膜状細胞層の下側で血管側となり、前記膜状細胞層の上側で胆管側となる配向性を有していることを特徴とする単層の膜状細胞層と多孔質プラスチックフィルムとからなる肝細胞培養膜。
請求項１に記載の肝細胞培養膜が底に設けられており第一被検液を収める肝細胞培養膜担持インサート容器と、前記肝細胞培養膜担持インサート容器が挿入されているウェルを有しており前記肝細胞培養膜が浸漬される第二被検液を収めるウェルプレートとを、備えていることを特徴とする薬物輸送能評価キット。
前記多孔質プラスチックフィルムが、含フッ素樹脂、ポリカーボネート、ポリオレフィン、ポリエステル、ポリウレタン、ポリアミド、ポリイミド、セルロース、及び再生セルロースから選ばれる何れかのプラスチックで形成されていることを特徴とする請求項２に記載の薬物輸送能評価キット。
前記多孔質プラスチックフィルムが前記肝細胞の大きさよりも小さな多孔を有し、又はその多孔の開口部がパターン状に配列されていることを特徴とする請求項２に記載の薬物輸送能評価キット。
前記多孔質プラスチックフィルムが、コラーゲン、及び／又はフィブロネクチンでコーティングされていることを特徴とする請求項２に記載の薬物輸送能評価キット。
前記第一被検液と、前記第二被検液との少なくとも何れかに胆汁酸が含有されていることを特徴とする請求項２に記載の薬物輸送能評価キット。
請求項２～６の何れかに記載の薬物輸送能評価キットを用い、前記肝細胞培養膜担持インサート容器の内部の前記第一被検液と、前記肝細胞培養膜担持インサート容器の外部にあって前記ウェルプレートの前記ウェルの内部の前記第二被検液との何れかに、測定対象薬物を加え、前記膜状細胞層と前記多孔質プラスチックフィルムとの前記肝細胞培養膜を介して、前記測定対象薬物の輸送量を経時的に測定し、輸送速度を算出することにより、薬物輸送能を評価することを特徴とする薬物輸送能評価方法。
第一被検液を収めるインサート容器筒の底に設けられた多孔質プラスチックフィルム上で、肝癌細胞と、胆管癌細胞と、遊離肝細胞と、動物由来ヒト化新鮮肝細胞との少なくとも何れかの細胞を、播種し、隙間なく並んだ単層の膜状に培養して、膜状細胞層にすることにより、前記膜状細胞層が、前記膜状細胞層の下側で血管側となり、前記膜状細胞層の上側で胆管側となる配向性を有している肝細胞培養膜を形成して、肝細胞培養膜担持インサート容器を調製する工程と、
前記肝細胞培養膜担持インサート容器を挿入するウェルを有しており前記肝細胞培養膜が浸漬される第二被検液を収めるウェルプレートを調製する工程と、
前記肝細胞培養膜担持インサート容器に、薬物輸送能の測定対象薬物を含有させた前記第一被検液を収め、前記ウェルプレートの前記ウェルに、前記測定対象薬物を含有しない前記第二被検液を収め、前記肝細胞培養膜を前記第二被検液に浸漬した後、前記胆管側から前記血液側への前記測定対象薬物の輸送量を測定する血液側輸送量測定工程と、
前記肝細胞培養膜担持インサート容器に、前記測定対象薬物を含有しない前記第一被検液を収め、前記ウェルプレートの前記ウェルに、前記測定対象薬物を含有させた前記第二被検液を収め、前記肝細胞培養膜を前記第二被検液に浸漬した後、前記血液側から前記胆管側への前記測定対象薬物の輸送量を測定する胆管側輸送量測定工程と、
それぞれの輸送量を経時的に測定することで輸送速度を算出する工程と、
それら血液側輸送速度及び胆管側輸送速度の比を算出して、前記測定対象薬の薬物輸送能を求める薬物輸送能算出工程とを、有していることを特徴とする薬物輸送能評価方法。
前記血液側輸送量測定工程中、さらに前記第一被検液と前記第二被検液とにトランスポーターのインヒビターを添加して行い、前記胆管側輸送量測定工程中、さらに前記第一被検液と前記第二被検液とにトランスポーターのインヒビターを添加して行い、それらについても胆管側輸送量測定工程を行い、前記薬物輸送能算出工程で、インヒビター未添加でのそれら血液側輸送速度及び胆管側輸送速度の比と、インヒビター添加でのそれら血液側輸送速度及び胆管側輸送速度の比との比を算出して、前記測定対象薬の薬物輸送能を求めることを特徴とする請求項８に記載の薬物輸送評価方法。
肝癌細胞と、胆管癌細胞と、遊離肝細胞と、動物由来ヒト化新鮮肝細胞との少なくとも何れかの細胞を、多孔質プラスチックフィルム上で培養して膜状細胞層を形成し、前記膜状細胞層の下側で血管側となり前記膜状細胞層の上側で胆管側となる配向性を発現させるための肝細胞培地であって、培養成分と、胆汁酸とを有していることを特徴とする、配向性増強肝細胞培地。