JP7052480B2 - 水晶体の硬化防止剤または治療剤の製造方法 - Google Patents
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Description
本発明は、水晶体の硬化を抑制する物質の製造方法に関する。
老視は、眼のピントを調節する力が衰えることにより起こり、近くのものを見る際に困難をきたした状況を指していうもので、俗に「老眼」とも呼ばれている。眼の水晶体は光を屈折させる組織であり、遠くを見る際には、水晶体の周りの筋肉が水晶体を引張ることによりその厚みを減少させ、逆に近くのものを見ようとするときは、周りの筋肉が緩み、水晶体の弾性により厚みが元に戻ることにより焦点を結ぶ。しかし、加齢とともに水晶体が硬化し弾性が失われていくことで、特に近くのピント調節が困難になり、老視をきたすこととなる。
ところで近年、再生医療の研究が盛んとなり、幹細胞を移植する細胞移植治療により様々な疾患の治療が可能であることが明らかとなってきた。間葉系幹細胞は、体性幹細胞の一種であり、間葉系の細胞、即ち、骨細胞、心筋細胞、軟骨細胞、脂肪細胞などへの分化能を有することから、骨や血管、心筋の再構築などの再生医療への応用が期待されている。こればかりでなく、間葉系幹細胞は抗炎症作用、免疫調節作用なども有することから、種々の自己免疫疾患や移植片対宿主病の治療などに既に利用されている。更に、慢性的な肝疾患である肝硬変に対しても、肝組織の線維化を抑制し改善効果があることが報告されている。
こうした中、細胞移植治療において生体内に移植された間葉系幹細胞は、細胞自身の増殖や分化により組織を再生するだけではないことが分かってきた。即ち、細胞から分泌される種々のサイトカイン等の生理活性物質が持つ多様な性質が、組織の再生や疾患部位の治癒に少なからず寄与していることが明らかにされてきた。
間葉系幹細胞をインビトロで培養した際には、培養液中にこうした生理活性物質が放出されることになる。そこで、間葉系幹細胞の培養に使用した培養液を回収し、細胞から放出される物質を多く含むこの培養液を利用して、組織を再生することに成功した例が報告されている。上田らは、ラットを用いた実験で、骨髄間葉系幹細胞の培養上清が骨の再生能力を持つことを示した（例えば、非特許文献１）。この中で、骨髄間葉系幹細胞の培養上清中には、インスリン様成長因子（ＩＧＦ）や血管内皮細胞増殖因子（ＶＥＧＦ）などが多く含まれており、これらの因子が組織の再生などに関わっていることが示唆されている。また、有村らは、骨髄間葉系幹細胞の培養上清が抗炎症作用を有し、腸炎の予防・治療効果を示すことを報告している（例えば、特許文献１）。
更に最近では、間葉系幹細胞から分泌される、エクソソームと呼ばれる小胞が、様々なタンパク質やＲＮＡを含み、これが間葉系幹細胞と同様の治療効果を持つことが報告されている（例えば、非特許文献２）。
Ｔｉｓｓｕｅ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ ＰａｒｔＡ．２０１２；１８：１４７９－１４８９
Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ Ｓｙｓｔｅｍ．２０１４；２９－２：１４１－１５１
上述のように、老視は水晶体が硬化し弾性が失われていくことで、近くのピント調節が困難になることが原因で発生する。しかし、現在までに老視に対する効果的な治療法や予防法は存在せず、新たに開発することが求められている。
本発明者は、上記課題に対し鋭意検討を行った結果、上記課題を解決できることを見出し、本発明を完成するに至った。
即ち、本願発明の概要は以下の通りである。
１． 以下の［ａ］から［ｃ］の工程を含む、水晶体の硬化防止剤または治療剤の製造方法。
［ａ］中空糸膜の内表面にヒト骨髄間葉系幹細胞を接着させる工程
［ｂ］前記中空糸膜の内腔および外腔に細胞培養液を灌流し、前記ヒト骨髄間葉系幹細胞を培養する工程
［ｃ］前記ヒト骨髄間葉系幹細胞を培養して得られた培養上清を回収する工程
２． ［ｄ］前記培養上清よりエクソソームを抽出する工程
［ｅ］前記エクソソームをリン酸緩衝生理食塩水に懸濁する工程
を含む、請求項１に記載の水晶体の硬化防止剤または治療剤の製造方法。
１． 以下の［ａ］から［ｃ］の工程を含む、水晶体の硬化防止剤または治療剤の製造方法。
［ａ］中空糸膜の内表面にヒト骨髄間葉系幹細胞を接着させる工程
［ｂ］前記中空糸膜の内腔および外腔に細胞培養液を灌流し、前記ヒト骨髄間葉系幹細胞を培養する工程
［ｃ］前記ヒト骨髄間葉系幹細胞を培養して得られた培養上清を回収する工程
２． ［ｄ］前記培養上清よりエクソソームを抽出する工程
［ｅ］前記エクソソームをリン酸緩衝生理食塩水に懸濁する工程
を含む、請求項１に記載の水晶体の硬化防止剤または治療剤の製造方法。
本発明により、水晶体の弾力性の低下および低下の進行を抑制することができる剤を簡便に製造することができる。
（間葉系幹細胞）
本発明において、間葉系幹細胞は、特に限定されるものではないが、骨髄由来間葉系幹細胞または脂肪組織由来間葉系幹細胞が好適である。また、プライマリー細胞に限らず、遺伝子改変等によって株化／不死化された間葉系幹細胞も用いることが出来る。動物種も特に限定されず、ヒト、マウス、ラット等のいずれの動物由来のものも使用できる。
本発明において、間葉系幹細胞は、特に限定されるものではないが、骨髄由来間葉系幹細胞または脂肪組織由来間葉系幹細胞が好適である。また、プライマリー細胞に限らず、遺伝子改変等によって株化／不死化された間葉系幹細胞も用いることが出来る。動物種も特に限定されず、ヒト、マウス、ラット等のいずれの動物由来のものも使用できる。
（間葉系幹細胞の培養上清）
本発明において、間葉系幹細胞の培養上清とは、細胞を一定期間（数時間から数日）培養した際に、細胞に直接または中空糸膜などを介して間接的に接触していた培養液を細胞と分離して得られるものを言う。培養液馴化培地、コンディションドメディウム（Ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ ｍｅｄｉｕｍ）などと同意である。
本発明において、間葉系幹細胞の培養上清とは、細胞を一定期間（数時間から数日）培養した際に、細胞に直接または中空糸膜などを介して間接的に接触していた培養液を細胞と分離して得られるものを言う。培養液馴化培地、コンディションドメディウム（Ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ ｍｅｄｉｕｍ）などと同意である。
（細胞培養液）
本発明において、培養上清の製造に用いる培養液の組成等は、特に限定されない。例えば、Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ Ｍｅｄｉｕｍ（ＤＭＥＭ）、Ｍｉｎｉｍｕｍ Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ Ｍｅｄｉｕｍ Ｅａｇｌｅ， Ａｌｐｈａ Ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ（αＭＥＭ）、Ｒｏｓｗｅｌｌ Ｐａｒｋ Ｍｅｍｏｒｉａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｍｅｄｉａ（ＲＰＭＩ）１６４０などを基礎培地とし、これに適宜、細胞増殖因子、ホルモン、動物血清などを添加することにより調製されたものが使用できる。
本発明において、培養上清の製造に用いる培養液の組成等は、特に限定されない。例えば、Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ Ｍｅｄｉｕｍ（ＤＭＥＭ）、Ｍｉｎｉｍｕｍ Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ Ｍｅｄｉｕｍ Ｅａｇｌｅ， Ａｌｐｈａ Ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ（αＭＥＭ）、Ｒｏｓｗｅｌｌ Ｐａｒｋ Ｍｅｍｏｒｉａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｍｅｄｉａ（ＲＰＭＩ）１６４０などを基礎培地とし、これに適宜、細胞増殖因子、ホルモン、動物血清などを添加することにより調製されたものが使用できる。
本発明において、細胞培養液は、場合によっては動物血清を含まないことが好ましいことがある。これは、動物血清には細胞増殖因子等の生理活性物質が豊富に含まれるため、時にはこれらの生理活性物質の存在が、培養上清を使用する際に目的の妨げとなったり、マイナスに作用する可能性があるためである。
本発明において、間葉系幹細胞を培養して培養上清を得るためには、中空糸膜を培養基材として収納した細胞培養容器を用いるのが好ましい。このような細胞培養容器は、容積効率を高くすることができるため省スペース化を図ることができるだけでなく、特定の構成を有する中空糸膜を用いることにより効率よく培養上清を回収することができる。
（中空糸膜）
本発明において、培養基材として用いる中空糸膜は、細胞を膜表面に保持でき、溶液や低分子の物質を透過させるような構造を有するものが好ましい。より詳しくは、培養上清成分は中空糸膜を透過しないが、培養液成分は中空糸膜を透過する構造（平均細孔径）を有するものが好ましい。具体的には、培養上清中の特にエクソソーム（およそ３０ｎｍ～１５０ｎｍ）は膜透過せず、培養液成分であるγ－グロブリン（およそ８．４ｎｍ）は膜透過する特性を有する中空糸膜が好ましい。そうすると、中空糸膜は、１０ｎｍ～３０ｎｍ程度の平均細孔径を有する限外ろ過膜を用いるのが好ましい。
本発明において、培養基材として用いる中空糸膜は、細胞を膜表面に保持でき、溶液や低分子の物質を透過させるような構造を有するものが好ましい。より詳しくは、培養上清成分は中空糸膜を透過しないが、培養液成分は中空糸膜を透過する構造（平均細孔径）を有するものが好ましい。具体的には、培養上清中の特にエクソソーム（およそ３０ｎｍ～１５０ｎｍ）は膜透過せず、培養液成分であるγ－グロブリン（およそ８．４ｎｍ）は膜透過する特性を有する中空糸膜が好ましい。そうすると、中空糸膜は、１０ｎｍ～３０ｎｍ程度の平均細孔径を有する限外ろ過膜を用いるのが好ましい。
前記中空糸膜を構成する材料としては、２－ヒドロキシエチルメタクリレートやポリメチルメタクリレート等のアクリル系樹脂、セルロースアセテートや再生セルロースなどのセルロース系樹脂、ポリスルホンやポリエーテルスルホンなどのポリスルホン系樹脂、ポリ乳酸やポリヒドロキシアルカノエート等のポリエステル系樹脂、ポリエチレンやポリプロピレン等のポリオレフィン系樹脂、ポリビニルアルコール、エポキシ樹脂、ポリアクリロニトリル、ポリフッ化ビニリデン、ポリスチレン、ポリアミドなどが好適に利用できる。また、これらの誘導体が主成分であっても良い。
本発明において、中空糸膜は、前記の素材に化学的に修飾を加えたものであっても良い。例えば、親水化処理されていてもよい。親水化処理された中空糸膜を用いることにより、培養細胞への培養液等の液体成分の供給が容易になる。中空糸膜を親水化処理する方法としては、例えば、中空糸膜をエチレン－ビニルアルコール共重合体等の親水性高分子や、グリセリン、エタノールで処理する方法が挙げられる。また、使用する細胞に応じて、中空糸膜への接着性向上のため、コラーゲンやフィブロネクチン等のコーティングを行っても良い。
本発明において、中空糸膜は、内径が小さすぎると培養容積が確保できないとか、培養細胞にストレスを与えることになるので１０μｍ以上が好ましい。一方、内径が大きすぎると容積効率が低下し中空糸膜培養容器のメリットを損なうことになるので２０００μｍ以下が好ましい。また、中空糸膜の膜厚は、培養液成分の透過性や膜強度を考慮すると、１０～２００μｍ程度が好ましい。
本発明において、間葉系幹細胞の培養上清を製造する方法は、例えば、中空糸膜を細胞培養基材として用い、中空糸膜の内腔側または外腔側で間葉系幹細胞を培養すればよい。具体的には、間葉系幹細胞を培養液等に縣濁した細胞懸濁液を中空糸膜の内腔に充填して、細胞を膜表面に接着させた後、培養液を中空糸膜の内腔側および外腔側に連続的または間欠的に灌流させる等して間葉系幹細胞の培養を行う。なお、間欠的な灌流とは、培養液の流れを一時的に止めたり進めたりする工程を繰り返すことを指す。ここで、流れを止めたり進めたりする間隔は特に制限されず、等間隔でも不規則でもよい。培養液は、細胞に必要な養分や酸素などを供給したり、逆に老廃物を排出する役割を有する。このようにして、一定期間培養を行った後の中空糸膜内腔側の培養液を回収すれば、間葉系幹細胞の培養上清液を得ることができる。
（細胞培養容器）
本発明において、間葉系幹細胞の培養上清の製造に用いる細胞培養容器は、４つの開口部を有する筒状容器に数本～数万本の中空糸膜を収納し、中空糸膜の両端を筒状容器に液密に接着固定することにより作製することができる。このような細胞培養容器は、単位容積あたりの培養面積を大きくすることができ、また培養操作を簡便化することができるため、効率よく細胞培養を実施することが出来る。
本発明において、間葉系幹細胞の培養上清の製造に用いる細胞培養容器は、４つの開口部を有する筒状容器に数本～数万本の中空糸膜を収納し、中空糸膜の両端を筒状容器に液密に接着固定することにより作製することができる。このような細胞培養容器は、単位容積あたりの培養面積を大きくすることができ、また培養操作を簡便化することができるため、効率よく細胞培養を実施することが出来る。
このような細胞培養容器の構成は特に限定されないが、例えば図１に示すように、４つの開口部（エンドポートおよびサイドポート）を有する筒状容器に中空糸膜が適宜必要な本数束ねられて収納されている形態が挙げられる。具体的には、細胞培養容器１において、複数の中空糸膜３は、両端において各中空糸膜の内腔と外腔を分離した状態で、かつ中空糸膜の中空部を閉塞しないようにシール材（例えば、ポリウレタン系ポッティング剤）８により筒状容器２端部に接着固定されている。すなわち、前記４つの開口部のうち、２つのエンドポート６ａおよび６ｂは、中空糸膜３の内腔（中空部）５と連通している。一方、前記開口部のうち、２つのサイドポート７ａおよび７ｂは、前記筒状容器２の内側であって、かつ前記中空糸膜の外側である空間（外腔側）４と連通しており、前記サイドポート７ａまたは７ｂの一方から導入された培養液などが外腔側４を通ってもう一方のサイドポート７ｂまたは７ａから導出されるように構成されている。
（細胞培養装置）
図２は、中空糸膜型細胞培養容器を用いる細胞培養装置の一例を示している。細胞培養容器１の中空糸膜内腔５に連通するエンドポート６ａには、導入口４０から間葉系幹細胞を含む細胞懸濁液を導入、送液するための流路および培養液貯留容器９から細胞培養液を送液するための流路が接続されている。また、細胞懸濁液と細胞培養液の流路を切替えられるように流路の途中にバルブ２０が設けられている。また、前記細胞培養容器１の中空糸膜内腔５に連通するエンドポート６ｂには、培養後の培養上清を排出するための流路が接続されており、流路の途中には流量調整用のバルブ２１および送液ポンプ３１、培養上清回収容器１１または排出口５０への流路を切替えるためのバルブ２２が設けられている。一方、細胞培養容器１の中空糸膜外腔４に連通するサイドポート７ａには、培養液貯留容器８から中空糸膜外腔４に培養液を送液するための流路が接続されている。また、中空糸膜外腔４に連通するサイドポート７ｂには、培養液を排出するための流路が接続されており、流路の途中には送液ポンプ３０が設けられており、排出された培養液を回収するための回収容器１０に接続されている。なお、本発明において、少なくとも培養液貯留容器８、９および流路、細胞培養容器１は、ＣＯ２インキュベータ内に設置されていることが好ましい。
図２は、中空糸膜型細胞培養容器を用いる細胞培養装置の一例を示している。細胞培養容器１の中空糸膜内腔５に連通するエンドポート６ａには、導入口４０から間葉系幹細胞を含む細胞懸濁液を導入、送液するための流路および培養液貯留容器９から細胞培養液を送液するための流路が接続されている。また、細胞懸濁液と細胞培養液の流路を切替えられるように流路の途中にバルブ２０が設けられている。また、前記細胞培養容器１の中空糸膜内腔５に連通するエンドポート６ｂには、培養後の培養上清を排出するための流路が接続されており、流路の途中には流量調整用のバルブ２１および送液ポンプ３１、培養上清回収容器１１または排出口５０への流路を切替えるためのバルブ２２が設けられている。一方、細胞培養容器１の中空糸膜外腔４に連通するサイドポート７ａには、培養液貯留容器８から中空糸膜外腔４に培養液を送液するための流路が接続されている。また、中空糸膜外腔４に連通するサイドポート７ｂには、培養液を排出するための流路が接続されており、流路の途中には送液ポンプ３０が設けられており、排出された培養液を回収するための回収容器１０に接続されている。なお、本発明において、少なくとも培養液貯留容器８、９および流路、細胞培養容器１は、ＣＯ２インキュベータ内に設置されていることが好ましい。
（培養上清の製造）
間葉系幹細胞を培養する場合、細胞培養容器の中空糸膜内腔に細胞懸濁液を導入して間葉系幹細胞を中空糸膜表面に接着させた後、中空糸膜内腔と外腔の両方に細胞培養液を流すことにより培養環境を整えながら間葉系幹細胞を培養する。すると、間葉系幹細胞は、培養液中に種々の分泌物（タンパク質、サイトカイン、エクソソーム）を放出するので、細胞培養液とともにこれらの分泌物を回収する。
間葉系幹細胞を培養する場合、細胞培養容器の中空糸膜内腔に細胞懸濁液を導入して間葉系幹細胞を中空糸膜表面に接着させた後、中空糸膜内腔と外腔の両方に細胞培養液を流すことにより培養環境を整えながら間葉系幹細胞を培養する。すると、間葉系幹細胞は、培養液中に種々の分泌物（タンパク質、サイトカイン、エクソソーム）を放出するので、細胞培養液とともにこれらの分泌物を回収する。
図２を参照して、培養上清の製造について説明する。導入口４０より細胞懸濁液を送液し、中空糸膜内腔５に細胞懸濁液を充填する。細胞懸濁液が充填された後、バルブ２０を閉の状態とする。中空糸膜内腔５に細胞懸濁液を充填した後、一定時間静置して中空糸膜表面に細胞を接着させる。一定時間静置後、培養液貯留容器９、中空糸膜内腔５、排出口５０が連通するようにバルブ２０、２１、２２を切替え、ポンプ３０および３１を起動して細胞培養容器の中空糸膜内腔５と中空糸膜外腔４の両方に細胞培養液を流す。このとき、培養液の流量は、細胞増殖度合いや環境に応じて調整することが好ましい。また、少なくとも細胞培養容器、培養液貯留容器およびそれらを繋ぐ流路は、温度およびＣＯ２濃度の制御機構を備えたインキュベータ内に設置する。数日間、培養を行った後、培養液貯留容器９の培養液を培養上清回収用の培養液に交換する。培養上清回収用の培養液に交換した後、バルブ２２を切替え、培養上清回収容器１１に培養上清を含む培養液を回収する。
培養液、特に中空糸膜内腔５を流れる培養液の流速は、細胞増殖度合いや環境に応じて、調整することが好ましい。細胞増殖度合いを調べる方法は、特に限定されないが、培養液中のグルコースや乳酸塩の濃度等の測定結果をもとに行うことが出来る。
本発明において、培養上清は、前記回収した培養液から間葉系幹細胞を除去したものを意味するが、前記培養上清から例えば、残存培地成分（培養前の培養液の成分のうち、培養後の培養液中に残存している成分）、培養液の水分などの本発明における水晶体組織の硬化防止または治療に寄与しない成分の少なくとも一部をさらに除去したものも、本発明における間葉系幹細胞の培養上清に含まれる。また、回収した培養液（培養上清）より抽出したエクソソームを含む懸濁液も水晶体の硬化防止剤または治療剤として用いることができる。
本発明において、培養上清からエクソソームを抽出する方法としては、ＰＳアフィニティ法、超遠心分離法、ポリマー沈殿法、表面抗原に対する表面抗原アフィニティ法などが挙げられ、いずれの方法も用いることができる。前記ＰＳアフィニティ法は、ホスファチジルセリン（ＰＳ）結合分子を用いてエクソソームを金属イオン依存的に捕捉した後、キレート剤により溶出する方法である。また、表面抗原アフィニティ法は、表面抗原に対する抗体アフィニティ法によりエクソソームを回収する方法である。本発明においては、ＰＳアフィニティ法を用いるのが好ましい。
また、培養上清またはエクソソーム懸濁液には、配合により好ましくない相互作用を生じない限り、他の活性成分、例えば、抗アレルギー又は抗ヒスタミン成分、充血除去成分、局所麻酔薬成分、ビタミン成分（ビタミンＡ、Ｂ群、Ｃ）、アミノ酸成分（バリン、ロイシン、イソロイシン、セリン、スレオニン、メチオニン、プロリン、フェニルアラニン、チロシン、トリプトファン、アスパラギン酸、グルタミン酸、リジン、ヒスチジン、シトルリン、オルニチン、シスチン、タウリン、グリシン）などをさらに含有していてもよい。そのような他の活性成分としては、自体公知の各種薬剤を適宜使用することができる。また、他の活性成分は、本発明の剤とは別個に製剤化し、同一対象に対して、同時又は時間差をおいて、また、同一経路又は別経路で投与してもよい。
（膜の平均細孔径）
作製した膜の平均細孔径の測定は、Ｐｏｒｏｕｓ Ｍａｔｅｒｉａｌｓ社製パームポロメーター（ＰＰＭ，ＣＦＰ－１２００ＡＥＸ）装置を用いて行った。試験タイプはＣａｐｉｌｌａｒｙ Ｆｌｏｗ ＰｏｒｏｍｅｔｒｙのＷｅｔ Ｕｐ／Ｄｒｙ Ｕｐとし、試液としてＧａｌＷｉｃｋ（表面張力１５．７ｄｙｎｅ／ｃｍ）を使用した。測定に用いる中空糸膜を、前記ＰＰＭで測定が可能となるように、専用の小エレメントへ加工した。装置付属の中空糸膜測定用サンプルホルダー（サンプル挿入口 開口部直径８．５ｍｍ）に合うように、外径８．５ｍｍ、厚み１ｍｍ、長さ４ｃｍの中空状のアクリルスリーブを準備した。スリーブ内に中空糸膜を通した後、該スリーブ内部を硬化性樹脂で埋めて硬化させた。該スリーブのホルダー挿入側については、該スリーブ端面から飛び出た分の中空糸膜を該スリーブ端面で硬化樹脂と共に裁断して中空糸膜の断面を出し、挿入側と逆側（膜サンプル測定側）については、該スリーブ端面（正確には硬化樹脂と中空糸膜との界面）から３ｃｍをわずかに超える長さを残し、余りの中空糸膜を切り落とした。中空糸膜の有効長さが３ｃｍとなるように、中空糸膜の先端に硬化性樹脂を塗布して封止し、測定用の小エレメントを完成させた。下記の測定パラメーター（自動試験パラメーター値）をＰＰＭ付属の測定用ソフトに入力後、よく乾燥している小エレメントを前述のサンプルホルダーに挿入・固定し、さらに該ホルダーをＰＰＭにセットした。測定は、まずＤｒｙ下で実施し、その後、膜サンプルをＧａｌＷｉｃｋに１０分間浸漬させてから、Ｗｅｔ下での測定を実施した。
＜細孔直径分布測定試験の自動試験パラメーター値＞
（０）最小圧力 ０（ＫＰＡ）、最大圧力 ３００（ＫＰＡ）、２０００００ ｍａｘｆｌｏｗ（ｃｃ／ｍ）
（１）バブルポイント試験／インテグリティ試験；１５．０ ｂｕｂｌｆｌｏｗ（ｃｃ／ｍ）、１００ Ｆ／ＰＴ（ｏｌｄ ｂｕｂｌｔｉｍｅ）、０．００ ｍｉｎｂｐｐｒｅｓ（ＫＰＡ）、１．０ ｚｅｒｏｔｉｍｅ（ｓｅｃ）
（２）モータバルブ制御；３ ｖ２ｉｎｃｒ（ｃｔｓ＊３）
（３）レギュレータ制御；１ ｐｒｅｇｉｎｃ、２ ｐｕｌｓｅ ｄｅｌａｙ
（４）Ｌｏｈｍの校正；１３３０．６８３４６ ｍａｘｐｒｅｓ（ＫＰＡ）、０．０７０ ｐｕｌｓｅｗｉｄｔｈ（ｓｅｃ）
（５）データ確定ルーチン；３０ ｍｉｎｅｑｔｉｍｅ（ｓｅｃ）、５０ ｐｒｅｓｓｌｅｗ（ｃｔｓ＊３）、５０ ｆｌｏｗｓｌｅｗ（ｃｔｓ＊３）、５０ ｅｑｉｔｅｒ（０．１ｓｅｃ）、５ ａｖｅｉｔｅｒ（０．１ｓｅｃ）、０．６９ ｍａｘｐｄｉｆ（ＫＰＡ）、３０．０ ｍａｘｆｄｉｆ（ｃｃ／ｍ）
なお、ｃｔｓは機械定数で「カウント数」を表し、ｃｔｓ＊３はｃｔｓを３倍することを意味する。
作製した膜の平均細孔径の測定は、Ｐｏｒｏｕｓ Ｍａｔｅｒｉａｌｓ社製パームポロメーター（ＰＰＭ，ＣＦＰ－１２００ＡＥＸ）装置を用いて行った。試験タイプはＣａｐｉｌｌａｒｙ Ｆｌｏｗ ＰｏｒｏｍｅｔｒｙのＷｅｔ Ｕｐ／Ｄｒｙ Ｕｐとし、試液としてＧａｌＷｉｃｋ（表面張力１５．７ｄｙｎｅ／ｃｍ）を使用した。測定に用いる中空糸膜を、前記ＰＰＭで測定が可能となるように、専用の小エレメントへ加工した。装置付属の中空糸膜測定用サンプルホルダー（サンプル挿入口 開口部直径８．５ｍｍ）に合うように、外径８．５ｍｍ、厚み１ｍｍ、長さ４ｃｍの中空状のアクリルスリーブを準備した。スリーブ内に中空糸膜を通した後、該スリーブ内部を硬化性樹脂で埋めて硬化させた。該スリーブのホルダー挿入側については、該スリーブ端面から飛び出た分の中空糸膜を該スリーブ端面で硬化樹脂と共に裁断して中空糸膜の断面を出し、挿入側と逆側（膜サンプル測定側）については、該スリーブ端面（正確には硬化樹脂と中空糸膜との界面）から３ｃｍをわずかに超える長さを残し、余りの中空糸膜を切り落とした。中空糸膜の有効長さが３ｃｍとなるように、中空糸膜の先端に硬化性樹脂を塗布して封止し、測定用の小エレメントを完成させた。下記の測定パラメーター（自動試験パラメーター値）をＰＰＭ付属の測定用ソフトに入力後、よく乾燥している小エレメントを前述のサンプルホルダーに挿入・固定し、さらに該ホルダーをＰＰＭにセットした。測定は、まずＤｒｙ下で実施し、その後、膜サンプルをＧａｌＷｉｃｋに１０分間浸漬させてから、Ｗｅｔ下での測定を実施した。
＜細孔直径分布測定試験の自動試験パラメーター値＞
（０）最小圧力 ０（ＫＰＡ）、最大圧力 ３００（ＫＰＡ）、２０００００ ｍａｘｆｌｏｗ（ｃｃ／ｍ）
（１）バブルポイント試験／インテグリティ試験；１５．０ ｂｕｂｌｆｌｏｗ（ｃｃ／ｍ）、１００ Ｆ／ＰＴ（ｏｌｄ ｂｕｂｌｔｉｍｅ）、０．００ ｍｉｎｂｐｐｒｅｓ（ＫＰＡ）、１．０ ｚｅｒｏｔｉｍｅ（ｓｅｃ）
（２）モータバルブ制御；３ ｖ２ｉｎｃｒ（ｃｔｓ＊３）
（３）レギュレータ制御；１ ｐｒｅｇｉｎｃ、２ ｐｕｌｓｅ ｄｅｌａｙ
（４）Ｌｏｈｍの校正；１３３０．６８３４６ ｍａｘｐｒｅｓ（ＫＰＡ）、０．０７０ ｐｕｌｓｅｗｉｄｔｈ（ｓｅｃ）
（５）データ確定ルーチン；３０ ｍｉｎｅｑｔｉｍｅ（ｓｅｃ）、５０ ｐｒｅｓｓｌｅｗ（ｃｔｓ＊３）、５０ ｆｌｏｗｓｌｅｗ（ｃｔｓ＊３）、５０ ｅｑｉｔｅｒ（０．１ｓｅｃ）、５ ａｖｅｉｔｅｒ（０．１ｓｅｃ）、０．６９ ｍａｘｐｄｉｆ（ＫＰＡ）、３０．０ ｍａｘｆｄｉｆ（ｃｃ／ｍ）
なお、ｃｔｓは機械定数で「カウント数」を表し、ｃｔｓ＊３はｃｔｓを３倍することを意味する。
（中空糸膜１の作製）
ポリエーテルスルホン（ＢＡＳＦ社製Ｕｌｔｒａｓｏｎ（登録商標）６０２０Ｐ）２６ｗｔ％、ビニルピロリドン／酢酸ビニル共重合体（ＢＡＳＦ社製Ｌｕｖｉｔｅｃ（登録商標）ＶＡ６４）１ｗｔ％、Ｎ－メチル－２－ピロリドン（ＮＭＰ、三菱化学社製）３２．８５ｗｔ％、トリエチレングリコール（ＴＥＧ、三井化学社製）４０．１５ｗｔ％を６０℃で混合、溶解し均一な溶液を得た。得られた製膜溶液を二重管ノズルの環状部から、中心部から芯液としてＮＭＰ４２．７５ｗｔ％、ＴＥＧ５２．２５ｗｔ％、ＲＯ水５ｗｔ％の混合液を吐出し、エアギャップを経て、ＮＭＰ２７ｗｔ％、ＴＥＧ３３ｗｔ％、ＲＯ水４０ｗｔ％の混合液からなる外部凝固液を満たした凝固浴に導いた。この際、ノズル温度は５５℃、外部凝固液の温度は２５℃に設定した。凝固浴から引き出した後に水洗槽を走行させて洗浄を実施し、巻取り機で巻き取った。巻き取った中空糸膜は、本数１００本、長さ３０ｃｍの中空糸膜束とし、８５℃のＲＯ水に直立状態で浸漬して洗浄処理を行った。その後、４０℃の温水を入れた高圧蒸気滅菌機に水没させ、１４０℃×２０ｍｉｎの条件で高圧熱水処理を行った。その後、庫内温度３５℃でマイクロ波乾燥を行った。前記高圧熱水処理及びマイクロ波乾燥を３回繰り返し、中空糸膜１を作製した。得られた中空糸膜１の内径は２５０μｍ、外径は３１０μｍ、膜厚は３０μｍであった。また、平均細孔径は１４ｎｍであった。
ポリエーテルスルホン（ＢＡＳＦ社製Ｕｌｔｒａｓｏｎ（登録商標）６０２０Ｐ）２６ｗｔ％、ビニルピロリドン／酢酸ビニル共重合体（ＢＡＳＦ社製Ｌｕｖｉｔｅｃ（登録商標）ＶＡ６４）１ｗｔ％、Ｎ－メチル－２－ピロリドン（ＮＭＰ、三菱化学社製）３２．８５ｗｔ％、トリエチレングリコール（ＴＥＧ、三井化学社製）４０．１５ｗｔ％を６０℃で混合、溶解し均一な溶液を得た。得られた製膜溶液を二重管ノズルの環状部から、中心部から芯液としてＮＭＰ４２．７５ｗｔ％、ＴＥＧ５２．２５ｗｔ％、ＲＯ水５ｗｔ％の混合液を吐出し、エアギャップを経て、ＮＭＰ２７ｗｔ％、ＴＥＧ３３ｗｔ％、ＲＯ水４０ｗｔ％の混合液からなる外部凝固液を満たした凝固浴に導いた。この際、ノズル温度は５５℃、外部凝固液の温度は２５℃に設定した。凝固浴から引き出した後に水洗槽を走行させて洗浄を実施し、巻取り機で巻き取った。巻き取った中空糸膜は、本数１００本、長さ３０ｃｍの中空糸膜束とし、８５℃のＲＯ水に直立状態で浸漬して洗浄処理を行った。その後、４０℃の温水を入れた高圧蒸気滅菌機に水没させ、１４０℃×２０ｍｉｎの条件で高圧熱水処理を行った。その後、庫内温度３５℃でマイクロ波乾燥を行った。前記高圧熱水処理及びマイクロ波乾燥を３回繰り返し、中空糸膜１を作製した。得られた中空糸膜１の内径は２５０μｍ、外径は３１０μｍ、膜厚は３０μｍであった。また、平均細孔径は１４ｎｍであった。
（中空糸膜２の作製）
セルローストリアセテート（ＣＴＡ、ダイセル化学社製）１９ｗｔ％、ＮＭＰ５６．７ｗｔ％、ＴＥＧ２４．３ｗｔ％を混合、溶解し製膜溶液を得た。得られた製膜溶液を二重管ノズルの環状部から、芯液として流動パラフィンを中心部から吐出し、エアギャップを経て、ＮＭＰ１４ｗｔ％、ＴＥＧ６ｗｔ％、ＲＯ水８０ｗｔ％の混合液からなる外部凝固液を満たした凝固浴に導いた。この際、ノズル温度は１１０℃、外部凝固液の温度は３０℃に設定した。凝固浴から引き出した後に水洗槽を走行させて洗浄を実施し、５０℃、６０ｗｔ％のグリセリン浴を通過させ、乾燥して巻取り機に巻取り、中空糸膜２を作製した。得られた中空糸膜２の内径は２５０μｍ、外径は２８０μｍ、膜厚は１５μｍであった。また、平均細孔径は２０ｎｍであった。
セルローストリアセテート（ＣＴＡ、ダイセル化学社製）１９ｗｔ％、ＮＭＰ５６．７ｗｔ％、ＴＥＧ２４．３ｗｔ％を混合、溶解し製膜溶液を得た。得られた製膜溶液を二重管ノズルの環状部から、芯液として流動パラフィンを中心部から吐出し、エアギャップを経て、ＮＭＰ１４ｗｔ％、ＴＥＧ６ｗｔ％、ＲＯ水８０ｗｔ％の混合液からなる外部凝固液を満たした凝固浴に導いた。この際、ノズル温度は１１０℃、外部凝固液の温度は３０℃に設定した。凝固浴から引き出した後に水洗槽を走行させて洗浄を実施し、５０℃、６０ｗｔ％のグリセリン浴を通過させ、乾燥して巻取り機に巻取り、中空糸膜２を作製した。得られた中空糸膜２の内径は２５０μｍ、外径は２８０μｍ、膜厚は１５μｍであった。また、平均細孔径は２０ｎｍであった。
（中空糸膜３の作製）
ＣＴＡ１８ｗｔ％、ＮＭＰ６９．７ｗｔ％、ＴＥＧ１２．３ｗｔ％を混合、溶解し製膜溶液を得た。得られた製膜溶液を二重管ノズルの環状部から、芯液として水を中心部から吐出し、エアギャップを経て、ＮＭＰ２５．５ｗｔ％、ＴＥＧ４．５ｗｔ％、ＲＯ水７０ｗｔ％の混合液からなる外部凝固液を満たした４５℃の凝固浴に導いた。凝固浴から引き出した後に水洗槽を走行させて洗浄を実施し、５０℃、６０ｗｔ％のグリセリン浴を通過させ、乾燥して巻取り機に巻取った。得られた中空糸膜３の内径は２５０μｍ、外径は３００μｍ、膜厚は２５μｍであった。また、平均細孔径は１０ｎｍであった。
ＣＴＡ１８ｗｔ％、ＮＭＰ６９．７ｗｔ％、ＴＥＧ１２．３ｗｔ％を混合、溶解し製膜溶液を得た。得られた製膜溶液を二重管ノズルの環状部から、芯液として水を中心部から吐出し、エアギャップを経て、ＮＭＰ２５．５ｗｔ％、ＴＥＧ４．５ｗｔ％、ＲＯ水７０ｗｔ％の混合液からなる外部凝固液を満たした４５℃の凝固浴に導いた。凝固浴から引き出した後に水洗槽を走行させて洗浄を実施し、５０℃、６０ｗｔ％のグリセリン浴を通過させ、乾燥して巻取り機に巻取った。得られた中空糸膜３の内径は２５０μｍ、外径は３００μｍ、膜厚は２５μｍであった。また、平均細孔径は１０ｎｍであった。
（中空糸膜４の作製）
ＣＴＡ１７．５ｗｔ％、ＮＭＰ５７．７５ｗｔ％、ＴＥＧ２４．７５ｗｔ％を混合、溶解し製膜溶液を得た。得られた製膜溶液を二重管ノズルの環状部から、芯液として流動パラフィンを中心部から吐出し、エアギャップを経て、ＮＭＰ１４ｗｔ％、ＴＥＧ６ｗｔ％、ＲＯ水８０ｗｔ％の混合液からなる外部凝固液を満たした凝固浴に導いた。この際、ノズル温度は１２５℃、外部凝固液の温度は３０℃に設定した。凝固浴から引き出した後に３０℃の水洗槽を走行させて洗浄を実施し、５０℃、６０ｗｔ％のグリセリン浴を通過させ、乾燥して巻取り機に巻き取った。得られた中空糸膜４の内径は２５０μｍ、外径は２９０μｍ、膜厚は２０μｍであった。また、平均細孔径は３３ｎｍであった。
ＣＴＡ１７．５ｗｔ％、ＮＭＰ５７．７５ｗｔ％、ＴＥＧ２４．７５ｗｔ％を混合、溶解し製膜溶液を得た。得られた製膜溶液を二重管ノズルの環状部から、芯液として流動パラフィンを中心部から吐出し、エアギャップを経て、ＮＭＰ１４ｗｔ％、ＴＥＧ６ｗｔ％、ＲＯ水８０ｗｔ％の混合液からなる外部凝固液を満たした凝固浴に導いた。この際、ノズル温度は１２５℃、外部凝固液の温度は３０℃に設定した。凝固浴から引き出した後に３０℃の水洗槽を走行させて洗浄を実施し、５０℃、６０ｗｔ％のグリセリン浴を通過させ、乾燥して巻取り機に巻き取った。得られた中空糸膜４の内径は２５０μｍ、外径は２９０μｍ、膜厚は２０μｍであった。また、平均細孔径は３３ｎｍであった。
（中空糸膜５の作製）
ポリエーテルスルホン４２．５ｗｔ％、ポリビニルピロリドン（ＢＡＳＦ社製コリドンＫ－９０）４．５ｗｔ％、ＴＥＧ２１．２ｗｔ％、ＮＭＰ３１．８ｗｔ％を混合、溶解し製膜溶液を得た。得られた製膜溶液を二重管ノズルの環状部から、芯液として流動パラフィンを中心部から吐出し、エアギャップを経て、５℃の６５重量％ＮＭＰ３９ｗｔ％、ＴＥＧ２６ｗｔ％、ＲＯ水３５ｗｔ％の混合液からなる５℃の外部凝固液を満たした凝固浴に導いた。凝固浴から引き出した後に６５℃の水洗槽を走行させて洗浄を実施し、８５℃、６０ｗｔ％のグリセリン浴を通過させ、乾燥して巻取り機に巻取った。得られた中空糸膜５の内径は２５０μｍ、外径は２８４μｍ、膜厚は１７μｍであった。また、平均細孔径は３ｎｍであった。
ポリエーテルスルホン４２．５ｗｔ％、ポリビニルピロリドン（ＢＡＳＦ社製コリドンＫ－９０）４．５ｗｔ％、ＴＥＧ２１．２ｗｔ％、ＮＭＰ３１．８ｗｔ％を混合、溶解し製膜溶液を得た。得られた製膜溶液を二重管ノズルの環状部から、芯液として流動パラフィンを中心部から吐出し、エアギャップを経て、５℃の６５重量％ＮＭＰ３９ｗｔ％、ＴＥＧ２６ｗｔ％、ＲＯ水３５ｗｔ％の混合液からなる５℃の外部凝固液を満たした凝固浴に導いた。凝固浴から引き出した後に６５℃の水洗槽を走行させて洗浄を実施し、８５℃、６０ｗｔ％のグリセリン浴を通過させ、乾燥して巻取り機に巻取った。得られた中空糸膜５の内径は２５０μｍ、外径は２８４μｍ、膜厚は１７μｍであった。また、平均細孔径は３ｎｍであった。
［実施例１］
内表面に予めコラーゲン（新田ゼラチン）をコートした中空糸膜１を用いて図１に示す細胞培養容器を作製した。また、得られた細胞培養容器を用いて図２に示す細胞培養装置を構成し、ＣＯ２インキュベータ内に設置し、本実験を行った。ヒト骨髄間葉系幹細胞（ＣＥＬＬ ＡＰＰＬＩＣＡＴＩＯＮＳ Ｉｎｃ．）を培養液に懸濁した溶液を中空糸膜内腔に注入（播種細胞数は、５．０×１０＾５ｃｅｌｌｓ／モジュール）した。このとき、細胞培養容器内の総培養面積（中空糸膜の内径基準の膜面積）は９８ｃｍ２であることから細胞播種密度は、約５１００ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２と計算された。培養液は、培養開始（細胞播種）から９６時間後までは、１０％ウシ胎児血清（ライフテクノロジーズ）を添加したＤＭＥＭＧｌｕｔａＭＡＸ（ライフテクノロジーズ）を用い、培養上清を採取する９６時間以降は、ＭＦ－ｍｅｄｉｕｍ（間葉系幹細胞増殖培地、東洋紡）を用いた。
内表面に予めコラーゲン（新田ゼラチン）をコートした中空糸膜１を用いて図１に示す細胞培養容器を作製した。また、得られた細胞培養容器を用いて図２に示す細胞培養装置を構成し、ＣＯ２インキュベータ内に設置し、本実験を行った。ヒト骨髄間葉系幹細胞（ＣＥＬＬ ＡＰＰＬＩＣＡＴＩＯＮＳ Ｉｎｃ．）を培養液に懸濁した溶液を中空糸膜内腔に注入（播種細胞数は、５．０×１０＾５ｃｅｌｌｓ／モジュール）した。このとき、細胞培養容器内の総培養面積（中空糸膜の内径基準の膜面積）は９８ｃｍ２であることから細胞播種密度は、約５１００ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２と計算された。培養液は、培養開始（細胞播種）から９６時間後までは、１０％ウシ胎児血清（ライフテクノロジーズ）を添加したＤＭＥＭＧｌｕｔａＭＡＸ（ライフテクノロジーズ）を用い、培養上清を採取する９６時間以降は、ＭＦ－ｍｅｄｉｕｍ（間葉系幹細胞増殖培地、東洋紡）を用いた。
図３に、培養上清作製のスケジュールを示す。
細胞播種（培養開始）から７日間（１６８時間後）培養を実施した。この間、中空糸膜内腔を流れる培養液の流速（線速度）は、細胞播種を行ってから９６時間までは、平均０．０６６ｍｍ／ｍｉｎ、９６時間後から１４４時間までは、平均０．２０ｍｍ／ｍｉｎ、１４４時間後から１６８時間までは、平均０．３３ｍｍ／ｍｉｎとした。一方、中空糸膜外腔を流れる培養液の速度は、培養開始から終了（１６８時間）まで、３．４ｍｍ／ｍｉｎとした。細胞培養上清は、培養開始９６時間後から１６８時間までの７２時間分を回収した。培養上清の量は、計７．９ｍｌであった。培養上清は回収後ただちに分注し、使用まで－８０℃に凍結保存した。尚、流速については、中空糸膜内腔、外腔それぞれから流出する流量を流量計を設置して測定し、中空糸膜内腔容積および中空糸膜外腔容積をもとに算出した。培養から１６８時間後に細胞をトリプシンで消化、剥離回収し、細胞数をカウントした結果、１．３×１０＾７個の細胞が回収され、増殖率は２６倍であった。
細胞播種（培養開始）から７日間（１６８時間後）培養を実施した。この間、中空糸膜内腔を流れる培養液の流速（線速度）は、細胞播種を行ってから９６時間までは、平均０．０６６ｍｍ／ｍｉｎ、９６時間後から１４４時間までは、平均０．２０ｍｍ／ｍｉｎ、１４４時間後から１６８時間までは、平均０．３３ｍｍ／ｍｉｎとした。一方、中空糸膜外腔を流れる培養液の速度は、培養開始から終了（１６８時間）まで、３．４ｍｍ／ｍｉｎとした。細胞培養上清は、培養開始９６時間後から１６８時間までの７２時間分を回収した。培養上清の量は、計７．９ｍｌであった。培養上清は回収後ただちに分注し、使用まで－８０℃に凍結保存した。尚、流速については、中空糸膜内腔、外腔それぞれから流出する流量を流量計を設置して測定し、中空糸膜内腔容積および中空糸膜外腔容積をもとに算出した。培養から１６８時間後に細胞をトリプシンで消化、剥離回収し、細胞数をカウントした結果、１．３×１０＾７個の細胞が回収され、増殖率は２６倍であった。
［実施例２］
中空糸膜２を用いた以外は、実施例１と同様にして細胞培養実験を行った。なお、細胞培養容器内の総培養面積（中空糸膜の内径基準の膜面積）は９９ｃｍ２であることから、細胞播種密度は約５０５０ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２と計算された。
培養から１６８時間後に細胞をトリプシンで消化、剥離回収し、細胞数をカウントした結果、１．３×１０＾７個の細胞が回収され、増殖率は２６倍であった。
中空糸膜２を用いた以外は、実施例１と同様にして細胞培養実験を行った。なお、細胞培養容器内の総培養面積（中空糸膜の内径基準の膜面積）は９９ｃｍ２であることから、細胞播種密度は約５０５０ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２と計算された。
培養から１６８時間後に細胞をトリプシンで消化、剥離回収し、細胞数をカウントした結果、１．３×１０＾７個の細胞が回収され、増殖率は２６倍であった。
［実施例３］
中空糸膜３を用いた以外は、実施例１と同様にして細胞培養実験を行った。なお、細胞培養容器内の総培養面積（中空糸膜の内径基準の膜面積）は９９ｃｍ２であることから、細胞播種密度は約５０５０ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２と計算された。
培養から１６８時間後に細胞をトリプシンで消化、剥離回収し、細胞数をカウントした結果、１．５×１０＾７個の細胞が回収され、増殖率は３０倍であった。
中空糸膜３を用いた以外は、実施例１と同様にして細胞培養実験を行った。なお、細胞培養容器内の総培養面積（中空糸膜の内径基準の膜面積）は９９ｃｍ２であることから、細胞播種密度は約５０５０ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２と計算された。
培養から１６８時間後に細胞をトリプシンで消化、剥離回収し、細胞数をカウントした結果、１．５×１０＾７個の細胞が回収され、増殖率は３０倍であった。
［比較例１］
中空糸膜４を用いた以外は、実施例１と同様にして細胞培養実験を行った。なお、細胞培養容器内の総培養面積（中空糸膜の内径基準の膜面積）は９８ｃｍ２であることから、細胞播種密度は約５１００ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２と計算された。
培養から１６８時間後に細胞をトリプシンで消化、剥離回収し、細胞数をカウントした結果、１．３×１０＾７個の細胞が回収され、増殖率は２６倍であった。
中空糸膜４を用いた以外は、実施例１と同様にして細胞培養実験を行った。なお、細胞培養容器内の総培養面積（中空糸膜の内径基準の膜面積）は９８ｃｍ２であることから、細胞播種密度は約５１００ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２と計算された。
培養から１６８時間後に細胞をトリプシンで消化、剥離回収し、細胞数をカウントした結果、１．３×１０＾７個の細胞が回収され、増殖率は２６倍であった。
［比較例２］
中空糸膜５を用いた以外は、実施例１と同様にして細胞培養実験を行った。なお、細胞培養容器内の総培養面積（中空糸膜の内径基準の膜面積）は９８ｃｍ２であることから、細胞播種密度は約５１００ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２と計算された。
培養から１６８時間後に細胞をトリプシンで消化、剥離回収し、細胞数をカウントした結果、０．８×１０＾７個の細胞が回収され、増殖率は１６倍であった。
中空糸膜５を用いた以外は、実施例１と同様にして細胞培養実験を行った。なお、細胞培養容器内の総培養面積（中空糸膜の内径基準の膜面積）は９８ｃｍ２であることから、細胞播種密度は約５１００ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２と計算された。
培養から１６８時間後に細胞をトリプシンで消化、剥離回収し、細胞数をカウントした結果、０．８×１０＾７個の細胞が回収され、増殖率は１６倍であった。
［比較例３］
２枚のコラーゲンコートシャーレ（培養面積５５ｃｍ２、旭テクノガラス）にヒト骨髄間葉系幹細胞（ＣＥＬＬ ＡＰＰＬＩＣＡＴＩＯＮＳ Ｉｎｃ．）を細胞播種密度が約５１００ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２となるよう播種した。培養液は、実施例１と同様に、細胞を播種してから９６時間までは、１０％ウシ胎児血清（ライフテクノロジーズ）を添加したＤＭＥＭ ＧｌｕｔａＭＡＸ（ライフテクノロジーズ）を用い、９６時間以降はＭＦ－ｍｅｄｉｕｍ（間葉系幹細胞増殖培地、東洋紡）に培地を交換して培養した。
２枚のコラーゲンコートシャーレ（培養面積５５ｃｍ２、旭テクノガラス）にヒト骨髄間葉系幹細胞（ＣＥＬＬ ＡＰＰＬＩＣＡＴＩＯＮＳ Ｉｎｃ．）を細胞播種密度が約５１００ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２となるよう播種した。培養液は、実施例１と同様に、細胞を播種してから９６時間までは、１０％ウシ胎児血清（ライフテクノロジーズ）を添加したＤＭＥＭ ＧｌｕｔａＭＡＸ（ライフテクノロジーズ）を用い、９６時間以降はＭＦ－ｍｅｄｉｕｍ（間葉系幹細胞増殖培地、東洋紡）に培地を交換して培養した。
図３に、培養上清作製のスケジュールを示す。
培養開始４８時間後、および９６時間後に、培養液交換を実施した。その後、培養液交換をせず、培養開始から１６８時間で１００％コンフルエントに達したところで培養を終了した。この最後の培地交換から培養終了までの７２時間の培養を行った培養液を培養上清として回収した。培養上清の量は、計１０．０ｍｌであった。培養上清は回収後ただちに分注し、使用まで－８０℃に凍結保存した。培養から１６８時間後に細胞をトリプシンで消化、剥離回収し、細胞数をカウントした結果、２．７×１０＾６個の細胞が回収され、増殖率は９．６倍であった。
培養開始４８時間後、および９６時間後に、培養液交換を実施した。その後、培養液交換をせず、培養開始から１６８時間で１００％コンフルエントに達したところで培養を終了した。この最後の培地交換から培養終了までの７２時間の培養を行った培養液を培養上清として回収した。培養上清の量は、計１０．０ｍｌであった。培養上清は回収後ただちに分注し、使用まで－８０℃に凍結保存した。培養から１６８時間後に細胞をトリプシンで消化、剥離回収し、細胞数をカウントした結果、２．７×１０＾６個の細胞が回収され、増殖率は９．６倍であった。
［実験１］
（ラット水晶体硬化の誘発）
ラットをタバコの煙に暴露させ、水晶体の硬化を誘導した。即ち、９週齢・オスのＳＤラット１０匹を密閉可能なケース（幅４０ｃｍ×奥行き４０ｃｍ×高さ２０ｃｍ）内に入れた。タバコ（セブンスター（登録商標））を５０ｍＬシリンジに取り付け、主流煙をシリンジ内に吸引して採取し、これをラットの入ったケース内に吹き入れた。主流煙の吸引とケースへの吹き入れを１２回繰り返し、主流煙を計６００ｍＬチャンバー内に吹き入れた後、３０分静置した。同様の操作を１時間おきに４回繰り返し、ラットを主流煙に曝露させた。この主流煙曝露を３週間毎日実施した。
（ラット水晶体硬化の誘発）
ラットをタバコの煙に暴露させ、水晶体の硬化を誘導した。即ち、９週齢・オスのＳＤラット１０匹を密閉可能なケース（幅４０ｃｍ×奥行き４０ｃｍ×高さ２０ｃｍ）内に入れた。タバコ（セブンスター（登録商標））を５０ｍＬシリンジに取り付け、主流煙をシリンジ内に吸引して採取し、これをラットの入ったケース内に吹き入れた。主流煙の吸引とケースへの吹き入れを１２回繰り返し、主流煙を計６００ｍＬチャンバー内に吹き入れた後、３０分静置した。同様の操作を１時間おきに４回繰り返し、ラットを主流煙に曝露させた。この主流煙曝露を３週間毎日実施した。
（培養上清のラットへの投与）
実施例にて回収したそれぞれの培養上清および細胞に接触させていない新しい培養液（ＭＦ－ｍｅｄｉｕｍ、東洋紡）を、それぞれタバコの煙を暴露させたラットへ点眼投与した。即ち、各培養上清または培養液を、ラットの片目あたり１０μＬ、マイクロピペットを使用して点眼した。点眼は１日１回、タバコの煙を暴露する前に実施し、これを３週間毎日実施した。
実施例にて回収したそれぞれの培養上清および細胞に接触させていない新しい培養液（ＭＦ－ｍｅｄｉｕｍ、東洋紡）を、それぞれタバコの煙を暴露させたラットへ点眼投与した。即ち、各培養上清または培養液を、ラットの片目あたり１０μＬ、マイクロピペットを使用して点眼した。点眼は１日１回、タバコの煙を暴露する前に実施し、これを３週間毎日実施した。
［実験２］
（培養上清からのエクソソーム抽出）
実施例で得られた各培養上清からエクソソームを抽出した。エクソソームの抽出には、ＭａｇＣａｐｔｕｒｅＴＭＥｘｏｓｏｍｅ Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ Ｋｉｔ ＰＳ（和光純薬工業、型番：２９３－７７６０１）を用いた。それぞれ、得られたエクソソームは、元の培養上清の１／１０量のリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）に懸濁して用いた。また、細胞と接触させていない新しい培養液（ＭＦ－ｍｅｄｉｕｍ、東洋紡）からも同様にエクソソームの抽出操作を行ったものを対照群への投与用として準備した。
（培養上清からのエクソソーム抽出）
実施例で得られた各培養上清からエクソソームを抽出した。エクソソームの抽出には、ＭａｇＣａｐｔｕｒｅＴＭＥｘｏｓｏｍｅ Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ Ｋｉｔ ＰＳ（和光純薬工業、型番：２９３－７７６０１）を用いた。それぞれ、得られたエクソソームは、元の培養上清の１／１０量のリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）に懸濁して用いた。また、細胞と接触させていない新しい培養液（ＭＦ－ｍｅｄｉｕｍ、東洋紡）からも同様にエクソソームの抽出操作を行ったものを対照群への投与用として準備した。
（抽出したエクソソーム成分のラットへの投与）
前記調製したエクソソームを含むＰＢＳ（対照群を含む３種類）溶液を、ラットの片目あたり１０μＬ、マイクロピペットを使用して投与（点眼）した。点眼は１日１回、タバコの煙を暴露する前に実施し、これを３週間毎日実施した。
前記調製したエクソソームを含むＰＢＳ（対照群を含む３種類）溶液を、ラットの片目あたり１０μＬ、マイクロピペットを使用して投与（点眼）した。点眼は１日１回、タバコの煙を暴露する前に実施し、これを３週間毎日実施した。
［実験３］
（水晶体硬度の測定）
前記実験１および２の終了後、ラットを安楽死させ両眼球より水晶体を摘出した。次に、圧縮試験機（カトーテック、型番：ＫＥＳ－Ｇ５）を用いて水晶体の硬度測定を実施した。測定には２ｃｍ２の圧縮子を用い５０ｇの荷重をかけ、すべて同じ押し込み距離の負荷および、そこからの反発を測定した。なお、測定は２０℃、６５％Ｒｈの条件にて実施した。測定により得られた圧縮荷重曲線より、圧縮回復性を評価した。即ち、図４に示す圧縮荷重曲線よりＢａ／（Ａａ＋Ｂａ）×１００を求めた。この値が１００に近いほど、圧縮からの回復性、即ち弾力が大きいといえる。
（水晶体硬度の測定）
前記実験１および２の終了後、ラットを安楽死させ両眼球より水晶体を摘出した。次に、圧縮試験機（カトーテック、型番：ＫＥＳ－Ｇ５）を用いて水晶体の硬度測定を実施した。測定には２ｃｍ２の圧縮子を用い５０ｇの荷重をかけ、すべて同じ押し込み距離の負荷および、そこからの反発を測定した。なお、測定は２０℃、６５％Ｒｈの条件にて実施した。測定により得られた圧縮荷重曲線より、圧縮回復性を評価した。即ち、図４に示す圧縮荷重曲線よりＢａ／（Ａａ＋Ｂａ）×１００を求めた。この値が１００に近いほど、圧縮からの回復性、即ち弾力が大きいといえる。
圧縮回復性の測定結果を図５、図６に示す。図５は、実験１で得られた培養上清を点眼したラットの水晶体の圧縮回復性を測定した結果を示す。また、図６は、培養上清から抽出したエクソソームを含む懸濁液を点眼したラットの水晶体の圧縮回復性を測定した結果を示す。本発明の間葉系幹細胞の培養上清を含む溶液は、誘発された水晶体の弾力低下を防ぐ効果があることが示された。
従来、水晶体の硬化が進行することにより老視が発症していたが、本発明の間葉系幹細胞の培養上清を含む溶液を点眼することにより、眼水晶体組織の硬化を防ぎ、効果的に老視を予防または治療することが可能となる。
１ 細胞培養容器
２ 容器
３ 中空糸膜
４ 中空糸膜外腔
５ 中空糸膜内腔
６ａ、６ｂ エンドポート
７ａ、７ｂ サイドポート
８、９ 培養液貯留容器
１０ 回収容器
１１ 培養上清回収容器
２０、２１、２２ バルブ
３０、３１ 送液ポンプ
４０ 導入口
５０ 排出口
２ 容器
３ 中空糸膜
４ 中空糸膜外腔
５ 中空糸膜内腔
６ａ、６ｂ エンドポート
７ａ、７ｂ サイドポート
８、９ 培養液貯留容器
１０ 回収容器
１１ 培養上清回収容器
２０、２１、２２ バルブ
３０、３１ 送液ポンプ
４０ 導入口
５０ 排出口
Claims (2)
- 以下の［ａ］から［ｃ］の工程を含む、水晶体の硬化防止剤または治療剤の製造方法。
［ａ］中空糸膜の内表面にヒト骨髄間葉系幹細胞を接着させる工程
［ｂ］前記中空糸膜の内腔および外腔に細胞培養液を灌流し、前記ヒト骨髄間葉系幹細胞を培養する工程
［ｃ］前記ヒト骨髄間葉系幹細胞を培養して得られた培養上清を回収する工程 - ［ｄ］前記培養上清よりエクソソームを抽出する工程
［ｅ］前記エクソソームをリン酸緩衝生理食塩水に懸濁する工程
を含む、請求項１に記載の水晶体の硬化防止剤または治療剤の製造方法。
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