JP6976931B2 - ヒト化抗cd40抗体及びその使用 - Google Patents
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Description
本出願は、2015年9月4日に出願された米国特許仮出願第62/214,411号の優先権を主張するものであり、この仮出願の開示内容は引用によりその全体が本明細書に組み込まれる。
本出願は配列表を含み、配列表はASCII形式で電子形式により提出されており、引用によりその全体が本明細書に組み込まれる。前記のASCIIコピーは、2016年9月1日に作成されたものであり、名称は11212−005211−WO0_SL.txtであり、サイズは33,948バイトである。
本開示のヒト化抗体は、非ヒト種に由来する抗体であって、非抗原結合領域(及び/又は抗原結合領域)内のアミノ酸配列が、該抗体がヒト抗体によりよく似るように改変されているが、依然として元の結合能を保持しているものである。
本開示のヒト抗体は、ヒト由来ファージディスプレイライブラリーから選択した(1又は複数の)Fvクローン可変ドメイン配列を既知の(1又は複数の)ヒト定常ドメイン配列と結合することにより構築され得る(Hoogenboom et al.,J.Mol.Biol.227:381−8,1992;Marks et al.,J.Mol.Biol.222:581−97,1991)。あるいはまた、ヒト抗体は、ハイブリドーマ法によって作製され得る。ヒトモノクローナル抗体の作製のためのヒト骨髄腫細胞株及びマウス−ヒトヘテロ骨髄腫細胞株は、例えば、Kozbor,J.Immunol.133:3001−5,1984;Brodeur et al.,Monoclonal Antibody Production Techniques and Applications,pp.51−63(Marcel Dekker,Inc.,New York,1987);及びBoerner et al.,J.Immunol.147:86−95,1991に報告されている。
キメラ抗体は、異なる部分が異なる動物種に由来する分子である。例えば、抗体は、マウス抗体に由来する可変領域とヒト免疫グロブリンの定常領域を含むものであり得る。キメラ抗体は組換えDNA手法によって作製され得る。Morrison,et al.,Proc Natl Acad Sci,81:6851−6855(1984)。例えば、マウス(又は他の種)のモノクローナル抗体分子をコードしている遺伝子を制限酵素で消化してマウスFcをコードしている領域を除去し、ヒトFc定常領域をコードしている遺伝子の対応部分に置換する。また、キメラ抗体は、マウスV領域をコードしているDNAがヒト定常領域をコードしているDNAにライゲートされ得る組換えDNA手法によっても作出され得る。Better et al.,Science,1988,240:1041−1043。Liu et al.PNAS,1987 84:3439−3443。Liu et al.,J.Immunol.,1987,139:3521−3526。Sun et al.PNAS,1987,84:214−218。Nishimura et al.,Canc.Res.,1987,47:999−1005。Wood et al.Nature,1985,314:446−449。Shaw et al.,J.Natl.Cancer Inst.,1988,80:1553−1559。国際特許出願国際公開第1987002671号及び同第86/01533号。欧州特許出願第184,187号;同第171,496号;同第125,023号;及び同第173,494号。米国特許第4,816,567号。
マウス2C10抗体及び特定のヒト化抗CD40抗体の重鎖可変領域、軽鎖可変領域及びCDRを表1に示す。
一部の特定の実施形態では、表1のCDRに相当するCDRは配列バリエーションを有するものである。例えば、CDRの1、2 3、4、5、6、7もしくは8個の残基又は全残基の20%未満、30%未満もしくは約40%未満が置換されているか、又は欠失しているCDRが、CD40に結合する抗体(又はその抗原結合部分)内に存在し得る。
該抗体は完全長であってもよく、抗原結合部分を有する該抗体の断片(1つ又は複数)を含むもの、例えば限定されないが、Fab、F(ab’)2、Fab’、F(ab)’、Fv、単鎖Fv(scFv)、二価scFv(bi−scFv)、三価scFv(tri−scFv)、Fd、dAb断片(例えば、Ward et al.,Nature,341:544−546(1989))、単離CDR、ダイアボディ、トリアボディ、テトラボディ、線状抗体、一本鎖抗体分子、及び抗体断片から形成された多重特異性抗体であってもよい。また、組換え方法又は合成リンカーを用いて抗体断片を連接することにより作製される一本鎖抗体も本開示に包含される。Bird et al.Science,1988,242:423−426。Huston et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,1988,85:5879−5883。
本開示により、CD40に特異的に結合する抗体又はその抗原結合部分を作製するための方法を提供する。
目的の抗原に対する特異性を確認するため、及び/又は特性を試験するために該抗体又はその抗原結合部分をアッセイするのに、種々の方法が使用され得る。かかるアッセイの実施方法の一例は、米国特許出願公開第2004/0126829号に記載の血清スクリーニングアッセイである。抗CD40抗体は、CD40に対する結合について既知のさまざまな手法によって特性評価され得る。例えば、ELISAでは、マイクロタイタープレートをCD40又はCD40断片(PBS中)でコーティングし、次いで、無関連タンパク質、例えばウシ血清アルブミン(BSA)(PBSで希釈)を用いてブロックする。CD40で免疫処置したマウス由来の血漿の希釈液(又は抗CD40抗体を含有する溶液)を各ウェルに添加し、インキュベートする。プレートを洗浄し、次いで、酵素(例えば、アルカリホスファターゼ)にコンジュゲートさせた二次抗体とともにインキュベートする。洗浄後、プレートで該酵素の基質(例えば、ABTS)を用いて発色させ、特定のODで解析する。他の実施形態では、選択されたモノクローナル抗体が独自のエピトープに結合するかどうかを調べるため、該抗体がビオチン化され得、次いで、これが、ストレプトアビジン標識プローブを用いて検出され得る。抗CD40抗体を、CD40との反応性についてウエスタンブロッティングによって試験してもよい。
本発明の抗体又はその抗原結合部分は、インビトロ及びインビボで治療的、予防的及び/又は診断的な有用性を有する。例えば、細胞を培養培地中でインビトロで培養し、抗CD40抗体又はその断片と接触させることができる。該抗体又はその抗原結合部分は被験体において、インビボ(例えば、治療的又は予防的な)プロトコルの一部として投与され得る。インビボでの実施形態では、接触工程は被験体内で行なわれ、抗CD40抗体又はその一部分を被験体に、該被験体において該抗体又はその一部分がCD40に結合することを可能にするのに有効な条件下で投与することを含む。該抗体又はその抗原結合部分は、移植拒絶反応の尤度を下げるか、又は移植拒絶反応までの持続時間を長くし、免疫抑制を誘導するため、又は自己免疫性障害を処置するために投与され得る。
本発明の抗体又はその抗原結合部分は単独で、又は1種類以上の他の治療用薬剤(例えば、第2の治療用薬剤)と併用して投与され得る。いくつかの実施形態では、抗CD40抗体又はその断片を含む医薬組成物はさらに、該抗体又はその断片とコンジュゲートされた状態又はコンジュゲートされていない状態のいずれかである第2の治療用薬剤を含むものであり得る。一実施形態では、該第2の薬剤は別のモノクローナルもしくはポリクローナル抗体又はその抗原結合部分である。別の実施形態では、該第2の薬剤は免疫抑制薬である。第3の実施形態では、該第2の薬剤は細胞毒性剤又は細胞増殖抑制性剤である。第4の実施形態では、該第2の薬剤は、活性化リンパ球、樹状細胞又はCD40発現癌細胞の表面上のCD40以外の受容体又は受容体複合体を標的化し得るものであり得る。
本明細書に記載の抗体は親和性精製用薬剤として有用である。この方法では、該抗体又はその断片をプロテインA樹脂などの固相上に、当該技術分野でよく知られた方法を用いて固定化する。固定化した該抗体又はその断片を、精製対象のCD40タンパク質(又はその断片)含有試料と接触させ、その後、支持体を、CD40タンパク質(これは固定化した抗体に結合されている)以外の試料中の実質的にすべての物質を除去する適切な溶媒で洗浄する。最後に、支持体を、該抗体からCD40タンパク質を放出させる別の適切な溶媒で洗浄する。
本開示により、薬学的に許容され得る担体と一緒に製剤化された本開示の抗体又はその(1種類又は複数種の)抗原結合部分を含む組成物、例えば医薬組成物を提供する。別の実施形態では、該組成物は、本発明の抗体又はその抗原結合部分をコードしている単離核酸及び薬学的に許容され得る担体を含むものであり得る。該組成物は、移植拒絶反応の尤度を下げるため、もしくは移植拒絶反応までの持続時間を長くするため、免疫抑制を誘導するため、又は被験体の自己免疫性障害を処置するために有効であり得る。本発明の組成物は、本明細書に記載の任意の方法において有効であり得る。
別の態様では、本明細書に記載の病状又は障害の処置に有用な物質を含むものである製造物品が包含される。製造物品は容器とラベルを含むものである。好適な容器としては、例えば、ボトル、バイアル、シリンジ及び試験管が挙げられる。容器は、さまざまな材質、例えばガラス又はプラスチックで形成されたものであり得る。容器は、該病状の処置に有効な組成物を保持し、滅菌されたアクセスポートを有していてもよい。例えば、容器は静脈内用液剤バッグ又はストッパーを有し、皮下注射針が貫通可能なバイアルであり得る。組成物中の活性薬剤はヒト化抗CD40抗体もしくはその断片、又は本明細書に記載の任意の他の抗体もしくはその断片であり得る。容器上又は容器に付随させたラベルには、該組成物が選択肢の病状を処置するために使用されるものであることが表示されている。製造物品はさらに、薬学的に許容され得るバッファー、例えば、リン酸緩衝生理食塩水、リンゲル液及びデキストロース液が入った第2の容器を含むものであってもよい。これは、さらに、市販品としてユーザーの観点から望ましい他の物質、例えば、他のバッファー、希釈剤、フィルター、針、シリンジ及び使用のための使用説明を有する添付文書を含むものであってもよい。
抗体が結合する対象の具体的なエピトープを同定するための方法は当業者に知られている。標準的な手法としてはペプチドスキャニングが挙げられ、これは、抗体が結合する対象の完全長タンパク質に由来する重複している短鎖ペプチド(例えば10〜30個、例えば20個のアミノ酸長)を個々に、該抗体に対する結合能について試験するというものである。かかる実験により、次いで、抗体が結合する対象のタンパク質領域が決定され得る。
本発明ではまた、2C10抗体によって特異的に結合されるエピトープを含むCD40の断片を取り上げて記載する。2C10抗体を、CD40ポリペプチドの細胞外部分に対して生じさせた。2C10抗体は、この配列(配列番号:5及び6)の一部分と反応する。
抗CD40マウス抗体の作製及び同定
マウス(系統AJ)を、マルトース結合タンパク質と融合させたアカゲザル(rhesus macaque)(M.mulatta)CD40(アミノ酸配列:EPPTACREKQYLINSQCCSLCQPGQKLVSDCTEFTETECLPCSESEFLDTWNRETRCHQHKYCDPNLGLRVQQKGTSETDTICTCEEGLHCMSESCESCV;配列番号:5)の細胞外ドメインからなる融合タンパク質(CD40−MBP)で免疫処置した。アカゲザル(rhesus macaque)CD40タンパク質のこの領域のアミノ酸配列は、ヒトCD40タンパク質と5つのアミノ酸位置において異なる(ヒトアミノ酸配列:EPPTACREKQYLINSQCCSLCQPGQKLVSDCTEFTETECLPCGESEFLDTWNRETHCHQHKYCDPNLGLRVQQKGTSETD TICTCEEGWHCTSEACESCV;配列番号:6)。CD40−MBPをマウスに複数回、完全フロイントアジュバント及び不完全フロイントアジュバントとともに投与した。免疫処置したマウスの脾細胞をマウス骨髄腫細胞株SP2/0と融合させ、ハイブリッド細胞を標準的なハイブリドーマ技術を用いて選択した。
抗体のクローニング
モノクローナル抗体の可変領域は、当該技術分野で知られた任意の方法を用いてクローニングすることができる。ハイブリドーマ細胞のための抗体可変領域の配列を得るためのPCRベースの方法は、例えば、Larrick et al.,Nat.Biotechnol.7:934−8,1989及びOrlandi et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 86:3833−7,1989に記載されている。このような手法又は同様の手法を使用し、モノクローナル抗体の可変領域はクローニングし、さらなる操作に供され得る。本発明の場合では、2C10抗体の重鎖及び軽鎖の可変配列をクローニングし、配列決定した。2C10ハイブリドーマ由来の免疫グロブリンの重鎖可変領域及び軽鎖可変領域であるDNAを、5’RACE PCRを使用し、以下のDNAプライマー:
マウスκリバース:5’−CTA ACA CTC ATT CCT GTT GAA GCT CTTGAC(配列番号:7);
マウスκフォワード:5’−GCT GAT GCT GCA CCA ACT GTA TCC−3’(配列番号:8)
マウスIgG1リバース:5’−GGC AAC GTT GCA GGT CTC GC−3’(配列番号:9)
マウスIgG1フォワード:5’−CTG GAT CTG CTG CCC AAA CTA ACT CC−3’(配列番号:10)
を用いてクローニングした。
2C10はCD40に結合してCD154の結合を妨げる
2C10がアカゲザル(rhesus)及びヒトの両方のCD40に結合する能力を評価するため、組換え発現させたヒト又はアカゲザル(rhesus)のCD40をELISAプレートに吸着させ、いろいろな濃度の2C10と反応させた。CD40に対する2C10の結合を、ヤギ抗マウスIgG−HRPを用いてELISAで検出した。図2Bの結果は、2C10がアカゲザル(rhesus)及びヒトのCD40に対して同様の結合親和性を有することを示し、これは、2C10の臨床的翻訳のためには重要なことである。2C10がそのコグネイトリガンドであるCD154の結合をブロックする能力を確認するため、アカゲザル(rhesus)及びヒトのB細胞を漸増濃度の2C10又はアイソタイプ対照とともにインキュベートし、次いでヒスチジンタグ化可溶性CD154(R&D Systems,Minneapolis,MN)とともにインキュベートし、ヒスチジン発現について解析した。2C10はCD154の結合を用量依存的様式でブロックし(図3)、2C10はT細胞結合CD154とB細胞及び抗原提示細胞上のCD40との相互作用を有効にブロックし得ることが示された。
抗CD40抗体2C10を、B細胞の活性化に影響を及ぼす能力に関してアカゲザル(rhesus monkey)及びヒトの末梢血単核細胞(PBMC)の両方を用いて特性評価した。CD20発現を選択したのは、これがB細胞のインジケータであり、CD23、CD80及びCD86の発現はB細胞の活性化と関連しているためである。2C10をまず、CD20に結合する能力について評価した。アカゲザル(rhesus)又はヒトのPBMCを、蛍光色素コンジュゲート2C10及び抗CD20抗体とともにインキュベートした。フローサイトメトリー解析を使用し、ヒト及びアカゲザル(rhesus)のCD20+ B細胞に対する2C10の結合を確認した(図2A)。別の一組の実験において、アカゲザル(rhesus monkey)又はヒトのいずれかに由来するPBMCを、不死化Tリンパ球(lymophocyte)細胞株であるCD154+ Jurkat D1.1細胞の存在下又は非存在下のいずれかで培養した。B細胞の活性化を、PBMCに存在しているCD20+細胞における3種類のマーカー(CD23、CD80及びCD86)の発現を測定することにより調べた。このアッセイの一般的なスキームを図4に示す。図4に示すように、ジャーカット細胞の存在下でのPBMCの培養により3種類すべてのマーカー発現の増大がもたらされ、B細胞がCD154+ジャーカット細胞によって活性化されることが示された。
2C10がCD40上の独自のエピトープに結合し、B細胞の活性化を抗CD154抗体と同様に阻害し、アゴニスト特性がないことが確立されたため、本発明者らは、次いで、インビボでの2C10の効果を特性評価した。2C10の組換えマウス−アカゲザル(rhesus)キメラ形態を、アカゲザル(rhesus)のIgG1(2C10R1)又はIgG4(2C10R4)のいずれかの重鎖とアカゲザル(rhesus)κ軽鎖定常領域の配列を用いて作製した。また、3A8のキメラアカゲザル(rhesus)IgG1形態(3A8R1)を対照としての使用のために作製した。
本発明者らはさらに、CD4精製キメラリーシス(rhesis)IgG4抗体である2C10R4を、非ヒト霊長類膵島同種移植モデルにおいて試験した(図10)。体重が10〜20kgのアカゲザル(rhesus macaque)に、移植の1日前に正中開腹によってドナー膵切除を実施した。動物を致死的に放血させた後、膵臓を単離し、氷上に置いた。膵島の単離は、コラゲナーゼ/中性プロテアーゼ(それぞれ、950Wunsch単位及び63単位;Serva,Heidelberg,Germany)を用いて行なった。消化された膵臓を、4層の不連続Euroficoll勾配(Mediatech,Manassas,VA)及びCobe 2991血球プロセッサ(CaridianBCT,Lakewood,CO)で精製した。最終の膵島調製物試料を計数し、膵島当量(IEQ)として表示した。単離した膵島を一晩培養し、計数し、移植用培地(Mediatech)中に懸濁させた。
CD40/CD154経路のブロックは、他の共刺激ブロック剤と併せると有用であることが証明され得る。CD28/B7共刺激経路をブロックするために設計された高親和性型のCTLA4−Igであるベラタセプトは、腎移植及び膵島移植の非ヒト霊長類モデルにおいて、並びに腎移植のフェーズII及びIII臨床試験において有効性が示されている(Larsen et al.,Transplantation 90:1528−35,2010、Vincenti et al.,Am.J.Transplant.10:535−46,2010、Adams et al.,J.Immunol.174:542−50,2005、Adams et al.,Diabetes 51:265−70,2002、Larsen et al.,Am.J.Transplant.5:443−53,2005、Vincenti et al.,N.Engl.J.Med.358:770−81,2005)。BENEFIT治験では、ベラタセプトで処置した患者において優れた腎機能が示された;しかしながら、このような患者は、発生率がより高く、等級がより重度の、生検により確定診断された急性拒絶反応を有した(Larsen et al.,Transplantation 90:1528−35,2010、Vincenti et al.Am.J.Transplant.10:535−46,2010)。この高率の急性拒絶反応及びCD40とB7のブロック間の相乗効果(Larsen et al.,Nature 381:434−8,1996)に鑑みて、本発明者らは、次に、非ヒト霊長類の腎臓移植における2C10とベラタセプトの併用療法の有効性を試験する。
ヒト化抗CD40抗体
本発明者らは、h2C10と称するCD40に対する新規なヒト化Ab(ヒト化2C10抗体)を開発して特性評価し、これをCD40の機能性完全拮抗薬として選択した。結合性エピトープを、B細胞を活性化もしくは枯渇させるか、又は部分作動薬としての機能を果たすかいずれかである競合体分子とは識別される独自の結合特性が付与されるように注意深く設計した。該抗体の初期のマウス霊長類キメラ型は、関連するインビトロ及びインビボ前臨床試験、例えば、非ヒト霊長類での複数の試験(これにより、移植拒絶反応の抑制に対して有望な有効性並びに同種移植片及び異種移植片の両方での生着の長期化、並びに非臨床試験での好都合な安全性プロフィールが実証されている)において調べられている。また、本発明者らは、優れた特徴を示す2C10のヒト化(h2C10)も完成させた。
ヒト化VH配列を遺伝子合成し、ヒトIgG2重鎖の定常領域を含むベクターpFUSE−CHIg−hG2a(Invivogen)内にクローニングし、発現ベクターLB300−302を作製した。ヒト化VK配列を遺伝子合成し、ヒトκ軽鎖の定常領域を含む発現ベクター内にクローニングし、発現ベクターLB303−304を作製した。該重鎖及び軽鎖は、哺乳動物細胞での強力で構成的な発現のためのヒトEF1αプロモーターの下流に存在させた。また、キメラ2C10抗体をマウスのVHとVLを使用することによって同様にして構築し、それぞれ、発現ベクターLB305及びLB306を作製した。抗体発現ベクターを表4にまとめた。
潜在的エフェクター機能をさらに最小限に抑えるため、最良の結合活性を有するヒト化抗体(2C10_h3と2C10_l2)をヒトIgG4又は安定化ヒトIgG4(S241P)に変換させた。重鎖可変領域2C10_h3をまず、安定化変異S241Pを導入する前に、ヒトIgG4重鎖の定常領域を含むベクターpFUSE−CHIg−hG4(Invivogen)内にクローニングした(表4)。ヒト化IgG4及びIgG4(S241P)を、一過性トランスフェクション後に293F細胞から精製した。産生収量は、IgG2抗体のものより2倍多い25〜35mg/Lであった。IgG4抗体は少量の半分子を有するようであり、これは安定化IgG4抗体では有意に少なかった。安定化IgG4抗体のDNA配列及びアミノ酸配列を図21に示す。
SwiMR発現は、抗体産生細胞株の容易な開発のために開発され、蛍光標示式細胞分取(FACS)による高産生性細胞の単離を容易にするための切替可能な膜レポーターが使用された。膜アンカー型GFPのIRES媒介性バイシストロニック発現カセットを目的遺伝子(GOI)の下流に配置した。IRES−GFPカセットには、後で染色体から除去するためのLoxP部位をフランキングさせた。GFP発現レベルをGOIの発現レベルの表示に使用した。高産生性細胞をFACSによって単離し、次いでCreリコンビナーゼで処理し、GFPカセットを除去した。安定化IgG4形式のヒト化2C10をSwiMR発現系でクローニングし、ベクターLB312を作製した。重鎖と軽鎖は、ヒトEF1α プロモーターの制御下の2種類の別々の発現カセットでクローニングした。IRES−GFPカセットを重鎖配列の下流に配置し、2つのLoxP部位をフランキングさせた。このプラスミドには、哺乳動物細胞での選択のためのピューロマイシン耐性遺伝子と細菌増殖のためのβ−ラクタマーゼ遺伝子を担持させる。
100mlのCHOS細胞(1×106細胞/ml,Invitrogen)を、120ugのLB312(Asc Iの制限消化によって線状化)及び120ulのFreestyle Maxリージェント(regent)(Invitrogen)でトランスフェクトした。細胞を、10〜20ug/mlのピューロマイシンにより2週間選択した。安定なプールのGFP発現プロフィールをフローサイトメトリーによって特性評価した。最高GFPシグナルを有する上位1%の細胞を、100,000個の細胞を含むプール番号1として選別した。2週間培養した後、プール番号1をGFP発現についてフローサイトメトリーによって再度解析した。再度、最高GFPシグナルを有する上位1%の細胞を、100,000個の細胞を含むプール番号2として選別した。2日間培養した後、プール番号2を2uMの組換え膜透過性DNAリコンビナーゼCre(TAT−NLS−Cre,Excellgen)で処理した。GFP発現プロフィールを、1週間の培養後に解析した。約10%の細胞において、染色体からのGFP発現カセットの成功裡の除去を示すGFP発現の完全な喪失が見られた。GFP陰性細胞を、384ウェルプレート内に単独細胞として選別した。2週間後、10×384ウェルプレートから約800個のコロニーが成長した。
また、VH1−69及びVL1−39ヒト生殖細胞系列フレームワーク内にクローニングした2種類のCDRグラフト化VH配列と2種類のCDRグラフト化VL配列を用いてヒト化抗体も作製した。本発明者らは、このさらなる実験において、2種類の重鎖(HB1とHB2)及び2種類の軽鎖(KB1とKB2)を作製した。この重鎖配列と軽鎖配列HP+KPを陽性対照として使用する。このような構築物の組合せをHEK293細胞において一過性発現させ、抗体をプロテインAクロマトグラフィーによって精製し、hCD40結合について試験した。
1.2C10HP+2C10KP
2.2C10HB1+2C10KB1
3.2C10HB1+2C10KB2
4.2C10HB1+2C10KP
5.2C10HB2+2C10KB2
6.2C10HB2+2C10KB1
7.2C10HB2+2C10KP
8.2C10HP+2C10KB1
9.2C10HP+2C10KB2
を含むものであり得る。
ヒト化抗体及びキメラ抗体を、100又は200mlの293F細胞の一過性トランスフェクション後に精製した。抗体は、プロテインAカラムを用いて、トランスフェクションの4日後に回収した条件培地から精製した。
CD40結合速度論を、Forte Bio(contracted to Aragen Bioscience)で測定した。精製CD40をビオチン化し、ストレプトアビジンバイオセンサー上に固定化した。
CHO細胞のトランスフェクション及び安定的にトランスフェクトされた細胞の選択後、抗体をプロテインAカラムによって精製した後、バッファー交換し(20mMクエン酸ナトリウム,50mM NaCl,5%マルトース,pH6.0)、0.2μmで濾過した。プール番号1を、CD FortiCHO培地(Invitrogen)中での25L容ウェーブ式バッグ内培養(wave bag culture)のセットアップのために使用した。培養液は、3、5及び7日目に3回、10%CD Efficient Feed C(Invitrogen)とともに供給した。精製抗体の最終収量は合計1.6gであった。抗体をSDS−PAGE及びSEC−HPLC解析によって特性評価し、単量体抗体として99.4%純粋であった。
単独細胞のコロニーを、3回のELISA及び1回のフェッドバッチ産生によってスクリーニングした。スクリーニングプロセス全体を通して、細胞をCD FortiCHO培地中に維持した。384ウェルプレートのすべてのコロニーを96ウェルプレート内に取り出した。各ウェルからの1.2μlの培養培地を使用し、抗ヒトFc抗体でコーティングしたELISAプレート内で抗体をスクリーニングした。上位240個のクローンを10個の24ウェルプレート内で拡大培養した。5日間培養した後、1.2μlの培養培地を再度、抗体レベルについてスクリーニングし、上位60個のクローンを10×6ウェルプレート内で拡大培養し、振盪インキュベータ内で培養した。5日間培養した後、6ウェルプレートを、細胞を1:10で新たな一組に6ウェルプレート内に継代することにより二連にした。元の一組の6ウェルプレートの培養物を消衰まで増殖させた後、抗体レベルをELISAによって測定した。二連の組の6ウェルプレートの上位24個のクローンを30mlの培養液中で125ml容振盪フラスコ内で拡大培養した。クローンを30ml容フェッドバッチ産生に供した。供給ストラテジーは、3、5、7、9及び11日目に7.5%のEx−Cell Advanced CHO Feed 1(Sigma)であった。上位のクローン3C9−I6は約1.2g/Lの産生力価を示すものであった。
本発明者らは、本発明者らのリード候補の以下の重要なインビトロ薬理学的属性:
・CD154−CD40結合によって誘導されるB細胞活性化の抑制
・B細胞の直接活性化なし
・CD40の高親和性拮抗薬(例えば、Kdは約10−10M以下、約10−10M〜約10−9M、又は本明細書に記載のとおりである)
を特定した。
2C10のインビボ薬力学、薬物動態及び診査的安全性評価をアカゲザル(rhesus monkey)において、2C10の霊長類キメラ構築物及び臨床候補ヒト化h2C10抗体を用いて実施した。インビトロ結合速度論に基づいたヒト化型リード2C10(mAb 2.189.2;h2C10)の選択後、本発明者らは、h2C10をアカゲザル(rhesus monkey)でのPK/PD試験に進め、そのさらなる特性を特性評価した。これらの試験(これは、極めて重要な広範な実験エンドポイントがカバーされている)で得られたデータによりh2C10の優れた特性が明白に確立される。
・血中のBリンパ球数及びTリンパ球数に対する効果
・T細胞依存性抗原スカシガイヘモシアニン(KLH)に対する体液性免疫応答に対する効果
・血中B細胞上のCD40受容体占有率(PD)
・薬物動力学(PK)
・抗薬物抗体(ADA)の形成によって評価される免疫原性
・CBC、血清化学検査及び完全検死を含む診査的毒物学的検査
を含めた。
h2C10がインビボでT細胞依存性抗体応答(TDAR)をブロックすることをインビボで証明するため、サルを、h2C10の投与後6時間目にKLHで免疫処置した。その後、KLHに対する抗体力価を毎週測定した。
アンタゴニストCD40抗体の開発における目標には標的のCD40+細胞の枯渇を最小限にすることが含まれていたため、本発明者らは、リンパ球亜集団に対する効果、特にB細胞に対する効果を解析した。
CD40受容体占有率
霊長類キメラ及びヒト化型の2C10によるCD40標的の結合及び占有率を、CD20+ B細胞上のCD40に対して2C10が利用可能な結合部位をフローサイトメトリーにより、蛍光標識した2C10及び標識した非競合性抗CD40抗体を用いて測定することにより調べた。血液試料を複数の日に、対照サル及び霊長類キメラIgG4又はヒト化2C10のいずれかで処置したサルから採取し、FACSによって解析した。標的結合の度合(受容体占有率%)を直接、平均蛍光強度の記録値から計算した。
CD40受容体占有率に基づいた2C10の薬力学的効果と2C10の薬物動態間の明白な関連性を確立するため、2C10の血漿濃度を、受容体占有率を測定したものと同じ血液試料の血漿において測定した。また、血漿濃度の解析により、2C10の薬物動態プロフィール、最も重要なことには、その血漿中での持続性(半減期によって測定)の特性評価が可能であった。この測定により、有効治療濃度を維持するために必要とされる投薬頻度の手引きがもたらされる。
このセクションに記載した実験は、免疫機構及びオフターゲット効果に対するh2C10の有害な帰結の可能性を調べるために実施した。生物学的療法では、このような評価は、ヒトを薬物に曝露する前の安全性を評価するため、及び臨床試験のためのリスク軽減計画を作成するためにとりわけ最も重要である。サルの免疫機能又は病態において予期しない転帰又は望ましくない転帰がなんら存在しないことは、h2C10の全体的安全性評価が良好であると考えられる。また、2C10で処置したサルにおいて、血液検査パラメータ、例えば血小板計数及び血清化学検査パラメータの変化についての常套的な試験を投与後、何日か実施し、キメラ2C10及びヒト化2C10での処置による影響はなかった。25mg/kgの霊長類キメラ2C10で2回処置した2匹の動物を、処置に関連する病態の肉眼的及び鏡検的形跡について評価した;処置に関連する病理学的変化は観察されなかった。また、血栓塞栓性(thromoboemolic)合併症を除外するため、すべての組織を、繊維素沈着について特殊な染色によって検査した。無症候性凝固異常の形跡は検出されなかった。重要なことには、CD40受容体を完全に占有するために必要とされる用量を明らかに超えており、したがって、IND承認(−enabling)フェーズにおいて実施される重要な毒物学試験で試験される用量レベルに近い比較高い用量が本試験において試験された。この予備安全性評価はh2C10の安全性になんら問題がないことを示す。
Claims (57)
- 配列番号:21に示すアミノ酸配列を含む重鎖可変領域と、配列番号:23に示すアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域を含む、ヒト化抗CD40抗体又はその抗原結合断片。
- 前記抗体又はその抗原結合断片の解離定数(KD)が約1×10−9M未満である、請求項1に記載の抗体又はその抗原結合断片。
- 前記抗体又はその抗原結合断片が:(a)完全体の免疫グロブリン分子;(b)scFv;(c)Fab断片;(d)F(ab’)2;及び(e)ジスルフィド結合Fvからなる群より選択される、請求項1又は2に記載の抗体又はその抗原結合断片。
- 前記抗体又はその抗原結合断片が:a)IgGの定常ドメイン;及び(b)IgAの定常ドメインからなる群より選択される少なくとも1つの定常ドメインを含むものである、請求項1〜3のいずれか1に記載の抗体又はその抗原結合断片。
- 前記抗体又はその抗原結合断片が少なくとも1つのヒト定常ドメインを含むものである、請求項1〜4のいずれか1に記載の抗体又はその抗原結合断片。
- 前記抗体又はその抗原結合断片がCD40細胞外ドメインに結合するものである、請求項1〜5のいずれか1に記載の抗体又はその抗原結合断片。
- 前記CD40がヒト又はアカゲザル(rhesus)のCD40である、請求項1〜6のいずれか1に記載の抗体又はその抗原結合断片。
- CD154発現ジャーカット細胞によるBリンパ球の活性化をインビトロでブロックするものである、請求項1〜7のいずれか1に記載の抗体又はその抗原結合断片。
- Bリンパ球のCD23、CD80又はCD86の発現を阻害するものである、請求項1〜8のいずれか1に記載の抗体又はその抗原結合断片。
- 請求項1〜9のいずれか1に記載の抗体又はその抗原結合断片をコードしているポリヌクレオチド。
- 請求項10に記載のポリヌクレオチドを含むベクター。
- 請求項11に記載のベクターを含む細胞。
- 請求項1〜9のいずれか1に記載の抗体又はその抗原結合断片、請求項10に記載のポリヌクレオチド、請求項11に記載のベクター、又は請求項12に記載の細胞;及び、薬学的に許容され得る担体を含む組成物。
- 免疫機構の抑制、移植拒絶反応の処置もしくは予防的処置、又は移植拒絶反応が起こるまでの持続時間の長期化を、それを必要とする被験体において行なう用途に用いるための、請求項13に記載の組成物。
- 前記被験体が臓器移植を受けた被験体であるか、又は臓器移植を必要としている被験体である、請求項14に記載の組成物。
- 前記臓器が、心臓、腎臓、肺、肝臓、膵臓、腸及び胸腺又はその一部分からなる群より選択される、請求項15に記載の組成物。
- 前記被験体が組織移植を受けた被験体であるか、又は組織移植を必要としている被験体である、請求項14に記載の組成物。
- 前記組織が骨、腱、角膜、皮膚、心臓の弁、静脈又は骨髄である、請求項17に記載の組成物。
- 移植の前の投与のために製剤化されている、請求項14に記載の組成物。
- 移植後、少なくとも1ヶ月間継続する投与のために製剤化されている、請求項14に記載の組成物。
- 移植後、少なくとも6ヶ月間継続する投与のために製剤化されている、請求項20に記載の組成物。
- 移植片対宿主病の処置又は予防的処置を、それを必要とする被験体において行なう用途に用いるための、請求項13に記載の組成物。
- 自己免疫性障害の処置又は予防的処置を、それを必要とする被験体において行なう用途に用いるための、請求項13に記載の組成物。
- 前記自己免疫性障害が自己抗体の存在と関連しているもの、又は自己抗体の存在によって引き起こされるものである、請求項23に記載の組成物。
- 前記自己免疫性障害が、全身性エリテマトーデス(SLE)、CREST症候群(石灰沈着症、レイノー症候群、食道運動障害、強指症及び毛細血管拡張症)、オプソクローヌス、炎症性ミオパチー(例えば、多発性筋炎、皮膚筋炎及び封入体筋炎)、全身性強皮症、原発性胆汁性肝硬変、セリアック病(例えば、グルテン過敏性腸疾患)、疱疹状皮膚炎、ミラー・フィッシャー症候群、急性運動性軸索型ニューロパチー(AMAN)、伝導ブロックを伴う多巣性運動ニューロパチー、自己免疫性肝炎、抗リン脂質抗体症候群、ウェゲナー肉芽腫症、顕微鏡的多発血管炎、チャーグ・ストラウス症候群、関節リウマチ、慢性自己免疫性肝炎、硬化性筋炎、重症筋無力症、ランバート・イートン筋無力症候群、橋本甲状腺炎、グレーブス病、傍腫瘍性小脳変性症、スティッフパーソン症候群、辺縁系脳炎、アイザックス症候群、シデナム舞踏病、小児自己免疫性溶連菌関連性精神神経疾患(PANDAS)、脳炎、1型真性糖尿病、視神経脊髄炎、悪性貧血、アジソン病、乾癬、炎症性腸疾患、乾癬性関節炎、シェーグレン症候群、紅斑性狼瘡(例えば、円板状紅斑性狼瘡、薬物誘発性紅斑性狼瘡及び新生児紅斑性狼瘡)、多発性硬化症、反応性関節炎、多発性筋炎、皮膚筋炎、多発性内分泌腺不全、シュミット症候群、自己免疫性ブドウ膜炎、副腎炎、甲状腺炎、自己免疫性甲状腺疾患、胃萎縮、慢性肝炎、ルポイド肝炎、アテローム性動脈硬化症、初老期認知症、脱髄疾患、亜急性皮膚紅斑性狼瘡、副甲状腺機能低下症、ドレスラー症候群、自己免疫性血小板減少症、特発性血小板減少性紫斑病、溶血性貧血、尋常性天疱瘡、天疱瘡、円形脱毛症、類天疱瘡、強皮症、全身性進行性硬化症、成人発症型真性糖尿病(例えば、II型糖尿病)、男性及び女性の自己免疫性不妊症、強直性脊椎関節炎、潰瘍性大腸炎、クローン病、混合結合組織病、結節性多発性動脈炎、全身性壊死性血管炎、若年発症型関節リウマチ、糸球体腎炎、アトピー性皮膚炎、アトピー性鼻炎、グッドパスチャー症候群、シャーガス病、サルコイドーシス、リウマチ熱、喘息、反復流産、抗リン脂質抗体症候群、農夫肺、多形性紅斑、開心後症候群、クッシング症候群、自己免疫性慢性活動性肝炎、鳥飼病、アレルギー性疾患、アレルギー性脳脊髄炎、中毒性表皮壊死症、脱毛症、アルポート症候群、肺胞炎、アレルギー性肺胞炎、線維化性肺胞炎、間質性肺疾患、結節性紅斑、壊疽性膿皮症、輸血副作用、ハンセン病、マラリア、リーシュマニア症、トリパノソーマ症、高安動脈炎、リウマチ性多発性筋痛、側頭動脈炎、住血吸虫症、巨細胞性動脈炎、回虫症、アスペルギルス症、サンプター症候群、湿疹、リンパ腫様肉芽腫症、ベーチェット病、カプラン症候群、川崎病、デング熱、心内膜炎、心内膜心筋線維症、眼内炎、持久性隆起性紅斑、胎児赤芽球症、好酸球性筋膜炎、シュルマン症候群、フェルティ症候群、フィラリア症、毛様体炎、慢性毛様体炎、異時性毛様体炎、フックス毛様体炎、IgA腎症、ヘノッホ・シェーンライン紫斑病、移植片対宿主病、移植拒絶反応、ヒト免疫不全ウイルス感染、エコーウイルス感染、心筋症、アルツハイマー病、パルボウイルス感染、風疹ウイルス感染、ワクチン接種後症候群、先天性風疹感染、ホジキン及び非ホジキンリンパ腫、腎細胞癌、多発性骨髄腫、イートン・ランバート症候群、再発性多発性軟骨炎、悪性黒色腫、クリオグロブリン血症、ワルデンストレームマクログロブリン血症、エプスタイン−バーウイルス感染、おたふく風邪、エヴァンズ症候群、並びに自己免疫性腺機能不全からなる群より選択される、請求項23に記載の組成物。
- 前記被験体がヒトである、請求項14に記載の組成物。
- 非経口、静脈内、皮下、筋肉内、経皮、経口、経表面、髄腔内又は局所投与のために製剤化されている、請求項14に記載の組成物。
- 前記用途が、さらに、前記抗体又はその抗原結合断片の投与の6ヶ月以内における免疫抑制薬の投与を含む、請求項14に記載の組成物。
- 前記免疫抑制薬が、カルシニューリン阻害薬、タクロリムス、mTor阻害薬、フィンゴリモド、マイリオシン、アレムツズマブ、リツキシマブ、抗CD4モノクローナル抗体、抗LFA1モノクローナル抗体、抗LFA3モノクローナル抗体、抗CD45抗体、抗CD19抗体、モナバタセプト、ベラタセプト、インドリル−ASC;アザチオプリン、リンパ球免疫グロブリン及び抗胸腺細胞グロブリン[ウマ]、ミコフェノール酸モフェチル、ミコフェノール酸ナトリウム、ダクリズマブ、バシリキシマブ、シクロホスファミド、プレドニゾン、プレドニゾロン、レフルノミド、FK778、FK779、15−デオキシスペルグアリン、ブスルファン、フルダラビン、メトトレキサート、6−メルカプトプリン、15−デオキシスペルグアリン、LF15−0195、ブレディニン、ブレキナール、並びにムロモナブ−CD3からなる群より選択される、請求項28に記載の組成物。
- 前記カルシニューリン阻害薬がシクロスポリンA又はシクロスポリンGである、請求項29に記載の組成物。
- 前記mTor阻害薬がシロリムス、テムシロリムス、ゾタロリムス又はエベロリムスである、請求項29に記載の組成物。
- 前記抗CD45抗体が抗CD45RB抗体である、請求項29に記載の組成物。
- 前記免疫抑制薬がベラタセプトである、請求項29に記載の組成物。
- 前記組成物と前記免疫抑制薬が互いに1ヶ月以内に投与されるためのものである、請求項29に記載の組成物。
- 前記組成物と前記免疫抑制薬が互いに1週間以内に投与されるためのものである、請求項34に記載の組成物。
- 前記被験体がヒトである、請求項22に記載の組成物。
- 非経口、静脈内、皮下、筋肉内、経皮、経口、経表面、髄腔内又は局所投与のために製剤化されている、請求項22に記載の組成物。
- 前記用途が、さらに、前記組成物の投与の6ヶ月以内における免疫抑制薬の投与を含む、請求項22に記載の組成物。
- 前記免疫抑制薬が、カルシニューリン阻害薬、タクロリムス、mTor阻害薬、フィンゴリモド、マイリオシン、アレムツズマブ、リツキシマブ、抗CD4モノクローナル抗体、抗LFA1モノクローナル抗体、抗LFA3モノクローナル抗体、抗CD45抗体、抗CD19抗体、モナバタセプト、ベラタセプト、インドリル−ASC;アザチオプリン、リンパ球免疫グロブリン及び抗胸腺細胞グロブリン[ウマ]、ミコフェノール酸モフェチル、ミコフェノール酸ナトリウム、ダクリズマブ、バシリキシマブ、シクロホスファミド、プレドニゾン、プレドニゾロン、レフルノミド、FK778、FK779、15−デオキシスペルグアリン、ブスルファン、フルダラビン、メトトレキサート、6−メルカプトプリン、15−デオキシスペルグアリン、LF15−0195、ブレディニン、ブレキナール、並びにムロモナブ−CD3からなる群より選択される、請求項38に記載の組成物。
- 前記カルシニューリン阻害薬がシクロスポリンA又はシクロスポリンGである、請求項39に記載の組成物。
- 前記mTor阻害薬がシロリムス、テムシロリムス、ゾタロリムス又はエベロリムスである、請求項39に記載の組成物。
- 前記抗CD45抗体が抗CD45RB抗体である、請求項39に記載の組成物。
- 前記免疫抑制薬がベラタセプトである、請求項39に記載の組成物。
- 前記組成物と前記免疫抑制薬が互いに1ヶ月以内に投与されるためのものである、請求項39に記載の組成物。
- 前記組成物と前記免疫抑制薬が互いに1週間以内に投与されるためのものである、請求項44に記載の組成物。
- 前記被験体がヒトである、請求項23に記載の組成物。
- 非経口、静脈内、皮下、筋肉内、経皮、経口、経表面、髄腔内又は局所投与のために製剤化されている、請求項23に記載の組成物。
- 前記用途が、さらに、前記組成物の投与の6ヶ月以内における免疫抑制薬の投与を含む、請求項23に記載の組成物。
- 前記免疫抑制薬が、カルシニューリン阻害薬、タクロリムス、mTor阻害薬、フィンゴリモド、マイリオシン、アレムツズマブ、リツキシマブ、抗CD4モノクローナル抗体、抗LFA1モノクローナル抗体、抗LFA3モノクローナル抗体、抗CD45抗体、抗CD19抗体、モナバタセプト、ベラタセプト、インドリル−ASC;アザチオプリン、リンパ球免疫グロブリン及び抗胸腺細胞グロブリン[ウマ]、ミコフェノール酸モフェチル、ミコフェノール酸ナトリウム、ダクリズマブ、バシリキシマブ、シクロホスファミド、プレドニゾン、プレドニゾロン、レフルノミド、FK778、FK779、15−デオキシスペルグアリン、ブスルファン、フルダラビン、メトトレキサート、6−メルカプトプリン、15−デオキシスペルグアリン、LF15−0195、ブレディニン、ブレキナール、並びにムロモナブ−CD3からなる群より選択される、請求項48に記載の組成物。
- 前記カルシニューリン阻害薬がシクロスポリンA又はシクロスポリンGである、請求項49に記載の組成物。
- 前記mTor阻害薬がシロリムス、テムシロリムス、ゾタロリムス又はエベロリムスである、請求項49に記載の組成物。
- 前記抗CD45抗体が抗CD45RB抗体である、請求項49に記載の組成物。
- 前記免疫抑制薬がベラタセプトである、請求項49に記載の組成物。
- 前記組成物と前記免疫抑制薬が互いに1ヶ月以内に投与されるためのものである、請求項49に記載の組成物。
- 前記組成物と前記免疫抑制薬が互いに1週間以内に投与されるためのものである、請求項54に記載の組成物。
- 請求項1〜9のいずれか1に記載の抗体又はその抗原結合断片を含む単離ポリペプチド。
- 請求項1〜9のいずれか1に記載の抗体又はその抗原結合断片の作製方法であって:
(a)請求項1〜9のいずれか1に記載の抗体又はその抗原結合断片をコードしているポリヌクレオチドで形質転換した細胞を、培養培地中で、前記ポリヌクレオチドが発現される条件下で培養する工程;及び
(b)ポリペプチドを前記細胞又は培養培地から回収する工程
を含む方法。
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