JP6944888B2 - ２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの製造方法 - Google Patents
２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの製造方法 Download PDFInfo
- Publication number
- JP6944888B2 JP6944888B2 JP2018021417A JP2018021417A JP6944888B2 JP 6944888 B2 JP6944888 B2 JP 6944888B2 JP 2018021417 A JP2018021417 A JP 2018021417A JP 2018021417 A JP2018021417 A JP 2018021417A JP 6944888 B2 JP6944888 B2 JP 6944888B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- reaction
- deoxyribose
- reaction solution
- period
- reaction period
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
- -1 2-deoxyribose-5-phosphate ester Chemical class 0.000 title claims description 56
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 title claims description 45
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 claims description 328
- 108010051457 Acid Phosphatase Proteins 0.000 claims description 58
- GZCWLCBFPRFLKL-UHFFFAOYSA-N 1-prop-2-ynoxypropan-2-ol Chemical compound CC(O)COCC#C GZCWLCBFPRFLKL-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 57
- 102000013563 Acid Phosphatase Human genes 0.000 claims description 57
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-N Phosphoric acid Chemical compound OP(O)(O)=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 38
- ASJSAQIRZKANQN-CRCLSJGQSA-N 2-deoxy-D-ribose Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)CC=O ASJSAQIRZKANQN-CRCLSJGQSA-N 0.000 claims description 34
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 31
- 229910019142 PO4 Inorganic materials 0.000 claims description 23
- 239000010452 phosphate Substances 0.000 claims description 23
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K phosphate Chemical compound [O-]P([O-])([O-])=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K 0.000 claims description 21
- 230000002378 acidificating effect Effects 0.000 claims description 19
- 229910000147 aluminium phosphate Inorganic materials 0.000 claims description 19
- FQENQNTWSFEDLI-UHFFFAOYSA-J sodium diphosphate Chemical compound [Na+].[Na+].[Na+].[Na+].[O-]P([O-])(=O)OP([O-])([O-])=O FQENQNTWSFEDLI-UHFFFAOYSA-J 0.000 claims description 13
- 229940048086 sodium pyrophosphate Drugs 0.000 claims description 13
- 235000019818 tetrasodium diphosphate Nutrition 0.000 claims description 13
- 239000001577 tetrasodium phosphonato phosphate Substances 0.000 claims description 13
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 12
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 11
- KWYUFKZDYYNOTN-UHFFFAOYSA-M Potassium hydroxide Chemical compound [OH-].[K+] KWYUFKZDYYNOTN-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 9
- 235000011180 diphosphates Nutrition 0.000 claims description 9
- 239000003002 pH adjusting agent Substances 0.000 claims description 9
- 229940048084 pyrophosphate Drugs 0.000 claims description 9
- 239000002253 acid Substances 0.000 claims description 6
- RYCLIXPGLDDLTM-UHFFFAOYSA-J tetrapotassium;phosphonato phosphate Chemical compound [K+].[K+].[K+].[K+].[O-]P([O-])(=O)OP([O-])([O-])=O RYCLIXPGLDDLTM-UHFFFAOYSA-J 0.000 claims description 4
- 150000002148 esters Chemical class 0.000 claims description 2
- XPPKVPWEQAFLFU-UHFFFAOYSA-J diphosphate(4-) Chemical compound [O-]P([O-])(=O)OP([O-])([O-])=O XPPKVPWEQAFLFU-UHFFFAOYSA-J 0.000 claims 3
- KKZFLSZAWCYPOC-VPENINKCSA-N Deoxyribose 5-phosphate Chemical compound O[C@H]1C[C@H](O)[C@@H](COP(O)(O)=O)O1 KKZFLSZAWCYPOC-VPENINKCSA-N 0.000 claims 1
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 137
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 23
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 22
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 20
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 17
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 15
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 11
- 239000000047 product Substances 0.000 description 11
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 9
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 9
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 8
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 8
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 8
- XPPKVPWEQAFLFU-UHFFFAOYSA-N diphosphoric acid Chemical compound OP(O)(=O)OP(O)(O)=O XPPKVPWEQAFLFU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 7
- 102000004160 Phosphoric Monoester Hydrolases Human genes 0.000 description 6
- 108090000608 Phosphoric Monoester Hydrolases Proteins 0.000 description 6
- 125000000539 amino acid group Chemical group 0.000 description 5
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 5
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 description 4
- KBDKAJNTYKVSEK-VPENINKCSA-N 2-deoxy-alpha-D-ribose 1-phosphate Chemical compound OC[C@H]1O[C@H](OP(O)(O)=O)C[C@@H]1O KBDKAJNTYKVSEK-VPENINKCSA-N 0.000 description 3
- 241000293871 Salmonella enterica subsp. enterica serovar Typhi Species 0.000 description 3
- 241000607762 Shigella flexneri Species 0.000 description 3
- 238000000354 decomposition reaction Methods 0.000 description 3
- 230000030609 dephosphorylation Effects 0.000 description 3
- 238000006209 dephosphorylation reaction Methods 0.000 description 3
- 238000006911 enzymatic reaction Methods 0.000 description 3
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 3
- 229940098424 potassium pyrophosphate Drugs 0.000 description 3
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 3
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 3
- 230000002194 synthesizing effect Effects 0.000 description 3
- ZGCHLOWZNKRZSN-NTSWFWBYSA-N 3-deoxyglucosone Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)CC(=O)C=O ZGCHLOWZNKRZSN-NTSWFWBYSA-N 0.000 description 2
- ZKHQWZAMYRWXGA-KQYNXXCUSA-J ATP(4-) Chemical compound C1=NC=2C(N)=NC=NC=2N1[C@@H]1O[C@H](COP([O-])(=O)OP([O-])(=O)OP([O-])([O-])=O)[C@@H](O)[C@H]1O ZKHQWZAMYRWXGA-KQYNXXCUSA-J 0.000 description 2
- ZKHQWZAMYRWXGA-UHFFFAOYSA-N Adenosine triphosphate Natural products C1=NC=2C(N)=NC=NC=2N1C1OC(COP(O)(=O)OP(O)(=O)OP(O)(O)=O)C(O)C1O ZKHQWZAMYRWXGA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000863012 Caulobacter Species 0.000 description 2
- RGHNJXZEOKUKBD-UHFFFAOYSA-N D-gluconic acid Natural products OCC(O)C(O)C(O)C(O)C(O)=O RGHNJXZEOKUKBD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- RGHNJXZEOKUKBD-SQOUGZDYSA-N Gluconic acid Natural products OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)C(O)=O RGHNJXZEOKUKBD-SQOUGZDYSA-N 0.000 description 2
- 241000589308 Methylobacterium extorquens Species 0.000 description 2
- 108700019535 Phosphoprotein Phosphatases Proteins 0.000 description 2
- 102000045595 Phosphoprotein Phosphatases Human genes 0.000 description 2
- 235000001014 amino acid Nutrition 0.000 description 2
- 150000001413 amino acids Chemical class 0.000 description 2
- 239000002585 base Substances 0.000 description 2
- 230000003139 buffering effect Effects 0.000 description 2
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 2
- 238000010353 genetic engineering Methods 0.000 description 2
- 239000000174 gluconic acid Substances 0.000 description 2
- 235000012208 gluconic acid Nutrition 0.000 description 2
- 239000000463 material Substances 0.000 description 2
- 229910052751 metal Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000002184 metal Substances 0.000 description 2
- 229910021645 metal ion Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000002777 nucleoside Substances 0.000 description 2
- 125000003835 nucleoside group Chemical group 0.000 description 2
- 229920000137 polyphosphoric acid Polymers 0.000 description 2
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 2
- GTHPEIHLIPRMPG-LHXJYSSHSA-N (3s,4r)-3,4,5-trihydroxypentanal Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)CC=O.OC[C@@H](O)[C@@H](O)CC=O GTHPEIHLIPRMPG-LHXJYSSHSA-N 0.000 description 1
- WPAMZTWLKIDIOP-WVZVXSGGSA-N 2-dehydro-3-deoxy-D-gluconic acid Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)CC(=O)C(O)=O WPAMZTWLKIDIOP-WVZVXSGGSA-N 0.000 description 1
- ZVQAVWAHRUNNPG-LMVFSUKVSA-N 2-deoxy-alpha-D-ribopyranose Chemical compound O[C@@H]1C[C@H](O)[C@H](O)CO1 ZVQAVWAHRUNNPG-LMVFSUKVSA-N 0.000 description 1
- 241000606215 Bacteroides vulgatus Species 0.000 description 1
- 241000589174 Bradyrhizobium japonicum Species 0.000 description 1
- 241000190885 Capnocytophaga ochracea Species 0.000 description 1
- 241000252867 Cupriavidus metallidurans Species 0.000 description 1
- 241001662504 Desulfotalea psychrophila Species 0.000 description 1
- 241001085200 Desulfovibrio magneticus Species 0.000 description 1
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000605108 Flavobacterium johnsoniae Species 0.000 description 1
- 241001135321 Francisella philomiragia Species 0.000 description 1
- 241000589602 Francisella tularensis Species 0.000 description 1
- WHUUTDBJXJRKMK-UHFFFAOYSA-N Glutamic acid Natural products OC(=O)C(N)CCC(O)=O WHUUTDBJXJRKMK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- DHMQDGOQFOQNFH-UHFFFAOYSA-N Glycine Natural products NCC(O)=O DHMQDGOQFOQNFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000004471 Glycine Substances 0.000 description 1
- 241001444440 Granulibacter bethesdensis Species 0.000 description 1
- 241000588915 Klebsiella aerogenes Species 0.000 description 1
- 241000588747 Klebsiella pneumoniae Species 0.000 description 1
- 241000589195 Mesorhizobium loti Species 0.000 description 1
- 241000272433 Methylobacterium populi Species 0.000 description 1
- 241000589346 Methylococcus capsulatus Species 0.000 description 1
- 241000588772 Morganella morganii Species 0.000 description 1
- 229920000388 Polyphosphate Polymers 0.000 description 1
- 241001135221 Prevotella intermedia Species 0.000 description 1
- 102100035703 Prostatic acid phosphatase Human genes 0.000 description 1
- 241000588778 Providencia stuartii Species 0.000 description 1
- 241000588746 Raoultella planticola Species 0.000 description 1
- PYMYPHUHKUWMLA-LMVFSUKVSA-N Ribose Natural products OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)C=O PYMYPHUHKUWMLA-LMVFSUKVSA-N 0.000 description 1
- 241000606178 Sebaldella termitidis Species 0.000 description 1
- 241000607720 Serratia Species 0.000 description 1
- 241000607764 Shigella dysenteriae Species 0.000 description 1
- 241000607760 Shigella sonnei Species 0.000 description 1
- 241000588717 Shimwellia blattae Species 0.000 description 1
- 241000122973 Stenotrophomonas maltophilia Species 0.000 description 1
- AYFVYJQAPQTCCC-UHFFFAOYSA-N Threonine Natural products CC(O)C(N)C(O)=O AYFVYJQAPQTCCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000004473 Threonine Substances 0.000 description 1
- KZSNJWFQEVHDMF-UHFFFAOYSA-N Valine Natural products CC(C)C(N)C(O)=O KZSNJWFQEVHDMF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000589636 Xanthomonas campestris Species 0.000 description 1
- 241000588902 Zymomonas mobilis Species 0.000 description 1
- 229910052783 alkali metal Inorganic materials 0.000 description 1
- HMFHBZSHGGEWLO-UHFFFAOYSA-N alpha-D-Furanose-Ribose Natural products OCC1OC(O)C(O)C1O HMFHBZSHGGEWLO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- 239000003957 anion exchange resin Substances 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 239000012228 culture supernatant Substances 0.000 description 1
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 1
- 125000000118 dimethyl group Chemical group [H]C([H])([H])* 0.000 description 1
- 229940092559 enterobacter aerogenes Drugs 0.000 description 1
- 229940118764 francisella tularensis Drugs 0.000 description 1
- 235000013922 glutamic acid Nutrition 0.000 description 1
- 239000004220 glutamic acid Substances 0.000 description 1
- 125000000291 glutamic acid group Chemical group N[C@@H](CCC(O)=O)C(=O)* 0.000 description 1
- 125000003630 glycyl group Chemical group [H]N([H])C([H])([H])C(*)=O 0.000 description 1
- 238000004128 high performance liquid chromatography Methods 0.000 description 1
- 125000004435 hydrogen atom Chemical group [H]* 0.000 description 1
- 125000002887 hydroxy group Chemical group [H]O* 0.000 description 1
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 description 1
- 229910000000 metal hydroxide Inorganic materials 0.000 description 1
- 150000004692 metal hydroxides Chemical class 0.000 description 1
- 229910000403 monosodium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000019799 monosodium phosphate Nutrition 0.000 description 1
- 229940076266 morganella morganii Drugs 0.000 description 1
- 239000003960 organic solvent Substances 0.000 description 1
- 239000000825 pharmaceutical preparation Substances 0.000 description 1
- 229940127557 pharmaceutical product Drugs 0.000 description 1
- 150000003014 phosphoric acid esters Chemical class 0.000 description 1
- 239000011574 phosphorus Substances 0.000 description 1
- 229910052698 phosphorus Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000013612 plasmid Substances 0.000 description 1
- 239000001205 polyphosphate Substances 0.000 description 1
- 235000011176 polyphosphates Nutrition 0.000 description 1
- 159000000001 potassium salts Chemical class 0.000 description 1
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 229940005657 pyrophosphoric acid Drugs 0.000 description 1
- 238000011002 quantification Methods 0.000 description 1
- 239000002994 raw material Substances 0.000 description 1
- 230000035484 reaction time Effects 0.000 description 1
- 125000000548 ribosyl group Chemical group C1([C@H](O)[C@H](O)[C@H](O1)CO)* 0.000 description 1
- 229940007046 shigella dysenteriae Drugs 0.000 description 1
- 229940115939 shigella sonnei Drugs 0.000 description 1
- AJPJDKMHJJGVTQ-UHFFFAOYSA-M sodium dihydrogen phosphate Chemical compound [Na+].OP(O)([O-])=O AJPJDKMHJJGVTQ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 159000000000 sodium salts Chemical class 0.000 description 1
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 1
- 230000002269 spontaneous effect Effects 0.000 description 1
- 230000000087 stabilizing effect Effects 0.000 description 1
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 1
- 125000000341 threoninyl group Chemical group [H]OC([H])(C([H])([H])[H])C([H])(N([H])[H])C(*)=O 0.000 description 1
- UNXRWKVEANCORM-UHFFFAOYSA-N triphosphoric acid Chemical compound OP(O)(=O)OP(O)(=O)OP(O)(O)=O UNXRWKVEANCORM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- OUYCCCASQSFEME-UHFFFAOYSA-N tyrosine Natural products OC(=O)C(N)CC1=CC=C(O)C=C1 OUYCCCASQSFEME-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 125000001493 tyrosinyl group Chemical group [H]OC1=C([H])C([H])=C(C([H])=C1[H])C([H])([H])C([H])(N([H])[H])C(*)=O 0.000 description 1
- 239000004474 valine Substances 0.000 description 1
- 125000002987 valine group Chemical group [H]N([H])C([H])(C(*)=O)C([H])(C([H])([H])[H])C([H])([H])[H] 0.000 description 1
Images
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
本発明は、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの製造方法に関する。
２−デオキシリボース−１−リン酸エステルは、医薬品などに用いられる各種のヌクレオシドを合成するための重要な中間体である。例えば特許文献１〜２には、複数種類の酵素を使用して、グルコン酸から、２−デヒドロ−３−デオキシグルコン酸、２−デオキシリボース及び２−デオキシリボース−５−リン酸エステルを順次経由して、２−デオキシリボース−１−リン酸エステルを製造する製造方法が開示されている。この製造方法においては、酸性ホスファターゼの存在下、２−デオキシリボースとリン酸供与体とから２−デオキシリボース−５−リン酸エステルを合成する。
酸性ホスファターゼの存在下、２−デオキシリボースとリン酸供与体とから２−デオキシリボース−５−リン酸エステルを合成する方法については、例えば、特許文献３にも開示されている。
酸性ホスファターゼの存在下、２−デオキシリボースとリン酸供与体とから２−デオキシリボース−５−リン酸エステルを合成する方法については、例えば、特許文献３にも開示されている。
例えば特許文献１〜２の製造方法において２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの収率が上がれば、２−デオキシリボース−１−リン酸エステルの収率が向上し、延いては各種のヌクレオシドの生産効率が向上する。
本開示の実施形態は、上記状況のもとになされた。
本開示の実施形態は、酸性ホスファターゼの存在下、２−デオキシリボースとリン酸供与体とから２−デオキシリボース−５−リン酸エステルを製造する製造方法であって、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの収率の高い製造方法を提供することを目的とし、これを解決することを課題とする。
前記課題を解決するための具体的手段には、以下の態様が含まれる。
［１］ 酸性ホスファターゼの存在下、２−デオキシリボースとリン酸供与体とから２−デオキシリボース−５−リン酸エステルを製造する製造方法であって、反応液のｐＨが、反応開始時において４．０超６．０以下であり、反応期間の前半においてよりも後半において低い、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの製造方法。
［２］ 酸性ホスファターゼの存在下、２−デオキシリボースとリン酸供与体とから２−デオキシリボース−５−リン酸エステルを製造する製造方法であって、反応液のｐＨが、反応期間の前半において４．０超６．０以下の範囲であり、反応期間の後半において３．０以上４．５未満の範囲である、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの製造方法。
［３］ 前記反応期間の前半が、少なくとも反応期間全体の５分の１以上を占め、前記反応期間の後半が、少なくとも反応期間全体の２分の１以上を占める、［１］又は［２］に記載の製造方法。
［４］ 反応開始時における前記反応液のｐＨをｐＨ（ａ）とし、反応終止時における前記反応液のｐＨをｐＨ（ｂ）としたとき、ｐＨ（ａ）−ｐＨ（ｂ）＞０．１である、［１］〜［３］のいずれか１項に記載の製造方法。
［５］ 前記反応期間の前半における前記反応液のｐＨが、反応開始時における前記反応液のｐＨに対して±０．１の範囲である、［１］〜［４］のいずれか１項に記載の製造方法。
［６］ 前記反応液の温度が０℃〜３０℃の範囲である、［１］〜［５］のいずれか１項に記載の製造方法。
［７］ 前記リン酸供与体がピロリン酸又はピロリン酸塩を含む、［１］〜［６］のいずれか１項に記載の製造方法。
［８］ 前記リン酸供与体が酸性ピロリン酸ナトリウムを含む、［１］〜［７］のいずれか１項に記載の製造方法。
［９］ 前記反応液のｐＨが前記反応期間の前半においてよりも後半において低いこと、又は、前記反応液のｐＨが前記反応期間の前半において４．０超６．０以下の範囲であり前記反応期間の後半において３．０以上４．５未満の範囲であることが、ｐＨ調整剤を用いて前記反応液のｐＨを調整することによって実現される、［１］〜［８］のいずれか１項に記載の製造方法。
［１０］ 前記ｐＨ調整剤が、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、塩酸、リン酸、ピロリン酸、ピロリン酸ナトリウム及びピロリン酸カリウムからなる群から選ばれる少なくとも１種を含む、［９］に記載の製造方法。
［１１］ 反応開始時において、前記反応液中に、酸性ホスファターゼが２−デオキシリボース１ｇに対して１０ユニット以上存在する、［１］〜［１０］のいずれか１項に記載の製造方法。
［２］ 酸性ホスファターゼの存在下、２−デオキシリボースとリン酸供与体とから２−デオキシリボース−５−リン酸エステルを製造する製造方法であって、反応液のｐＨが、反応期間の前半において４．０超６．０以下の範囲であり、反応期間の後半において３．０以上４．５未満の範囲である、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの製造方法。
［３］ 前記反応期間の前半が、少なくとも反応期間全体の５分の１以上を占め、前記反応期間の後半が、少なくとも反応期間全体の２分の１以上を占める、［１］又は［２］に記載の製造方法。
［４］ 反応開始時における前記反応液のｐＨをｐＨ（ａ）とし、反応終止時における前記反応液のｐＨをｐＨ（ｂ）としたとき、ｐＨ（ａ）−ｐＨ（ｂ）＞０．１である、［１］〜［３］のいずれか１項に記載の製造方法。
［５］ 前記反応期間の前半における前記反応液のｐＨが、反応開始時における前記反応液のｐＨに対して±０．１の範囲である、［１］〜［４］のいずれか１項に記載の製造方法。
［６］ 前記反応液の温度が０℃〜３０℃の範囲である、［１］〜［５］のいずれか１項に記載の製造方法。
［７］ 前記リン酸供与体がピロリン酸又はピロリン酸塩を含む、［１］〜［６］のいずれか１項に記載の製造方法。
［８］ 前記リン酸供与体が酸性ピロリン酸ナトリウムを含む、［１］〜［７］のいずれか１項に記載の製造方法。
［９］ 前記反応液のｐＨが前記反応期間の前半においてよりも後半において低いこと、又は、前記反応液のｐＨが前記反応期間の前半において４．０超６．０以下の範囲であり前記反応期間の後半において３．０以上４．５未満の範囲であることが、ｐＨ調整剤を用いて前記反応液のｐＨを調整することによって実現される、［１］〜［８］のいずれか１項に記載の製造方法。
［１０］ 前記ｐＨ調整剤が、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、塩酸、リン酸、ピロリン酸、ピロリン酸ナトリウム及びピロリン酸カリウムからなる群から選ばれる少なくとも１種を含む、［９］に記載の製造方法。
［１１］ 反応開始時において、前記反応液中に、酸性ホスファターゼが２−デオキシリボース１ｇに対して１０ユニット以上存在する、［１］〜［１０］のいずれか１項に記載の製造方法。
本開示によれば、酸性ホスファターゼの存在下、２−デオキシリボースとリン酸供与体とから２−デオキシリボース−５−リン酸エステルを製造する製造方法であって、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの収率の高い製造方法が提供される。
以下に、本開示の実施形態について説明する。これらの説明及び実施例は実施形態を例示するものであり、実施形態の範囲を制限するものではない。
本開示において「〜」を用いて示された数値範囲は、「〜」の前後に記載される数値をそれぞれ最小値及び最大値として含む範囲を示す。
本開示において「工程」との語は、独立した工程だけでなく、他の工程と明確に区別できない場合であってもその工程の所期の目的が達成されれば、本用語に含まれる。
本開示において反応液中の各成分の量について言及する場合、反応液中に各成分に該当する物質が複数種存在する場合には、特に断らない限り、反応液中に存在する当該複数種の物質の合計量を意味する。
＜２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの製造方法＞
第一の本実施形態は、酸性ホスファターゼの存在下、２−デオキシリボースとリン酸供与体とから２−デオキシリボース−５−リン酸エステルを製造する製造方法であって、反応液のｐＨが、反応開始時において４．０超６．０以下であり、反応期間の前半においてよりも後半において低い製造方法である。
第一の本実施形態は、酸性ホスファターゼの存在下、２−デオキシリボースとリン酸供与体とから２−デオキシリボース−５−リン酸エステルを製造する製造方法であって、反応液のｐＨが、反応開始時において４．０超６．０以下であり、反応期間の前半においてよりも後半において低い製造方法である。
第二の本実施形態は、酸性ホスファターゼの存在下、２−デオキシリボースとリン酸供与体とから２−デオキシリボース−５−リン酸エステルを製造する製造方法であって、反応液のｐＨが、反応期間の前半において４．０超６．０以下の範囲であり、反応期間の後半において３．０以上４．５未満の範囲である製造方法である。
以下、第一の本実施形態と第二の本実施形態とに共通する事項については、本実施形態と総称して説明する。
本実施形態によれば、反応期間全体を長くし過ぎることなく、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの収率を高めることができる。この機序として、下記が推測される。
酸性ホスファターゼは、リン酸化合物を加水分解してリン酸を脱離させる脱リン酸化酵素であり、至適ｐＨが酸性側にある酵素である。酸性ホスファターゼは一般的に、ｐＨ３．０〜６．０程度において脱リン酸化活性を発揮するが、至適ｐＨは４．０〜６．０程度である。つまり、酸性ホスファターゼは、酸性側でも比較的高いｐＨにおいて高い脱リン酸化活性を発揮する。また、至適ｐＨであるｐＨ４．０〜６．０程度において、酸性ホスファターゼの存在下、２−デオキシリボースとリン酸供与体とを共存させると、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルが生じる（本開示において、この酵素反応を「２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの合成反応」という。）。ただし、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの濃度が高くなれば、酸性ホスファターゼによって２−デオキシリボース−５−リン酸エステルが脱リン酸化される酵素反応が進行する（本開示において、この酵素反応を「２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの分解反応」という。）。
本発明者が検討したところ、反応液のｐＨを酸性ホスファターゼの至適ｐＨに保つと、ある時点で２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの収率が低下しはじめ、所望の収率には達しにくいことが分かった（例えば、図１Ｂの比較例１〜２）。これは、至適ｐＨにおいては酸性ホスファターゼの脱リン酸化活性が高く、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルが生成しても脱リン酸化されて２−デオキシリボースに戻ることによるものと推測される。一方、反応液のｐＨを酸性ホスファターゼの活性域ではあるが至適ｐＨよりも低い範囲に保つと、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの分解反応を抑えつつ合成反応を進行させることができ、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの収率は時間とともに徐々に上昇を続けるが、所望の収率に達するまでに長時間を要するか又は長時間を要しても所望の収率に達しにくいことが分かった（例えば、図１Ｂの比較例３）。
そこで、第一の本実施形態においては、反応液のｐＨを、反応開始時において４．０超６．０以下とし、反応期間の前半においてよりも後半において低くする（言い換えると、反応液のｐＨを、反応期間の後半においてよりも前半において高くする。）。第二の本実施形態においては、反応液のｐＨを、反応期間の前半において４．０超６．０以下の範囲とし、反応期間の後半において３．０以上４．５未満の範囲とする。
これにより、２−デオキシリボース及びリン酸供与体の濃度が高く且つ２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの濃度が低い期間であるところの反応期間前半においては、酸性ホスファターゼに２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの合成反応を活発に行わせる。一方で、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの濃度が高まった期間であるところの反応期間後半においては、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの分解反応を抑えつつ合成反応を進行させる。
したがって、第一の本実施形態及び第二の本実施形態によれば、反応期間全体を長くし過ぎることなく、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの最終的な収率を高めることができる。
これにより、２−デオキシリボース及びリン酸供与体の濃度が高く且つ２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの濃度が低い期間であるところの反応期間前半においては、酸性ホスファターゼに２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの合成反応を活発に行わせる。一方で、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの濃度が高まった期間であるところの反応期間後半においては、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの分解反応を抑えつつ合成反応を進行させる。
したがって、第一の本実施形態及び第二の本実施形態によれば、反応期間全体を長くし過ぎることなく、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの最終的な収率を高めることができる。
以下、本実施形態における反応期間の区分及び反応液のｐＨについて詳細に説明する。
［反応期間の区分］
本実施形態において、反応期間全体は「反応期間の前半」と「反応期間の後半」とに２分される。「反応期間の前半」とは、反応開始時を始まりとする期間であり、「反応期間の後半」とは、「反応期間の前半」に続く期間であって反応終止時を終わりとする期間である。
本実施形態において、反応期間全体は「反応期間の前半」と「反応期間の後半」とに２分される。「反応期間の前半」とは、反応開始時を始まりとする期間であり、「反応期間の後半」とは、「反応期間の前半」に続く期間であって反応終止時を終わりとする期間である。
本実施形態において反応期間の前半と後半との境界は、例えば、下記の考え方によって設定することができる。
酸性ホスファターゼは一般的にｐＨ４．５〜５．５の範囲において最も活性が高いところ、ｐＨ４．５〜５．５の範囲で２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの合成反応を継続すると、収率は当初は順調に上昇するが、収率の上昇は次第に鈍化し、ある時点で収率は低下に転じる（図１Ｂの比較例１〜２を参照）。ｐＨ４．５〜５．５の範囲で反応を継続した場合における２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの収率を予め調べ、反応時間ごとの収率を示すグラフを描き、収率の上昇が鈍化する時期を前半と後半との境界とする。
上記の考え方を採用すれば、前述した機序に適ったｐＨ制御を実現できる。また、上記の考え方を採用すれば、反応開始時の材料又は酸性ホスファターゼの濃度、反応温度などを変更しても、それぞれの場合に応じた適切な時期に反応期間の前半と後半との境界を設定することができる。
酸性ホスファターゼは一般的にｐＨ４．５〜５．５の範囲において最も活性が高いところ、ｐＨ４．５〜５．５の範囲で２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの合成反応を継続すると、収率は当初は順調に上昇するが、収率の上昇は次第に鈍化し、ある時点で収率は低下に転じる（図１Ｂの比較例１〜２を参照）。ｐＨ４．５〜５．５の範囲で反応を継続した場合における２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの収率を予め調べ、反応時間ごとの収率を示すグラフを描き、収率の上昇が鈍化する時期を前半と後半との境界とする。
上記の考え方を採用すれば、前述した機序に適ったｐＨ制御を実現できる。また、上記の考え方を採用すれば、反応開始時の材料又は酸性ホスファターゼの濃度、反応温度などを変更しても、それぞれの場合に応じた適切な時期に反応期間の前半と後半との境界を設定することができる。
本実施形態において反応期間の前半は、反応期間全体を長くし過ぎない観点から、少なくとも反応期間全体の５分の１以上を占めることが好ましく、４分の１以上を占めることがより好ましく、３分の１以上を占めることが更に好ましい。また、反応期間の後半は、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの収率の観点から、少なくとも反応期間全体の２分の１以上を占めることが好ましい。
［反応液のｐＨ］
第一の本実施形態は、反応液のｐＨが、反応開始時において４．０超６．０以下であり、反応期間の前半においてよりも後半において低い。ここで、ｐＨが低いとは、有意にｐＨが低いことを意味する。
第一の本実施形態は、反応液のｐＨが、反応開始時において４．０超６．０以下であり、反応期間の前半においてよりも後半において低い。ここで、ｐＨが低いとは、有意にｐＨが低いことを意味する。
第一の本実施形態は、反応期間の前半の間、反応液のｐＨが一定でもよく変動してもよい。また、第一の本実施形態は、反応期間の後半の間、反応液のｐＨが一定でもよく変動してもよい。
第一の本実施形態は、反応液のｐＨが、反応期間の前半と後半との境界において低下する形態、反応期間の前半から後半へ段階的に低下する形態、反応期間全体を通じて連続的に低下する形態、反応期間の前半に連続的に低下し後半において低めを保つ形態などのいずれでもよい。
第一の本実施形態においては、反応期間全体を長くし過ぎない観点から、反応開始時における反応液のｐＨが４．０超６．０以下である。反応開始時における反応液のｐＨは、４．１以上６．０以下がより好ましく、４．１以上５．５以下が更に好ましく、４．１以上５．３以下が更に好ましい。
第一の本実施形態は、反応開始時における反応液のｐＨをｐＨ（ａ）とし、反応終止時における反応液のｐＨをｐＨ（ｂ）としたとき、｛ｐＨ（ａ）−ｐＨ（ｂ）｝が０．１超であることが好ましい。これにより、反応期間全体を長くし過ぎることなく２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの収率を上げることができる。｛ｐＨ（ａ）−ｐＨ（ｂ）｝は、０．２超がより好ましく、０．３超が更に好ましく、０．３５超が更に好ましい。｛ｐＨ（ａ）−ｐＨ（ｂ）｝は、反応期間全体を通じて酸性ホスファターゼの活性を得る観点から、２．５以下が好ましく、２．０以下がより好ましく、１．５以下が更に好ましく、１．０以下が更に好ましい。
第一の本実施形態において、前半の中間的なｐＨと、後半の中間的なｐＨとの差は、反応期間全体を長くし過ぎることなく２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの収率を上げる観点から、０．１超が好ましく、０．２超がより好ましく、０．３超が更に好ましく、０．３５超が更に好ましい。前半の中間的なｐＨと、後半の中間的なｐＨとの差は、反応期間全体を通じて酸性ホスファターゼの活性を得る観点から、２．５以下が好ましく、２．０以下がより好ましく、１．５以下が更に好ましく、１．０以下が更に好ましい。
第二の本実施形態は、反応液のｐＨが、反応期間の前半において４．０超６．０以下の範囲であり、反応期間の後半において３．０以上４．５未満の範囲である。
第二の本実施形態は、反応期間の前半の間、反応液のｐＨが一定でもよく変動してもよい。また、第二の本実施形態は、反応期間の後半の間、反応液のｐＨが一定でもよく変動してもよい。
第二の本実施形態には、反応液のｐＨが、前半と後半とで有意な差がない形態、前半においてよりも後半において低い形態、前半においてよりも後半において高い形態が含まれる。２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの収率を上げる観点からは、反応液のｐＨが、前半と後半とで有意な差がない形態、又は、前半においてよりも後半において低い形態が好ましい。ここで、ｐＨが低いとは、有意にｐＨが低いことを意味する。
第二の本実施形態としては、反応期間全体を長くし過ぎることなく２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの収率を上げる観点から、反応液のｐＨが、前半においてよりも後半において低い形態が好ましい。この場合、反応液のｐＨは、反応期間の前半と後半との境界において低下する形態、反応期間の前半から後半へ段階的に低下する形態、反応期間全体を通じて連続的に低下する形態、反応期間の前半に連続的に低下し後半において低めを保つ形態などのいずれでもよい。
第二の本実施形態においては、反応開始時における反応液のｐＨを、４．０超６．０以下とする。反応開始時における反応液のｐＨは、反応期間全体を長くし過ぎない観点から、４．１以上６．０以下がより好ましく、４．１以上５．５以下が更に好ましく、４．１以上５．３以下が更に好ましい。
第二の本実施形態における反応液のｐＨは、反応期間の前半において４．０超６．０以下の範囲である。第二の本実施形態において、反応期間の前半のｐＨは、４．１以上６．０以下の範囲がより好ましく、４．１以上５．５以下の範囲が更に好ましく、４．１以上５．３以下の範囲が更に好ましい。
第二の本実施形態における反応液のｐＨは、反応期間の後半において３．０以上４．５未満の範囲である。第二の本実施形態において、反応期間の後半のｐＨは、３．０以上４．４以下の範囲がより好ましく、３．２以上４．４以下の範囲が更に好ましく、３．５以上４．３以下の範囲が更に好ましい。
第二の本実施形態は、反応開始時における反応液のｐＨをｐＨ（ａ）とし、反応終止時における反応液のｐＨをｐＨ（ｂ）としたとき、｛ｐＨ（ａ）−ｐＨ（ｂ）｝が０．１超であることが好ましい。これにより、反応期間全体を長くし過ぎることなく２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの収率を上げることができる。｛ｐＨ（ａ）−ｐＨ（ｂ）｝は、０．２超がより好ましく、０．３超が更に好ましく、０．３５超が更に好ましい。｛ｐＨ（ａ）−ｐＨ（ｂ）｝は、反応期間全体を通じて酸性ホスファターゼの活性を得る観点から、２．５以下が好ましく、２．０以下がより好ましく、１．５以下が更に好ましく、１．０以下が更に好ましい。
本実施形態は、反応期間中に反応液のｐＨを所定の範囲に制御してもよく、反応期間中に反応液のｐＨを制御せず成り行きにまかせてもよい。酸性ホスファターゼの存在下、２−デオキシリボースとリン酸供与体とから２−デオキシリボース−５−リン酸エステルを製造する工程においては、反応液に緩衝作用が乏しい場合、例えばリン酸供与体に由来するイオンによって反応液のｐＨが自ずと変動することがある。反応期間中の自発的なｐＨ変動が、第一の本実施形態又は第二の本実施形態に当たる場合は、反応期間中に反応液のｐＨを制御せず成り行きにまかせてよい。
本実施形態は、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの収率を安定させる観点、又は、反応期間全体を長くし過ぎない観点から、反応期間中に反応液のｐＨを所定の範囲に制御することが好ましい。
本実施形態において反応期間中に反応液のｐＨを所定の範囲に制御する場合は、反応期間全体を長くし過ぎない観点から、少なくとも反応期間全体の５分の１以上を前半として、前半及び後半のｐＨを制御することが好ましく、反応期間全体の４分の１以上を前半とすることがより好ましく、反応期間全体の３分の１以上を前半とすることが更に好ましい。また、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの収率の観点から、少なくとも反応期間全体の２分の１以上を後半とすることが好ましい。
上記の期間区分で、第一の本実施形態又は第二の本実施形態を実施することができ、反応液のｐＨを前述の好ましい範囲になるように制御する。
上記の期間区分で、第一の本実施形態又は第二の本実施形態を実施することができ、反応液のｐＨを前述の好ましい範囲になるように制御する。
本実施形態において反応期間中に反応液のｐＨを所定の範囲に制御する場合は、反応期間全体を長くし過ぎない観点から、反応期間の前半における反応液のｐＨを、反応開始時における反応液のｐＨに対して±０．１の範囲内に保つことが好ましい。反応期間の前半における反応液のｐＨは、反応開始時における反応液のｐＨに対して、±０．０８の範囲内がより好ましく、±０．０５の範囲内が更に好ましい。
本実施形態において反応期間中に反応液のｐＨを制御せず成り行きにまかせる場合は、反応開始時における反応液のｐＨが０．３〜０．４程度低下した時点を前半と後半の境界と見ることができる。反応開始時の反応液のｐＨが酸性ホスファターゼの至適ｐＨであり且つ反応液に緩衝作用が乏しい場合、一般的には、反応開始から６時間〜８時間程度で反応液のｐＨが０．３〜０．４程度低下する。
したがって、本実施形態の一例においては、反応開始から６時間以上８時間以下の期間が反応期間の前半であり、残りの期間が反応期間の後半である。
上記の期間区分で、第一の本実施形態又は第二の本実施形態を実施することができる。
したがって、本実施形態の一例においては、反応開始から６時間以上８時間以下の期間が反応期間の前半であり、残りの期間が反応期間の後半である。
上記の期間区分で、第一の本実施形態又は第二の本実施形態を実施することができる。
以下、本実施形態における工程、酵素、化学物質について詳細に説明する。
本実施形態は、２−デオキシリボースとリン酸供与体とから２−デオキシリボース−５−リン酸エステルを得るまでの製造方法であってもよく、２−デオキシリボース−１−リン酸エステルを製造する製造方法の一部であってもよい。本実施形態は、例えば特開２０１２−８０８７５号公報又は特開２０１６−４７０６６号公報に開示されている、グルコン酸から、２−デヒドロ−３−デオキシグルコン酸、２−デオキシリボース及び２−デオキシリボース−５−リン酸エステルを順次経由して、２−デオキシリボース−１−リン酸エステルを製造する製造方法の一部であってもよい。
本実施形態の製造方法は、例えば、水に２−デオキシリボースとリン酸供与体とが溶解又は分散した液体組成物を用意し、当該液体組成物のｐＨを所定の範囲に調整し、そこに酸性ホスファターゼを添加することで開始する。
本実施形態において、２−デオキシリボースとリン酸供与体との反応で生成した２−デオキシリボース−５−リン酸エステルは、反応液中に存在する過剰なリン酸供与体やリン酸塩を除去して精製することで、２−デオキシリボース−１−リン酸エステルを製造する原料に使用することができる。前記のリン酸供与体やリン酸塩を除去する方法としては、例えば、金属水酸化物を添加してリン酸の金属塩として沈殿除去する方法、陰イオン交換樹脂などによって除去する方法などがある。
本実施形態における２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの収率としては、反応開始時の２−デオキシリボース量に対して８５ｍｏｌ％以上が好ましく、９０ｍｏｌ％以上がより好ましい。
本実施形態の製造方法は、反応期間の長さに特に制限はないが、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの収率が、反応開始時の２−デオキシリボース量に対して８５ｍｏｌ％以上（より好ましくは９０ｍｏｌ％以上）になるまで反応を継続することが好ましい。反応期間の長さは、例えば、２時間〜７２時間であり、好ましくは１０時間〜４８時間であり、より好ましくは２０時間〜３５時間であり、最も好ましくは２５時間〜３０時間である。
［反応液］
本実施形態において、酸性ホスファターゼの存在下、２−デオキシリボースとリン酸供与体とから２−デオキシリボース−５−リン酸エステルを合成する場である反応液は、水を主溶媒とすることが好ましく、必要に応じてアルコール、ジメチルスルホキシド等の有機溶媒を適量添加してもよい。酸性ホスファターゼのうち、金属イオンを補因子とする酸性ホスファターゼを使用する場合は、補因子となる金属イオンを反応液中に添加する。
本実施形態において、酸性ホスファターゼの存在下、２−デオキシリボースとリン酸供与体とから２−デオキシリボース−５−リン酸エステルを合成する場である反応液は、水を主溶媒とすることが好ましく、必要に応じてアルコール、ジメチルスルホキシド等の有機溶媒を適量添加してもよい。酸性ホスファターゼのうち、金属イオンを補因子とする酸性ホスファターゼを使用する場合は、補因子となる金属イオンを反応液中に添加する。
反応液の温度は、酸性ホスファターゼの活性が得られる温度であれば特に制限はない。反応液の温度は、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの収率の観点から、０℃〜３０℃が好ましく、０℃〜２０℃がより好ましく、０℃〜１５℃が更に好ましく、０℃〜１０℃が更に好ましく、０℃〜５℃が更に好ましい。
［酸性ホスファターゼ］
酸性ホスファターゼは、ホスファターゼ（ＥＣ３．１．３）のうち、至適ｐＨが酸性側にある酵素の総称である。酸性ホスファターゼの至適ｐＨは一般的に４．０〜６．０程度である。
酸性ホスファターゼは、ホスファターゼ（ＥＣ３．１．３）のうち、至適ｐＨが酸性側にある酵素の総称である。酸性ホスファターゼの至適ｐＨは一般的に４．０〜６．０程度である。
本実施形態における酸性ホスファターゼは、その種類に特に制限はなく、種々の微生物由来の酸性ホスファターゼが使用できる。酸性ホスファターゼは、１種単独で用いてもよいし、２種以上を併用してもよい。
本実施形態における酸性ホスファターゼは、野生型（ＥＣ３．１．３．２）でもよく、野生型の少なくとも１つのアミノ酸を他のアミノ酸に置換して酵素性能を向上させた変異型でもよい。
野生型酸性ホスファターゼとしては、例えば、Bacteroides vulgatus（GenBank受入番号ABR38243）、Bradyrhizobium japonicum（GenBank受入番号BAC50005）、Capnocytophaga ochracea（GenBank受入番号ACU92248）、Caulobacter arescentus（GenBank受入番号YP_002515738）、Caulobacter segnis（GenBank受入番号EEZ38419）、Desulfotalea psychrophila（GenBank受入番号YP_066101）、Desulfovibrio magneticus（GenBank受入番号YP_002953066）、Enterobacter aerogenes（GenBank受入番号ABW37174）、Escherichia blattae（GenBank受入番号BAA84942）、Escherichia coli（GenBank受入番号CAA60534）、Fibrobacter succinogenes（GenBank受入番号YP_003250152）、Flavobacterium johnsoniae（GenBank受入番号YP_001193982）、Francisella philomiragia（GenBank受入番号ABZ87670）、Francisella tularensis（GenBank受入番号YP_169222）、Granulibacter bethesdensis（GenBank受入番号YP_745642）、Helocobacter pylori（GenBank受入番号CAD21745）、Klebsiella pneumoniae（GenBank受入番号BAH62928）、Mesorhizobium loti（GenBank受入番号NP_103983）、Methylobacterium chloromethanicum（GenBank受入番号ACK82712）、Methylobacterium extorquens（GenBank受入番号YP_001639040）、Methylobacterium populi（GenBank受入番号ACB79832）、Methylobacterium radiotolerans（GenBank受入番号ACB26070）、Methylococcus capsulatus（GenBank受入番号YP_114641）、Morganella morganii（GenBank受入番号BAA96744）、Phenylococcus capsulatus（GenBank受入番号YP_002129169）、Prevotella intermedia（GenBank受入番号BAA33148）、Prochlorococcus marinus（GenBank受入番号YP_001016363）、Providencia stuartii（GenBank受入番号CAA46032）、Ralstonia eutropha（GenBank受入番号YP_840758）、Raoultella planticola（GenBank受入番号BAB18918）、Salmonella typhi（GenBank受入番号AAK50861）、Salmonella typhimurium（GenBank受入番号AAM81208）、Shigella boydii（GenBank受入番号ABB68879）、Shigella flexneri（GenBank受入番号BAA11655）、Shigella dysenteriae（GenBank受入番号ABB64580）、Shigella sonnei（GenBank受入番号AAZ91025）、Sebaldella termitidis（GenBank受入番号ACZ10023）、Serratia proteamaculans（GenBank受入番号ABV43590）、Stenotrophomonas maltophilia（GenBank受入番号YP_002026426）、Xanthomonas campestris（GenBank受入番号AAM43356）、Zymomonas mobilis（GenBank受入番号AAA27700）等の微生物が有する酸性ホスファターゼが挙げられる。
変異型酸性ホスファターゼは、野生型酸性ホスファターゼを公知の遺伝子工学的手法により改変することで作製可能である。具体的には、上記微生物の野生型遺伝子に対して特開２０１２−８０８７５号公報又は特開２０１６−４７０６６号公報に記載されている遺伝子工学的手法を適用することにより、変異型酸性ホスファターゼを作製可能である。変異型酸性ホスファターゼの具体例は、特開２０１２−８０８７５号公報及び特開２０１６−４７０６６号公報に記載されている。
本実施形態においては酸性ホスファターゼとして、酸性ホスファターゼを発現している微生物若しくは高等生物由来の細胞、又はこれらの破砕物を使用してもよい。
反応液中の酸性ホスファターゼ量は、反応効率の観点から、反応開始時において、２−デオキシリボース１ｇに対して１０ユニット〜２００ユニットが好ましく、１０ユニット〜７０ユニットがより好ましい。
反応液中の酸性ホスファターゼの活性値は、１ユニット／ｍＬ〜１０００ユニット／ｍＬが好ましい。
［２−デオキシリボース］
２−デオキシリボースは、リボースの２位のヒドロキシ基が水素原子に置換された構造を有する。２−デオキシリボースは、本実施形態の技術分野において、その他の名称として、デオキシリボース、２−デオキシ−Ｄ−リボース、Ｄ−２−デオキシリボース等とも呼ばれる。
２−デオキシリボースは、リボースの２位のヒドロキシ基が水素原子に置換された構造を有する。２−デオキシリボースは、本実施形態の技術分野において、その他の名称として、デオキシリボース、２−デオキシ−Ｄ−リボース、Ｄ−２−デオキシリボース等とも呼ばれる。
２−デオキシリボースは、化学的な合成品でもよく、酵素的な合成品でもよい。例えば特開２０１２−８０８７５号公報又は特開２０１６−４７０６６号公報に開示されているように、酵素反応によって２−デヒドロ−３−デオキシグルコン酸の二価金属塩から合成された合成品でもよい。
反応液中の２−デオキシリボース濃度は、反応液全量に対して２質量％〜２０質量％が好ましく、５質量％〜１５質量％がより好ましい。
［リン酸供与体］
本実施形態におけるリン酸供与体は、酸性ホスファターゼの基質となり、２−デオキシリボースにリン酸基を与える化学物質であれば、その種類に特に制限はない。
本実施形態におけるリン酸供与体は、酸性ホスファターゼの基質となり、２−デオキシリボースにリン酸基を与える化学物質であれば、その種類に特に制限はない。
リン酸供与体としては、例えば、アデノシントリリン酸（ＡＴＰ）、ポリリン酸、又はこれらの塩が挙げられる。ポリリン酸又はポリリン酸塩としては、ピロリン酸、トリポリリン酸、テトラポリリン酸、又はこれらのナトリウム塩若しくはカリウム塩等のアルカリ金属塩が挙げられる。これらのリン酸供与体は、１種単独で用いてもよいし、２種以上を併用してもよい。
リン酸供与体としては、反応収率の観点から、ピロリン酸又はピロリン酸塩が好ましく、酸性ピロリン酸ナトリウムがより好ましい。
反応液中の２−デオキシリボースとリン酸供与体との量比は、反応効率の観点から、反応開始時において、２−デオキシリボース１ｍｏｌに対して、リン酸供与体が１ｍｏｌ〜１０ｍｏｌ存在することが好ましく、１ｍｏｌ〜５ｍｏｌ存在することがより好ましい。
反応液中のリン酸供与体濃度は、０．０５ｍｏｌ／Ｌ〜２０ｍｏｌ／Ｌが好ましく、０．１ｍｏｌ／Ｌ〜１０ｍｏｌ／Ｌがより好ましい。
［ｐＨ調整剤］
本実施形態において、反応開始時の反応液のｐＨ、及び／又は、反応期間中の反応液のｐＨを調整するｐＨ調整剤としては、塩基又は酸が挙げられる。ｐＨ調整剤として用いる塩基としては、少量で速やかにｐＨを制御し得る観点から、水酸化ナトリウム又は水酸化カリウムが好ましい。ｐＨ調整剤として用いる酸としては、少量で速やかにｐＨを制御し得る観点から、塩酸、リン酸が好ましい。ｐＨ調整剤として用いる酸としては、リン酸供与体となる観点から、ピロリン酸、ピロリン酸ナトリウム又はピロリン酸カリウムが好ましい。
本実施形態において、反応開始時の反応液のｐＨ、及び／又は、反応期間中の反応液のｐＨを調整するｐＨ調整剤としては、塩基又は酸が挙げられる。ｐＨ調整剤として用いる塩基としては、少量で速やかにｐＨを制御し得る観点から、水酸化ナトリウム又は水酸化カリウムが好ましい。ｐＨ調整剤として用いる酸としては、少量で速やかにｐＨを制御し得る観点から、塩酸、リン酸が好ましい。ｐＨ調整剤として用いる酸としては、リン酸供与体となる観点から、ピロリン酸、ピロリン酸ナトリウム又はピロリン酸カリウムが好ましい。
以下に実施例を挙げて本開示の実施形態をさらに具体的に説明する。以下の実施例に示す材料、使用量、割合、処理内容、処理手順などは、本開示の実施形態の趣旨を逸脱しない限り、適宜変更することができる。したがって、本開示の実施形態の範囲は以下に示す具体例に限定されない。
［変異型酸性ホスフォターゼの作製］
特開２０１２−８０８７５号公報の段落０２３５〜０２８６に記載されている方法に従い、Ｓｈｉｇｅｌｌａ ｆｌｅｘｎｅｒｉ由来変異型酸性ホスファターゼ遺伝子を含むプラスミドｐＳＦＡＰｍ７５を有する大腸菌を作製し、変異型酸性ホスファターゼを発現させた。この変異型酸性ホスファターゼは、Ｓｈｉｇｅｌｌａ ｆｌｅｘｎｅｒｉの野生型酸性ホスファターゼの５７番目のアミノ酸残基をスレオニン、１２２番目のアミノ酸残基をグリシン、１２６番目のアミノ酸残基をバリン、１７１番目のアミノ酸残基をグルタミン酸、１９７番目のアミノ酸残基をチロシンに置換した変異型酵素である。変異型酸性ホスファターゼを発現した大腸菌を培養し、遠心分離により回収し、培養上清にて懸濁した（菌体濃度８．３質量％）。この菌体懸濁液を−２０℃にて凍結保存した。以下の実験例には、凍結保存した菌体懸濁液を解凍し、これを酸性ホスファターゼ液として用いた。
特開２０１２−８０８７５号公報の段落０２３５〜０２８６に記載されている方法に従い、Ｓｈｉｇｅｌｌａ ｆｌｅｘｎｅｒｉ由来変異型酸性ホスファターゼ遺伝子を含むプラスミドｐＳＦＡＰｍ７５を有する大腸菌を作製し、変異型酸性ホスファターゼを発現させた。この変異型酸性ホスファターゼは、Ｓｈｉｇｅｌｌａ ｆｌｅｘｎｅｒｉの野生型酸性ホスファターゼの５７番目のアミノ酸残基をスレオニン、１２２番目のアミノ酸残基をグリシン、１２６番目のアミノ酸残基をバリン、１７１番目のアミノ酸残基をグルタミン酸、１９７番目のアミノ酸残基をチロシンに置換した変異型酵素である。変異型酸性ホスファターゼを発現した大腸菌を培養し、遠心分離により回収し、培養上清にて懸濁した（菌体濃度８．３質量％）。この菌体懸濁液を−２０℃にて凍結保存した。以下の実験例には、凍結保存した菌体懸濁液を解凍し、これを酸性ホスファターゼ液として用いた。
［２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの定量］
反応液中の２−デオキシリボース−５−リン酸エステルは、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）により定量した。分析条件は下記のとおりである。
・カラム：Ｓｈｏｄｅｘ Ａｓａｈｉｐａｋ ＮＨ２Ｐ−５０ ４Ｅ（昭和電工株式会社）
・カラム温度：４０℃
・流速：１．０ｍＬ／ｍｉｎ
・検出器：示差屈折率検出器（ＲＩＤ）
・キャリア：７５ｍｍｏｌ／Ｌ リン酸二水素ナトリウム水溶液
反応液中の２−デオキシリボース−５−リン酸エステルは、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）により定量した。分析条件は下記のとおりである。
・カラム：Ｓｈｏｄｅｘ Ａｓａｈｉｐａｋ ＮＨ２Ｐ−５０ ４Ｅ（昭和電工株式会社）
・カラム温度：４０℃
・流速：１．０ｍＬ／ｍｉｎ
・検出器：示差屈折率検出器（ＲＩＤ）
・キャリア：７５ｍｍｏｌ／Ｌ リン酸二水素ナトリウム水溶液
以下において、「ｄＲ」とは、２−デオキシ−Ｄ−リボースを意味し、「ｄＲ５Ｐ」とは、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルを意味する。
［実施例１］
反応液のｐＨを、反応期間中、所定の範囲を保ち且つ途中で低下するように制御した。反応条件の詳細は、以下のとおりである。
反応液のｐＨを、反応期間中、所定の範囲を保ち且つ途中で低下するように制御した。反応条件の詳細は、以下のとおりである。
３００ｍＬ丸底フラスコにｄＲ試薬（Ｂｉｏｓｙｎｔｈ社品）２６ｇと水１７４ｇを入れたのち、フラスコを冷却した水浴に入れ、三日月翼で攪拌してｄＲを水に溶解させた。ｄＲ溶解液に酸性ピロリン酸ナトリウム試薬５１．６ｇ（含有量９５．５質量％の試薬。ｄＲ１ｍｏｌに対して１．２ｍｏｌ）を入れ、３℃で約３０分間攪拌した。液のｐＨを測定したところ３．７であった。次いで、１Ｎ−水酸化ナトリウム水溶液（和光純薬工業社品）１３．０ｇで液のｐＨを４．５に調整し、菌体濃度８．３質量％の酸性ホスファターゼ液９．４ｇ（換算活性量３２ユニット／ｄＲ１ｇ）を入れ、反応を開始した。反応期間中、１Ｎ−水酸化ナトリウム水溶液（和光純薬工業社品）又は１Ｎ−塩酸水溶液（和光純薬工業社品）を添加してｐＨを制御するｐＨ制御機器を用いて、反応液のｐＨを制御した。反応開始から８時間目までは反応液のｐＨが４．５０から４．５５の範囲になるようにｐＨ制御機器を設定し、８時間経過時点でｐＨ制御機器の設定をｐＨが４．１０から４．１５の範囲になるように変え反応終了までこの設定を続けた。反応期間は２７時間とし、反応期間中、反応液の温度を３℃±１℃の範囲内に維持した。反応期間中、三日月翼にて反応液をゆっくり攪拌した。
［実施例２］
反応液のｐＨを、反応期間中、制御せず成り行きで変化させた。反応条件の詳細は、以下のとおりである。
反応液のｐＨを、反応期間中、制御せず成り行きで変化させた。反応条件の詳細は、以下のとおりである。
３００ｍＬ丸底フラスコにｄＲ試薬（Ｂｉｏｓｙｎｔｈ社品）２６ｇと水１７４ｇを入れたのち、フラスコを冷却した水浴に入れ、三日月翼で攪拌してｄＲを水に溶解させた。ｄＲ溶解液に酸性ピロリン酸ナトリウム試薬５１．６ｇ（含有量９５．５質量％の試薬。ｄＲ１ｍｏｌに対して１．２ｍｏｌ）を入れ、３℃で約３０分間攪拌した。液のｐＨを測定したところ３．７であった。次いで、１Ｎ−水酸化ナトリウム水溶液（和光純薬工業社品）１３．０ｇで液のｐＨを４．５に調整し、菌体濃度８．３質量％の酸性ホスファターゼ液９．４ｇ（換算活性量３２ユニット／ｄＲ１ｇ）を入れ、反応を開始した。反応期間中、反応液のｐＨを制御せず成り行きで変化させた。反応期間は２７時間とし、反応期間中、反応液の温度を３℃±１℃の範囲内に維持した。反応期間中、三日月翼にて反応液をゆっくり攪拌した。
［実施例３］
反応液のｐＨを、反応期間中、制御せず成り行きで変化させた。反応条件の詳細は、以下のとおりである。
反応液のｐＨを、反応期間中、制御せず成り行きで変化させた。反応条件の詳細は、以下のとおりである。
３００ｍＬ丸底フラスコにｄＲ試薬（Ｂｉｏｓｙｎｔｈ社品）２６ｇと水１７４ｇを入れたのち、フラスコを冷却した水浴に入れ、三日月翼で攪拌してｄＲを水に溶解させた。ｄＲ溶解液に酸性ピロリン酸ナトリウム試薬５１．６ｇ（含有量９５．５質量％の試薬。ｄＲ１ｍｏｌに対して１．２ｍｏｌ）を入れ、３℃で約３０分間攪拌した。液のｐＨを測定したところ３．７であった。次いで、ピロリン酸カリウム試薬２．８ｇで液のｐＨを４．５に調整し、菌体濃度８．３質量％の酸性ホスファターゼ液９．４ｇ（換算活性量３２ユニット／ｄＲ１ｇ）を入れ、反応を開始した。反応期間中、反応液のｐＨを制御せず成り行きで変化させた。反応期間は２７時間とし、反応期間中、反応液の温度を３℃±１℃の範囲内に維持した。反応期間中、三日月翼にて反応液をゆっくり攪拌した。
［実施例４］
反応液のｐＨを、反応期間中、所定の範囲を保つように制御した。反応条件の詳細は、以下のとおりである。
反応液のｐＨを、反応期間中、所定の範囲を保つように制御した。反応条件の詳細は、以下のとおりである。
３００ｍＬ丸底フラスコにｄＲ試薬（Ｂｉｏｓｙｎｔｈ社品）２６ｇと水１７４ｇを入れたのち、フラスコを冷却した水浴に入れ、三日月翼で攪拌してｄＲを水に溶解させた。ｄＲ溶解液に酸性ピロリン酸ナトリウム試薬５１．６ｇ（含有量９５．５質量％の試薬。ｄＲ１ｍｏｌに対して１．２ｍｏｌ）を入れ、３℃で約３０分間攪拌した。液のｐＨを測定したところ３．７であった。次いで、１Ｎ−水酸化ナトリウム水溶液（和光純薬工業社品）５．１ｇで液のｐＨを４．１に調整し、菌体濃度８．３質量％の酸性ホスファターゼ液９．４ｇ（換算活性量３２ユニット／ｄＲ１ｇ）を入れ、反応を開始した。反応期間中、１Ｎ−水酸化ナトリウム水溶液（和光純薬工業社品）又は１Ｎ−塩酸水溶液（和光純薬工業社品）を添加してｐＨを制御するｐＨ制御機器を用いて、反応液のｐＨを制御した。反応開始から反応終了まで、反応液のｐＨが４．１０から４．１５の範囲になるようにｐＨ制御機器を設定した。反応期間は２７時間とし、反応期間中、反応液の温度を３℃±１℃の範囲内に維持した。反応期間中、三日月翼にて反応液をゆっくり攪拌した。
［比較例１］
反応液のｐＨを、反応期間中、所定の範囲を保つように制御した。反応条件の詳細は、以下のとおりである。
反応液のｐＨを、反応期間中、所定の範囲を保つように制御した。反応条件の詳細は、以下のとおりである。
３００ｍＬ丸底フラスコにｄＲ試薬（Ｂｉｏｓｙｎｔｈ社品）２６ｇと水１７４ｇを入れたのち、フラスコを冷却した水浴に入れ、三日月翼で攪拌してｄＲを水に溶解させた。ｄＲ溶解液に酸性ピロリン酸ナトリウム試薬５１．６ｇ（含有量９５．５質量％の試薬。ｄＲ１ｍｏｌに対して１．２ｍｏｌ）を入れ、３℃で約３０分間攪拌した。液のｐＨを測定したところ３．７であった。次いで、１Ｎ−水酸化ナトリウム水溶液（和光純薬工業社品）４１．３ｇで液のｐＨを５．０に調整し、菌体濃度８．３質量％の酸性ホスファターゼ液９．４ｇ（換算活性量３２ユニット／ｄＲ１ｇ）を入れ、反応を開始した。反応期間中、１Ｎ−水酸化ナトリウム水溶液（和光純薬工業社品）又は１Ｎ−塩酸水溶液（和光純薬工業社品）を添加してｐＨを制御するｐＨ制御機器を用いて、反応液のｐＨを制御した。反応開始から反応終了まで、反応液のｐＨが５．００から５．０５の範囲になるようにｐＨ制御機器を設定した。反応期間は２７時間とし、反応期間中、反応液の温度を３℃±１℃の範囲内に維持した。反応期間中、三日月翼にて反応液をゆっくり攪拌した。
［比較例２］
反応液のｐＨを、反応期間中、所定の範囲を保つように制御した。反応条件の詳細は、以下のとおりである。
反応液のｐＨを、反応期間中、所定の範囲を保つように制御した。反応条件の詳細は、以下のとおりである。
３００ｍＬ丸底フラスコにｄＲ試薬（Ｂｉｏｓｙｎｔｈ社品）２６ｇと水１７４ｇを入れたのち、フラスコを冷却した水浴に入れ、三日月翼で攪拌してｄＲを水に溶解させた。ｄＲ溶解液に酸性ピロリン酸ナトリウム試薬５１．６ｇ（含有量９５．５質量％の試薬。ｄＲ１ｍｏｌに対して１．２ｍｏｌ）を入れ、３℃で約３０分間攪拌した。液のｐＨを測定したところ３．７であった。次いで、１Ｎ−水酸化ナトリウム水溶液（和光純薬工業社品）１２．７ｇで液のｐＨを４．５に調整し、菌体濃度８．３質量％の酸性ホスファターゼ液９．４ｇ（換算活性量３２ユニット／ｄＲ１ｇ）を入れ、反応を開始した。反応期間中、１Ｎ−水酸化ナトリウム水溶液（和光純薬工業社品）又は１Ｎ−塩酸水溶液（和光純薬工業社品）を添加してｐＨを制御するｐＨ制御機器を用いて、反応液のｐＨを制御した。反応開始から反応終了まで、反応液のｐＨが４．５０から４．５５の範囲になるようにｐＨ制御機器を設定した。反応期間は２７時間とし、反応期間中、反応液の温度を３℃±１℃の範囲内に維持した。反応期間中、三日月翼にて反応液をゆっくり攪拌した。
［比較例３］
反応液のｐＨを、反応期間中、所定の範囲を保つように制御した。反応条件の詳細は、以下のとおりである。
反応液のｐＨを、反応期間中、所定の範囲を保つように制御した。反応条件の詳細は、以下のとおりである。
３００ｍＬ丸底フラスコにｄＲ試薬（Ｂｉｏｓｙｎｔｈ社品）２６ｇと水１７４ｇを入れたのち、フラスコを冷却した水浴に入れ、三日月翼で攪拌してｄＲを水に溶解させた。ｄＲ溶解液に酸性ピロリン酸ナトリウム試薬５１．６ｇ（含有量９５．５質量％の試薬。ｄＲ１ｍｏｌに対して１．２ｍｏｌ）を入れ、３℃で約３０分間攪拌した。液のｐＨを測定したところ３．７であった。次いで、１Ｎ−水酸化ナトリウム水溶液（和光純薬工業社品）１．７ｇで液のｐＨを３．８に調整し、菌体濃度８．３質量％の酸性ホスファターゼ液９．４ｇ（換算活性量３２ユニット／ｄＲ１ｇ）を入れ、反応を開始した。反応期間中、１Ｎ−水酸化ナトリウム水溶液（和光純薬工業社品）又は１Ｎ−塩酸水溶液（和光純薬工業社品）を添加してｐＨを制御するｐＨ制御機器を用いて、反応液のｐＨを制御した。反応開始から反応終了まで、反応液のｐＨが３．７５から３．８０の範囲になるようにｐＨ制御機器を設定した。反応期間は２７時間とし、反応期間中、反応液の温度を３℃±１℃の範囲内に維持した。反応期間中、三日月翼にて反応液をゆっくり攪拌した。
実施例１〜４における反応液のｐＨとｄＲ５Ｐの収率とを表１及び図１Ａに示す。比較例１〜３における反応液のｐＨとｄＲ５Ｐの収率とを表１及び図１Ｂに示す。
Claims (11)
- 酸性ホスファターゼの存在下、２−デオキシリボースとリン酸供与体とから２−デオキシリボース−５−リン酸エステルを製造する製造方法であって、
反応液のｐＨが、反応期間の前半において４．０超６．０以下の範囲であり、反応期間の後半において３．０以上４．５未満の範囲である、２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの製造方法。 - 前記反応液のｐＨが前記反応期間の前半においてよりも後半において低い、請求項１に記載の製造方法。
- 前記反応期間の前半が、少なくとも反応期間全体の５分の１以上を占め、
前記反応期間の後半が、少なくとも反応期間全体の２分の１以上を占める、
請求項１又は請求項２に記載の製造方法。 - 反応開始時における前記反応液のｐＨをｐＨ（ａ）とし、反応終止時における前記反応液のｐＨをｐＨ（ｂ）としたとき、ｐＨ（ａ）−ｐＨ（ｂ）＞０．１である、請求項１〜請求項３のいずれか１項に記載の製造方法。
- 前記反応期間の前半における前記反応液のｐＨが、反応開始時における前記反応液のｐＨに対して±０．１の範囲である、請求項１〜請求項４のいずれか１項に記載の製造方法。
- 前記反応液の温度が０℃〜３０℃の範囲である、請求項１〜請求項５のいずれか１項に記載の製造方法。
- 前記リン酸供与体がピロリン酸又はピロリン酸塩を含む、請求項１〜請求項６のいずれか１項に記載の製造方法。
- 前記リン酸供与体が酸性ピロリン酸ナトリウムを含む、請求項１〜請求項７のいずれか１項に記載の製造方法。
- 前記反応液のｐＨが前記反応期間の前半においてよりも後半において低いこと、又は、前記反応液のｐＨが前記反応期間の前半において４．０超６．０以下の範囲であり前記反応期間の後半において３．０以上４．５未満の範囲であることが、ｐＨ調整剤を用いて前記反応液のｐＨを調整することによって実現される、請求項１〜請求項８のいずれか１項に記載の製造方法。
- 前記ｐＨ調整剤が、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、塩酸、リン酸、ピロリン酸、ピロリン酸ナトリウム及びピロリン酸カリウムからなる群から選ばれる少なくとも１種を含む、請求項９に記載の製造方法。
- 反応開始時において、前記反応液中に、酸性ホスファターゼが２−デオキシリボース１ｇに対して１０ユニット以上存在する、請求項１〜請求項１０のいずれか１項に記載の製造方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2018021417A JP6944888B2 (ja) | 2018-02-08 | 2018-02-08 | ２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2018021417A JP6944888B2 (ja) | 2018-02-08 | 2018-02-08 | ２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの製造方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2019135961A JP2019135961A (ja) | 2019-08-22 |
| JP6944888B2 true JP6944888B2 (ja) | 2021-10-06 |
Family
ID=67692268
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2018021417A Active JP6944888B2 (ja) | 2018-02-08 | 2018-02-08 | ２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP6944888B2 (ja) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN113666352A (zh) * | 2021-07-16 | 2021-11-19 | 四川金地亚美科技有限公司 | 一种高速率的焦磷酸二氢二钠生产方法 |
-
2018
- 2018-02-08 JP JP2018021417A patent/JP6944888B2/ja active Active
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP2019135961A (ja) | 2019-08-22 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Mirończuk et al. | A novel strain of Yarrowia lipolytica as a platform for value-added product synthesis from glycerol | |
| CN103087971B (zh) | 增加甲硫氨酸得率 | |
| JP5805202B2 (ja) | Ｏ−ホスホセリンを生産する微生物およびそれを用いてｏ−ホスホセリンからｌ−システインまたはその誘導体を生産する方法 | |
| ES2632170T3 (es) | Microorganismo recombinante para la producción fermentativa de metionina | |
| CN111051520A (zh) | 烟酰胺单核苷酸的制造方法及该方法所使用的转化体 | |
| Gauss et al. | Chemical and enzymatic methodologies for the synthesis of enantiomerically pure glyceraldehyde 3-phosphates | |
| Lindner et al. | NCgl2620 encodes a class II polyphosphate kinase in Corynebacterium glutamicum | |
| WO2018107880A1 (zh) | 利用乙醇醛合成乙酰辅酶a及其衍生产品的新途径 | |
| EA011232B1 (ru) | Биохимический синтез 1,4-бутандиамина | |
| JP6944888B2 (ja) | ２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの製造方法 | |
| Ogawa et al. | Inhibitory effect of phosphoenolpyruvate on glycolytic enzymes in Escherichia coli | |
| Asano et al. | A novel selective nucleoside phosphorylating enzyme from Morganella morganii | |
| US11104906B2 (en) | Method for producing coenzyme and transformant set for coenzyme production | |
| EP2412807B1 (en) | Novel 2-deoxy-scyllo-inosose synthase | |
| Chi et al. | Optimizing the DO‐stat protocol for enhanced production of thermostable pullulanase in Escherichia coli by using oxygen control strategies | |
| JP6858787B2 (ja) | 新たなポリリン酸依存性グルコキナーゼ及びこれを用いたグルコース６−リン酸の製造方法 | |
| WO2012169437A1 (ja) | 多糖の製造方法 | |
| Rashid et al. | An overview of 25 years of research on Thermococcus kodakarensis, a genetically versatile model organism for archaeal research | |
| JP6960349B2 (ja) | ２−デオキシリボース−５−リン酸エステルの製造方法 | |
| Wei et al. | Enhancing l-asparagine bioproduction efficiency through l-asparagine synthetase and polyphosphate kinase-coupled conversion and ATP regeneration | |
| Fischbach et al. | Disruption of inositol biosynthesis through targeted mutagenesis in Dictyostelium discoideum: generation and characterization of inositol-auxotrophic mutants | |
| CN110129294B (zh) | 高丝氨酸乙酰基转移酶突变体及其宿主细胞和应用 | |
| JP6208146B2 (ja) | １，４−ブタンジオールの製造方法、微生物及び遺伝子 | |
| JP7497858B2 (ja) | 分岐オリゴ糖およびキシロースの製造方法 | |
| JP6576650B2 (ja) | グルコースの溶出抑制方法 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20201106 |
|
| A977 | Report on retrieval |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007 Effective date: 20210730 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20210803 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20210823 |
|
| TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20210907 |
|
| A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20210913 |
|
| R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Ref document number: 6944888 Country of ref document: JP Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |