JP6934650B2 - 微生物の識別方法 - Google Patents
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Description
本発明は、質量分析を利用した微生物の識別方法に関する。
Campylobacter属菌は微好気性無芽胞のグラム陰性らせん状桿菌であり、現在３３菌種が報告されている（非特許文献１）。本属菌のうちCampylobacter fetusは、約100年ほど前から家畜の流産の原因菌として知られていたが、現在では、Campylobacter jejuni、Campylobacter coliがヒトのカンピロバクタ感染症の原因菌として注目されている。多くの先進国においてカンピロバクタ感染症は増加傾向にあり（非特許文献２）、合併症としてギランバレー症候群やフィッシャー症候群などの末梢神経障害を引き起こす。
Campylobacter属菌の増殖時間は一般の細菌の約２倍と遅く、37℃で40〜50分で増殖する。また、pH5.5〜8.0で増殖する。本属菌は好気的条件の室温では２〜３日で死滅するが、10℃以下では好気的条件でもかなり長時間生存する。また−20℃以下で凍結した生肉や、真空パックおよびガス置換パックした包装生肉では１か月以上も生存する。本属菌の多くの種は、至適発育温度が30〜37℃であるが、25℃で発育する種や42℃で発育する種もある。42℃で発育する菌種は 'thermophilic Campylobacter' と呼ばれ、食中毒に関係する菌種はここに属する。
Campylobacter属菌の多くは家畜、家禽、ペット及び野生動物の腸管に広く分布しており、これらに由来すると考えられる菌が河川や湖水、さらには下水などから分離されている（非特許文献３）。先進国で感染源として最も重要視されているのがニワトリで、鶏肉の汚染率は他の畜肉に比べて非常に高い（非特許文献５）。国内外の調査によると、ニワトリでの垂直感染はおこらず、水平感染により短期間に広がる。渡り鳥から家禽への伝搬も報告されている（非特許文献４、５）。
Campylobacter jejuni、Campylobacter coliの疫学調査では２つの血清型別法（Penner型とLior型）が広く用いられている（非特許文献６、７）が、Penner型診断用血清は限られた機関にしか配備されておらず、Lior型の血清型別法も診断に時間がかかる。
上述した事情から、Campylobacter jejuni、Campylobacter coliは食中毒菌として食品ならび医療分野で管理されなければならず、その迅速な検出ならびに同定識別技術の開発が必要とされている。
これまでにｍ−ＰＣＲ（非特許文献８、９）、パルスフィールドゲル電気泳動（非特許文献１０）、マルチローカスシーケンスタイピング（非特許文献１１、１２）等が報告されている。しかしながら、これらの手法は煩雑な操作が必要で、時間がかかるという問題がある。
一方、近年ではマトリックス支援レーザー脱離イオン化法飛行時間型質量分析法（ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ）による微生物同定技術が、臨床ならび食品分野で急速に広がっている。本法は、ごく微量の微生物試料を用いて得られたマススペクトルパターンに基づいて微生物同定を行う手法であり、短時間で分析結果を得ることができ、且つ多検体の連続分析も容易であるため、簡便且つ迅速な微生物同定が可能である。
これまでに、複数の研究グループによりＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳを用いたCampylobacter属菌の識別が試みられてきた（非特許文献１３、１４、１５、１６、１７）。非特許文献１３ではCampylobacter属の６種のうち、Campylobacter coli（以下、「Campylobacter」は「C.」と略することもある）はリボゾームタンパク質Ｌ７／Ｌ１２とＤＮＡ結合タンパク質ＨＵを用いて、C.jejuniはリボゾームタンパク質Ｓ１３とＤＮＡ結合タンパク質ＨＵを用いて、C.lariはリボゾームタンパク質Ｌ７／Ｌ１２とシャペロニンGroES、9651Daの未知タンパク質を用いて、C.spectorumは12786Daと9796Daの未知タンパク質を用いて、C.helveticusは9504DaとＤＮＡ結合タンパク質ＨＵを用いて、C.upsaliensi はＤＮＡ結合タンパク質ＨＵを用いて識別したことが報告されているが、いずれも遺伝的裏付けはない。
非特許文献１３では、ＤＮＡ結合タンパク質ＨＵを用いて遺伝子の裏付けを元にCampylobacter属の６種（C.coli、C.jejuni、C.lari、C.spectorum、C.helveticusおよびC.upsaliensi）を識別している。しかし、我々が行なった再現実験によると、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳではＤＮＡ結合タンパク質ＨＵを安定して検出することができなかった。
また、非特許文献１７では、C.jrjuniのマルチローカスシーケンスタイピングによるグループをＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳを用いて識別したことが報告されているが、バイオマーカーのピークの由来は明らかにされていない。
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上述したように、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳによるCampylobacter属菌の菌種識別およびタイプ分けに関して複数の報告があるものの、亜種識別や株識別に言及している報告はなく、マススペクトル上に現れる各ピークやバイオマーカーピークの一つ一つが何のタンパク質に由来するかが特定されているものは少なく、再現性がない。つまり、Campylobacter属菌の亜種ならび株識別に好適に利用可能な信頼性の高いマーカータンパク質は未だ確立されていない。
特許文献１には、微生物菌体を質量分析して得られるピークの約半分がリボソームタンパク質由来であることを利用し、質量分析で得られるピークの質量電荷比を、リボソームタンパク質遺伝子の塩基配列情報を翻訳したアミノ酸配列から推測される計算質量と関連づけることで該ピークの由来となるタンパク質の種類を帰属する手法（Ｓ１０−ＧＥＲＭＳ法）が有用であることが示されている。この手法によれば、質量分析およびそれに付属するソフトウェアを用いて理論的根拠に基づいた信頼性の高い微生物同定を行うことが可能となる（特許文献２）。
本発明が解決しようとする課題は、Campylobacter属菌の亜種ならびC.jejuniの株の識別を行うために、遺伝的情報に基づいた信頼性の高いバイオマーカーを提供することである。
本発明者は鋭意検討を重ねた結果、質量分析によって試料に含まれる菌種がCampylobacter属菌のいずれの菌種であるか、またその場合の亜種や株（血清型）の識別に用いられるマーカータンパク質として１８種類のリボソームタンパク質質Ｓ１０、Ｌ２３、Ｓ１９、Ｌ２２、Ｌ１６、Ｌ２９、Ｓ１７、Ｌ１４、Ｌ２４、Ｓ１４、Ｌ１８、Ｌ１５、Ｌ３６、Ｓ１３、Ｓ１１（Ｍｅ）、Ｌ３２、Ｌ７／Ｌ１２が有用であること、これらリボソームタンパク質の少なくとも一つを用いることによりCampylobacter属菌の菌種及び亜種並びに株（血清型）の識別が可能であること、これらの中でも特に７種類のリボソームタンパク質Ｌ２３、Ｌ２４、Ｓ１４、Ｌ３６、Ｌ３２、Ｌ７／Ｌ１２、Ｓ１１の少なくとも一つを用いることにより再現性よく、且つ迅速にCampylobacter属菌の菌種及び亜種の識別が可能であることを発見し、本発明に至った。
すなわち、上記課題を解決するために成された本発明に係る微生物の識別方法は、
a)微生物を含む試料を質量分析してマススペクトルを得るステップと、
b)前記マススペクトルから、マーカータンパク質由来のピークの質量電荷比m/zを読み取るステップと、
c)前記質量電荷比m/zに基づいて、前記試料に含まれる微生物が、Campylobacter属菌のいずれの菌種を含むかを識別する識別ステップと
を有し、
前記マーカータンパク質として１８種類のリボソームタンパク質Ｓ１０、Ｌ２３、Ｓ１９、Ｌ２２、Ｌ１６、Ｌ２９、Ｓ１７、Ｌ１４、Ｌ２４、Ｓ１４、Ｌ１８、Ｌ１５、Ｌ３６、Ｓ１３、Ｓ１１（Ｍｅ）、Ｌ３２、Ｌ７／Ｌ１２のうち、少なくとも一つを用いることを特徴とする。
a)微生物を含む試料を質量分析してマススペクトルを得るステップと、
b)前記マススペクトルから、マーカータンパク質由来のピークの質量電荷比m/zを読み取るステップと、
c)前記質量電荷比m/zに基づいて、前記試料に含まれる微生物が、Campylobacter属菌のいずれの菌種を含むかを識別する識別ステップと
を有し、
前記マーカータンパク質として１８種類のリボソームタンパク質Ｓ１０、Ｌ２３、Ｓ１９、Ｌ２２、Ｌ１６、Ｌ２９、Ｓ１７、Ｌ１４、Ｌ２４、Ｓ１４、Ｌ１８、Ｌ１５、Ｌ３６、Ｓ１３、Ｓ１１（Ｍｅ）、Ｌ３２、Ｌ７／Ｌ１２のうち、少なくとも一つを用いることを特徴とする。
上記の微生物の識別方法においては、
前記マーカータンパク質として７種類のマーカータンパク質Ｌ２３、Ｌ２４、Ｓ１４、Ｌ３６、Ｌ３２、Ｌ７／Ｌ１２、Ｓ１１のうち、少なくとも一つを用いることが好ましい。
前記マーカータンパク質として７種類のマーカータンパク質Ｌ２３、Ｌ２４、Ｓ１４、Ｌ３６、Ｌ３２、Ｌ７／Ｌ１２、Ｓ１１のうち、少なくとも一つを用いることが好ましい。
上記の微生物の識別方法は、
前記Campylobacter属菌の菌種が、
Campylobacter jejuni subsp. jejuni、Campylobacter jejuni subsp. doylei、Campylobacter coli、Campylobacter fetus、Campylobacter lariの５種のいずれかであることを識別する方法として好適である。
前記Campylobacter属菌の菌種が、
Campylobacter jejuni subsp. jejuni、Campylobacter jejuni subsp. doylei、Campylobacter coli、Campylobacter fetus、Campylobacter lariの５種のいずれかであることを識別する方法として好適である。
具体的には、前記Campylobacter属菌の菌種がCampylobacter jejuni subsp. jejuniであるときは、 前記マーカータンパク質として少なくとも、Ｌ２４と、Ｌ３２、Ｌ２３、Ｓ１４、Ｌ７／Ｌ１２、のいずれか一つとＬ２３とを含むことが好ましい。
また、前記Campylobacter属菌の菌種がCampylobacter jejuni subsp. doyleiであるときは、前記マーカータンパク質が少なくとも、Ｌ２４を含むことが好ましい。
さらに、前記Campylobacter属菌の菌種がCampylobacter Coliであるときは、前記マーカータンパク質が、少なくとも、Ｌ３２、Ｓ１４、Ｌ２３及びＬ２４から成る群、のいずれかを含むことが好ましい。
また、前記Campylobacter属菌の菌種がCampylobacter fetus であるときは、前記マーカータンパク質としてＬ２３、Ｌ２４、Ｓ１４、Ｌ３６、Ｌ３２、Ｌ７／Ｌ１２、Ｓ１１のうち、少なくとも一つを用いることが好ましい。
さらに、前記Campylobacter属菌の菌種がCampylobacter lari であるときは、前記マーカータンパク質としてＬ２３、Ｌ２４、Ｓ１４、Ｌ３２、Ｌ７／Ｌ１２のうち、少なくとも一つを含むことが好ましい。
また、上記の微生物の識別方法においては、前記Campylobacter属菌の菌種がCampylobacter jejuni であるときにその血清型を識別方法として用いることができる。具体的には、前記Campylobacter属菌の菌種がCampylobacter jejuni であるときにその血清型がRであることを識別するときは、前記マーカータンパク質として少なくとも、Ｌ２３を含むことが好ましい。
また、前記Campylobacter属菌の菌種がCampylobacter jejuni であるときにその血清型がＡであることを識別するときは、前記マーカータンパク質として少なくとも、Ｌ２３、または、Ｌ３２、Ｌ７／Ｌ１２、のいずれかを含むことが好ましい。
前記Campylobacter属菌の菌種がCampylobacter jejuni であるときにその血清型がＢであることを識別するときは、前記マーカータンパク質として少なくとも、Ｌ７／Ｌ１２を含むことが好ましい。
前記Campylobacter属菌の菌種がCampylobacter jejuni であるときにその血清型がＵであることを識別するときは、前記マーカータンパク質として少なくとも、Ｌ７／Ｌ１２を含むことが好ましい。
前記Campylobacter属菌の菌種がCampylobacter jejuni であるときにその血清型がＤであることを識別するときは、前記マーカータンパク質として少なくとも、Ｌ３２、Ｌ２３または、Ｌ３２、Ｌ２４のいずれかを含むことが好ましい。
前記Campylobacter属菌の菌種がCampylobacter jejuni であるときにその血清型がDF複であることを識別するときは、前記マーカータンパク質として少なくとも、Ｌ３２を含むことが好ましい。
また、上記の微生物の識別方法においては、
少なくともＬ２４、Ｓ１４、Ｓ１１に由来する質量電荷比m/zを指標とするクラスター解析を用いると、前記試料に含まれる微生物が、前記Campylobacter属菌の亜種のいずれであるかを精度良く分類することができる。
少なくともＬ２４、Ｓ１４、Ｓ１１に由来する質量電荷比m/zを指標とするクラスター解析を用いると、前記試料に含まれる微生物が、前記Campylobacter属菌の亜種のいずれであるかを精度良く分類することができる。
上記のクラスター解析においては、さらに、少なくともＬ２４、Ｓ１４、Ｌ３６に由来する質量電荷比m/zを指標とすると良い。
この場合、前記クラスター解析による識別結果を表すデンドログラムを作成するステップを、さらに有すると良い。
また、上記の微生物の識別方法においては、少なくとも、Ｌ３２、Ｌ７／Ｌ１２、Ｌ２３、Ｓ１１又はＬ３２、Ｌ７／Ｌ１２、Ｌ２４、Ｓ１１に由来する質量電荷比m/zを指標とするクラスター解析を用いて、前記Campylobacter属菌の菌種がCampylobacter jejuni であるときの血清型を分類することができる。
この場合、さらに、Ｌ２３、Ｌ２４、Ｓ１４、Ｌ３２、Ｌ７／Ｌ１２に由来する質量電荷比m/zを指標とすることが好ましく、さらに、Ｌ２３、Ｌ２４、Ｓ１４、Ｌ３６、Ｌ３２、Ｌ７／Ｌ１２に由来するm/zを指標とすると良い。
上記本発明に係る微生物の識別方法では、Campylobacter属菌の菌種に特有な変異を示すリボソームタンパク質をマーカータンパク質として用いたため、Campylobacter属菌の菌種を再現性よく、且つ迅速に識別することができる。
また、Campylobacter属菌の菌種に特有な変異を示すリボソームタンパク質をマーカータンパク質として用い、マススペクトル上におけるマーカータンパク質由来のピークの質量電荷比m/zを指標としてクラスター解析を行うことにより、複数の試料に含まれるCampylobacter属菌の識別を一括で行うことができる。
また、Campylobacter属菌の菌種に特有な変異を示すリボソームタンパク質をマーカータンパク質として用い、マススペクトル上におけるマーカータンパク質由来のピークの質量電荷比m/zを指標としてクラスター解析を行うことにより、複数の試料に含まれるCampylobacter属菌の識別を一括で行うことができる。
以下、本発明に係る微生物の識別方法の具体的な実施形態について説明する。
図１は本発明に係る微生物の識別方法に用いられる微生物識別システムの全体図である。この微生物識別システムは、大別して質量分析部１０と微生物判別部２０とから成る。質量分析部１０は、マトリックス支援レーザー脱離イオン化法（ＭＡＬＤＩ）によって試料中の分子や原子をイオン化するイオン化部１１と、イオン化部１１から出射された各種イオンを質量電荷比に応じて分離する飛行時間型質量分離器（ＴＯＦ）１２を備える。
図１は本発明に係る微生物の識別方法に用いられる微生物識別システムの全体図である。この微生物識別システムは、大別して質量分析部１０と微生物判別部２０とから成る。質量分析部１０は、マトリックス支援レーザー脱離イオン化法（ＭＡＬＤＩ）によって試料中の分子や原子をイオン化するイオン化部１１と、イオン化部１１から出射された各種イオンを質量電荷比に応じて分離する飛行時間型質量分離器（ＴＯＦ）１２を備える。
ＴＯＦ１２は、イオン化部１１からイオンを引き出してＴＯＦ１２内のイオン飛行空間に導くための引き出し電極１３と、イオン飛行空間で質量分離されたイオンを検出する検出器１４とを備える。
微生物判別部２０の実体は、ワークステーションやパーソナルコンピュータ等のコンピュータであり、中央演算処理装置であるＣＰＵ（Central Processing Unit）２１にメモリ２２、ＬＣＤ（Liquid Crystal Display）等から成る表示部２３、キーボードやマウス等から成る入力部２４、ハードディスクやＳＳＤ（Solid State Drive）等の大容量記憶装置から成る記憶部３０が互いに接続されている。記憶部３０には、ＯＳ（Operating System）３１、スペクトル作成プログラム３２、属・種決定プログラム３３、および下位分類決定プログラム３５（本発明に係るプログラム）が記憶されると共に、第１データベース３４および第２データベース３６が格納されている。微生物判別部２０は、更に、外部装置との直接的な接続や、外部装置等とのＬＡＮ（Local Area Network）などのネットワークを介した接続を司るためのインターフェース（Ｉ／Ｆ）２５を備えており、該インターフェース２５よりネットワークケーブルＮＷ（又は無線ＬＡＮ）を介して質量分析部１０に接続されている。
図１においては、下位分類決定プログラム３５に係るように、スペクトル取得部３７、m/z読み取り部３８、下位分類判定部３９、クラスター解析部４０、およびデンドログラム（系統図）作成部４１が示されている。これらはいずれも基本的にはＣＰＵ２１が下位分類決定プログラム３５を実行することによりソフトウェア的に実現される機能手段である。なお、下位分類決定プログラム３５は必ずしも単体のプログラムである必要はなく、例えば属・種決定プログラム３３や、質量分析部１０を制御するためのプログラムの一部に組み込まれた機能であってもよく、その形態は特に問わない。なお、属・種決定プログラム３３としては、例えば、従来のフィンガープリント法による微生物同定を行うプログラム等を利用することができる。
また、図１では、ユーザが操作する端末にスペクトル作成プログラム３２、属・種決定プログラム３３、および下位分類決定プログラム３５、第１データベース３４、および第２データベース３６を搭載する構成としたが、これらの少なくとも一部又は全部を前記端末とコンピュータネットワークで接続された別の装置内に設け、前記端末からの指示に従って前記別の装置内に設けられたプログラムによる処理および／又はデータベースへのアクセスが実行される構成としてもよい。
記憶部３０の第１データベース３４には、既知微生物に関する質量リストが多数登録されている。この質量リストは、ある微生物細胞を質量分析した際に検出されるイオンの質量電荷比を列挙したものであり、該質量電荷比の情報に加えて、少なくとも、前記微生物細胞が属する分類群（科、属、種など）の情報（分類情報）を含んでいる。こうした質量リストは、予め各種の微生物細胞を前記質量分析部１０によるものと同様のイオン化法および質量分離法によって実際に質量分析して得られたデータ（実測データ）に基づいて作成することが望ましい。
前記実測データから質量リストを作成する際には、まず、前記実測データとして取得されたマススペクトルから所定の質量電荷比範囲に現れるピークを抽出する。このとき、前記質量電荷比範囲を2,000〜35,000程度とすることにより、主にタンパク質由来のピークを抽出することができる。また、ピークの高さ（相対強度）が所定の閾値以上のものだけを抽出することにより、不所望のピーク（ノイズ）を除外することができる。なお、リボソームタンパク質群は細胞内で大量に発現しているため、前記閾値を適切に設定することにより、質量リストに記載される質量電荷比の大部分をリボソームタンパク質由来のものとすることができる。そして、以上により抽出されたピークの質量電荷比（m/z）を細胞毎にリスト化し、前記分類情報等を付加した上で第１データベース３４に登録する。なお、培養条件による遺伝子発現のばらつきを抑えるため、実測データの採取に用いる各微生物細胞は、予め培養条件を規格化しておくことが望ましい。
記憶部３０の第２データベース３６には、既知微生物を種よりも下位の分類（亜種、病原型、血清型、株など）で識別するためのマーカータンパク質に関する情報が登録されている。該マーカータンパク質に関する情報としては、少なくとも既知微生物における該マーカータンパク質の質量電荷比（m/z）の情報が含まれる。本実施形態における第２データベース３６には、被検微生物がCampylobacter属菌のいずれであるかを判定するためのマーカータンパク質に関する情報として、少なくともリボソームタンパク質Ｓ１０、Ｌ２３、Ｓ１９、Ｌ２２、Ｌ１６、Ｌ２９、Ｓ１７、Ｌ１４、Ｌ２４、Ｓ１４、Ｌ１８、Ｌ１５、Ｌ３６、Ｓ１３、Ｓ１１（Ｍｅ）、Ｌ３２、Ｌ７／Ｌ１２の質量電荷比の値が記憶されている。これらリボソームタンパク質の質量電荷比の値については後述する。
第２データベース３６に記憶するマーカータンパク質の質量電荷比の値としては、各マーカータンパク質の塩基配列をアミノ酸配列に翻訳することにより求められた計算質量と、実測により検出される質量電荷比を比較して選別することが望ましい。なお、マーカータンパク質の塩基配列は、シークエンスによって決定するほか、公共のデータベース、例えばＮＣＢＩ（国立生物工学情報センター：National Center for Biotechnology Information）のデータベース等から取得したものを用いることもできる。前記アミノ酸配列から計算質量を求める際には、翻訳後修飾としてＮ−末端メチオニン残基の切断を考慮することが望ましい。具体的には、最後から２番目のアミノ酸残基がGly, Ala, Ser, Pro, Val, Thr, 又はCysである場合に、Ｎ−末端メチオニンが切断されるものとして前記理論値を算出する。また、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳで実際に観測されるのはプロトンが付加した分子であるため、そのプロトンの分も加味して前記計算質量（すなわち各タンパク質をＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳで分析した場合に得られるイオンの質量電荷比の理論値）を求めることが望ましい。
本実施形態に係る微生物識別システムを用いたCampylobacter属菌の識別手順についてフローチャートを参照しつつ説明を行う。
まず、ユーザは被検微生物の構成成分を含む試料を調製し、質量分析部１０にセットして質量分析を実行させる。このとき、前記試料としては、細胞抽出物、又は細胞抽出物からリボソームタンパク質等の細胞構成成分を精製したものの他、菌体や細胞懸濁液をそのまま使用することもできる。
スペクトル作成プログラム３２は、質量分析部１０の検出器１４から得られる検出信号をインターフェース２５を介して取得し、該検出信号に基づいて被検微生物のマススペクトルを作成する（ステップＳ１０１）。
次に、種決定プログラム３３が、前記被検微生物のマススペクトルを第１データベース３４に収録されている既知微生物の質量リストと照合し、被検微生物のマススペクトルに類似した質量電荷比パターンを有する既知微生物の質量リスト、例えば被検微生物のマススペクトル中の各ピークと所定の誤差範囲で一致するピークが多く含まれている質量リストを抽出する（ステップＳ１０２）。種決定プログラム３３は、続いてステップＳ１０２で抽出した質量リストと対応付けて第１データベース３４に記憶された分類情報を参照することで、該質量リストに対応した既知微生物が属する生物種を特定する（ステップＳ１０３）。そして、この生物種がCampylobacter属菌でなかった場合（ステップＳ１０４でNoの場合）は、該生物種を被検微生物の生物種として表示部２３に出力し（ステップＳ１１６）、識別処理を終了する。一方、前記生物種がCampylobacter属菌であった場合（ステップＳ１０４でYesの場合）は、続いて下位分類決定プログラム３５による識別処理に進む。なお、あらかじめ他の方法で、試料中にCampylobacter属菌を含むことが判定されている場合は、マススペクトルを用いた種決定プログラムを利用せずに、下位分類決定プログラム３５に進めばよい。
下位分類決定プログラム３５では、まず下位分類判定部３９がマーカータンパク質である７種類のリボソームタンパク質Ｌ２３、Ｌ２４、Ｓ１４、Ｌ３６、Ｌ３２、Ｌ７／Ｌ１２、Ｓ１１の質量電荷比の値をそれぞれ第２データベース３６から読み出す（ステップＳ１０５）。続いてスペクトル取得部３７が、ステップＳ１０１で作成された被検微生物のマススペクトルを取得する。そして、m/z読み取り部３８が、該マススペクトル上において、前記の各マーカータンパク質に関連付けて第２データベース３６に記憶された質量電荷比範囲に現れるピークを各マーカータンパク質に対応するピークとして選出し、その質量電荷比を読み取る（ステップＳ１０６）。そして、読み取った質量電荷比を指標とするクラスター解析を実行する。具体的には、下位分類判定部３９が、この質量電荷比と前記第２データベース３６から読み出した各マーカータンパク質の質量電荷比の値を比較し、該読み取った質量電荷比についてタンパク質の帰属を決定する（ステップＳ１０７）。そして、決定した帰属に基づきクラスター解析を実行して被検微生物の種を判定し（ステップＳ１０８）、その旨を被検微生物の識別結果として表示部２３に出力する（ステップＳ１０９）。
以上、本発明を実施するための形態について図面を参照しつつ説明を行ったが、本発明は上記実施形態に限定されるものではなく、本発明の趣旨の範囲で適宜変更が許容される。
（１）使用菌株
図３に記載の菌株保存機関、理化学研究所 バイオリソースセンター微生物材料開発室 (JCM)（つくば）およびアメリカンタイプカルチャーコレクション（Manassas, VA, USA）から入手可能なCampylobacter属菌を解析に使用した。Campylobacter jejuniの血清型（Penner型の血清型）は、カンピロバクタ免疫血清「生研」（デンカ生研株式会社）により決定した。
図３に記載の菌株保存機関、理化学研究所 バイオリソースセンター微生物材料開発室 (JCM)（つくば）およびアメリカンタイプカルチャーコレクション（Manassas, VA, USA）から入手可能なCampylobacter属菌を解析に使用した。Campylobacter jejuniの血清型（Penner型の血清型）は、カンピロバクタ免疫血清「生研」（デンカ生研株式会社）により決定した。
（２）ＤＮＡの解析
ゲノム解読株の対象領域の上流および下流のコンセンサス配列に基づいて設計した、図４に示すプライマーにより、S10-spc-alphaオペロンのリボソームタンパク質遺伝子のＤＮＡ配列を解析した。詳述すると、各菌株より常法にてゲノム抽出し、それを鋳型としてKOD plusによりPCRを行い、目的遺伝子領域を増幅した。得られたPCR産物を精製し、それをシーケンス解析の鋳型とした。シーケンス解析にはBig Dye ver. 3.1 Cycle Sequencing Kit（アプライド・バイオシステムズ, Foster City, カリフォルニア州）を用いて行った。遺伝子のＤＮＡ配列からそれぞれの遺伝子のアミノ酸配列に変換し、図５のアミノ酸質量に基づき、質量電荷比を算出し、理論質量値とした。
ゲノム解読株の対象領域の上流および下流のコンセンサス配列に基づいて設計した、図４に示すプライマーにより、S10-spc-alphaオペロンのリボソームタンパク質遺伝子のＤＮＡ配列を解析した。詳述すると、各菌株より常法にてゲノム抽出し、それを鋳型としてKOD plusによりPCRを行い、目的遺伝子領域を増幅した。得られたPCR産物を精製し、それをシーケンス解析の鋳型とした。シーケンス解析にはBig Dye ver. 3.1 Cycle Sequencing Kit（アプライド・バイオシステムズ, Foster City, カリフォルニア州）を用いて行った。遺伝子のＤＮＡ配列からそれぞれの遺伝子のアミノ酸配列に変換し、図５のアミノ酸質量に基づき、質量電荷比を算出し、理論質量値とした。
（３）ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳによる分析
トリプチケースソイ5％ヒツジ血液寒天培地（日本べクトン・ディッキンソン株式会社、東京、日本）またはEG MEDIUM培地に生育した菌体を分析サンプルとした。１０μＬのシナピン酸マトリックス剤（50 v/v％アセトニトリル、1 v/v％トリフルオロ酢酸溶液中に20 mg/mLのシナピン酸（和光純薬工業株式会社、大阪、日本）））に上記分析サンプル約1コロニー分を加え良く撹拌し、そのうち1.2 μLをサンプルプレートに滴下し、自然乾燥させた。ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ測定にはAXIMA微生物同定システム（株式会社島津製作所、京都、日本）を使用し、ポジティブリニアモード、スペクトルレンジ2000m/z〜35000m/zにて試料の測定を行った。上述の方法で計算した理論質量値を、測定された質量電荷比と許容誤差500 ppmでマッチングし、適宜修正を施した。なお、質量分析装置のキャリブレーションには大腸菌ＤＨ５α株を用い、説明書に従い実施した。
トリプチケースソイ5％ヒツジ血液寒天培地（日本べクトン・ディッキンソン株式会社、東京、日本）またはEG MEDIUM培地に生育した菌体を分析サンプルとした。１０μＬのシナピン酸マトリックス剤（50 v/v％アセトニトリル、1 v/v％トリフルオロ酢酸溶液中に20 mg/mLのシナピン酸（和光純薬工業株式会社、大阪、日本）））に上記分析サンプル約1コロニー分を加え良く撹拌し、そのうち1.2 μLをサンプルプレートに滴下し、自然乾燥させた。ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ測定にはAXIMA微生物同定システム（株式会社島津製作所、京都、日本）を使用し、ポジティブリニアモード、スペクトルレンジ2000m/z〜35000m/zにて試料の測定を行った。上述の方法で計算した理論質量値を、測定された質量電荷比と許容誤差500 ppmでマッチングし、適宜修正を施した。なお、質量分析装置のキャリブレーションには大腸菌ＤＨ５α株を用い、説明書に従い実施した。
（４）Campylobacter属菌の株を識別するデータベースの構築
上記（２）で得られたリボソームタンパク質の理論質量値と、（３）で得られたＭＡＬＤＩ−ＴＯＦＭＳによるピークチャートを照合し、実際に検出できたタンパク質に関して、遺伝子配列から求めた理論質量値と実測値に相違がないことを確認した。そして、Ｓ１０-spc-αオペロン内のリボソームタンパク質および菌株により異なる質量を示したその他バイオマーカーとなりうる２６種類のリボソームタンパク質について、その理論質量値および実測値の関係を調べた。その結果を図６に示す。
上記（２）で得られたリボソームタンパク質の理論質量値と、（３）で得られたＭＡＬＤＩ−ＴＯＦＭＳによるピークチャートを照合し、実際に検出できたタンパク質に関して、遺伝子配列から求めた理論質量値と実測値に相違がないことを確認した。そして、Ｓ１０-spc-αオペロン内のリボソームタンパク質および菌株により異なる質量を示したその他バイオマーカーとなりうる２６種類のリボソームタンパク質について、その理論質量値および実測値の関係を調べた。その結果を図６に示す。
図６には、Campylobacter属菌の各菌種について、遺伝子から求めた質量電荷比（m/z）の理論質量値と、実測での質量ピーク検出結果を表す〇、△、×の記号を示している。〇はＡＸＩＭＡ微生物同定システムのデフォルトのピーク処理設定（Threshold offset ; 0.015mV, Threshold response ; 1.200）で理論値の500 ppm範囲内のピークとして検出され、×は検出できない場合もあったことを示している。△は、各菌株における理論値質量差または他のタンパク質ピークとの差がそれぞれ500 ppm以内であり、ピークは検出されてもその質量差が識別できなかったことを意味する。また、図６に示す２６種類のリボソームタンパク質のうちＳ１１については、菌種によってメチル化する場合があったが、これについては、メチル化後の質量電荷比を理論質量値として実測値と照合した。図６において理論質量値の後に（Me）を付したものが、メチル化後の質量電荷比を理論質量値としたものを示している。
図６からわかるように、Ｓ１０-spc-alphaオペロン内にコードされているリボソームタンパク質Ｓ１０、Ｌ２３、Ｌ２２、Ｌ１６、Ｌ２９、Ｓ１７、Ｌ１４、Ｌ２４、Ｓ１４、Ｌ１８、Ｌ１５、Ｌ３６、Ｓ１１およびＳ１３とその他のリボゾームタンパク質Ｌ３２およびＬ７／Ｌ１２（計１６種類）は、その理論質量値がCampylobacter属の菌株によって異なるため、株識別に使用できる有用なタンパク質マーカーである可能性が示された。
しかしながら、Ｓ１０、Ｌ２２、Ｌ１６、Ｌ２９、Ｓ１７、Ｌ１４、Ｌ１８、Ｌ１５およびＳ１３は夾雑ピークが存在するため、バイオマーカーとしては好適ではないものと考えられた。一方、Ｌ２３、Ｌ２４、Ｓ１４、Ｌ３６、Ｓ１１、Ｌ３２およびＬ７／Ｌ１２の計７種類のリボゾームタンパク質は、菌株によらず安定的に検出され、さらに菌株による質量値の差も500ppm以上であることからＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳにおけるCampylobacter属菌の菌株を識別するためのバイオマーカーとして有用であることが分かった。そこで、以下の実験では、これら７種類のリボソームタンパク質をバイオマーカーとして用いることとした。
（５）ソフトウェアによるＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ実測値の帰属
まず、上記７種類のリボゾームタンパク質の理論質量値を特許文献２に示されるようなソフトウェアに登録した。
次に、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ測定で得られた実測値データを本ソフトウェアで解析し、それぞれのバイオマーカーが登録された質量ピークとして正しく帰属されるかを調べた。その結果、図７Ａに示すように、全ての菌株について、全てのバイオマーカーの質量ピークが登録した質量数として帰属された。登録した理論質量値と帰属番号との関係を図７Ｂに示す。Penner型血清型と照らし合わせたところ、Campylobacter jejuniのPenner型血清型がA、B、D、D,F複合、U、Rそれぞれに識別された。
まず、上記７種類のリボゾームタンパク質の理論質量値を特許文献２に示されるようなソフトウェアに登録した。
次に、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ測定で得られた実測値データを本ソフトウェアで解析し、それぞれのバイオマーカーが登録された質量ピークとして正しく帰属されるかを調べた。その結果、図７Ａに示すように、全ての菌株について、全てのバイオマーカーの質量ピークが登録した質量数として帰属された。登録した理論質量値と帰属番号との関係を図７Ｂに示す。Penner型血清型と照らし合わせたところ、Campylobacter jejuniのPenner型血清型がA、B、D、D,F複合、U、Rそれぞれに識別された。
また、Campylobacter jejuniの各質量パターン（帰属結果）をクラスター解析し、その結果をバイナリーグラフとしてアウトプットし、系統樹作成ソフトPastで系統分類図（デンドログラム）を作成したところ（図７Ｃ）、Campylobacter jejuniの亜種 subsp. jejuniと subsp. doyleiを識別することができ、かつサブツリーでまとまっていた。また、Campylobacter fetusの亜種 subsp. fetusとsubsp.venerealis を識別することができた。以上から、上記７種類のバイオマーカーは、Campylobacter属菌の種の識別及び亜種識別に有用であることが証明された。
今回見出したバイオマーカーは非特許文献１３で報告された質量ピークC.coli Ｌ７／Ｌ１２；12854Da、C.jejuni Ｓ１３；13735Daと名称は同じだが、遺伝子情報から正確なピークが算出されており、実測値とも照合されている。また、非特許文献１５に使用されたＬ２９のような夾雑ピークの多いバイオマーカーを除いている。これにより、今回初めて信頼性の高い質量データベースを提供することが可能になった。
（６）フィンガープリント方式（ＳＡＲＡＭＩＳ）との比較
実際に、既存のフィンガープリント方式（ＳＡＲＡＭＩＳ）による識別結果と、表6の示すバイオマーカー理論質量値を指標とした識別結果を比較した。まず、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳにおける実測では図８に示すようなチャートが得られた。本結果をＡＸＩＭＡ微生物同定システムの説明書に従いＳＡＲＡＭＩＳにて解析した。これにより得られた結果を図９に示す。Campylobacter jejuni subsp. doylei ATCC49350 は76 ％という低い値でCampylobacter jejuni と識別され、Campylobacter jejuni subsp. doylei ATCC49349に至ってはSARAMISに一致するデーターベースが格納されていなかったためか属の同定もされなかった。Campylobacter coli, Campylobacter jejuni subsp. jejuni、Campylobacter fetus subsp. fetus、Campylobacter fetus subsp. venerealis、Campylobacter lari subsp. lari は識別率95％以上で種まで正確に同定された。いずれも亜種の識別は行われなかった。
実際に、既存のフィンガープリント方式（ＳＡＲＡＭＩＳ）による識別結果と、表6の示すバイオマーカー理論質量値を指標とした識別結果を比較した。まず、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳにおける実測では図８に示すようなチャートが得られた。本結果をＡＸＩＭＡ微生物同定システムの説明書に従いＳＡＲＡＭＩＳにて解析した。これにより得られた結果を図９に示す。Campylobacter jejuni subsp. doylei ATCC49350 は76 ％という低い値でCampylobacter jejuni と識別され、Campylobacter jejuni subsp. doylei ATCC49349に至ってはSARAMISに一致するデーターベースが格納されていなかったためか属の同定もされなかった。Campylobacter coli, Campylobacter jejuni subsp. jejuni、Campylobacter fetus subsp. fetus、Campylobacter fetus subsp. venerealis、Campylobacter lari subsp. lari は識別率95％以上で種まで正確に同定された。いずれも亜種の識別は行われなかった。
そこで、異なる亜種の株の実測結果を図８Ａに示した理論質量データベースをもとに識別可能かを試みた。図１０は図８のチャートのうち７種類のバイオマーカーピーク部分を拡大したものである。図１０からわかるように、それぞれのバイオマーカー質量がシフトしていることにより、ピークを区別することができる。７種類のバイオマーカーの実測値と比較し帰属したところ、図７Ａに示す結果と一致した。
なお、上記実施例では、Campylobacter属菌の種や亜種の識別に用いるマーカータンパク質として７種類のリボソームタンパク質を用いたが、これに限定されない。例えば、図１１Ａ〜図１１Ｃは、上記７種類のバイオマーカーからリボソームタンパク質Ｓ１１を外した６種類のバイオマーカーの帰属結果を用いてクラスター解析を行い、系統分類図（デンドログラム）を作成した結果を示す。図１１Ｃに示すように、この方法では、Campylobacter jejuniの亜種 subsp. jejuniと subsp. doyleiを識別することができ、かつサブツリーでまとまっていたが、Campylobacter fetusの亜種の識別はできなかった。ただし、Campylobacter jejuniとCampylobacter fetusの種の識別はできた。以上から、６種類のバイオマーカーについては、Campylobacter属菌の種の識別及び Campylobacter jejuniの亜種の識別における有用性が証明された。
また、図１２Ａ〜１２Ｃは、４種類のリボソームタンパク質Ｌ３２、Ｌ７／Ｌ１２、Ｌ２３、及びＳ１１をマーカータンパク質の帰属結果を用いてクラスター解析を行い、系統分類図（デンドログラム）を作成した結果を示す。この方法では、７種類のリボソームタンパク質をバイオマーカーとした場合（図８Ｃに示す結果）と少し異なるものの、Campylobacter属菌の種や亜種の識別は可能であった。従って、４種類のリボソームタンパク質についても、Campylobacter属菌の種や亜種の識別における有用性が証明された。
さらに、図１３Ａ〜１３Ｃは、別の４種類のリボソームタンパク質Ｌ３２、Ｌ７／Ｌ１２、Ｌ２４、及びＳ１１をマーカータンパク質の帰属結果を用いてクラスター解析を行い、系統分類図（デンドログラム）を作成した結果を示す。この方法では、７種類のリボソームタンパク質をバイオマーカーとした場合（図８Ｃに示す結果）と少し異なるものの、Campylobacter属菌の種、亜種の識別は可能であった。従って、これら４種類のリボソームタンパク質についても、Campylobacter属菌の種や亜種の識別における有用性が証明された。
図１４Ａ〜１４Ｃは、３種類のリボソームタンパク質Ｌ２４、Ｓ１４、及びＳ１１をマーカータンパク質の帰属結果を用いてクラスター解析を行い、系統分類図（デンドログラム）を作成した結果を示す。この方法では、Campylobacter jeuniの亜種の識別はできなかったものの、Campylobacter属菌の識別は可能であった。
また、図１５Ａ〜１５Ｃは、別の３種類のリボソームタンパク質Ｌ２４、Ｓ１４、及びＬ３６をマーカータンパク質の帰属結果を用いてクラスター解析を行い、系統分類図（デンドログラム）を作成した結果を示す。この方法では、Campylobacter jeuniの亜種の識別、及びCampylobacter fetusの亜種の識別はできなかったものの、Campylobacter属菌の識別は可能であった。
（７）バイオマーカーの遺伝子配列およびアミノ酸配列
Campylobacter属菌株によって異なる理論質量値を示した、Ｓ１０-spc-alphaオペロン内にコードされているリボソームタンパク質Ｌ２３、Ｌ２４、Ｓ１４およびＬ３６、Ｓ１０-spc-alphaオペロン外にコードされているリボソームタンパク質Ｌ３２およびＬ７／Ｌ１２の計6種類のリボソームタンパク質の各菌株におけるＤＮＡ配列及びアミノ酸配列を配列表に示す。
Campylobacter属菌株によって異なる理論質量値を示した、Ｓ１０-spc-alphaオペロン内にコードされているリボソームタンパク質Ｌ２３、Ｌ２４、Ｓ１４およびＬ３６、Ｓ１０-spc-alphaオペロン外にコードされているリボソームタンパク質Ｌ３２およびＬ７／Ｌ１２の計6種類のリボソームタンパク質の各菌株におけるＤＮＡ配列及びアミノ酸配列を配列表に示す。
１０…質量分析部
１１…イオン化部
１２…ＴＯＦ
１３…引き出し電極
１４…検出器
２０…微生物判別部
２１…ＣＰＵ
２２…メモリ
２３…表示部
２４…入力部
２５…Ｉ／Ｆ
３０…記憶部
３１…ＯＳ
３２…スペクトル作成プログラム
３３…属・種決定プログラム
３４…第１データベース
３５…下位分類決定プログラム
３６…第２データベース
３７…スペクトル取得部
３８…m/z読み取り部
３９…下位分類判定部
４０…クラスター解析部
４１…デンドログラム作成部
１１…イオン化部
１２…ＴＯＦ
１３…引き出し電極
１４…検出器
２０…微生物判別部
２１…ＣＰＵ
２２…メモリ
２３…表示部
２４…入力部
２５…Ｉ／Ｆ
３０…記憶部
３１…ＯＳ
３２…スペクトル作成プログラム
３３…属・種決定プログラム
３４…第１データベース
３５…下位分類決定プログラム
３６…第２データベース
３７…スペクトル取得部
３８…m/z読み取り部
３９…下位分類判定部
４０…クラスター解析部
４１…デンドログラム作成部
Claims (17)
- a)微生物を含む試料を質量分析してマススペクトルを得るステップと、
b)前記マススペクトルから、マーカータンパク質由来のピークの質量電荷比m/zを読み取るステップと、
c)前記質量電荷比m/zに基づいて、前記試料に含まれる微生物が、カンピロバクター（Campylobacter）属菌のいずれの菌種を含むかを識別する識別ステップと
を有し、
前記マーカータンパク質としてリボソームタンパク質Ｓ１４、Ｌ３２のうち、少なくとも一つを用いることを特徴とする微生物の識別方法。 - 請求項１に記載の微生物の識別方法において、
前記カンピロバクター（Campylobacter）属菌の菌種が、
カンピロバクター・ジェジュニ・サブスピーシーズ・ジェジュニ（Campylobacter jejuni subsp. jejuni）、カンピロバクター・ジェジュニ・サブスピーシーズ・ドイレイ（Campylobacter jejuni subsp. doylei）、カンピロバクター・コリ（Campylobacter coli）、カンピロバクター・フェタス（Campylobacter fetus）、カンピロバクター・ラリ（Campylobacter lari）の５種のいずれかであることを特徴とする微生物の識別方法。 - a)微生物を含む試料を質量分析してマススペクトルを得るステップと、
b)前記マススペクトルから、マーカータンパク質由来のピークの質量電荷比m/zを読み取るステップと、
c)前記質量電荷比m/zに基づいて、前記試料に含まれる微生物が、カンピロバクター（Campylobacter）属菌のいずれの菌種を含むかを識別する識別ステップと
を有し、
前記カンピロバクター（Campylobacter）属菌の菌種がカンピロバクター・ジェジュニ・サブスピーシーズ・ジェジュニ（Campylobacter jejuni subsp. jejuni）であって、
前記マーカータンパク質として少なくとも、Ｌ２４と、Ｌ３２、Ｌ２３、Ｓ１４、Ｌ７／Ｌ１２、のいずれか一つとＬ２３とを含むことを特徴とする微生物の識別方法。 - 請求項２に記載の微生物の識別方法において、
前記カンピロバクター（Campylobacter）属菌の菌種がカンピロバクター・コリ（Campylobacter Coli）であって、
前記マーカータンパク質として少なくとも、
Ｌ３２、Ｓ１４のいずれかを含むことを特徴とする微生物の識別方法。 - a)微生物を含む試料を質量分析してマススペクトルを得るステップと、
b)前記マススペクトルから、マーカータンパク質由来のピークの質量電荷比m/zを読み取るステップと、
c)前記質量電荷比m/zに基づいて、前記試料に含まれる微生物が、カンピロバクター（Campylobacter）属菌のいずれの菌種を含むかを識別する識別ステップと
を有し、
前記カンピロバクター（Campylobacter）属菌の菌種がカンピロバクター・フェタス（Campylobacter fetus）であって、
前記マーカータンパク質としてＬ２３、Ｓ１４、Ｌ３６、Ｌ３２、Ｓ１１のうち、少なくとも一つを用いることを特徴とする微生物の識別方法。 - a)微生物を含む試料を質量分析してマススペクトルを得るステップと、
b)前記マススペクトルから、マーカータンパク質由来のピークの質量電荷比m/zを読み取るステップと、
c)前記質量電荷比m/zに基づいて、前記試料に含まれる微生物が、カンピロバクター（Campylobacter）属菌のいずれの菌種を含むかを識別する識別ステップと
を有し、
前記カンピロバクター（Campylobacter）属菌の菌種がカンピロバクター・ラリ（Campylobacter lari）であって、
前記マーカータンパク質としてＬ２３、Ｓ１４、Ｌ３２のうち、
少なくとも一つを含むことを特徴とする微生物の識別方法。 - a)微生物を含む試料を質量分析してマススペクトルを得るステップと、
b)前記マススペクトルから、マーカータンパク質由来のピークの質量電荷比m/zを読み取るステップと、
c)前記質量電荷比m/zに基づいて、前記試料に含まれる微生物が、カンピロバクター（Campylobacter）属菌のいずれの菌種を含むかを識別する識別ステップと
を有し、
前記カンピロバクター（Campylobacter）属菌の菌種がカンピロバクター・ジェジュニ（Campylobacter jejuni）であるときにその血清型がRであって、
前記マーカータンパク質として少なくとも、Ｌ２３を含むことを特徴とする微生物の識別方法。 - a)微生物を含む試料を質量分析してマススペクトルを得るステップと、
b)前記マススペクトルから、マーカータンパク質由来のピークの質量電荷比m/zを読み取るステップと、
c)前記質量電荷比m/zに基づいて、前記試料に含まれる微生物が、カンピロバクター（Campylobacter）属菌のいずれの菌種を含むかを識別する識別ステップと
を有し、
前記カンピロバクター（Campylobacter）属菌の菌種がカンピロバクター・ジェジュニ（Campylobacter jejuni）であるときにその血清型がＡであって、
前記マーカータンパク質として少なくとも、
Ｌ２３、または、
Ｌ３２、Ｌ７／Ｌ１２、
のいずれかを含むことを特徴とする微生物の識別方法。 - 請求項２に記載の微生物の識別方法において、
前記カンピロバクター（Campylobacter）属菌の菌種がカンピロバクター・ジェジュニ（Campylobacter jejuni）であるときにその血清型がＤであって、
前記マーカータンパク質として少なくとも、Ｌ３２及びＬ２３、またはＬ３２及びＬ２４
のいずれかを含むことを特徴とする微生物の識別方法。 - 請求項２に記載の微生物の識別方法において、
前記カンピロバクター（Campylobacter）属菌の菌種がカンピロバクター・ジェジュニ（Campylobacter jejuni）であるときにその血清型がDF複であって、
前記マーカータンパク質として少なくとも、Ｌ３２を含むことを特徴とする微生物の識別方法。 - 請求項２に記載の微生物の識別方法において、
少なくともＬ２４、Ｓ１４、Ｓ１１に由来する質量電荷比m/zを指標とするクラスター解析を用いて、前記試料に含まれる微生物が、前記カンピロバクター（Campylobacter）属菌の亜種のいずれであるかを分類することを特徴とする微生物の識別方法。 - 請求項１１に記載の微生物の識別方法において、
さらに、少なくともＬ２４、Ｓ１４、Ｌ３６に由来する質量電荷比m/zを指標とすることを特徴とする微生物の識別方法。 - 請求項１１又は１２に記載の微生物の識別方法において、
前記クラスター解析による識別結果を表すデンドログラムを作成するステップを、さらに有することを特徴とする微生物の識別方法。 - 請求項２に記載の微生物の識別方法において、
少なくとも、Ｌ３２、Ｌ７／Ｌ１２、Ｌ２３、Ｓ１１又はＬ３２、Ｌ７／Ｌ１２、Ｌ２４、Ｓ１１に由来する質量電荷比m/zを指標とするクラスター解析を用いて、前記カンピロバクター（Campylobacter）属菌の菌種がカンピロバクター・ジェジュニ（Campylobacter jejuni）であるときの血清型を分類することを特徴とする微生物の識別方法。 - 請求項１４に記載の微生物の識別方法において、
さらに、Ｌ２３、Ｌ２４、Ｓ１４、Ｌ３２、Ｌ７／Ｌ１２に由来する質量電荷比m/zを指標とすることを特徴とする微生物の識別方法。 - 請求項１４に記載の微生物の識別方法において、
さらに、Ｌ２３、Ｌ２４、Ｓ１４、Ｌ３６、Ｌ３２、Ｌ７／Ｌ１２
に由来するm/zを指標とする微生物の識別方法。 - コンピュータに請求項１〜１６のいずれかに記載の各ステップを実行させるためのプログラム。
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