JP6925258B2 - 脂肪ジオールの微生物による産生 - Google Patents
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Description
本出願は、2014年7月18日出願の米国仮出願第62/026,573号の利益を主張し、その全開示は、本明細書により参照によって援用される。
本出願は、ASCIIフォーマットで電子提出された配列表を含み、この配列表はその全体が本明細書により参照によって援用される。本ASCIIコピーは、2015年7月17日に作成されたもので、名称はLS00052PCT_SL.txtであり、ファイルサイズは50,064バイトである。
本開示は、脂肪ジオール及びそれらの産生方法に関する。本明細書中、本開示は、発酵によって脂肪ジオールを産生するように操作された組換え微生物に関連する。さらに包含されるのは、微生物を使用して、単純炭素源から脂肪ジオールを産生させるプロセスである。
[本発明1001]
単純炭素源を含む発酵ブロスで増殖させた場合に1,3脂肪ジオールを産生させるための組換え微生物であって、
(a)チオエステラーゼ(EC3.1.2.−、EC3.1.1.5、またはEC3.1.2.14)活性;及び
(b)カルボン酸レダクターゼ(EC6.2.1.3またはEC1.2.1.42)活性
を含むポリペプチドをコードする核酸配列を発現するように操作されている、
前記組換え微生物。
[本発明1002]
前記1,3脂肪ジオールがインビボで産生される、本発明1001の組換え微生物。
[本発明1003]
前記1,3脂肪ジオールが、C 5 1,3脂肪ジオール、C 6 1,3脂肪ジオール、C 7 1,3脂肪ジオール、C 8 1,3脂肪ジオール、C 9 1,3脂肪ジオール、C 10 1,3脂肪ジオール、C 11 1,3脂肪ジオール、C 12 1,3脂肪ジオール、C 13 1,3脂肪ジオール、C 14 1,3脂肪ジオール、C 15 1,3脂肪ジオール、C 16 1,3脂肪ジオール、C 17 1,3脂肪ジオール、C 18 1,3脂肪ジオール、及びC 19 1,3脂肪ジオールからなる群より選択される、本発明1001の組換え微生物。
[本発明1004]
アルコールデヒドロゲナーゼ(EC1.1.1.−)活性を含むポリペプチドをコードする核酸配列をさらに発現する、本発明1001の組換え微生物。
[本発明1005]
前記単純炭素源が、再生可能な原料に由来する、本発明1001の組換え微生物。
[本発明1006]
前記チオエステラーゼが、fatB1、TE_EEI82564、TE_CAD63310、及びphaGからなる群より選択される、本発明1001の組換え微生物。
[本発明1007]
前記カルボン酸レダクターゼが、carBである、本発明1001の組換え微生物。
[本発明1008]
前記アルコールデヒドロゲナーゼが、alrAである、本発明1004の組換え微生物。
[本発明1009]
本発明1001から1008のいずれかの微生物を含む、細胞培養物。
[本発明1010]
1,3脂肪ジオールを産生する、本発明1009の細胞培養物。
[本発明1011]
前記1,3脂肪ジオールが、C 5 1,3脂肪ジオール、C 6 1,3脂肪ジオール、C 7 1,3脂肪ジオール、C 8 1,3脂肪ジオール、C 9 1,3脂肪ジオール、C 10 1,3脂肪ジオール、C 11 1,3脂肪ジオール、C 12 1,3脂肪ジオール、C 13 1,3脂肪ジオール、C 14 1,3脂肪ジオール、C 15 1,3脂肪ジオール、C 16 1,3脂肪ジオール、C 17 1,3脂肪ジオール、C 18 1,3脂肪ジオール、及びC 19 1,3脂肪ジオールからなる群より選択される、本発明1010の細胞培養物。
[本発明1012]
本発明1001の微生物を含む、1,3脂肪ジオールの産生方法。
[本発明1013]
(a)発酵ブロス中に組換え微生物を用意する工程であって、前記微生物が、チオエステラーゼ(EC3.1.2.−、EC3.1.1.5、またはEC3.1.2.14)活性;カルボン酸レダクターゼ(EC6.2.1.3またはEC1.2.1.42)活性;及び任意選択でアルコールデヒドロゲナーゼ(EC1.1.1.)活性を含むポリペプチドをコードする核酸配列を発現する、前記工程;ならびに
(b)前記発酵ブロスから1,3脂肪ジオールを単離する工程であって、前記発酵ブロスが単純炭素源を含む、前記工程
を含む、1,3脂肪ジオールの産生方法。
[本発明1014]
前記1,3脂肪ジオールが、C 5 1,3脂肪ジオール、C 6 1,3脂肪ジオール、C 7 1,3脂肪ジオール、C 8 1,3脂肪ジオール、C 9 1,3脂肪ジオール、C 10 1,3脂肪ジオール、C 11 1,3脂肪ジオール、C 12 1,3脂肪ジオール、C 13 1,3脂肪ジオール、C 14 1,3脂肪ジオール、C 15 1,3脂肪ジオール、C 16 1,3脂肪ジオール、C 17 1,3脂肪ジオール、C 18 1,3脂肪ジオール、及びC 19 1,3脂肪ジオールからなる群より選択される、本発明1013の方法。
[本発明1015]
単純炭素源を含む発酵ブロスで増殖させた場合に1,3脂肪ジオールを産生させるための組換え微生物であって、アシル−ACPレダクターゼ(EC1.2.1.80またはEC1.2.1.42)活性を含むポリペプチドをコードする核酸配列を発現するように操作されている、前記組換え微生物。
[本発明1016]
アルコールデヒドロゲナーゼ(EC1.1.1.−)活性を含むポリペプチドをコードする核酸配列をさらに発現する、本発明1015の組換え微生物。
[本発明1017]
前記1,3脂肪ジオールがインビボで産生される、本発明1015の組換え微生物。
[本発明1018]
前記1,3脂肪ジオールが、C 5 1,3脂肪ジオール、C 6 1,3脂肪ジオール、C 7 1,3脂肪ジオール、C 8 1,3脂肪ジオール、C 9 1,3脂肪ジオール、C 10 1,3脂肪ジオール、C 11 1,3脂肪ジオール、C 12 1,3脂肪ジオール、C 13 1,3脂肪ジオール、C 14 1,3脂肪ジオール、C 15 1,3脂肪ジオール、C 16 1,3脂肪ジオール、C 17 1,3脂肪ジオール、C 18 1,3脂肪ジオール、及びC 19 1,3脂肪ジオールからなる群より選択される、本発明1017の組換え微生物。
[本発明1019]
前記1,3脂肪ジオールが、C 12 1,3脂肪ジオールである、本発明1017の組換え微生物。
[本発明1020]
前記単純炭素源が、再生可能な原料に由来する、本発明1015の組換え微生物。
[本発明1021]
本発明1015から1020のいずれかの微生物を含む、細胞培養物。
[本発明1022]
1,3脂肪ジオールを産生する、本発明1021の細胞培養物。
[本発明1023]
前記1,3脂肪ジオールが、C 5 1,3脂肪ジオール、C 6 1,3脂肪ジオール、C 7 1,3脂肪ジオール、C 8 1,3脂肪ジオール、C 9 1,3脂肪ジオール、C 10 1,3脂肪ジオール、C 11 1,3脂肪ジオール、C 12 1,3脂肪ジオール、C 13 1,3脂肪ジオール、C 14 1,3脂肪ジオール、C 15 1,3脂肪ジオール、C 16 1,3脂肪ジオール、C 17 1,3脂肪ジオール、C 18 1,3脂肪ジオール、及びC 19 1,3脂肪ジオールからなる群より選択される、本発明1022の細胞培養物。
[本発明1024]
本発明1015の微生物を含む、1,3脂肪ジオールの産生方法。
[本発明1025]
(a)発酵ブロス中に組換え微生物を用意する工程であって、前記微生物が、アシル−ACPレダクターゼ(EC1.2.1.80またはEC1.2.1.42)活性を含むポリペプチドをコードする核酸配列を発現するように操作されている、前記工程;及び
(b)該発酵ブロスから1,3脂肪ジオールを単離する工程であって、前記発酵ブロスが単純炭素源を含む、前記工程
を含む、1,3脂肪ジオールの産生方法。
[本発明1026]
アルコールデヒドロゲナーゼ(EC1.1.1.−)活性を含むポリペプチドをコードする核酸配列をさらに発現する、本発明1025の方法。
[本発明1027]
前記1,3脂肪ジオールが、C 5 1,3脂肪ジオール、C 6 1,3脂肪ジオール、C 7 1,3脂肪ジオール、C 8 1,3脂肪ジオール、C 9 1,3脂肪ジオール、C 10 1,3脂肪ジオール、C 11 1,3脂肪ジオール、C 12 1,3脂肪ジオール、C 13 1,3脂肪ジオール、C 14 1,3脂肪ジオール、C 15 1,3脂肪ジオール、C 16 1,3脂肪ジオール、C 17 1,3脂肪ジオール、C 18 1,3脂肪ジオール、及びC 19 1,3脂肪ジオールからなる群より選択される、本発明1025の方法。
FAS:脂肪酸生合成/脂肪酸シンターゼ
TE:チオエステラーゼ
ACS:アシルCoAシンターゼ
TL:3−ケトアシルCoAチオラーゼ(可逆的)
(S)3HACS:(S)−3−ヒドロキシ−アシルCoAデヒドロゲナーゼ(可逆的)
(S)2ECOH:(S)−2−エノイルCoAヒドラターゼ/(S)−3−ヒドロキシルアシルCoAデヒドラターゼ
CAR:カルボン酸レダクターゼ
FAR:脂肪アシルCoA/ACPレダクターゼ及び脂肪アルコール形成脂肪アシルCoA/ACPレダクターゼ
ACR:アシルCoAレダクターゼ
AAR:アシルACP/CoAレダクターゼ
総括
脂肪ジオールを産生するための新規で環境に優しい方法の開発は、産業に向上をもたらす。本方法は、再生可能な原料に由来する単純炭素源から脂肪ジオールを産生することを可能にし、再生可能な原料としては、トウモロコシ、サトウキビ、天然ガス、またはリグノセルロース系バイオマスなどの炭水化物;都市固形廃棄産物、グリセロール、排煙、合成ガス、二酸化炭素などの廃棄産物;あるいは、バイオマス、天然ガス、または他の炭素質材料などの有機材料の改質から生じる炭素流が挙げられるが、これらに限定されない。本方法はさらに、シアノ細菌及び藻類などの光合成生物により、CO2及び光から脂肪ジオールを産生することを可能にする。この方法は、環境にとってより良いものである。なぜなら、この方法は、石油化学由来のプロセスでは発生する毒性副生成物を産生しないからである。
本明細書中で使用される場合、「1,3脂肪ジオール」または「1,3−ジオール」または「1,3−ジアルコール」または「3−OH脂肪アルコール」または「3−ヒドロキシ脂肪アルコール」または「1,3−ジヒドロキシアルコール」または「1,3−脂肪族ジオール」という用語は、本明細書中同義で使用され、少なくとも炭素5個の鎖長を有し、かつ脂肪アシルチオエステル中間体を介して微生物脂肪酸代謝から生じ、かつ少なくとも2つのOH基、すなわち炭素鎖の1位に1つのOH基及び3位に1つのOH基を有する、化学成分を指す。
脂肪酸生合成は、細菌の生合成機構の中で最も保存されている系の1つである。脂肪酸シンターゼ(FAS)多酵素複合体は、全ての細菌及び真核生物に存在する。FAS関連遺伝子の大部分が、細胞の増殖及び生存に必要とされる。真核生物及び細菌のFASは、本質的に同じ型の生化学変換を駆動する。真核生物では、FASは、FASIと称され、その触媒ドメインの大部分は、1本のポリペプチド鎖によりコードされる(分離不可能)。細菌などの原核生物では、FASは、FASIIと称され、その個々の酵素及びキャリアータンパク質は、別々の(分離可能な)タンパク質をコードする別々の遺伝子によりコードされる。
分子は、それが互いに重ね合せることのできない鏡像である立体異性体(すなわち、鏡像異性体)として存在可能である場合に、キラルであると言われる。これは、関連性がある。なぜなら、特定分子に対する生物の反応は、その分子が生物の受容体分子の特定部位にどのように一致するかに依存する場合が多いからである。キラルアルコール及びジオールをはじめとするキラル分子は、特定の化合物、例えば、医薬品、栄養補助食品、及び他の活性化合物などの合成の基本単位である。医薬品及び栄養補助食品用途では、どちらの鏡像異性体が活性なものであり、意図する受容体に一致するのかを知る必要がある。
3−ヒドロキシ脂肪酸誘導体(例えば、3−ヒドロキシ脂肪酸、3−ヒドロキシ脂肪エステル、3−ヒドロキシ脂肪アルデヒド、3−ヒドロキシ脂肪アルコールなど)の独特の態様として、各分子がキラルであるということがある。3−ヒドロキシ官能基は、立体中心であり、各化合物にキラル中心を与える。キラリティは、分子の用途を規定する上で有用な分子特質となり得るもので、そのような特質として、重合体性能、生体活性、医薬効力などが挙げられるが、これらに限定されない。3−ヒドロキシ脂肪酸誘導体の立体異性体は、その異性体を産生する脂肪酸生合成(FAS)の選択性に依存する。どのFAS酵素が3−ヒドロキシ脂肪酸誘導体合成を担当するかを操作することにより、得られる3−ヒドロキシ脂肪誘導体のキラリティを制御することができる。例えば、1,3脂肪ジオール生合成に天然大腸菌FASを利用すると、(R)−1,3脂肪ジオールが産生されると思われるが、そのキラル中心は、(R)−3−ヒドロキシルアシルACP−形成3−ケトアシル−ACPレダクターゼの活性により作りだされ、大腸菌のFabG(他の微生物では相同体)により触媒される。(R)−3−ヒドロキシルアシルACPは、図10の経路1〜5に示すもの(これらに限定されない)をはじめとするアルコール生合成ポリペプチドの基質であり、経路1〜5はそれを(R)−1,3脂肪ジオールに変換する。さらに、(S)−3−ヒドロキシアシルCoAは、β酸化経路を通じた脂肪酸分解の中間体である。遊離脂肪酸は、アシル−CoAシンターゼによりアシル−CoAに変換され、これは大腸菌のFadD及び他の微生物の相同体により触媒される;アシル−CoAは、脂肪アシル−CoAデヒドロゲナーゼにより酸化されてtrans−2−エノイル−CoAになり、これは大腸菌のFadE及び他の微生物の相同体により触媒される;次いで、trans−2−エノイル−CoAは、2−trans−エノイル−CoAヒドラターゼ/(S)−3−ヒドロキシ−アシル−CoAデヒドラターゼにより水和されて(S)−3−ヒドロキシ−アシル−CoAになり、これは大腸菌のFadB及び他の微生物の相同体により触媒される;次いで、(S)−3−ヒドロキシ−アシル−CoAは、3−ケト−アシル−CoAデヒドロゲナーゼによりさらに酸化されて3−ケト−アシル−CoAになり、これも大腸菌のFadB及び他の微生物の相同体により触媒される;最後に、3−ケト−アシル−CoAは、3−ケトアシル−CoAチオラーゼによりチオール化されてアシル−CoA及びアセチル−CoAになり、これは大腸菌のFadA及び他の微生物の相同体により触媒される。β酸化の(S)−3−ヒドロキシ−アシル−CoAデヒドロゲナーゼ活性が、例えば、大腸菌FadB(または異なる微生物におけるもしくはその微生物からの機能相同体)のヒスチジン450の突然変異により、選択的に破壊された株は、遊離脂肪酸を提供された場合に、(S)−3−ヒドロキシ−アシルCoAを蓄積することとなる(図11の経路6及び7)。ヒスチジン450は、大腸菌由来の脂肪酸酸化の多酵素複合体の巨大α−サブユニットに会合したL−3−ヒドロキシアシル補酵素Aデヒドロゲナーゼの触媒残基である(He et al. (1996) Biochemistry 35(29):9625−9630を参照)。次いで、(S)−3−ヒドロキシ−アシルCoAは、図11の経路1〜5に記載されるものなどの脂肪アルコール形成ポリペプチドの作用を通じて、(S)−1,3−脂肪ジオールに変換され得る。遊離脂肪酸は、外部から細胞に提供することも可能であるし(図11の経路7)、あるいは細胞内で、例えば、チオエステラーゼによるアシルACPの加水分解により生成させることも可能である(図11の経路6)。1つの実施形態において、上記反応のアシルCoA中間体は、3−ケトアシル−CoAチオラーゼにより伸長して、3−ケトアシル−CoAになり(図11の経路8)、これは大腸菌のFadA及び他の微生物の相同体により触媒される;次いで、3−ケトアシル−CoAを、ヒドラターゼ/デヒドラターゼ活性が選択的に破壊された(例えば、大腸菌FadBのGlu119(または関連酵素のその相同体)の変異により)FadBの突然変異体により還元する。これにより、(S)−3−ヒドロキシルアシル−CoAの蓄積がもたらされることとなり、次いで、これを、図11の経路1〜5に記載されるものなどの脂肪ジオール形成ポリペプチドにより変換して、(S)−1,3脂肪ジオールにすることができる。巨大アルファ−サブユニットのグルタミン酸−119は、大腸菌由来の脂肪酸酸化の多酵素複合体により触媒される2−trans−エノイル−補酵素Aの水和における触媒基部である(He et al. (1997) Biochemistry 36(36):11044−11049を参照)。巨大アルファ−サブユニットのグルタミン酸139は、D−及びL−3−ヒドロキシアシル−補酵素A両方の脱水における触媒基部であるが、大腸菌由来の脂肪酸酸化の多酵素複合体により触媒されるデルタ3、デルタ2−エノイル−補酵素Aの異性化では、触媒基部ではない(Yang et al. (1995) Biochemistry 34(19):6441−6447を参照)。別の実施形態において、上記反応のアシルCoA中間体は、3−ケトアシルCoAチオラーゼにより伸長されて3−ケトアシルCoAになるが、これは大腸菌のFadA及び他の微生物の相同体により触媒される。次いで、3−ケトアシルCoAは、(S)−3−ヒドロキシアシル−CoAデヒドロゲナーゼ(例えば、EC1.1.1.35由来)により還元される(図11経路8)。これにより、(S)−3ヒドロキシルアシルCoAの蓄積がもたらされることとなり、次いで、(S)−3ヒドロキシルアシルCoAを、図11の経路1〜5に記載されるものなどの脂肪ジオール形成ポリペプチドにより変換して、(S)−1,3脂肪ジオールにすることができる。
本開示は、脂肪ジオール(例えば、1,3−ジオール)などの所望の化合物の産生のため酵素経路を変化させる目的で、酵素機能を持つポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを特定する。これらのポリペプチドは、本明細書中、酵素アクセッション番号(EC番号、以下の表1を参照)により特定され、脂肪ジオールの産生を導く脂肪酸経路を操作するのに有用である。より詳細には、図1〜3及び8〜11は、1,3−ジオールを産生するように操作された経路を示す。図に示すとおり、アシル中間体を保有する3’ヒドロキシアシルキャリアータンパク質(ACP)(アシル−ACPまたは3−ヒドロキシアシル−ACP)は、中間体に3’ヒドロキシ脂肪酸(3’OHFA)及び3’ヒドロキシ脂肪アルデヒド(3’OH脂肪アルデヒド)を採用することで、1,3−ジオールへと変換することができる。1つの実施形態において、操作された経路は、図1〜3及び8〜11に示されるものであり、1,3−ジオールを産生する。本明細書中、グルコースなどの単純炭素源は、微生物(例えば、エシェリヒア属、バチルス属、ラクトバチルス属、ロドコッカス属、シネココッカス属、シネコシスティス属、シュードモナス属、アスペルギルス属、トリコデルマ属、ニューロスポラ属、フサリウム属、フミコラ属、リゾムコール属、クルイベロミセス属、ピキア属、ムコール属、ミセリオフトラ属、ペニシリウム属、ファネロケーテ属、プレウロツス属、トラメテス属、クリソスポリウム属、サッカロミセス属、ステノトロホモナス属、シゾサッカロミセス属、ヤロウィア属、またはストレプトミセス属)により、最初に、3’ヒドロキシアシル−ACPへと変換される。いくつかの実施形態において、普遍的かつ高度に保存されたアシル−ACPまたは3’ヒドロキシアシル−ACPが、微生物の天然経路により産生される。1つの実施形態において、3’ヒドロキシアシル−ACPを使用して、操作された経路を開始させることができる。例えば、3’ヒドロキシアシル−ACPは、チオエステラーゼ(TE)活性を有する酵素(以下の表2を参照)により、3’OH FAなどの中間体へと変換することができる。次いで、中間体3’OH FAは、カルボン酸レダクターゼ(CAR)活性を有する酵素(以下の表3を参照)により、3’OHアルデヒドなどの別の中間体へと変換することができる。次いで、アルコールデヒドロゲナーゼ(ADH)またはアルデヒドレダクターゼ(AR)活性を有する酵素(以下の表4を参照)が、3’OHアルデヒドを1,3−ジオールへと変換することができる。そのような経路をさらに図示する目的で、図2は、チオエステラーゼ活性(例えば、fatB1、tesA、phaG);CAR活性(例えば、carB);及びADH/AR活性(例えば、alrA)を有する特定の酵素の例を提示する。3’OHアシル−ACPを3’OH FAへと変換する反応を行うことができるチオエステラーゼ(TE)酵素のさらなる例を、表2に示す。1つの実施形態において、これらのチオエステラーゼをコードする遺伝子は、tesA、tesB、fatB、fatB1、fatB2、fatB3、TE_EEI82564、TE_CAD63310、及びphaGである。別の実施形態において、これらのチオエステラーゼをコードする遺伝子は、TE_EEI82564及び/またはTE_CAD63310であるが、これらは、以前は、3’OHアシル−ACPを3’OH FAへと変換する能力と関係ないとされていた(例えば、Jing et al. (2011) BMC Biochemistry 12(44):1471−2091を参照)。3’OH FAを3’OHアルデヒドへと変換する反応を行うことができるCAR酵素のさらなる例を、表3に示す。1つの実施形態において、CAR酵素をコードする遺伝子は、carBである。3’OHアルデヒドを1,3−ジオールへと変換する反応を行うことができるADH/AR酵素のさらなる例を、表4に示す。1つの実施形態において、これらのADH/AR酵素をコードする遺伝子は、alrA及び/またはyqhDである。
本明細書中で使用される場合、発酵は、広義には、組換え宿主細胞による、有機材料の標的物質への変換を指す。例えば、発酵として、炭素源を含む培地で組換え宿主細胞の培養物を増殖させることによる、組換え宿主細胞による炭素源から脂肪ジオールなどの脂肪酸誘導体への変換が挙げられる。脂肪ジオール及び/または脂肪アルコールなどの標的物質の産生を許容する条件は、宿主細胞が脂肪ジオール組成物などの所望の産物を産生することを可能にする任意の条件である。同様に、この条件として、宿主細胞で発現するベクターのポリヌクレオチド配列が、宿主細胞が標的ポリペプチドを合成することを可能にする任意の条件が挙げられる。適切な条件として、例えば、典型的発酵条件が挙げられる。発酵条件は、多くのパラメーターを含むことができ、そのようなパラメーターとして、温度範囲、pHレベル、曝気レベル、供給速度、及び培地組成が挙げられるが、これらに限定されない。これらの条件はそれぞれ、個別にまたは組み合わせで、宿主細胞の増殖を可能にする。発酵は、好気性、嫌気性、またはそれらの改変型(微好気性など)が可能である。培養培地の例として、ブロス(液体)またはゲル(固体)が挙げられる。一般に、培地は、宿主細胞による直接代謝が可能な炭素源(例えば、再生可能な原料に由来する単純炭素源)を含む。また、培地に酵素を使用して、流動化(例えば、デンプンまたはセルロースを解重合して発酵性糖にする)及びそれに続く炭素源の代謝を促進することができる。
生物学的に産生された有機化合物を含むバイオ産物(例えば、本開示に従って産生された脂肪ジオール組成物)、及び特に本明細書中開示される脂肪酸生合成経路を用いて産生された脂肪ジオール組成物は、再生可能な供給源(例えば、再生可能な原料に由来する単純炭素源)から産生され、したがって、新規組成物である。これらの新規バイオ産物は、二核種炭素同位体フィンガープリント法または14C年代測定法に基づいて、石油化学炭素に由来する有機化合物と区別することができる。さらに、生物起源炭素の具体的な供給源(例えば、グルコースとグリセロールとの対比)を、二核種炭素同位体フィンガープリント法によって決定することもできる(例えば、米国特許第7,169,588号を参照)。本開示の脂肪ジオールなどのバイオ産物を石油由来の有機化合物と区別できることは、流通でこれらの材料をトラッキングするのに有益である。例えば、生物由来の炭素同位体組成と石油由来の炭素同位体組成の両方を含む有機化合物または化学物質は、石油由来の材料だけでできた有機化合物及び化学物質と区別することができる。それ故に、本明細書において産生されるバイオ産物は、その独自の炭素同位体組成に基づいて、流通で追跡またはトラッキングすることができる。バイオ産物は、各試料中の安定炭素同位体比(13C/12C)を比較することにより、石油由来の有機化合物と区別することができる。所与のバイオ産物における13C/12C比は、二酸化炭素が固定された時点の大気中二酸化炭素における13C/12C比の結果である。この比はまた、代謝経路も正確に反映する。地域的変動も起こる。石油、C3植物(広葉植物)、C4植物(イネ科草本)、及び海洋炭酸塩はすべて、13C/12C及び対応するδ13C値に明らかな違いを示す。C4植物及びC3植物は両方とも、様々な13C/12C同位体比を示すが、典型的な値は、C4植物について約−7〜約−13パーミル、C3植物について約−19〜約−27パーミルである(例えば、Stuiver et al., Radiocarbon 19:355 (1977)を参照)。石炭及び石油などの非再生可能エネルギーは、一般に後者の範囲に含まれる。
IAEA、USGS、NIST、及び他の選ばれた国際同位体研究所が協同して、一連の代替RMを開発している。PDBからのパーミル偏位の表記がδ13Cである。測定は、CO2に対して、高精度安定同位体比質量分析(IRMS)により、質量44、45及び46の分子イオンに関して行われる。本明細書中に記載される組成物は、本明細書中に記載される方法のいずれかによって産生された脂肪ジオールの組成物及び産物を含む。具体的には、脂肪ジオール組成物または産物は、約−28以上、約−27以上、−20以上、−18以上、−15以上、−13以上、−10以上、または−8以上のδ13Cを有することができる。例えば、脂肪ジオール組成物または産物は、約−30〜約−15、約−27〜約−19、約−25〜約−21、約−15〜約−5、約−13〜約−7、または約−13〜約−10のδ13Cを有することができる。別の場合には、脂肪ジオール組成物または産物は、約−10、−11、−12、または−12.3のδ13Cを有することができる。本明細書中の本開示に従って産生された脂肪ジオールの組成物及び産物は、各化合物中の14Cの量を比較することにより、石油由来の有機化合物とも区別することができる。14Cは5730年という核半減期を有するので、「より古い」炭素を含有する石油系燃料を、「より新しい」炭素を含有する脂肪ジオールの組成物及びバイオ産物と区別することができる(例えば、Currie, ‘‘Source Apportionment of Atmospheric Particles, Characterization of Environmental Particles, J. Buffle and H. P. van Leeuwen, Eds., 1 of Vol. I of the IUPAC Environmental Analytical Chemistry Series (Lewis Publishers, Inc.) 3−74, (1992)を参照)。
実験はすべて、単独コロニーから、または特定微生物株の凍結貯蔵物から開始した。各株について四つ組で、96ウェルプレートにて高処理(HTP)プロトコルを以下のとおり行った:Luria−Bertani(LB)培養物40μL(96ウェルプレートで増殖しているLB培養物から取得)を用いて、LB培地360μLに播種し、次いでこれを、32℃で、振盪させながら、3〜4時間インキュベートした。LB種40μLを用いて、Nlim培地(以下を参照)360μLに播種した。32℃で2時間、30〜35℃で増殖させた後、培養物をIPTG(最終濃度1mM)で誘導した。次いで、培養物を、他に特に記載がないかぎり、30〜35℃で、振盪させながら、20時間インキュベートし、その後、培養物を、以下に詳細を記載する標準抽出プロトコルに従って抽出した。振盪フラスコでのプロトコルを同様に行ったが、ただし、最終産生培地体積が400μlではなく15mlであるように、培地体積をスケールアップした。振盪フラスコ培地は、0.25%(v/v)トリトンX100も含有していた。微生物株に応じて、全ての段階で適切な抗生物質を添加した。
組換え大腸菌株により産生された発酵ブロス試料に、以下の手順で抽出を行った:
1.ブロスを3000rpmで30秒間ボルテックスしてから、秤量する
2.Vortex Genieでボルテックス後、直ちにブロス500μLを採取する
3.内部標準として、500mg/Lの(1−ウンデカノール)を含む酢酸ブチル5mLを加える
4.ブロスを、ボルテックス装置(DVX−2500マルチチューブボルテックス装置、VWR)にて、2500rpmで20分間、抽出する
5.抽出物を、室温で10分間遠心する(4750rpmにて)
6.最上層の上清100μLをピペットで、インサートを有するGCバイアルに移す
7.室温で、GCバイアルに100μLの(BSTFA+1%TMCS)を加えて誘導体化する
8.抽出物とBSTFA試薬を30秒間混合してから、以下に説明するGC/MSに注入する:
特定用の装置設定
初期温度:60℃
初期時間:5分
平衡化時間:1分間
プログラム速度:25℃/分
最終温度:300℃
最終時間:1.6分
検出器:MSD
インレット温度:300℃
トランスファーライン温度:300℃
MS源:230℃
MS四重極:150℃
スプリット比:20:1
カラム流:1mL/分
試料量:1μL
この実施例は、アネロコッカス・テトラジウス(Anaerococcus tetradius)由来の微生物チオエステラーゼ(TE_EEI82564、genbankアクセッション番号WP_004837416)またはラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)由来の微生物チオエステラーゼ(TE_CAD63310、genbankアクセッション番号WP_003640969)、及びマイコバクテリウム・スメグマチス(Mycobacterium smegmatis)由来のカルボン酸レダクターゼの変異体であるCarB(genbankアクセッション番号YP_889972)を含む代謝経路を使用した、組換え大腸菌での予想外の1,3−ジオール産生を示す。
この実施例は、ウンベルラリア・カリフォルニカ(Umbellularia californica)由来の植物チオエステラーゼであるfatB1(genbankアクセッション番号Q41635)及びマイコバクテリウム・スメグマチス由来の変異カルボン酸レダクターゼであるCarBを含む代謝経路を使用した、組換え大腸菌での1,3−ジオール産生を示す。
この実施例は、シュードモナス・プチダ由来のチオエステラーゼ/トランスアシラーゼであるphaG(genbankアクセッション番号AAN67031)及びマイコバクテリウム・スメグマチス由来の変異カルボン酸レダクターゼであるCarBを含む代謝経路を使用した、組換え大腸菌での1,3−ジオール産生を示す。
この実施例は、シネココッカス・エロンガタス由来の変異アシル−ACPレダクターゼであるAAR(genbankアクセッション番号YP_400611;野生型)を含む代謝経路を使用した、組換え大腸菌での1,3−ジオール産生を示す。変異AAR配列については、本明細書に添付される配列表を参照(以下)。
この実施例は、ウンベルラリア・カリフォルニカ由来の植物チオエステラーゼfatB1、及びマイコバクテリウム・スメグマチス由来のカルボン酸レダクターゼCarBを含む代謝経路を使用した組換え大腸菌での1,3−ジオール産生をどのように実証するかを説明する。
この実施例は、ウンベルラリア・カリフォルニカ由来の植物チオエステラーゼfatB1、及びマイコバクテリウム・スメグマチス由来のカルボン酸レダクターゼCarBを含む単純化された代謝経路を使用して、組換え大腸菌での1,3−ジオール産生をどのように実証するかを説明する。
この実施例は、チオエステラーゼtesA、及びマイコバクテリウム・スメグマチス由来のカルボン酸レダクターゼCarBを含む代謝経路を使用した組換え大腸菌での1,3−ジオール産生をどのように実証するかを説明する。
この実施例は、シネココッカス・エロンガタス由来のアシル−ACPレダクターゼAARを含む代謝経路を使用した組換え大腸菌での1,3−ジオール産生をどのように実証するかを説明する。
この実施例は、シナモマム・カムフォラ(Cinnamomum camphora)由来の植物チオエステラーゼfatB、及びマイコバクテリウム・スメグマチス由来のカルボン酸レダクターゼcarBを含む代謝経路を使用した組換え大腸菌での1,3−ジオール産生をどのように実証するかを説明する。
この実施例は、アシネトバクター・バイリイ(Acinetobacter baylyi)由来の脂肪アシル−CoAレダクターゼacr1(genbankアクセッション番号AAC45217)を含む代謝経路を使用した組換え大腸菌での1,3−ジオール産生をどのように実証するかを説明する。
この実施例は、マリノバクター・アクアエオレイ(Marinobacter aquaeolei)由来の脂肪アシル−ACPレダクターゼFAR(genbankアクセッション番号YP_959486)を含む代謝経路を使用した組換え大腸菌での1,3−ジオール産生をどのように実証するかを説明する。
この実施例は、フォトラブダス・ルミネッセンス(Photorhabdus luminescens)由来の、LuxC、LuxD、及びLuxEを含む脂肪アシル−ACPレダクターゼFAR複合体(genbankアクセッション番号AHH25015〜17)を含む代謝経路を使用した組換え大腸菌での1,3−ジオール産生をどのように実証するかを説明する。
この実施例は、アシネトバクター・バイレイ由来の、エノイル−CoAヒドラターゼ活性を保持しているがデヒドロゲナーゼ活性を欠いており、脂肪アシル−CoAレダクターゼacr1を発現する3−ヒドロキシ−アシル−ACPアシル−CoAトランスアシラーゼまたはチオエステラーゼfadB(His450Gln)(genbankアクセッション番号AAC45217)を含む代謝経路を使用した組換え大腸菌での3−(S)−脂肪ジオール産生をどのように実証するかを説明する。
この実施例は、アシネトバクター・バイレイ由来の、デヒドロゲナーゼ活性を保持しているがデヒドラターゼ活性を欠いており、脂肪アシル−CoAレダクターゼacr1を発現する3−ヒドロキシ−アシル−ACPアシル−CoAトランスアシラーゼまたはチオエステラーゼfadB(Glu119Gln)(genbankアクセッション番号AAC45217)を含む代謝経路を使用した組換え大腸菌での3−(S)−脂肪ジオール産生をどのように実証するかを説明する。
Claims (21)
- 単純炭素源を含む発酵ブロスで増殖させた場合に1,3脂肪ジオールを産生させるための組換え大腸菌であって、
前記組換え大腸菌が、
(a)チオエステラーゼ(EC3.1.2.−、EC3.1.1.5、またはEC3.1.2.14)活性を有するポリペプチドをコードする核酸配列;及び
(b)カルボン酸レダクターゼ(EC6.2.1.3またはEC1.2.1.42)活性を有するポリペプチドをコードする核酸配列
を発現するように操作されており、
前記チオエステラーゼが、fatB1、fatB2、fatB、fatA1、fatA、fatB3、TE_EEI82564、TE_CAD63310、及びphaGからなる群より選択され、
前記チオエステラーゼが、基質として3−ヒドロキシアシル−ACPを使用し、
前記カルボン酸レダクターゼが、配列番号:4、配列番号:6、及び配列番号:8からなる群より選択されるマイコバクテリウム・スメグマチス(Mycobacterium smegmatis)由来の変異体carBであり、かつ
前記1,3脂肪ジオールが、C8 1,3脂肪ジオール、C9 1,3脂肪ジオール、C10 1,3脂肪ジオール、C11 1,3脂肪ジオール、C12 1,3脂肪ジオール、C13 1,3脂肪ジオール、C14 1,3脂肪ジオール、C15 1,3脂肪ジオール、C16 1,3脂肪ジオール、C17 1,3脂肪ジオール、C18 1,3脂肪ジオール、及びC19 1,3脂肪ジオールからなる群より選択される、
前記組換え大腸菌。 - 前記1,3脂肪ジオールがインビボで産生される、請求項1に記載の組換え大腸菌。
- アルコールデヒドロゲナーゼ(EC1.1.1.−)活性を含むポリペプチドをコードする核酸配列をさらに発現する、請求項1に記載の組換え大腸菌。
- 前記単純炭素源が、再生可能な原料に由来する、請求項1に記載の組換え大腸菌。
- 前記アルコールデヒドロゲナーゼが、alrAである、請求項3に記載の組換え大腸菌。
- 請求項1から5のいずれか一項に記載の大腸菌を含む、細胞培養物。
- 1,3脂肪ジオールを産生する、請求項6に記載の細胞培養物。
- 請求項1に記載の大腸菌を培養する工程を含む、1,3脂肪ジオールの産生方法。
- (a)発酵ブロス中に組換え大腸菌を用意する工程であって、前記組換え大腸菌が、チオエステラーゼ(EC3.1.2.−、EC3.1.1.5、またはEC3.1.2.14)活性を有するポリペプチドをコードする核酸配列;及びカルボン酸レダクターゼ(EC6.2.1.3またはEC1.2.1.42)活性を有するポリペプチドをコードする核酸配列;及び任意選択でアルコールデヒドロゲナーゼ(EC1.1.1.−)活性を有するポリペプチドをコードする核酸配列を発現する、前記工程;ならびに
(b)前記発酵ブロスから1,3脂肪ジオールを単離する工程であって、前記発酵ブロスが単純炭素源を含む、前記工程
を含む、1,3脂肪ジオールの産生方法であって、
前記チオエステラーゼが、fatB1、fatB2、fatB、fatA1、fatA、fatB3、TE_EEI82564、TE_CAD63310、及びphaGからなる群より選択され、
前記チオエステラーゼが、基質として3−ヒドロキシアシル−ACPを使用し、
前記カルボン酸レダクターゼが、配列番号:4、配列番号:6、及び配列番号:8からなる群より選択されるマイコバクテリウム・スメグマチス由来の変異体carBであり、かつ
前記1,3脂肪ジオールが、C8 1,3脂肪ジオール、C9 1,3脂肪ジオール、C10 1,3脂肪ジオール、C11 1,3脂肪ジオール、C12 1,3脂肪ジオール、C13 1,3脂肪ジオール、C14 1,3脂肪ジオール、C15 1,3脂肪ジオール、C16 1,3脂肪ジオール、C17 1,3脂肪ジオール、C18 1,3脂肪ジオール、及びC19 1,3脂肪ジオールからなる群より選択される、
前記方法。 - 単純炭素源を含む発酵ブロスで増殖させた場合に1,3脂肪ジオールを産生させるための組換え大腸菌であって、
前記組換え大腸菌が、アシル−ACPレダクターゼ(EC1.2.1.80またはEC1.2.1.42)活性を含むポリペプチドをコードする核酸配列を発現するように操作されており、
前記アシル−ACPレダクターゼが、配列番号:2を有するシネココッカス・エロンガタス(Synechococcus elongatus)由来の変異体アシル−ACPレダクターゼであり、かつ
前記1,3脂肪ジオールが、C8 1,3脂肪ジオール、C9 1,3脂肪ジオール、C10 1,3脂肪ジオール、C11 1,3脂肪ジオール、C12 1,3脂肪ジオール、C13 1,3脂肪ジオール、C14 1,3脂肪ジオール、C15 1,3脂肪ジオール、C16 1,3脂肪ジオール、C17 1,3脂肪ジオール、C18 1,3脂肪ジオール、及びC19 1,3脂肪ジオールからなる群より選択される、
前記組換え大腸菌。 - アルコールデヒドロゲナーゼ(EC1.1.1.−)活性を含むポリペプチドをコードする核酸配列をさらに発現する、請求項10に記載の組換え大腸菌。
- 前記1,3脂肪ジオールがインビボで産生される、請求項10に記載の組換え大腸菌。
- 前記1,3脂肪ジオールが、C12 1,3脂肪ジオールである、請求項12に記載の組換え大腸菌。
- 前記単純炭素源が、再生可能な原料に由来する、請求項10に記載の組換え大腸菌。
- 請求項10から14のいずれか一項に記載の大腸菌を含む、細胞培養物。
- 1,3脂肪ジオールを産生する、請求項15に記載の細胞培養物。
- 請求項10に記載の大腸菌を培養する工程を含む、1,3脂肪ジオールの産生方法。
- (a)発酵ブロス中に組換え大腸菌を用意する工程であって、前記組換え大腸菌が、アシル−ACPレダクターゼ(EC1.2.1.80またはEC1.2.1.42)活性を含むポリペプチドをコードする核酸配列を発現するように操作され、前記アシル−ACPレダクターゼが、配列番号:2を有するシネココッカス・エロンガタス由来の変異体アシル−ACPレダクターゼである、前記工程;及び
(b)前記発酵ブロスから1,3脂肪ジオールを単離する工程であって、前記発酵ブロスが単純炭素源を含み、前記1,3脂肪ジオールが、C8 1,3脂肪ジオール、C9 1,3脂肪ジオール、C10 1,3脂肪ジオール、C11 1,3脂肪ジオール、C12 1,3脂肪ジオール、C13 1,3脂肪ジオール、C14 1,3脂肪ジオール、C15 1,3脂肪ジオール、C16 1,3脂肪ジオール、C17 1,3脂肪ジオール、C18 1,3脂肪ジオール、及びC19 1,3脂肪ジオールからなる群より選択される、前記工程
を含む、1,3脂肪ジオールの産生方法。 - アルコールデヒドロゲナーゼ(EC1.1.1.−)活性を含むポリペプチドをコードする核酸配列をさらに発現する、請求項18に記載の方法。
- fatB1が、ウンベルラリア・カリフォルニカ(Umbellularia californica)に由来し;fatB2が、クフェア・フーケリアナ(Cuphea hookeriana)に由来し;fatB3が、クフェア・フーケリアナに由来し;fatBが、シナモマム・カムフォラ(Cinnamomum camphora)に由来し;fatA1が、ヘリアンタス・アヌウス(Helianthus annuus)に由来し;fatAが、アラビドプシス・タリアナ(Arabidopsis thaliana)、ブラシカ・ユンケア(Brassica juncea)、クフェア・フーケリアナに由来し;phaGが、シュードモナス・プチダ(Pseudomonas putida)に由来する、請求項1に記載の組換え大腸菌。
- fatB1が、ウンベルラリア・カリフォルニカに由来し;fatB2が、クフェア・フーケリアナに由来し;fatB3が、クフェア・フーケリアナに由来し;fatBが、シナモマム・カムフォラに由来し;fatA1が、ヘリアンタス・アヌウスに由来し;fatAが、アラビドプシス・タリアナ、ブラシカ・ユンケア、クフェア・フーケリアナに由来し;phaGが、シュードモナス・プチダに由来する、請求項9に記載の方法。
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