JP6794453B2 - モノホスホリル脂質aを生産する細菌、及びそれを利用したヘキサ−アシル化されたモノホスホリル脂質aの生産方法 - Google Patents
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Description
前記細菌は、LpxEポリペプチドを暗号化する増加されたコピー数を含んでもよい。前記細菌は、LpxEポリペプチドを暗号化する1以上の外在的ポリヌクレオチドを含んでもよい。
前記方法は、親細菌性細胞に比べ、LpxEポリペプチドを暗号化する遺伝子の発現を増大させる遺伝的変形を含むモノホスホリル脂質A(MLA:monophosphoryl lipid A)を生産する細菌を培養して培養液を得る段階を含んでもよい。
1.1.pWSK29−EcLpxLEcLpxMの準備
大腸菌LpxLポリペプチドをコーディングするポリヌクレオチドを得るために、大腸菌W3110ゲノム(GenBank Accession No.NC_000918.1)(ATCC)から、下記プライマー対を利用した第1重合酵素連鎖反応(PCR:polymerase chain reaction)を行い、リボソーム結合部位(RBS:ribosome binding site)を含んだEcLpxLポリペプチド(GenBank Accession No.BAA35852.1、配列番号1)をコーディングするポリヌクレオチド(GenBank Accession No.AP009048.1(c1118159..1117239、配列番号2)を増幅した(図2A)。
LpxLリバースプライマーP2: 配列番号4
大腸菌LpxMポリペプチドをコーディングするポリヌクレオチドを得るために、前記大腸菌W3110ゲノムから、下記プライマー対を利用した第2 PCRを行い、RBSを含んだEcLpxMポリペプチド(GenBank Accession No.BAA15663.1、配列番号5)をコーディングするポリヌクレオチド(GenBank Accession No.AP009048.1(c1941907..1940936、配列番号6)を増幅した(図2A)。
LpxMリバースプライマーP4: 配列番号8
前記第1 PCRから得られたEcLpxLポリヌクレオチド、及び第2 PCRから得られたEcLpxMポリヌクレオチドをテンプレートにし、前記LpxLフォワードプライマーP1及びLpxMリバースプライマーP4を利用した第3 PCRを行い、EcLpxLポリヌクレオチドとEcLpxMポリヌクレオチドとが融合されたEcLpxLExLpxMポリヌクレオチドを増幅した。
1.2.1.pET21−AaLpxEの準備
アキフェクスエオリクスLpxE(Aquifex aeolicus LpxE:AaLpxE)ポリペプチドをコーディングするポリヌクレオチドを得るために、アキフェクスエオリクスVF5ゲノム(GenBank Accession No.NC_000918.1)(ATCC)から、下記プライマー対を使用して、AaLpxEポリペプチド(GenBank Accession No.NP_214169.1、配列番号9)をコーディングするポリヌクレオチド(GenBank Accession No.NC_000918.1:1199317..1199841、配列番号10)を増幅した。
AaLpxEリバースプライマー:配列番号12
1.1に記載されているようにPCRを行い、増幅された産物を精製した。精製された産物をpET21aプラスミド(Novagen)のNdeI制限酵素サイト及びXhoI制限酵素サイトに導入した。クローニングされたプラスミドを、1.1に記載されているように、大腸菌DH5αに形質転換及び選別した。クローニングされたプラスミドをpET21−AaLpxEと命名した。
1.2.1で準備されたpET21−AaLpxEをテンプレートとして使用して、下記プライマー対を使用して、AaLpxEをコーディングするポリヌクレオチドを増幅した。
AaLpxEリバースプライマー:配列番号14
PCRのために、KODホットスタートDNAポリメラーゼ(Novagen)を利用し、T3000 thermocycler(Biometra)において行った。
ヘリコバクターピロリLpxE(Helicobactor pylori LpxE:HpLpxE)遺伝子であるhp0021において、HindIII制限酵素認識配列を欠失させるために、17Serポリヌクレオチド配列(配列番号15)を、AGCからTCGに、沈黙(silent)突然変異されたポリヌクレオチド配列(配列番号16)に、統合された(integrated)DNA技法(mBiotech,ROK)を利用して合成した。かように合成されたDNAをテンプレートにするプライマー対を使用して、HpLpxEアミノ酸配列(配列番号17)をコーディングするポリヌクレオチドを増幅した。
リバースプライマー:配列番号19
PCRのために、KODホットスタートDNAポリメラーゼ(Novagen)を利用し、T3000サーモサイクラ(Biometra)において行った。
1.1に記載されているようにPCRを行い、増幅された産物を精製した。精製された産物を、pBAD33.1(Chung, H. S., and Raetz, C. R., Biochemistry(2010), vol. 49(19), pp. 4126-4137)のXbaI制限酵素サイト及びHindIII制限酵素サイトにクローニングした。クローニングされたプラスミドを、1.1に記載されているように大腸菌に形質転換して選別した。クローニングされたプラスミドをpBAD33.1−HpLpxEと命名した。
2.1.lpxT遺伝子がゲノムから除去された大腸菌の準備
大腸菌ゲノムにおいて、LpxTポリペプチド(配列番号20)をコーディングするlpxT遺伝子(配列番号21)にカナマイシンカセットが挿入された大腸菌株W3110、lpxT::kanに、pCP20プラスミド(Kirill A. Datsenko, and Barry L. Wanner PNAS (2000), vol. 97, pp. 6640-6645)を、1.1に記載されているように大腸菌に形質転換し、LB−アンピシリン固体培地で選別した。選別された大腸菌をLB固体培地に接種し、42℃の温度で選別し、lpxTとカナマイシンカセットとが除去された大腸菌株、すなわち、△lpxT、W3110を準備した(図2Bの段階1)。
大腸菌ゲノムにおいて、pagP遺伝子にカナマイシンカセットが挿入された大腸菌株(JW0617(pagP::kan))からP1ウイルスを準備した(Current Protocols in Molecular Biology (2007), 1. 16. 1-1. 16. 24, Unit 1. 16)。2.1に記載されているように準備された△lpxT、W3110にP1ウイルスを形質導入させ、LB−カナマイシン固体培地で選別し、pagP遺伝子の代わりにpagP::kanが挿入された大腸菌株、すなわち、△lpxT、pagP::kan、W3110を準備した(Current Protocols in Molecular Biology (2007), 1. 16. 1-1. 16. 24, Unit 1. 16)(図2Bの段階2)。
1.1に記載されているように準備されたpWSK29−EcLpxLEcLpxMプラスミドを、2.2に記載されているように準備された△lpxT、△pagP、W3110に、電気穿孔法で形質転換させた。形質転換された大腸菌をLB−アンピシリン固体培地で選別し、大腸菌pWSK29−EcLpxLEcLpxM、△lpxT、△pagP、W3110ストレインを準備した(図2Bの段階4)。
大腸菌染色体において、KdtAポリペプチド(配列番号22)をコーディングするkdtA遺伝子(配列番号23)にカナマイシンカセットが挿入されており、pEcKdtAプラスミドを含んでいる大腸菌、すなわち、HSC1/pEcKdt(Chung, H. S., and Raetz, C. R., Biochemistry (2010), vol. 49(19), pp. 4126-4137)からP1ウイルスを準備した(Current Protocols in Molecular Biology (2007)−1. 16. 1-1. 16. 24, Unit 1. 16)。前記P1ウイルスを、2.3に記載されているように準備された大腸菌pWSK29−EcLpxLEcLpxM、△lpxT、△pagP、W3110ストレインに形質導入し、LB−カナマイシン/アンピシリン固体培地で選別した(図2Bの段階5)。選別された大腸菌をKHSC003(pWSK29−EcLpxLEcLpxM、△lpxT、△pagP、kdtA::kan、W3110)と命名した。
3.1.W3110、pWSK29−FnLpxEに形質転換された大腸菌W3110から酸加水分解を介した脂質の抽出
比較実験のために、pWSK29−FnLpxEを形質転換するか、あるいは形質転換していない大腸菌株W3110を準備した。
1.2.2に記載されているように準備されたプラスミドpBAD33.1−AaLpxEまたはpBAD33.1−HpLpxEを、2.4に記載されているように準備した大腸菌KHSC003に形質転換させ、大腸菌膜の脂質を確認した。陰性対照群として、ベクターpBAD33.1を形質転換した大腸菌KHSC003を利用した。
薄膜クロマトグラフィ(TLC:thin layerchromatography:TLC)を行うために、3.1または3.2に記載されているように、200mlの大腸菌培養液から脂質を得て、得られた総脂質の1/3を、200μlの4:1(v/v)クロロホルム:メタノールに溶解させた。その後、5ないし15μlを、10x10cm HPTLCプレート(EMD Chemicals)にスポッティング(spotting)し、40:25:4:2(v/v)のクロロホルム:メタノール:水:アンモニウムヒドロキシド(30%から20%)の溶媒で展開させた。展開されたプレートを乾燥させ、10%(v/v)硫酸(エタノール中)に噴霧して視覚化させ、300℃のホットプレートで焦がした。脂質のTLC結果を、図3A及び図3Bに示した(図3Aにおいて、レーン1:大腸菌W3110から抽出されたLPSの酸性加水分解によって得られた脂質、レーン2:pWSK29−FnLpxEを含有した大腸菌W3110から抽出されたLPSの酸性加水分解によって得られた脂質、レーン3:pBAD33.1を含有した大腸菌KHSC003から抽出して得られた脂質、レーン4:pBAD33.1−AaLpxEを含有した大腸菌KHSC003から抽出して得られた脂質、及び図3Bにおいて、レーン1:大腸菌W3110から抽出されたLPSの酸性加水分解によって得られた脂質、レーン2:pBAD33.1−HpLpxEを含有した大腸菌KHSC003から抽出して得られた脂質、レーン3:pBAD33.1を含有した大腸菌KHSC003から抽出して得られた脂質)。
3.2に記載されているように得られた脂質を、4:1(v/v)のクロロホルム:メタノールで再懸濁し、再懸濁された脂質試料を、韓国基礎科学支援研究院のMALDI−TOF(matrix-assisted laser desorption and ionization-time off light)質量分析を依頼して質量分析した。
図4A及び図4Bに図示されているように、大腸菌pBAD33.1−AaLpxEに形質転換されたKHSC003から、Kdoを含まないモノホスホリル脂質A、すなわち、1−脱リン酸−脂質A(実際単位質量1716.25)が検出されることを確認した。従って、大腸菌において、EcLpxM,EcLpxL,AaLpxEポリペプチドを発現させることにより、膜に、1−脱リン酸−脂質Aを含む生きている大腸菌を得る可能性があるということを確認した。pBAD33.1−AaLpxE、すなわち、pBAD33.1−AaLpxE/KHSC003を含んだ大腸菌KHSC003を、ブダペスト条約の国際寄託機関であるKCTC(Korean Collection for Type Cultures)に、2016年11月18日付けで寄託番号KCTC13155BPで国際寄託した。
寄託番号:KCTC13155BP
寄託日:2016.11.18.
寄託番号:KCTC13156BP
寄託日:2016.11.18.
Claims (18)
- 親細菌性細胞に比べ、LpxEポリペプチドを暗号化する遺伝子の発現を増大させる遺伝的変形、および、親細菌性細胞に比べ、LpxLポリペプチドを暗号化する遺伝子、LpxMポリペプチドを暗号化する遺伝子、またはそれらの組み合わせの発現を増大させる遺伝的変形を含み、2−ケト−3−デオキシ−D−マンノ−オクツロソネート(Kdo)モイエティに接合していないモノホスホリル脂質A(MLA)を生産する細菌であって、
前記細菌は、グラム陰性細菌である細菌。 - 前記MLAは、2個アシル鎖ないし7個アシル鎖を含むことを特徴とする請求項1に記載の細菌。
- 前記細菌は、LpxEポリペプチドを暗号化する1以上の外在的ポリヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項1に記載の細菌。
- 前記MLAは、1−脱リン酸−脂質A、1−脱リン酸−テトラ−アシル脂質A、1−脱リン酸−ペンタ−アシル脂質A、またはそれらの組み合わせを含むことを特徴とする請求項1に記載の細菌。
- 前記細菌は、LpxLポリペプチドを暗号化する外在的ポリヌクレオチド、LpxMポリペプチドを暗号化する遺伝子、またはそれらの組み合わせを含むことを特徴とする請求項1に記載の細菌。
- 前記LpxEポリペプチドは、EC3.1.3.−に属することを特徴とする請求項1に記載の細菌。
- 前記LpxEポリペプチドは、配列番号9または配列番号17のアミノ酸配列に、90%以上の配列同一性を有するポリペプチドであることを特徴とする請求項1に記載の細菌。
- 前記LpxLポリペプチドは、EC2.3.1.241に属し、前記LpxMポリペプチドは、EC2.3.1.243に属することを特徴とする請求項1に記載の細菌。
- 前記LpxLポリペプチドは、配列番号1のアミノ酸配列に90%以上の配列同一性を有するポリペプチドであり、前記LpxMポリペプチドは、配列番号5のアミノ酸配列に90%以上の配列同一性を有するポリペプチドであることを特徴とする請求項1に記載の細菌。
- 前記細菌は、エシェリキア属細菌、シゲラ属細菌、サルモネラ属細菌、カンピロバクター属細菌、ネイセリア属細菌、ヘモフィルス属細菌、エロモナス属細菌、フランシセラ属細菌、エルシニア属細菌、クレブシエラ属細菌、ボルデテラ属細菌、レジオネラ属細菌、コリネバクテリア属細菌、シトロバクター属細菌、クラミジア属細菌、ブルセラ属細菌、シュードモナス属細菌、ヘリコバクター属細菌、バークホルデリア属細菌、アグロバクテリウム属細菌、クロロビウム属細菌、ロドスピリルム属細菌、マグネトスピリルム属細菌、クロロバクルム属細菌、ペロディクチオン属細菌、シュードビブリオ属細菌、ファエオスピリルム属細菌、シントロフォバクター属細菌、ブラディリゾビウム属細菌、ポルフィロモナス属細菌、リゾビウム属細菌、メソリゾビウム属細菌、ビブリオ属細菌、ラルストニア属細菌、リンノハビタンス属細菌及びサーモデスルフォバクテリア属細菌からなるグループから選択された細菌であることを特徴とする請求項1に記載の細菌。
- 前記細菌は、Kdo生合成経路に係わるポリペプチドを暗号化するポリヌクレオチドの発現を減少させる遺伝的変形をさらに含むことを特徴とする請求項1に記載の細菌。
- Kdo生合成経路に係わる前記ポリペプチドは、KdtA、KdsB、KdsC、KdsA、GutQ、KpsF、KpsU及びKdsDからなる群から選択されたポリペプチドであることを特徴とする請求項11に記載の細菌。
- 前記細菌は、KdtAポリペプチドを暗号化する遺伝子、KdsBポリペプチドを暗号化する遺伝子、KdsCポリペプチドを暗号化する遺伝子、KdsAポリペプチドを暗号化する遺伝子、GutQポリペプチドを暗号化する遺伝子、KpsFポリペプチドを暗号化する遺伝子、KpsUポリペプチドを暗号化する遺伝子、KdsDポリペプチドを暗号化する遺伝子、またはそれらの組み合わせのうちいずれか1以上が破壊されたことを特徴とする請求項1に記載の細菌。
- 前記細菌は、LpxTポリペプチドを暗号化する遺伝子、PagPポリペプチドを暗号化する遺伝子、KdtAポリペプチドを暗号化する遺伝子、またはそれらの組み合わせが破壊されたことを特徴とする請求項1に記載の細菌。
- 請求項1に記載の細菌を培養して培養物を得る段階と、
前記培養物からMLAを分離する段階と、を含む、Kdoモイエティに接合していないMLAの生産方法。 - 前記分離する段階は、前記細菌性細胞からMLAを分離する段階を含むことを特徴とする請求項15に記載の方法。
- 前記培養する段階は、バッチ、流加、または連続モードで培養する段階を含むことを特徴とする請求項15に記載の方法。
- 前記MLAは、1−脱リン酸−脂質A、1−脱リン酸−ペンタ−アシル脂質A、1−脱リン酸−テトラ−アシル脂質A、またはそれらの組み合わせを含むことを特徴とする請求項15に記載の方法。
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