JP6739758B2 - 細胞培養用基材およびそれを用いた細胞培養方法、細胞培養器、並びに基材としての使用 - Google Patents

細胞培養用基材およびそれを用いた細胞培養方法、細胞培養器、並びに基材としての使用 Download PDF

Info

Publication number
JP6739758B2
JP6739758B2 JP2017540938A JP2017540938A JP6739758B2 JP 6739758 B2 JP6739758 B2 JP 6739758B2 JP 2017540938 A JP2017540938 A JP 2017540938A JP 2017540938 A JP2017540938 A JP 2017540938A JP 6739758 B2 JP6739758 B2 JP 6739758B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
cell culture
diol
carbon atoms
hydrocarbon group
substrate
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
JP2017540938A
Other languages
English (en)
Other versions
JPWO2017051913A1 (ja
Inventor
晴菜 安藤
晴菜 安藤
慎 飯田
慎 飯田
泰典 山口
泰典 山口
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Mitsubishi Gas Chemical Co Inc
Original Assignee
Mitsubishi Gas Chemical Co Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Mitsubishi Gas Chemical Co Inc filed Critical Mitsubishi Gas Chemical Co Inc
Publication of JPWO2017051913A1 publication Critical patent/JPWO2017051913A1/ja
Application granted granted Critical
Publication of JP6739758B2 publication Critical patent/JP6739758B2/ja
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/0068—General culture methods using substrates
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08G—MACROMOLECULAR COMPOUNDS OBTAINED OTHERWISE THAN BY REACTIONS ONLY INVOLVING UNSATURATED CARBON-TO-CARBON BONDS
    • C08G63/00—Macromolecular compounds obtained by reactions forming a carboxylic ester link in the main chain of the macromolecule
    • C08G63/66—Polyesters containing oxygen in the form of ether groups
    • C08G63/668—Polyesters containing oxygen in the form of ether groups derived from polycarboxylic acids and polyhydroxy compounds
    • C08G63/672—Dicarboxylic acids and dihydroxy compounds
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08L—COMPOSITIONS OF MACROMOLECULAR COMPOUNDS
    • C08L67/00—Compositions of polyesters obtained by reactions forming a carboxylic ester link in the main chain; Compositions of derivatives of such polymers
    • C08L67/02—Polyesters derived from dicarboxylic acids and dihydroxy compounds
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/20—Material Coatings
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08L—COMPOSITIONS OF MACROMOLECULAR COMPOUNDS
    • C08L2203/00—Applications
    • C08L2203/02—Applications for biomedical use
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2533/00—Supports or coatings for cell culture, characterised by material
    • C12N2533/30—Synthetic polymers

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Sustainable Development (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Clinical Laboratory Science (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

本発明は、細胞培養用基材およびそれを用いた細胞培養方法などに関し、より詳細には、医学、再生医療、生化学などの分野で用いられる細胞の生育、増殖に好適に用いられる細胞培養用基材およびそれを用いた細胞培養方法などに関する。
これまでに、マウス、サル、霊長類などの動物の細胞培養技術は様々な態様の物が検討されている。とりわけ、医学、再生医療、生化学などの分野において、細胞培養技術は基本技術である。細胞培養技術は、医学や生化学の分野では医薬品の開発や病態メカニズムの解明などに用いられる。また、細胞培養技術は、再生医療の分野においては胚性幹細胞（Ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ：ＥＳ細胞）、人工多能性幹細胞（ｉｎｄｕｃｅｄ Ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ：ｉＰＳ細胞）の培養や分化、皮膚や臓器、歯骨などの機能性組織細胞の培養などに用いられている。
このような細胞培養は、通常、一定の容器の中で栄養成分である培養液と共に培養される。
細胞は、その性状から、培養液の中で浮遊した状態で培養される浮遊性細胞と、容器に付着した状態で培養される付着性細胞に大きく２分される。動物細胞の多くは、物質に付着して生育される接着依存性を有する付着性細胞であり、一般に生体外の浮遊状態では長期間生存することができない。したがって、付着性細胞の培養には、細胞が付着するための物質として基材が必要とされる。
そのような付着性細胞の培養に用いられる基材（細胞培養用基材）として、ディッシュ、マルチディッシュ、マイクロプレート、フラスコなどが一般的である。細胞培養用基材としては、形状を保つのに必要な機械強度に加え、細胞や内部の観察のために透明であることが求められる。
培養における細胞の種類や培地成分により異なるが、一般的に、細胞培養用基材に用いられる樹脂として、表面処理をしていない樹脂は付着性細胞が付着しにくいことが知られており、特にポリメチルペンテン、ポリエチレンテレフタレート、ポリエチレン、ポリプロピレン、ＡＢＳ樹脂などは細胞が付着しにくいことが知られている（例えば、特許文献１参照）。
ここで細胞培養用基材に用いられる樹脂として、ポリスチレンが一般的である。ただし、細胞培養基材にポリスチレンを用いたとしても、培養における細胞の種類や培地成分により異なるが、付着性細胞は、表面処理をしていないポリスチレン成形体に付着しにくい。そこで、ポリスチレン成形体の表面に低温プラズマ処理、コロナ放電処理などを施し、親水性を付与したものが市販されている。これらの器具は、付着性細胞の培養に広く使用されている。
そこで、ゼラチン、コラーゲンなどの動物由来の細胞外マトリックスや、ファイブロネクチン、ラミニンなどの動物由来の接着因子、ポリ−Ｌ−リジンなどのポリマーをポリスチレン成形体の培養面にコートし、細胞の接着性、増殖性を高めることができる。
たとえば、ポリスチレン製容器の培養面にゼラチン溶液を加えて培養面を完全に覆うようにし、室温で１時間以上放置した後、ゼラチン溶液を捨てることで、ゼラチンコートすることができる（例えば、非特許文献１参照）。ゼラチンコートやコラーゲンコートを施すことで、細胞の接着性、増殖性が高まることが知られており、ポリスチレン製の容器にゼラチンやコラーゲンでコートした製品が市販されている。
また、ポリ−Ｌ−リジンやポリ−Ｄ−リジンなどのポリリジンを容器の培養面にコートすることで細胞の接着性が高くなることが知られており、特に神経細胞の培養に適している（例えば、特許文献２参照）。
一方、細胞培養用基材の支持体としては、上述したポリスチレン製以外にガラス製、ポリプロピレン製、ポリエステル製、ポリメチルメタクリレート製なども例示されている（例えば、特許文献３、４、５参照）。
国際公開番号ＷＯ２０１０／０４４４１７号公報 特表２００７−５０４８２３号公報 特開平５−２７６９２３号公報 特開２０１３−１１６１３０号公報 特開２００８−１０４４１１号公報
羊土社、２０１２年３月２０日発行「実験医学別冊 目的別で選べる細胞培養プロトコール」中村幸夫編：ｐ１９１
しかしながら、ポリスチレン製の支持体を用いた基材は、細胞の種類によっては、これらの基材上では細胞の付着が不十分であったり、増殖は認められるもののその増殖が不十分であったり、細胞の増殖形態が悪かったりする場合がある。特に、一般的に、生体から採取した細胞を初めて培養する初代培養においてはそれが顕著である。
また、ポリスチレン製以外の支持体を用いた基材は、それを用いるために細胞接着用のコート処理が必要である。また、コート処理が必要となるため、コストが高くなる。
他にも、たとえば非特許文献１に示される細胞培養用基材となるゼラチンは、たとえばウシあるいはブタの皮膚を原料として製造される。しかしながら、近年、牛海綿状脳症（ＢＳＥ）や口蹄疫などの問題により、医学や再生医療などを考慮する場合には動物由来であるゼラチンやコラーゲンの使用が困難になる。さらに、生化学分野などであっても、使用済みゼラチン溶液やコラーゲン溶液、ゼラチンやコラーゲンコートされた容器の廃棄には、環境への漏出措置を考慮する必要があるため、使用が困難となってきている。
一方、特許文献２に示されるポリリジンは、細菌による発酵または化学合成で製造されるため、動物由来成分を含まず、医学や再生医療に用いることが容易であるとともに、使用済みポリリジン溶液やポリリジンコートされた容器の廃棄も容易である。しかし、ポリリジンは不安定であるため、ポリリジンで容器をコートした場合、ポリリジンの効果は室温保存で２週間、４℃でも１か月で失活する。また、この不安定さにより、ポリリジンでコートした培養器具を滅菌することもできない。したがって、ポリリジンをあらかじめコートした培養器具を市販しようとした場合、無菌環境下でポリリジンをコートしなければならないとともに、コート後の保存管理も難しい。また、コストの問題もある。
本発明の目的は、コート処理せずに、付着性細胞を優れた水準で増殖させることができる細胞培養用基材を提供することにある。
本発明者らは、上記課題に鑑み鋭意研究した結果、環状アセタール骨格を有するジオール単位を含むポリエステル樹脂を細胞培養基材として用いることで、細胞を優れた水準で増殖させることができることを見出し、本発明の完成に至った。
すなわち、本発明は、
［１］
ジカルボン酸単位とジオール単位とを含む、ポリエステル樹脂を含み、
前記ジオール単位中１〜８０モル％が環状アセタール骨格を有するジオール単位である、
細胞培養用基材。
［２］
前記環状アセタール骨格を有するジオール単位が、一般式（１）
（式中、Ｒ１およびＲ２はそれぞれ独立して、炭素数が１〜１０の脂肪族炭化水素基、炭素数が３〜１０の脂環式炭化水素基、及び炭素数が６〜１０の芳香族炭化水素基からなる群から選ばれる炭化水素基を示す。）
で表されるジオール、および一般式（２）
（式中、Ｒ１は前記と同様であり、Ｒ３は炭素数が１〜１０の脂肪族炭化水素基、炭素数が３〜１０の脂環式炭化水素基、及び炭素数が６〜１０の芳香族炭化水素基からなる群から選ばれる炭化水素基を表す）
で表されるジオールから選ばれる少なくとも一つのジオールに由来するジオール単位である、
［１］に記載の細胞培養用基材。
［３］
前記環状アセタール骨格を有するジオール単位が、３，９−ビス（１，１−ジメチル−２−ヒドロキシエチル）−２，４，８，１０−テトラオキサスピロ〔５．５〕ウンデカンに由来するジオール単位、または５−メチロール−５−エチル−２−（１，１−ジメチル−２−ヒドロキシエチル）−１，３−ジオキサンに由来するジオール単位である、
［１］または［２］に記載の細胞培養用基材。
［４］
前記ジオール単位が環状アセタール骨格を有するジオール単位以外のその他のジオール単位をさらに含み、
前記その他のジオール単位が、エチレングリコール、ジエチレングリコール、トリメチレングリコール、１，４−ブタンジオールおよび１，４−シクロヘキサンジメタノールからなる群から選ばれる１種以上のジオールに由来するジオール単位である、
［１］〜［３］のいずれかに記載の細胞培養用基材。
［５］
前記ジカルボン酸単位が、テレフタル酸、イソフタル酸、１，４−ナフタレンジカルボン酸、１，５−ナフタレンジカルボン酸、２，６−ナフタレンジカルボン酸および２，７−ナフタレンジカルボン酸からなる群から選ばれる１種以上のジカルボン酸に由来するジカルボン酸単位である、
［１］〜［４］のいずれかに記載の細胞培養用基材。
［６］
ジオール単位中に前記環状アセタール骨格を有するジオール単位を実質的に含まないその他のポリエステル樹脂、ポリカーボネート樹脂、アクリル樹脂、ポリスチレン樹脂およびポリメチルメタクリレート−スチレン樹脂からなる群から選ばれる少なくとも１種以上の樹脂をさらに含む、
［１］〜［５］のいずれかに記載の細胞培養用基材。
［７］
前記その他のポリエステル樹脂をさらに含み、
前記その他のポリエステル樹脂が、ポリエチレンテレフタレート、ポリブチレンテレフタレート、イソフタル酸変性ポリエチレンテレフタレートおよび１，４−シクロヘキサンジメタノール変性ポリエチレンテレフタレートからなる群から選ばれる少なくとも１種以上の樹脂である、
［６］に記載の細胞培養用基材。
［８］
前記細胞培養用基材が、表面処理された基材である、
［１］〜［７］のいずれかに記載の細胞培養用基材。
［９］
［１］〜［８］のいずれかに記載の細胞培養用基材を備える、
細胞培養用容器。
［１０］
ジカルボン酸単位とジオール単位とを含む、ポリエステル樹脂を含む基材上で細胞を培養する工程を有し、
前記ジオール単位中１〜８０モル％が環状アセタール骨格を有するジオール単位である、
細胞培養方法。
［１１］
前記細胞を培養する工程が、前記基材上に播種された前記細胞を培養する工程である、
［１０］に記載の細胞培養方法。
［１２］
前記細胞培養用基材が、表面処理された基材である、
［１０］または［１１］に記載の細胞培養方法。
［１３］
前記細胞が、付着性細胞である、
［１０］〜［１２］のいずれかに記載の細胞培養方法。
［１４］
細胞の培養における基材としての使用であって、
前記基材は、ジカルボン酸単位とジオール単位とを含む、ポリエステル樹脂を含み、
前記ジオール単位中１〜８０モル％が環状アセタール骨格を有するジオール単位である、
基材としての使用。
に関するものである。
本発明に係る細胞培養用基材によれば、コート処理せずに、付着性細胞を優れた水準で増殖させることができる。
実施例５における細胞生育状態を評価した際の写真である。 実施例６における細胞生育状態を評価した際の写真である。 比較例１における細胞生育状態を評価した際の写真である。 比較例２における細胞生育状態を評価した際の写真である。 比較例３における細胞生育状態を評価した際の写真である。
以下、本発明を実施するための形態（以下、単に「本実施形態」という。）について詳細に説明する。以下の本実施形態は、本発明を説明するための例示であり、本発明を以下の実施の形態に限定する趣旨ではない。本発明は、その要旨の範囲内で適宜に変形して実施できる。
＜細胞培養用基材＞
本実施形態の細胞培養用基材（以下、単に「基材」ともいう。）は、ジカルボン酸単位とジオール単位とを含む、ポリエステル樹脂を含む。そのポリエステル樹脂（以下、「本実施形態のポリエステル樹脂」ともいう。）において、ジオール単位中１〜８０モル％が環状アセタール骨格を有するジオール単位である。
本実施形態の細胞培養用基材によれば、細胞を優れた水準で増殖させることができる。この要因は、次のように推察される（ただし、要因はこれに限定されない。）。本実施形態の細胞培養用基材は、環状アセタール骨格を有するジオール単位を１〜８０モル％含むポリエステル樹脂を含むことにより、付着性細胞を優れた水準で増殖させることができる。これは、環状アセタール骨格を有するジオール単位の構造部分が、付着性細胞との親和性に優れることで細胞に対する付着性が向上し、細胞の増殖性に寄与していると推察される。
また、本実施形態の細胞培養用基材によれば、動物由来成分を含むコーティングを含まないため、安全である。さらに、基材がコート処理されていないため、基材の管理が容易である。
環状アセタール骨格を有するジオール単位は、下記の一般式（１）で表されるジオールおよび（２）で表されるジオール（以下、「化合物」ともいう。）から選ばれる少なくとも一つのジオールに由来するジオール単位であることが、樹脂の強度や透明性、加工性など容器成形の観点から好ましい。
一般式（１）及び（２）において、Ｒ１、Ｒ２およびＲ３はそれぞれ独立して、炭素数が１〜１０の脂肪族炭化水素基、炭素数が３〜１０の脂環式炭化水素基、及び炭素数が６〜１０の芳香族炭化水素基からなる群から選ばれる炭化水素基を示す。
一般式（１）および（２）であらわされる化合物は、それぞれ上記環状アセタール骨格を有するジオール単位に由来するジオールとして各々単独で使用してもよいが、両者を混合して使用することもできる。
一般式（１）および（２）であらわされる化合物は、３，９−ビス（１，１−ジメチル−２−ヒドロキシルエチル）−２，４，８，１０−テトラオキサスピロ［５．５］ウンデカン（以下、「スピログリコール」ということがある）、および、５−メチロール−５−エチル−２−（１，１−ジメチル−２−ヒドロキシエチル）−１，３−ジオキサン（以下、「ジオキサングリコール」ということがある）が、入手容易性、成形性などの観点から好ましい。
本実施形態の細胞培養用基材に含まれるポリエステル樹脂において、環状アセタール骨格を有するジオール単位は、全ジオール単位中の１〜８０モル％であることが好ましく、５〜６０モル％であることがより好ましく、さらに好ましくは２０〜５０モル％である。環状アセタール骨格を有するジオール単位が１モル％以上であることにより、細胞接着性がより十分に発現する傾向にあり、８０モル％以下であることにより、ポリエステル樹脂の結晶性が高くなりすぎず、透明性に優れ、細胞観察への支障を抑制できる傾向にある。すなわち、本実施形態のポリエステル樹脂は、全ジオール単位は環状アセタール骨格を有するジオール単位以外のジオール単位（以下、「その他のジオール単位」ともいう。）を含むことが好ましい。その他のジオール単位を含むことにより、柔軟性、成形性など構造体としての特性に優れるものとなる傾向にある。
その他のジオール単位としては特に制限はされないが、例えば、エチレングリコール、トリメチレングリコール、２−メチル−１，３−プロパンジオール、１，４−ブタンジオール、１，５−ペンタンジオール、１，６−ヘキサンジオール、ジエチレングリコール、トリエチレングリコール、プロピレングリコール、ネオペンチルグリコール、ジネオペンチルグリコール等の脂肪族ジオール類；ポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、ポリブチレングリコール等のポリエーテルジオール類；グリセリン、トリメチロールプロパン、ジトリメチロールプロパン、ペンタエリスリトール、ジペンタエリスリトール等の３価以上の多価アルコール類；１，３−シクロヘキサンジメタノール、１，４−シクロヘキサンジメタノール、１，２−デカヒドロナフタレンジメタノール、１，３−デカヒドロナフタレンジメタノール、１，４−デカヒドロナフタレンジメタノール、１，５−デカヒドロナフタレンジメタノール、１，６−デカヒドロナフタレンジメタノール、２，７−デカヒドロナフタレンジメタノール、テトラリンジメタノール、ノルボルナンジメタノール、トリシクロデカンジメタノール、イソソルビド、２，２，４，４−テトラメチル−１，３−シクロブタンジオール、ペンタシクロドデカンジメタノール等の脂環族ジオール類；４，４’−（１−メチルエチリデン）ビスフェノール、メチレンビスフェノール（ビスフェノールＦ）、４，４’−シクロヘキシリデンビスフェノール（ビスフェノールＺ）、４，４’−スルホニルビスフェノール（ビスフェノールＳ）等のビスフェノール類；上記ビスフェノール類のアルキレンオキシド付加物；ヒドロキノン、レゾルシン、４，４’―ジヒドロキシビフェニル、４，４’―ジヒドロキシジフェニルエーテル、４，４’―ジヒドロキシジフェニルベンゾフェノン等の芳香族ジヒドロキシ化合物；及び上記芳香族時ヒドロキシ化合物のアルキレンオキシド付加物が挙げられる。
本実施形態の細胞培養用基材の機械的性能、経済性等の観点から、本実施形態のポリエステル樹脂は、エチレングリコール、ジエチレングリコール、トリメチレングリコール、１，４−ブタンジオールまたは１，４−シクロヘキサンジメタノールに由来するジオール単位をさらに含むことが好ましく、エチレングリコールに由来するジオール単位を含むことがより好ましい。例示したジオール単位は１種を単独で使用することもでき、複数種を併用することもできる。
本実施形態の細胞培養用基材に含まれるポリエステル樹脂において、ジカルボン酸単位としては、特に制限はされないが、例えば、テレフタル酸、イソフタル酸、フタル酸、２−メチルテレフタル酸、ナフタレンジカルボン酸、ビフェニルジカルボン酸、テトラリンジカルボン酸等の芳香族カルボン酸；コハク酸、グルタル酸、アジピン酸、ピメリン酸、スベリン酸、アゼライン酸、セバシン酸、ドデカンジカルボン酸、シクロヘキサンジカルボン酸、デカリンジカルボン酸、ノルボルナンジカルボン酸、トリシクロデカンジカルボン酸、ペンタシクロドデカンジカルボン酸等の脂肪族ジカルボン酸及びそれらのエステル化物が挙げられる。
本実施形態の細胞培養用基材の機械的性能、経済性等の観点から、本実施形態のポリエステル樹脂は、テレフタル酸、イソフタル酸、ナフタレンジカルボン酸等の芳香族ジカルボン酸に由来するジカルボン酸単位を含むことが好ましく、テレフタル酸、イソフタル酸、１，４−ナフタレンジカルボン酸、１，５−ナフタレンジカルボン酸、２，６−ナフタレンジカルボン酸または２，７−ナフタレンジカルボン酸に由来するジカルボン酸単位を含むことがより好ましい。例示したジカルボン酸は１種を単独で使用することもでき、複数種を併用することもできる。
本実施形態で用いる細胞培養用基材には、ジオール単位中に環状アセタール骨格を有するジオール単位を実質的に含まないその他のポリエステル樹脂（以下、「その他のポリエステル樹脂」ともいう。）やポリエステル樹脂以外の樹脂をさらに含んでいてもよい。これらの樹脂としては、特に制限はされないが、例えば、ポリエチレンテレフタレート、ポリブチレンテレフタレート、イソフタル酸変性ＰＥＴ、１，４−シクロヘキサンジメタノール変性ＰＥＴ、ポリプロピレンテレフタレート、ポリエチレンナフタレート、ポリテトラメチルシクロブタンー１，４−シクロヘキサンジメタチルテレフタレート、ポリ１，４−シクロヘキサンジメルテレフタレート、ポリアリレート、液晶ポリエステル等の環状アセタール骨格を有するジオール単位を含まないポリエステル樹脂類、ポリカーボネート樹脂類、ポリメチルメタクリレート、ポリアクリロニトリル樹脂、ポリスチレン樹脂、ポリメチルメタクリレート−スチレン樹脂、ポリエチレン、ポリプロピレン、環状ポリオレフィン等のポリオレフィン樹脂、ポリイミド樹脂、ナイロン樹脂が挙げられる。ここで、「環状アセタール骨格を有するジオール単位を実質的に含まない」とは、全ジオール単位中に環状アセタール骨格を有するジオール単位が１モル％未満であることを意味する。当然に、その他のポリエステル樹脂には、環状アセタール骨格を有するジオール単位を全く含まないものも含まれる。
細胞接着の観点から、本実施形態の細胞培養用基材は、その他のポリエステル樹脂、ポリカーボネート樹脂、アクリル樹脂、ポリスチレン樹脂およびポリメチルメタクリレート−スチレン樹脂からなる群から選ばれる少なくとも１種以上の樹脂をさらに含むことができる。
本実施形態の細胞培養用基材は、その他のポリエステル樹脂をさらに含む場合には、透明性や相溶性の観点から、その他のポリエステル樹脂が、ポリエチレンテレフタレート、ポリブチレンテレフタレートおよびイソフタル酸変性ポリエチレンテレフタレートからなる群から選ばれる１種以上の樹脂であると好ましい。
例示したその他のポリエステル樹脂やポリエステル樹脂以外の樹脂は１種を単独で使用することもでき、複数種を併用することもできる。
＜細胞培養用基材の製造方法＞
本実施形態の細胞培養用基材の製造方法は、例えば、ジカルボン酸と環状アセタール骨格を有するジオールとを重合してポリエステル樹脂を重合する工程（重合工程）と、ポリエステル樹脂を成形して基材を得る工程（成形工程）とを有する。本実施形態の細胞培養用基材の製造方法によれば、基材の製造におけるコーティング工程が必要とされないため、基材の製造及び管理が容易である。
重合工程は、ジカルボン酸と１，４−シクロヘキサンジメタノールを含むジオールとを重合するものであれば特に制限はなく、従来公知の方法を適用することができる。例えばエステル交換法、直接エステル化法等の溶融重合法または溶液重合法を挙げることができる。エステル交換触媒、エステル化触媒、エーテル化防止剤、また重合に用いる重合触媒、熱安定剤、光安定剤等の各種安定剤、重合調整剤等も従来公知のものを用いることができる。
上記エステル交換触媒としては、例えば、マンガン、コバルト、亜鉛、チタン、カルシウム等の化合物、またエステル化触媒としては、例えば、マンガン、コバルト、亜鉛、チタン、カルシウム等の化合物、さらにエーテル化防止剤としては、例えば、アミン化合物が挙げられる。
上記重合触媒としては、例えば、ゲルマニウム、アンチモン、スズ、チタン等の化合物が例示される。また熱安定剤としては、例えば、リン酸、亜リン酸、フェニルホスホン酸等の各種リン化合物が挙げられる。
さらに、重合工程において、耐電防止剤、滑剤、酸化防止剤、離型剤などの各種添加剤、成形助剤を添加してもよい。添加方法は特に限定されないが、樹脂の重合反応を添加剤等の存在下で行い含有させる方法、または重合工程において重合装置から抜き出しを行う前の溶融状態の樹脂に添加剤等を添加する方法、樹脂をペレット化した後に添加剤等をドライブレンドする方法、更にそのドライブレンドしたものを押出機等で溶融混練する方法、押出機等を用いて溶融した樹脂に添加剤を添加する方法が採用される。
本実施形態で用いる細胞培養用基材の形状は、ディッシュ、マイクロプレート、フラスコなど、培養に用いるものであれば特に制限されない。
本実施形態で用いる細胞培養用基材は、全体を均一またはほぼ均一に本実施形態のポリエステル樹脂から構成してもよいが、少なくとも細胞を付着させて培養する面（以下、「細胞培養面」ともいう。）に本実施形態のポリエステル樹脂が露出していればよく、他の樹脂と混合したり、他の構造部が異なる種類の樹脂やガラス、金属などであってもよい。
本実施形態の細胞培養器は、本実施形態の細胞培養用基材を備える。細胞培養器は、本実施形態の細胞培養用基材で構成されていてもよく、本実施形態のポリエステル樹脂を膜状に成形し、異なる種類の樹脂やガラス、金属などからなる培養器に貼りつけた細胞培養用基材を備えていてもよい。
また、本実施形態で用いる細胞培養用基材は、本実施形態のポリエステル樹脂を網状や球形や糸状、管状に成形し、異なる種類の樹脂やガラス、金属からなる容器に投入して用いてもよい。
本実施形態の細胞培養用基材は、より優れた水準で増殖させる観点から表面処理された基材であると好ましい。基材は、細胞を播種する前に表面処理を施すことができる。表面処理の方法は当業者に周知の方法でよく、たとえばγ線、プラズマ処理、電子線、紫外線、エチレンオキサイドガス（ＥＯＧ）で処理することや、アルコール、過酸化水素水、次亜塩素酸類、界面活性剤、抗生物質、酸、アルカリなどの薬剤を用いて処理することができる。
これらの中でも、表面処理は、γ線、プラズマ、及び紫外線で処理することが、より優れた水準で細胞を増殖させる観点から好ましく、紫外線で処理することがより好ましい。紫外線による表面処理を施す場合、紫外線の強度と照射時間は相関関係にあるため一概に規定することはできないが、たとえば紫外線の強度が０．１〜２．０ｍＷ／ｃｍ２である場合、紫外線の照射時間は１〜１８０分であるのが好ましい。
＜細胞培養方法＞
本実施形態の細胞培養方法は、ジカルボン酸単位とジオール単位とを含む、ポリエステル樹脂を含む基材上で細胞を培養する工程（培養工程）を有する。そのポリエステル樹脂において、ジオール単位中１〜１００モル％が１，４−シクロヘキサンジメタノールに由来するジオール単位である。
培養工程は、本実施形態の細胞培養用基材上に播種された細胞を培養する工程とすることが好ましい。
培養工程において、細胞培養用基材は、上述した表面処理された基材であることが好ましい。
培養工程において、細胞は、本発明の作用効果をより確実に奏する観点から付着性細胞であると好ましい。
本実施形態の細胞培養用基材は、幅広い細胞、特に付着性細胞に使われ、たとえば、動物、昆虫、植物、菌類等の細胞、酵母や細菌類が挙げられるが、特に限定されるものではない。動物細胞の由来として例えば、ヒト、サル、アフリカミドリザル、マウス、ラット、チャイニーズハムスター、モルモット、イヌ、ネコ、ブタ、ヒツジ、ウシ等の哺乳類や、ニワトリなどの鳥類、カエル、イモリ、サンショウウオなどの両生類、ゼブラフィッシュ、メダカ、ウナギ、金魚、ティラピア、ミノウなどの魚類が挙げられるが、特に限定されるものではない。
本実施形態の細胞培養用基材で培養に用いる細胞は、ヒトや動物の組織から培養された短期培養細胞である線維芽細胞や間葉系幹細胞であってもよく、また、樹立された株化細胞であってもよい。短期培養細胞としては、哺乳動物の線維芽細胞が好ましく、ヒトの線維芽細胞や、ＥＳ細胞やｉＰＳ細胞の生育にフィーダー細胞として用いるマウスの線維芽細胞が特に好ましい。株化細胞としては、ＨｅＬａ細胞株（ヒト子宮頸部癌細胞）、Ｖｅｒｏ細胞株（アフリカミドリザル正常腎細胞）、３Ｔ３細胞株（マウス胎仔線維芽細胞）、ＰＭＥＦ細胞（マウス胚線維芽細胞）、ＣＨＯ細胞（チャイニーズハムスター卵巣由来細胞）、ＭＤＣＫ（イヌ腎由来細胞）等が挙げられるが、特に限定されるものではない。細胞を培養するための細胞播種量、培養時間、培養温度、培地等は特に限定されるものではなく、通常行われる条件に従えばよい。
本実施形態の基材としての使用は、細胞の培養における基材としての使用である。また、その基材は、ジカルボン酸単位とジオール単位とを含む、ポリエステル樹脂を含む。さらに、そのジオール単位中１〜８０モル％が環状アセタール骨格を有するジオール単位である。
次に、本実施形態を実施例および比較例をもってより具体的に説明する。ただし、本実施形態はこれらの実施例および比較例によって何ら制限されるものではない。
本実施例及び比較例で使用した原料を以下に示す。
（１）ポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）：日本ユニペット（株）製、商品名：ＵＮＩＰＥＴ ＲＴ５５３Ｃ。
（２）スピログリコール変性ＰＥＴ（ポリエステル１）：三菱ガス化学（株）製、商品名：ＡＬＴＥＳＴＥＲ Ｓ４５００（ポリエチレンテレフタレート樹脂のジオール成分であるエチレングリコールの４５モル％をスピログリコールで置換）。
（３）ジオキサングリコール変性ＰＥＴ（ポリエステル２）：特開２０１４−２０５７７３号実施例記載のポリエステルＤと同様の方法で製造。（ポリエチレンテレフタレート系樹脂のジオール成分であるエチレングリコールの３０モル％をジオキサングリコールで置換）。
（４）ＮＤＣＡ、スピログリコール変性ＰＥＴ（ポリエステル３）：特開２０１４−２０５７７３号実施例記載のポリエステルＤと同様の方法で製造。（ポリエチレンテレフタレート系樹脂のジオール成分であるエチレングリコールの３０モル％をスピログリコールで置換し、ジカルボン酸成分であるテレフタル酸の５０モル％を２，６−ナフタレンジカルボン酸で置換）。
（５）ポリスチレン製ディッシュ（無処理ディッシュ（表面処理なし））：ＡＧＣテクノグラス（株）製、ＩＷＡＫＩブランド、径６０ｍｍ、品種コード：１０１０−０６０。
（６）ポリスチレン製ディッシュ（組織培養用ディッシュ（付着性細胞用表面処理済み））：ＡＧＣテクノグラス（株）製、ＩＷＡＫＩブランド、径６０ｍｍ、品種コード：３０１０−０６０。
（７）ポリスチレン製ディッシュ（コラーゲンＴｙｐｅ１コート（ブタ由来））：ＡＧＣテクノグラス（株）製、ＩＷＡＫＩブランド、径６０ｍｍ、品種コード：４０１０−０１０。
参考例１（細胞培養用基材調製方法）
ＰＥＴ、ポリエステル１、ポリエステル２、ポリエステル３については、住友重機械工業製射出成形機（型式：ＳＥ１３０ＤＵ）を用いて径５０ｍｍ、高さ３ｍｍの円盤状の射出成形体を得た。これらＰＥＴ、ポリエステル１、ポリエステル２、ポリエステル３については、射出成形体を（５）ポリスチレン製ディッシュ（無処理ディッシュ（表面処理なし）に設置して用いた。射出成形体の底部に少量の滅菌済みワセリンを塗布することでディッシュ下部に接着させた。ポリスチレン、付着性細胞用表面処理を行ったポリスチレン、コラーゲンコート処理を行ったポリスチレンについては、それぞれ（５）、（６）、（７）に記載のディッシュをそのまま用いた。
参考例２（細胞培養方法）
参考例１で調製した細胞培養用基材に３，０００細胞／ｃｍ２となるように細胞を播種し、１０％ＦＢＳおよび抗生物質（１００μｇ／ｍＬカナマイシン、５０ユニット／ｍＬペニシリン、５０μｇ／ｍＬストレプトマイシン）を添加したＤＭＥＭ培地（ｇｉｂｃｏ製）を培地として５％ＣＯ２大気下、３７℃にて３日間培養を行った。
参考例３（細胞生育状態評価方法）
細胞の生育は、ａｌａｍａｒＢｌｕｅ試験にて評価した。参考例２で培養したディッシュから培養液を除去し、ＤＰＢＳ（＋）で洗浄後、ＤＭＥＭ培地４．５ｍＬとａｌａｍａｒＢｌｕｅ溶液（ライフテクノロジーズ製）０．５ｍＬを添加した。５％ＣＯ２大気下、３７℃、遮光条件下にて所定時間静置後、培地の吸光度を測定した。モニター波長を５７３ｎｍ、リファレンス波長を６０５ｎｍとし、モニター波長の吸光度からリファレンス波長の吸光度を減じた値を発色値として細胞生育状態の評価に用いた。細胞の種類や生育状況、継代数による影響なく評価するため、後述の比較例２に示す（６）ポリスチレン製ディッシュ（組織培養用ディッシュ（付着性細胞用表面処理済み））での値を１００％とした相対値で評価した。
実施例１
（スピログリコール変性ポリエステル樹脂を用いたヒト皮膚線維芽細胞の培養）
細胞培養用基材の原料として（２）スピログリコール変性ＰＥＴ（ポリエステル１）を用いて参考例１に従って細胞培養用基材を製造し、参考例２に従って細胞にヒト線維芽細胞を用いて培養を行った。参考例３に従って細胞生育状態を評価した結果、同時に実施したポリスチレン製組織培養用ディッシュを用いた場合と比較した結果を表１に示す。
実施例２
（スピログリコール変性ポリエステル樹脂を用いたＰＭＥＦ細胞の培養）
細胞にマウス胚性線維芽細胞（ミリポア製、ＰＭＥＦ細胞）を用いる他は、実施例１と同様に実施した結果を表１に示す。
実施例３
（ジオキサン変性ポリエステル樹脂を用いたＰＭＥＦ細胞の培養）
細胞培養用基材の原料として（３）ジオキサングリコール変性ＰＥＴ（ポリエステル２）を用いる他は、実施例２と同様に実施した結果を表１に示す。
実施例４
（ＮＤＣＡ、スピログリコール変性ポリエステル樹脂を用いたヒト皮膚線維芽細胞の培養）
細胞培養用基材の原料として（４）ＮＤＣＡ、スピログリコール変性ＰＥＴ（ポリエステル３）を用いる他は、実施例１と同様に実施した結果を表１に示す。
実施例５
（紫外線照射したスピログリコール変性ポリエステル樹脂を用いたヒト皮膚線維芽細胞の培養）
細胞播種前に細胞培養用基材を１．８ｍＷ／ｃｍ２の紫外線で２０分間照射した他は実施例１と同様に実施した結果を表１に示す。また、図１に、細胞生育状態を評価した際の写真を示す。なお、下記に写真を撮影する際に用いた装置を示す。以下、写真を撮影する際は同様の装置を用いた。
・倒立位相差顕微鏡（Ｎｉｋｏｎ ＴＥ２００）
・写真撮影装置（Ｎｉｋｏｎ ＤＳ−Ｌ１）
実施例６
（紫外線照射したＮＤＣＡ，スピログリコール変性ポリエステル樹脂を用いたヒト皮膚線維芽細胞の培養）
細胞播種前に細胞培養用基材を１．８ｍＷ／ｃｍ２の紫外線で２０分間照射した他は実施例４と同様に実施した結果を表１に示す。また、図２に、細胞生育状態を評価した際の写真を示す。
実施例７
（プラズマ処理したスピログリコール変性ポリエステル樹脂を用いたヒト皮膚線維芽細胞の培養）
細胞播種前に細胞培養用基材に酸素プラズマ処理（１００Ｗ、３０秒）を施た他は実施例１と同様に実施した結果を表１に示す。
実施例８
（プラズマ処理およびγ線照射したスピログリコール変性ポリエステル樹脂を用いたヒト皮膚線維芽細胞の培養）
細胞播種前に細胞培養用基材に酸素プラズマ処理（１００Ｗ、３０秒）を施し、２５ｋＧｙのγ線を照射した他は実施例１と同様に実施した結果を表１に示す。
実施例９
（プラズマ処理したＮＤＣＡ，スピログリコール変性ポリエステル樹脂を用いたヒト皮膚線維芽細胞の培養）
細胞播種前に細胞培養用基材に酸素プラズマ処理（１００Ｗ、３０秒）を施した他は実施例４と同様に実施した結果を表１に示す。
実施例１０
（プラズマ処理およびγ線照射ＮＤＣＡ，スピログリコール変性ポリエステル樹脂を用いたヒト皮膚線維芽細胞の培養）
細胞播種前に細胞培養用基材に酸素プラズマ処理（１００Ｗ、３０秒）を施し、２５ｋＧｙのγ線を照射した他は実施例４と同様に実施した結果を表１に示す。
比較例１
（無処理ポリスチレン樹脂を用いたヒト皮膚線維芽細胞の培養）
細胞培養用基材に（５）ポリスチレン製ディッシュ（無処理ディッシュ（表面処理なし））を用いる他は実施例１と同様に行った結果を表２に示す。また、図３に、細胞生育状態を評価した際の写真を示す。
比較例２
（組織培養用ポリスチレン樹脂を用いたヒト皮膚線維芽細胞の培養）
細胞培養用基材に（６）ポリスチレン製ディッシュ（組織培養用ディッシュ（付着性細胞用表面処理済み））を用いる他は実施例１と同様に行った結果を表２に示す。また、図４に、細胞生育状態を評価した際の写真を示す。
比較例３
（コラーゲンコートポリスチレン樹脂を用いたヒト皮膚線維芽細胞の培養）
細胞培養用基材に（７）ポリスチレン製ディッシュ（コラーゲンＴｙｐｅ１コート（ブタ由来））を用いる他は実施例１と同様に行った結果を表２に示す。また、図５に、細胞生育状態を評価した際の写真を示す。
比較例４
（ＰＥＴ樹脂を用いたヒト皮膚線維芽細胞の培養）
細胞培養用基材に（１）ポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）を用いる他は実施例１と同様に行った結果を表２に示す。
比較例５
（紫外線照射ＰＥＴ樹脂を用いたヒト皮膚線維芽細胞の培養）
細胞培養用基材に（１）ポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）を用いる他は実施例５と同様に行った結果を表２に示す。
実施例１〜１０はいずれも、少なくとも比較例２と比べて細胞生育状態が良好であり、さらに動物由来成分であるコラーゲンコートを行った比較例３と比べても同等以上である。
本出願は、２０１５年９月２５日に日本国特許庁へ出願された日本特許出願（特願２０１５−１８７８４６号）に基づくものであり、それらの内容はここに参照として取り込まれる。
本発明に係る細胞培養用基材は、コート処理せずに、付着性細胞を優れた水準で増殖させることができ、また、動物由来成分を含むコーティングを含まないため、安全であり、さらに、基材がコート処理されていないため、基材の管理が容易であることから、本発明の工業的意義は大きい。

Claims (13)

  1. ジカルボン酸単位とジオール単位とを含む、ポリエステル樹脂を含み、
    前記ジオール単位中１〜８０モル％が環状アセタール骨格を有するジオール単位であり、
    前記環状アセタール骨格を有するジオール単位が、一般式（１）
    （式中、Ｒ 1 およびＲ 2 はそれぞれ独立して、炭素数が１〜１０の脂肪族炭化水素基、炭素数が３〜１０の脂環式炭化水素基、及び炭素数が６〜１０の芳香族炭化水素基からなる群から選ばれる炭化水素基を示す。）
    で表されるジオール、および一般式（２）
    （式中、Ｒ 1 は前記と同様であり、Ｒ 3 は炭素数が１〜１０の脂肪族炭化水素基、炭素数が３〜１０の脂環式炭化水素基、及び炭素数が６〜１０の芳香族炭化水素基からなる群から選ばれる炭化水素基を表す）
    で表されるジオールから選ばれる少なくとも一つのジオールに由来するジオール単位である、
    細胞培養用基材。
  2. 前記環状アセタール骨格を有するジオール単位が、３，９−ビス（１，１−ジメチル−２−ヒドロキシエチル）−２，４，８，１０−テトラオキサスピロ〔５．５〕ウンデカンに由来するジオール単位、または５−メチロール−５−エチル−２−（１，１−ジメチル−２−ヒドロキシエチル）−１，３−ジオキサンに由来するジオール単位である、
    請求項１に記載の細胞培養用基材。
  3. 前記ジオール単位が環状アセタール骨格を有するジオール単位以外のその他のジオール単位をさらに含み、
    前記その他のジオール単位が、エチレングリコール、ジエチレングリコール、トリメチレングリコール、１，４−ブタンジオールおよび１，４−シクロヘキサンジメタノールからなる群から選ばれる１種以上のジオールに由来するジオール単位である、
    請求項１又は２に記載の細胞培養用基材。
  4. 前記ジカルボン酸単位が、テレフタル酸、イソフタル酸、１，４−ナフタレンジカルボン酸、１，５−ナフタレンジカルボン酸、２，６−ナフタレンジカルボン酸および２，７−ナフタレンジカルボン酸からなる群から選ばれる１種以上のジカルボン酸に由来するジカルボン酸単位である、
    請求項１〜３のいずれか一項に記載の細胞培養用基材。
  5. ジオール単位中に前記環状アセタール骨格を有するジオール単位を実質的に含まないその他のポリエステル樹脂、ポリカーボネート樹脂、アクリル樹脂、ポリスチレン樹脂およびポリメチルメタクリレート−スチレン樹脂からなる群から選ばれる少なくとも１種以上の樹脂をさらに含む、
    請求項１〜４のいずれか一項に記載の細胞培養用基材。
  6. 前記その他のポリエステル樹脂をさらに含み、
    前記その他のポリエステル樹脂が、ポリエチレンテレフタレート、ポリブチレンテレフタレート、イソフタル酸変性ポリエチレンテレフタレートおよび１，４−シクロヘキサンジメタノール変性ポリエチレンテレフタレートからなる群から選ばれる少なくとも１種以上の樹脂である、
    請求項５に記載の細胞培養用基材。
  7. 前記細胞培養用基材が、表面処理された基材である、
    請求項１〜６のいずれか一項に記載の細胞培養用基材。
  8. 請求項１〜７のいずれか一項に記載の細胞培養用基材を備える、
    細胞培養用容器。
  9. ジカルボン酸単位とジオール単位とを含む、ポリエステル樹脂を含む基材上で細胞を培養する工程を有し、
    前記ジオール単位中１〜８０モル％が環状アセタール骨格を有するジオール単位であり、
    前記環状アセタール骨格を有するジオール単位が、一般式（１）
    （式中、Ｒ 1 およびＲ 2 はそれぞれ独立して、炭素数が１〜１０の脂肪族炭化水素基、炭素数が３〜１０の脂環式炭化水素基、及び炭素数が６〜１０の芳香族炭化水素基からなる群から選ばれる炭化水素基を示す。）
    で表されるジオール、および一般式（２）
    （式中、Ｒ 1 は前記と同様であり、Ｒ 3 は炭素数が１〜１０の脂肪族炭化水素基、炭素数が３〜１０の脂環式炭化水素基、及び炭素数が６〜１０の芳香族炭化水素基からなる群から選ばれる炭化水素基を表す）
    で表されるジオールから選ばれる少なくとも一つのジオールに由来するジオール単位である、
    細胞培養方法。
  10. 前記細胞を培養する工程が、前記基材上に播種された前記細胞を培養する工程である、
    請求項９に記載の細胞培養方法。
  11. 前記細胞培養用基材が、表面処理された基材である、
    請求項９または１０に記載の細胞培養方法。
  12. 前記細胞が、付着性細胞である、
    請求項９〜１１のいずれか一項に記載の細胞培養方法。
  13. 細胞の培養における基材としての使用であって、
    前記基材は、ジカルボン酸単位とジオール単位とを含む、ポリエステル樹脂を含み、
    前記ジオール単位中１〜８０モル％が環状アセタール骨格を有するジオール単位であり、
    前記環状アセタール骨格を有するジオール単位が、一般式（１）
    （式中、Ｒ 1 およびＲ 2 はそれぞれ独立して、炭素数が１〜１０の脂肪族炭化水素基、炭素数が３〜１０の脂環式炭化水素基、及び炭素数が６〜１０の芳香族炭化水素基からなる群から選ばれる炭化水素基を示す。）
    で表されるジオール、および一般式（２）
    （式中、Ｒ 1 は前記と同様であり、Ｒ 3 は炭素数が１〜１０の脂肪族炭化水素基、炭素数が３〜１０の脂環式炭化水素基、及び炭素数が６〜１０の芳香族炭化水素基からなる群から選ばれる炭化水素基を表す）
    で表されるジオールから選ばれる少なくとも一つのジオールに由来するジオール単位である、
    基材としての使用。
JP2017540938A 2015-09-25 2016-09-23 細胞培養用基材およびそれを用いた細胞培養方法、細胞培養器、並びに基材としての使用 Active JP6739758B2 (ja)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2015187846 2015-09-25
JP2015187846 2015-09-25
PCT/JP2016/078126 WO2017051913A1 (ja) 2015-09-25 2016-09-23 細胞培養用基材およびそれを用いた細胞培養方法、細胞培養器、並びに基材としての使用

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPWO2017051913A1 JPWO2017051913A1 (ja) 2018-07-26
JP6739758B2 true JP6739758B2 (ja) 2020-08-12

Family

ID=58386103

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2017540938A Active JP6739758B2 (ja) 2015-09-25 2016-09-23 細胞培養用基材およびそれを用いた細胞培養方法、細胞培養器、並びに基材としての使用

Country Status (4)

Country Link
US (1) US11149249B2 (ja)
EP (1) EP3354720B1 (ja)
JP (1) JP6739758B2 (ja)
WO (1) WO2017051913A1 (ja)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN113383066A (zh) * 2019-03-29 2021-09-10 积水化学工业株式会社 细胞培养用支架材料、细胞培养用容器、细胞培养用纤维和细胞的培养方法
CN117203260A (zh) * 2021-04-26 2023-12-08 三菱瓦斯化学株式会社 聚酯树脂
CN115491307B (zh) * 2022-10-27 2024-01-23 同腾新创(苏州)科技有限公司 一种细胞和基因治疗中用于细胞培养的pet膜及应用

Family Cites Families (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5635482A (en) * 1989-08-14 1997-06-03 The Regents Of The University Of California Synthetic compounds and compositions with enhanced cell binding
JPH05276923A (ja) 1991-02-28 1993-10-26 W R Grace & Co 細胞培養用基材およびその製造方法
JP4196154B2 (ja) * 2001-12-19 2008-12-17 三菱瓦斯化学株式会社 多層シート
KR100868156B1 (ko) * 2001-12-21 2008-11-12 미츠비시 가스 가가쿠 가부시키가이샤 폴리에스테르 수지 조성물
US20040029266A1 (en) * 2002-08-09 2004-02-12 Emilio Barbera-Guillem Cell and tissue culture device
US20050058687A1 (en) 2003-09-12 2005-03-17 Becton, Dickinson And Company Covalently attached collagen VI for cell attachment and proliferation
WO2007125894A1 (ja) * 2006-04-26 2007-11-08 Toyo Gosei Co., Ltd. 細胞培養容器の製造方法
JP2008104411A (ja) 2006-10-26 2008-05-08 Fujifilm Corp 細胞培養用基板
US20080299601A1 (en) * 2007-03-15 2008-12-04 Invitrogen Corporation Adhering Surfaces
GB0717516D0 (en) * 2007-09-07 2007-10-17 Imp Innovations Ltd Bioactive nanocomposite material
US9598668B2 (en) 2008-10-14 2017-03-21 Cellseed Inc. Temperature-responsive cell culture substrate and method for producing the same
US20100255447A1 (en) * 2009-04-07 2010-10-07 University Of Arkansas Advanced bio-compatible polymer surface coatings for implants and tissue engineering scaffolds
US20120052049A1 (en) * 2010-08-31 2012-03-01 Renovocyte, LLC Systemic, Allogenic Stem Cell Therapies For Treatment of Diseases in Animals
AU2013289913A1 (en) * 2012-07-13 2015-03-05 Minerva Biotechnologies Corporation Method for inducing cells to less mature state
JP5752164B2 (ja) 2013-03-18 2015-07-22 大日本印刷株式会社 細胞培養支持体とその製造方法
JP2014205773A (ja) 2013-04-12 2014-10-30 三菱瓦斯化学株式会社 射出成形体

Also Published As

Publication number Publication date
EP3354720A1 (en) 2018-08-01
JPWO2017051913A1 (ja) 2018-07-26
EP3354720B1 (en) 2021-12-15
WO2017051913A1 (ja) 2017-03-30
EP3354720A4 (en) 2019-05-15
US11149249B2 (en) 2021-10-19
US20180265838A1 (en) 2018-09-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP6739758B2 (ja) 細胞培養用基材およびそれを用いた細胞培養方法、細胞培養器、並びに基材としての使用
Shin et al. Modulation of spreading, proliferation, and differentiation of human mesenchymal stem cells on gelatin-immobilized poly (l-lactide-co-ϵ-caprolactone) substrates
Sarker et al. Evaluation of fibroblasts adhesion and proliferation on alginate-gelatin crosslinked hydrogel
Shanmugasundaram et al. Microscale versus nanoscale scaffold architecture for mesenchymal stem cell chondrogenesis
Perez et al. Utilizing core–shell fibrous collagen-alginate hydrogel cell delivery system for bone tissue engineering
Cao et al. Mesenchymal stem cells loaded on 3D-printed gradient poly (ε-caprolactone)/methacrylated alginate composite scaffolds for cartilage tissue engineering
JP5013584B2 (ja) 軟骨細胞の培養方法および軟骨細胞
Gregory et al. Polyhydroxyalkanoates and their advances for biomedical applications
Gao et al. Bioinspired design of polycaprolactone composite nanofibers as artificial bone extracellular matrix for bone regeneration application
US20130172985A1 (en) Crosslinked hydrogels and methods of making and using thereof
Pokrywczynska et al. Is the poly (L-Lactide-Co–Caprolactone) nanofibrous membrane suitable for urinary bladder regeneration?
Lee et al. Development and evaluation of gellan gum/silk fibroin/chondroitin sulfate ternary injectable hydrogel for cartilage tissue engineering
Zhan et al. Multifunctional aliphatic polyester nanofibers for tissue engineering
Gui et al. Development of novel biodegradable polymer scaffolds for vascular tissue engineering
JP2014226088A (ja) 光および加水分解性架橋剤、光および加水分解性ゲル、細胞培養器具、細胞配列・分別装置、細胞配列方法、細胞分別方法、並びに、組織体形成方法
El-Ghazali et al. Characterization and biocompatibility evaluation of artificial blood vessels prepared from pristine poly (Ethylene-glycol-co-1, 4-cyclohexane dimethylene-co-isosorbide terephthalate), poly (1, 4 cyclohexane di-methylene-co-isosorbide terephthalate) nanofibers and their blended composition
Kumar et al. Design of functional RGD peptide-based biomaterials for tissue engineering
Goonoo et al. Improved multicellular response, biomimetic mineralization, angiogenesis, and reduced foreign body response of modified polydioxanone scaffolds for skeletal tissue regeneration
EP3875572A1 (en) Polylactide cell culture containers and use in cell culture without surface modification
WO2017051912A1 (ja) 細胞培養用基材およびそれを用いた細胞培養方法、細胞培養器、並びに基材としての使用
Geevarghese et al. Biodegradable and non-biodegradable biomaterials and their effect on cell differentiation
Lai et al. Effect of cross-linking density on the structures and properties of carbodiimide-treated gelatin matrices as limbal stem cell niches
Stanzani et al. Eco‐Sustainable Approaches in Bone Tissue Engineering: Evaluating the Angiogenic Potential of Different Poly (3‐Hydroxybutyrate‐Co‐3‐Hydroxyhexanoate)–Nanocellulose Composites with the Chorioallantoic Membrane Assay
Oh et al. Effect of enzymatically cross-linked tilapia scale collagen for osteoblastic differentiation of human mesenchymal stem cells
Kim et al. Collagen-grafted porous HDPE/PEAA scaffolds for bone reconstruction

Legal Events

Date Code Title Description
A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20180213

A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20190723

A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20190729

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20200414

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20200601

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20200622

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20200705

R151 Written notification of patent or utility model registration

Ref document number: 6739758

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R151