JP6733968B2 - 腎移植後合併症を評価するための分子法 - Google Patents
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Description
海外または国内優先権が本願と共に提出した出願データシート中に確認されるいずれかおよび全ての出願は参照により本明細書に組み入れられ、本開示の一部とする。
本明細書に開示した方法およびシステムのいくつかの実施形態は、腎移植後の病状のモニタリングに関する。いくつかの実施形態は、尿試料からのエキソソームおよび微小胞のmRNAプロファイルの特徴付けに関する。
よびGAPDHからなる群から選択される参照遺伝子を検出する工程をさらに含み、前記参照遺伝子を使用して少なくとも1つのマーカーレベルを正規化する。いくつかの実施形態では、上昇したレベルは、腎移植後合併症のないドナーの尿試料中のマーカーレベルと比較して2倍以上高いレベルである。
いくつかの実施形態では、本明細書に開示の方法を使用して、超遠心分離により尿から単離された小胞から得られるEMV mRNAをスクリーニングすることができる。いくつかの実施形態では、移植拒絶反応の評価の現在の標準的実践(例えば、腎生検)により腎損傷を検出できる前に、検出できる腎損傷バイオマーカーについて尿中EMVをスクリーニングする。
NXA1 mRNA発現は、尿タンパク濃度(図2A)、尿中クレアチニン濃度(図2B)、血清クレアチニン濃度(図2C)、および推定糸球体濾過量(図2D)と相関関係を示さなかった。
mRNA発現レベルを示す。SR群のものと比較した、移植後合併症が観察された場合に得られた試料において、尿中EMVのANXA1の発現レベルを分析した(図4)。TCMR(10.2倍に増加、p=0.017)、ABMR(14.4倍に増加、p=0.015)、IFTA(22.0倍に増加、p=4.3×10−16)および他の合併症(8.7倍に増加、p=2.2×10−5)において、ANXA1レベルの増加が観察された。一方、ANXA1は、境界域において少なくとも2.6倍に増加したが、統計的有意性は観察されなかった。
移植片移植後のモニタリングにおいてANXA1の予測値および予後値を評価するため、TR、IFTAおよびOTH患者の尿試料をサンプリング時間により分類して解析した。SR患者と比較して、TR患者は、第一合併症の少なくともメディアン6.5(IQR5〜9)日においてANXA1レベルの増加を示し、最後の合併症後メディアン288.5(IQR222.5〜346.8)日間高いままであった(図4A)。ROC曲線解析は、ANXA1の発現レベルがTR患者をAUC=0.946(Cx前)、0.857(Cx)、および0.940(Cx後)を有するSRから区別できることを示した(図4B、表3)。
ANXA1 mRNAのレベル上昇は、現在の実践より少なくとも6.5日早く移植片拒絶反応を予測することができ、それぞれ少なくとも56日および64日早くIFTAおよび他の合併症を予測することができる。生検の傷害性および侵襲性を考慮すれば、本開示の方法は、生検の使用を、尿中EMV中ANXA1 mRNA発現のレベル上昇により生検が示される場合の局面に限定することにより、腎移植後合併症の早期治療を援助することができる。
エキソソーム、エキソソーム様小胞、微小胞および/または対象の他の生体成分を、該試料のろ過により単離する。いくつかの実施形態では、収集した試料のろ過は、フィルター上に、膜粒子、細胞、エキソソーム、エキソソーム様小胞、および微小胞の1つ以上を捕捉するだろう。いくつかの実施形態では、小胞捕捉材は、生体試料から所望の小胞を捕捉する。従って、いくつかの実施形態では、小胞捕捉材を該材料の細孔(または他の小胞捕捉材を貫通する道)径に基づいて選択する。いくつかの実施形態では、小胞捕捉材はフィルターを含んでなる。
は、第一本体および第二本体は、第二本体の入口と第一本体の出口との相互作用により可逆的に連結する。いくつかの実施形態では、受け容器の内部空洞は、第一本体および第二本体の両方を可逆的に囲い込み、第一本体の内部容積からフィルター材を貫通し、第二本体の内部空洞を通過して第二本体の出口から出て通った後に収集した試料を受けるような寸法である。いくつかの実施形態では、単離工程は、かかる機器内に収集した試料の少なくとも一部を入れて、機器に力を印加して収集した試料を、機器を通過させて受け容器に渡し対象の生体成分を捕捉させることを含む。いくつかの実施形態では、力の印加は、機器の遠心分離を含む。他の実施形態では、力の印加は、機器に対して正圧を印加することを含む。他の実施形態では、力の印加は、機器に対して真空圧を印加することを含む。かかるフィルター機器の例は、国際公開第2014/182330号および国際公開第2015/050891号に開示されており、これらは参照することにより本明細書に組み入れられるものとする。
ッセイ機器から受けた生データに基づいて自動的に試験結果を算出してもよい。結果を処理することにより、いくつかの実施形態では、インターネットまたは追加の情報を有するコンピュータを供給する他の手段からのデータまたは他の出所の保存されたライブラリーからのコントロール情報と結果を比較することにより、コンピュータは追加のデータを算出してもよい。それから、コンピュータは、これらの結果に基づいて患者(および/または医療提供者、および/または試験施設)に出力を示してもよい。
れた細胞の組成を映す。エキソソームは、広範な哺乳類細胞により分泌される小さな微小胞であり、正常および病的状態下で分泌される。これらの小胞は、特定のタンパク質ならびにmRNAおよびマイクロRNAを含むRNAを含有する。いくつかの実施形態は、とりわけ、低分子干渉RNA(siRNA)、tRNA、および低分子活性化RNA(saRNA)などの核酸を評価する。
に特異的検出可能なシグナルを生成する。3'末端において伸長不能、5'末端において標識化、かつ標的配列内でハイブリダイズするように設計されたオリゴヌクレオチドプローブを、ポリメラーゼ連鎖反応アッセイ中に導入する。増幅の途中でポリメラーゼ連鎖反応生成物の鎖の1本にプローブをアニーリングすることにより、エキソヌクレアーゼ活性に適切な基質を生成する。増幅中、Taqポリメラーゼの5'→3'エキソヌクレアーゼ活性は、該プローブを、未分解プローブから識別できるより小さな断片に分解する。他の実施形態では、方法は:(a)試料を含むPCRアッセイに、標的核酸の領域を相補する配列を含む少なくとも1つの標識化オリゴヌクレオチドを準備することであって、該標識化オリゴヌクレオチドが工程(b)のオリゴヌクレオチドプライマーにより結合された標的核酸配列内にアニールする前記少なくとも1つの標識化オリゴヌクレオチドを準備すること;(b)第一プライマーが標的核酸配列の1つの鎖中の領域を相補する配列を含み、相補DNA鎖の合成をプライムし、第二プライマーが標的核酸配列の第二の鎖中の領域を相補する配列を含み、相補DNA鎖の合成をプライムし;および、各オリゴヌクレオチドプライマーが同じ核酸鎖にアニールしたいずれかの標識化オリゴヌクレオチドの上流のその相補鋳型にアニールするように選択される、1組のオリゴヌクレオチドプライマーを準備すること;(c)(i)プライマーおよび標識化オリゴヌクレオチドを標的領域内に含まれる鋳型核酸配列にアニールすること、および(ii)前記核酸ポリメラーゼがプライマー伸長生成物を合成する一方で、核酸ポリメラーゼの5'→3'ヌクレアーゼ活性が標識化オリゴヌクレオチドを含んでなるアニールした二本鎖およびその相補鋳型核酸配列から標識化断片を同時に遊離することにより、検出可能な標識化断片を作製する、プライマーを伸長すること、のPCRサイクリング工程を許容する条件下鋳型依存重合化剤として5’→3’ヌクレアーゼ活性を有する核酸ポリメラーゼを使用して標的核酸配列を増幅すること;ならびに(d)標識化断片の遊離を検出および/または測定して試料中の標的配列の存在または非存在を決定すること、を含む。
fluor、およびScorpionリアルタイムPCRアッセイが挙げられる。
、TAMRAなどの蛍光部分の蛍光をクエンチ可能なクエンチャー部分を含んでなる。3'末端において、プライマーは、少なくとも1つのミスマッチ塩基を有し、従って、その
塩基における核酸試料または塩基を相補しない。Pfu酵素などの3'−5'エキソヌクレアーゼ活性を有するポリメラーゼを用いたPCRにより、鋳型核酸配列を増幅してPCR産物を産生する。クエンチャー部分と結合したミスマッチ塩基(複数可)を、3'−5'エキソヌクレアーゼ活性により、PCR産物の3'末端から切断する。共有結合したクエン
チャー部分を有するミスマッチ塩基がポリメラーゼにより切断され、それ故、蛍光部分に対するクエンチング効果が取り除かれた蛍光を、PCR中少なくとも1つの時間において検出および/または定量する。バックグラウンドより上の蛍光は、合成された核酸試料の存在を示す。
書に開示の方法を実行するのに有用な追加の品目を備える。いくつかの実施形態では、キットは、溶解バッファー、カオトロピック試薬、洗浄バッファー、アルコール、洗剤、またはその組合せからなる群から選択される1つ以上の試薬を備える。いくつかの実施形態では、キット試薬を個別または貯蔵容器内で提供する。いくつかの実施形態では、キット試薬をすぐ使用できる状態で提供する。いくつかの実施形態では、キット試薬を、使用前に希釈する原液の形態で提供する。いくつかの実施形態では、キットは、本明細書に開示の方法を実行するのに有用なプラスチックパーツ(必要に応じて滅菌または滅菌可能)を備える。いくつかの実施形態では、キットは、ラック、遠心分離管、真空マニホールド、およびマルチウェルプレートからなる群から選択されるプラスチックパーツを備える。いくつかの実施形態では、使用説明書も提供する。
いくつかの実施形態に従えば、本明細書に記載の方法を、1つ以上の専用コンピュータ機器により実行することができる。専用コンピュータ機器は、配線で接続して技術を実行してもよく、1つ以上の特定用途向け集積回路(ASIC)もしくは技術を実行するように持続的にプログラムされたフィールドプログラマブルゲートアレイ(FPGA)などのデジタル電子機器を備えてもよく、またはファームウェア、メモリー、他の記憶装置、もしくは組合せ中にプログラム指示に従って技術を実行するようにプログラムされた1つ以上の汎用ハードウェアプロセッサを備えてもよい。このような専用コンピュータ機器は、技術を実行するように、カスタムハードワイヤードロジック、ASIC、またはFPGAをカスタムプログラムと組み合わせてもよい。専用コンピュータ機器は、技術を実行するように、デスクトップコンピュータシステム、サーバーコンピュータシステム、ポータブルコンピュータシステム、ハンドヘルドデバイス、ネットワークデバイスもしくは他の機器またはハードワイヤードおよび/またはプログラムロジックを組み込んだ機器の組合せであってもよい。
ィカルユーザーインターフェース(「GUI」)などのユーザーインターフェース機能を提供する。
ュールを、コンパクトディスク、デジタルビデオディスク、フラッシュドライブ、磁気ディスク、またはその他の有形媒体などのコンピュータ可読媒体で、またはデジタルダウンロードとして提供してもよい(実行前にインストレーション、解凍または復号を要する圧縮またはインストール可能なフォーマットで元々記憶してもよい)。このようなソフトウェアコードを、コンピュータ機器により実行するために、実行するコンピュータ機器のメモリーデバイス上に部分的または完全に記憶してもよい。ソフトウェア命令を、EPROMなどのファームウェアに埋め込んでもよい。ハードウェアモジュールは、ゲートおよびフリップフロップなどの接続されたロジックユニットからなってもよく、および/またはプログラム可能なゲートアレイもしくはプロセッサなどのプログラム可能ユニットからなってもよいとさらに考えられるだろう。本明細書に記載のモジュールまたはコンピュータ機器の機能を、好ましくはソフトウェアモジュールとして実行するが、ハードウェアまたはファームウェア内で表現してもよい。概して、本明細書に記載のモジュールは、他のモジュールと組合せたまたはその物理編成もしくは記憶にかかわらずサブモジュールに分割してもよい論理モジュールを表す。
グナルに変換することができる。赤外検知器は赤外シグナルで伝送されたデータを受けることができ、適切な回路はデータをバスに置くことができる。バスはデータをメインメモリーに伝送し、そこから、プロセッサは命令を検索して実行する。メインメモリーにより受けた命令は、命令を検索し実行してもよい。必要に応じて、プロセッサによる実行前または実行後のいずれかに記憶機器にメインメモリーにより受けた命令を記憶してもよい。
本試験は、市立札幌病院における施設内審査委員会により審査および承認された。腎移植患者(N=205)を本発明者らの施設において腎移植を受けたものから募集した。15mL以下のスポット尿試料(N=437)を、入院および手術後検査中にインフォームドコンセントを行って収集した。試料を分析するまで−80℃で3時間まで室温において貯蔵した。Banff診断基準2011を用いてeGFR、尿タンパクおよび腎生検に基づいて移植後合併症を診断した(付随表1)。
先に記載したように、EMV mRNAアッセイを行った。凍結尿試料を37℃水浴にて解凍し、15分間、800xgで遠心分離して尿中細胞および円柱などの大きな粒子を取り除いた。EMVを含む10mL上澄みをエキソソーム単離チューブ(Hitachi
Chemical Diagnostics, Inc.(HCD))による処理後、オリゴ(dT)固定マイクロプレート(HCD)を用いてEMV溶解、mRNA単離およびcDNA合成した。ViiA7リアルタイムPCRシステム(Life Technologies)を用いて、64のmRNAを定量した。これらのバイオマーカー候補を腎拒絶反応において差次的発現されたものおよび健康な対象の尿中EMV中の対応する発現レベル(未公表RNA配列データ)から選択した。参照遺伝子のため、GAPDHおよびACTBを分析した。これらの中で、本試験においてANXA1を選択した。ANXA1、GAPDHおよびACTBのプライマー配列は下記表4中で得られる。ANXA1の発現レベルを、カットオフ値が6であるΔCt法を用いてGAPDHの発現レベルにより正規化した。ΔCt法では、試料のANXA1サイクル閾値(Ct値)を、その同試料のハウスキーピング遺伝子(例えば、ACTB、GAPDH)のCt値から差し引く。従って、より小さなΔCt値ほど、より高いANXA1遺伝子発現となる。図3に示すように、安定な回復患者のΔCt値は5〜6であったが、ABMR患者のΔCt値は約2であった。このことは、ABMR患者においてΔCt値が3〜4に低下することは、上記報告したおよそ14倍に増加することに相当することを示している。Mann−Whitney−Wilcoxon検定において1%または5%未満のp値により統計的有意性を決定した。R(R foundation、バージョン3.2.0)を用いてデータ解析し、「ROCR」パッケージによりAUCを算出した。PCR分析用に使用するセンスおよびアンチセンスプライマーを下記表4に示す。
結論として、患者の腎移植後の病状のモニタリングのための安全で効果的である革新的ストラテジーを本明細書に開示する。本願の方法は、非侵襲的であり、現在の標準的技法(例えば、生検)より前に腎移植拒絶反応および他の合併症を同定する有望な診断および予後アッセイを提供することができる。該方法は、また、現在の標準的技法より標的を絞った方法で、いつ生検を実施すべきかを示す。
示した特定の形態または方法に限定されないが、それとは反対に、本発明は記載した様々な実施形態および添付の請求の範囲の趣旨および範囲内である全ての変更、均等物、および代替物を包含するものとすることを理解するべきである。本明細書に開示のいずれもの方法は、必ずしも、記載した順番で実施する必要はない。本明細書に開示した方法は、開業医によりなされる特定の行為を含むが;しかしながら、明示的あるいは含蓄的のいずれかでこれらの行為のいずれもの第三者の指示も包含し得る。例えば、「疾病または病状のため対象を治療する」などの措置は、「疾病または病状のため対象の治療の管理を指示する」を含む。
Claims (8)
- 対象からの尿試料中のANXA1レベルを検出することを含む、ANXA1をマーカーとする、前記対象の腎移植後合併症の存在の検出方法であって、
ACTBおよびGAPDHからなる群から選択される参照遺伝子を検出する工程;および
前記参照遺伝子を使用してANXA1レベルを正規化する工程を含み、
前記ANXA1が尿中エキソソームおよび微小胞中に存在し、ANXA1のレベル上昇の検出が前記対象の腎移植後合併症の存在を示し、
前記ANXA1のレベル上昇が腎移植後合併症のないドナーの尿試料中のANXA1のレベルと比較して2倍より高いものであり、
前記腎移植後合併症が、急性拒絶反応、慢性拒絶反応、間質性線維症および尿細管萎縮からなる群から選択される、
前記方法。 - 腎移植後合併症と関連するRNAを発現するヒト対象のスクリーニング方法であって、前記方法が、前記対象からの尿試料から単離された小胞中の前記RNAの発現を腎移植後合併症のないドナーの尿試料から単離された小胞中の前記RNAの発現と比較することを含み、腎移植後合併症と関連する前記RNAがANXA1であり、前記ドナーの前記RNAの前記発現と比較した前記対象の前記RNAの前記発現の増加は、前記増加が閾値を超える場合に前記対象が腎移植後合併症を有することを示し、前記尿試料から単離した前記小胞中の前記RNAの前記発現の前記比較が:
(a)前記対象からの前記試料を小胞捕捉フィルターを通過させることにより前記対象からの前記試料から前記小胞を捕捉することと、
(b)前記小胞捕捉フィルター上に溶解バッファーをロードすることにより前記小胞を溶解して小胞関連RNAを遊離することと、
(c)前記小胞関連RNA中の腎移植後合併症と関連する前記RNAの前記発現をPCRにより定量することと、
をさらに含み、
前記腎移植後合併症が、急性拒絶反応、慢性拒絶反応、間質性線維症および尿細管萎縮からなる群から選択される、
前記方法。 - PCRによる、前記RNAの前記発現の定量が:
前記小胞関連RNAを逆転移酵素と接触させて相補DNA(cDNA)を生成すること;
前記cDNAを腎移植後合併症と関連する前記RNAに対して特異的であるセンスおよびアンチセンスプライマー、ならびにDNAポリメラーゼと接触させて増幅DNAを生成すること;
前記cDNAを参照RNAに対して特異的であるセンスおよびアンチセンスプライマー、ならびに前記DNAポリメラーゼと接触させて増幅DNAを生成すること;および
解析ソフトウェアを使用して前記RNAの発現レベル、量(quantity)または量(amount)を決定すること、
を含む、請求項2に記載の方法。 - 解析ソフトウェアを使用して腎移植後合併症と関連する前記RNAの発現レベル、量(quantity)または量(amount)を決定することが:
解析ソフトウェアを使用して腎移植後合併症と関連する前記RNAのマーカーサイクル閾値(Ct値)を決定すること;
解析ソフトウェアを使用して参照RNAの参照Ct値を決定すること:および
参照Ct値からマーカーCt値を差し引いてマーカーΔCt値を得ること、
を含む、請求項3に記載の方法。 - 前記参照RNAが、ACTBおよびGAPDHからなる群から選択される、請求項3または4に記載の方法。
- 前記マーカーΔCt値が6未満である場合、前記増加が前記閾値を超える、請求項4または5に記載の方法。
- マーカーΔCt値をコントロールΔCt値と比較することをさらに含み、前記コントロールΔCt値を、コントロール参照Ct値からコントロールマーカーCt値を差し引くことにより決定し、前記コントロールマーカーCt値が健康なドナー集団の尿中小胞中の腎移植後合併症と関連する前記RNAのCt値であり、前記コントロール参照Ct値が健康なドナー集団の尿中小胞中の前記参照RNAのCt値である、請求項4〜6のいずれか一項に記載の方法。
- 前記マーカーΔCt値が前記コントロールΔCt値より少なくとも2小さい場合、前記増加が前記閾値を超える、請求項7に記載の方法。
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