JP6557266B2 - Pi3デルタ及びガンマタンパク質キナーゼの選択的二重阻害剤としての置換クロメン誘導体 - Google Patents
Pi3デルタ及びガンマタンパク質キナーゼの選択的二重阻害剤としての置換クロメン誘導体 Download PDFInfo
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Description
(RS)−N−(5−(4−アミノ−1−(1−(5−フルオロ−3−(3−フルオロフェニル)−4−オキソ−4H−クロメン−2−イル)エチル)−1H−ピラゾロ[3,4−d]ピリミジン−3−イル)−2−メトキシフェニル)メタンスルホンアミド(化合物A);及び
(S)−N−(5−(4−アミノ−1−(1−(5−フルオロ−3−(3−フルオロフェニル)−4−オキソ−4H−クロメン−2−イル)エチル)−1H−ピラゾロ[3,4−d]ピリミジン−3−イル)−2−メトキシフェニル)メタンスルホンアミド(化合物A1)。
(a)5−ブロモ−2−メトキシアニリンを、
(d)任意に、N−(5−(4−アミノ−1−(1−(5−フルオロ−3−(3−フルオロフェニル)−4−オキソ−4H−クロメン−2−イル)エチル)−1H−ピラゾロ[3,4−d]ピリミジン−3−イル)−2−メトキシフェニル)メタンスルホンアミドを、その薬学的に許容可能な塩またはそのプロドラッグに変換するステップと、を含む。
(a)(R)−5−フルオロ−3−(3−フルオロフェニル)−2−(1−ヒドロキシエチル)−4H−クロメン−4−オンを、
(d)任意に、化合物(A1)を、その薬学的に許容可能な塩またはそのプロドラッグに変換するステップと、を含む。
膀胱癌腫、乳癌腫、結腸癌腫、腎臓癌腫、肝臓癌腫、小細胞肺癌を含む肺癌腫、食道癌腫、胆嚢癌腫、卵巣癌腫、膵臓癌腫、胃癌腫、子宮頸癌腫、甲状腺癌腫、前立腺癌腫、及び扁平上皮細胞癌を含む皮膚癌腫、を含むが、これに限定されない癌腫;
白血病、急性リンパ球性白血病、急性リンパ芽球性白血病、B細胞リンパ腫、T細胞リンパ腫、ホジキンリンパ腫、非ホジキンリンパ腫、有毛細胞リンパ腫、及びバーキットリンパ腫を含むが、これに限定されないリンパ球系統の造血性腫瘍;
急性及び慢性骨髄性白血病、骨髄異形成症候群、及び前骨髄球性白血病を含むが、これに限定されない骨髄系統の造血性腫瘍;
線維肉腫及び横紋筋肉腫を含むが、これに限定されない間葉起源の腫瘍;
星状細胞腫、神経芽細胞腫、神経膠腫、及び神経鞘腫を含むが、これに限定されない中央及び抹消神経系の腫瘍;ならびに
黒色腫、精上皮腫、奇形癌、骨肉腫、色素性乾皮症、角化棘細胞腫、甲状腺濾胞癌、及びカポジ肉腫を含むが、これに限定されない他の腫瘍、を含むが、これに限定されない様々な癌の治療において有用である。
本発明はまた、本発明の1つ以上の化合物と、1つ以上の薬学的に許容可能な担体または賦形剤と、を含む、薬学的組成物を提供する。一実施形態において、薬学的組成物は、治療有効量の本発明の1つ以上の化合物を含む。薬学的組成物は、本明細書に説明されるような1つ以上の追加の活性成分を含み得る。
投与される化合物の量は、治療される哺乳動物、障害または病態の重症度、投与速度、化合物の処分、及び処方する医師の裁量に依存する。しかしながら、有効用量は、単回用量または分割用量で、1日に体重1kg当たり約0.001〜約100mg、好ましくは約1〜約35mg/kg/日の範囲内である。70kgのヒトにおいて、これは約0.05〜約7g/日、好ましくは約0.05〜約2.5g/日に達する。本発明の化合物の有効量は、単回用量または複数用量(例えば、1日2回または3回)で投与され得る。
N−(5−(4−アミノ−1−(1−(5−フルオロ−3−(3−フルオロフェニル)−4−オキソ−4H−クロメン−2−イル)エチル)−1H−ピラゾロ[3,4−d]ピリミジン−3−イル)−2−メトキシフェニル)メタンスルホンアミド
方法A
(S)−N−(5−(4−アミノ−1−(1−(5−フルオロ−3−(3−フルオロフェニル)−4−オキソ−4H−クロメン−2−イル)エチル)−1H−ピラゾロ[3,4−d]ピリミジン−3−イル)−2−メトキシフェニル)メタンスルホンアミド
及び(R)−N−(5−(4−アミノ−1−(1−(5−フルオロ−3−(3−フルオロフェニル)−4−オキソ−4H−クロメン−2−イル)エチル)−1H−ピラゾロ[3,4−d]ピリミジン−3−イル)−2−メトキシフェニル)メタンスルホンアミド
(S)−N−(5−(4−アミノ−1−(1−(5−フルオロ−3−(3−フルオロフェニル)−4−オキソ−4H−クロメン−2−イル)エチル)−1H−ピラゾロ[3,4−d]ピリミジン−3−イル)−2−メトキシフェニル)メタンスルホンアミド
及び(R)−N−(5−(4−アミノ−1−(1−(5−フルオロ−3−(3−フルオロフェニル)−4−オキソ−4H−クロメン−2−イル)エチル)−1H−ピラゾロ[3,4−d]ピリミジン−3−イル)−2−メトキシフェニル)メタンスルホンアミド
実施例A1
(S)−N−(5−(4−アミノ−1−(1−(5−フルオロ−3−(3−フルオロフェニル)−4−オキソ−4H−クロメン−2−イル)エチル)−1H−ピラゾロ[3,4−d]ピリミジン−3−イル)−2−メトキシフェニル)メタンスルホンアミド
代謝的安定性研究は、マウス、ラット、イヌ、サル、及びヒト肝臓ミクロソームを使用して、化合物A、A1、及びA2、ならびに第WO 2012/151525号の実施例128において行った。マウス、ラット、及びヒト肝臓ミクロソーム(全てBD Gentest,USAより)を用いた試験のためのプロトコルは、以下に提供される。0.4mgのタンパク質を、37℃で15分間、リン酸緩衝液(pH約7.4)中の2mM NADPH(補因子)でプレインキュベートし、次いで、1μMの試験アイテムを添加し、3連で60分間更にインキュベートした。反応混合物を、内部標準を含有するメタノールで終了させ、遠心分離し、LC−MS/MSによって、上清中に残存する試験アイテムを更に分析した。残存する親化合物の割合(%)は、0分で終了させた類似の試料と比較して計算した。結果を、以下の表1に提供する。
以下では、血漿タンパク質結合を測定する(平衡透析方法を使用して)ための手順を提供する。745μLの血漿を、2mlの微小遠心管に移した。それに、5μLの化合物A1(150μM)を添加した。試料を、テーブルトップボルテクサで2分間混合した。50μLの血漿(n=2)を、0時間の試料として処理した、事前標識した1.5mLの微小遠心管に移した。
化合物A1(遊離塩基)の経口バイオアベイラビリティを、ラット及びマウスにおいて評価した。ラットにおける薬物動態研究のためのプロトコルを、以下に提供する。
本明細書に説明される化合物の薬理的特性は、以下で例示されるように、いくつかの薬理的アッセイによって確認され得る。
ホスホイノシチド3キナーゼ(PI3K)は、いくつかの重要な細胞プロセスの制御において重要な役割を果たす、脂質キナーゼのクラスに属する。PI3Kは、ホスホイノシトールの3−ヒドロキシ位置をリン酸化し、これにより下流シグナル伝達事象に関与するセカンドメッセンジャーを産生することができる。均一時間分解蛍光(HTRF)アッセイは、α、β、γ、またはδ等のPI3Kアイソフォームによるホスホチジルイノシトール4,5−二リン酸(PIP2)のリン酸化の結果として形成される、3,4,5−三リン酸エステル(PIP3)の検出を可能にする。
10%のFBS補足培地を使用して、増殖阻害アッセイを実施した。96ウェルプレート内に5000〜20,000個の細胞/ウェルの濃度で、細胞を播種した。0.01〜10000nMの範囲の濃度の試験化合物を、24時間後に添加した。0時間(試験化合物の添加前)及び試験化合物の添加の72時間後で、3−[4,5−ジメチルチアゾール−2−イル]−2,5−臭化ジフェニルテトラゾリウム(MTT)色素還元試験を使用して、成長を評価した。450nmの波長で、Fluostar Optima(BMG Labtech,Germany)上で吸光度を読み取った。GraphPad Prismを使用してデータを分析し、対照と比較した、試験化合物による阻害割合(%)をそれに従って計算した。
MOLT−4、Jurkat、CCRF−CEM、及びHut−78細胞を、所望の濃度の化合物とともに48時間インキュベートした。細胞を溶解させ、ウェスタンブロットによってpAKT判定した。ImageJを使用してバンドを定量化し、アクチンに正規化した。
抗FcεR1またはfMLP誘導CD63発現の変化によって明示される、好塩基球におけるPI3Kδ及びγシグナル伝達は、Flow2CAST(登録商標)キット(Buhlmann Laboratories,Switzerland)を使用して判定される、有用な薬力学的標識である。試験手順は、以下のステップを伴う。
・静脈穿刺管を何回か反転させることによって、抗凝血血液試料を混合する;
・フローサイトメトリ測定に好適な、新しくかつ発熱物質を含まない3.5mlのポリプロピレンまたはポリスチレン管を調製する;
・49μlの患者の全血を各管に添加する;
・1μlの10%のDMSO(バックグラウンド)または化合物(10%のDMSO)を指定された管に添加し、穏やかに混合する。室温で15分間インキュベートする;
・50μlの刺激緩衝剤(バックグラウンド)あるいは抗FcεRI AbまたはfMLPを各管にピペッティングする;
・100μlの刺激緩衝剤を各管に添加する;
・穏やかに混合する。20μlの染色試薬(FITC−CD63及びPE−CCR3の1:1混合物)を各管に添加する;
・穏やかに混合し、管を覆い、水浴中37℃で15分間インキュベートする。(インキュベータを使用すると、より効率的でない熱伝達のために、約10分間長いインキュベーション時間がかかる);
・2mlの余熱(18〜28℃)した溶解試薬を各管に添加し、穏やかに混合する;
・18〜28℃で5〜10分間インキュベートする;
・500×gで管を5分間遠心分離する;
・ブロッティング紙を使用することによって、上清を傾瀉する;
・300〜800μlの洗浄緩衝剤で細胞ペレットを再懸濁する;及び
・穏やかにボルテックスし、同一日内にフローサイトメーター上でデータを取得する。
アッセイ4A1:(PI3Kδ選択性のための)抗IgM誘導B細胞増殖
本研究の目的は、抗IgM誘導ヒトB細胞増殖に対する、化合物A1の阻害潜在力を評価することであった。
プレーティング及び処理
・単離したB細胞を1ml当たり1.0×106個の細胞に再懸濁した。100μlの細胞懸濁液を96ウェルプレートの各ウェルに添加した。3連を維持した。
・50μlの薬物希釈液を添加し、よく混合した。DMSOブランク及び誘導因子ブランクを維持した。
・処理したプレートを、37℃、5%CO2で30分間インキュベートし、その後50μlの4×誘導因子を添加し、ピペッティングによって混合した。
・プレートを、37℃、5%CO2で72時間インキュベートした。
・培地を吸引し、150μlのDMSOを添加して、ホルマザン結晶を溶解させた。
・A560及びA640nmで吸光度を読み取った。
本研究の目的は、3T3線維芽細胞におけるPI3Kβキナーゼ媒介LPA誘導AktS473リン酸化に対する化合物A1の効果を判定することであった。
・3T3細胞を所望の濃度の試験化合物で15分間処理した。最終濃度が5μMであるように、1mlの2X LPAを添加し、5分間インキュベートした。
・培地を処分し、1mlの氷冷1X PBSで洗浄した。
・250μlの細胞溶解緩衝剤を添加し、氷上で30分間インキュベートした。
・試料を遠心分離し、上清は分析まで−80℃で維持した。
・pAKT(S473)を一次抗体として、及び抗ウサギIgG−HRPを二次抗体として使用するウェスタンブロットによって試料を分析した。
・ImageJ1.42q(NIH,USA)を使用して、バンドの強度を判定し、アクチン(負荷対照)に正規化した。GraphPad Prism(Version5.02)を使用して、データをプロットした。
本研究の目的は、RAW264.7マクロファージにおけるPI3Kγキナーゼ媒介c5a誘導AktS473リン酸化に対する化合物A1の効果を判定することであった。
・RAW264.7細胞を、所望の濃度の試験化合物で15分間処理した。最終濃度が50ng/mlであるように、1mlの2X c5aを添加し、15分間インキュベートした。
・培地を処分し、1mlの氷冷1X PBSで洗浄した。
・250μlの細胞溶解緩衝剤を添加し、氷上で30分間インキュベートした。
・試料を遠心分離し、上清を分析まで−80℃で保管した。
・pAKT(S473)を一次抗体として、及び抗ウサギIgG−HRPを二次抗体として使用するウェスタンブロットによって試料を分析した。
・ImageJ1.42q(NIH,USA)を使用して、バンドの強度を判定し、アクチン(負荷対照)に正規化した。GraphPad Prism(Version5.02)を使用して、データをプロットした。
本研究の目的は、PDGF誘導3T3線維芽細胞におけるPI3Kαキナーゼ媒介AktS473リン酸化に対する化合物A1の効果を判定することであった。
・3T3細胞を所望の濃度の試験化合物で15分間処理した。最終濃度が20ng/mlであるように、1mlの2X PDGFを添加し、10分間インキュベートした。
・培地を処分し、1mlの氷冷1X PBSで洗浄した。
・250μlの細胞溶解緩衝剤を添加し、氷上で30分間インキュベートした。
・試料を遠心分離し、上清を収集し、分析まで−80℃で保管した。
・pAKT(S473)を一次抗体として、及び抗ウサギIgG−HRPを二次抗体として使用するウェスタンブロットによって試料を分析した。
・ImageJ1.42q(NIH,USA)を使用して、バンドの強度を判定し、アクチン(負荷対照)に正規化した。GraphPad Prism(Version5.02)を使用して、データをプロットした。
以下で概説されるように、in situ Caspase3キット(Millipore,US)を使用して、白血病細胞におけるアポトーシスを判定した。
・6ウェルプレート内に1×106個の細胞/ウェルの密度で、白血病細胞を播種する
・所望の濃度の試験化合物/DMSOを添加する
・プレートを、5%CO2インキュベータ内で37℃で24時間インキュベートする
・2mlの遠心分離管内に細胞を収集する
・1.6μlの新しく調製された5×FLICA試薬を添加し、管をわずかに弾くことによって、細胞を混合する
・5%CO2下、37℃で管を1時間インキュベートする
・2mlの1×洗浄緩衝剤を各管に添加し、混合する
・細胞を、室温で5分間、<400×gで遠心分離する。
・上清を慎重に除去及び処分し、細胞ペレットを穏やかにボルテックスして、いかなる細胞間凝集塊も破壊する。
・300ulの1×洗浄緩衝剤中で細胞ペレットを再懸濁する
・100μlの各細胞懸濁液を、黒色マイクロタイタープレートの2つのウェルのそれぞれの中に定置する。気泡の形成を避ける。
・490nMの励起波長及び520nMの放出波長を使用して、各マイクロウェルの吸光度を読み取る。
・対照ブランクと比較した、蛍光における増加によって明示される、caspase−3活性における増加割合(%)を計算する。
本研究の目的は、ヒトPBMCにおける抗原誘導サイトカイン放出に対する、化合物A1の阻害潜在力を評価することであった。
プレーティング及び処理
・ヘパリン化されたヒト全血を、PBSで1:1に希釈し、白血球分離培地上に付加し、400gで40分間、遠心分離した。
・軟層を取り出し、PBSで洗浄した
・0.15*106のPBMCを、RPMI培地に1ウェル当たり100μlでプレートし、2時間インキュベートした。
・培地内の50μlの3×の化合物希釈物を添加し、15分間インキュベートした。
・最終濃度が1μg/mlであるように、RPMI中50μlのLPSでTNFα誘導した。上清を6時間で収集した。
・最終濃度が20μg/mlであるように、RPMI中50μlのPHAでIL−2誘導した。上清を24時間で収集した。
・最終濃度が20μg/mlであるように、RPMI中50μlのPHAでIL−4誘導した。上清を48時間で収集した。
・eBioscienceからのキットを使用して、ELISAを実施した。
・GraphPad Prism 5を使用して、EC50を計算した。
ヒトまたはマウスBリンパ球のB細胞受容体(BCR)活性化増殖を調節するうえでの化合物A1の効果を判定した。CD19は、B芽細胞への発達中の最も早期に認識可能なB系細胞からの細胞上に存在するタンパク質であるが、血漿細胞への成熟までに失われる。LPSは、内毒素であり、かつBCRシグナル伝達経路を介して、B細胞上に強力なマイトジェン活性を有する環境微生物の主要な構成要素である。
PI3K経路は、細胞増殖、成長、及び生存等のいくつかの発癌プロセスを調節する、セリン−トレオニンキナーゼである、AKTによって下流で制御される。脾臓は、多量のB及びTリンパ球に対するレパートリであるため、LPS誘導AKTリン酸化の阻害は、単離したマウス脾細胞を使用して、エクスビボで判定した。細胞をプレートし、所望の濃度の化合物A1とともに15分間インキュベートし、続いて、LPS(20μg/mL)で30分間誘導した。誘導後、細胞を溶解させ、pAKTは、pAKTS473捕捉/検出抗体対及び抗マウスHRP二次抗体を使用したELISAによって判定した。ブランクを差し引いた吸光度値を得て、試験試料におけるpAKTの阻害割合(%)を計算した。化合物A1は、低濃度で下流マーカ、AKTのリン酸化における用量依存的低減(EC50=347.4nM)を引き起こし、それによって、シグナル伝達経路を解明した。
過剰動員及びそれに続く好中球の活性化は、重度の喘息、慢性閉塞性肺疾患、嚢胞性線維症、及び急性呼吸促迫症候群等の、気道及び肺におけるいくつかの炎症性疾患の発症及び経過にとって重要である可能性が高い。好中球がこれらの疾患に寄与する機序は、好中球エラスターゼ等のタンパク質分解酵素、及び酸素フリーラジカルの放出に関与し得る。これらの化合物は、放出されると、気道において気管支収縮、気管支過敏症、分泌過多、上皮損傷、及び組織のリモデリングを引き起こす可能性がある。
雌のウィスターラット(175〜200g)を、実験の開始前に7日間気候順応させた。動物をそれらの体重に基づいて種々の群にランダムに割り付けた。動物をエーテルで麻酔し、20mlの無菌空気を皮下の肩甲骨内領域に注入する(0日目)ことによって皮下空気嚢を作製し、4日目に無菌濾過空気の第2の10mlの注入によって維持した。6日目に、6日目のLPS溶液の皮下注入による炎症の誘導1時間前に、経口処理を開始した。無菌食塩水(100μg/kg)中に溶解した5mlの体積のLPS溶液を、各嚢に注入した。LPSの投与の6時間後に、5mlの無菌食塩水で嚢を流し、4mlの液体を取り除くことによって嚢液の試料を取った。嚢液中に存在する白血球の数を、血球計算器を使用して顕微鏡的に判定した。Diff−Quikで染色された液体スメアの顕微鏡検査によって、分画細胞内容物を判定した。
隔離期間後、後眼窩叢法によって各個々の動物から眼窩静脈から0.3mLの血液試料を収集し、細胞分析器(ADVIA2120,Siemens)上で分析する。それらの総細胞数に基づいて、モルモットをランダム化し、種々の群に分ける。識別のために、耳介を難消標識ペンでマークする。0日目に、重量を記録し、50μgの卵白アルブミン(OVA)及び10mgのミョウバン溶液(1mL)で動物を腹腔内に感作させる。 7日目及び14日目に、上記の感作手順を反復する。疾病または感作に対する反応のあらゆる徴候について、19日目まで動物を観察し、ある場合、記録する。19、20、及び21日目に、強制経口投与による試験化合物での処理後、30分後に動物を0.5%w/v、0.5%、及び1%の卵白アルブミン負荷にそれぞれ曝露する。対照及び偽群の動物を、0.5%w/vのメチルセルロース(ビヒクル)で処理する。偽対照群を、0、7、及び14日目に10mgのミョウバンで感作させ、19、20、及び21日目に同一の噴霧速度で食塩水溶液(SAL)に曝露させる。OVA負荷の20時間後、メタコリン負荷の累積用量(75、100、125、及び150μg/ml)に対する全身プレチスモグラフによって気道過敏性を測定する。気道反応を測定した後、血液試料及びBAL液を収集する。顕微鏡下で、ノイバウアー室を使用することによって総細胞数について試料を分析し、白血球分画の計数を手動で行う。
隔離期間後、それらの体重に基づいて、マウスをランダム化し、4つの群に分けた(n=7)。識別のために、難消標識ペンで尾をマークした。0日目に、重量を記録し、腹腔内に100μgの卵白アルブミン及び10mgのミョウバン溶液(0.2mL)で感作させた。
雌のウィスターラットを、実験の開始前に7日間気候順応させ、それらの体重に基づいて種々の群にランダムに割り付けた。0日目に、尾の付け根で送達される、MTB(4mg/mL)を含有する完全なフロイントアジュバント(IFA)で乳化させた、500μgのウシコラーゲンII型の皮内注入によって動物を処理した。7日目の一次免疫化の後、尾の付け根での皮内注入による、不完全なフロイントアジュバント中、300μgのCIIの追加免疫注入によって動物を処理した。足首の関節における関節炎の発現は、通常12〜14日目の間に視覚的に明らかになった。関節炎の発症後の日から、試験化合物またはビヒクル(経口投与)で、動物を処理し、処理は、更に連続で9日間継続した。研究期間中にわたって定期的に、関節炎の徴候について視覚的検査によって関節炎スコアを採点絵した。体重、肢体積、及び肢の厚さの測定を、0、1、3、5、7、9、及び10日目に行った。10日の処理後、研究の終了時に、剖検で血液を回収し、血清または血漿に処理し、全ての関節を取り、組織の小片を各関節から取った後、病理組織学的分析のために前足及び後足の両方を10%のホルマリン内に固定し、組織ホモジネート内のサイトカイン分析のために−80℃で保管した。前足及び後足の臨床点数化判断基準は、0=正常、1=1つの後足または前足の関節に発症、もしくは最小のびまん性紅斑、及び腫脹、2=2つの後足または前足の関節に発症、もしくは中度のびまん性紅斑、及び腫脹、3=3つの後足または前足の関節に発症、もしくは最小のびまん性紅斑、及び腫脹、4=4つの指関節に発症、5=足全体に重度のびまん性紅斑及び重度の腫脹、指を曲げることができない、である。
動物(雄のBalb/cマウス)を、実験の開始前に7日間気候順応させた。次いで、動物をそれらの体重に基づいて種々の群にランダムに割り付ける。1日目に、経口/鼻腔内経路によって、試験化合物またはビヒクルをマウスに投与し、1時間後、試験化合物を投与された動物を、全身曝露用ボックスに定置する。1日目及び2日目に6本、3日目に8本、4日目に10本のタバコの主流煙にマウスを曝露する。各タバコの煙への曝露は、10分間継続する。最初の2分間でタバコを完全に燃やした後、動物用換気装置を用いて気流を発生させ、次の20分間は室内の新鮮な空気に曝露する。2本のタバコごとに室内の新鮮な空気に曝露することで更に20分間休憩させる。対照動物は、室内空気室に曝露する。1日目〜4日目まで、経口または鼻腔内経路のいずれかによって、動物に試験化合物を投与する。5日目に、最後のタバコ煙(CS)曝露の24時間後に、動物を麻酔下で失血させ、気管にカニューレを挿入し、ヘパリン処理したPBS(1ユニット/ml)の0.5mlアリコートで気管カニューレを通して4回肺を洗浄する(総体積2ml)。採取した気管支肺胞洗浄液(BAL)は、総細胞数及び白血球分画数についてアッセイするまで2〜8℃で保存する。BAL液を遠心分離し(500×gで10分間)、得られた細胞ペレットをヘパリン処理した0.5mlの食塩水に再懸濁する。血液細胞計数器を使用してBAL液及び血液中の白血球の総数を判定し、1×106個の細胞/mlに調節した。細胞分画数を手動で計算する。サイトスピン3を使用して40マイクロリットルの細胞懸濁液を遠心分離して、細胞スメアを調製する。細胞スメアを鑑別用血液染色液で染色し、顕微鏡的に観察して、好酸球をその形態学的特徴に従って識別する。細胞スメア中の300個の白血球の間で各細胞型の数を判定してパーセンテージとして表し、各BAL液中の好中球及びマクロファージの数を計算する。
イミキモド(IMQ)は、もともと非黒色腫皮膚癌の治療のために使用された、TLR7及びTLR8に対するリガンドである。マウスの剃毛した背中の皮膚へのIMQの局所適用は、アカントーシス、錯角化、及び免疫細胞の浸潤、ならびにIL23/IL17/IL22経路の関与を含む、ヒト乾癬特有の病理学的特徴のほとんどを呈する、乾癬様皮膚病態を誘導する。動物(雄のBalb/cマウス)を、実験の開始前に7日間気候順応させた。動物をそれらの体重に基づいて種々の群にランダムに割り付けた。0日目に、マウスの背中の皮膚を、除毛クリームの局所適用によって剃毛した。1日目に、経口経路によって、試験化合物またはビヒクルをマウスに投与し、1時間後、試験化合物を投与されたマウスに、62.5mgの商業的に入手可能なIMQクリーム(5%;Beselna Cream;Mochida Pharmaceuticals,Tokyo,Japan)を剃毛した背中の皮膚に適所適用した。マウスは、更に連続5日間、試験化合物またはビヒクル投与の1時間後に、イミキモドの適所適用で処理した。動物は、毎日、適所適用後、それらのケージに戻す前に1時間、乾燥させた。IMQクリームの最終適用の4時間後、マウスを殺処理し、皮膚試料を得た。背中の皮膚の厚さを、ダイヤルシックネスゲージを使用して測定した。皮膚の厚さを測定した後、皮膚試料を、10%中性緩衝ホルマリン溶液中に固定し、パラフィンに埋め込んだ。脱パラフィン処理したセクションを、ヘマトキシリンエオジン(HE)で染色した。表皮の厚さを、1つのセクション当たり5つの独立したフィールドの値を平均することによって定量化した。背中の皮膚の炎症の重篤性を採点するために、ヒトでの臨床的な乾癬の面積と重症度(Psoriasis Area and Severity Index(PASI))に基づく、客観的採点システムを使用した。紅斑、落屑、及び肥厚を、0〜4:0=なし;1=わずか;2=中程度;3=顕著;及び4=非常に顕著の尺度で独立して採点した。
Claims (23)
- N−(5−(4−アミノ−1−(1−(5−フルオロ−3−(3−フルオロフェニル)−4−オキソ−4H−クロメン−2−イル)エチル)−1H−ピラゾロ[3,4−d]ピリミジン−3−イル)−2−メトキシフェニル)メタンスルホンアミド、及びその薬学的に許容可能な塩から選択される化合物。
- 前記化合物が、
(RS)−N−(5−(4−アミノ−1−(1−(5−フルオロ−3−(3−フルオロフェニル)−4−オキソ−4H−クロメン−2−イル)エチル)−1H−ピラゾロ[3,4−d]ピリミジン−3−イル)−2−メトキシフェニル)メタンスルホンアミド;
(S)−N−(5−(4−アミノ−1−(1−(5−フルオロ−3−(3−フルオロフェニル)−4−オキソ−4H−クロメン−2−イル)エチル)−1H−ピラゾロ[3,4−d]ピリミジン−3−イル)−2−メトキシフェニル)メタンスルホンアミド;
(R)−N−(5−(4−アミノ−1−(1−(5−フルオロ−3−(3−フルオロフェニル)−4−オキソ−4H−クロメン−2−イル)エチル)−1H−ピラゾロ[3,4−d]ピリミジン−3−イル)−2−メトキシフェニル)メタンスルホンアミド;
及びその薬学的に許容可能な塩から選択される、請求項1に記載の化合物。 - (S)−N−(5−(4−アミノ−1−(1−(5−フルオロ−3−(3−フルオロフェニル)−4−オキソ−4H−クロメン−2−イル)エチル)−1H−ピラゾロ[3,4−d]ピリミジン−3−イル)−2−メトキシフェニル)メタンスルホンアミド、及びその薬学的に許容可能な塩から選択される、化合物。
- 前記化合物が、(R)−N−(5−(4−アミノ−1−(1−(5−フルオロ−3−(3−フルオロフェニル)−4−オキソ−4H−クロメン−2−イル)エチル)−1H−ピラゾロ[3,4−d]ピリミジン−3−イル)−2−メトキシフェニル)メタンスルホンアミド、及びその薬学的に許容可能な塩を含まない、請求項3に記載の化合物。
- 前記化合物が、95%超の鏡像体過剰率を有する、請求項3に記載の化合物。
- (S)−N−(5−(4−アミノ−1−(1−(5−フルオロ−3−(3−フルオロフェニル)−4−オキソ−4H−クロメン−2−イル)エチル)−1H−ピラゾロ[3,4−d]ピリミジン−3−イル)−2−メトキシフェニル)メタンスルホンアミド。
- 前記化合物が、(R)−N−(5−(4−アミノ−1−(1−(5−フルオロ−3−(3−フルオロフェニル)−4−オキソ−4H−クロメン−2−イル)エチル)−1H−ピラゾロ[3,4−d]ピリミジン−3−イル)−2−メトキシフェニル)メタンスルホンアミドを含まない、請求項6に記載の化合物。
- 前記化合物が、95%超の鏡像体過剰率を有する、請求項6に記載の化合物。
- 請求項1〜8のいずれか1項に記載の化合物と、少なくとも1つの薬学的に許容可能な担体と、を含む、薬学的組成物。
- 細胞内のPI3δキナーゼの触媒活性を阻害するための組成物であって、有効量の請求項1〜8のいずれか1項に記載の化合物を含む、組成物。
- 細胞内のPI3γキナーゼの触媒活性を阻害するための組成物であって、有効量の請求項1〜8のいずれか1項に記載の化合物を含む、組成物。
- 細胞内のPI3δキナーゼ及びPI3γキナーゼの触媒活性を阻害するための組成物であって、有効量の請求項1〜8のいずれか1項に記載の化合物を含む、組成物。
- 前記阻害が、増殖性疾患、骨障害、炎症性疾患、免疫疾患、神経系疾患、代謝性疾患、呼吸器疾患、血栓症、及び心臓疾患から選択される疾患、障害、または病態に罹患する対象において生じる、請求項10〜12のいずれか1項に記載の組成物。
- 白血病の治療を必要とする患者においてそれを治療するための組成物であって、有効量の請求項1〜8のいずれか1項に記載の化合物を含む、組成物。
- 喘息または慢性閉塞性肺疾患の治療を必要とする患者においてそれを治療するための組成物であって、有効量の請求項1〜8のいずれか1項に記載の化合物を含む、組成物。
- リウマチ性関節炎、乾癬、ループス、または実験的自己免疫性脳脊髄炎(EAE)の治療を必要とする患者においてそれを治療するための組成物であって、有効量の請求項1〜8のいずれか1項に記載の化合物を含む、組成物。
- 慢性リンパ球性白血病(CLL)、非ホジキンリンパ腫(NHL)、ホジキンリンパ腫(HL)急性骨髄性白血病(AML)、多発性骨髄腫(MM)、小リンパ球性リンパ腫(SLL)、または緩徐進行性非ホジキンリンパ腫(I−NHL)疾患の治療を必要とする患者においてそれを治療するための組成物であって、有効量の請求項1〜8のいずれか1項に記載の化合物を含む、組成物。
- PI3K関連疾患、障害、または病態の治療のための、請求項1〜8のいずれか1項に記載の化合物を含む組成物であって、前記疾患、障害、または病態が、免疫系関連疾患、炎症を伴う疾患もしくは障害、癌もしくは他の増殖性疾患、肝臓疾患もしくは障害、または腎臓疾患もしくは障害である、組成物。
- 抗癌剤、抗炎症剤、免疫抑制剤、ステロイド、非ステロイド性抗炎症剤、抗ヒスタミン剤、鎮痛剤、及びこれらの混合物から選択される追加の活性剤を更に含む、請求項18に記載の組成物。
- 前記PI3K関連疾患、障害、または病態が、白血病、急性リンパ球性白血病、急性リンパ芽球性白血病、B細胞リンパ腫、T細胞リンパ腫、ホジキンリンパ腫、非ホジキンリンパ腫、有毛細胞リンパ腫、バーキットリンパ腫、急性及び慢性骨髄性白血病、骨髄異形成症候群、及び前骨髄球性白血病、乾癬、リウマチ性関節炎、骨関節炎、喘息、COPD、アレルギー性鼻炎、ならびにループスエリテマトーデスから選択される、請求項18に記載の組成物。
- (S)−2−(1−(4−アミノ−3−(4−メトキシ−3−ニトロフェニル)−1H−ピラゾロ[3,4−d]ピリミジン−1−イル)エチル)−5−フルオロ−3−(3−フルオロフェニル)−4H−クロメン−4−オン、
(S)−2−(1−(4−アミノ−3−(3−アミノ−4−メトキシフェニル)−1H−ピラゾロ[3,4−d]ピリミジン−1−イル)エチル)−5−フルオロ−3−(3−フルオロフェニル)−4H−クロメン−4−オン、
及びその塩から選択される、化合物。 - 式(I)の化合物の調製のためのプロセスであって、
- 式(A1)の化合物の調製のためのプロセスであって、
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